PERCOBAAN VII (Senyawa Bio-Organik [Karbohidrat]

PERCOBAAN VII SENYAWA BIO-ORGANIK : KARBOHIDRAT

I.

Tujuan Percobaan

1.1. Mampu menjelaskan sifat umum dan sifat khusus karbohidrat. karbohidrat. 1.2. Mampu melakukan melakukan analisis kualitatif karbohidrat dalam suatu sampel.

II.

Tinjauan Pu Pustaka 2.1 Karboh Karbohidr idrat at

Karbohidra Karbohidratt adalah polihidroksi polihidroksi aldehid aldehid atau polihidrok polihidroksi si keton yang mempunyai rumus umum Cn(H 2O)m, dimana n sama dengan m atau atau keli kelipa patan tan bila bilang ngan an bulat bulat.. Karb Karboh ohid idra ratt meru merupa paka kan n senya senyawa wa-senyawa hasil fotosintesis tumbuhan yang berklorofil. 6CO2 + 6H2O

Sinar Matahari

C6(H2O) 6 + 6O2 glukosa

Karbohidrat merupakan sumber energi utama yang diperlukan oleh tubuh tubuh manusi manusia, a, bila bila kelebi kelebihan han karboh karbohidr idrat at maka maka karboh karbohidr idrat at akan akan disimpan sebagai glikogen dan asam lemak. (Respati, 1980)

2.2 2.2

Peng Penggo golo long ngan an Karb Karboi oidr drat at

II.2.1 II.2.1 Monosak Monosakarid aridaa Monos Monosaka akarid ridaa adalah adalah karboh karbohidr idrat at yang yang sederh sederhana ana,, moleku molekulny lnyaa tidak tidak dapat dapat diurai diuraikan kan.. Monosa Monosakar karida ida yang yang paling paling sederha sederhana na adalah adalah gliserol dehid dan dihidroksi aseton. HOCH 2OH

CH O

HC

C

OH

O

CH 2OH

CH 2OH

Gliserol dehid

dihidroksi aseton (Poedjiadi, 1994) 1

Berd Berdasa asark rkan an

radi radika kall

fung fungsin sinya ya,,

mono monosak sakari arida da

dibe dibeda daka kan n

menjadi: 1. Aldosa Aldosa adalah monosakarida yang mengandung gugus aldehid. Contoh : glukosa dan galaktosa 2. Ketosa Ketosa adalah monosakarida yang mengandung gugus keton. Contoh : fruktosa (Poedjiadi, 1994) Pembagian Monosakarida a. Gluk Gluko osa Sering Sering disebu disebutt dekstro dekstrosa sa karena karena mempun mempunyai yai sifat sifat dapat dapat memuta memutar r cahaya cahaya terpol terpolaris arisasi asi ke arah arah kanan. kanan. Banyak Banyak terdapa terdapatt di buah buah dan madu. H

O C

H

C

OH

HO

C

H

H

C

OH

H

C

OH

CH2 OH

2,3,4,5,6-pentahydroxyhexanal Chemical Formula: C 6H12O6 (Poedjiadi, 1994) b. Galaktosa Umumnya berikatan dengan glukosa dalam bentuk laktosa yaitu gula yang terdapat dalam susu. Galaktosa Galaktosa mempunyai rasa kurang kurang manis daripada glukosa dan kurang larut dalam air. Galaktosa mempunyai sifat memutar bidang cahaya terpolarisasi ke kanan.

2

Berd Berdasa asark rkan an

radi radika kall

fung fungsin sinya ya,,

mono monosak sakari arida da

dibe dibeda daka kan n

menjadi: 1. Aldosa Aldosa adalah monosakarida yang mengandung gugus aldehid. Contoh : glukosa dan galaktosa 2. Ketosa Ketosa adalah monosakarida yang mengandung gugus keton. Contoh : fruktosa (Poedjiadi, 1994) Pembagian Monosakarida a. Gluk Gluko osa Sering Sering disebu disebutt dekstro dekstrosa sa karena karena mempun mempunyai yai sifat sifat dapat dapat memuta memutar r cahaya cahaya terpol terpolaris arisasi asi ke arah arah kanan. kanan. Banyak Banyak terdapa terdapatt di buah buah dan madu. H

O C

H

C

OH

HO

C

H

H

C

OH

H

C

OH

CH2 OH

2,3,4,5,6-pentahydroxyhexanal Chemical Formula: C 6H12O6 (Poedjiadi, 1994) b. Galaktosa Umumnya berikatan dengan glukosa dalam bentuk laktosa yaitu gula yang terdapat dalam susu. Galaktosa Galaktosa mempunyai rasa kurang kurang manis daripada glukosa dan kurang larut dalam air. Galaktosa mempunyai sifat memutar bidang cahaya terpolarisasi ke kanan.

2

CHO

H

C

OH

HO

C

H

HO

C

H

H

C

OH

CH2 OH

2,3,4,5,6-pentahydroxyhexanal Chemical Formula: C 6H12O 6 (Poedjiadi, 1994) c. Fruk Frukto tosa sa Sering disebut levolusa karena memutar bidang polarisasi ke kiri. Frukto Fruktosa sa adalah adalah gula gula terman termanis, is, terdapa terdapatt dalam dalam buah buah dan madu, madu, maupun maupun dalam dalam sukrosa sukrosa.. Frukto Fruktosa sa mempun mempunyai yai sifat sifat seperti seperti keton keton karena mengandung gugus keton. Sifat-sifatnya : -

Memp Mempun unya yaii gugu guguss keto keton n (kar (karbo boni nil) l) beba bebass disa disamp mpin ing g gugu guguss hidroksil bebas

-

Dapat Dapat terh terhidr idrasi asi jika jika dipana dipanaska skan n bersam bersamaa asam asam miner mineral al kuat kuat

-

Dapat Dapat mered mereduks uksii fehlin fehling g dan mengha menghasilk silkan an endap endapan an merah merah bata. bata. (Kleinfelter, 1990) CH2 OH

