UNIVERSIDAD DE SAN MARTIN DE PORRES FACULTAD DE MEDICINA FILIAL NORTE DEPARTAMENTO DE CIENCIAS BÁSICAS FISIOLOGÍA GUIA DE PRÁCTICAS
COORDINADOR DE PRÁCTICAS : Dr. Fabricio Gamarra Castillo. PERSONAL DOCENTE : Dra. Susana Picón Pérez. Dr. Daniel Manay Guadalupe. Dr. Luis Angel Coaguila. Dr. Raúl Ortiz Regis. Dr. Wilson Becerra. Dra. Tatiana López.
2017
“……….La verdadera piedad, gloria y honor
del médico, consisten en mirar por la salud del pueblo; posponiendo a ella las inclinaciones y las utilidades propias…”””
HIPÓLITO UNANUE.
INDICE Unidad I : Práctica Nro 1: Medidas de Bioseguridad. -
Lineamientos Generales. Objetivo General del Laboratorio : Objetivos. Normas generales Informe de Prácticas. Requisitos básicos para asistir a las prácticas. Evaluación de las Prácticas de Fisiología.
Práctica Nro 2 : Fisiología Gastrointestinal I. EXPERIMENTO N° 1: DIGESTION DE PROTEINAS EXPERIMENTO N° 2: MASTICACIÓN Y DIGESTIÓN SALIVAL EN EL HUMANO. EXPERIMENTO N° 3: Sofware Physio Ex 6.0. Digestión del almidón por amilasas salivales.
Práctica Nro 3 :Fisiología Gastrointestinal II EXPERIMENTO N°1: TITULACION DE UNA MEZCLA DE UN ÁCIDO FUERTE Y UN ÁCIDO DÉBIL. EXPERIMENTO N°2: Sofware Physio Ex 6.0.Evaluación de la digestión por pepsina. EXPERIMENTO N°3:Sofware Physio Ex 6.0.Digestion de grasas por lipasas pancreáticas y bilis.
Práctica Nro 4: Fisiología Neurológica. EXPERIMENTO N° 1: MECANISMOS SENSORIALES Y AUDICIÓN EXPERIMENTO N° 2: EXPLORACIÓN DE LOS ÓRGANOS DE LOS SENTIDOS EXPERIMENTO N° 3: EXPLORACIÓN DE REFLEJOS EN EL HUMANO.
Práctica Nro 5: Fisiología Neumológica I EXPERIMENTO N° 1: ESPIROMETRÍA Y EVALUACION FUNCION PULMONAR. EXPERIMENTO N° 2: MOVIMIENTOS RESPIRATORIOS.
Practica Nro 6: Fisiología Neumológica II EXPERIMENTO N° 3: Sofware Physio Ex 6.0 Medición de los volúmenes respiratorios. EXPERIMENTO N° 4: Sofware Physio Ex 6.0 Espirometria Comparativa.
Unidad II : Práctica Nro 7 : Fisiología Hematológica. EXPERIMENTO N° 1: OSMOSIS Y PERMEABILIDAD EN EL ERITROCITO. EXPERIMENTO N° 2: Sofware Physio Ex 6.0 Determinación del hematocito. .
Práctica Nro 8 : Fisiología Inmunológica. EXPERIMENTO N° 1: TIPIFICACIÓN SANGUÍNEA. EXPERIMENTO N° 2: PRUEBAS CUTÁNEAS DE HIPERSENSIBILIDAD RETARDADA. EXPERIMENTO N° 3: Virtual La /The inmunology virtual lab. EL SISTEMA INMUNE.
Práctica Nro 9 :Fisiología Endocrinológica. EXPERIMENTO N° 1: PRUEBA DE TOLERANCIA ORAL A LA GLUCOSA EXPERIMENTO N° 2: Sofware Physio Ex 6.0 Efecto y velocidad metabólica de la tiroxina y TSH. EXPERIMENTO N° 3:Sofware Physio Ex 6.0 Curva estándar de glucosa y niveles de glucosa después inyección de insulina.
