PA RA L A TO TOM MA DE MUESTRAS en c ef al o p at ía es p o n g i f o r m e b bovina
3ª e d i c ci ó ó n
Prefacio Desde el reconocimiento de la Encefalopatía Espongiforme Bovina en 1986, esta enfermedad se ha convertido en una amenaza potencial para los sistemas productivos de ganado bovino a nivel mundial. La vigilancia epidemiológica de la encefalopatía espongiforme bovina es una necesidad para los países que comercializan productos y subproductos de origen bovino a diferentes partes del mundo, teniendo que proteger su industria pecuaria para evitar posibles barreras no arancelarias en el comercio exterior, así como comprobar su inocuidad con respecto a esta enfermedad, salvaguardando la salud de los consumidores. Este manual es una guía para los médicos veterinarios, inspectores sanitarios en rastros y técnicos de campo, que participan en las actividades de vigilancia epidemiológica de la enfermedad, mediante la notificación y envío de muestras de bovinos. En esta tercera edición se incluye un capítulo sobre la estimación de la edad de los bovinos a través de la dentición, la guía de identificación de bovinos objetivo para el muestreo de EEB, los métodos para la obtención de la muestra idónea y el formato actualizado para el envío de muestras.
Prefacio Desde el reconocimiento de la Encefalopatía Espongiforme Bovina en 1986, esta enfermedad se ha convertido en una amenaza potencial para los sistemas productivos de ganado bovino a nivel mundial. La vigilancia epidemiológica de la encefalopatía espongiforme bovina es una necesidad para los países que comercializan productos y subproductos de origen bovino a diferentes partes del mundo, teniendo que proteger su industria pecuaria para evitar posibles barreras no arancelarias en el comercio exterior, así como comprobar su inocuidad con respecto a esta enfermedad, salvaguardando la salud de los consumidores. Este manual es una guía para los médicos veterinarios, inspectores sanitarios en rastros y técnicos de campo, que participan en las actividades de vigilancia epidemiológica de la enfermedad, mediante la notificación y envío de muestras de bovinos. En esta tercera edición se incluye un capítulo sobre la estimación de la edad de los bovinos a través de la dentición, la guía de identificación de bovinos objetivo para el muestreo de EEB, los métodos para la obtención de la muestra idónea y el formato actualizado para el envío de muestras.
Índice
Definición................................ Definición ............................................................... ............................................................. .............................. 1 Encefalopatías Espongiformes Transmisibles ................................. ....................................... ...... 1 Etiología............................ Etiología ............................................................ ............................................................... ................................... .... 1 Mecanismo de transmisión transmisión............................ ............................................................. ....................................... ...... 2 Periodo de incubación .................................. ..................................................................... ........................................ ..... 2 Signos clínicos .............................. ............................................................... ....................................................... ...................... 3 Vigilancia epidemiológica en México ............................... .................................................... ..................... 4 Población Poblac ión objetivo objetivo de la vigilancia vigilancia epidemiológica epidemiológica de EEB ...... ........... .......... ........ ... 4 Estimación de la edad de los bovinos .................................. ................................................... ................. 5 Medidas de bioseguridad y recomendaciones previas en la recolección de muestras encefálicas ..................................... .................................................... ............... 7 Obtención Obtenc ión del tallo cerebral cerebral en rastro (técnica (técnica de la cucharilla) cucharilla) ..... .......... ..... 9 Extracción completa completa del encéfalo en campo campo .................................. ....................................... ..... 13 Empaque y envío de muestras..................................... muestras............................................................ ....................... 17 Reportes de sospecha de enfermedad exótica y solicitud de información.............................. información ............................................................... .......................................................... ......................... 23 Formato para el envío de muestras muestras ................................... .................................................... ................. 24 Coordinaciones Regionales de la CPA CPA................................... ................................................. .............. 26
Definición La Encefalopatía Espongiforme Bovina (EEB) también conocida como “enfermedad de las vacas locas”, es una enfermedad no febril, crónica, degenerativa y fatal; que afecta al sistema nervioso central de los bovinos. Pertenece al grupo de enfermedades denominadas Espongiformes Transmisibles (EET), caracterizadas por:
G e n e r a l i d a d e s
Encefalopatías
Ser producidas por la forma patogénica de la proteína priónica (desprovistas de ácido nucleico). Presentar prolongados períodos de incubación (meses o años previo al inicio de signos clínicos). Ser de evolución lenta, progresiva y mortal. Producir degeneración del sistema nervioso central. Ausencia de lesiones macroscópicas. Causar un proceso de vacuolización en el tejido cerebral, que a la observación microscópica se aprecia en forma de esponja. No existir respuesta inmune.