C

O

HO

C

H

H

C

OH

H

C

OH

CH2 OH

1,3,4,5,6-pentahydroxyhexan-2-one Chemical Formula: C 6H12O6 (Poedjiadi, 1994) 3

II.2. II.2.2 2 Disak Disakari arida da Disakarida

terb erbent entuk

dari

dua

monosak sakarida

dengan

menghu menghubun bungka gkan n ikatan ikatan glikos glikosida ida dianta diantara ra anomet anometrik rik dari dari salah salah satu monosak monosakarid aridaa dengan dengan gugus gugus hidrok hidroksil sil monosak monosakarid aridaa lain. lain. Hidrol Hidrolisa isa disa disaka kari rida da

den dengan gan

pen pengaru garuh h

asam asam-a -asa sam m

min mineral eral

ence encerr

akan akan

menghasilkan monosakarida-monosakarida penyusun disakarida. Disakarida dapat di bagi menjadi 4, yaitu : a. Maltosa Maltosa adalah hasil reaksi glukosa dan glukosa, yang diperoleh sebagai hasil hidrolisi pati. Karbon anomerik dari unit glukosa yang kedua

berbe rbentuk

hemi emiaset setal, al,

fungsinya

berb erbeda

dalam

kesetim kesetimban bangan gan dengan dengan bentuk bentuk aldehi aldehid d rantai rantai terbuka terbuka,, karena karena itu maltose maltose memberikan memberikan hasil positif dengan uji tollens tollens dan reaksi lain yang yang seru serupa pa berl berlak aku u untu untuk k karb karbon on anom anomer erik ik pada pada gluk glukos osa. a. Strukturnya : CH2OH

CH2OH O

H

O

H

H OH

H H

OH

H

O

OH

H

H

OH

OH

H

OH

Chemical Formula: C15H28O11

(Fessenden, 1982) b. Laktosa Hidrol Hidrolisi isiss laktos laktosaa mengh menghasil asilkan kan glukos glukosaa dan galakt galaktosa osa dalam dalam jumlah yang sama. Kristal anomer α (pada unit glukosa) dibuat komersial dalam keju. Laktosa dapat mereduksi pereaksi fehling dan benediet pada pemanasan. (Hart, 1988)

4

Strukturnya : CH2OH

CH2OH O

OH H OH

O

H

H

H O

H

H

OH

H

H

H

OH

OH

H

OH

Struktur Laktosa Chemical Formula: C 16H30O11

(Poedjiadi, 1994) c. Sukrosa Tersusun oleh glukosa dan fruktosa dalam jumlah yang sama. Strukturnya : CH2OH O

H

H

CH2 OH

H O

H OH

H

H

OH

O

OH

CH2 OH OH

H

H

OH

Struktur Sukrosa Chemical Formula: C14H26O11

(Poedjiadi, 1994) Dari struktur ini maka sukrosa tidak akan mengalami metarotasi, hidrolisa menjadi glukosa dan fruktosa dapat terjadi oleh adanya asam kemudian diikuti dengan terjadi perubahan pemutaran bidang polarisasi cahaya, peristiwa ini dikenal sebagai inverse sukrosa. (Respati, 1982) d. Sellebiosa Desakarida yang diperoleh diperoleh dari hidrolisis parsial selulosa. Hidrolisis lebih lanjut menghasilkan glukosa, oleh karena itu selebrosa adalah isomer dari maltose. Struktur konformasi yang digambarkan pada selebrosa ialah satu cincin mengandung oksigen yang berurutan satu di belakang yang lainnya. 5

CH2 OH

CH 2 OH

O

O

OH

OH

OH O

OH

OH

OH

(2 R,5S )-6-(hydroxymethyl)-3,4,5,6-tetramethyl-5-((((2 R,5S )-3,4,5-trihydroxy-6(hydroxymethyl)-2,3,4,5,6-pentamethyltetrahydro-2 H -pyran-2yl)methoxy)methyl)tetrahydro-2 H -pyran-2,3,4-triol Chemical Formula: C 23H44O11

(Fessenden, 1982)

II.2.3 Polisakarida Polisakarida adalah senyawa yang tersusun dari molekul-molekul monosakarida yang dipersatukan dengan ikatan glukosida. Hidrolisis yang lengkap akan dapat dihasilkan monosakarida-monosakarida penyusun polisakarida. Polisakarida memenuhi 3 maksud dalam sistem kehidupan, yaitu : a. Sebagai bahan bangunan

: sellulosa dan kitin

b. Sebagai bahan makanan

: pati dan glikogen

c. Sebagai zat spesifik

: polisakarida heparin (Fessenden, 1982)

Pembagian polisakarida a. Sellulosa Merupakan senyawa organik yang paling melimpahdi bumi. Sellulosa membentuk komponen serat dari dinding sel tumbuhan. Molekul sellulosa merupakan rantai-rantai dan D-glukosa sebanyak 14000 satuan yang terdapat sebagai berkas-berkas mirip tali yang terikat satu sama lain oleh ikatan hidrogen. Sellulosa tidak mempunyai hemiasetal sehingga tidak dapat mengalami dioksidasi oleh reagen seperti tollens.

6

(Fessenden, 1982) Sellulosa

terdapat

dalam

tumbuhan

sebagai

bahan

pembentuk dinding sel. Contoh : serat kapas. Dalam tubuh kita, serat tidak dapat dicerna karena kita tidak mempunyai enzim yang dapat mengurangi sellulosa. (Poedjiadi, 1994) b. Pati (amilum) Merupakan polisakarida paling melimpah kedua. Pati dapat di pisahkan menjadi dua fraksi utama berdasarkan kelarutan bila di titurasi dengan air panas sekitar 20%. Pati adalah 20% amilosa (larut) dan 80% sisanya adalah amilopektin (tidak larut). 1) Amilosa Hidrolisis amilosa menghasilkan D-glukosa, hidrolisis parsial menghasilkan maltosa. Timbul warna biru tua dan timbul interaksi antar keduanya.

