Diplomado 2012
Medicina Animales Exóticos Manejo y Medicina de Pequeños Mamífeross Exóticos Mamífero
Victor Guerrero Torres Editor
Medicina de animales exoticos Este documento sale a la luz gracias al aporte desinteresado de muchos de los integrantes del diplomado “Medicina Animales Exóticos 2012” dictado en la Universidad Santo Tomas, quienes se dedicaron
a escuchar y traspasar los audios de las clases y con esto poder tener una guía de calidad para todos los que conformamos el curso. ¡MUCHAS GRACIAS A TODOS POR EL ESFUERZO!
Victor Guerrero Torres Editor
Índice Tema
Página
Chinchillas
03
Conejos
34
Erizo de tierra
164
Pequeños roedores
179
Cobayos
232
Hurones
270
Petauros del azúcar
410
Biología y manejo de Chinchillas Clase dictada por Dra. Carla Neumann D. Introducción Las chinchillas son originarias de América del Sur. En estado silvestre están casi extintas debido a la extensa caza por su piel. En la naturaleza las chinchillas habitan en laderas rocosas, frías y semiáridas, áreas relativamente estériles de los Andes, entre 3.000 y 5.000 MSNM. Debido a esto presentan una mayor concentración de hemoglobina, afinidad afinidad que comparten con otros roedores y conejos. Las chinchillas viven en madrigueras o grietas de las rocas, pero están bien adaptados para correr. Se dan baños de arena, son vegetarianos, y son activos durante todo el año. Son gregarios, viven en grupos de varios cientos. La Chinchilla lanígera tiene lanígera tiene un pequeño cuerpo, grandes orejas, cola larga y fue domesticada en los Estados Unidos a partir de 13 individuos llevados a California en 1927 por Matthew Chapman (El nombre Laniger proviene del latín que significa "Lanudo"). Estos animales son los ancestros de todas las chinchillas domésticas de América del Norte. La Chinchilla brevicaudata su brevicaudata su cuerpo es grande, orejas pequeñas, cola corta, son del Altiplano (tierras altas de Perú, Bolivia, norte de Chile y Argentina) fue domesticada en Chile alrededor de 1931. Algunos informes sugieren que algunos cruces entre C. lanígera y C. brevicaudata se han producido a causa de su cría en cautividad. Los machos híbridos son estériles. Las hembras híbridas son fértiles, pero cuando se vuelven a cruzar, dos tercios de los híbridos de segunda generación son estériles.
Anatomía, fisiología y comportamiento comportamiento Características Generales La chinchilla tiene un cuerpo delgado, con extremidades anteriores cortas, patas traseras largas y musculosas que le dan un aspecto similar al conejo. La cabeza, los ojos y las orejas son relativamente grandes y las bullas timpánicas son muy expandidas (se ocupan para ver tratamientos de otitis en humanos). Las chinchillas tienen barbas largas y una cola peluda.
Por lo general pesan entre 400 y 600 gramos, las hembras suelen ser más grandes que los machos. Las chinchillas tienen cuatro dedos en los dos pies delanteros y traseros, todos con garras pequeñas y débiles. No tienen pelos en las regiones palmar y plantar de los pies. pi es.
Valores fisiológicos de chinchillas Esperanza de vida 10 años, hay reportes de hasta 20 años Peso adulto Hembra: 400 a 600 g Machos: 400 – 500 g Madurez sexual 8 meses Tipo ciclo estral Poliéstrico estacional, de mayo a noviembre Duración ciclo estral 30 A 50 días días Ovulación Espontanea Periodo de gestación 105 a 118 días (promedio 111 días) Tamaño de camada 1 – 6 (2 crías es lo usual) Peso al nacimiento 30 – 50 g. Destete 6 – 8 semanas Temperatura rectal 37 – 38 ºC Frecuencia Frecuencia cardiaca 100 -150 latidos por minuto Las chinchillas son tranquilas, tímidas, tímidas, y ágiles. Las chinchillas silvestres, viven en madrigueras y grietas de las rocas, tienen largas patas traseras y pies adaptados para saltar. Durante esos saltos la cola ejerce una importante función estabilizadora y se mueve de una forma característica. Una jaula que cubra las necesidades de una chinchilla ha de tener una cierta altura y un amplio espacio. En su hábitat natural, las chinchillas son activas al atardecer y de noche; sin embargo, en cautiverio, pueden estar activos durante el día. Se habitúan fácilmente a los seres humanos si son manipuladas desde pequeñas. Su mecanismo de defensa es dar potentes saltos cuando se ven amenazadas rara vez, muerden. Las chinchillas prácticamente no presentan olor, salvo el derivado de la orina. Las hembras pueden ponerse de pie sobre sus patas traseras y liberar orina frente a un presunto ataque. Las chinchillas silvestres pueden vivir 10 años de edad y en cautiverio pueden vivir más de 20 años.
El pelaje es suave y muy denso. Crecen más de 60 pelos a partir de un solo folículo piloso. Las chinchillas presentan una variedad de colores. Las silvestres el color del pelaje es gris azulado con el abdomen amarillo- blanco. En cautividad hay muchas variedades: blanco, plata, beige y negro. Baños frecuentes de arena son necesarios para mantener la salud del pelaje. Cuando se asustan, las chinchillas pueden arrojar manchas de piel, una condición conocida como "piel de deslizamiento" zona que tardará en comenzar a crecer entre 6 a 8 semanas y varios meses en igualarse al resto del color del pelaje. El repertorio vocal de las chinchillas comprende 10 diferentes sonidos. Esto se atribuye a los contextos de comportamiento exploratorio, evitación del depredador, el comportamiento sexual, y el comportamiento social, incluyendo el contacto social y el comportamiento antagónico (defensivo y ofensivo). Las chinchillas pueden subir y bajar los tonos de las llamadas que realizan. Todas las chinchillas tienen un grito de base que se utiliza comúnmente desde el nacimiento. Los ojos son grandes asentados en una órbita ósea superficial. El iris densamente pigmentado (oscuro) con una pupila vertical adaptados para la zona que habitan (el sol podría hacerle daño). Un tercer párpado es sólo rudimentario. El sistema de drenaje lagrimal consiste en dos puntos lacrimales en el canto interno de los párpados superiores e inferiores, los cuales desembocan en un conducto lacrimal único. El conducto lagrimal recorre un curso similar a los otros roedores y lagomorfos. Las bullas timpánicas son muy grandes y de paredes delgadas, que son fácilmente visibles en las radiografías, lo cual hace que las chinchillas sean especies comunes de laboratorio para investigación auditiva humana. Sistema Gastrointestinal La fórmula dental de chinchillas es:
( )
Las chinchillas pertenecen a un pequeño grupo de roedores llamados caviomorfos (en América del Sur Histricomorfos como cobayas, chinchillas y degus). Sus dientes son todos elodontos (crecimiento continuo) y se han adaptado a una dieta más voluminosa abrasiva y cuentan con grandes superficies de masticación. Todos sus dientes tienen raíces abiertas (aradiculares) y que crecen continuamente durante toda vida para compensar el desgaste que se produce por la masticación prolongada. Los incisivos son normalmente de color amarillo debido al depósito de hierro en el esmalte y crecen 5 a 7,5 cm por año por eso es muy importante una dieta adecuada para que desgasten de forma correcta. Los incisivos superiores crecen más rápido que los incisivos inferiores. La cavidad oral es pequeña y estrecha. Tienen una abertura palatal (un orificio) en el paladar blando a través del cual se comunica la orofaringe con el resto de la faringe. Las chinchillas tienen un tubo digestivo largo, puede llegar a los 3.5 metros y ocupa gran parte del abdomen ya que para poder digerir la materia vegetal de la que se alimenta es necesario un gran sistema digestivo. El ciego es grande y curvado y el colon tiene saculaciones, unas estructuras que dan a las heces de las chinchillas su forma característica de “grano de arroz”.
El 70% de la ingesta diaria de los alimentos es durante la noche, por lo tanto, la mayor parte de las heces las encontraremos de noche. Las Chinchillas producen dos tipos de partículas fecales, uno es rico en nitrógeno, diseñado para cecotrofia, y el otro pobre en nitrógeno, se excreta como fecas secas. Chinchillas defecan entre las 3 am y 6 am y consumen cecotrofos entre 8 am y las 2 pm. El tiempo medio de tránsito de los alimentos en el tracto GI es de 12 a 15 horas. Sin embargo, en contraste con otros roedores domésticos, el tiempo de tránsito tránsito en las chinchillas no se se ve afectado por la reducción del nivel de fibra dietética en la dieta. Sistema Urogenital Chinchillas producen una orina concentrada. Las hembras tienen dos cuernos uterinos, dos cuellos uterinos y una sola vagina. Tienen tres pares de glándulas mamarias: un par inguinal y dos laterales torácicos. Los machos no tienen un escroto verdadero sino que los testículos se deslizan a través del llamado canal inguinal desde el interior del abdomen hacia los llamados sacos postanales, que rodean completamente el ano. El pene está bajo el ano y puede ser visualizado fácilmente. Los machos poseen muy desarrolladas las glándulas reproductivas accesorias. Las secreciones de las glándulas reproductivas accesorias forman un tapón duro que permanece en el tracto femenino después de la cópula. La glándula vesicular proporciona la mayor parte de las secreciones de las glándulas accesorias y el fluido se endurece o se gelifica cuando se mezcla con las secreciones prostáticas. Es normal encontrar el tapón seroso después de la cruza cru za en la jaula de las hembras.
Determinación del sexo La distancia ano-genital es el criterio más fiable para saber el sexo de una chinchilla, sobre todo si es muy joven. Esto es debido a que las hembras poseen una gran papila urinaria, también llamada clítoris o cono uretral, que puede confundirse fácilmente con un pene. En el caso de los machos la distancia anogenital es de 1-1.5cm (distancia entre el pene y el ano) mientras que en las hembras esa distancia es mucho menor. La extrusión del pene desde el orificio uretral confirmará el sexo de la chinchilla. Existen importantes características diferenciadoras: el pene es significativamente mayor que el clítoris y el pene extruido pueden separarse y distinguirse del prepucio, mientras el clítoris extruido tiende a evaginar y el prepucio del clítoris no es evidente. Esta diferencia entre los sexos es evidente incluso en el nacimiento: la papila urinaria es adyacente al ano en las hembras, mientras que el pene se separa del ano por una estrecha banda de tejido en los machos.
