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UNIVERSIDAD NACIONAL NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA FACULTAD DE AGRONOMÍA Departamento Académico de Ciencias Agrarias
Practica N° 01
Reconocimiento de plagas en cultivos agrícolas en el Fundo-UNAS Ejecutores
: Gamboa Chocce, Josmell Waldir Rojas Moreno, Lebi Rosso Lijarza Rafaile, Elizabet Yomira Villar González, Marcebith Esther
Docente
: Blgo.M.Sc. Gil Bacilio, Jose Luis
Curso
: Entomología Tropical
Lugar de ejecución : Fundo-UNAS
TINGO MARÍA 2017
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ÍNDICE Página I.
INTRODUCCIÓN .......................... ............ ........................... .......................... .......................... ......................... ............
3
II.
REVISIÓN DE LITERATURA ......................... ............ .......................... .......................... ..................... ........
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2.1.
Gusano cogollero del maíz .......................... ............. .......................... .......................... ...............
4
2.2. Pulgones .......................... ............. ........................... ........................... .......................... .......................... ...............
5
2.3.
Picudo negro ......................... ............ .......................... .......................... .......................... ....................... ..........
7
2.4.
Picudo rayado ......................... ............ .......................... .......................... .......................... ..................... ........
8
2.5. Chinche mosquilla ........................... ............. ........................... .......................... ......................... .............. ..
10
2.6. Hormiga coqui .......................... ............. .......................... .......................... .......................... ..................... ........
11
2.7. Crisomélidos .......................... ............. .......................... .......................... .......................... ....................... ..........
13
2.8. Broca del cafeto................. ........................... .............. .......................... ......................... .............. ..
14
2.9. Chinche de la panoja. .......................... ............. .......................... .......................... ....................... ..........
15
2.10. Mechanitis ........................... ............. ........................... .......................... .......................... ......................... ............
15
2.11. Minador de los cítricos ......................... ............ .......................... .......................... ..................... ........
16
2.12. Afidos ........................... ............. .......................... ......................... .......................... ........................... ................... .....
16
2.13. Quereza......................... ............ .......................... ........................... ........................... .......................... ................ ...
17
MATERIALES Y MÉTODOS .......................... ............. .......................... .......................... ..................... ........
19
IV. RESULTADOS ......................... ............ .......................... ........................... ........................... .......................... ................ ...
20
V.
DISCUSIÓN ......................... ............ .......................... .......................... .......................... .......................... ..................... ........
27
VI. CONCLUSIONES.......................... ............ ........................... .......................... .......................... ......................... ............
28
VII. RECOMENDACIONES RECOMENDACIONES ......................... ............ .......................... ........................... .......................... ................ ....
29
VIII. BIBLIOGRAFÍA .......................... ............. ........................... ........................... .......................... .......................... ...............
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IX. ANEXO........................... .............. ......................... .......................... ........................... .......................... .......................... ...............
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III.
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ÍNDICE Página I.
INTRODUCCIÓN .......................... ............ ........................... .......................... .......................... ......................... ............
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II.
REVISIÓN DE LITERATURA ......................... ............ .......................... .......................... ..................... ........
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2.1.
Gusano cogollero del maíz .......................... ............. .......................... .......................... ...............
4
2.2. Pulgones .......................... ............. ........................... ........................... .......................... .......................... ...............
5
2.3.
Picudo negro ......................... ............ .......................... .......................... .......................... ....................... ..........
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2.4.
Picudo rayado ......................... ............ .......................... .......................... .......................... ..................... ........
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2.5. Chinche mosquilla ........................... ............. ........................... .......................... ......................... .............. ..
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2.6. Hormiga coqui .......................... ............. .......................... .......................... .......................... ..................... ........
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2.7. Crisomélidos .......................... ............. .......................... .......................... .......................... ....................... ..........
13
2.8. Broca del cafeto................. ........................... .............. .......................... ......................... .............. ..
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2.9. Chinche de la panoja. .......................... ............. .......................... .......................... ....................... ..........
15
2.10. Mechanitis ........................... ............. ........................... .......................... .......................... ......................... ............
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2.11. Minador de los cítricos ......................... ............ .......................... .......................... ..................... ........
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2.12. Afidos ........................... ............. .......................... ......................... .......................... ........................... ................... .....
16
2.13. Quereza......................... ............ .......................... ........................... ........................... .......................... ................ ...
17
MATERIALES Y MÉTODOS .......................... ............. .......................... .......................... ..................... ........
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IV. RESULTADOS ......................... ............ .......................... ........................... ........................... .......................... ................ ...
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V.
DISCUSIÓN ......................... ............ .......................... .......................... .......................... .......................... ..................... ........
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VI. CONCLUSIONES.......................... ............ ........................... .......................... .......................... ......................... ............
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VII. RECOMENDACIONES RECOMENDACIONES ......................... ............ .......................... ........................... .......................... ................ ....
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VIII. BIBLIOGRAFÍA .......................... ............. ........................... ........................... .......................... .......................... ...............
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IX. ANEXO........................... .............. ......................... .......................... ........................... .......................... .......................... ...............
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III.
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I.
