UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN ANTONIO ABAD DEL CUSCO FACULTAD DE AGRONOMIA Y ZOOTECNIA CARRERA PROFESIONAL DE AGRONOMIA
“POLINIZACIÓN MANUAL PARA INCREMENTAR LA PRODUCTIVIDAD PRODUCTIVIDAD
DE CHIRIMOYA ( Annona cherimola. Mill. ), EN CONDICIONES DE LIMATAMBO-ANTA-CUSCO”
TESIS PRESENTADO POR EL BACHILLER EN CIENCIAS AGRARIAS MARCO ANTONIO YAPURA CAYO PARA OPTAR AL TÍTULO PROFESIONAL DE INGENIERO AGRÓNOMO. ASESORES
:M.Sc. : Ing. PEDRO MAMANI
K’AYRA –
CUSCO – PERU 2012
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INTRODUCCION La Chirimoya ( Annona cherimola Mill ), pertenece a la familia Anonaceae, de fácil adaptación a diversas condiciones agro climáticas, desarrolla en altitudes entre 1800 a 2800 m. Es originaria de Colombia, Ecuador y Perú; hace parte de nuestra biodiversidad no aprovechada y tampoco agroindustrializada en la cadena frutícola regional y nacional; posee un excelente potencial de mercado a nivel local, regional y nacional, altos precios y gran aceptación por los consumidores por sus características organolépticas. En muchos países se consume la pulpa directamente como postre o en diferentes formas como batidos, helados, refrescos, jugos y yogurt. El mercado para la chirimoya es principalmente local, la fruta fresca a pesar de lo agradable de su sabor, ve restringido su comercio internacional por su susceptibilidad de daño durante el transporte y almacenaje una vez que la fruta se ablanda, lo que ocurre 7 –8 días después de cosecha. Un problema aun mas importante son los bajos rendimientos que se debe principalmente a que las flores del chirimoyo poseen una dicogamia de tipo protoginea, es decir, que los pistilos son los primeros en estar maduros, aptos para recibir el polen y ser fecundados, mientras que los estambres se encuentran todavía inmaduros, a esto se une la poca eficiencia de agentes polinizadores de tipo entomófilo, dándose pocos frutos, pequeños y asimétricos. La mayoría de las plantaciones existentes se han originado por propagación natural y han desarrollado sin manejo agronómico, tienen un rendimiento entre 8000 a 12000 kg. / ha. Existen cultivos a nivel comercial que no cubren la demanda del mercado nacional. nacional. Solamente en el valle valle de Cumbe provincia de Huarochirí, Huaral, así así como en Cañete, Cañete, Lima y en Cajamarca, Cajamarca, se se ha avanzado con trabajos agronómicos, de control fitosanitario, abonamiento, selección, clasificación y propagación de un solo eco tipo con las características comerciales capaces de satisfacer los mercados nacionales e internacionales. La demanda de la chirimoya chirimoya no está satisfecha. La producción en el Perú es restringida debido a que solo solo hay pequeñas plantaciones conducidas con desconocimiento en el manejo del cultivo, cosecha y post cosecha añadiendo el problema de la dicogamia se tiene tiene como consecuencia consecuencia una baja producción y baja calidad de presentación de la fruta para ofrecer a los mercados de comercialización. Por lo cual el presente trabajo de investigación investigación se realiza con la finalidad de determinar el incremento de rendimiento obtenido mediante la aplicación de la polinización manual y al mismo tiempo lograr frutos de mayor peso y uniformidad, comparando diferentes horas del día.
El Autor 2
INDICE DE CONTENIDOS Pag. INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………… ÍNDICE DE CONTENIDOS……………………………………………………….. I.PROBLEMA OBJETO DE ESTUDIO …………………………………….…… II. OBJETIVO Y JUSTIFICACION ………………………………….………….…. 2.1. OBJETIVOS ………….………………………….…..…………….…….….… 2.1.1. OBJETIVO GENERAL…..……….……….……..……………………..…. OBJETIVOS ESPECIFICOS …………..……..….………………….…… 2.1. 2.1.2. OBJETIVOS 2.2. JUSTIFICACION…………………………….…...…………………………… III. HIPÓTESIS ………………………………………………………………...… 3.1. HIPÓTESIS GENERAL (H.G.). ……………..………………………….….. 3.2. HIPÓTESIS ESPECÍFICA (H.E.). ………….……………………………… IV. MARCO TEORICO ………………………………………………………...... 4.1. ORIGEN ……………………………….……………………………………… 4.2. PARIENTES SILVESTRES………….……………………………………… 4.3. DISTRIBUCIÓN DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA DEL CHIRIMOYO…….…………..…… CHIRIMOYO…….…………..…… 4.4. NOMBRES COMUNES ……………………………………………………… ……………………………………………………… 4.5 . POSICIÓN TAXONÓMICA …………………………………………………. 4.6. DESCRIPCIÓN BOTÁNICA..………………………………………………… 4.7. CICLO FENOLOGICO Y BIOLOGIA FLORAL………………….……….. 4.7.1. ASPESTOS GENERALES ……………………………………………….. 4.7.1.1 FENOLOGIA ………………………………………………………………. 4.7.1.2 FASE ………………………………………………………………………. 4.7.1.2.1 MOMENTOS FENOLÓGICOS DE LAS FASES ……………………. 4.7.1.3 ETAPA O SUB PERIODO ………………………………………………. 4.7.2 BIOLOGIA FLORAL ……………………… ………………………………. 4.8. LA POLINIZACION EN EL CULTIVO DEL CHIRIMOYO………….……… 4.8.1. POLINIZACION ARTIFICIAL..………………………….………… ARTIFICIAL..………………………….……………………. …………. 4.8.1.1 VENTAJAS Y DESVENTAJAS DE LA POLINIZACION MANUAL …… 4.8.2 POLINIZACION NATURAL………………………………….……………… 4.9 REQUERIMIENTOS DEL CULTIVO DEL CHIRIMOYO ………………. 4.10 CULTIVO DEL CHIRIMOYO ……………………………………………. 4.10.1 PROPAGACIÓN………………………………………………………… 4.10.2 . SIEMBRA …………….…………………………………….………….…… 4.10.3. ABONADO ……………. ……………………………..………………..… 4.10.4. RIEGOS…………………………………………………………..…………. 4.11.5. PODA ……….. …………………………………………………..……....... 4.10.6 COSECHA Y POSCOSECHA …………………………………..………… 4.11. PLAGAS Y ENFERMEDADES….…………………………………………… 4.12. PRODUCCIÓN DE CHIRIMOYA…………………………………………… 4.13. VALOR NUTRITIVO…………………………………………………………. V. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN ………………………………………….... 5.1. GENERALIDADES ………………………………………………………..…….. 5.1.1. LUGAR DEL EXPERIMENTO ………………………………………..……… 5.1.1.1. UBICACIÓN POLÍTICA ……………………………………………….…….. 5.1.1.2. UBICACIÓN GEOGRÁFICA Y ALTITUD………………………………… 5.1.1.3. UBICACIÓN HIDROGRÁFICA …………………………………………...
02 03 06 06 06 06 06 07 08 08 08 09 09 09 11 12 12 13 14 14 14 14 15 16 16 23 23 27 28 30 30 30 31 34 34 34 36 36 41 43 45 45 45 45 45 45 3
5.1.2. ECOLOGÍA ……………………………………………………………………. 5.2. MATERIALES ………………………………………………………………….. 5.2.1. MATERIAL GENÉTICO …………………………………………………….. 5.2.2. MATERIALES DE CAMPO Y LABORATORIO ………..……………...... 5.2.2.1. MATERIALES Y EQUIPOS DE CAMPO Y GABINETE ……….……… 5.2.3. EQUIPOS……. ………………………………………………………………. 5.2.4. HERRAMIENTAS………………………………………… HERRAMIENTAS……………………………………………………………. …………………. 5.3. METODOLOGÍA ……..………………………………………………………… 5.3.4 DISEÑO EXPERIMENTAL ………………………………………………… VI. MATRIZ DE CONSISTENCIA…………………………………..….….……… VII. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES…………………………..………......... VIII. PRESUPUESTO………………………………………………..…………….. BIBLIOGRAFÍA………………………………………………………….…………..