Unidad III : Práctica Nro 10 :Fisiología Renal. EXPERIMENTO N°1: DETERMINACIONES URINARIAS EXPERIMENTO N° 3: Sofware Physio Ex 6.0 Evaluación del flujo en la función glomerular.. EXPERIMENTO N° 4:Sofware Physio Ex 6.0 Evaluación de la presión en la filtración glomerular.
Práctica Nro 11 : Fisiología cardiaca I EXPERIMENTO N° 1: CONTRACCION MUSCULAR Y FUNCIÓN DEL MUSCULO CARDIACO EXPERIMENTO N° 2: ACTIVIDAD ELECTRICA DEL CORAZON HUMANO
Práctica Nro 12 :Fisiología cardiaca II EXPERIMENTO N° 1: Sofware Physio Ex 6.0. Dinámica cardiovascular y la presión en el flujo sanguíneo. EXPERIMENTO N° 2: Sofware Physio Ex 6.0. Efecto del radio del vaso en el flujo sanguíneo.
Práctica Nro 13 :Fisiología vascular I. EXPERIMENTO N° 1: EVALUCION DE LA PRESION ARTERIAL. EXPERIMENTO N°2: EVALUACIÓN DE LA FUNCIÓN ELÉCTRICA DEL CORAZÓN. EXPERIMENTO N°3: Virtual Rat System. Evaluación de la presión arterial, f recuencia cardiaca y fuerza contráctil.
Práctica Nro 14: Fisiología vascular II. Experimento N° 1: Sofware Physio Ex 6.0. Periodo refractario del musculo cardiaco. Experimento N° 2: Sofware Physio Ex 6.0.Fisiología cardiovascular de la temperatura en la rana simulada.
INTRODUCCION El presente manual permitirá al estudiante de la carrera de medicina orientarlo en su proceso de aprendizaje. Uno de los objetivos fundamentales del Programa de Fisiología, y de este manual en particular, es realizar e interpretar algunas pruebas que permitan al estudiante evaluar el funcionamiento de los sistemas orgánicos humanos. Aparte de ello, las prácticas buscan aplicar los conocimientos impartidos y adquiridos en el componente teórico de la presente asignatura. Mediante la estrategia de observación, el estudiante podrá afianzar sus aprendizajes, evaluar sus variables y analizar los resultados obtenidos. Las actividades prácticas permiten también la promoción del trabajo en equipo, la actitud participativa de los mismos y su actitud crítica hacia la investigación. El trabajo del laboratorio lo podemos definir como el procedimiento instruccional mediante el cual se determinan las causas, efectos, naturaleza o propiedades de cualquier fenómeno (social, psicológico o físico), ya sea a través de la experiencia real o simulada y la experimentación. Las prácticas de laboratorio “constituyen un factor importante en la adquisición activa de
conocimientos y en la formación del futuro médico, especialmente en cuanto a desarrollar en el estudiante, competencias que le ayuden a tener la capacidad de aplicar una mentalidad critica y un enfoque científico, preparándolo para enfrentar satisfactoriamente los problemas médicos y asimilar los nuevos avances de la medicina. Las prácticas de este manual han sido estructuradas de tal forma que permitan a los alumnos ponerse en contacto con la observación sistematizada, la experimentación y estimular su interés por todo lo relacionado por las ciencias fisiológicas.