INTRODUCCIÓN
Los cultivos tropicales más importantes en nuestra provincia son: cacao, plátano, café, maíz, arroz y entre otros de menor envergadura como (papayo, cocona, palto, cítrico, achiote, noni y otros). Los cuales son susceptibles a diferentes plagas que generan daños considerables en el rendimiento de dichos cultivares. Realizando el reconocimiento de plagas en el cultivo de maíz en la pequeña parcela demostrativa del fundo, se logró reconocer cogollero del maíz (Spodoptera frugiperda), pulgones ( Rhopalosiphun maidis). En cacao; chinche mosquilla (Monalonium dissimulatum), hormiga coqui (Atta cephalotes) y crisomélidos. En el plátano al picudo negro (Cosmopolites sordidus) y picudo rayado (Metamasius hemipterus) quienes barrenan el pseudotallo. En el arroz se reconoció al chinche de la panoja (Oebalus poecilus) y un enemigo natural (coleomegilla maculata). En cultivo de café a la broca (hypothenemus hampei). Así mismo también se encontró plagas en los diferentes cultivos de menor importancia. Por ende, es de vital importancia realizar monitoreos frecuentes que nos permita reconocer las plagas claves y potenciales el cual nos permitirá tomar medidas de control anticipadamente. Por lo anteriormente manifestado se planteó los siguientes objetivos:
1. Reconocer las diferentes diferentes plagas que afectan a los cultivos cultivos agrícolas en nuestra provincia de Leoncio Prado. 2. Observar los daños daños que causan causan estas plagas en los cultivos agrícolas agrícolas
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II. 2.1.
REVISIÓN DE LITERATURA
Gusano cogollero del maíz: (Spodoptera frugiperda J.E. Smith) (Lepidóptera: Noctuidae)
2.1.1. Especie El cogollero del maíz
Spodoptera
frugiperda,
tiene un
comportamiento de alimentación variada en maíz se comporta como cortador y cogollero, pertenece al orden Lepidóptera y familia Noctuidae (CATALAN ,2012).
2.1.2. Biología La polilla hembra realiza la postura al atardecer o por las noches, la realiza en el envés de las hojas, coloca los huevos en grupo de 50 a 150 huevos, dispuestos en formas de cintas o bandas, cubierta de escamas, a los 12 días salen las larvas del primer estadio que se alimentan de las hojas tiernas y se ocultan en el suelo o permanecen en el cogollo de la planta. Las larvas maduras ingresan al suelo a una profundidad de 5 a 10 cm y se convierten en pupa. El ciclo biológico dura aproximadamente 50 días y cumple varias generaciones al año (CATALAN, 2012).
2.1.3. Daños Dañan la planta en varias formas, algunas veces puede comportarse como cortador a la altura del cuello cuando la planta es muy tierna. Su importancia es cuando se comporta como perforador de los cogollos y cuando este se abre al crecer, las hojas muestran agujeros irregulares al medio y borde de las hojas del maíz. Una forma de reconocer es por la presencia de excrementos a nivel de cogollo de las plantas. El daño por las larvas puede continuar hasta la etapa de la floración. También se ha observado realizando daños a nivel de choclo aun cuando no es su comportamiento normal del insecto (CATALAN, 2012).
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2.1.4. Medidas de control Adecuado preparado del suelo antes de la siembra y riegos pesados para destruir pupas y larvas. Controladores biológicos predatores y parasitoides que se alimentan de huevos y larvas que se encuentran expuestas en las hojas y el cogollo. Trampas de luz para captura de adultos Uso de insecticidas biológico Bacillus thuringiensis para el control de larvas. Uso de insecticidas con una aplicación focalizada al cogollo de las plantas. La presencia de lluvias temporales y el depósito del agua de lluvia en el cogollo de la planta ahogan a las larvas y ocasiona mortalidad masiva. (CATALAN, 2012).
2.2. Pulgones Según CATALAN (2012) menciona los siguiente:
2.2.1. Especies Las especies registradas para la zona son Rhopalosiphun maidis que pertenece a la familia Aphididae del orden Hemiptera. Estos insectos son conocidos con el nombre vulgar “Piojeras del Maíz” o “Usa usa”. Constituye una
plaga ocasional para la zona.
2.2.2. Biología Los pulgones son de reproducción partenogenética, las hembras adultas retienen los huevos en el vientre y nacen las ninfas. La hembra para reproducirse no requiere de macho. La tasa de multiplicación en condiciones favorables (presencia de alimento y temperaturas moderada) es muy rápida. Los pulgones se desarrollan e incrementan sus poblaciones en condiciones de alta humedad, para la sierra (50 a 60%) y temperatura moderada de (15 a 20 ºC). La presencia mínima de los controladores biológicos, temperatura y humedad favorable, disponibilidad suficiente de su alimento y presencia de sequías prolongadas, favorecen las gradaciones rápidas de sus poblaciones, siendo en algunos casos difícil de controlar con un insecticida. Los pulgones tienen un excelente complejo de enemigos naturales que evitan altas 20 gradaciones de poblaciones y daños a este cultivo. Como parasitoides y predatores.
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2.2.3. Daños Los pulgones colonizan preferentemente las partes tiernas de la planta y guía de crecimiento. Ninfas y adultos succionan la sabia de las hojas dejando, una serie de puntos blancos que dan lugar a un amarillamiento. En el maíz las infestaciones más altas se presentan al inicio y durante la formación de panojas. En el transcurso de la alimentación transmiten el virus de una planta enferma a una planta sana. Excreta cantidad de mielecilla, que cubre una capa fina en las hojas, el que sirve como un medio de cultivo para la proliferación del hongo fumagina ( Capnodium sp) La formación del hongo fumagina, crea una capa fina que impide la fotosíntesis, que repercute en la formación de los granos. Los pulgones son también considerados plagas secundarias del maíz debido a que
ocasionalmente
presentan
infestaciones
severas.