46 46 46 46 47 47 47 47 47 52 54 55 56
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I. -
PROBLEMA OBJETO DE ESTUDIO
IDENTIFICACION DEL PROBLEMA OBJETO DE ESTUDIO
Dentro del ámbito ámbito de la región se se tiene la producción baja del cultivo de la chirimoya esto debido principalmente un elevado porcentaje de frutos de forma irregular y tamaño variado a la madurez, aún los procedentes de de la misma planta, planta, esto a causa de la dicogamia de tipo protoginea que hace deficiente la polinización por efecto de que primero maduran los pistilos y son receptivos cuando las anteras están aún inmaduras y no sueltan polen. Por ello se dificulta la auto polinización polinización entre los órganos florales de la misma flor, es escaso escaso el porcentaje de coincidencia de maduración de ambos órganos de la misma flor y aparentemente este es uno de los principales factores que hacen hacen poco eficiente eficiente la polinización natural y es responsable del bajo rendimiento. Como consecuencia los precios que se logra en la comercialización son bajos, lo cual impide mejorar el nivel de ingresos de los productores esto sumado sumado que el cultivo de la chirimoya chirimoya se encuentra en forma extensiva en los valles interandinos del Perú y gracias a las condiciones ambientales favorables esta esta planta sin ningún tipo de de trabajo agronómico tiende a producir muy por debajo debajo de sus posibilidades; posibilidades; el agricultor agricultor se ha comportado simplemente como recolector. Este problema no ha sido, ni es hasta hoy objeto de una exhaustiva investigación por parte de las instituciones y autoridades competente en el tema y de su verdadero impacto actividad agrícola.
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II. 2.1
OBJETIVO Y JUSTIFICACION
OBJETIVOS
2.1.1 OBJETIVO GENERAL. Determinar el incremento de rendimiento obtenido mediante la aplicación de la polinización manual en el cultivo de chirimoya ( annona cherimola. mill.), en condiciones de Limatambo-Anta-Cusco
2.1.2 OBJETIVOS ESPECIFICOS -
Determinar el momento óptimo de la polinización manual para el cuajado del fruto del chirimoyo.
-
Evaluar el número de frutos cuajados
-
Evaluar frutos en desarrollo
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2.2
JUSTIFICACION.
Los bajos niveles de producción y rendimiento producidos por elevado porcentaje de frutos de forma irregular y tamaño variado a la madurez por deficiente polinización debido principalmente a la dicogamia de tipo protoginea que hace deficiente la polinización por efecto de que primero maduran los pistilos y son receptivos cuando las anteras están aún inmaduras y no sueltan polen. Por ello se dificulta la autopolinización entre los órganos florales de la misma flor y poco eficiente la polinización natural y es responsable del bajo rendimiento. Dentro de este contexto es que el presente trabajo se realiza en razón de determinar el procedimiento de polinización manual más eficiente que pueda contrarrestar y elevar en número y uniformidad de los frutos de chirimoya y consiguientemente incrementar la productividad. Los datos y resultados obtenidos serán de suma utilidad para el manejo del cultivo a nivel de comercialización en mercados mucho más exigentes.
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III. 3.1
HIPÓTESIS
Hipótesis general (H.G.). Con la aplicación de la polinización manual se pretende incrementar el nivel de rendimiento de la chirimoya
3.2
Hipótesis específica (H.E.).
Es posible Determinar el momento óptimo de la polinización manual para el cuajado del fruto del chirimoyo.
Es posible evaluar el número de frutos cuajados
Es posible evaluar frutos en desarrollo
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IV. MARCO TEORICO 4.1
ORIGEN González et al. (2007), mencionan que el chirimoyo es una planta
originaria de las laderas subtropicales de los valles interandinos y afluentes del río Marañón entre Perú, Colombia y Bolivia hasta Ecuador.
4.2 PARIENTES SILVESTRES González et al. (2007), mencionan que e l chirimoyo (Annona cherimola Mill.) pertenece a la familia Annonaceae. Aunque existen algunas discrepancias en cuanto al número de géneros y especies que componen esta familia, la mayoría de los autores reconocen entre 120 y 130 géneros que a su vez comprenden unas 2000-2500 especies. Tan sólo se cultivan tres géneros de la familia por sus frutos comestibles, Annona, Rollinia y Asimina, siendo el género Annona
el que recoge un mayor número de especies de interés; Annona
cherimola, Annona muricata o
guanábana, A. squamosa, el anón o saramuyo ,
atemoya, un híbrido entre A. cherimola x A. squamosa y A. reticulata, conocida como corazón de buey. También se cultivan el biribá de Brasil ( Rollinia pulchinervis )
y la papaya americana ( Asimina triloba ) (Figura 01). De todas las
especies del género Annona , la más apreciada es el chirimoyo cuyo fruto se conoce como chirimoya.
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Figura 01. Frutos de distintas especies de Annonáceas (de izquierda a derecha y de arriba a abajo): guanábana ( A. muricata ), atemoya (A. cherimola x A. squamosa ), corazón de buey ( A. reticulata ), saramuyo (A. squamosa ), biribá (Rollinia pulchinervis ) y papaya americana ( Asimina triloba ).
Fig. 02. Zona originaria del chirimoyo: Fuente: Guirado et al (2003).
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4.3 DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA DEL CHIRIMOYO Farfán (2009) cita a Gardiazabal y Rosenberg (1993), quienes señalan que la chirimoya (Annona cherimola Mill) tiene su origen en los valles interandinos del Perú y Ecuador, comprendidos entre 1500 y 2000 msnm. Posteriormente, el hombre y los anímales han distribuido la semilla estableciendo centros secundarios en estado
relativamente silvestre, en
Centroamérica, sur de México y en la parte norte de Sudamérica.
Farfan (2009) cita Guzman (1951), quien en diversas expediciones botánicas realizadas a las vertientes interandinas de los ríos que desembocan en el Marañón indican que en esos lugares con toda probabilidad se originó esta especie. Las quebradas están densamente cubiertas, a lo largo de muchos kilómetros, por miles de plantas cuyo tamaño, conformación y tipo de fruta muestran una variedad extrema. Los primeros exploradores españoles introdujeron la chirimoya a España, de donde se difundió a otros países mediterráneos. En los últimos años ha sido llevada a Estados Unidos, Sudáfrica, Australia, y en la actualidad se le encuentra en muchas regiones de clima subtropical.
Guirado et al (2003), el género Annona es propio de climas tropicales, siendo el chirimoyo la única especie de este género que se desarrolla en zonas subtropicales. En las regiones tropicales, permanentemente húmedas, crece vegetativamente pero no produce flores ni frutos. En su hábitat natural, alterna comúnmente con estepas y bosques fluviofolios que se agostan en el periodo seco, que van de mayo a noviembre. A la chirimoya se le encuentra asociada a
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las especies Acacia macrancantha (hualango)
y
Caesalpina
tinctoría
(taya), dos leguminosas de porte achaparrado y copa extendida.
4.4 NOMBRES COMUNES Vilatuña (1998), cita a la National Research Counsil (1989), quien señala los siguiente nombres comunes para la chirimoya. Quechua: Chirimuya-chirimoya Aymara: Yuructira Inglés: Cherimoya Español: Chirimoya Francés: Cherimolia
4.5 POSICIÓN TAXONÓMICA Farfan (2009) cita a Ibar (1979), quien menciona al chirimoyo según la clasificación de A. Cronquist. Reino................ Plantae División ..............Magnoliophyta Clase..................... Magnolyopsyda. Sub clase .................. Magnoliidae Orden........................... Magnoliales Familia ........................... Annonaceae Genero ................................ Annona Especie ...............................….. Annona cherimola. Mill.
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4.6 DESCRIPCIÓN BOTÁNICA Ibar (1986), señala que el
chirimoyo es un árbol de raíces
poco
profundas; tiene una altura que rara vez alcanza los 8 metros. El árbol presenta un tallo que se caracteriza por ser cilíndrico, con corteza gruesa y lisa o ligeramente veteada, de color verde grisáceo. En árboles jóvenes, el tallo presenta entrenudos de hasta 20 cm y las ramas muy densas tienden a inclinarse, por lo que resulta un árbol frondoso de rápido crecimiento.