Macho
Hembra
Comportamiento reproductivo y crianza Las chinchillas son poliéstricas estacionales, es decir, únicamente entran en celo en determinada época del año. En el hemisferio norte éste periodo va de Mayo a Noviembre, intervalo en el que pueden tener dos camadas. El ciclo estral dura entre 28 a 35 días, y el estro entre 3 a 4 días. Hay un periodo fértil (celo post parto) inmediatamente tras el parto y, si no hay monta en ese momento, a los 40 días del parto. Para saber si una chinchilla está en celo hemos de fijarnos en la vulva, que durante el celo está más abierta, pero no aumentada de tamaño, y presenta moco en su interior, y en el color de la zona próxima a la vulva, es más rosada o rojiza. La edad media en la que los machos son sexualmente maduros es de al menos 8 meses, mientras que en el caso de las hembras es de 8 meses y medio. Las chinchillas pueden alojarse solas, en parejas o en grupos de 2 a 6 hembras y un macho, éstos últimos utilizados por criadores. En los grupos de varias hembras y un macho se permite la entrada del macho al cubículo de cada hembra, que están separadas unas de otras, excepto durante el parto y la lactación, ya que puede haber problemas de agresividad hacia las crías o abandono de las mismas. En el caso del alojamiento en parejas, el más frecuente entre los aficionados, el macho vive en la misma jaula con la hembra incluso en el parto y durante la lactación pero si se observan conductas agresivas hacia hacia la hembra o las crías hemos hemos de separar al macho. En muchas muchas ocasiones 24 horas tras la cópula encontraremos el llamado tapón copulatorio, se trata de una estructura con consistencia parecida a la de la cera y que se desprende de la vagina de la hembra permitiendo la cópula; de modo que si vemos ese tapón podemos estar seguros de que ha habido cópula. La gestación dura 111 días como media y en cada camada, en el caso de las chinchillas domésticas, suelen nacer 2 crías aunque pueden ser hasta 6 y suele haber por lo general más machos que hembras. Aunque las chinchillas no construyen nidos, en ocasiones podemos aportarles uno y lo aceptan de buen grado, en ese caso podremos aplicar una fuente de calor segura al nido para evitar hipotermia en las crías, sobre todo en los primeros días tras el nacimiento. La preñez es detectable a los 90 días de gestación por palpación, el monitoreo de la ganancia de peso nos puede ayudar a detectar la preñez. La ganancia es de 25 a 30 gramos al mes incrementándose los últimos meses.
Las chinchillas, al igual que las cobayas, son placentofágicas, es decir, comen la placenta tras el parto. Si observamos las “manos” y el morro de la chinchilla manchados de sangre tras el parto esto
quiere decir que ha finalizado completamente. Las crías son precoces: pesan de 30 a 50 gramos al nacimiento, están totalmente cubiertas de pelo, poseen dientes y tienen los ojos abiertos, son capaces de andar una hora después de haber nacido. Las chinchillas maman de la madre estando ésta incorporada, es decir, no se tumba para que las crías mamen. En caso de ser necesaria la lactancia artificial (p.ej. por abandono o muerte de la madre) puede ser con una madre adoptiva o sino no está disponible, con una fórmula de partes iguales de leche evaporada y agua la que puede ser administrada con un gotero o biberón de mascota cada 3 o 4 horas (por las noches sólo 1 o 2 veces) durante 4 días. A partir del cuarto día podemos dejar de alimentar por las noches e ir espaciando las tomas durante el día. Las chinchillas comienzan a alimentarse con comida sólida a partir de la primera semana de vida y el destete completo es entre las 6 u 8 semanas. Es necesario que las crías tengan comida suficiente en un espacio amplio para que puedan comer todas a la vez, de otra forma puede haber peleas entre las crías. Alojamiento Viviendas Las chinchillas son animales muy activos, acrobáticos y requieren mucho de espacio. El recinto debe tener al menos 2 x 2 x 1 m, con un nido de madera que miden 30 × 25 × 20 cm. Jaulas grandes multinivel proporcionan suficiente espacio para trepar y saltar, son excelentes como vivienda de chinchillas mascotas. Las chinchillas son animales tímidos, y en cautividad necesitan un lugar donde esconderse. Las tuberías de PVC, especialmente codos Y y T, son ideales como escondites y se pueden desinfectar en un lavavajillas. Las tuberías deben ser de 10 a 13 cm de diámetro. El piso de las jaulas puede ser de malla o sólido (se recomienda en hembras preñadas y con crías). Asegúrese de que el espacio de la malla en las jaulas sea estrecho, para prevenir las fracturas de tibia que comúnmente ocurren en los animales jóvenes cuando coge su pierna en un espacio de la jaula. Pueden ser alojados en parejas, colonias o unidades polígamas (1 macho con 5 hembras macho se mantienen en corredor). Las chinchillas son muy tolerantes al frío pero sensibles al calor. El rango de temperatura ambiente al que se adaptan es 18,3 a 26,7 °C. No toleran la humedad y son propensos a golpe de calor a temperaturas ambientales superiores a 28 - 30 °C. Desarrollará pelaje opaco si se mantiene en un entorno húmedo y caliente (superior a 26,7 °C).
Baños de Arena El acceso a un baño de arena debe ser proporcionado diariamente, si es posible, o al menos 2 veces por semana. Los baños de arena reducen los lípidos del pelaje de las chinchillas. Arena sanitizada de chinchilla está disponible comercialmente en tiendas de mascotas. El uso excesivo de los baños de arena puede causar conjuntivitis y rinitis, por lo tanto, limitar el acceso a este tipo de baño por 15 minutos al día. El polvo se coloca a una profundidad de 2 a 3 cm (1 pulgada) en una cubeta, como un barreño de plástico o metálico, que sea lo suficientemente grande para que la chinchilla pueda rodar. El baño de arena se debe mantener limpio y libre de heces por lo tanto debe ser sacado de la jaula después de su uso.
Nutrición y Alimentación Requerimientos nutricionales A A A A
Proteína: 16 a 20 % Carbohidratos: 35% Grasa: 2 a 5% Fibra: 15 a 35%
Herbívoro fermentativo de intestino posterior. Requieren dietas altas en fibra para prevenir problemas entéricos y mantener la integridad de sus dientes de raíz abierta. La fórmula aceptada para Chinchilla pellets es de 16% a 20% de proteína, grasa 2% a 5%, y 15% a 35% de fibra. Aunque muy poco se ha publicado sobre la nutrición de las chinchillas mascota, es seguro asumir que los animales en crecimiento y las hembras de cría requieren más calorías, calcio, proteínas y grasas que las no reproductivas. Animales no reproductivos están bien con una dieta a base de heno suplementado con pequeñas cantidades de pellets de chinchilla o pellets de conejo, verduras frescas y granos. Una o dos cucharadas de pellets diario debe ser suficiente para que un animal adulto. Se debe limitar a 1 cucharadita al día los granos, manzanas secas, pasas, higos, avellanas y semillas de girasol. Cualquier cambio en la dieta debe ser realizado poco a poco. Cambios bruscos en la dieta dará lugar a una disminución temporal del consumo de alimento (hasta 50%). Anorexia a menudo sigue a cualquier cambio en la dieta. El alimento debe ser entregado en pocillos firmes para que no sean volteados por los animales y de esta manera no se contamine el alimento. Agua potable limpia y fresca disponible en todo momento que puede ser proporcionada a través de bebederos manuales (botellas) o automáticos. El agua en un recipiente tiende a ensuciarse rápidamente y puede derramarse. Se pueden dar cubos de alfalfa que proporciona fibra y además ayuda a roer. Además se pueden incluir piedras porosas como piedra pómez, ramas jóvenes de árboles como olmo, el fresno, el arce y el abedul, trozos de corteza de manzana, pera. Asesorar al propietario para evitar ramas de los árboles venenosos, como el cedro, ciruela, secoya, cereza, y adelfa.
Técnicas clínicas en chinchillas Manipulación y sujeción Deben ser manipuladas con calma y suavidad. Son dóciles, animales no gestantes se pueden tomar de una jaula sujetando y levantando de la base de la cola, la mano opuesta la lleva contra el cuerpo. Restricción de rutina se puede realizar envolviendo una toalla alrededor del cuerpo. Chinchillas pequeñas pueden ser tomadas suavemente alrededor del tórax, teniendo cuidado de no restringir la respiración. Las hembras preñadas no se deben manipular a menos que sea necesario. Una reacción protectora de captura en chinchillas, conocido como desprendimiento de piel, da como resultado la liberación de un gran parche de pelaje. También puede ocurrir con una inadecuada manipulación, lucha, o cualquier cosa que sobreexcite al animal. La piel puede tardar varios meses en volver a crecer y con frecuencia aparece en un tono diferente. Para evitar esto, se debe ser suave y reducir al mínimo el estrés durante la captura o restricción. Examen físico El examen inicial debería incluir la observación de la chinchilla en su jaula. Centrarse en el movimiento del animal y en su frecuencia respiratoria. Debe reaccionar a los estímulos de movimiento o vocalización. Chinchillas sanas son curiosas, su cola la lleva en alto. Los animales enfermos son indiferentes, aparecen encorvados, y tienen un pelo sin brillo, a menudo el área perianal puede estar manchada o cubierta con heces. Una chinchilla que vuela alrededor de la jaula en un frenesí cuando el dueño intenta capturarla no ha sido socializada y será difícil de examinar sin sedación. Se inicia la exploración física tomando el peso del animal, lo que es también un buen momento para obtener la temperatura del animal antes de que sea estresado. A continuación, examinar el pelaje, la piel y las membranas mucosas. Luego auscultando el corazón y los pulmones, y finalizar palpando el abdomen. Chequear el área rectal y revisar el pene en machos por la presencia de anillos de pelo, observar los genitales y glándulas mamarias y tomar nota de cualquier anomalía. El recorte de las uñas con cortauñas de gato. Examine la cavidad oral al final, ya que es estresante y el animal puede llegar a ser excitado. Pueden luchar o tratar de escapar. Las Chinchillas pueden ser sostenidas por un asistente, y se chequea su cavidad oral con un especulo. Toma de sangre Venopunción en chinchillas puede ser difícil. Para volúmenes pequeños las venas safenas lateral y cefálica son las más accesibles pero muy pequeñas. Afeitar el pelo de la zona y humedecer la piel con alcohol para mejorar la visibilidad de la vena. Utilizar una jeringa de insulina o tuberculina y aguja de 25 a 27 G para evitar el colapso de la vena. Venopunción de múltiples venas periféricas a menudo es necesario para recoger un volumen adecuado de sangre para el análisis. Para volúmenes mayores la vena yugular se puede utilizar; sin embargo la forma manual de restricción para punción venosa yugular puede ser muy estresante para los animales. Tranquilizantes o anestesia para la recogida de muestras de sangre puede ser preferible para reducir al mínimo el estrés. Debido a sus cuellos cortos, gruesos y compactos, a menudo es difícil localizar la vena yugular. Restringir al animal con las patas delanteras extendidas hacia abajo sobre el borde de la mesa y la cabeza y el cuello extendido hacia arriba. Si es necesario, afeitar la piel de la zona para mejorar la visibilidad de la vena y
el uso de aguja de 22 a 25G con jeringa de 1 a 3ml para la recogida de sangre. Si el animal muestra signos evidentes de estrés o se pone disneico, abortar el procedimiento inmediatamente. Observar de cerca el animal durante varios minutos después de la restricción para ver que se recupera. Si el animal todavía parece estar estresado o disneico después de varios minutos, abandonar todo intento de venopunción con el animal despierto. El volumen de sangre promedios 7 ml/100 g de peso. Aproximadamente el 7% a 10% del volumen de sangre (0,5 – 0,7 ml/100 g). Intervalos de referencias y valores de laboratorio Los valores se enumeran en las Tablas. Idealmente, como para otras especies, cada laboratorio de diagnóstico veterinario ha establecido intervalos de referencia. Valores de laboratorio clínico pueden variar de acuerdo con el estado fisiológico del animal, el sexo, y las técnicas de laboratorio utilizado. La tranquilización puede ser necesaria. Son especies linfocíticas lo que quiere decir que el porcentaje de linfocitos esta sobre el 75% con respecto al conteo total de glóbulos blancos. El pH normal chinchilla de la orina es de 8,5; peso específico a menudo excede 1.045. Análisis Hematocrito Hemoglobina g/dl Glóbulos rojos (×10 /μL)