Se
localizan
preferentemente en el cogollo, pero pueden llegar a poblar toda la planta produciendo una gran cantidad de mielecilla que provoca un debilitamiento general que culmina con el desecamiento de las plantas. Las infestaciones más importantes se han determinado en maíces de los valles interandinos, probablemente a consecuencia de cambios climáticos que afectan la actividad de sus enemigos naturales que en gran parte son responsables de que los pulgones sean plagas secundarias del maíz.
2.2.4. Control En presencia de la sequía e incremento de la temperatura en el medio ambiente, debe iniciarse la evaluación en el campo cada tres días. Al 21 localizar colonias de pulgones, se debe realizar aplicaciones localizadas agua con jabón en proporción de 250 gramos diluido en 15 litros de agua y luego asperjar cada 04 días sólo en áreas de presencia de pulgones Aplicando agua con jabón damos opción a la presencia de controladores biológicos, predadores: que son adultos y larvas de coccinélidos, larvas de sirfidos, larvas de crisòpido, hemerobios y parasitoides (Aphidius sp), que en conjunto a controlar eficientemente a los pulgones. Si la detección de los pulgones es tarde y la población es alta, debe recurrir al uso de insecticidas, p, e. Pirimor, Manejo balanceado de fertilización (fósforo y potasio) no permitirá que las plantas sena suculentas y que toleren el incremento de las poblaciones de pulgones. El riego
-7oportuno en presencia de esquías, disminuirá la gradación de las poblaciones de pulgones en el campo del maíz.
2.3.
Picudo
negro
(Cosmopolites
Sordidus
German)
(Coleóptera:
Curculionidae)
2.3.1. Especie El picudo negro del plátano Cosmopolites Sordidus se puede considerar como plaga de mayor importancia económica el plátano y del banano. No solo ocasiona grandes pérdidas a las plantaciones, sino que también se encuentra diseminada en la mayoría de las zonas donde se siembran esos cultivos. Pertenecen al orden coleóptero y de familia curculionidae El insecto es originario del archipiélago malayo. Se considera un factor fitosanitario limitante, que ocasiona pérdidas totales de los cultivos, debido a las practicas agronómicas inadecuadas y al mal manejo de la plaga (DURAN,2007).
2.3.2. Biología Los adultos de c. sordidus, son cucarrones que miden de 1.5 a 2 cm de longitud; la cabeza presenta un pico largo y curvo, con dos grandes antenas. La coloración varia de café oscuro, recién nacidos, a negro cuando ya están bien desarrollados. Generalmente se encuentran localizados en la zona basal de las plantas, debido o dentro de los residuos de cosecha en descomposición, en donde la humedad es muy alta y se presentan condiciones de luz tenue. Debido al hábito de los adultos de permanecer escondidos durante el día y desplegar su mayor actividad durante la noche, es muy difícil detectarlos oportunamente; su presencia puede pasar desapercibida, hasta cuando los perjuicios ocasionados a la plantación ya son económicamente significativos. En este estado pueden ser más de un año. Las hembras ponen huevos durante la noche, en tallos cortados o en la base de las plantas, prefiriendo la corona del cormo. En el transcurso de su largo ciclo de vida puede ovopositor alrededor de 60 huevos, los cuales son
-8de color blanco o ligeramente amarillos, de forma ovoide y de aproximadamente 2.5 milímetros de longitud; son colocados en forma individual en las heridas de la zona basal de las plantas o en pequeñas perforaciones que la hembra fabrica con la ayuda de su pico, las cuales tapa luego con detritos de la planta. El estado de huevo puede durar de 5 a 8 días. (DURAN,2007).
2.3.3. Medidas de control De acuerdo DURAN (2007) las medidas de control en el picudo negro pueden ser:
a)
Control cultural Los adultos del picudo negro son atraídos por la humedad y los
fermentos derivados de la descomposición de residuos de cosecha como cormos y pseudotallos. Por ello es importante la eliminación de dichos residuos. Para evitar la diseminación del picudo es necesario utilizar semilla proveniente de plantaciones sanas.
b)
Control biológico El picudo negro tiene enemigos naturales como los coleópteros:
hololepta sp. y alegoría dilatata cucurrones que frecuentan los sitios donde se
desarrollan las larvas de cosmopolites.
c)
Control mecánico Se pueden utilizar los diferentes tipos de trampas como: trampas
tipo cepa, trampa tipo yagua rellena, trampa tipo tajada o sándwich y trampa tipo semicilíndrico.
2.4.
Picudo rayado (Metamasius hemipterus L.) (Coleóptera: Curculionidae) DURAN (2007) menciona que el picudo rayado es una plaga secundaria,
cuya presencia en plátanos está relacionada con plantaciones en mal estado, con desbalances nutricionales, especialmente con deficiencias de potasio. Se encuentran también en plantas donde existen heridas, fermentos o pudriciones; de la misma manera están favorecidos por la presencia de residuos de cosecha.
-9Por su incapacidad para causar por sí mismo heridas a tallos sanos y fuertes que permitan su entrada, siempre está asociada con algún disturbio, preferencialmente con otros barrenadores. Luego ocasiona daños similares, construyendo galerías en el seudotallo. Se encuentra distribuido en toda la zona platanera y cobra importancia económica porque se considera transmisor de la enfermedad conocida como “pudrición acuosa de seudotallo” E. ch. pv. Paradisiaca.