PRACTICA NRO 1 Medidas de Bioseguridad. LINEAMIENTOS GENERALES En el laboratorio de prácticas el proceso de evaluación formativa cobra La mayor importancia pues es en este sitio donde tiene lugar la mayor parte del proceso formativo del alumno. La evaluación formativa se realizará a partir del conjunto de competencias, habilidades y destrezas, que se encuentran en la lista de cotejo que se encuentra al final de este párrafo. Es en torno a esta lista que se desarrollarán las prácticas, esto facilitará el proceso formativo y el de evaluación. La evaluación formativa requiere de una etapa previa de entrenamiento y se ha escogido el método más sencillo y concreto para llevarla a cabo. Este consiste en la utilización de una lista de cotejo (ver tabla 1) que facilitará al profesor y a los alumnos el proceso de evaluación. Habrá tres sesiones de evaluación a lo largo del curso. La primera al término de la primera Unidad Temática (Fisiología Celular y del Sistema Nervioso), la segunda al término de la Unidad Temática II (Fisiología Cardiovascular, Respiratoria y Renal) y la tercera al final del curso, al terminar la Unidad Temática III (Fisiología Endocrina y Digestiva). La evaluación de cada práctica se llevará a cabo de acuerdo con la siguiente tabla que incluye las competencias, las habilidades y las destrezas que se deben obtener y las sugerencias de evaluación.
OBJETIVO GENERAL DEL LABORATORIO Propiciar la integración de los conocimientos teórico-prácticos en Ciencias Fisiológicas a través de la ejecución y análisis de prácticas sistematizadas aplicando la observación sistematizada y la experimentación.
OBJETIVOS .-Presentar a los estudiantes del quinto semestre de la carrera de medicina una guía de desarrollo para cada actividad práctica en el laboratorio docente. .-Plantear problemas prácticos que se deben resolver integrando los conocimientos de Fisiología. .-Buscar que el estudiante desarrolle un pensamiento estructurado integrando el conocimiento práctico con el conocimiento teórico. .-Fomentar la observación de los diferentes fenómenos fisiológicos y su debida interpretación cuando éstos varían por distintos estímulos internos o externos.
NORMAS GENERALES Para obtener provecho en una práctica de laboratorio, es necesario seguir ciertas normas que disminuyan al máximo los errores y accidentes. No confiar nada a la memoria, anotar todas las observaciones en la bitácora. Una parte esencial de cualquier trabajo científico es la de consignar por escrito la descripción de lo que se ha hecho y observado en tal forma que permita a cualquiera persona, con cierto conocimiento del tema, repetir el trabajo realizado sin necesidad de guía especial. Las notas de sus observaciones deben ser breves, claras y deben realizarse inmediatamente después de cada paso del trabajo, deben conservarse con orden y limpieza; éstas deben ser una descripción completa y honesta de todo lo que el estudiante ha visto y echo . 1. Cualquier equipo que se utilice se manejará dé acuerdo con el instructivo y una vez utilizado se dejará en condiciones de ser manejado por otra persona. 2. Evitar la contaminación de los reactivos líquidos, para esto es necesario utilizar una pipeta para cada reactivo; En el caso de los reactivos sólidos se utilizará una espátula para cada reactivo. 3. Al manejar sustancias tóxicas hay que prestar particular importancia a la limpieza de manos, lugar de trabajo y recipientes utilizados. 4. Los reactivos para uso general estarán en lugares accesibles para todos. Cada reactivo deberá tener su etiqueta respectiva. 6. La limpieza del material de cristalería se debe realizar inmediatamente después de cada experimento. 7. Una vez realizada la práctica se recogerá todo el material, se pondrá en los contenedores y se llevará al almacén para su limpieza. 8. La obtención de los animales a utilizar en las prácticas será responsabilidad de los estudiantes.