Reticulocitos (%) VCM CHCM Glóbulos blancos(×10³/μL)
Linfocitos (%) Neutrófilos (%) Monocitos (%) Eosinófilos (%) Basófilos (%) Plaquetas (10³/μL)
Rango normal 37 (35 – 40) 13,1 (11,6 – 14,5) 3,8 (3,4 – 4,2) 0 – 2,8 101 (87 – 116) 35 (33 – 38) 5,2 (4,4 – 6,1)
Valores bioquímicos ALT (U/L) AST (U/L) Albumina (g/dL) Fosfatasa alcalina (U/L) Bilirrubina (mg/dL) NUS (mg/dL) Glucosa (mg/dl)
35,0 (29,6 – 40,5) 40,0 (32,7 – 47,2) 11,5 (7,8 – 15,2) 5,8 (3,9 – 7,6) 5,3 (3,2 – 7,4) 276
Potasio (mEq/L) Fosforo (mg/dL) Proteínas totales (g/dL) Sodio (mEq/L) Triglicéridos (mg/dL)
Rangos de referencia 40 (31 – 49) 249 (202 – 297) 4,5 (3.7 – 5.4) 44 (37 – 51) 0,2 (0.1 – 0.3) 57 (46 – 69) 180 (163 – 197) 136 (108 – 165) 5,0 – 6,5 4 – 8 5,6 (5,3 – 6,0) 130 – 155 173 (117 – 229)
Técnicas de tratamiento Catéter intravenoso e intraóseo Los catéteres venosos periféricos se utilizan comúnmente, pero a veces puede ser difícil de colocar debido al tamaño pequeño y a la fragilidad de las venas, especialmente en chinchillas. Utilizar catéter de 24 a 26 G permanente y colocar el catéter mientras el animal está bajo anestesia o tranquilizantes. Los sitios adecuados para inyección intravenosa o caterización incluyen las venas yugular lateral, safenas y cefálica. La colocación de collares en estos animales para evitar la masticación suele causar estrés e inapetencia. La vía intraósea es una alternativa a la vía intravenosa. Los sitios adecuados incluyen la tibia proximal y el fémur proximal. Los fluidos infundidos por esta ruta son absorbidos rápidamente en la
circulación sistémica de la cavidad medular. Esta ruta se puede ser particularmente útil en pacientes pequeños y en los casos de colapso cardiovascular. El uso de agujas espinales se prefiere para prevenir obstruir el núcleo del hueso con la aguja. Una técnica aséptica es importante y se debe emplear anestesia. Para chinchillas muy enfermas, aplicar anestesia local por infiltración del sitio puede ser lo más apropiado. La posición de un catéter intraóseo se puede confirmar con una radiografía. Controlar animales con catéteres permanentes de cerca ya que pueden intentar masticar el catéter o vía intravenosa. Fluidoterapia Ingesta normal diaria de agua se estima aproximadamente 100 ml/kg. Los requerimientos de líquidos administrados deben calcularse sobre la base de esta estimación más el fluido adicional a compensar por la pérdida de fluidos o deshidratación. Para evitar estrés innecesario, se puede administrar líquidos orales a menos que estemos en presencia de azotemia moderada a severamente deshidratado. El uso de la terapia de fluidos orales a menudo es suficiente cuando la chinchilla acepta fluidos con jeringa, y es útil para la hidratación de los contenidos del intestino, lo cual reduce el riesgo de íleo postoperatorio. Alternativamente, los fluidos orales pueden ser proporcionados por medio de una dieta de herbívoros o pellets de chinchilla empapados en agua. La administración subcutánea o intraperitoneal de líquido cristaloide isotónica también puede ser útil. Todos los líquidos deben ser administrados a la temperatura del cuerpo (37 a 38 °C). Los líquidos administrados por inyección subcutánea se absorben de forma relativamente lenta. Esta ruta no es efectiva para el reemplazo rápido (por ejemplo, en los casos de shock) o conveniente para coloides. Suplementos líquidos comúnmente se administran por vía subcutánea en la piel suelta del área dorsal posterior del cuello y superior. El volumen total se puede dividir en dos a tres tratamientos diarios. Volúmenes de 25 a 35 ml se puede administrar por vía subcutánea por cada lugar de inyección con mariposa de 22 a 25 G. Utilice una bomba de inyección o una buretra para la infusión de líquidos por vía intravenosa en forma continua. Monitorear volúmenes de fluido estrechamente para evitar la sobre hidratación. Para la inyección intraperitoneal, primero, restringir el animal (para evitar el movimiento) se pone en posición dorsal. Inserte aguja de 25G en el cuadrante abdominal caudal derecho en un ángulo de 20 a 30 apuntando cranealmente. Es aconsejable realizar aspiración suave para examinar la penetración visceral. Un máximo de 10 ml de fluido se debe administrar por vía intraperitoneal, y las inyecciones repetidas debe ser evitado. La terapia con antibióticos Debido a que son fermentadores del intestino grueso, dependen casi en su totalidad de la producción bacteriana de ácidos grasos volátiles para la energía, siendo son muy susceptibles a cambios en la flora microbianas entéricas. Aunque todos los antibióticos tienen el potencial de afectar la microflora intestinal normal, distintas clases de fármacos tales como las fluoroquinolonas, tetraciclinas, cloranfenicol, y aminioglucosidos tienen menos impacto que las drogas tales como las penicilinas, cefalosporinas, lincosamidas, macrólidos. Por lo tanto se debe elegir la terapia con antibióticos con precaución, especialmente la vía oral, para disminuir el riesgo de disbiosis intestinal y enterotoxemia asociada a antibióticos.
La administración de medicamentos Medicamentos parenterales se pueden administrar por inyección subcutánea o intramuscular. La parte superior entre las escapulas es un sitio común para la administración de las inyecciones subcutáneas. Un máximo de 3 a 4 ml de fluido se debe inyectar por sitio. Inyecciones intramusculares pueden ser en los músculos lumbares y en los cuádriceps, el volumen a administrar es pequeño, especialmente en animales delgados (0,3 ml) con aguja de 25 a 27G. Administrar los medicamentos orales y suplementos nutricionales con una jeringa en el lado de la boca. Medicamentos por vía oral en forma de tabletas deben ser preparados en formulaciones líquidas para poder ser administrados fácilmente por los propietarios. Administración de pastillas a veces es posible, porque las chinchillas son curiosas, por lo general se ocultan en pasas. La alimentación forzada en animales anoréxicos o que están consumiendo menos alimentos pueden ser con formulaciones especiales o un suavizado de gránulos de chinchillas.
Trastornos del aparato digestivo Gastroenteritis y disbacteriosis Cualquier enfermedad sistémica, condición dolorosa o estresante puede resultar en problemas secundarios gastrointestinales con signos clínicos inespecíficos tales como la anorexia, letargo y falta de producción de heces. La obtención de una historia clínica detallada y un examen físico minucioso es crítico para un diagnóstico certero y para un adecuado plan terapéutico. Hay una variedad de causas infecciosas y no infecciosas de gastroenteritis y disbacteriosis que pueden afectar a las chinchillas y dar lugar a una serie de síndromes clínicos que incluyen estreñimiento, timpanismo, diarrea, la invaginación intestinal y el prolapso rectal. En chinchillas mascotas, las causas no infecciosas, tales como cambios de dieta repentinos, dietas inapropiadas o tratamiento oral con antibióticos (por ejemplo, cefalosporinas, penicilinas, clindamicina, eritromicina) son más frecuentes e importantes. Unas pocas causas secundarias del tipo infecciosas tales como giardiasis, coccidiosis, Pseudomonas y sobrecrecimiento de Enterobacter puede ser visto en chinchillas mascotas. La identificación de la causa subyacente de la gastroenteritis y disbacteriosis es importante para mejorar el resultado terapéutico y reducir la probabilidad de recurrencia. Realizar radiografías de todo el cuerpo, el examen coproparasitario, citología fecal, y coprocultivo para patógenos entéricos oportunistas (por ejemplo, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa) en el diagnóstico inicial. Las pruebas de laboratorio, como análisis de orina, perfil bioquímico y un recuento sanguíneo completo (CBC) puede ayudar en el diagnóstico de las causas no alimentarias y trastornos metabólicos (por ejemplo, lipidosis hepática, cetosis, enfermedad renal) que influirá en el pronóstico y la terapia. Además del tratamiento específico para la principal causa subyacente de la gastroenteritis y disbacteriosis, pautas generales de tratamiento para todos los casos de enfermedades gastrointestinales debe incluir el reemplazo de líquidos y mantener los déficits por fluidoterapia parenteral y enteral, apoyo nutricional y el manejo del dolor (buprenorfina 0,03 – 0,05 mg/kg SC cada 8 h) si hay una condición dolorosa. Considere la posibilidad de la terapia antimicrobiana sistémica parenteral (enrofloxacino 10 mg/kg SC cada 12 horas diluido para el tratamiento de gramnegativos patógenos oportunistas. Evitar la administración oral del fármaco debido a que la eficacia y absorción de los fármacos orales puede disminuir cuando la función gastrointestinal es anormal. La
administración parenteral es la ruta inicial preferida para la mayoría de las drogas. Una vez que el animal está comiendo y su función gastrointestinal es mejor, se puede cambiar a la vía oral. Estreñimiento Es un problema común en chinchillas, se caracteriza por una reducida salida de fecas o ausencia de fecas. También se puede observar fecas más pequeñas e irregulares en tamaño. Las causas son cambios repentinos en la dieta, dietas inapropiadas (con poca fibra), o infecciosas. Causas subyacentes incluyen anorexia, enfermedad dental, y la gastroenteritis. Se ha observado en hembras en la primera semana postparto. La palpación abdominal puede revelar ingesta firme en el ciego y un abdomen tenso. Los signos clínicos son anorexia y progresivamente se ponen letárgicos. Un diagnóstico diferencial importante por falta completa de la producción de heces en las chinchillas es la intususcepción intestinal. Las pautas generales para el tratamiento de la enfermedad gastrointestinal se emplean para el estreñimiento. El objetivo es rehidratar el intestino por la terapia de fluidos. Considere la terapia enteral líquido (100 ml/kg PO cada 24 horas dividida en 4 - 5 dosis) en chinchillas con estreñimiento se debe estimular el reflejo gastrocecal y rehidratar la ingesta. Masaje abdominal y el ejercicio regular también puede ser útil. Diarrea y fecas blandas Son frecuentes en las chinchillas. Además de las causas infecciosas (los parásitos, bacterias, protozoos) la alimentación inapropiada o cambios repentinos en la dieta pueden causar heces blandas. La sobrealimentación con forraje verde fresco o artículos altos en hidratos de carbono simples pueden resultar en disbacteriosis y heces blandas. Manchas de fecas en el lugar de alojamiento, zona perianal con fecas son a menudo los primeros signos de aviso al propietario. El animal puede encontrarse normal o en los casos crónicos y severos, puede presentar anoréxica, deshidratación y depresión. Descartar las causas infecciosas basadas en la historia y por las pruebas de diagnóstico apropiadas. El tratamiento se basa en el reemplazo de fluidos, la repoblación de las bacterias normales intestinales donde puede ocupar algún probiótico. Dar pellets de alta calidad si el animal sigue comiendo. Considere el tratamiento con nistatina (100.000 UI/kg PO cada 8 horas durante 5 días) en caso de no respuesta al tratamiento inicial ya que puede haber un sobrecrecimiento de Cyniclomyces guttulatus. Enteritis bacteriana La flora normal consiste en bacterias gran (+) como bifidobacterium spp., Bacteroides spp., Eubacterium spp., y Lactobacillus spp. La enteritis es causada por E. coli, Proteus spp., Salmonella tyfimorum, Pseudomonas, Corynebacterium y Yersenia. Listeria monocytogenes puede producir síntomas de enteritis, pero también síntomas neurológicos (convulsiones). Generalmente estas son bacterias introducidas por otros roedores o por alimento contaminado. Si no se trata la enteritis puede progresar a septicemia, las bacterias se difunden a través de la sangre a muchos órganos, especialmente el hígado y el bazo. Los animales afectados pierden rápidamente la condición general, tienen un pelaje opaco áspero. La diarrea se asocia a menudo con sangre y moco. Muerte súbita puede ser ocurrir.