Los estados causantes del daño son tanto las larvas como los adultos, que producen debilitamiento del tallo y caída de las plantas. Se encuentra atacando al seudotallo, desde la base hasta el tercio superior de las calcetas externas hacia adentro. Los adultos son cucarrones de 1.5 cm de largo, de color generalmente rojizo. Presentan diferentes patrones de coloración, pero todos corresponden a la misma especie. El más común es aquel que en el tórax presenta tres manchas negras, una central alargada que lo atraviesa y dos paralelas a ésta lado a lado, pero de menor longitud; además posee dos bandas negras bordeando el tórax. Los élitros son de color rojizo de manchas negras. La hembra es más grande que el macho, depositan sus huevos dentro del tejido de descomposición, en heridas, agujeros o en el daño hecho por otros insectos o pájaros. Estos son pequeños y alargado de tres milímetros de largo por un milímetro de ancho, lisos y de color blanco cremoso. Las larvas son de color amarillo claro, cabeza color caoba y mandíbula color negro, presentan el cuerpo posterior abultado y en forma de C; completamente desarrollada mide de 1.5 a 2.0 cm de longitud, su cuerpo muestra pliegues abundantes y setas cortas. La pupa es exarata, distinguiéndose claramente las características del futuro adulto, inicialmente es blanca y posteriormente tanto los ojos como el pico toman un color pardo. Se envuelve en un capullo grueso de fibras de la planta huésped.
-10La presencia de este insecto hace que las hojas más externas de la planta se vuelvan amarillas y luego se sequen. La planta produce un racimo pequeño y raquítico que madura en forma prematura. En ocasiones las plantas, por la debilidad de su seudotallo, se pueden doblar por el peso del racimo. Para evitar el ataque de esta plaga se recomienda primordialmente no causar heridas a las plantas. Además, se deben seguir las mismas prácticas sugeridas para el control del “picudo negro” manteniendo la población libre de
malezas y residuos, procurando además establecer y mantener un buen drenaje.
2.5.
Chinche mosquilla: (Monalonion dissimulatum Distant.)
(Homóptera: Miridae)
2.5.1. Biología: No se le conoce hospedantes alternantes. Es decir, ataca exclusivamente al cacao. Los insectos en su etapa de juventud se alimentan de los brotes, pero una vez adultos se alimentan de las mazorcas en proceso de maduración. Este insecto posee un estilete en la boca, con lo cual succiona los jugos de la planta, por lo que es llamado comúnmente picador chupador. La ovoposición la hacen sobre todo a nivel de brotes tiernos. Un ambiente húmedo permite tener una mayor cantidad de huevos viables. El ambiente es más húmedo si se tienen altos niveles de precipitaciones aunado a un ambiente emboscado (COLONIA, 2012).
2.5.2. Daños: Los daños se localizan a nivel de brotes y frutos. En los frutos se dan pústulas o heridas circulares en la mitad apical del fruto. Si el daño se da a nivel de frutos tiernos, estos pueden sufrir pudrición y caída prematura. Si el ataque se da en frutos en crecimiento puede haber deformación. Y en casos severos la picadura puede comprometer los granos de la mazorca. A nivel de brotes, se da quemado y marchitamiento. El ataque de esta plaga favorece la contaminación por Monilia y Phytophthora. Pues las heridas abiertas le sirven
-11como puerta de entrada al hongo. Manchas color marrón oscuro. Producto del ataque de la mosquilla del cacao (COLONIA, 2012).
2.5.3. Control: La mosquilla del cacao tiene mayor agresividad si la plantación se desarrolla en ambiente húmedo. Entonces se debe evitar el emboscamiento de la parcela, para disminuir la acumulación de humedad en el ambiente. Las labores de podas y desmalezado son importantes, pues permiten una mayor ventilación e iluminación. También se debe tener en cuenta un adecuado distanciamiento de plantación. Como plaguicidas se puede usar dimetoato, endosulfan o imidacloprid. Evitar aplicar estos productos en la época de floración y cuajado pues se afecta la población del polinizante Forcipomyia. Si se tienen algunas flores durante el ataque de este insecto, aplicar de preferencia en la noche el insecticida metomil. La mosquilla, dentro de un plan de manejo orgánico puede controlarse con insecticidas permitidos para este fin como la rotenona a razón de 300gr. Por cilindro de 200 litros. También puede usarse el sulfato de nicotina a razón de 100 gr. Por cilindro de 200 litros. Como parte del control biológico se está trabajando actualmente con cepas nativas de Beauveria bassiana. También dentro del control biológico se está estudiando la crianza y
liberación del predator Podisus sp. (COLONIA, 2012).
2.6.
Hormiga coquí ( Atta cephalotes L.) (Hymenoptera: Formicidae) 2.6.1. Características El género Atta se caracteriza por tener hormigas grandes,
generalmente de color oscuro; por tener hormigueros muy profundos y extensos en área, abundante población de hormigas (se ha reportado hasta 12 millones de hormigas en un hormiguero maduro) y posee casta de Soldados. Se han reportado hormigueros de Atta de 500 metros cuadrados de área y 15 metros de profundidad. Generalmente en un hormiguero maduro de Atta se pueden encontrar bocas independientes de salida y entrada de las hormigas. Este género es muy agresivo y ataca gran diversidad de cultivos causando graves
-12daños, entre los que encontramos más frecuentemente: frutales, hortalizas, café, plátano, yuca, maíz, fríjol, caña, forestales, entre otros (VERGARA ,2005)
2.6.2. Alimentación Las hormigas arrieras se alimentan de un hongo que cultivan en cámaras de almacenamiento dentro del hormiguero, este hongo a su vez se alimenta de las partes de las plantas que les llevan las hormigas, a lo que podemos llamarle una simbiosis mutualista entre el hongo y la hormiga. (VERGARA,2005)
2.6.3. Daños Las obreras cortan las hojas de las plantas cultivadas y silvestres, en forma de porciones semicirculares o de media luna en los márgenes.