Rosell, Galán y Hernández, describen que las yemas son compuestas y pueden originar brotes mixtos (vegetativos y florales). Las flores, hermafroditas, son muy aromáticas, poco llamativas, solitarias o en grupo de dos o tres, sobre un corto e inclinado pedúnculo inserto en las axilas de las hojas. El cáliz consta de 3 sépalos de color verde oscuro, pequeños y de forma triangular. La corola está formada por seis pétalos dispuestos en dos verticilos; los tres pétalos exteriores bien desarrollados son carnosos, miden de 2,5 a 4 cm de longitud y la parte superior tiene forma aquillada o triangular; los tres pétalos internos son rudimentarios, en forma de escama, ovalados o triangulares. La parte masculina de la flor consta de numerosos estambres (150-200), dispuestos helicoidalmente muy juntos sobre un receptáculo, formando una masa compacta y blanca oprimida por los pétalos. La parte femenina posee también elevado de número de carpelos (de 100 a 200), con un solo óvulo, dispuesto en espiral, formando un cono compacto en cuyos extremos se encuentran los estilos y estigmas.
Guirado (2003), las hojas son simples, enteras y lisas, de forma oval a elíptica, según cultivar. Muy pubescentes por el envés y menos por el haz.
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http://www.agronline.cl/cultivos_frutales.html . Las hojas son caedizas, ubicadas en dos filas y alternas sobre las ramillas; simples, ovalado-lanceoladas, con bordes enteros; de color verde claro y raramente pubescentes en la cara superior, glaucas y cubiertas de tomento aterciopelado por el envés, pecioladas, y con la nervadura bien marcada.
El pecíolo de la hoja, es corto y hueco en la parte de inserción con el tallo, y oculta y protege a las yemas que darán origen a la próxima brotación
El fruto es un sincarpio procedente de una sola flor, de forma y tamaño muy variable, según el número de óvulos fecundados, ya que si el óvulo no es fertilizado el carpelo que lo envuelve no se desarrolla. Cuando una zona del cono estigmático no se poliniza se producen deformaciones en el fruto.
4.7 CICLO FENOLOGICO Y BIOLOGIA FLORAL 4.7.1 ASPECTOS GENERALES 4.7.1.1 FENOLOGIA 4.7.1.2 FASE Torres (2006), La aparición, transformación o desaparición rápida de los órganos vegetales se llama fase. La emergencia de plantas pequeñas, la brotación de la vid, la floración del manzano son verdaderas fases fenológicas.
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Ladrón de Guevarra (2005), la fase, se considera como un aspecto de tipo fisiológico, se refiere a la aparición y transformación progresiva de los diferentes órganos de una planta que de acuerdo a cada especie adopta diferentes nombres. La fecha de aparición de las fases deben atribuirse a dos condiciones esenciales. • Las características intrínsecas de la especie (o variedad considerada) • Las condiciones ambientales, principalmente el clima o el tiempo.
4.7.1.2.1 MOMENTOS FENOLÓGICOS DE LAS FASES.- Se denominan momentos, al espacio de tiempo que requieren los vegetales para alcanzar la evolución de sus distintas fases vegetativas. En cada fase se determina cinco momentos: •
PRIMEROS ÓRGANOS.- Presencia de primeros órganos visibles (flores, hojas,
frutos maduros, hojas amarillas, caída de hojas), que se presentan aisladamente antes del comienzo definido de la fase respectiva. • COMIENZO DE FASE.- Presencia del fenómeno en varios lugares de la planta o del
cultivo, que se suceden con otros sin interrupción y en aumento, determinando así su comienzo. •
PLENITUD DE LA FASE.- Momento en que se produce el fenómeno con la mayor
intensidad. •
FIN DE LA FASE.- Últimos órganos en actividad sin interrumpir la continuidad del
proceso respectivo. •
ÚLTIMOS ÓRGANOS.- Aparición de órganos aislados, cumpliendo su proceso
respectivo, después de concluir el proceso definido de la fase.
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4.7.1.3 ETAPA O SUB PERIODO Torres (2006), Una etapa fenológica está delimitada por dos fases sucesivas. Dentro de ciertas etapas se presentan períodos críticos, que son el intervalo breve durante el cual la planta presenta la máxima sensibilidad a determinado elemento, de manera que las oscilaciones en los valores de este fenómeno meteorológico se reflejan en el rendimiento del cultivo; estos periodos críticos se presentan generalmente poco antes o después de las fases, durante dos o tres semanas. El comienzo y fin de fases y etapas sirven como medio para juzgar la rapidez del desarrollo de las plantas.
4.7.2 BIOLOGIA FLORAL Gonzales et al (2007), Las flores de chirimoyo se desarrollan solitarias o en grupos de dos o tres, principalmente sobre madera de un año de edad de diferente vigor y longitud, y sobre los nudos basales del nuevo brote en crecimiento (Figura 03).
Figura 03. Esquema del ramo fructífero y del brote del chirimoyo. Fuente: Gonzales et al (2007),
La flor de chirimoyo es perfecta y hermafrodita. No obstante, para evitar la autopolinización exhibe una marcada dicogamia protogínica. La protoginia se 16
define como la maduración en una primera fase de los órganos femeninos de la flor y la maduración posterior de los órganos masculinos, lo que se pone de manifiesto con la pérdida de receptividad de los estigmas antes de que las anteras liberen polen (Figura 04).
Figura 04. Expresión de la dicogamia en la flor de chirimoyo. Flor en fase femenina a la izquierda y flor en fase masculina a la derecha (el tercer pétalo externo ha sido eliminado). Fuente: Gonzales et al (2007).
La flor de chirimoyo está compuesta por tres sépalos y seis pétalos distribuidos en dos verticilos. Los tres pétalos interiores son muy pequeños y apenas visibles. Los tres pétalos externos son, por el contrario, grandes, carnosos, de color verde claro y forma piramidal alargada. En el interior de los pétalos el chirimoyo presenta numerosos estambres en la base de un receptáculo de forma cónica (Figura 05). En la parte superior del receptáculo floral se encuentran un gran número de carpelos libres dispuestos espiralmente a modo de tejas. Cada carpelo está compuesto por un estigma que se solapa parcialmente con el resto de los
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estigmas, un estilo corto y un ovario unilocular con un óvulo. El periodo de floración del chirimoyo varía dependiendo del lugar donde se desarrolla. En el Hemisferio Norte, la floración del chirimoyo se extiende desde finales de mayo hasta mediados de agosto; en Nueva Zelanda y Australia la floración tiene lugar de noviembre a enero.
Figura 05. Disposición péndula de la flor del chirimoyo (izquierda). Estructura de la flor de chirimoyo (el tercer pétalo externo ha sido eliminado) y detalle de un carpelo individual (derecha). Fuente: Gonzales et al (2007).
El ciclo de la flor de chirimoyo tiene una duración aproximada de dos días. A primera hora del primer día las flores se encuentran en estado de preantesis (Figura 06A). Los pétalos externos se encuentran ligeramente despegados por su ápice y los estigmas, aunque no están expuestos al exterior, comienzan a estar receptivos, lo que se pone de manifiesto con la presencia de exudado. A partir del mediodía los pétalosse van abriendo en mayor medida y aumenta la producción de exudado en los estigmas, este momento se considera el comienzo de la antesis femenina, alrededor de las 15:00 h (Figura 06B). Por su 18
parte, los estambres, de color blanco, se encuentran totalmente agrupados entre sí y no hay liberación del polen. A partir de las 15:00-18:00 horas del segundo día del ciclo se produce el despliegue completo de los pétalos, indicativo del paso a fase masculina de la flor (Figura 06C). En este estado los estigmas se secan y los estambres se separan entre sí, volviéndose de color más amarillento, en este momento la dehiscencia del polen es patente. La duración de la fase femenina se estima, por tanto, en unas 28-32 horas en base a la funcionalidad de los órganos femeninos. La fase masculina, por el contrario, se limita a unas 4 horas.