Diagnóstico: cultivos bacterianos y aislamiento bacteriano desde sangre, hígado o bazo en caso se septicemia. Tratamiento: Antibióticos deben ser utilizados con precaución para no destruir el balance normal de la flora intestinal: Sulfonamidas por vía SC, Neomicina oralmente. Probióticos. Oxitetraciclina se administra como terapia profiláctica. Enteritis por Parásitos El parasitismo intestinal es poco frecuente, pero nematodos, coccidias, guardia y criptosporidium pueden encontrarse en chinchillas. Un bajo número de guardias se encuentran en chinchillas en forma normal, pero un sobrecrecimiento de estas puede ser causal de diarrea. Examen fecal se debe realizar en todo animal con diarrea. Se describe hepatoxicidad del metronidazol en algunas chinchillas. Timpanismo Es menos común en las chinchillas. El timpanismo es una acumulación de gas en el estómago que a menudo se produce secundario a gastroenteritis, disbacteriosis, íleo, obstrucción luminal o, muy raramente, por torsión intestinal. Signos clínicos: Los animales afectados por lo general tiene un abdomen distendido y tenso. En casos severos hay depresión, disnea y pueden estar postrados. Signos de shock pueden estar presentes. El pronóstico depende de la gravedad y la duración de timpanismo, pero por lo general es pobre en los casos graves o crónicos. El tratamiento basado en las directrices generales para la gestión de la gastroenteritis. Aunque la descompresión gástrica se recomienda para casos severos de timpanismo, esta podría resultar en el colapso y la muerte en un paciente descompensado. No utilizar drogas para mejorar la motilidad (por ejemplo, cisaprida) en caso de una enfermedad infecciosa o causa obstructiva. Prolapso rectal e intususcepción Con frecuencia ocurren juntos, secundario a disbacteriosis, enteritis, estreñimiento, o diarrea. La invaginación del colon descendente y el recto se asocia con prolapso rectal, sin embargo, el intestino delgado también puede ser afectado. La palpación abdominal podría revelar una masa cilíndrica turgente que refleja la parte del intestino con intususcepción. La cantidad de intestino involucrado en la intususcepción puede ser extensa y la parte afectada generalmente esta congestionada y cianótica, en casos avanzados, a menudo inviable. Además del tratamiento de la causa primaria, la corrección quirúrgica de la invaginación intestinal (intususcepción) es crucial: resección intestinal y anastomosis puede ser necesaria. El simple reemplazo o la resección del tejido prolapsado rectal es insuficiente. Evaluar el tejido prolapsado para la viabilidad y grado de trauma. Si una invaginación intestinal se descarta, limpiar cuidadosamente y tomar el prolapso rectal y ponerlo
en una solución concentrada de azúcar (50% de dextrosa). Volver a poner el tejido prolapsado y realizar una sutura en bolsa de tabaco en el tejido perianal. El pronóstico sigue siendo deficiente en la mayoría de los casos y el resultado dependerá de la ubicación, duración de la invaginación, de la viabilidad el tejido prolapsado e intusuceptado, y de la causa primaria que ocasiono el problema. La recurrencia es común, ya que el prolapso rectal e intususcepción generalmente reflejan una complicación aguda de un problema crónico primario subyacente. Trastornos del esófago Debido a que las chinchillas no pueden vomitar, alimentos como pasas, frutas y nueces, así como material de cama y placentas ingeridas por las hembras postparto se pueden atascar en la orofaringe y porción superior del esófago. Los signos clínicos son la aparición repentina de tos, anorexia, salivación, náuseas y disnea. La eliminación del material extraño (tratamiento curativo) debe ser rápida o sino el animal puede fallecer por sofocación, el pronóstico es bueno si el problema se aborda tempranamente. Puede ser causal de muerte súbita. El megaesófago se caracteriza por episodios de regurgitación del material alimenticio seguidos de disnea, nauseas, jadeo y descarga nasal, las radiografías de contraste dan el diagnóstico definitivo. Enfermedad dental Enfermedad común en las chinchillas de cautiverio. Las principales causas de esta enfermedad son nutricionales (por una dieta menos abrasiva en cautividad) y genéticas. Los dientes tienen un crecimiento continuo por lo tanto pueden ser afectados por los cambios de alimentación en cualquier momento. La tasa de desgaste de los dientes debe ser igual a su tasa de crecimiento. Los dientes son de raíz abierta lo que los hace más propensos a infecciones dentales. En la maloclusión los dientes tienen un desgaste desigual causando un sobrecrecimiento o un crecimiento desigual de los incisivos. Los molares y premolares generan puntas que pueden crecer hacia la lengua o las mejillas. Los signos clínicos se presentan generalmente cuando el estado de la enfermedad es avanzado lo que hace que el pronóstico sea malo. Cuando la condición progresa, la masticación se hace dolorosa y comienzan a seleccionar alimentos blandos para su consumo, lo que conlleva a un menor desgaste y por lo tanto un mayor crecimiento dental por no poder roer. Signos clínicos: En los estados iniciales se puede apreciar una descarga ocular asociada a las raíces de los molares y premolares que crecen hacia la órbita. Los incisivos deben ser revisados regularmente por cualquier signo de sobrecrecimiento o desgaste desigual. Cuando la condición progresa hay un menor consumo del alimento, hay selección de alimento a los más blandos por lo cual las heces se vuelven más suaves y redondas hasta que finalmente son escasas y pequeñas. Al disminuir el consumo de alimento hay una perdida de peso. Cuando los molares comienzan con sobrecrecimiento estos generan disconfort y dolor porque dañan la lengua y las mejillas, por lo tanto hay una salivación abundante lo que genera un pecho y miembros anteriores húmedos. La masticación se hace más difícil y con frecuencia hacen un sonido (chirrido) cuando tratan de comer. Puede haber dolor a la palpación de la maxila alrededor de los ojos asociado a las raíc es de los dientes superiores.
Diagnóstico: Los incisivos deben ser siempre chequeados en busca de signos de desgaste desigual. Molares y premolares se deben revisar con otoscopio o bajo sedación (ketamina 40 mg/kg + acepromacina 0,5 mg/kg). Esto último nos permite utilizar el abrebocas para roedores y los dilatadores de mejillas y si es necesario realizar el limado o recorte de premolares y molares. Además debe observarse la presencia de algún cuerpo extraño entre los dientes o cualquier otra infección que cause salivación ya que deben ser tratados adecuadamente. Radiografías de cráneo detallan el grado de crecimiento de las raíces tanto en la órbita y en la mandíbula. En los senos frontales puede aparecer una sustancia similar al pus. Los dientes pueden mostrar una separación de los huesos de la mandíbula. Los huesos mandibulares se pueden observar delgados y con aspecto de panal. Tratamiento: En estados iniciales los incisivos pueden ser recortados y se da abundante alimento duro para fomentar el roer y el desgaste de los dientes. Si los molares y premolares presentan picos y coronas alargadas, estas deben ser recortadas y limadas (pueden necesitar recorte cada 6 a 8 semanas). Se deben limpiar la gingiva y bolsas periodontales cuidadosamente con peróxido de hidrógeno al 2% o clorhexidina diluida. Si hay evidencia de infección periodontal se comienza con terapia antimicrobiana sistémica con antimicrobianos que sean eficaces contra anaerobios que predominan en las infecciones periodontales (Por ejemplo, penicilina G benzatínica 50.000 UI/kg SC cada 5 días). Se debe evitar la extracción de muelas salvo que se encuentren en mal estado o móviles. La extracción de muelas puede conducir a un crecimiento excesivo de la corona de los molares opuestos, debido a la falta de desgaste, y puede requerir reducciones de la corona más frecuentes. El manejo del dolor (por ejemplo, buprenorfina 0,03 – 0,05 mg/kg SC cada 8 horas, meloxicam 0,3 – 0,5 mg/kg PO, SC cada 12-24 horas) y convivir con condiciones tales como lipidosis hepática, cetosis, y el estreñimiento. A los animales en etapas avanzadas de la enfermedad dental, ofrecer alimentos fáciles de masticar (heno suave, hierba frondosa, pellets humedecido, y fórmulas "cuidados críticos" ofrecidas en un plato). Muchos animales requerirán a corto y largo plazo, apoyo nutricional después de un procedimiento dental. El pronóstico para chichillas con este diagnóstico depende de la gravedad de la enfermedad dental, condición general del animal, y el cumplimiento del dueño. Serán necesarios repetidos exámenes intraorales y tratamientos bajo anestesia general en diferentes intervalos, a menudo durante la toda la vida del animal, para el control de las complicaciones de la enfermedad dental y para mantener una calidad de vida aceptable del animal. Los objetivos de la terapia deben incluir la reducción de la infección periodontal y reducir el trauma a los tejidos que produce molestias y dolor. Recuperar o mantener la capacidad del animal para comer sin ayuda.
Trastornos oculares Epífora ("ojo húmedo") Es una condición común en las chinchillas, por lo general caracterizado por la descarga serosa unilateral, se humedece la zona de piel periocular generando alopecia periocular y dermatitis. Se produce por cuerpos extraños en el ojo (arena, henos de mala calidad) o cuando crece la parte apical de la corona de reserva delos molares y premolares superiores, haciendo compresión completa o
parcial del conducto nasolagrimal con la consiguiente obstrucción. A diferencia de los conejos, la obliteración del conducto nasolagrimal a nivel de la parte apical del incisivo superior es poco común en chinchillas. Por el tamaño muy pequeño del punto lagrimal, la visualización y la caterización del conducto lacrimal para el lavado es muy difícil y no es rutinario. La infección concurrente y la inflamación deben ser tratadas con antibióticos tópicos apropiados y antiinflamatorios no esteroidales. Si la enfermedad dental es responsable de la obstrucción del conducto nasolagrimal, la permeabilidad permanente del conducto nasolagrimal es difícil de recuperar, puesto que no hay tratamiento eficaz para la elongación apical de la corona de reserva. Conjuntivitis La conjuntivitis es común. La irritación por exceso de baño de arena, la ventilación inadecuada de la jaula, o por obstrucción del conducto nasolagrimal es a menudo la causa. Una variedad de las bacterias pueden causar conjuntivitis bacteriana primaria. Conjuntivitis causadas por Pseudomona aeruginosa pueden producir una infección localizada o una infección sistémica con signos de depresión, anorexia. Tinción con fluoresceína se realiza para descartar daños en la superficie de la córnea. Enviar un hisopo conjuntival para cultivo bacteriano y pruebas de sensibilidad a los antibióticos. El tratamiento incluye un lavado completo del saco conjuntival con solución fisiológica salina y la aplicación de un antibiótico tópico de amplio espectro (por ejemplo, gentamicina) que proporciona cobertura contra bacterias gram-negativas y multiresistentes. Se debe restringir el acceso a baños de arena hasta que la chinchilla este totalmente recuperada. El tratamiento con antibiótico sistémico y atención de apoyo son críticos para chinchillas que sufren de infección sistémica por Pseudomonas. Trastornos de la córnea Daño corneal y queratitis secundaria a trauma son hallazgos clínicos comunes, por lo general asociados con el blefaroespasmo, descarga ocular, y conjuntivitis. Debido a la gran superficie corneal se predispone a las chinchillas a trauma corneal. Los excesivos baños de arena, mala higiene de la arena para el baño y de la vivienda e inapropiado material de alojamiento deben considerarse como posible causas subyacentes. El diagnóstico es por tinción con fluoresceína de la superficie corneal. Descartar posibles causas no traumáticas subyacentes (por ejemplo, exoftalmos, triquiasis) para evitar que vuelva a ocurrir. El tratamiento de las lesiones agudas incluye la aplicación de formulaciones antibióticas oftálmicas. En los casos de úlceras crónicas que no sanan, considere desbridamiento de la córnea o keratotomia después de controlar cualquier posible infección bacteriana.