Encefalopatías espongiformes transmisibles Entre estas enfermedades se encuentran clasificadas:
Scrapie (ovinos y caprinos). Encefalopatía Transmisible del Visón. Enfermedad Crónica Desgastante de los Cérvidos (ciervos y alces). Encefalopatía Espongiforme Felina. Encefalopatía Espongiforme Bovina.
En los humanos, se han podido identificar las siguientes EET:
Kuru. Enfermedad de Creutzfeldt-Jakob (CJD). Variante de la Enfermedad de Creutzfeldt-Jakob (vCJD). Síndrome de Gerstmann-Straussler-Scheinker (GSS). Insomnio Fatal Familiar (FFI).
Etiología La enfermedad es producida por una partícula infecciosa de naturaleza proteica denominada “prión”, carente de ADN, muy resistente al calor, a los rayos ultravioleta, a la radiación ionizante y a los desinfectantes químicos que habitualmente inactivan los virus. El agente no causa reacciones inflamatorias o inmunitarias identificables. 1
En la actualidad, no hay pruebas diagnósticas para detectar la enfermedad en seres vivos; sólo puede confirmarse la presencia de la enfermedad después de la muerte o sacrificio del animal, hasta seis meses antes de la manifestaciones clínicas mediante la detección del agente por medio de pruebas rápidas y a través de la identificación de las lesiones histopatológicas en el tejido cerebral, después del comienzo de los signos de la EEB.
Mecanismo de transmisión El prión se transmite cuando los bovinos consumen alimentos que contienen harinas de carne y hueso, elaboradas con tejidos procedentes de rumiantes infectados; sin que haya evidencia de que se transmita horizontalmente por contacto directo, y la transmisión vertical de madres infectadas a sus crías, no tiene significancia epidemiológica. Los principales tejidos capaces de transmitir la enfermedad conocidos como materiales de riesgo especificado (MRE) son aquellos tejidos que representan un alto riesgo para los humanos y los animales, por haber estado expuestos al prión y porque en algún momento durante el período de incubación de la enfermedad, llegan a infectarse; entre ellos se encuentran:
Cerebro. Médula espinal. Ojo. Ganglio trigémino. Ganglio de la raíz dorsal. Ileon. Tonsilas.
No se ha detectado infecciosidad en más de 40 diferentes tejidos u órganos, incluso de animales clínicamente afectados, como el músculo esquelético, piel, testículos, útero, glándula mamaria, corazón y riñón, así como leche y semen.
Período de incubación El periodo de incubación de la enfermedad varía entre 2 y 8 años, con un promedio de 5 años, de acuerdo con estudios de patogénesis realizados en el Reino Unido, considerando que los bovinos afectados se infectaron en los primeros 2 años de vida.
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s e d a d i l a r e n e G
Signos clínicos La EEB desarrolla cambios tanto en el comportamiento del animal, como en aspectos locomotores y sensoriales relacionados con la afectación del sistema nervioso central; sin embargo, estos signos no son patognomónicos, por lo que se puede confundir con otras enfermedades como la rabia, listeriosis, meningoencefalitis tromboembólica, polioencefalomalacia, seudorrabia, enfermedades metabólicas, deficiencias minerales, intoxicación con plantas tóxicas o metales pesados; y con otras enfermedades asociadas a la baja de producción de leche, disminución de la condición corporal y pododermatitis.