2.6.4. Control Para el control eficiente de la hormiga coqui o arriera Clavijo (2005) menciona lo siguiente:
a) Control cultural Este tipo de control está dirigido a la destrucción de hormigueros nuevos, los cuales deben ser buscados al inicio de las lluvias, desenterrando a la reina y matándola. La primera cámara debe estar ubicada entre 15 y 25 centímetros de profundidad. Los sitios se reconocerán mejor si los lotes han sido limpiados antes del período de lluvias y si se consigue ver machos alados muertos sobre el suelo después del vuelo nupcial. Otro método es la utilización de cultivos trampa como la higuerilla (Ricinus comunis), el ajonjolí (Sesamun indicum), el frijol canavalia (Canavalia ensiformis) y la batata (Ipomoea batata), cuyas hojas son llevadas por las hormigas hasta el hongo produciendo su intoxicación.
b) Control físico-mecánico Consiste en la destrucción mecánica de los hormigueros utilizando palas, picas, sondas o combustibles, para encontrar la reina y matarla. Se consiguen buenos resultados en hormigueros nuevos o pequeños de fácil acceso y manejo. Hay que tener en cuenta que los hormigueros viejos pueden tener fácilmente hasta 3 ó 4 metros de profundidad con muchas cámaras, bocas y respiraderos.
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c) Control biológico El control biológico natural a través de predadores, parásitos y microorganismos patogénicos, especialmente durante el vuelo nupcial y algunas horas después es importante para el manejo de la hormiga. Las aves silvestres y/o domésticas que son insectívoras y omnívoras, también son enemigos naturales importantes para la regulación natural de hormigas. La aplicación en forma de cebos, con avena en hojuelas y jugo de naranja, de hongos como Beauveria, Metharizium, Trichoderma y Penicillium han demostrado una buena efectividad reduciendo la actividad de las hormigas por 7 semanas a niveles mínimos de daño. Las aplicaciones pueden ser repetidas utilizando una especie diferente cada vez. Los cebos vegetales son otra forma de manejo biológico de la hormiga arriera.
d) Control químico Se recomienda la utilización del ingrediente activo Fipronil formulado como cebo tóxico granulado. Es recomendable, aplicar el cebo sin contacto manual al lado de los caminos de mayor utilización de las hormigas y próximo a las bocas más activas del hormiguero. Para un óptimo resultado, el cebo debe ser cargado por las hormigas hacia el interior del hormiguero, donde las jardineras incorporan el producto al hongo, que al consumirlo las intoxica y mueren lentamente. Cuando mueren las jardineras el hongo deja de ser cultivado y no hay alimento para ninguna hormiga, incluida la reina, y mueren por inanición. También, la insuflación de borato sódico y Acefato, la aplicación de Carbaryl en cebo y la termo-nebulización de aceite mineral y Deltametrina para el control del insecto.
2.7.
Crisomélidos (Coleóptera: Chrysomelidae) Pequeños coleópteros de colores brillantes. Existen muchas especies que
atacan al cacao (ANTEPARRA, 2012).
2.7.1. Daño: La mayoría son plagas nocturnas de las hojas tiernas, a las que hacen unos pequeños huecos. También puede causar daño en los frutos, formando lesiones superficiales, que pueden servir como puertas de entrada
-14para algunas enfermedades, aunque por si mismas no causan perdidas de mazorcas (ANTEPARRA, 2012).
2.7.2. Control químico: Se le combate con Sevin (Carbaryl) y Endosulfan (Thiodan 35 CE, Thiodrex 350).
2.8.
Broca del cafeto (Hypothenemus hampei Ferr.) (Coleóptera: Scolytidae) 2.8.1. Biología: Es un insecto plaga que inicia su ataque en los frutos verdes del
cafeto, entre los 3 y 4 meses después de la floración, cuando estos se encuentran en estado lechoso o pastoso. En las zonas más calurosas, donde el ciclo de la broca dura cerca de un mes, una sola broca hembra puede generar hasta 24 millones de hembras reproductoras en un periodo de cinco meses. Cada hembra pone 40 huevos durante su vida. Después de una semana de los huevos salen larvas o gusanos, que son los que mayor daño causan. Permanecen dos semanas comiéndose la cereza, abriendo túneles o destruyéndolas totalmente. Las larvas son parecidos a granitos de arroz, cuando terminan su desarrollo se convierten en pupas. Después de una semana de cada pupa sale una broca. En una población de broca hay 10 hembras por cada macho (ANTEPARRA, 2012).
2.8.2. Daño: Si los frutos verdes menores de tres meses son atacados, la mayoría de estos se caen. Si son atacados frutos de mayor desarrollo, la broca se establece en ellos perforando casi siempre una cereza, hasta destruirla completamente, cuando perfora daña la parte comercial, causando así bajo rendimiento en la calidad (ANTEPARRA, 2012),
2.8.3. Control: a) Control biológico: Los únicos intentos de uso de enemigos naturales en el control biológico de la broca a nivel mundial han sido con los parasitoides Cephalonomia
-15stephanoderis, Prorops nasuta, Heterospilus coffeicola, Phymastichus coffea y
el hongo Beauveria bassiana (ANTEPARRA, 2012) .
2.9.