2) Amilopektin Mengandung 1000 satuan glukosa atau lebih permolekul hidrolisis amilopektin. 3) Glikogen Yaitu

polosakarida

yang

di

gunakan

sebagai

tempat

penyimpanan glukosa dalam sistem hewan. Struktur glikogen mirip amilopektin, bedanya untuk glikogen rantainya lebih bercabang daripada amilopektin. 4) Kitin

7

Polisakarida linear yang mengandung N-asetil-o-glukosamina terikat pada hidrolisis. Kitin menghasilkan 2-amina-2-deoksi-oglukosa (gugus asetat terlepas dalam tahap hidrolisis). Di alam, kitin terikat pada bahan bukan polisakarida (protein dan lipid). (Fessenden,1982)

2.3

Sifat-Sifat Umum Monosakarida

II.3.1 Reaksi Oksidasi Hasil oksidasi tergantung dari kuat tidaknya oksidator yang dipakai pada oksidasi aldosa dengan oksidator lemah, contoh : aqua bromata akan didapatkan asam hidroksi monokarboksilat yang disebut asam aldonat. (Sumardjo, 1997) II.3.2 Reaksi Reduksi Pada reaksi reduksi monosakarida dengan sedium amolgen berbentuk polialkohol yang namanya mendapat akhiran “atol”. CH O

mereduksi

CH 2OH

CH 2OH

CH 2OH

Reduksi asam aldonat dengan sedium amolgen akan menghasilkan asam yang namanya berakhiran uronat. Asam uronat mempunyai sebuah radikal formil pada ujung bagian atas dan radikal hidroksil di bagian tengah dan sebuah karboksil pada ujung bagian bawah. (Sumardjo, 1997) II.3.3 Reaksi Dehidrasi Heksosa dan beberapa pentose dapat mengalami proses dehidrasi yang dipengaruhi oleh asam mineral kuat pada pemanasan dan akan diperoleh dehidrasi pentose fulforal atau furaldehid. Sedangkan dehidrasi heksosa hidroksil metal fulforal/hidroksi metal fur aldehida. (Sumardjo, 1997)

8

2.4

Sifat-Sifat Umum Disakarida •

Maltosa dan laktosa dapat merduksi larutan fehling atau tollens.

•

Sukrosa tidak dapat mereduksi larutan fehling atau tollens.

•

Dapat dihidrolisis (pemecahan) menjadi molekul monosakarida penyusunnya:

- Maltosa

H O 2

glukosa + glukosa

- Laktosa

H O 2

glukosa + galaktosa

- Sukrosa

H O 2

glukosa + fruktosa (Sumardjo, 1997)

2.5

Sifat-Sifat Umum Polisakarida

Glikogen dapat mereduksi fehling dan apabila direaksikan dengan

•

iodine maka akan berubah menjadi merah coklat. Amilum tidak dapat mereduksi fehling dan apabila direaksikan

•

dengan iodine maka akan terbentuk amilum yang berwarna lain. (Gibson, 1950)

2.6

Uji Pengenalan Karbohidrat

II.6.1 Uji Fehling Pereaksi ini dapat direduksi selain karbohidrat yang mempunyai sifat mereduksi. Fehling ada 2 macam : -

Fehling A : larutan cuprisulfat

-

Fehling B : larutan NAOH, kNatartrat

Apabila dicampur dengan karbohidrat maka akan membentuk endapan Cu2O berwarna merah bata. (Holmi Comp, 1964) II.6.2 Uji Benedict Pereaksi ini berupa larutan yang mengandung cuprisulfat (CuSO4), Natrium Karbonat (NOCO3), dan Natrium sulfat (Na2SO4). Jika karbohidrat ditambah dengan benedict akan menyebabkan oksidasi 9

karbohidrat menjadi asam aklamat, sedangkan pereaksi benedict tereduksi dan menhasilkan endapan merah bata (Cu 2O). (Holmi Comp, 1964)

II.6.3 Uji Tollens Tollens merupakan suatu larutan basa dari ion kompleks perak amonia yang digunakan sebagai reagensia uji aldehid. Diperoleh dari larutan perak nitrat dengan ammonium hidroksida berlebihan. (Holmi Comp, 1964) II.6.4 Uji Asam Pikrat Asam pikrat jenuh berwarna kuning. Positif jika terjadi perubahan warna kuning menjadi merah. Uji ini untuk mengetahui sifat pereduksi karbohidrat. (Lucas, 1935) II.6.5 Uji Hidrolisis Uji hidrolisis untuk mengetahui/memisahkan penyusun dari disakarida atau polisakarida yang tersusun dari monosakarida-monosakarida. (Holmi Comp, 1964) II.6.6 Uji Molisch Sampel ditambah noftol dan H2SO4, jika sampel mengandung karbohidrat, akan terbentuk cincin merah pada bidang batas. (Holmi Comp, 1964) II.6.7 Uji Selliwanorf Pereaksi sel iwanorf adalah resolsinol (l,3) hidroksi-benzena dalam asam klorida. Apabila karbohidrat direaksikan dengan pereaksi sel iwanorf lalu dipanaskan dan membentuk warna merah anggur maka hal ini menunjukkan adanya fruktosa. (Holmi Camp, 1964)

10

II.6.8 Uji Kompleks Iodine-Kanji Perubahan warna setelah ditetesi iodine menjadi biru tua menunjukkan adanya karbohidrat. Hal ini terjadi karena molekul amilosa yang membentuk senyawa berupa larutan koloid (amilopeksin). (Holmi Comp, 1964)

2.7

Analisa Bahan

II.7.1 Glukosa Mudah larut dalam air, sukar larut dalam alcohol, memutar cahaya terpolarisasi ke kanan. (Basri, 1996)

II.7.2 Galaktosa Kurang larut dalam air, sukar larut dalam eter dan alcohol, kurang manis, memutar cahaya terpolarisasi ke kanan. (Basri, 1996) II.7.3 Fruktosa Rasa paling manis, memutar cahaya terpolarisasi ke kiri, dapat mereduksi peraksi fehling dan tollens. (Basri, 1996) II.7.4 Maltosa Mereduksi pereaksi benedict, fehling rasa manis, mengalami metarotasi gula pereduksi. (Basri, 1996) II.7.5 Laktosa Rasa kurang manis, tidak larut dalam alkohol dan eter. (Basri, 1996)