G e n e r a l i d a d e s
Los bovinos afectados se ven nerviosos, temblorosos, tambaleantes, aprehensivos y con cambios de comportamiento, de ahí el nombre de “vacas locas”. El comportamiento nervioso se observa en la mayoría del ganado afectado y se interpreta cuando el animal se aísla del resto del rebaño, se resiste a entrar a la sala de ordeño y a ser ordeñado. Los primeros signos locomotores son pequeños cambios en los movimientos de los cuartos traseros y dificultad a la hora de incorporarse a partir de una posición normal, que puede confundirse con hipomagnesemia y cetosis nerviosa. Los cambios locomotores se traducen por caminar tambaleante, zancadas cortas y torpeza en el momento de girar. Los principales signos neurológicos de la EEB consisten en aprensión (temor o nerviosismo), ataxia (incoordinación al andar) e hiperestesia (sensibilidad excesiva y dolorosa). Los animales con cualquiera o con una combinación de estos signos durante más de un mes, deben ser considerados como casos sospechosos de EEB. Podemos encontrar además salivación excesiva, disminución de la rumia acompañada con bradicardia (disminución de la frecuencia cardiaca) y arritmia (irregularidad y desigualdad en el ritmo cardiaco), así como trismus (rechinar de dientes).
Cuadro 1. Signos clínicos que pueden sugerir la presencia de EEB Delgadez excesiva / estado de salud en malas condiciones en general. Ansiedad / miedo / irritabilidad excesiva o exagerada reacción al ruido. Hipersensibilidad (hiperestesia) al tacto con la mano o con la ayuda de algún objeto fino, sobre todo en la región de la ubre y del cuello / tremores y estremecimientos musculares. Nerviosismo / agresividad que se expresa al patear como respuesta a un ligero contacto en los miembros posteriores o cuando alguien se aproxima por detrás del animal. Temor a pasar por una puerta o a pequeños obstáculos en el suelo.
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Los animales que durante la revisión ante mortem en rastros o mataderos, presenten signos sugerentes a EEB, deben ser sacrificados al final de la matanza con el propósito de evitar cualquier contaminación y realizar las actividades de lavado y desinfección correspondientes al concluir la jornada; asimismo, se deberán tomar muestras de estos animales para su diagnóstico por laboratorio.
Vigilancia epidemiológica en México La EEB se diagnosticó por primera vez en el Reino Unido en el año de 1986, posteriormente aparecieron casos en otros países de Europa, así como en Japón, Israel, Canadá y en los Estados Unidos de América, con gran impacto económico negativo para la industria derivada del ganado bovino. En México, la Dirección General de Salud Animal (DGSA) dependiente del Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA), inició una serie de medidas zoosanitarias para prevenir que la enfermedad se introduzca al hato Nacional, entre las cuales se encuentran: la prohibición de la importación de rumiantes vivos de países afectados establecida en 1991; la notificación obligatoria; el reconocimiento de la enfermedad y la promoción de su reporte en 1994; las actividades de vigilancia para la búsqueda de casos, es decir el Programa de Vigilancia Epidemiológica que realiza la Comisión México-Estados Unidos para la Prevención de la Fiebre Aftosa y otras Enfermedades Exóticas de los Animales (CPA) desde 1996; las especificaciones de los alimentos para consumo animal, establecidas en la Norma Oficial Mexicana NOM-061-ZOO-1999, publicada en el 2000; las especificaciones zoosanitarias para la transformación de despojos animales y su empleo en la alimentación animal, reguladas por la Norma Oficial Mexicana NOM-060-ZOO-1999, publicada en 2001; el uso de técnicas de diagnóstico rápidas desde 2004; y las acciones de rastreabilidad de bovinos importados de Canadá y Estados Unidos, debido a la presencia de casos a partir de 2003.
Población objetivo de la vigilancia epidemiológica de EEB Las características de los bovinos seleccionados para la toma de muestra como parte de las actividades de vigilancia epidemiológica son:
I.
Bovinos mayores de 30 meses de edad con al menos una de las siguientes características: Presenta signología nerviosa como trastornos de comportamiento (agresividad, miedo, ansiedad, nerviosismo), locomotores (miedo a pasar por una puerta o a saltar pequeños obstáculos en el suelo) o sensoriales (hiperexcitabilidad a estímulos táctiles, al ruido o a la luz o tremores musculares). Sacrificio de emergencia (por enfermedad o accidente) en el rastro.