Chinche de la panoja (Oebalus poecilus) (Hemíptera: Pentatomidae) 2.9.1. Biología: El chinche de la espiga, forma parte de un complejo de chinches
que atacan diversos cultivos y que se caracterizan por su olor. Aunque en algunos países de Centro América como Costa Rica, El Salvador y Honduras se reportan diversas especies como O. ornata, O. poecila y O. pugnax, solamente O. insularis esté distribuido en toda Centro América, por lo tanto, se asume que es la especie que esté presente en Nicaragua. Como todos los insectos del orden hemíptero, el ciclo de vida del chinche de la espiga, es de metamorfosis incompleta o hemimetábola, es decir que durante su vida pasa por tres estados que son: huevo, ninfa y adulto.
2.9.2. Daño: El daño ocasionado por el chinche ocurre cuando las ninfas y adultos succionan el jugo de los granos, desde el momento en que estos se encuentran en estado de llenado o lechoso hasta el momento de maduración. Cuando el grano se vuelve consistente la actividad de los chinches se reduce. Producto de la succión de los líquidos de los granos, muchos de los granos que se producen son vanos o estériles.
2.9.3. Control: a) Control biológico: Existen principalmente parasitoides como avispitas de la familia scelionidae, entre las que se mencionan las especies Telenomus podissi y T. latifrons. Además, existen depredadores como arañas y avispas que se alimentan de los chinches.
2.10. Mechanitis (Mechanitis polymnia proceriformis Brick) (Lepidóptera: Ithomydae) Se han hallado larvas de Mechanitis polymnia proceriformis Brick (Lepidóptera, Ithomyidae) como comedor de hoja de cocona en Tingo María, sin que su daño sea importante, cuyo ciclo de vida en el laboratorio tiene una duración promedio de 28 días. El adulto en laboratorio puede vivir de cinco a seis
-16días, las alas y las antenas son de color anaranjado. Mechanitis polymnia proceriformis Brick. La parte apical del ala es de color oscuro con manchas amarillas y en la parte basal presenta manchas negras, el ala posterior también es de color anaranjado con dos bandas de manchas negras (ANTEPARRA, et al ,2011).
2.11. Minador de los cítricos (Phyllocnistis citrella Stainton) (Lepidóptera: Gracillariidae)
2.11.1. Daño: Afecta sobre todo a limoneros jóvenes. La hembra adulta realiza las puestas en la nervadura central. La larva devora el parénquima de las hojas jóvenes, formando galerías redondeadas. Se recomienda no sobre abonar para que no haya brotamiento en exceso y concentrar la brotación y solo tratar las que sean significativas (ANTEPARRA, 2012).
2.11.2. Control: Las materias activas más empleadas son: abamectina e imidacloprid. Eficiente
controlador
biológico
es
Ageniaspis
citricota
(ANTEPARRA, 2012).
2.12. Áfidos o pulgones ( Aphis spp. y Myzus sp.) (Homóptera: Aphiclidae) 2.12.1. Biología: Son alados, de color verde, amarillos o negros. Se alimentan de la savia extraída del envés de la hoja. Se reproducen por partenogénesis y en forma vivípara, partenogénesis y en forma vivípara, implicando que solo da hembras, las cuales ya nacen vivas. La duración de una generación depende de la temperatura y puede durar hasta 10 días en climas cálidos. Una hembra puede dar nacimiento hasta 100 ninfas de una vez (GARCIA,2010).
2.12.2. Daños: Los adultos y las ninfas viven en colonias en el envés de las hojas terminales de las plantas hospederas, en el caso de las plantas de papayo no son atractivas para ser colonizadas. Cuando succionan Ia savia, inyectan una
-17saliva tóxica que provoca encarrujamiento, disminuyendo el vigor de la planta. Al succionar, algunas gotas de savia caen en Ia superficie de la hoja que cie de la hoja que sirve de sustrato para el desarrollo de un hongo denominado Capnodium sp que afecta la función normal de la fotosíntesis de las plantas. El
mayor daño de los pulgones es el del virus de la mancha anular del papayo (VMAP), de plantaciones viejas o hospederas como las cucurbitáceas (GARCIA,2010).
2.12.3. Control: a) Control cultural: Eliminar
periódicamente
las
malezas,
especialmente
dicotiledóneas como especialmente dicotiledóneas como cucurbitáceas, de los alrededores del cultivo, y reducir así Ia poblaciones de pulgones y las fuentes de virus. Eliminar las plantas infestadas por el virus. Destrucción de los rastrojos de las plantas viejas infectadas. Proporcionar a la planta una adecuada nutrición, para producir plantas vigorosas desde los primeros días de desarrollo (GARCIA,2010).
b) Control etológico: Usar trampas amarillas, de 1.0 x 0.5 m, impregnadas con aceite o pegamento especial, colocar al menos 16 trampas por manzana en los alrededores del lote en el rumbo de ingreso el viento. Establecer barreras vivas de rosa de jamaica, maíz, sorgo o zacate en los alrededores y adentro del cultivo. Las barreras sirven para interferir los movimientos de los Áfidos y ayudar a limpiar el estilete, cuando migran de hospederos infectados con el virus (GARCIA,2010).
c) Control biológico: Existen muy buenos depredadores de áfidos, entre ellos las mariquitas: Coleomegilla maculata y Cycloneda sanguínea, etc. (GARCIA,2010).