Trastornos del oído Signos clínicos causados por la otitis externa, media e interna pueden variar desde una descarga externa del canal auditivo, sacudir la cabeza, inclinación de cabeza, leve paresia facial y graves déficits neurológicos. La otitis externa es a menudo el resultado de un tímpano perforado secundario a otitis media.
Las radiografías del cráneo en proyección dorsoventral o, preferiblemente, tomografía computarizada (TC) se utilizan para el diagnóstico de otitis media. El examen externo del canal auditivo y la membrana timpánica con otoscopio puede revelar exudado purulento y la inflamación del conducto auditivo externo. Una variedad de bacterias pueden cultivarse desde el oído medio en chinchillas diagnosticadas con otitis media. Otitis media por P. aeruginosa generan secreción en el oído, conjuntivitis, signos neurológicos y muerte súbita debido a septicemia. El tratamiento de la otitis bacteriana media e interna sigue siendo un reto debido a la formación de biopelículas en el oído medio que puede reducir la eficacia de los antimicrobianos. Aislamiento bacteriano y pruebas de susceptibilidad antimicrobiana son críticos. Una forma de acceder al oído medio en forma poco invasiva es a través del techo dorsal de la bulla timpánica, es un procedimiento quirúrgico común que se utiliza para la investigación de enfermedades humanas otológicas. Esta técnica puede ser utilizada en un entorno clínico para el muestreo estéril. La selección antibiótica debe basarse en la susceptibilidad de los organismos aislados y el potencial de los fármacos disponibles para eliminar eficazmente bacterias del oído medio. Fluoroquinolonas y cloranfenicol para el tratamiento de la otitis media en chinchillas se describen en la literatura. La azitromicina (30 mg/kg PO cada 24 horas) alcanza los niveles tisulares lo suficientemente altos como para recrear las condiciones estériles dentro del oído.
Trastornos del sistema respiratorio La enfermedad respiratoria primaria es poco común. La neumonía bacteriana es una causa importante de mortalidad en las chinchillas criadas en granjas y sigue siendo significativa si la crianza es inadecuada (hacinamiento, ventilación inadecuada y falta de higiene).Organismos gram-negativos se han aislado de chinchillas diagnosticadas con pneumonia. Los signos clínicos son taquipnea, disnea, y, en casos graves, la respiración con la boca abierta. Los animales suelen tener una mala condición corporal y un pelaje pobre. Después de descartar otras causas, como por ejemplo insuficiencia cardiaca congestiva, iniciar la terapia antimicrobiana sistémica. Recomendaciones para el tratamiento incluyen terapia de oxígeno, antibióticos sistémicos, y nebulización con antimicrobianos (por ejemplo, gentamicina, tobramicina). Una vez que la disnea es evidente y el animal presenta una mala condición corporal, indicativos de enfermedad crónica, el pronóstico es de reservado a malo. La descarga nasal es relativamente rara en chinchillas, pero se asocia con la enfermedad dental, cuerpos extraños nasales, rinitis o enfermedades de las vías respiratorias bajas. Se debe tratar la causa base del problema. Neumonía recurrente y descarga nasal mucopurulenta se asocia con megaesófago.
Trastornos del aparato reproductor Endometritis y piometra Animales afectados se presentan con una historia de comienzo agudo de depresión y anorexia, con letargo leve o con cambios de comportamiento. Los signos clínicos que se presentan en la mayoría de los casos son vulva abierta y flujo vaginal. El flujo vaginal puede ser mucoide, mucopurulento o hemorrágico. Tinción de la zona anogenital puede ocurrir. Aumento de tamaño del útero puede ser evidente a la palpación abdominal. El diagnostico se basa en examen clínico,
radiografías y ultrasonido abdominal. La citología vaginal puede ser empleada para diferenciar la metritis de la descarga vaginal normal del estro. La ovariohisterectomia es el tratamiento de elección frente a estas patologías. En casos leves donde el ejemplar esta en buenas condiciones pueden emplease antibióticos. Distocia Los signos de distocia en chinchillas incluyen inquietud, chillidos, lamido constante de la región genital. El líquido alantoídeo o descarga mucoide-hemorrágica de la vagina se ve a menudo. Se asocia generalmente con un feto único de gran tamaño o mala presentación de uno o más fetos. Inercia uterina también se ha reportado como una causa de distocia. Se usan las radiografías para evaluar el número, el tamaño, y la posición del feto (os). En una distocia no complicada, la lubricación y una suave tracción del feto con un fórceps obstétrico felino puede corregir la condición. El tratamiento para la inercia uterina con oxitocina (0,5 – 1 UI/kg SC) y gluconato de calcio (25 – 50 mg/kg SC diluido). La intervención quirúrgica es imprescindible si la chinchilla lleva más de 4 horas en trabajo de parto. La reabsorción fetal, momificación, la retención y el aborto son comunes en chinchillas. La muerte fetal puede ser causada por una variedad de problemas infecciosos y no infecciosos. Reabsorción incompleta, retención, o fetos momificados puede permanecer en el útero durante períodos prolongados y pueden predisponer a la esterilidad y endometritis. Mientras las neoplasias en chinchillas son poco frecuentes, varios informes describen leiomiosarcomas uterinos. Trastornos del pene Anillo de pelo La acumulación de pelo ("anillo de piel"), esmegma o ambos alrededor de la base del glande del pene cuando está encerrado dentro del prepucio es común en las chinchillas. Se observa un lamido excesivo, un esfuerzo para orinar, disminución de la producción de orina, repetidamente se limpian el pene. El anillo de pelo con el tiempo puede detener la retracción del prepucio. En casos severos, el pene hinchado se encuentra asomado del prepucio, resultando en parafimosis. El estado además de ser doloroso, también puede causar constricción uretral y obstrucción urinaria aguda. El tratamiento incluye el retiro cuidadoso de cualquier acumulo de pelos o residuos del pene. Los ungüentos tópicos o geles se aplican para prevenir el secado del pene expuesto evertido del prepucio. Para los casos con infección subyacente se debe realizar tratamiento antimicrobiano sistémico. La resolución completa de la infección y la inflamación es posible con tratamiento tópico y sistémico, pero puede requerir atención a largo plazo. Siempre examinar el pene de chinchillas machos durante la rutina física.
Trastornos del sistema urinario Los machos pueden desarrollar cálculos urinarios y urolitiasis. Análisis cuantitativo de los urolitos mostro que los cálculos estaban compuestos de carbonato de calcio en aproximadamente el 90% de los animales. Los animales afectados se presentan con hematuria, estranguria o anuria. Las radiografías abdominales muestran cálculos radiodensos en la vejiga y/o uretra. El tratamiento consiste en la remoción quirúrgica de los cálculos. Si es posible enviar muestras de frotis de orina o revestimiento de la vejiga para cultivo bacteriano y las pruebas de sensibilidad para descartar una infección subyacente del tracto urinario. Debido a que la causa subyacente de la formación de urolitos en chinchillas es desconocida es común la reaparición de urolitos en unas pocas semanas o meses después de la extirpación quirúrgica. Se recomienda un aumento del consumo de agua y la restricción del calcio en la dieta.
Trastornos neurológicos Convulsiones Encefalitis, septicemia, toxicosis, deficiencias en la dieta, hipocalcemia, hipoglucemia, insuficiencia hepática o renal, y golpe de calor son causas tanto de convulsiones generalizadas o focales. Los signos clínicos observados son hipersalivación, decúbito lateral, y la falta de respuesta. Aunque es poco frecuente en las chinchillas mascotas la encefalitis pueden ser por listeriosis (altamente susceptibles en criaderos), herpes simplex virus humanos o nematodiasis cerebroespinal. Listeria monocytogenes presenta una forma encefálica y entérica. Enfermedad peraguda, signos clínicos pueden ser ataxia, incoordinación y convulsiones. Golpe de calor El rango de temperatura ambiente adecuado es de 18,3 °C a 26,7 °C, con una humedad baja ambiente. La exposición a temperaturas más elevadas, especialmente en presencia de una alta humedad y la mala ventilación, puede dar lugar a un golpe de calor. Los animales afectados presentan al inicio inquietud y polidipsia. Además se observa ataxia, respiración rápida, membranas mucosas rojas, vasos prominentes del oído, y la saliva espesa y pegajosa. Si el cuadro avanza la respiración bucal se hace evidente, se congestionan los pulmones y aparece un fluido hemorrágico en boca y fosas nasales. El tratamiento incluye la manipulación cuidadosa para reducir el stress, enfriar el animal por medio de toallas frías y si el animal está en shock, la administración de líquidos por vía intravenosa. También se puede emplear corticoides como Dexametasona 2mg/kg IM, EV por periodos cortos. El pronóstico a largo plazo es reservado a malo ya que los animales a menudo se deterioran después de la primera mejora.
Envenenamiento por plomo El envenenamiento por plomo es raro en chinchillas. Causa convulsiones agudas, el diagnostico se basa en la medición de las concentraciones de plomo en la sangre. Las concentraciones de plomo en sangre de 25 mg/dl o superiores son indicativas de intoxicación por plomo. El tratamiento exitoso con calcio EDTA (30 mg/kg SC cada 12 horas) ha sido reportado.