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s e d a d i l a r e n e G
II.
Muertos en la unidad de producción sin causa aparente. Caído o no ambulatorio. Aquellos cuya canal o vísceras han sido marcadas como inspeccionadas y rechazadas. Delgadez excesiva o estado de salud en malas condiciones.
Bovinos de 48 a 84 meses de edad que no presenten signos clínicos aparentes (sacrificio de rutina). Podrá incluirse en esta categoría el envío de muestras de animales con otras características de riesgo (como bovinos importados), pero sin dejar de cumplir con la edad indicada.
Estimación de la edad de los bovinos
G e n e r a l i d a d e s
Considerando que la edad del animal muestreado constituye uno de los principales factores para identificar la población objetivo de la vigilancia epidemiológica de EEB, es necesario obtenerla de los registros del propietario. En ausencia de documentación o de información que determine la edad, es posible estimarla por medio de la dentición del animal, para garantizar que cumple con la edad requerida.
Bovinos menores de 18 meses de edad, tienen exclusivamente dientes temporales.
Bovinos entre los 18 y 24 meses de edad, brota el primer par de incisivos permanentes.
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Bovinos entre los 24 y 30 meses de edad, presentan el primer par de incisivos permanentes.
Bovinos entre los 30 y 36 meses de edad, surge el segundo par de incisivos permanentes.
Bovinos entre los 36 y 42 meses de edad, surge el tercer par de incisivos permanentes.
Bovinos entre los 42 y 48 meses de edad, surge el cuarto par de incisivos permanentes.
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s e d a d i l a r e n e G
G e n e r a l i d a d e s
Bovinos de 48 a 83 meses de edad, tienen la dentadura permanente completa y pueden presentar desgaste en los dientes incisivos.
Bovinos de 84 a 107 meses de edad, presentan mayor desgaste en los dientes incisivos.
Bovinos de 108 meses de edad o mayores, presentan desgaste marcado en todas las piezas dentarias.
Medidas de bioseguridad y recomendaciones previas en la recolección de muestras encefálicas Durante la necropsia o la toma de muestra deben respetarse las prácticas de bioseguridad para evitar o minimizar los riesgos en el uso de herramientas y equipo que puedan causar cortaduras o heridas punzantes, considerando la posibilidad de transmisión de EEB al humano y que puede confundirse con rabia, listeriosis y otras enfermedades zoonóticas. Entre estas medidas de bioseguridad podemos mencionar las siguientes: 7
Realizar el procedimiento antes de que el tejido se encuentra en estado de descomposición. El grado de putrefacción de la muestra depende de las horas transcurridas entre la muerte del animal y la toma de muestra; la temperatura y humedad ambiental a la que ha estado expuesta; la masa corporal que la contiene y la grasa de cobertura presente; así como el uso adecuado de conservadores. El proceso de sacrificio no debe dañar el encéfalo, principalmente al tallo cerebral, por lo que deberá utilizarse la pistola de perno cautivo en el sacrificio de bovinos, de acuerdo a la Norma Oficial Mexicana NOM-033-ZOO-1995, sacrificio humanitario de los animales domésticos y silvestres. Para la obtención de una muestra, no debe haber transcurrido más de 12 horas de la muerte del animal. Cubrir cortadas, abrasiones y lesiones existentes en la piel. Evitar contacto con tejidos infectados por contaminación de heridas o lesiones abiertas de la piel, salpicaduras a membranas mucosas (ojos y boca) o excepcionalmente ingerirlos. Utilizar ropa protectora como mandil impermeable, overol, bata, careta de protección, gogles o lentes protectores, cubrebocas, botas y guantes gruesos de hule. Al cortar los huesos craneales, evitar la formación de aerosoles o partículas que puedan entrar en contacto con los ojos. Evitar comer, beber, fumar, tomar algún medicamento, usar el teléfono o ir al baño, al realizar la necropsia o durante la toma de muestra. Los únicos tejidos que han mostrado infectividad son: el cerebro, la retina y la médula espinal y experimentalmente por vía oral, la parte distal del íleon. El equipo y el material utilizado deberá lavarse y desinfectarse, eliminando todo resto de materia orgánica. La desinfección del material utilizado se deberá hacer con una solución de hipoclorito de sodio al 4% (40,000 ppm) por más de 1 hora a 20°C. Se recomienda que la desinfección del material se realice durante toda la noche. Al terminar el procedimiento de la toma, debe lavarse las manos y la piel expuesta.