II.7.6 Sukrosa Sukar larut dalam eter dan alcohol, larut dalam air, tidak dapat mereduksi

fehling,

tidak

mempunyai

gugus

hemiasetol,

tidak

menunjukkan metarotasi. (Basri, 1996) 11

II.7.7 Air Suling Air yang diperoleh dari pengembangan uap air melalui proses penguapan. Tidak berwarna, bersifat polar, pelarut organik yang baik. (Amirudin, 1993) II.7.8 Iodine Sukar larut dalam air, mudah larut dalam klorofom astal, larut dalam minyak gliserol. (Amirudin, 1993) II.7.9 Madu Madu lebah sebagian besar mengandung gula inverse. Gula inverse banyak digunakan untuk es krim dan permen. Gula inverse rasanya paling manis dari sakarida lainnya. (Amirudin, 1993) II.7.10 Sirup Sirup glukosa yaitu larutan glukosa yang sangat pekat, seningga mempunyai viskosilas/kekentalan yang tinggi, didapat dari amilum melalui proses hirolisis dengan asam. (Basri, 1996) II.7.11 NaOH Larut dalam air dan etanol, tidak larut dalam eter, sebagai basa untuk membuat sabun dan kertas. (Basri, 1996) II.7.12 Pereaksi Fehling Pereaksi ini terdiri atas campuran larutan tembaga sulfat, kalium natrium tantriat dan natrium hidroksida. Larutan fehling A adalah larutan CuSO4 dalam air, larutan B adalah larutan garam KNa tartriat dan NaOH dalam air. (Pudjaatmaka, 1999) II.7.13 Pereaksi Molisch Terdiri atas larutan α-naftol dan asam sulfat, bereaksi positif dengan karbohidrat jika mengahsilkan warna merah. (Pudjaatmaka, 1999) II.7.14 H2SO4 12

Bersifat higroskopis, dalam larutan cair bersifat asam kuat, dalam keadaan pekat bersifat oksidator dan zat pendehidrasi. (Sumardjo, 1997) II.7.15 Amilum Suatu polisakarida sebagai hasil polimersi alam dari molekul kecil karbohidrat dengan rumus C 6H10O5, sebagai butiran dalam berbagai ukuran dan menjadi cirri dari sel tumbuhan. (Sumardjo, 1997) II.7.16 Benedict Berupa larutan yang mengandung cuprisulfat, natrium karbonat dan natrium sitrat. Jika direaksikan dengan aldehid dan dipanaskan akan mengendap menjadi Cu 2O. (Sumardjo, 1997) II.7.17 Pereaksi Tollens Jika direaksikan dengan monosakarida yang mengandung gugus aldehid akan mengahsilkan cermin perak. Pereaksi tollens dibuat dengan mencampurkan larutan perak nitrat dan natrium hidroksida. (Amirudin, 1993) II.7.18 HNO3 Merupakan asam anorganik, zat cair tidak berwarna, bersifat korosit dan oksidator kuat. (Amirudin, 1993) II.7.19 Pereaksi Sel iwanorf Pereaksi sel iwanorf apabila direaksikan dengan karbohidrat lalu dipanaskan akan terbentuk warna merah anggur. (Amirudin, 1993) II.7.20 Asam Pikrat Rasa pahit, sukar larut dalam air, larut dalam alcohol, eter dan zat pelarut organic lain. Reaksi dengan logam-logam membentuk garam pikrat. (Pudjaatmaka, 1999) 13

II.7.21 Etanol Cairan jenuh tek berwarna, mudah terbakar, mudah bercampur dengan air. Rumus kimia C2H5OH digunakan sebagai pelarut, bahan bakar, antiseptic (alcohol 70%), bahan minuman keras, dan juga sebagai bahan mentah dalam beberapa industry kimia. (Basri, 1996) II.7.22 Na2CO3 Menyebabkan iritasi kulit, menyebabkan gangguan kelenjar lendir. (Basri, 1996)

III.Metode percobaan 3.1 Alat

1. Tabung reaksi

6. kertas saring

2. Gelas ukur

7. Bunsen&kaki tiga

3. Pengaduk

8. kaca arloji

4. Penjepit

9. pipet tetes

5. Gelas beker

3.2 Bahan

1. glukosa

8. air suling

15. H2SO4

2. pereaksi asam pikrat

9.

16. HCl

3. Galaktosa

10. HNO3

17. NaOH

4. Pereaksi sel iwanorf

11. Na2CO3

18. pereaksi tollens

5. Fruktosa

12. pereaksi fehling

19. pereaksi molish

6. Maltose

13. pereaksi benedict

20. Sukrosa

7. Etanol

14. Kanji

21. sirup

madu

3.3 Gambar alat

14

- Tabung reaksi

- penjepit

- Bunsen&kaki tiga

- gelas ukur

- gelas beker

- kaca arloji

3.4 Skema kerja

3.4.1 Uji Kelarutan a. Uji dengan Aquadest

15

- pengaduk

- kertas saring

- pipet tetes

Glukosa

Fruktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan 10 mL H 2O


Penutupan dan penggoyangan Pengamatan kelarutan

Penutupan dan penggoyangan Pengamatan kelarutan Hasil

Hasil Laktosa

Sukrosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi





Hasil

Hasil

Kanji

Maltosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi





Hasil

Hasil

b. Uji dengan Etanol 25% Glukosa

Fruktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Pengamatan warna Penambahan 10 ML etanl 25% Penutuoan dan penggoyangan

Hasil


Hasil

16

Galaktosa

Sukrosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi



Hasil

Hasil

Kanji

Laktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi


Hasil


Hasil

3.4.2 Sifat mereduksi / fehling 1 mL Laktosa

1 mL Sukrosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan 5 mL fehling A & B Penggoyangan Pemanasan 10 menit Pengamatan


Hasil

Hasil

1 mL Glukosa

1 mL Fruktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi


Hasil

17


Hasil

1 mL Kanji

1 mL Madu

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi



Hasil

Hasil

1 mL Sirup 2% Tabung Reaksi Penambahan 5 mL fehling A & B Penggoyangan Pemanasan 10 menit Pengamatan

Hasil

3.4.3 Hidrolisa Disakarida dan Polisakarida a. Uji kompleks kanji-iodine 1 mL Kanji 2% Kaca arloji Penambahan 1 tetes larutan iodine encer

Hasil

a. Uji hidrolisi

18

b. Uji Hidrolisis 1 mL Kanji 2%

2 mL Kanji 2%

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan 2 tetes HCl pekat Penggojogan Pemanasan