Trastornos dermatológicos Dermatofitosis Dermatofitosis (tiña) es causada por Trichophyton mentagrophytes, aunque Microsporum canis y gypseum han sido reportados. Las chinchillas infectadas pueden tener pequeños parches escamosos de alopecia en la nariz, detrás de las orejas o en las patas delanteras. En casos avanzados las lesiones pueden aparecer en cualquier parte del cuerpo, se caracteriza por un área circunscrita con inflamación y formación de costra. Debido a que T. mentagrophytes no emite luz fluorescente, la luz ultravioleta no es útil para el diagnóstico. El diagnóstico requiere un examen microscópico del pelo y muestras de piel y un cultivo de dermatofitos. Para la terapia tópica, Clorhexidina al 2% / 2% shampoo de miconazol, o 0,2% enilconazol son eficaces. El tratamiento tópico elimina las esporas desde los ejes del pelo y el tratamiento sistémico en los folículos pilosos. Medicamentos sistémicos que se pueden utilizar son terbinafina (20 – 40 mg/kg PO cada 24 horas), itraconazol (5 – 10 mg/kg PO cada 24 horas), o ketoconazol (10 – 15 mg/kg PO cada 24 horas). La terbinafina es más efectiva que el itraconazol contra especies de Trichophyton en roedores. Continuar tratamiento hasta la obtención de dos cultivos de dermatofitos negativos. Masticación del pelaje (come pelos) Problema común en las chinchillas; hasta un 20% de los animales en los centros de cría pueden verse afectados. Se presenta comúnmente en las chinchillas que sufren de enfermedad dental. Muchas teorías sobre la causa de mascar piel han sido propuestas, incluyendo deficiencias en la dieta, infecciones por hongos y endoparásitos, desregulación hormonal, el estrés ambiental, el aburrimiento y predisposición genética. Actualmente, la teoría más aceptada es la que sugiere que la masticación de la piel es un comportamiento provocado por el estrés. Por lo tanto la hiperplasia adrenocortical y cambios histológicos la piel, que se correlacionan con un aumento de la secreción de cortisol, apoyan esta teoría. Los signos clínicos varían y los animales afectados pueden masticar su propia piel o la de su compañero, el resultando es una capa con un aspecto apolillado. Las zonas más afectadas se encuentran generalmente a lo largo de la zona lumbar, muslos y parte de la cola. Los animales que mastican su propio pelaje, la cabeza y extremidades generalmente no están afectados. Las áreas masticadas suelen estar cubiertas de pelo corto y de color más oscuro. Realizar una historia clínica y examen físico para descartar deficiencias en la dieta, la enfermedad dental y posibles factores de estrés ambientales. Una variedad de pruebas diagnósticas dermatológicas pueden ser consideradas, incluyendo cultivo de hongos, biopsia de piel. Obtención de un diagnóstico definitivo y la identificación de la causa subyacente primaria del comportamiento de mascar el pelaje puede ser difícil. Mientras masticar el pelaje puede ser molesto para el propietario, no es una amenaza significativa para la salud del animal. Considere el mejoramiento del medio ambiente y de la alimentación después de descartar causas infecciosas y subyacentes. Esto puede incluir la reducción
de posibles factores de estrés, como la manipulación frecuente, la luz y ruido molesto. Revise cuidadosamente la dinámica social, evitar el hacinamiento y separar animales afectados de compañeros de jaula dominantes o agresivos. Ofrecer múltiples cajas para dormir y lugares de alimentación para animales alojados en grupos. Recomendar enriquecimiento ambiental como el suministro de heno de alta calidad, ramas para masticación, así como un recinto estructurado y ejercicio regular. El tratamiento con antidepresivos como la fluoxetina clorhidrato (5 a 10 mg/kg PO cada 24 horas) se ha sugerido para otros roedores, pero no hay resultados clínicos informados en chinchillas. Desprendimiento de pelaje Soltar pelaje es un mecanismo de evasión de depredadores en chinchillas. Cuando un animal está luchando o son tratados con rudeza, se puede liberar una gran mancha de pelaje, lo que le permite escapar. Se caracteriza por ser una zona alopécica limpia, sin signos de inflamación, ni costras, ni escamas. El pelo puede requerir entre 6 a 8 meses para volver a crecer e igualarse al pelaje habitual, puede quedar de otro color el pelaje. Piel mate (opaco) Pelaje enmarañado se puede desarrollar en las chinchillas, sobre todo si se mantienen en ambientes de alta temperatura sobre los 26,7 ºC, ambientes húmedos o si son privados de baños de arena. Proporcionar baños de arena aproximadamente 15 minutos por día y reducir los niveles de humedad si es necesario.
Trastornos del pie Frecuentemente se afectan las patas traseras. Las lesiones pueden incluir eritema, hiperqueratosis y, menos comúnmente, infecciones profundas o lesiones abiertas de la cara plantar de los pies. Los posibles factores predisponentes son la obesidad, piso de las jaulas o sustrato inadecuados y la falta de higiene del recinto. En casos graves, la infección puede implicar los tendones y huesos. El tratamiento depende de la gravedad de la enfermedad. En los casos leves, mejoras del reciento y aplicaciones de ungüentos antibióticos y cicatrizantes son a menudo suficientes para resolver la hiperqueratosis y el eritema. Asesorar a los propietarios para reducir el peso corporal de los animales. En los casos graves, realizar el desbridamiento quirúrgico seguido por manejo de herida abierta y vendaje hasta que la curación sea completa.
Otras enfermedades Enfermedad cardiaca En chinchillas jóvenes presentadas a examen de rutina se pueden auscultar soplos cardiacos que van de leves a moderados. Hasta la fecha, informes de enfermedad cardiaca en chinchillas son escasos y la importancia de los soplos cardíacos en animales jóvenes, clínicamente sanos, sigue siendo desconocido. Cardiomiopatía, defecto septal ventricular, como insuficiencia de la válvula mitral y tricúspide han sido reportados. El uso de ecocardiografía para diferenciar soplos fisiológicos de soplos patológicos debe ser empleado. En la actualidad, el manejo clínico de enfermedad cardiaca en chinchillas es empírico. Lipidosis hepática y cetosis Las chinchillas con lipidosis hepática a menudo tienen antecedentes de anorexia y disminución de las fecas, en casos avanzados, el animal se puede encontrar deprimido y deshidratado. Se puede desarrollar hiperglucemia, cetonuria pronunciada, glucosuria y acidosis. El balance energético negativo de chinchillas anoréxicas lleva a una mayor movilización de los lípidos y la oxidación excesiva de ácidos grasos en los hepatocitos, promoviendo la cetogénesis hepática. El tratamiento debe corregir la causa inicial de la anorexia (por ejemplo, enfermedad dental, gastroenteritis), junto con la corrección de deficiencias de líquidos y la disponibilidad de apoyo nutricional. Medir cetonas urinarias repetidas veces es una herramienta sencilla y no invasiva para monitorizar la respuesta al tratamiento. Diabetes mellitus La diabetes mellitus es poco frecuente en chinchillas. El tratamiento es difícil y el pronóstico es malo. Cuando se presenta hay pérdida de peso, anorexia, polidipsia y poliuria e hiperglicemia, descartar las causas más comunes de la anorexia (por ejemplo, enfermedad dental, dolor). Muchas chinchillas presentan cetoacidosis e hiperglucémia secundaria a la anorexia. Se deben determinar los niveles de insulina en el suero para confirmar un diagnóstico de diabetes mellitus causada por insuficiencia pancreática endocrina. La hipoglucemia es siempre un gran riesgo en el tratamiento de la diabetes con insulina recombinante humana o insulina porcina. Cualquier intento de tratar la diabetes con insulina debe ser conservador y los aumentos dramáticos en la dosis de insulina deben ser evitarse. Tratamientos anexos deben estar encaminados a reducir la obesidad y dar una alimentación a base de una dieta que sea alta en proteínas y baja en grasas, y alta en hidratos de carbono complejos. Fracturas Las fracturas traumáticas de la tibia se observan con frecuencia. La tibia es un hueso largo y recto con poca cobertura de tejidos blandos. Es más largo que el fémur, el peroné es casi inexistente. Las fracturas tibiales son cortas en espiral o transversas. Los huesos son delgados y frágiles; reparación quirúrgica puede ser difícil y las complicaciones son comunes. Vendajes suaves, acolchados y tablillas laterales a veces no ofrecen la estabilidad adecuada para fracturas de la tibia. La
fijación externa o clavos intramedulares, solos o en combinación, se han recomendado para la estabilización quirúrgica de las fracturas tibiales en chinchillas. Se debe restringir el movimiento por lo cual se recomiendan recintos de un solo nivel y jaula sin barrotes. El pronóstico para las fracturas de tibia es reservado debido a que se presentan una serie de complicaciones después de la fijación quirúrgica estas son aflojamiento de los clavos en el hueso, infección, necrosis por falta de unión de la extremidad distal y automutilación. Considerar la amputación quirúrgica si la estabilización de la fractura falla o no está indicada. Las chinchillas por lo general se adaptan muy bien después de amputación. Fracturas de los miembros delanteros distales al codo pueden ser manejadas por coadaptación y ferulización externa; las chinchillas suelen tolerar bien este tratamiento. Neoplasia A pesar de la larga vida útil de chinchillas en comparación con otros roedores, las referencias de neoplasia en chinchillas son escasas. Sin embargo, tumores, tales como neuroblastoma, carcinoma, lipoma, hemangioma, fueron reportados en pieles de cría de chinchillas. Los informes individuales de casos de neoplasia han incluido dos casos de linfosarcoma.
Anestesia y analgesia Anestesia Las indicaciones más comunes para anestesia en chinchillas incluyen el diagnóstico y tratamiento de la enfermedad dental, esterilización, cesáreas, reparación de fracturas y para la toma de muestras sanguíneas. El riesgo de muerte relacionado con anestesia es alto y se habla de un 3,29%, los factores de riego asociados son: A A A A A
Hipotermia. Hipoglicemia. Enfermedades subclínicas o clínicas. Compromiso de la vía aérea. Inexperiencia del clínico frente a esta especie.
Un buen cuidado antes, durante y después de la anestesia, prestando particular atención a estos factores puede ayudar a reducir el riesgo que presentan estos animales. Preparación pre anestésica El paciente debe mantenerse en un ambiente tranquilo y seco a una temperatura entre los 19 a 21 °C, con material para su cama y en un lugar donde las especies depredadoras (Por ejemplo, gatos, perros, hurones, aves de presa) no estén presentes. Además, se debe tener cuidado para evitar causar estrés al paciente en su manipulación, por ejemplo, para el examen. Animales estresados tienen un alto tono simpático, que puede contrarrestar los efectos de los sedantes y los predisponen a vasoconstricción, exceso de trabajo del miocardio y arritmias.