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s e d a d i l a r e n e G
Obtención del tallo cerebral en rastro (técnica de la cucharilla) Para el diagnóstico de la EEB es necesario obtener el tallo cerebral. Esta debe ser la técnica de elección para la obtención de la muestra en rastros.
Material: O b t e n c i ó n d e l t a l l o
Además de la ropa apropiada (botas, overol y mandil), deben utilizarse careta de protección, gogles o lentes, así como guantes de látex. Cuchara especial.
Tijeras (rectas).
Pinzas de ratón.
c e r e b r a l e n r a s t r o
( t é c n i c a d e l a c u c h a r i l l a )
Dos envases de plástico de cierre hermético de 120 ml (frascos utilizados para el Examen General de Orina – EGO). Uno de ellos deberá llenarse con formalina al 10 % hasta la marca de 70 ml.
Formalina al 10%1 .
Plumón indeleble (para marcar los envases).
Procedimiento: 1. Una vez separada la cabeza del cuerpo del animal a nivel de la articulación atlanto-occipital, hay que colocarla sobre una superficie limpia con la cara hacia abajo.
1
Comercialmente se encuentra formalina al 38 a 40%. Para preparar un litro de solución al 10% hay que mezclar 900 ml. de agua destilada con 100 ml. de formalina comercial. Se recomienda que bufere para lo cual deberá agregar previamente al agua destilada 3.4 gr. de fosfato de sodio monobásico y 6.1 gr. de fosfato de sodio dibásico antes de mezclarlo con la formalina comercial.
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2. Separar los pares craneales con un dedo o con la ayuda de las pinzas de ratón y tijeras.
3. Introducir la cucharilla a través de la parte superior del agujero magno con la punta hacia abajo.
) a l l i r a h c u c a l e d a c i n c é t ( o r t s a r
4. Una vez que la cucharilla haya llegado hasta el tope (cresta esfenooccipital), realizar un giro de 180° hacia la derecha y posteriormente hacia la izquierda.
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n e l a r b e r e c o l l a t l e d n ó i c n e t b O
) a l l i r a h c u c a l e d a c
5. Extraer la cucharilla obteniendo únicamente el puente y la médula oblonga con el óbex.
O b t e n c i ó n d e l t a l l o
6. En caso de atorarse, desprender con pinzas y tijeras los nervios craneales XII, XI y X (hipogloso, espinal accesorio y vago) de las meninges y retirar el tallo cerebral
c e r e b r a l e n r a s t r o
( t é c n i c a d e l a c u c h a r i l l a )
7. En caso de encontrar coágulos alrededor del tallo cerebral, eliminarlos con pinzas o tijeras. 8. Identificar los dos frascos de cierre hermético de 120 ml. con y sin conservador (formol) con plumón indeleble, asignándole un número consecutivo. El número asignado debe identificar ambas muestras, en refrigeración y formol, así como el formato para el envío de muestras.
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9. Realizar un corte sagital medio de la muestra antes de proceder a su empaque.
10. Una vez dividida la muestra en dos partes iguales, colocar una mitad del tallo cerebral en el interior de un frasco sin conservador (sin formol) cerrándola perfectamente.
) a l l i r a h c u c a l e d a c i n c é t ( o r t s a r
11. La otra mitad del tallo cerebral colocarla en el frasco de 120 ml, con formalina al 10% verificando cubrir totalmente la muestra con el conservador (preferentemente deberá tener una relación de una parte de tejido por diez de formalina), es decir hasta los 110 ml y sellarla perfectamente.
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n e l a r b e r e c o l l a t l e d n ó i c n e t b O
12. Cada muestra colectada deberá incluir la información epidemiológica por medio del “Formato para el Envío de Muestras CPA-ST-F-048” de la Vigilancia Epidemiológica de la EEB, identificados con el mismo número utilizado en las muestras en refrigeración y formol.