Figura 06. Flor en estado de preantesis (A), flor en fase femenina (B) y flor en fase masculina (C). Fuente: Gonzales et al (2007
Guirado et al (2003), también describen el siguiente ciclo fenológico: 1. Flor cerrada. La flor puede permanecer en este estado 10 a 15 días, mientras está creciendo. 2. Flor en estado prehembra. Las puntas de los pétalos comienzan a separarse, pero no existe aún apertura de la masa estigmática al exterior, aunque la flor ya es receptiva. Puede pues ser polinizada si se separan los
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pétalos para que el polen alcance los estigmas. Permanece en este estado entre 5-20 horas normalmente. 3. Flor en estado hembra. Los pétalos están más separados que en el estado anterior, permitiendo el paso de pequeños insectos polinizadores. En la mayoría de los casos esta apertura se produce alrededor de las 13.00 h., siendo su duración de aproximadamente 26-28 horas. En estado hembra los estigmas son receptivos durante todo el periodo, excepto en sus tres últimas horas. Al día siguiente de la apertura en estado hembra se produce el paso a estado macho. 4. Flor en estado macho. La flor tiene los pétalos totalmente abiertos y los estambres sueltan el polen. El paso de estado hembra a estado macho se realiza prácticamente siempre por la tarde, de las 16:00 a 18:00 h. En este estado se pueden distinguir 3 fases: 4.a. Flor abierta recientemente con los estigmas blancos y brillantes en general, y los estambres un poco separados y empezando a liberar polen. 4.b. En el mismo estado, pero con el polen más libre y los estigmas más obscuros (menos brillantes). 4.c. Los estigmas toman coloración marrón. Tomando un día medio (humedad relativa del 60-70% a las 13:00 h. y temperatura máxima de 28ºC) se iniciaría la apertura a las 16:00 horas y las fases 4.a y 4.b. durarían de 30 a 45 minutos cada una, comenzando la fase 4.c entre las 17:30- 18:00 h. (Farré y otros, 1976). 5. Flor seca. Tanto si la flor ha sido polinizada como si no, los pétalos van perdiendo humedad y secándose. Si la flor no ha cuajado termina cayéndose, pero si cuaja pasa al siguiente estado.
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6. Fruto cuajado. El ovario va aumentando su tamaño hasta formar un fruto. La flor del chirimoyo una vez alcanzado el estado hembra en su segundo día, pasará a estado macho, tanto si continúa en el árbol como si es separada del mismo.
Fig. 07. Estados florales del chirimoya. Fuente: Guirado et al (2003)
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Fig. 08. Desarrollo de la flor y fructificación del chirimoyo. Fuente: Tineo (2009) Gonzales et al (2007), señalan que muy frecuentemente todas las flores de un mismo árbol, e incluso dentro de una misma parcela, sincronizan su ciclo sexual encontrándose todas las flores en estado femenino o masculino al mismo tiempo, lo que previene el transporte de polen entre flores de una misma planta. Sin embargo, esta sincronía se pierde en las últimas etapas de la floración, pudiéndose encontrar flores en ambos estados simultáneamente. Por otro lado, condiciones de humedad relativa alta, sobre todo, o temperaturas moderadas evitan la desecación de los estigmas y pueden extender el periodo de receptividad, propiciando cierto grado de autopolinización que da lugar a frutos de escaso interés. El fruto del chirimoyo es un sincarpo carnoso de forma acorazonada, formado por la fusión de varios carpelos con el receptáculo floral. Para que un
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carpelo se desarrolle es necesario que el óvulo que contiene sea fecundado, de ahí que sea necesaria la fecundación de un número suficiente de óvulos, es decir de semillas, para producir frutos bien conformados y simétricos (Figura 09). La experiencia indica que cuando las flores no reciben la cantidad adecuada de polen (polinizaciones defectuosas), el cuajado se reduce y los frutos presentan menor calibre, lo que dificulta su comercialización. Esto es así, por la alta correlación entre el peso del fruto y el número de semillas.
Figura 09. Fruto de cuajado natural (izquierda). Chirimoya típica de polinización manual de buena conformación y tamaño (derecha).
4.8 LA POLINIZACIÓN EN EL CULTIVO DEL CHIRIMOYO 4.8.1 POLINIZACION ARTIFICIAL Vilatuña (1998), señala que los primeros ensayos de polinización manual en annonas y principalmente en chirimoya se reportan desde 1910, pero a pesar de que la técnica de traspasar polen de flores no receptivas a flores receptivas se conoció a inicios de siglo, no fue hasta los años 70 s y 80’s en que realmente
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se le empezó a dar un uso comercial. Numerosos ensayos de polinización manual han sido realizados en los principales países productores, donde se ha visto el aumento de cuaje de frutos.
Vilatuña (1998) y Guirado (2003), señalan que Wester en 1910 en Florida hizo la primera polinización manual en chirimoya, obtuvo polen de flores ya abiertas y lo depositó manualmente a flores que apenas iniciaban la separación de sus pétalos los cuales poseían estigmas brillantes, está técnica demostró que además de obtener una mayor producción. los frutos resultaron de forma más simétrica.
Vilatuña (1998), señala a Rosenberg que en 1944, que hizo ensayos en el jardín botánico de La Serena la polinización artificial y encontró que era más ventajoso el empleo de distintas variedades para lograr mayor cuajado, Saavedra (1977) reporta que las flores de inicio de temporada los granos de polen forman una tetrada, que no se separan y sus poros germinativos están orientados hacia el centro lo que hace que la germi nación sea baja. Experimentó además embotellando polen entre 6 y 7 de la noche y usándolo al día siguiente, las flores fueron manualmente polinizadas e inmediatamente rociadas con agua, obteniendo 43.7% de cuajado. La fruta permaneció en el árbol hasta madurar y tuvo, de manera general, más tamaño y buena forma.
Vilatuña (1998), cita a Gazit et al. (1987), que en Israel probaron el efecto de la temperatura y de la humedad relativa sobre la viabilidad del polen, y concluyeron que el polen conservado a -4°C no tenía un buen cuajado,
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conservándolo a 15°C se obtenía más de 70% de cuajado y con temperaturas de 21 - 26 °C y una humedad relativa del 100% en obtuvieron buenos resultados de cuajado, hasta 36 horas después de recolectado el polen.
Vilatuña (1998),
cita a Richardson y Auderson (1988), quienes
encontraron que la chirimoya al natural dio 0.5 y 5% de cuajado lo cual fue significativamente menor a usar polinización manual que produjo entre 37 - 95 % de cuajado. La polinización con polen del mismo cultivar fue significativamente más efectiva que la aplicación de mezclas.
Vilatuña (1998), cita a Escobar (1996), quien en la Escuela Agrícola Panamericana, evaluó la polinización manual en chirimoya donde usó aplicaciones de polen de la misma variedad Cuuibe en la mañana (6:00 - 8:00 am) y en la tarde (4:00 - 6:00 p.m.}. además usó polen de la variedad Bronceada aplicado en la tarde y polen de atemoya. los resultados mostraron que la aplicación del polen de la variedad Bronceada dio mejor cuajado de frutos en comparación con el uso del propio polen de la variedad Cunibe. Se obtuvo cuajado de 30.3y23.1% polinizando la variedad Cumbe con su propio polen y un 46.7% con polen de la variedad Bronceada: con polen de atemoya sólo se obtuvo 4.7%. todos estos resultados superaron por im amplio margen el 0.98% de cuajado obtenido en forma natural (testigo).
Vilatuña (1998), cita a Rodríguez (1997), quien comparó la polinización manual en atemoya por la mañana (6:30 - 8:30 a.m.) usando polen obtenido el mismo día y polen recolectado el día anterior así como por la tarde (4:00 - 6:00
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p.m.) con polen del mismo día y mi testigo con polinización natural; encontró que el porcentaje de ñutos logrados con polinización matutina fiíe de 20.50% con polen fresco y 13.79% para polen de flores obtenidas el día anterior en comparación con el testigo que se obtuvo 4.91%.
Guirado (2003), indica que Schroeder en 1947, propuso un sistema práctico de polinización a pincel. En la década de los setenta Tony Brown, un agricultor californiano, adoptó una perilla que se utilizaba en Japón para la polinización de otras especies. Hoy en día es la técnica más utilizada a nivel mundial (Figura 20).
Fig. 09. Perilla pulverizadora. Fuente: Guirado et al (2003)
Tineo (2009), menciona el siguiente procedimiento para la polinización manual:
La polinización consiste en recolectar el polen de color blanquísimo en horas de la mañana (9.00 a 11.00 a m) cuando la flor está en estado pre hembra. 26
Inmediatamente el polen recogido entrara en maduración cambiando de color a crema oscuro entonces , es el momento cuando se procede a la polinización manual.
La polinización se debe hacer en flores en estado pre hembra o hembra (desde las 11.00 am. a la 1.00 pm.) con ayuda de un insuflador o perilla teniendo cuidado de que el pico de esta no dañe el cono estigmatico.
4.8.1.1 VENTAJAS Y DESVENTAJAS DE LA POLINIZACION MANUAL
Guirado (1986): cita a Guirado (1991), en el que señala que esta técnica tiene las siguientes ventajas
Garantiza una cosecha mínima de alrededor de 12 Tm/ha.
Se consiguen frutos de mejor conformación y tamaño.
En las zonas de maduración precoz se pueden polinizar las primeras flores, obteniendo mejores precios en el mercado.