Hasil I

Penambahan 2 tetes HCl pekat Penggojogan Pemanasan

Hasil I Penambahan 1 tetes iodine encer Peletakkan kertas lakmus Pengamatan

Hasil II

Penambahan 1 tetes iodine encer Peletakkan kertas lakmus Pengamatan

Hasil II

Penambahan tetes demi tetes NaOH 10% hingga larutan tepat basa Penambahan pereaksi fehling

Hasil III

Penambahan tetes demi tetes NaOH 10% hingga larutan tepat basa Penambahan pereaksi fehling

Hasil III

Pemanasan selama 10 menit Pengamatan

Pemanasan selama 10 menit Pengamatan

Hasil akhir

Hasil akhir

19

3.4.4 Tes Umum Terhadap Karbohidrat a. Uji Mollish 3 mL Glukosa

3 mL Fruktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan 2 tetes pereaksi molish Penuangan 3 mL H2SO4


Penggoyangan Pengamatan warna


Hasil

Hasil

3 mL Maltosa

3 mL Madu

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi





Hasil

Hasil

Potongan kertas saring Tabung Reaksi Penambahan 2 tetes pereaksi molish Penuangan 3 mL H2SO4 Penggoyangan Pengamatan warna

Hasil

20

3.4.5 Tes Karbohidrat Pereduksi b. Uji Benedict 1 mL Glukosa

1 mL Fruktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan 1 mL Benedict Penggoyangan Pengamatan


Hasil

Hasil

1 mL Maltosa

1 mL Laktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi



Hasil

Hasil

c. Uji Asam Pikrat 1 mL Maltosa

1 mL Glukosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan 1 mL asam pikrat Penambahan 1 mL Na2CO3


Pemanasan Pengamatan warna


Hasil

Hasil

21

1 mL Fruktosa

1 mL Laktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi





Hasil

Hasil

d. Uji Tollens 1 mL Fruktosa

1 mL Glukosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan pereaksi tollens Pemanasan + penggoyangan Pengamatan terbentuknya cermin perak

Penambahan pereaksi tollens Pemanasan + penggoyangan Pengamatan terbentuknya cermin perak

Hasil

Hasil

1 mL Laktosa

1 mL Maltosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan pereaksi tollens Pemanasan + penggoyangan Pengamatan terbentuknya cermin perak Penambahan HNO3 pekat

Hasil

Penambahan pereaksi tollens Pemanasan + penggoyangan Pengamatan terbentuknya cermin perak Penambahan HNO3 pekat

Hasil

22

e. Uji Selliwanorf 1 mL Glukosa

1 mL Fruktosa

Tabung Reaksi

Tabung Reaksi

Penambahan pereaksi selliwanorf

Penambahan pereaksi selliwanorf

Pemanasan + penggoyangan

Pemanasan + penggoyangan

Pengamatan warna

Pengamatan warna

Hasil

Hasil

IV. Data Pengamatan No. 1.

Jenis Uji Uji kelarutan

Hasil

Ket

a. Uji dengan H2O c. Glukosa

Warna larutan menjadi bening

+

d. Fruktosa


+

e. Maltose


+

f. Laktosa


+

g. Sukrosa


+

h. Kanji


+

c. Glukosa


+

d. Fruktosa


+

e. Maltose


+

f.

Laktosa


+

g. Sukrosa


+

h. Kanji

Warna larutan menjadi bening, terdapat

-

b. Uji dengan etanol 25 %

endapan putih

2.

Uji Fehling 23

a. 1 ml laktosa

Warna larutan dari biru setelah ditambah

+

fehling menjadi orange setelah dipanaskan ada endapan merah bata b. 1 ml glukosa


+

fehling menjadi orange setelah dipanaskan ada endapan merah bata c. 1 ml sukrosa


+

fehling menjadi orange setelah dipanaskan ada endapan merah bata d. 1 ml fruktosa

Warna larutan setelang ditambah fehling

-

menjadi biru tetapi setelah dipanaskan tidak berubah e. 1 ml kanji


+

fehling menjadi orange setelah dipanaskan ada endapan merah bata f.

1 ml madu


+

fehling menjadi orange setelah dipanaskan ada endapan merah bata g. 1 ml sirup 2%


+

fehling menjadi orange setelah dipanaskan ada endapan merah bata Hidrolisa

3.

disakarida dan polisakarida

a. Uji kompleks kanji iodine

Warna larutan menjadi biru tua

larutan kanji 1

+

% + 1 tetes iodine encer b. Uji hidrolisis 

2 mL

Larutan menjadi lebih keruh 24

dan 1 mL larutan kanji 2 % + 2 tetes HCL pekat, pemanasan Dita



Larutan menjadi berwarna biru, lakmus berwarna merah

mbah 1 tetes iodine encer, pengecekan dengan lakmus Dita



lakmus menjadi biru muda

mbah NaOH 10

Warna larutan tetap tidak terjadi

%

perubahan -

Dita



4.

Warna larutan menjadi bening dan kertas

mbah 5 mL fehling + dipanaskan Tes Umum Terhadap

Terbentuk cincin ungu

+

Karbohidrat


+

a. Uji Molisch


+


+


+

Terbentuk endapan merah bata

+


+


+


+

Gluk



osa Frukt



5.

osa Malt



ose Madu



50% 

Poton

25

gan kertas saring

Larutan berwarna kuning

-

Tes Karbohidrat

Larutang berwarna kuning kemerahan

+

Pereduksi


-

a. Uji Benedict


-

Warna larutan orange pucat terdapat

+

Gluk



osa Frukt



Warna larutan orange pucat terdapat

osa Malt



ose Lakto



endapan coklat +

endapan coklat Warna larutan kuning pucat

-

Warna larutan kuning pucat

-

Warna larutan tidak berwarna (bening)