CONTENIDO DEL INFORME DE LA PRÁCTICA Presentación de resultados Análisis Conclusiones Bibliografía. *NOTA: a continuación se presenta un modelo TABLA 1 (Requisitos para la presentación del informe del laboratorio), en el cual se describe paso a paso cada uno de los apartados. TABLA 1
Requisitos para la presentación del informe del Laboratorio El informe del laboratorio deberá contener los siguientes elementos:
REQUISITOS BÁSICOS PARA ASISTIR A LAS PRÁCTICAS
Estimada(o) estudiante, para asistir a las actividades prácticas, Ud debe: Usar bata blanca de laboratorio: Normas de Higiene y Seguridad Industrial. Asistir con zapatos cerrados: Normas de Higiene y Seguridad Industrial. Leer previamente y con detalle el manual correspondiente a cada actividad. Repasar los conocimientos teóricos facilitados por el docente instructor y consultar su texto guía. Seguir debidamente las instrucciones que se encuentran al comienzo de cada actividad y las que se indiquen en el laboratorio. No se permitirá la entrada al laboratorio docente a aquellos estudiantes que lleguen con 15 minutos de retraso. Gracias por su colaboración en este sentido: responsabilidad y ética primero. Cada grupo de práctica (A y B) será sub-dividido en 2 sub-grupos para lograr el máximo aprovechamiento del acto educativo. Cada sub-grupo tiene asignado un docente de laboratorio. El docente será responsable de impartir y evaluar las actividades académicas realizadas dentro del laboratorio por los alumnos de dicho sub-grupo mediante su participación y su desempeño en todas y cada una de las diferentes prácticas. No habrá cambios de alumnos(as) de grupo o entre sub-grupos de laboratorio que no sean realizados mediante el trámite administrativo correspondiente ante la Secretaría de Sección y en el período estipulado para tal fin.
MEDIDAS DE SEGURIDAD
Se prohíbe fumar y comer durante las prácticas de laboratorio. El uso de bata de laboratorio (o clínica) es indispensable ya que sirve de protección contra accidentes como: contacto con agentes biológicos, derrame de reactivos, etc. Al inicio y al final de cada sesión de laboratorio lavarse las manos. Al manejar sangre y líquidos corporales usar guantes. En las prácticas donde se manejen animales se deberá utilizar guantes gruesos. En caso de mordedura por algún animal favor de informar inmediatamente al maestro para tomar las medidas correspondientes. En caso de aspiración de cualquier líquido o reactivo enjuagar inmediatamente y avisar al profesor.
INSTRUCCIONES DIRIGIDA A LOS ESTUDIANTES PARA EL BUEN DESARROLLO DE LA PRÁCTICA Para el buen desempeño de las actividades docentes, en cada grupo se seleccionarán voluntarios que colaborarán en la donación y extracción de fluidos orgánicos (cuando sea requerido). Todos los estudiantes deberán participar de las actividades programadas para el cumplimiento de los objetivos propuestos.
En el Laboratorio: Los estudiantes encontrarán los materiales e insumos necesarios para desarrollar la actividad práctica. Cada subgrupo ocupará un mesón y sus integrantes observarán con atención las experiencias y maniobras del instructor(a). Anoten sus resultados en los espacios destinados para tal fin en este manual. Posterior a la culminación de las experiencias se establecerá la discusión correspondiente. Se les sugiere participar proactivamente.
EVALUACIÓN (Lista de cotejo) Al terminar cada práctica el profesor de laboratorio deberá evaluar a cada estudiante de acuerdo con su trabajo individual y por equipo. La siguiente es la tabla fuente elaborada a partir del Perfil Intermed io I . Incluye las contribuciones que realiza Fisiología para el logro de cada una de las ocho competencias, las habilidades y destrezas requeridas para cada competencia y las sugerencias para su evaluación.
PRÁCTICA NRO 2 FISIOLOGíA GASTROINTESTINAL I EXPERIMENTO N° 1: DIGESTIÓN DE PROTEINAS OBJETIVO GENERAL: Conocer los procesos de la digestión de proteínas.
OBJETIVOS ESPECIFICOS: Medir el la degradación con respecto al tiempo. Describir los tres tipos de hidrólisis mencionando las ventajas y desventajas de cada una de ellas
METODOLOGiA: Trabajo en mesa de Laboratorio, mediante experimentación y observación.