Reduce el coste de la recolección. Hay más frutos al alcance de la mano y una mayor concentración de la recogida en el tiempo.
Y los siguientes inconvenientes:
Es muy exigente en mano de obra. Aunque el rendimiento es variable, puede estimarse que un operario “cuaja” 50 Kg de fruta por hora de
trabajo, en buenas condiciones, incluyendo la recogida de polen. Gran parte de este coste extra se recupera por el menor tiempo empleado en la recogida.
Los frutos polinizados manualmente tienen un índice de semillas algo mayor, debido probablemente al desarrollo de la mayoría de los óvulos.
27
4.8.2 POLINIZACION NATURAL Gonzales et al (2007), señalan que en su lugar de origen los vectores de polinización son pequeños escarabajos pertenecientes a la familia Nitidulidae (Figura 10), conocidos como cucarroncitos de la savia. Este tipo de polinización se denomina cantaridofilia y es común en algunas familias de Angiospermas primitivas. Las flores de las Annonáceas no producen néctar. Sin embargo, la disposición de sus pétalos forma una cámara que brinda cobijo en su interior a los escarabajos para su apareamiento, además de ofrecerles protección frente a las inclemencias climáticas y a los depredadores. El olor a fruta fermentada que desprenden las flores atrae a estos insectos, especialmente cuando están hambrientos. Así los pétalos, la parte carnosa de los estambres, el polen y el exudado estigmático les sirven de alimento. Por lo común, los escarabajos se introducen durante las horas matinales en las flores en estado femenino y se mantienen inactivos en la base de los pétalos, caminando sobre los estambres y estigmas. Cuando la flor alcanza la fase masculina, la caída de los pétalos arrastra a los escarabajos fuera de la flor, y éstos se dispersan cubiertos de polen, viable durante unas 24 horas, hacia nuevas flores en estado femenino.
Fig. 10. Escarabajos de la familia Nitidulidae polinizadores del chirimoyo. Fuente: Gonzales et al (2007).
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Guirado et al (2003), señalan que no se conocen con exactitud los insectos polinizadores del chirimoyo en los Andes centrales, es probable que no se hayan introducido en las nuevas áreas productoras de España. El polen del chirimoyo es pegajoso y pesado. La flor es generalmente péndula y dado que la apertura de los pétalos en la fase hembra es además muy pequeña, puede concluirse que la polinización anemófila es sumamente improbable. Además menciona que se han observado en diferentes lugares del Sur de España unos pequeños hemípteros, de 3 mm de longitud aproximadamente, del genero Orius (Anthocoridae) que abundan en las plantas de maíz y flores de chirimoyo (Figura 11). En las zonas con buen cuajado natural es frecuente encontrar a las 3 de la tarde entre 20 y 40 Orius adultos cuando se observan 100 flores de chirimoyo. Este insecto puede desplazarse a última hora de la tarde desde una flor en estado macho a otra cercana, que se encuentre en estado hembra. Puede depositar en este caso entre 10 y 80 tetradas de polen en la superficie estigmática de una flor. Estas cifras son compatibles con el hecho de que un fruto medio de 250 gramos tenga aproximadamente 25 semillas. Consideramos pues al Orius como el principal agente polinizador bajo nuestras condiciones.
Fig. 11. Insecto polinizador con granos de polen. Fuente: Guiraro et al (2003), 29
4.9 REQUERIMIENTOS DEL CULTIVO DEL CHIRIMOYO Ibar (1986), menciona que el chirimoyo requiere de terrenos francos, areno arcillosos, profundos, frescos, blandos, ligeros, poco húmedos, algo ácidos con un pH entre 6.5 y 7. ricos en materia orgánica, pero no soporta los alcalinos o con mucha cal. Necesita además suelos con buen drenaje que evite los encharcamientos. la planta resiste temperaturas de hasta -5°C. una altitud de 1500 metros sobre el nivel del mar. En temimos generales ía zona de cultivo puede extenderse hasta los 30° de latitud, tomando en cuenta las condiciones climatológicas locales. Necesita de una estación seca y cálida de unos cinco meses, en la que se debe administrar riegos adecuados y el resto del año un ambiente fresco y poco húmedo, con una temperatura media diurna de alrededor de los 15°C. Los períodos largos con temperaturas de - 5 °C pueden ser perjudiciales, sin embargo resiste heladas más que el naranjo, lo que explica que al chirimoyo se le considere un árbol semicaducifolio.
4.10 CULTIVO DEL CHIRIMOYO 4.10.1 PROPAGACIÓN Rosell , Galán y Hernández , mencionan que en general se utilizan semillas para la obtención de patrones que posteriormente son injertados con el cultivar deseado.
Ibar (1986), el chirimoyo se multiplica por semilla, de la que se obtienen una serie de patrones de características no muy iguale, a los que es preciso injertar con el objeto de obtener una plantación productora de una variedad
30
comercial homogénea. También es posible multiplicar por medio de acodos, en este caso se debe emplearse fitohormonas de crecimiento.
4.10.2 SIEMBRA
Prepacion de semillero Rosell , Galán y Hernández, mencionan que el semillero debe estar
situado en un lugar sombreado o en invernadero, tratando de evitar la excesiva evaporación del suelo, que debe permanecer con humedad constante hasta la germinación de las semillas.
Preparacion de semillas Ibar (1986), las semilas deben proceder de un fruto madurado en el árbol y
guardar hasta el momento de la siembra, estratificadas en arena. Con el fin de acelerar la germiancion, sumergir previamente las semillas en agua durante 48 horas. Rosell , Galán y Hernández, las semillas comienzan a germinar al cabo de 6 u 8 semanas. Una vez que las plántulas alcancen unos 10 cm de altura se pasarán a bolsas depolietileno de 40 cm de altura x 30 cm de diámetro. El sustrato de las bolsas estará compuesto por un 50% de tierra, un 25% de picón y un 25% de turba. También en este momento deberá aplicar-se un tratamiento antifúngico con Benomilo o similar, a la misma concentración que la mencionada anteriormente. Mientras permanezcan en bolsa en el vivero las plantas deberán abonarse convenientemente.
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Transplante a vivero Ibar (1986), recomienda que transcurridos de 10-12 meses de la siembra,
cuando las plantitas tengan una altura de 15 a 20 cm (unas seis hojas), proceder a situarlas en caballones separados entre sí 40 cm y entre las plantitas 30 cm. El trasplante se aprovechará para seleccionar las plantas, dejando sólo las bien desarrolladas y desechando las mal formadas, de hojas cloróticas y de raíces poco desarrolladas. En el momento de hacer el trasplante, desinfectar las raíces, bañándolas con una solución fungicida (Maneb o Zineb) al 0,5%. Continuar los riegos
Injerto Rosell , Galán y Hernández , señalan que cuando las plantas adquieren,
como mínimo, de 1.5 a 2 cm de grosor (medido aproximadamente a 25 cm del suelo) se injertan de yema o de púa lateral o terminal, a unos 50 cm del suelo. Los injertos generalmente suelen hacerse en primavera, cuando el árbol está saliendo de la latencia, con material de los brotes del año anterior, aunque también pueden hacer-se con otras técnicas a finales de verano. Cualquiera que sea el tipo de injerto que se realice el porcentaje de prendimiento es alto.
Plantación Rosell , Galán y Hernández, que una vez que los árboles alcanzan una
altura de 1 m sobre el punto del injerto se plantan en el terreno definitivo, recomendándose que se realice mientras el árbol esté sin hojas (finales del invierno - principios de la primavera) y antes de que haya comenzado la brotación.
32
Cuando la planta esté asentada en el terreno y haya brotado al menos un 50% de las hojas, se realizará un despunte a unos 70-80 cm del suelo.
Ibar (1986), señala que el el marco de plantación más adecuado es a una distancia de 6-8 rn, que representa 290-160 árboles por hectárea.
www.infoagro.com A:\Agroinformación - El cultivo del chirimoyo.htm, se recomiendan marcos de 7 x 7 y 9 x 9, aunque también se puede con marcos más densos de 7 x 4 para llevarlos a 7 x 8 mediante aclareo.
Guirado et al (2003), El marco de plantación que se utiliza es variable, siendo el más usual el marco real 8 x 8 m.También se utilizan 8 x 4 m ó 7 x 4 m., pensando en un posterior aclareo. Con las nuevas técnicas de poda, tendentes a mantener un porte del árbol más reducido, puede aumentar la densidad de plantación a 625 árboles/ ha (4 x 4 m.).