Es importante realizar un examen físico y obtener una medición exacta de peso corporal. Auscultación del tórax se debe realizar, ya que se han descrito cardiomiopatía y enfermedad valvular en chinchillas. Realizar análisis de sangre es de importancia. En pacientes sanos, no más del 10 por ciento del volumen de sangre (2,9 ml de una chinchilla de 450 g) debería ser removido, ya que puede ser peligrosa la extracción mayor a este volumen. No se necesita que dejen de comer o tomar agua antes de la anestesia, ya que ellos no pueden vomitar. El ayuno puede incrementar los riesgos de disturbios gastrointestinales e hipoglucemia. La privación de agua puede causar deshidratación. Se recomienda la administración de fluidos vía endovenosa o subcutánea a un rango de 10 ml/kg hora. Es muy importante saber el peso exacto del animal para calcular las dosis precisas de medicación, ya que son muy pequeñas las cantidades empleadas y se administran vía jeringas de insulina o tuberculina. Si se va a emplear anestesia inhalatoria debe utilizarse atropina a dosis de 0,05 mg/kg, pero algunos autores indican que la atropina pone viscosas las secreciones por lo tanto su uso puede ser controversial. Para procedimientos quirúrgicos la anestesia inhalatoria es la más recomendada. Uno de los principales problemas en las cirugías es la perdida de calor durante el procedimiento, el cual se reduce poniendo al paciente en una superficie de calor. Medicación preanestésica La medicación preanestésica (incluyendo analgesia) puede producir un manejo más suave y menos estresante y una mejor recuperación, además produce un ahorro de drogas anestésicas y proporciona un plano más estable en la anestesia. Las ventajas y desventajas de los diferentes fármacos varían según el estado de salud del paciente y de la técnica anestésica elegida. En chinchillas enfermas administrar dosis bajas de fármacos, en el extremo inferior de los rangos sugeridos, que se pueden repetir si es necesario. Fármacos agonistas α2- adrenérgicos (xilacina) y acepromacina deben evitarse en los pacientes enfermos. La tasa de absorción en la circulación es variable después de la inyección subcutánea, la inyección intramuscular produce efectos más fiables, pero la masa muscular de chinchillas es pequeña. Algunos médicos recomiendan la administración de atropina o glicopirrolato para disminuir los volúmenes de las vías respiratorias y secreciones salivales formados durante anestesia en un intento de evitar el bloqueo de la vía aérea con tales secreciones. Sin embargo, la atropina aumenta la viscosidad de la secreción y por lo tanto su uso es controvertido. La administración de atropina también puede causar hipertensión indeseable y aumentó del trabajo del miocardio si se administra después de la administración de un agonista α2-adrenérgicos. Aerovía Es de vital importancia mantener la vía aérea permeable, independiente de si la intubación se utiliza. Las mascarillas deben ser pequeñas y se utiliza para maximizar la concentración de oxígeno inspirado, reducir al mínimo el espacio muerto y evitar la contaminación del entorno de trabajo con agentes anestésicos volátiles. Cuando el acceso oral es necesario, una pequeña máscara, o la abertura del sistema de respiración, se pueden utilizar en las fosas nasales, proporcionando un razonable sellado. Oxígeno suplementario debe siempre darse a lo largo de la anestesia, en vista de la alta
incidencia de las enfermedades crónicas, respiratorias subclínicas en chinchillas y la rapidez con la que la hipoxia se puede desarrollar debido a su alta tasa metabólica. La intubación endotraqueal La intubación de chinchillas es mucho más difícil que en los perros y gatos, y más difícil que en los conejos. La cavidad oral y la lengua son largas y estrechas, el orificio faríngeo dificulta la visualización de la laringe, y la glotis es pequeña. La intubación puede reducir críticamente el diámetro total de la vía aérea, lo que aumenta drásticamente la resistencia del flujo de gas (por ejemplo, una reducción de las vías respiratorias de 3 mm a 1 mm de diámetro aumenta la resistencia al flujo 80 veces). Los tubos varían en su espesor de pared de modo que el lumen de la vía aérea puede ser diferente para tubos de un diámetro externo similar. La técnica de la inducción anestésica utilizada debe proporcionar el tiempo suficiente para realizar el procedimiento de intubación, el cual dependerá de la capacidad técnica del veterinario y su experiencia. Inducciones con agentes volátiles, especialmente sin medicación preanestésica, puede proporcionar sólo un breve periodo de tiempo para intubar al paciente. Oxígeno debe ser proporcionado durante la intubación por los orificios nasales ya que las chinchillas son respiradores nasales obligados. Las ventajas de la intubación endotraqueal son: A A A A
Protección de las vías respiratorias. Permite el control de la vía aérea. Se permite la ventilación con presión positiva intermitente. Permite capnografía. Las desventajas son:
A A A A
La mayor habilidad técnica y equipo especializado requerido. Los tubos pueden ser fácilmente ocluidos, ya que son muy pequeños. Por ejemplo, ellos pueden llegar a ser doblados y ocluido por las secreciones mucosas. Tubos pequeños pueden aumentar la resistencia al flujo de gas y el trabajo de la respiración. La intubación puede aumentar el espacio muerto si el tubo es largo o si se utilizan conectores normales, el uso de conectores que minimicen el espacio muerto son aconsejables. Técnicas de intubación:
A A A
Técnica a ciegas La visualización directa Endoscópica asistida
Anestesia inhalatoria Los agentes inhalatorios son los más recomendables para los procedimientos quirúrgicos. Pueden ser administrados vía mascarilla y o en cámaras inductoras. Se emplea halotano o isofluorano. Los requisitos para los agentes volátiles pueden variar en gran medida, especialmente con el estado de salud del paciente y edad. La hipotermia puede causar una reducción dramática en la concentración del agente anestésico requerido. Muchos agentes anestésicos pueden causar hipotensión y depresión respiratoria, y por lo tanto anestesias excesivamente profundas deben evitarse. Es importante monitorizar al paciente de cerca y aplicar el juicio clínico. El circuito de ventilación (respiración) utilizado debe generar una resistencia mínima a la respiración. Para
proporcionar la anestesia se recomienda mediante un circuito abierto (de no recirculación) del tipo Jackson-Rees modificado. Dosis: para inducción se emplea 3% de concentración y para la mantención 1 a 2 %.
Anestesia inyectable Para la inspección o tratamiento dental este tipo de anestesia es recomendado. La combinación de ketamina + acepromacina provén una excelente restricción. Dosis: 40 mg/kg de ketamina y 0,5 mg/kg de acepromacina, pueden ser mezcladas en la misma jeringa para su administración intramuscular en el cuádriceps. Protocolos anestésicos inyectables Acepromacina 0,5 mg/kg + Ketamina 40 mg/kg IM Acepromacina 0,5 mg/kg + Ketamina 10 mg/kg y atropina 0,05 mg/kg IM Ketamina 40 mg/kg + Xilacina 2 mg/kg IM
Comentarios 5 Minutos de inducción, 45 a 60 minutos de anestesia quirúrgica, 2 a 5 horas de recuperación. Sedación pre anestésica para usar anestesia inhalatoria con isofluorano. 2 horas de anestesia quirúrgica, se puede revertir con yohimbina 2 mg/kg IM Ketamina 40 mg/kg + Diazepam 3 a 5 mg/kg IM Diazepam puede irritar el musculo, midazolam es mejor absorbido IM. Ketamina 10 a 15 mg/kg + Midazolam 0,5 Como pre anestésico para usar después mg/kg y atropina 0,05 mg/kg IM isofluorano. Tiletamina y Zolazepam 20 a 40 mg/kg IM La recuperación es muy prolongada.
Analgesia Como todos los mamíferos, las chinchillas poseen mecanismos neurofisiológicos necesarios para la detección de dolor. Las razones para postergar el manejo del dolor incluyen: A A
A A A
La dificultad de detectar signos de dolor. Protección contra las lesiones. Esto se refiere a la preocupación de que el alivio del dolor dará lugar a un uso excesivo de la extremidad o parte del cuerpo que ha sido operado. No hay evidencia de esto en cualquier especie, y el dolor es probable que conduzca a un trauma mayor por automutilación. La preocupación por los efectos secundarios. Un ejemplo de esto es el estasis gastrointestinal después del uso de opioides. La falta de licencias de los productos y la información sobre fármacos analgésicos en chinchillas Costo. Dado el pequeño tamaño de las chinchillas, los costos de la medicación analgésica serán pequeños. Un enfoque multimodal, por ejemplo, usando anestesia local, un (AINE) y un opioide.
La anestesia local Las dosis de los agentes anestésicos locales para chinchillas deben calcularse con cuidado debido a su pequeño tamaño corporal. Los anestésicos locales, se pueden utilizar simplemente para infiltrarse en un sitio quirúrgico. La lidocaína tiene un inicio de acción rápido que dura hasta dos horas. Las dosis no deben exceder de 4 a 5 mg/kg. La acción de bupivacaína tiene una duración de cuatro a seis horas; las dosis no deben exceder de 1 a 2 mg/kg. Por lo general es necesario diluir el agente con 0,9% solución de cloruro de sodio con el fin de permitir la distribución completa (por ejemplo, a lo largo de una incisión). Anti-inflamatorios no esteroidales Idealmente, los AINES se deben administrar antes de la cirugía para el máximo beneficio, ya que inhiben la cascada inflamatoria. Sin embargo, como las prostaglandinas son importante para la regulación del flujo sanguíneo renal y la anestesia comúnmente causa cierto grado de hipotensión, la administración concurrente de un AINE con anestesia podría comprometer la perfusión renal. Como no es posible medir la presión arterial en forma fácil con precisión, algunos médicos prefieren retener los AINES hasta el período de recuperación. La suspensión oral de meloxicam parece ser aceptable para chinchillas. Los opioides Los opioides disminuyen los requisitos para anestésicos inyectables y agentes anestésicos volátiles en la mayoría de las especies. Ellos son relativamente de corta duración en roedores. La buprenorfina, puede proporcionar analgesia durante aproximadamente seis a ocho horas. Después de una cirugía mayor o trauma, los opioides deben ser entregados durante un mínimo de 12 h oras, junto
con los AINE por lo menos durante uno a dos días. Para las cirugías menores o procedimientos cortos, la administración única de un AINE + opiáceos e idealmente con anestesia local, puede ser suficiente. Nueva evaluación del dolor es obligatorio en todos los casos, juzgar la necesidad de dosis más frecuentes y/o de repetición. Las preocupaciones sobre la disminución de la motilidad gastrointestinal cuando se utilizan opioides no parecen justificarse en chinchillas. En efecto, como puede ser el caso en otras especies, la entrega inadecuada de una analgesia puede afectar negativamente motilidad gastrointestinal. Drogas Butorfanol
Buprenorfina
Morfina
Dosis y Ruta 1 a 2 mg/kg SC 0,2 a 2 mg/kg SC o IM 0,5 a 2 mg/kg IM 0,05 mg/kg SC 0,01 a 0,05 mg/kg SC 0,05 a 0,1 mg/kg IM 2 a 5 mg/kg IM
Notas Útil en chinchillas debilitadas. Analgesia por corte periodo. Comúnmente usada, probablemente más útil por su largo efecto, entre 6 a 12 horas. Bajas dosis deben usarse inicialmente, efecto entre 2 a 4 horas.
Cirugías frecuentes Castración Tienen canales inguinales abiertos desde el nacimiento, y es importante en la cirugía cerrarlos para evitar la herniación del contenido abdominal después de la cirugía. La chinchilla es capaz de retraer completamente sus testículos en el abdomen, pero la presión suave sobre el abdomen debe devolverlos al escroto. Procedimiento quirúrgico: realizar una incisión escrotal bilateral, la castración se puede realizar generalmente mediante la técnica abierta o la cerrada. En la túnica se realiza una incisión, dejando al descubierto el testículo y el cordón espermático. Los vasos deferentes y el cordón espermático se ligan, como el ligamento testicular. La túnica se debe cerrar, y esto es seguido por el cierre del canal inguinal. La piel es generalmente cerrada con suturas interrumpidas simples de un material absorbible, por ejemplo, Vicryl, para evitar el estrés de la eliminación sutura. Ovario histerectomía Las indicaciones para ovario histerectomía incluyen distocia, prolapso uterino, piometra, y uterinas y/o masas ováricas. Una vez que el paciente ha sido anestesiado, sujete el abdomen y prepararse para la cirugía aséptica. Colocar al paciente en decúbito dorsal y cubrir apropiadamente. Hacer una incisión de 2 a 3 cm camino centrado entre el ombligo y el pubis. Hay por lo general poco tejido subcutáneo y la línea alba es amplia, por lo que es fácil de identificar. Identificar los ovarios y realizar dos ligaduras. El útero se puede ligar con una ligadura o con una ligadura de transfixión. El cierre de la pared del abdomen con sutura monofilamento absorbible 4-0 en la línea alba, en un patrón continuo simple, utilizando sutura absorbible 5-0 el subcutáneo. Si es necesario, utilizar adhesivo tisular, sutura no absorbible 4-0 o 5-0 o grapas de piel para aproximar la piel.