-

Warna larutan coklat kemerahan

+

sa b. Uji asam pikrat Gluk



osa Frukt



osa Malt



ose Lakto



sa c. Uji Tollens Gluk



osa

Frukt



osa



Malt 26

ose Lakto



sa d. Uji selliwanorf Gluk



osa Frukt



osa V. Pembahasan 5.1 Uji Kelarutan

5.1.1 Uji dengan air Percobaan

ini

dimaksudkan

untuk

mengetahui

tingkat

kelarutan

karbohidrat di dalam air. Karbohidrat yang digunakan sebagai sampel yaitu glukosa, laktosa, fruktosa, maltosa, sukrosa, dan kanji. Langkah kerja yang dilakukan yaitu sampel diencerkan dengan aquades atau air suling untuk mengetahui kelarutannya, kemudian digojog. Tujuan dari penggojogan ini yaitu untuk mencampurkan agar karbohidrat bercampur sempurna dengan air. Hasil yang diperoleh adalah larutan menjadi lebih bening atau bernilai positif. Karbohidrat dapat larut dalam air, hal ini dikarenakan sifat karbohidrat sesuai prinsip “like dissolve like” yaitu senyawa polar akan melarutkan senyawa polar dan senyawa non polar akan melarutkan senyawa non polar. Karbohidrat merupakan larutan polar, dan air juga merupakan senyawa polar sehingga bila dicampur karbohidrat akan larut. Sebelum di larutkan, warna karbohidrat (glukosa, galaktosa, fruktosa, maltosa, manosa, laktosa, sukrosa) warna jernih kekuningan. Setelah di larutkan menjadi jernih karena adanya proses pengenceran yang menyebabkan molaritas dari zat terlarut berkurang, sehingga kepekatan warnanya juga berkurang dan larutan tampak jernih.

5.1.2 Uji dengan etanol 27

Selain air, etanol juga merupakan pelarut yang baik. Percobaan ini bertujuan

untuk

mengetahui

kelarutan

karbohidrat

dalam

etanol

25%.

Sebagaimana dalam uji kelarutan dengan air, sampel yang digunakan juga sama. Langkah yang dilakukan pun juga sama yaitu dengan menambahkan sampel dalam etanol 25% kemudian digojog. Hasil yang diperoleh menunjukkan hasil yang positif yaitu larutan menjadi lebih jernih kecuali larutan kanji karena kanji mengendap. Hal ini dikarenakan kanji terdiri atas dua macam polisaksarida yaitu amilosa dan amilopektin, molekul amilopektin lebih besar daripada amilosa sehingga amilopektin lebih susah larut. Karbohidrat larut dalam air dan etanol, perbedaan kelarutan antar keduanya yaitu etanol membutuhkan waktu yang lebih lama dan penggojogan yang lebih kuat. Hal ini dikarenakan kepolaran etanol lebih kecil dari kepolaran air. Hal ini sesuai juga dengan Daintith (1994) “karbohidrat lebih mudah larut dalam air daripada di larutkan ke dalam etanol karena tingkat kepolaran air lebih besar daripada etanol”.

5.2 Uji fehling

Untuk mengetahui sifat reduktor pada karbohidrat dapat dilakukan dengan uji fehling. Sampel yang digunakan dalam uji ini yaitu glukosa, fruktosa, laktosa, sirup, madu dan kanji. Cara kerja yang dilakukan yaitu dengan menambahkan perekasi fehling yang terdiri dari fehling A yaitu larutan CuSO 4 dan fehling B yang terdiri dari K Na-tartrat dan NaOH, kemudian dipanaskan sambil digoyang. Pemanasan dan penggoyangan yang dilakukan bertujuan untuk mempercepat terjadinya reaksi, dengan pemanasan maka suhu larutan akan naik, sehingga mengakibatkan gerakan-gerakan molekul dalam larutan semakin cepat dan terjadi tumbukan antar molekul yang semakin besar. Karbohidrat pereduksi akan diubah menjadi asam onat yang membentuk garam karena adanya basa, sedngkan pereduksi fehling akan mengalami reduksi sehingga tembaga (II) berubah menjadi tembaga (I).

28

Hasil yang diperoleh dari uji ini adalah positif yaitu terbentuk endapan merah bata. Endapan merah bata tersebut adalah endapan dari Cu 2O. Hasil positif uji fehling akan terbentuk endapan warna merah yang menunjukkan karbohidrat yang di uji mempunyai sifat pereduksi. Bahan-bahan yang di uji,seperti glukosa, kanji, laktosa, sirup, madu, terjadi perubahan warna dan terbentuk endapan warna merah bata, kecuali fruktosa. Fruktosa merupakan gugus ketosa yang tahan terhadap oksidator, sedangkan pada uji fehling akan di uji daya oksidasi dan reduksi dari suatu karbohidrat, sehingga fruktosa tidak mengalami perubahan warna.

Contoh reaksi antara glukosa dan pereaksi fehling :

O

H

O

C

H

C

OH

HO

ONa

H

H

Cu++

NaOH

H2O

t oC

HO

OH

H

H

OH

H

OH

H

OH

H

OH

CH2 OH

Cu2O

2 H+

CH 2OH

glukosa

(Sumardjo, 2009)

5.3 Uji Hidrolisa Disakarida dan Polisakarida

a.Uji Kompleks Kanji Iodine Tujuan dari uji ini adalah untuk mengetahui adanya karbohidrat yang terkandung pada kanji. Percobaan yang dilakukan pada uji ini adalah penambahan 10 tetes larutan kanji 1% yang diletakkan pada gelas arloji untuk mengetahui apakah ditambahkan 1 tetes larutan iodine encer. Di dalam pati dipisahkan menjadi dua fraksi utama yaitu amilosa dan amilopektin. Penambahan iodien 29

bertujuan untuk mengetahui adanya amilosa pada suatu sampel. Molekul amiloas membentuk spiral di sekitar molekul I 2 yang menyebabkan timbul warna biru tua dari antaraksi antara keduanya, yang menunjukkan hasil positif dari uji ini.

b.Uji Hidrolisis Tujuan dari uji ini adalah untuk mengetahui atau memisahkan penyusun dari

disakarida

atau

polisakarida

yang

tersusun

dari

monosakarida-

monosakaridanya. Percobaan yang dilakukan pada uji ini adalah dengan larutan kanji 2% ditambahkan dengan larutan HCl pekat, larutan menjadi agak keruh. Penambahan HCl pekat bertujuan untuk memecah rantai amilum/pati yang merupakan polisakarida menjadi monosakarida. Pati merupakan polimer linier dari glukosa sehingga hidrolisis sempurna dari pati akan menghasilkan glukosa. Langkah selanjutnya adalah pemanasan, tujuan dari pemanasan ini untuk mempercepat reaksi hidrolisis. Setelah dipanaskan, larutan ditambah 1 tetes iodine untuk menguji masih ada atau tidaknya amilosa. Hasilnya larutan menjadi berwarna biru tua yang menunjukkan bahwa sampel masih mengandung amilosa (belum terhidrolisis secara sempurna). Kemudian di uji dengan kertas lakmus, warna kertas menjadi merah yang menunjukkan larutan bersifat asam, kemudian dilakukan penambahan NaOH 10% untuk menetralkan sisa asam hingga larutan tepat basa, warna larutan menjadi bening. Pati belum terhidrolisis secar sempurna, hal ini dikuatkan oleh uji fehling yang hasilnya negatif yaitu warna larutan masih berwarna biru muda. CH2 OH O