2.13. Queresas o escama blanca de palto (Hemiberlesia lataniae ) 2.13.1. Biología: La escama blanca del palto, Hemiberlesia lataniae (Signoret), es considerada un problema fitosanitario de gran importancia económica, ya que su
-18presencia en la fruta determina un descarte de 1 a 2% en packing. Además, dicha condición genera un trabajo de remoción mediante escobillado manual y mecánico que incrementa los costos de producción en aproximadamente un 3% (RIPA et al ,2007).
2.13.2.
Daño: Se ha observado otra especie de escama, Aspidiotus nerii Bouché,
la escama blanca de la hiedra, que ataca al palto, pero con menor frecuencia que la anterior. Sus hábitos de desarrollo y daño son similares a H. lataniae, diferenciándose de esta última principalmente por la coloración grisácea de la cubierta de la escama y por la ubicación excéntrica del exuvio. Es una especie altamente polífaga, registrada en hospederos como manzano, peral, sauce, vid, membrillero, kiwi, mora, olivo, cítricos, algunas coníferas, cactáceas y ornamentales (RIPA et al ,2007).
2.13.3.
Control: a) Control biológico Entre los enemigos naturales asociados a la escama blanca del
palto se encuentran parasitoides del género Aphytis spp y los coccinélidos (chinita) depredadores Rhizobius lophanthae y Coccidophilus citricola. Ambos tipos de controladores pueden provocar una mortalidad de la población de escama cercana al 40% cuando son liberados en altas densidades en el campo.
b) Control químico Se recomienda el uso de metomilo, insecticida registrado para el uso en paltos, y el aceite mineral, en períodos del año en que se presenta mayoritariamente estadios inmaduros de la plaga (diciembre), de manera de evitar el desplazamiento del insecto hacia los frutos en crecimiento. La aplicación química debe lograr una mojadura abundante y uniforme al interior del árbol. Hay que integrar el control biológico con el uso de plaguicidas, estimando en campo la eficiencia de los enemigos naturales y la efectividad y selectividad de los productos químicos, de manera de desarrollar una estrategia de manejo integrado de la plaga (RIPA et al ,2007).
-19-
III. 3.1.
MATERIALES Y MÉTODOS
Lugar de ejecución: La práctica de reconocimiento de plagas en cultivos agrícolas se
desarrollo en el Fundo de la Facultad de Agronomía, de la Universidad Nacional Agraria de la Selva, esta instalación está ubicada a 1.5 km, en la ciudad de Tingo María, Distrito Rupa Rupa, Provincia de Leoncio Prado y Departamento de Huánuco, cuyas coordenadas geográficas son:
3.2.
Este
:0390535.
Norte
: 8970033.
Altitud
: 660 m.s.n.m.
Materiales:
Cámara fotográfica
Cuaderno de notas
Frasco matador
Mariposero
3.3.
Metodología: Para el reconocimiento de plagas en los cultivos de maíz, cacao, café,
arroz y entre otros; se realizó el reconocimiento inicial del campo buscando capturar con el mariposero a ciertas plagas existentes en dichos cultivos. Posterior a las capturas se realizó la identificación y verificación con ayuda del docente y la literatura existente.
-20-
IV. 4.1.
RESULTADOS
Plagas del maíz
Figura 1. Daño causado por el Cogollero (Spodoptera frugiperda) en las hojas del maíz
Figura 2. Partes tiernas en crecimiento del maíz colonizada por Pulgones (Rhopalosiphun maidis).
-21-
4.2.
a
Plagas en el cultivo de cacao
b
Figura 3. a) Daño causado por la hormiga coquí ( Atta cephalotes) y b) presencia de dicha plaga en cacao.
.
Figura 4. Presencia de las pústulas y manchas verrugosas (daño) causado por los estadios ninfales y adultos de chinche mosquilla (Monalonium dissimulatum) en el fruto del cacao.
-22.
Figura 4. Daños causados por crisomélidos en las hojas del cacao. 4.3.
Plagas en noni
Figura 5. Daños por hormiga coquí ( Atta cephalotes) en las hojas del noni.
-23-
4.4.
a
Plagas en el cultivo de plátano b
c
Figura 6. a) Daño del pseudotallo; barrenamiento, b) presencia del estado larval y c) Picudo negro adulto ( Cosmopolites sordidus) en el cultivo del plátano.
a
b
c
Figura 7. a) Barrenamiendo del cormo del pseudotallo del plá tano b) estado larval y c) presencia del picudo rayado (Metamasius hemipterus) en el plátano.
-24-
4.5.
Plagas en cocona
Figura 8. Mechanitis polymnia proceriformis en el cultivo de cocona. 4.6.
Plagas en papayo
Figura 9. Posibles daños causados por Áfidos ( Aphis y Myzus) quienes son vectores de enfermedades virosas en el cultivo de papayo.
-25-
4.7.
Plagas en arroz
Figura 10. Chinche de la panoja del arroz ( oebalus poecilus). 4.8.
Plagas en palto
Figura 11. Queresas en el cultivo de palto.
-26-
4.9.
Plagas en cítricos
Figura 12. Daño causado por el minador de los cítricos ( Phyllocnistis citrella) en las hojas. 4.10. Plagas del cafeto
Figura 12. Broca de cafeto (Hypothenemus hampei ) perforador de la parte comercial, causando así bajo rendimiento en la calidad del café.
-27-
V.
DISCUSIÓN
Al reconocer las diversas plagas en diferentes cultivos pudimos observar lo siguiente:
En la figura 1, el cultivo de maíz es atacado a nivel de las hojas por el Cogollero (Spodoptera frugiperda), que coincide con lo mencionado por CATALAN,2012 que las hojas muestran agujeros irregulares al medio y borde de las hojas del maíz.
