Descripción: Un trabajo de revisión sobre las infecciones sistémicas para la asignatura Control Microbiológico de las Enfermedades Infecciosas en la ULPGC.
epidemiologia de las infecciones nosocomiales, programas de control de infecciones, vigilancia, forma de abordar los brotes, prevencionDescripción completa
Descripción completa
Virología
resumen de las enfermedades torch
Descripción: Infecciones de Vias Respiratorias Altas
Prof. Prof. Aurico Sousa Fonseca Cátedra de Microbiología Microbiología e Inmunología FCV-UCV
¿CUANDO? •
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Pronostico y tratamiento en clínica Certificación de zona libre Aplicación de tecnología: –
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Inseminación Artificial Transplante de embriones Transplantes de d e tejidos, tejidos , etc.
Programas de erradicación Control de zoonosis
ESPÉCIMEN •
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Tejido, liquido o secreción de interés Utilizar: Hisopados, jeringas o envases estériles Sangre para serología En ocasiones, medios de transporte especial
ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE •
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Envío inmediato Protegido Refrigerado (4ºC) Internacional: Hielo seco y bien protegido Historia clínica completa
PROCESAMIENTO INICIAL
LOS MÉTODOS DEBEN SER: •
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Rápidos Simples Sensibles Específicos Bajos costo
MÉTODOS DE DIAGNÓSTICOS
DETECCIÓN DEL VIRUS, SUS CONSTITUYENTES O SU ÁCIDO NUCLEICO
AISLAMIENTO •
Medios de cultivo: –
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Huevos embrionados Animales de laboratorio Cultivo de tejidos
Detección por Microsco Microscopía pía Electrónica y/o otras Pruebas serológicas Huevos embrionados
Cultivos celulares
Efecto citopático
Enfermedad Parálisis Encefalitis Muerte Otros efectos Animales de laborat laboratorio orio
Detección por IF y otras pruebas Identificación por pruebas serológicas con antisueros específicos
HUEVOS EMBRIONADOS •
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Embriones 5-14 días Muy utilizados en virus aviares Varias vías de inoculación
Inoculación corioalantoidea
Cavidad Amniótica
HUEVOS EMBRIONADOS
Cáscara Albumina
Membrana de la Cáscara Saco de aireo Inoculación Amniótica
Inoculación Saco Vitelino
Cavidad Alantoidea Saco Vitelino
Inoculación Alantoidea
Membrana Corioalantoidea
Animales •
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Poco útiles en diagnostico Manejo costoso y engorroso Se utilizan en investigación, investigación, producción de antisueros y anticuerpos monoclonales
Cultivo de Tejidos •
Ideales para: –
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Aislamiento viral Desarrollo de vacunas Estudio de replicación y morfología
Se emplean desde 1949
Cultivo de Tejidos
EVIDENCIA DEL CRECIMIENTO VIRAL
Detección del Virus •
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Microscopia Electrónica Técnicas Inmunológicas Técnicas de detección del genoma viral
Microscopia Electrónica •
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Método obvio de identificación Reconoce morfología típica Baja sensibilidad –
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107 viriones por ml
Solo laboratorios de referencias y de investigación.
Detección del Genoma
Hibridación •
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Se basa en el proceso natural de apareamiento apareamient o de bases complementarias Se forman estructuras estructuras de doble hebra de gran estabilidad que pueden ser: –
Híbridos homodúplex •
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ADN-ADN o ARN-ARN
Híbridos heterodúplex •
ADN-ARN
Amplificación del Genoma Viral •
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Método: Reacción Reacción en Cadena de la Polimerasa Polimer asa (PCR) Objetivo: Amplificar un gen o fragmentos de ADN presente en una muestraa sin purificación previa del muestr espécimen. Permite: – – – –
Detectar virus donde antes era imposible Detectar Altamente sensible y especifico. Utiliza cantidades mínimas de d e muestras Requiere porciones mínimas de genoma (< 100pb)
PCR
Serología Viral •
Detección del Virus a través de la Respuesta Inmune –
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Determinación indirecta de infección i nfección viral por determinación determinación de presencia de anticuerpos
Técnicas empleadas: – – – –
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Elisa Western inmunoblot Neutralización Neutralizac ión viral Hemaglutinación e inhibición de la hemaglutinación Inmunoflorescencia