H OH

CH 2OH

CH2OH H

O

H H OH

H

OH

O H

O

H

H2O, H +

H

O H

H

OH

H OH

H

H

HO

OH H

OH

Reaksi Hidrolisis

(Sumardjo, 2009)

5.4 Uji Molish 30

Tujuan dari uji molish adalah untuk mengidentifikasi adanya kandungan karbohidrat pada suatu sampel. Apabila sampel yang diuji dengan pereaksi molish membentuk cincin warna ungu, berarti sampel tersebut mengandung karbohidrat. Sampel yang dipakai yaitu glukosa, fruktosa, maltosa, madu 50% dan potongan kertas saring. Pada percobaan disiapkan 5 tabung reaksi. Masing-masing tabung diisi sampel kemudian

ditambah ditambah 3 ml H 2SO4 dan 2 tetes alfa naftol.

Penambahan H2SO4 ditujukan untuk mendehidrasi karbohidrat agar menjadi hidroksimetilfurfural, dan penambahan alfa naftol agar terbentuk senyawa khusus untuk polisakarida dan disakarida. Pada tabung-tabung tersebut terbentuk tiga lapisan. Lapisan atas berwarna bening, lapisan tengah terbentuk cincin warna ungu dan lapisan bawah berwarna hijau. Pengecualian pada tabung reaksi yang berisi madu 50% yang terbentuk dua lapisan. Lapisan atas berwarna ungu muda dan lapisan bawah berwarna ungu pekat. Semua sampel menunjukkan hasil yang positif, hal ini disebabkan karena karbohidrat mengalami hidrolisis oleh Asam Sulfat menjadi Hidroksil metil Furtenol yang kemudian terkondensasi membentuk senyawa kompleks berwarna ungu. Adanya penambahan H 2SO4 pada uji ini bertujuan untuk memprercepat reaksi (sebagai katalisator).

Contoh reaksi uji molish pada heksosa :

31

H C

C6H12O6

H 2SO 4 3 H 2O

H C

C

C

C

O

O CH2 OH H

Hidroksimetilfurfural

Heksosa OH H C C

O CH2 OH

H C C

C

H C

O

C

C

C

O

O CH2 OH

H


H C

alfa naftol

Ungu

OH

(Sumardjo, 2009)

5.5 Uji Benedict

Tujuan dari uji benedict adalah unuk membuktikan sifat pereduksi pada karbohidrat. Pada uji ini disiapkan 4 tabung, masing-masing tabung diisi dengan larutan glukosa, fruktosa, maltosa dan laktosa kemudian ditambahkan 1ml larutan pereaksi benedict, kemudian digojog lalu dipanaskan. Pereaksi benedict terdiri dari cuprisulfat, natrium karbonat, dan natrium sitrat. Glukosa akan mereduksi ion Cu2+ dari cupri sulfat menjadi ion Cu + yang kemudian mengendap sebagai Cu 2O. Adanya natrium karbonat dan natrium sitrat membuat pereaksi bersifat basa lemah. Endapan yang terbentuk dapat berwarna merah bata. Perlakuan penggojogan bertujuan agar larutan menjadi

homogen,

sedangkan adanya pemanasan supaya mempercepat reaksi. Hasil yang diperoleh dari semua tabung tersebut mengalami perubahan warna yang sama, yang awal warna larutan berwarna bening kebiruan menjadi larutan yang mempunyai endapan warna merah bata, hasil ini menunjukkan nilai uji positif. Terbentuknya endapan merah bata disebabkan oksidasi karbohidrat (gula pereduksi) menjadi Asam onat, sedangkan pereaksi benedict tereduksi dan menghasilkan endapan Cu2O (merah bata). Contoh reaksi antara glokosa dan pereaksi benedict :

32

O

H

O

C

OH C

H

OH

HO

H

H

Cu++

H 2O

to C

OH

HO

H

H

OH

H

OH

H

OH

H

OH

CH 2OH

Cu2O

2 H+

CH2 OH

glukosa

(Sumardjo, 2009)

5.6 Uji Asam pikrat

Tujuan dari uji benedict adalah unuk membuktikan sifat pereduksi pada karbohidrat. Pada uji ini dibutuhkan 4 tabung, masing-masing tabung diisi dengan larutan glukosa, fruktosa, maltosa dan laktosa kemudian sama sama ditambahkan larutan

Asam pikrat dan larutan HNO3 dan dipanaskan. Oksidasi karbohidrat

menjadi asam onat dan reduksi asam pikrat yang berwarna kuning menjadi asam pikramat yang berwarna merah. Hanya pada tabung yang berisi fruktosa yang mengalami perubahan warna dari larutan yang berwarna kuning menjadi berwarna agak kemerahan, sedangkan pada tabung yang lain tidak mengalami perubahan (hasil negatif). Perubahan warna yang terjdi disebabkan adanya asam pikrat mengalami reduksi menjadi asam pikramat. Pada uji ini terjadi hasil negatif kecuali pada tabung berisi fruktosa,ini mungkin dikarenakan reagen yang rusak atau dikarenakan praktikan yang melakukan kesalahan dalam melakukan percobaan,sehingga didapatkan hasil yang negatif.