Ricardo Cautín Morales (2008), obtuvo buena productividad en sistemas con densidad alta (Slender Spindle).obteniendo l a mayor productividad en tratamientos de cultivo en S-Sp alta densidad 4x1 y en condición de túnel-luz, esto no sólo se debe a la mejor condición microambiental por efecto de la cobertura, sino a la densidad de plantación y a la facilidad del manejo productivo que representa.
33
4.10.3 ABONADO Ibar (1986), indica que el chirimoyo requiere un abonado intensivo, en nitrógeno. En los primeros años de plantación, las cantidades fósforo (P 205) y potasio (K2O) que deberán aplicarse por árbol será:
1" año: N, 240 g; P 2O5, 120 g; K2O, 120 g. 2° año: N, 360 g; P2O5, 180 g; K2O, 180 g. 3° año: N, 480 g; P2O5, 240 g; K2O, 240 g. 4° año: N 600 g; P205, 3 00 g; K2O, 300 g
La carencia de potasio se identifica por la decoloración de los bordes de las hojas, que posteriormente se necrosan.
4.10.4 RIEGO Ibar (1986), señala que los riegos deben efectuarse cda 10 1 15 dias, lo cual representa quince o veinte riegos durante la estación seca, estos riegos no deben ser exagerados y hay que evitar los encharcamientos que impiden la aireación del suelo, produciendo asfixia y muerte de numerosas raicillas y facilitando el desarrollo de hongos perjudiciales.
4.10.5 PODA http://exportchirimoya.blogspot.com/2011/05/chirimoya.html , es una planta muy competitiva por la luz para la producción, por lo que es conveniente la poda de formación, dejando una copa equilibrada de formas bastante libres abriendo el centro a la luz e intentando, además, facilitar la polinización artificial y
34
la recolección. Tras la recolección se da una poda de mantenimiento la cual consiste en eliminar ramas torcidas, ramas verticales y chupones, dejándole una máxima expansión.
Poda de formación
Se lleva a cabo en los tres primeros años, con el fin de obtener la adecuada estructura del árbol que le permita soportar, posteriormente, una buena carga. En general se realiza la poda en vaso con 3 a 5 ramas principales, formadas a 1 m de altura, aproximadamente. Con esta poda de vaso bajo se disminuyen los problemas con el viento, se facilita la recolección y se aumentan los rendimientos de la polinización manual, donde ésta sea necesaria. La estructura del árbol deberá estar formada al tercer año, altura en la que el árbol comienza a producir los primeros frutos.
Poda de mantenimiento (a finales de invierno
Consiste en general, en eliminar primero todo el material seco y aquel que esté creciendo hacia el interior y que no tenga grandes posibilidades de recibir abundante luz. Como las flores aparecen preferentemente en las ramas del año anterior, se deberá tener cuidado de no eliminar este material que es el más productivo. Se sabe que los frutos de mayor peso y calidad son los producidos en las ramas con dos o más años (aunque en menor número) las cuales fructificarán si eliminamos parte de las ramas del año anterior.
Poda de fructificación
Cada año, a la salida del invierno y antes del inicio de la nueva brotación, se procede a un aclareo de ramas fructíferas y despunte de ramas principales. Durante el periodo vegetativo se procede al pinzamiento o eliminación de los
35
chupones. En la actualidad, las plantaciones antiguas tienen una densidad de 150 árboles por hectárea con alturas de 4 a 4,5 m .
4.10.6 COSECHA Y POSCOSECHA El momento de la recolección se manifiesta por cierto cambio en la coloración del fruto, adquiriendo un tono más claro, pero aún firme con el fin de disminuir los problemas de transporte y conservación.
Si la fruta está muy alta la recolección se efectúa con una pértiga que lleva en un extremo una especie de cesto, abierto en dos mitades y con una cuchilla en su borde. Una de las dos mitades es móvil y se acciona con una cuerda, produciendo el efecto de un bocado. La conservación a 8-10ºC permite mantener el fruto en la cadena comercial durante dos semanas. Así ha sido posible aumentar rápidamente las exportaciones en los últimos años.
4.11 PLAGAS Y ENFERMEDADES El
IINIA
atreves
de
su
portal
http://www.inia.gob.pe/boletin/BCIT/boletin0003/index.htm, indica que son pocas las plagas que afectan al chirimoyo, destacando:
La mosca de la fruta (Dípteras de la familia Tephritidae)
Dentro de esta plaga se tiene 4 especies conocidas: -
Mosca Mediterránea de la fruta: Ceratitis capitata Wiedmann.
-
Mosca sudamericana de la fruta: Anastrepha fraterculus Wiedmann
-
Mosca de la fruta: Anastrepha chiclayae Greene
36
-
Mosca de la fruta: Anastrepha distincta.Greene
Daños: Las larvas hacen galerías, regulares en los frutos produciendo fuerte pudrición y la caída de estos. Los frutos atacados, cambian de sabor y color, perdiendo su calidad, ocasionando problemas en la comercialización.
Medidas de Control - Control Biológico: Hay dos avispitas bracónidas, parásitas de larvas: Opius trinidadeniis
Gahan (avispita roja) y Pseudocolia carvalhois Dettmer (avispita
negra) - Control Etológico: Últimamente han salido al mercado feromonas que son atrayentes sexuales a base de trimedlure para la mosca de la fruta tales como: Ceratilure, FT TML Tapones, Magnet TML Plug, Tentalure cc etc. Trimedlure (Ceratilure, tentalurecc), 1 cebo/há en áreas pequeñas y 1 cebo /3 hás en áreas grandes. - Control Químico: Aplicación generalmente de cebos envenenados de una mezcla de proteína hidrolizada más un insecticida triclorfon, malathion o metidathion. Estas aspersiones se restringen a 1/3 o 1/5 del área. Esto quiere decir aplicar un árbol y dejar tres o también podría ser aplicar un árbol y dejar cinco árboles. Cada 7 días Otros cebos tóxicos (1 trampa por tratamiento) Metidathion
+ proteína hidrolizada
Supracid o suprathion
+ prot. Hidrolizada
0.4%
+ 0.4% P.C.
Tracer
+ Buminal
37
0.0125% del P.C.
+ 0.4 % del P.C.
Hacer las evaluaciones semanales durante tres meses Confidor
+ Buminal
0.01% del P.C.
+ 0.4% del P.C.
Agregar Bórax al 1%
Dipterex
+ Buminal
0.4% del P.C.
+ 0.4% del P.C.
Minador de la hoja de los cítricos (Phyllocnistis citrella. Staiton)
Otra plaga que está avanzando progresivamente en la zona, es el "minador de la hoja de los cítricos" Phyllocnistis citrella Staiton,(Lepidóptera) con un 70% de diseminación y 8% de índice de daño, ocasionado por las larvas al atacar las hojas de los brotes nuevos tanto en el has como en el envés, formando minas y galerías que pueden afectar toda la hoja produciendo insuficiencia fotosintética, en plantas en producción dañan los brotes y no habrá formación floral, en plantas tiernas detiene su crecimiento.(ARBAIZA, 2002).
Medidas de Control: Control cultural: -
Realizar un buen manejo del riego, para evitar brotamientos excesivos y sucesivos.
-
Realizar buenas prácticas de abonamiento, balanceado y según análisis de suelo.
-
Realizar podas adecuadas, eliminar "chupones"
38
Control Químico: -
Iniciar las aplicaciones cuando el brote está pequeño y se presenta las primeras minas.
-
Repetir las aplicaciones cada 10 a 15 día
-
Los tratamientos deben hacerse por focos o manchas, para evitar la aplicación total del campo y preservar los insectos benéficos
-
Evaluar semanalmente el campo para decidir el momento oportuno de la aplicación.
Productos a usarse: Abamectina : Abamex, Spider, vermetin 1.8 EC al 0.05 - 0.06% del P.C., Vertimec Acetamiprid : Rescate 20 SP al 0.05-0.1% Fipronil
: Regent SC al 0.05 - 0.1% del P.C.
Flufenoxuron: Cascade 10 EC al 0.05 - 0.075% del P.C. Imidacloprid : Confidor, cigaral, Lancer, Zuxion al 0.025 - 0.1% del P.C., Admire Milbemectin : Milbeknock 1% EC al 0.05% - 0.1% del P.C. Spinosad
: Tracer 120 SC al 0.025 - 0.05% del P.C.
Thiacloprid : Calypso 480 SC al 0.03 - 0.05% del P.C.