Conejos (Oryctolagus cuniculus) Clase dictada por Dr. Sebastián Crisosto Villagrán Oryctolagus cuniculus, es el típico conejo europeo, en el cual
nos vamos a basar. Conejos y roedores están clasificados en una misma clase llamada Glires, que incluye a lagomorfos y roedores. La diferencia es que los lagomorfos tienen 2 pares de incisivos superiores y los roedores tienen uno. Dentro del Orden lagomorpha existen 2 familias: a a
Ochotonidae: pikas. Leporidae: liebres y conejos. Las diferencias entre ellos es que las liebres tienen las orejas y los miembros más desarrollados y otra gran diferencia es cómo nacen las crías: Las crías de conejos son altriciales (sin pelo, ciegas y sordas) y las de liebres, precoces (lo mismo que pasa con los cuyes).
Diagrama que compara el cuerpo de un conejo y una liebre Varían en peso desde 1 kg o menos, hasta 7 kgs. Hay muchas razas reconocidas, buscar en: American rabbit breeders association (www.arba.net), British rabbit council (www.thebr.org) donde salen mas de 60 razas distintas de conejos En Chile hay 3 razas: a a a
Orejas caídas: crece más que las otras dos y es más dócil. Enano que no es tan enano como dicen. Cabeza de león que es un conejo peludo que tiene más pelo en la cabeza.
Orejas Caídas a a
Enano
Cabeza de león
Leporidae (labio superior partido). Animales de compañía desde la edad media; tan comunes como perros y gatos (hubo un boom en los `80 con los conejos angora, pero ahora no se sabe que paso).
Origen a a a a a a a
Glires – infraorden. Originario de Europa (península ibérica) y norte de áfrica. Asilvestrado en Chile (es un animal que se introdujo en el país y que ahí volvió a hacerse silvestre, no siendo nativo). Para producción y mascotas. Buenas mascotas, algunas responden al nombre, pésimos pacientes. Miembros posteriores desarrollados. Disposición de los ojos de forma tal que abarcan un grado de visión grande porque es animal presa.
Parámetros fisiológicos normales a a a a a a a
Tº: 38,5 – 39,5ºC. FC: 180 -250 lpm. FR: 30-60 rpm. Esperanza de vida promedio 5-8 años, pero hay registros de que viven hasta 15-18 años. Consumo de alimento: 50 g./kg/día. Consumo de agua: 100 ml/kg/día. Tránsito GI: 5-6 horas. Comen constantemente; estómago lleno siempre y por lo mismo defecan de forma regular.
Termorregulación a a a
Tº: 38,5 – 39,5ºC. Muy sensibles al calor y por lo mismo sufren de shock por calor; porque sus mecanismos de disipación de calor son muy ineficientes. Las orejas son indispensables para disipar calor o para ganar calor. Jamás se deben sujetar por las orejas.
Características generales a a a
a
Poseen pabellones auriculares muy desarrollados, que permiten ganar o perder calor con gran facilidad. Tienen un tercer párpado muy desarrollado que cubre el ojo mientras duermen o también cuando están anestesiados. Poseen un sistema esquelético extremadamente frágil y comp arado con los músculos, representan muy poco el peso corporal total, por lo mismo, frente a las malas sujeciones son comunes las fracturas L 6 – L 7 y luxaciones. Si uno los toma de adelante el conejo tiende a girarse y por eso es muy común fracturas a ese nivel, también al apretarlos en esa zona. Fórmula esquelética: C7, T 12-13, L7, S4, Co 15-16.
a a
La cavidad torácica es muy pequeña y en contraste poseen una gran cavidad abdominal, porque Los órganos abdominales son muy grandes, en especial el ciego. 3 lóbulos pulmonares izquierdos y 4 derechos.
Cavidad torácica y abdominal conejo
Nutrición a a
Herbívoros monogástricos de fermentación cecal (pH básico). Para la mantención de la motilidad gastrointestinal normal y el equilibrio de la microflora saprofita, el conejo debe consumir a lo menos un 18% FC, idealmente entre un 20-25% de la dieta debería ser FC.
Características generales – sistema digestivo a a a
Fórmula dentaria: Estómago glandular simple. Ciego enorme. El más grande del de los animales proporcionalmente hablando.
Cavidad oral La cavidad oral de los conejos es muy pequeña, por lo tanto es difícil de abordar y los dientes de los conejos están diseñados para una dieta herbívora alta en fibra, para eso tienen tres pares de incisivos, tienen dos arriba, unos grandes y unos más pequeños que se denominan “d ientes de bolsillo” y uno abajo (hacen función de tijera
para ir cortando el pasto). Después está el diastema, vienen los 3 premorales superiores, 2 inferiores y 3 y 3 molares. Incisivos y molares no tienen raíz y crecen de forma continua (2 mm. por semana). Crecen todos los dientes igual que los histricomorfos (cuyes y chinchillas). Fisiología digestiva a a a
a a a a a a
Los conejos utilizan los incisivos para cortar la hierba (vida libre) y la van masticando con los molares para obtener un tamaño de partícula adecuada para su posterior fermentación. Bolo alimenticio en estómago (pH 1-2). En intestino delgado, en el primer bolo alimenticio (en la primera pasada) generalmente no cumple mucha función el intestino delgado, pero cuando se ingiere el cecotrofo se reabsorben y digieren: proteínas, vitaminas y ácidos grasos. En colon se separan las partículas grandes del líquido. Partículas grandes no digeribles – afuera. Parte líquida (con partículas no fermentables) va a ciego a fermentación ( bacteroides spp), en otros herbívoros la mayoría de las bacterias son lactobacillus. Rompen la celulosa y las proteínas – AGV. 8 horas después, el ciego vacía contenido hacia el colon y en punto específico llamado fusus coli es donde se recubre de moco (mucina) dando origen a los cecotrofos. Son ingeridos sin masticar.
Heces a a
⁄ crotines (fecas que uno suele y debería ver, las típicas con formas de pellets). ⁄ cecotrofos; son reingeridos por el conejo directamente desde el ano, generalmente
temprano en la mañana y sirve para absorber nutrientes: vitamina B 12, niacina, riboflavina, ácido pantoténico, electrolitos, nitrógeno, proteína (ritmo circadiano desde la 3º semana de edad) y se da de por vida. Cecotrofia a
Los cecotrofos son más irregulares y pequeños que los crotines, están cubiertos por una capa de mucina y son eliminados en forma de racimos. Para que esto ocurra es indispensable una dieta rica en fibra.
a a a a
2-3 semanas; consumo de sólidos. Re digestión de nutrientes no ingeridos. Dietas altas en fibra son esenciales para la cecotrofia. Las dietas bajas en fibra aumentan el tiempo de retención cecal, llevando a hipomotilidad del intestino y disminuye la cantidad de cecotrofos producidos.
Alimentación
Dietas ricas en proteínas y bajas en fibra aumentan la producción de cecotrofos y reducen su consumo, mientras que las dietas ricas en fibra, aumentan la ingestión de cecotrofo. Típico que pasa en conejos de producción para aumentar la palatabilidad. Es típico que lleguen con diarrea a la consulta, que son cecotrofos que se van aplastando con el movimiento del animal, no se da antibiótico, se aumenta la FC y dar proquinetico porque es un problema de manejo.
Enterotoxemia Problema común en conejos, donde mueren bacterias saprófitas y aumentan patógenas (clostridium, e. coli ). Hay varios agentes que pueden causar este desbalance o disbiosis, y uno de ellos es la administración oral de antibióticos inadecuados (sobre todo por vía oral) y tiene relación sobre todo con antibióticos como las penicilinas. Medicamentos Enterotoxemia fatal: amoxicilina, amoxicilina + acido clavulánico, ampicilina (sobre todo oral), cefalosporinas (oral), clindamicina (riesgo altísimo), eritromicina (macrólido), lincomicina (alto riesgo), penicilina (sobre todo oral) se puede dar, pero en general se deben evitar. Evitar β – lactámicos (sobre todo oral) en general salvo excepciones (sífilis; perlas de tratamiento para abscesos). Antibióticos utilizados a a a a a a a a
Quinolonas; idealmente oral; ciprofloxacino 50 mg/kg PO c/8-12 horas. Enrofloxacino 5-10 mg/kg/12 horas/oral o parenteral. Cloranfenicol 50 mg/kg/PO/8-12 horas. Sulfa (metoxazol, diazina) + trimetoprim 30 mg/kg/PO, SC, IM/12 hrs. Menos seguros, pero utilizables metronidazol, gentamicina, penicilina procaínica, G benzatina. Metronidazol 20 mg/kg/PO/12 horas. Gentamicina 2,5 mg/kg/parenteral/8-12 horas. Penicilina procaínica 40.000 UI/kg/IM/24 horas x 5 a 7 días. Penicilina G benzatinza 42.000 a 84.000 UI/kg/SC x 2 a 7 días.
Siempre que hagan tratamiento con antibióticos, sea por lo que sea, hay que aumentar la cantidad de fibra en la dieta y repoblar con bacterias saprófitas, ya sea con cecotrofos de otros animales o probióticos. Condición corporal
Enterotoxemia Muchas veces tiene relación con el Insuficiente consumo de fibra , que lleva a un aumento del pH gástrico (3-7) y esto favorece colonización sobre todo de clostridium. Dietas poco balanceadas (baja en fibra, alta en proteína, alta en CHOS) tiene directa relación con la presentación de la enfermedad. Dietas altas en almidón, como la papa, generan cambio en el pH del ciego (almidón, papa, maíz, pan, baja fibra), además el exceso de carbohidratos provee un ambiente donde E. coli y algunas especies de clostridium pueden proliferar, junto con que el metabolismo de los CHOS aumenta la cantidad de glucosa que aporta una fuente de energía directa para la proliferación de clostridium. La glucosa es un subproducto del metabolismo de los carbohidratos, que se fermentan en el ciego, lo que aporta una fuente de energía para los clostridios La proteína en exceso aumenta la cantidad de amoniaco, y esto puede llevar a un cambio en el pH del ciego y a disbiosis. También puede ser causada por malas prácticas de higiene. Estrés, como bañar al conejo (sobre todo durante el destete). Como se ve es una enfermedad multifactorial que tiene que ver mucho con la dieta, pero esta asociada al mal manejo. Microrganismos inoculados por sí solos suelen no provocar las mismas consecuencias. pH neutralizado, reduce la protección saprófita. Prevención a a a a a
Evitar factores predisponentes. Cuidados adecuados y evitar estrés. La dieta debe contener un mínimo de 18 a 20% FC. Evitar cambios bruscos de dieta. No destetar antes de tiempo. Esto es súper importante sobre todo a nivel comercial, los productores tienden a vender conejos que no tiene mas de 3 semanas y es en esos animales donde hay mas problemas a nivel digestivo.
Alimentación a
a a a
a a
En el pellet de conejo hay que fijarse en el nivel de proteína, 16% máximo, generalmente el alimento para engorda tiene altos niveles de proteína y carbohidratos, además de presentar baja fibra para aumentar la palatabilidad (producción). Alfalfa (cubos); pasto, frutas (poca cantidad, ojala evitar), zanahorias, hojas verdes (anorexia – jugos), avena. Mazuri tiene un pellet con pasto Timothy, el doc no ha notado diferencias. Cuando se da pellet: ¼ taza conejos pequeños – ½ taza conejos grandes; 50 g./kg/día y evitar que sea la dieta base. Dietas basadas solo en pellet favorecen la presentación de éxtasis gastrointestinal. Agua 100 ml/kg/día (botellas). Tricobezoarios: predisposición por baja FC, sedentarismo, falta de material para roer.