MATERIALES Matraz Erlen-Meyer. Baño de agua a temperatura constante. Pipetas. Placa de calor. Bureta Pinza para bureta Soporte universal Embudo
REACTIVOS: Tripsina al 0.1% en solución de pH 7.4 Solución de grenetina al 5%. En pH 7.4 Solución de Formol neutralizado. Solución alcohólica de Fenolftaleína. Hidróxido de sodio al 0.1N
PROCEDIMIENTO: 1. A un frasco esmerilado que contiene 50 ml de solución de grenetina al 5% en pH 7.4 el cual se encuentra en el Baño de agua s 37°C, añadir 10 ml de solución de Tripsina al 0.1 % NOTA. Solo se le agrega una sola vez la solución de Tripsina 2. Agita por rotación. Este se tomara como el tiempo cero. La mezcla no debe extraerse del baño de agua. 3. Pipetea 10 ml de la mezcla gelatina-Tripsina y pásalos a un matraz e inmediatamente colócalo en una placa de calor.
4. Caliente hasta que le contenido comience a hervir, retirar del calor y esperar que se enfríe a temperatura ambiente. 5. Añadir al mismo matraz 15 ml de solución de Formol neutralizado, mezclar por rotación y agregar 3 gotas de Fenolftaleína(indicador). 6. Titúlese la muestra con hidróxido de Sodio 0.1 N, hasta el vire adecuado, anote el gasto de ml de Hidróxido de Sodio. 7. Repetir los pasos 3, 4, 5 y 6. A los 30, 60, y 90 minutos.
RESULTADOS Calcular el gasto real, restando el gasto obtenido de hidróxido de sodio del tiempo cero del gasto de cada uno de los otros tiempos. Gasto Problema – Gasto del tiempo cero = Gasto Real Elabora una tabla con los gastos reales y tiempos. Elabora una gráfica de los gastos reales y tiempo.
EXPERIMENTO N° 2: MASTICACIÓN Y DIGESTIÓN SALIVAL EN EL HUMANO. OBJETIVO: Mediante esta práctica usted trabajará en el desarrollo de las siguientes competencias y su expresión como habilidades y destrezas que forman parte de las competencias del Perfil Intermedio I.
OBJETIVOS ESPECIFICOS: Para ello el ejercicio comienza con la presentación del siguiente Problema Médico.
METODOLOGiA: Trabajo en mesa de Laboratorio, mediante experimentación y observación. Caso Clìnic o Fisio lógico :
Paciente del sexo masculino de 36 años de edad que acude a la consulta externa refiriendo sequedad bucal, dificultad al habla y a la deglución. A la exploración se le encuentra con signos vitales dentro de límites normales. Boca con mucosa seca y con laceraciones en diversas áreas. Saliva escasa y espesa. En este caso:
1. ¿Identifica usted un problema médico? 2. ¿Puede formular una pregunta? 3. ¿Qué diagnóstico presuntivo puede proponer (hipótesis de trabajo)? 4. ¿Cómo resolverlo? Marco teórico La digestión es el proceso de transformación de los alimentos, previamente ingeridos, en sustancias más sencillas para ser absorbidos, ya que en términos generales la mucosa gastrointestinal no puede hacerlo cuando los alimentos están en su forma natural. El alimento se emplea para generar y reparar tejidos y para la obtención de energía. La digestión se lleva a cabo en el aparato digestivo o tracto gastrointestinal. El aparato digestivo, como un todo es un tubo con un solo sentido, con órganos accesorios como el hígado, la vesícula biliar y el páncreas, que asisten en el proceso químico involucrado en la digestión. La digestión comienza en la boca donde los alimentos se mastican y se mezclan con la saliva que contiene enzimas que inician el proceso químico de la digestión, entre ellas la enzima digestiva llamada amilasa salival que comienza a hidrolizar los polisacáridos complejos. La comida es comprimida y dirigida desde la boca hacia el esófago mediante la deglución, y del esófago al estómago, donde los