Aplicar en 600 - 1000 litros de agua como mínimo
Arañita roja
(Panonychus citri Mc Gregor). (Acarina de la
familia tetranychidae). Daños: Ataca las hojas bajas y conforme va subiendo llega al tercio medio y luego al tercio superior. Se encuentra chupando y picando la cara inferior de las hojas extrayendo el contenido celular tomando un color bronceado plateado,
39
determinando una clorosis y caída del follaje y de los frutos al debilitar los pecíolos y pedúnculos Medidas de control: - Control químico - Abamectina Vermetin, Vertinec al 0.075 - 0.125% del P.C. - Amitraz Mitac 20 EC, al 0.15 - 0.3% del P.C. - Azocyclotin Peropal 500SC al 0.05 - 0.075% del P.C. - Azufre Elosal , Kumulus al 0.25 - 0.5% del P.C.
Podredumbre del cuello (Phytophthora cinnamoni)
Este hongo penetra principalmente a través de heridas en la raíz, dando lugar al necrosamiento de las mismas. El árbol adquiere un aspecto clorótico generalizado Control: Se recomienda el no laboreo (para no dañar las raíces) y el evitar la entrada de material de suelo y agua infectados.El control químico se lleva a cabo con Oxido fosforoso.
Podredumbre radicular (Armillaria mellea )
Los árboles viejos plantados en suelos mal drenados sufren fuertes ataques de Armillaria, dando lugar a clorosis foliar y defoliaciones, produciendo una disminución del vigor. Ocasiona la muerte de las raíces, apareciendo un micelio blanco sobre las mismas y setas sobre la base del tronco.
40
Control -
:El tratamiento de las enfermedades del sistema radicular es difícil; pudiéndose emplear productos como Captan y Maneb en dosis de 100 g/m²
-
Otro método de control es descubrir las raíces afectadas, rascar las partes enfermas y enterrarlas, aplicando a su vez un fungicida.
Es eficaz la lucha biológica empleando Trichoderma viride debido a sus propiedades antagonistas respecto a A. Mellea, ya que reducen el inicio y crecimiento de los rizomorfos subterráneos pero éste método de lucha está ligado al pH del suelo y a la persistencia de sustratos orgánicos que permitan un desarrollo de otros organismos competidores ya instalados.
4.12 PRODUCCION DE CHIRIMOYA http://www.agronegociosperu.org/tema/tem02.htm, la información que se presenta a continuación sobre el área cultivada de chirimoya en algunos países, tiene como fuente el “Informe a Prochile. La chirimoya chilena, abril 1996”. Citado
en
documento
técnico
de
Norma
Sepúlveda.
Taiwán posee la mayor área cultivada con 4 600 ha, siguiéndole España con 3 400 ha. En España se cultiva en Granada y Málaga obteniéndose un volumen de producción de 35 mil TM. Exporta alrededor de¡ 3% de la producción.
41
PRINCIPALES PAISES PRODUCTORES DE CHIRIMOYA 1994 País Superficie(ha) Taiwán 4 565* España 3400 Perú 1 800 Chile 1 336 Bolivia 1 100 Ecuador 700 Australia 500** EE.UU. 135** Israel 50** Cuadro 01. Principales países productores de chirimoya en 1994 . Fuente: http://www.agronegociosperu.org El
ministerio
de
agricultura
por
medio
de
su
(http://www.minag.gob.pe/notas-de-prensa-2011/index.html ), el
portal 14 de
setiembre de 2011 dio a conocer que durante el presente año, la producción de la Chirimoya Cumbe se incrementó a 14 toneladas por hectárea, 55% más de lo producido en el año 2007, en el cual la producción fue de 9 toneladas, esto se debe que el INIA desarrolla actividades de transferencia de tecnología, asistencia técnica y capacitación en ganadería y fruticultura, lo cual ha permitido mejorar la productividad y calidad de la chirimoya de la Asociación de Productores de Chirimoya Cumbe del Distrito de San Mateo de Otao, provincia de Huarochirí., La Chirimoya Cumbe se caracteriza por tener pulpa blanca, pocas pepas, piel liza y sabor muy agradable, además de tener un gran valor nutritivo contra la anemia, el exceso de colesterol, problemas cardiovasculares, estrés y estreñimiento.
42
Fig 12. Chirimoya cumbe. Fuente: http://www.minag.gob.pe/notas-de-prensa2011/index.html.
Guirado et al (2003), indican que España es el primer productor a nivel mundial, con una superficie plantada de unas 3.000 ha y 30.000 Tm., aproximadamente, de producción anual (Calatrava, 1994). Chile tiene actualmente una superficie plantada de 700 Has. Perú tiene una superficie plantada de 1.800 ha, le siguen Bolivia 1.000 ha, Ecuador 400 ha. En Estados Unidos actualmente hay plantadas 150 ha, concentradas en California, con una producción anual aproximada de 880 Tm. (Schroeder, 1994), y en Las Islas Madeira (Portugal) existen 50 ha de este cultivo, con una producción anual de 800 Tm. (Paulo, 1992).
4.12 VALOR NUTRITIVO Guirado et al (2003), el fruto del chirimoyo es rico en grasas, proteínas, sales minerales y vitamina A. Tiene un contenido calórico significativo, dado que la mayoría de los frutos tienen un Brix superior a 20° 43
Composición de 100 gr. de pulpa de chirimoya Agua Proteína Grasas Carbohidratos Fibras Cenizas Calcio Fósforo Hierro Vitamina A Vitamina B1
75,5 gr. 1,0 gr. 0,1 gr. 22,0 gr. 1,8 gr. 1,0 gr. 24,0 mg. 47,0 mg. 0,4 mg. 0,1 mg. 0,3 mg.
Vitamina B 2 0,16 mg. Vitamina C 0,5 mg. Tiamina 0,06 mg. Riboflavina 0,14 mg. Niacina 0,75 mg. Ac. Ascórbico 4,30 mg. Calorías 81,0 mg. Cuadro 02. Composición de 100 gr. de pulpa de chirimoya. Fuente: Guirado et al (2003)
44
V. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN 5.1 GENERALIDADES 5.1.1
LUGAR DEL EXPERIMENTO
El Presente trabajo de investigación se realizara en la “Estación Experimental INIA “, sector la playa ubicada en el Distrito de Limatambo perteneciente a la
provincia de Anta, a una altitud de 2500 msnm considerado como zona de valle interandino en el cual se cultiva diferentes frutales como chirimoya, lúcuma, paltos y entre otros.
5.1.1.1 UBICACIÓN POLÍTICA Departamento
: Cusco
Provincia
: Anta
Distrito
: Limatambo
Localidad
: Estación Experimental INIA- Sector la Playa
5.1.1.2 UBICACIÓN GEOGRÁFICA Y ALTITUD Latitud sur
: 13º 29’ 30’’
Longitud oeste
. 72º 27’ 00’’
Altitud
:2554 m.s.n.m
Pendiente
: 3%
5.1.1.3 UBICACIÓN HIDROGRÁFICA Cuenca Sub. Cuenca
: Apurímac: : Rio Blanco.
45
5.1.2
ECOLOGÍA La localidad de Limatambo de acuerdo a la clasificación de zonas según L.
R. Holdridge, se encuentra en la zona conocida como bosque seco Premontano Tropical (bs- PT), que va desde los 2,000 m. hasta los 3,300 m. de altitud con temperatura promedio de 10.5 ºC como minino y de 28ºC como máximo. Con una precipitación de 600 mm. De acuerdo a las regiones naturales se encuentra dentro de la región Quechua caracterizado por encontrarse ubicados en los declives oriental y occidental del sistema andino y se eleva entre los 2,300 y los 3,500 m. constituyendo fajas longitudinales que se extienden a lo largo de todo el país.
5.2 MATERIALES, HERRAMIENTAS Y EQUIPOS 5.2.1 MATERIAL GENÉTICO El material genético a utilizar para el trabajo de investigación serán 20 plantas de chirimoyo ya instaladas de 4 años de edad aproximadamente que se encuentran ubicadas en la “Estación Experimental INIA “, sector la
Playa en el distrito de Limatambo.
5.2.2 MATERIALES DE CAMPO Y LABORATORIO -
Estacas
-
Rafia
-
Libreta de campo
-
Papel bond
-
Lápices
-
Etiquetas
46
-
Esmalte
-
Brochas
-
Embaces de polietileno
-
Pincel
-
Insuflador
5.2.3 EQUIPOS -
Cámara fotográfica
-
Impresora
-
Computadora
5.2.4 HERRAMIENTAS -
Cinta métrica.