Contoh reaksi antara glukosa dan asam pikrat : 33

O O

H

OH C

C OH H

OH

HO

O2N

H

H

OH

H

OH

O2N

NO 2 HO

to C

H

OH

OH

NO 2

NH 2

H

H

OH

H

OH

NO 2

Asam pikramat

asam pikrat

CH2 OH

CH 2OH

asam glioksilat

glukosa

(Soemardjo, 2009)

5.7 Uji Tollens

Uji tollens dilakukan dengan tujuan untuk mengetahui adanya gugus aldehid dalam karbohidrat. Sebagai sampel dari percobaan ini adalah glukosa, fruktosa, maltosa, dan laktosa. Percobaan dilakukan dengan penambahan pereaksi tollens pada sampel dengan perbandingan 1 : 1. Penambahan pereaksi tollens adalah sebagai oksidator yang akan direduksi

Setelah itu larutan dipanaskan

disertai penggoyangan yang bertujuan untuk mempercepat reaksi. Setelah dilakukan pemanasan larutan diamati terbentuknya endapan perak . Hasil yang diperoleh dari percobaan ini adalah hasil yang positif yaitu terbentuk endapan perak, kecuali maltosa.

Contoh reaksi antara glukosa dan pereaksi tollens :

34

O

H

COONH2

C H H

OH

OH

HO

H

H

OH

H

OH

Ag(NH3)2OH

HO

to C

H

H

OH

H

OH

Ag

H20

CH2 OH

CH 2OH

glukosa

(Soemardjo, 2009)

5.8 Uji Selliwanorf

Uji selliwanorf dilakukan untuk membedakan antara gula aldosa dan ketosa. Sampel dalam percobaan ini yaitu glukosa dan fruktosa, dan reagen yang digunakan adalah pereaksi selliwanorf, pereaksi selliwanorf adalah resorsinol dalam asam klorida encer. Asam klorida berfungsi untuk mendehidrasi glukosa dan resorsinol untuk reaksi kondensasi. Percobaan dilakukan dengan penambahan pereaksi

selliwanorf

dan

kemudian

dilakukan

pemanasan

sekaligus

penggoyangan. Pemanasan dan penggoyangan dimaksudkan untuk mempercepat reaksi dan agar larutan bercampur sempurna. Hasil yang diperoleh dari percobaan ini yaitu setelah ditambah pereaksi selliwanorf, fruktosa berwarna orange dan glukosa tetap bening, setelah pemanasan, warna larutan fruktosa semakin merah tetapi glukosa tetap bening. Hal ini menunjukkan nilai uji positif pada fruktosa dan negatif pada glukosa. Jadi fruktosa merupakan gula ketosa. Contoh reaksi antara glukosa dan selliwanorf :

35

CH2OH O HO

H

H

H C

HCl

C

3 H 2O

C

O CH 2OH

OH

H

H C C

O

H


OH CH2OH

Glukosa

Reaksi d ehidrasi glukosa O

H C

HO

H C

C

C

C

O CH2OH

O

O

OH

2

H2O O

H


Resorsinol

Merah CH 2OH

Reaksi kondensasi hidroksimetilfurfural dengan reso rsinol

(Soemardjo, 2009)

36

VI. Kesimpulan

6.1 Sifat Fisik Karbohidrat dapat larut dalam air dan etanol, karena sama-sama senyawa polar, kecuali kanji karena kanji tersusun dari amilopektin yang molekulnya besar. 6.2 Sifat Kimia

- Kanji merupakan karbohidrat yang mempunyai kandungan amilopektin yang dibuktikan dengan uji kanji iodine.

- Untuk menguraikan polisakarida menjadi monosakarida dilakukan uji hidrolisis.

- Untuk mengidentifikasi adanya karbohidrat dalam sampel, yang mengandung karbohidrat yaitu glukosa, fruktosa, maltosa, madu 50% dan potongan kertas saring dilakukan uji mollish

- Karbohidrat mempunyai sifat pereduksi.Hal ini dapat dibuktikan dalam uji dengan fehling,benedict, asam pikrat, dan pereaksi tollens.

- Untuk mengidentifikasi perbedaan gula ketosa dan aldosa dilakukan dengan uji selliwanorf.

37

DAFTAR PUSTAKA

Amirudin. 1993. Kamus Kimia Organik . Jakarta: Pusat Pembinaan dan Pengembangan Bahasa, DEPDIKBUD. Basri, Sarjoni. 1996. Kamus Kimia. Jakarta: Rineka Cipta. Daintith, John. 1994. Kamus Lengkap Kimia. Jakarta: PT. Erlangga. Fessenden, Ralph J. 1982. Organic Chemistry. USA: Willard Grant Press Publisher. Gibson, Charles. 1950. Essential Principles of Organic Chemistry. London: Chambridge of The University Press. Hart, Harold. 1988. Kimia Organik – Suatu Kuliah Singkat . Jakarta: Erlangga. Holmi Comp, George K. 1964. Selected Experimental Organic Chemistry. San Fransisco: William and Company. Kleinfelter. 1990. Kimia untuk Universitas. Jakarta: PT. Erlangga Lucas, Howard. 1935. Organic Chemistry. New York: American Book Company. Poedjiadi, Anna. 1994. Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta: UI Press. Pudjaatmaka. 1999. Kamus Kimia Organik . Jakarta: Depdikbud Respati. 1980. Dasar-Dasar Ilmu Kimia untuk Universitas. Jakarta: Aksara Baru. Sumardjo, Damin. 1997. Petunjuk Praktikum Kimia Dasar . Semarang: Undip Press. Sumardjo, Damin. 2009. Pengantar Kimia – Buku Panduan Kuliah Mahasiswa Kedokteran. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran.

38

PERCOBAAN VII SENYAWA BIO-ORGANIK : KARBOHIDRAT

Disusun Oleh: KELOMPOK VII 1. Arizal Dwijayanto

(J2C 009 053)

2. Hendra Dwipa Rifky.M

(J2C 009 054)

3. Fajar Budi Laksono

(J2C 009 055)

4. Lina Maharani

(J2C 009 056)

5. Puspita Rini

(J2C 009 057)

6. Aisha Kania Hanum

(J2C 009 058)

7. Ika Ayu Fajarwati

(J2C 009 059)

8. Dwi Susilo

(J2C 009 060)

9. Indri Yuliastuti

(J2C 009 061)

LABORATORIUM KIMIA DASAR JURUSAN KIMIA FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM UNIVERSITAS DIPONEGORO SEMARANG 2009

39

PERCOBAAN VII (Senyawa Bio-Organik [Karbohidrat]

Recommend Documents