alimentos son mezclados con ácido clorhídrico que desnaturaliza a las proteínas. Debido a los cambios de acidez (pH) en los distintos tramos del tubo digestivo, se activan o inactivan diferentes enzimas que descomponen los alimentos. El pepsinógeno interactúa con el HCL, éste último convierte al pepsinógeno en pepsina, la pepsina a su vez activa más pepsinógeno comenzando una reacción en cadena. La pepsina inicia la digestión química de las proteínas. Separa las cadenas polipeptídicas en polipéptidos más pequeños. Esta acción prepara las proteínas para su digestión posterior, la cual ocurre en el intestino delgado. El alimento, antes bolo alimenticio ahora se denomina quimo. En el intestino delgado, debido a la bilis secretada por el hígado, se favorece la emulsión de las grasas y gracias a
las lipasas de la secreción pancreática se produce su degradación a ácidos grasos y glicerol. Además, en el intestino delgado se secretan las enzimas tripsina y quimotripsina que rompen los polipéptidos de cadena corta que resultaron de la digestión por la pepsina. El alimento se absorbe en las microvellosidades del intestino delgado (Figura 1). Cada microvellosidad contiene diminutos capilares sanguíneos y un pequeño vaso linfático. Los nutrientes pasan primero a través del epitelio intestinal y después por las delgadas paredes del vaso linfático o capilares.
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A continuación se presenta el mapa conceptual del proceso.
Mapa conceptual
Materiales: Para la realización de esta práctica cuenta con lo siguiente: - ácido clorhídrico 1N. - solución amortiguadora de fosfatos (PBS) pH 7.4 - tripsina/colagenasa tipo IV - almidón - lugol (solución de I2/KI) - tubos de ensayo - bisturí - bilis de pollo (el alumno la traerá) - aceite - grenetina (el alumno la traerá) - antiácidos.
Procedimiento: Como primera maniobra, puede determinar la importancia del pH en la digestión enzimática. Para ello, coloque cuatro tubos de ensayo con solución de almidón, tres de ellos en PBS, el cuarto con HCl, agregue un par de gotas de la solución de lugol, observe. Posteriormente adicione volúmenes iguales de amilasa salival a dos de los tubos con PBS y al tubo con HCl, agregue al tubo restante un volumen de agua igual al agregado de amilasa a los otros tubos. Espere unos minutos, registre sus observaciones. Dig est ión d e pr ot eínas .
La gelatina es una mezcla coloidal, obtenida a partir del colágeno del tejido conectivo de animales. Coloque en 4 tubos de ensayo 1ml de una preparación de gelatina comercial o grenetina. Posterior a la solidificación adicione cantidades diferentes de colagenasa tipo IV y observe. Emuls ificación d e grasas.
Tome las vesículas biliares de pollo y con una jeringa extraiga la bilis. Tome tres tubos de ensayo y agregue a cada uno 1ml de agua y 1 ml de aceite de cocina. Al tubo 1 adicione 0.5 ml de bilis, al tubo 2 agregue 1 ml y al tubo 3 no agregue nada. Mezcle fuertemente los tres tubos y observe.
Resultados: Influencia del pH sobre la digestión enzimática de carbohidratos
Conclusiones
Cierre de la práctica Una condición relativamente rara es la Xerostomía, en la cual la producción de saliva está reducida o ausente. Las consecuencias funcionales de esta condición se reflejan en la integridad de la mucosa oral y del esmalte dental. Por otro lado, la actividad enzimática de las diferentes porciones del tubo digestivo se puede alterar por diversos padecimientos. ¿Lo realizado en esta práctica le permite resolver el caso planteado al principio de la misma?