-
Vernier
-
Picos, palas.
-
Segaderas
-
Tijeras podadoras
5.3 METODOLOGÍA 5.4 DISEÑO EXPERIMENTAL Se empleará el Diseño de Bloques Completamente al Azar (DBCA), con 5 tratamientos y con 4 repeticiones por tratamiento. Características del campo experimental: Campo experimental: Largo
: 15 m.
47
Ancho
: 24 m.
Área total
: 360 m2.
Número total de plantas en el experimento: 20 pl. Bloques: Numero de bloques
:5
Largo de bloque
: 15 m.
Ancho del bloque
: 6 m.
Distanciamiento planta a planta.
: 5 m.
Número de plantas evaluadas por bloque : 4 pl. Número total de plantas por bloque
: 4 pl.
DIAGRAMA DEL DISEÑO EXPERIMENTAL TRATAMIENTOS
S E U Q O L B
I
2
1
3
4
II
1
4
2
3
III
4
3
2
1
IV
3
4
1
2
V
2
3
4
1
48
CROQUIS DEL CAMPO EXPERIMENTAL
49
5.5 ACTIVIDADES A EJECUTAR 5.5.1 Marcación de plantas Para marcar las plantas de chirimoya, en primer lugar se seleccionaran 20 plantas de 4 años aproximadamente, ubicados en el predio de la “Estación Experimental INIA”, sector la playa. En estos árboles se marcaran los bloques ordenados de I al
V y los tratamientos al azar que son cuatro. 5.5.2 Defoliación de las plantas La defoliación de las plantas se realizaran con motivo de inducir a a las plantas a la floración, para obtener homogeneidad en el experimento. 5.5.3 Extracción de polen y polinización A continuación se describe esta actividad para cada tratamiento: Tratamiento 01: Para este tratamiento se recogerá el polen en horas de la mañana y la polinización se realizara en horas de la tarde. Tratamiento 02: Para este tratamiento se recogerá el polen en horas de la mañana y la polinización se realizara al medio día. Tratamiento 03: Para este tratamiento se recogerá el polen en horas de la tarde y la polinización se realizara al día siguiente. Tratamiento 04: Este tratamiento es el testigo, sin ninguna intervención de polinización artificial. 5.5.4 Evaluación del porcentaje de cuajado -
Para la evaluación del porcentaje se realizara al tercer día después de la polinización
5.5.5 Evaluación de frutos -
Se evaluara el tamaño del fruto como el largo y el ancho después d 15 días de la polinización.
50
5.6 DATOS METEOROLÓGICOS: Durante la conducción del presente experimento se tomaran los datos meteorológicos de la estación climatológica principal de CURAHUASI.
51
VI. MATRIZ DE CONSISTENCIA Problema Objeto de Investigación Problema principal: Deficiente sistema de polinización natural de flores por efecto de la dicogamia en el cultivo de la chirimoya
Problema especifico:
Objetivos
Hipótesis
Variables
Objetivo general:
Hipótesis general:
Variable independiente
Determinar el incremento de rendimiento obtenido mediante la aplicación de la polinización manual en el cultivo de chirimoya (annona cherimola. mill.), en condiciones de Limatambo-Anta-Cusco
Con la aplicación de la polinización manual se pretende incrementar el nivel de rendimiento de la chirimoya
Plantas de chirimoyo a evaluar.
Objetivo especifico:
Hipótesis específicas:
1. ¿Cuál es el 1. Determinar el momento optimo de la momento óptimo de la polinización manual polinización manual para el cuajado del para el cuajado del fruto del chirimoyo? fruto del chirimoyo.
1. Es posible Determinar el momento óptimo de la polinización manual para el cuajado del fruto del chirimoyo.
2. ¿Cuál es numero de 2. Evaluar el número de frutos cuajados frutos cuajados después de realizado la polinización manual? 3. Evaluar frutos en desarrollo. 3. ¿Cuál es nivel de desarrollo de los frutos de chirimoya?
2. Es posible evaluar el número de frutos cuajados 3. Es posible evaluar frutos en desarrollo
Variable Dependiente
Instrumentos y técnicas
Indicadores 1. Numero de frutos cuajados por planta 2. Hora del dia de recojo de polen y hora del dia de polinización manual 3. Numero de frutos cuajados por planta
Momento del dia de recojo de polen y 4. Numero de frutos momento de en desarrollo por polinización manual planta frutos cuajados
Materiales para la evaluación Estacas Rafia Libreta de campo Papel bond Lápices Etiquetas Esmalte Brochas Embaces de polietileno Pincel Insuflador Cámara fotográfica Impresora Computadora Cinta métrica. Vernier Picos, palas. Segaderas Tijeras podadoras Material biológico Se utilizaran plantas de chirimoyo de 4 años de edad aproximadamente . Métodos: Se empleará el Diseño de Bloques Completamente al Azar (DBCA), con 5 tratamientos y con 4 repeticiones por tratamiento.
Frutos en desarrollo
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VII. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES Para el presente trabajo se diseño el siguiente cronograma.
Nº
ACTIVIDADES
ASONDE
1 Elaboración y presentación del perfil de tesis x 2 Aprobación del perfil de tesis
x
3 Selección y marcado de las plantas x experimentales 4 Instalación del experimento 5 Labores culturales
x x x x x
6 Evaluación de pre floración
x
7 Cosecha y aplicación del polen
x x
8 Evaluación del cuajado 9 Aplicación de riegos 10 Contada del número de frutos cuajados 11 Evaluación de los rendimientos
x x x x x x x
12 Sistematización de datos
x
13 Análisis estadísticos e interpretación de resultados
x
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VIII. PRESUPUESTO A continuación se muestra el presupuesto para la realización del trabajo de investigación: PRESUPUESTO REQUERIDO Descripción.
Cantidad.
Precio total.
Fotocopias. Internet. Impresiones. Pasajes ( 2 veces)
S/ 200.00
Elaboración de proyecto de tesis.
01
S/ 50.00
Materiales de marcación de plantas
Letreros. Pintura. Etiquetas. Rafia.
S/ 50.00
Materiales de gabinete.
-
S/ 150.00
Pasajes
S/ 700.00
1 unid. Hoja (0.20) Hoja (0.30) 1 millar Hoja (0.10) 1 unid
S/ 30. 00 S/ 90. 00 S/ 60. 00 S/ 30. 00 S/ 40. 00 S/ 5 .00
Revisión de bibliografía. Viajes de prospección.
Viajes de evaluación Presentación de informe. - USB. - Impresión. - Digitación. - Papel Bond. - Fotocopias. - Cds. Imprevistos 10 % total
S/ 100.00
S/150.00 S/ 1505.00
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IX. BIBLIOGRAFIA 1. Cautin, M., R. 2008. Propuesta de un nuevo sistema de conduccion en alta densidad de cultivo del chirimoyo ( annonacherimola m.). sus efectos sobre factores microambientales, fisiologicos y productivos. (tesis doctoral). universidad politécnica de valencia. españa. 2. Farfán C., N. 2009. Determinación de variabilidad genética mediante marcadores moleculares ssr en genotipos cultivados y silvestres de chirimoyo annona sp . del banco de germoplasma del inia procedente de 5 regiones del perú. (tesis ing. agr). unsaac. cusco. perú. 3. Guirado, S., E. 2003.Introducción al cultivo del chirimoyo. Besana portal agrario. España 4. Gonzales, F., M. 2007. Mejora de la productividad y calidaddel fruto mediante el control de lapolinización enChirimoyo. Almeria-España 5. Ibar, A., L. 1986. Cultivo de aguacate, chirimoyo, mango papaya. 3ra Ed. Edit. Aedos. Barcelona. España. 6. Ladron DeGuevarra, R., O.2005. Introducción a la climatología y fenología agrícola. Cusco. Perú. 7. Roseli, P.1995: Estudio sobre la Biologia Floral del chirimoyo (Annonacherímola Mill.) en la isla de Tenerife. Tesis Doctor-al. Univ. La
Laguna (Tenerife), 195 p. 8. Rosell, G., P.; Galan, S., V. y Hernandez, D., P. Cultivo del Chirimoyo en Canarias. 9. Tineo, C., J. 2009.Manejo del cultivo de chirimoyo frente al cambio climatico. INIA. Ayacucho. Peru. 10. Torres, R., E. 2006. Agrometeorologia.2ed.Mexico.Ed. Trillas.
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