En la figura 4, el cultivo de cacao a nivel del fruto presenta pústulas y manchas verrugosas causado por los estadios ninfales y adultos de chinche mosquilla (Monalonium dissimulatum), que es similar con lo mencionado por COLONIA, 2012 que en los frutos se dan pústulas o heridas circulares en la mitad apical.
En la figura 6, en el cultivo de plátano se ven daños en el pseudotallo que presenta síntoma de barrenamiento por
picudo negro adulto
(Cosmopolites sordidus) en la parte basal del seudotallo, que es parecido con lo aclarado por DURAN,2007 que el picudo negro se encuentra atacando al pseudotallo, desde la base hasta el tercio superior de las calcetas externas hacia adentro.
En la figura 12, en el cultivo de café se observa a la broca de cafeto (Hypothenemus hampei ) que es perforador de la parte comercial, causando así bajo rendimiento en la calidad, que es parecido con lo mencionado por ANTEPARRA,2012 que cuando perfora la cereza daña la parte comercial así bajando su rendimiento de calidad.
-28-
VI.
CONCLUSIONES
Se logró reconocer las siguientes plagas y el daño que causan de acuerdo a los cultivos agrícolas: En maíz
Cogollero del maíz (Spodoptera frugiperda) causante de defoliación en las el cogollo y las hojas del maíz
Pulgones colonizadores del maíz y además transmisores de
enfermedades virosas. En cacao
Hormiga coqui ( Atta cephalotes) defoliador de las hojas en forma de media luna.
Chinche mosquilla (Monalonium dissimulatum) causa pústulas y manchas negras en el exterior del fruto.
Crisomélidos
En plátano
Picudo negro (Cosmopolites sordidus) barrenador del psuedotallo.
Picudo rayado (Metamasius hemipterus) barrenador del psuedotallo.
En café
Broca del cafeto (Hypothenemus hampei ) causa daño directo en el fruto, muy perjudicial en el rendimiento para el agricultor.
Así también en arroz chinche de la panoja ( oebalus poecilus); en cocona mechanitis (Mechanitis polymnia proceriformis Brick); en papayo los afidos (mizus y aphis) transmisores de enfermedades virosas; cítricos al minador de los cítricos (Phyllocnistis citrella Stainton) y a queresas en palto. Es importante el reconer y monitorear las plagas para poder tomar decisiones en el control de acuerdo al nivel de infestación que se encuentre el cultivo.
-29-
VII.
RECOMENDACIONES
1. Realizar la evaluación o monitoreo de las plagas en mayores áreas de cultivos para la identificación de mayor cantidad de plagas existentes en los cultivos. 2. Realizar el reconocimiento de plagas en días calurosos para poder obtener mayor presencia e identificación de los daños que causan en los cultivos agrícolas.
3. Verificar apropiadamente las plagas consultando al docente o literatura actualizada.
-30-
VIII.
REFERENCIA BIBLIOGRAFICA
ANTEPARRA M. E, AYVAR J. C Y GRANADOS, L. B. 2011. Algunos aspectos sobre la biología de Mechanitis polymnia proceriformis Bryk, 1953 (Lepidóptera: Nymphalidae) asociado con la Cocona (Solanum sessiliflorum Dunal) en Tingo María. Rev. Aporte Santiaguino; 3(2): 171176. ANTEPARRA, P., Miguel. 2012.Manual de entomología tropical. Universidad Nacional Agraria de la Selva. Tingo Maria-Peru.155 p. CATALAN B., W. 2012. Manejo integrado en el cultivo de maíz amiláceo. Ficha técnica. [En línea] http://www.agrobanco.com.pe/data/uploads/tecnica/pdf. Revisado el 18 de mayo de 2017. CLAVIJO., Jairo. 2005. Manual para el manejo de la hormiga arriera. Programa MIDAS-Colombia. [en línea] https://sioc.minagricultura.gov.co/Documentos/Documentos técnicos de la Manual Hormiga arriera.pdf.Revisado el 25 de mayo de 2017. COLONIA C., Luis. 2012. Manejo integrado de plagas en el cultivo de cacao. Ficha técnica. [en línea] http://www.agrobanco.com.pe/data/uploads/ctecnica/010-e-cacao.pdf. Revisado el 18 de mayo de 2017. DURAN R., F. et al . 2007.Control de plagas y enfermedades en los cultivos. Editorial Grupo Latino. Bogotá-Colombia.740 p. GARCIA., M.A. 2010. Guía técnica del cultivo de la papaya. CENTA. [en línea] http://www.centa.gob.sv/docs/guias/frutales/GUIA/CULTIVOS/PAPAYA. pdf. Revisado el 20 de mayo de 2017. RIPA., S.R.; VARGAS., M.R; LARRAL.; D.P.; RODRIGUEZ.; S.S. 2007. Manejo de las principales plagas del palto. INIA. [en línea] http://www2.inia.cl/medios/biblioteca/ta/NR34134.pdf.Revisado el 20 de mayo de 2017. VERGARA., Juan. 2005. Biología, manejo y control de la hormiga arriera. Gobernación del valle de Cauca. [en línea] www.valledelcauca.gov.co/agricultura/descargar.php?id=959. Revisado el 25 de mayo de 2017.
-31-
IX.
ANEXOS
-32-
Figura 13. Parcela de maíz del fundo “el agrónomo-UNAS”
Figura 14. Parcela de arroz del fundo “el agrónomo-UNAS”