EXPERIMENTO N° 3: Sofware Physio Ex 6.0. Evaluación del grado de digestión del almidón por la amilasa salivar. Sofware : http://wps.aw.com/bc_physioex_8_ap_lms/112/28698/7346750.cw/index.html Materiales y equipos: a) PhysioEx 6.0®. b) Computador. c) Sistema de proyección. d) Cuaderno de apuntes. e) Regla f) Lápices y/o lapiceros
Procedimiento: 1. Ingresar al software PhysioEx 6.0®. 2. Ingresar al Ejercicio 8: Procesos físicos y químicos de la digestión. 3. Leer detenidamente la introducción (overview). 4. Actividad 1. Evaluación del grado de digestión del almidón por la amilasa salivar:
Puntos claves teóricos: La amilasa salivar se produce en las glándulas salivares y se secreta hacia la boca. Para determinar si la digestión enzimática ocurrió, se debe observar cuanto producto y sustrato queda despúes de la reacción enzimática. El principal mecanismo de acción enzimática es la hidrólisis. En el experimento se deben preparar controles para poder comparar los efectos de la reacción. Los controles pueden ser positivos (se agregan todas las sustancias necesarias para la reacción) o negativos (no se agrega alguna de las sustancias). En los positivos se espera un resultado positivo, y viceversa. Si el resultado de los controles no es el esperado, algún tipo de contaminación (utensilios sucios con las sustancias que esperaba no agregar, reactivos vencidos, etc.) ocurre en la reacción. La digestión del almidón ocurre de la siguiente manera: ó+ + →()
Un ensayo enzimático es el método químico para detectar los productos de una reacción (por ejemplo: generando un color específico). El ensayo IKI detecta la presencia de almidón = color azul-negro. El ensayo de Benedict detecta la presencia de azúcares reducidos (glucosa o maltosa) = color naranja-café.
En este primer ejercicio vamos a calcular la digestión de almidón por amilasa salivar El laboratorio demostrativo se ve de la siguiente manera: Vamos a preparar las siguientes mezclas para el experimento.
Tubo Reactivo 1
Reactivo 2
Reactivo 3
Tratamiento
Tiempo
Temperatura
1 Amilasa
Almidon
Buffer pH 7,0
Hervir
60 min
37 C
2 Amilasa
Almidon
Buffer pH 7,1
Congelar
61 min
37 C
3 Amilasa
Almidon
Buffer pH 7,2
62 min
37 C
4 Amilasa
Agua Deshionizada
Buffer pH 7,3
63 min
37 C
5 Agua Deshionizada Almidon
Buffer pH 7,4
64 min
37 C
6 Agua Deshionizada Maltosa
Buffer pH 7,5
65 min
37 C
7 Amilasa
Almidon
Buffer pH 7,6
66 min
37 C
8 Amilasa
Almidon
Buffer pH 7,7
67 min
37 C
IKI
Benedicts
En el “Cabinet Assay” (Gabinete de pruebas) se encuentran los reactivos IKI y
Benedict, que van a añadir a cada uno de estos tubos. Van a anotar cual es el resultado de cada uno de estos test. Pueden ir pensando cuál va a ser el resultado predicho según si ocurre la reacción enzimática o no (dependiendo de la mezcla de reactivos, tratamiento y temperatura).
Objetivo: Enumerar las enzimas del sistema digestivo involucradas en la digestión de proteínas, grasas y carbohidratos; para indicar su lugar de origen; y para resumir las condiciones ambientales que promueven su funcionamiento óptimo.
Objetivos Especificos: Reconocer la variación entre los diferentes tipos de ensayos de enzimas. Para nombrar los productos finales de la digestión de proteínas, grasas y carbohidratos. Realizar las pruebas químicas apropiadas para determinar si la digestión de un alimento particular ha ocurrido. Para citar la función (es) de la bilis en el proceso digestivo. Discutir el posible papel de la temperatura y el pH en la regulación de la actividad enzimática. Definir enzima, catalizador, control, sustrato e hidrolasa. Explicar por qué la deglución es voluntaria y una actividad refleja. Discutir el papel de la lengua, la laringe y el esfínter gastroesofágico en la deglución.
Comparar y contrastar la segmentación y el peristaltismo como mecanismos de propulsión.
METODOLOGiA: Trabajo en mesa de Laboratorio, mediante simulación en software.