E x t r a c c i ó n c o m p l e t a d e l e n c é f a l o e n c a m p o
Extracción completa del encéfalo en campo Este procedimiento se recomienda cuando se presenta un cuadro clínico sugestivo a EEB o a otra enfermedad que requiera de diagnóstico diferencial como la rabia.
Material: Además de la ropa apropiada (botas, overol y mandil), deben utilizarse lentes protectores o careta de protección, así como guantes de látex y cubrebocas.
Segueta o sierra de carnicero.
Cuchillo.
Tijeras (curvas de preferencia).
Pinzas de ratón.
Envase de boca ancha de cierre hermético con un volumen de 1.5 litros, de preferencia de plástico (para evitar que se rompa durante el envío). Una bolsa de plástico transparente de cierre hermético de 1.5 Kg. (de 20 X 30 cm), tipo sandwichera. Formalina al 10% (preparación similar a la utilizada en la técnica de la cucharilla).
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Procedimiento: 1. Una vez separada la cabeza del cuerpo del animal a nivel de la articulación atlanto-occipital, colocarla sobre una superficie limpia con la cara hacia arriba. Retirar la piel del cráneo y cortar los huesos con segueta o sierra de carnicero.
2. El primer corte de hueso es transversal y posterior a las cuencas oculares, los cuales sirven para sujetar la cabeza y como puntos de referencia.
Primer corte
3. Hacer dos cortes, uno en cada hueso parietal, tomando como referencia la comisura externa del ojo y la porción lateral del agujero magno exactamente encima de los cóndilos del occipital, evitando cortar la masa encefálica.
Segundo corte
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o p m a c n e o l a f é c n e l e d a t e l p m o c n ó i c c a r t x E
4. Al desprender la bóveda craneana queda al descubierto el encéfalo.
E x t r a c c i ó n c o m p l e t a d e l e n c é f a l o e n c a m p o
5. Cortar con tijeras las meninges que cubren la superficie del cerebro, las cuales se caracterizan por ser muy duras en los bovinos. Extraer cuidadosamente la masa encefálica.
6. Una vez extraído el encéfalo, realizar un corte sagital medio (longitudinal), dividiendo toda la muestra en dos porciones. La técnica requiere que las estructuras se separen correctamente para poder llevar a cabo un buen diagnóstico.
a) Encéfalo completo
b) Hemisferios separados, junto con el tallo cerebral.
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7. Identificar con plumón indeleble con el número de caso asignado, la bolsa sandwichera y el envase de 1.5 lts. con formalina al 10 %.
8. Colocar la mitad del encéfalo, incluyendo la mitad del tallo cerebral en la bolsa tipo sandwichera y sellarla.
9. Colocar el otro medio encéfalo con medio tallo cerebral en el frasco de 1.5 lts. con suficiente formalina al 10% cubriendo todo el tejido (a una relación de 1 parte de tejido por 10 de conservador) y cerrar herméticamente el envase
10. Cada caso de neuropatía deberá incluir la información epidemiológica por medio del “Formato para el Envío de Muestras – Vigilancia Epidemiológica de la EEB” (CPA-ST-F-048) y del formato SIVE – 02, los cuales deberán llevar el mismo número de identificación de las muestras.
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o p m a c n e o l a f é c n e l e d a t e l p m o c n ó i c c a r t x E
Empaque y envío de muestras El envío de las muestras deberá hacerse inmediatamente después de haberlas obtenido, evitando demoras para que los cambios posmortem no afecten la integridad de las estructuras anatómicas y el resultado diagnóstico. El envío requiere del correcto envasado, identificación y sellado de las muestras. El Laboratorio de Alta Seguridad de la CPA cuenta con lineamientos específicos sobre bioseguridad que incluyen el paso de los empaques a través de una exclusa o puerta especial, evitando contaminación de otras áreas, por lo cual, el tamaño de los empaques no debe exceder de 40 cm de alto X 40 cm de ancho X 85 cm de largo.
E m p a q u e y e n v í o d e m u e s t r a s
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Material:
Hielera del tamaño adecuado para las muestras en refrigeración. Refrigerantes (los necesarios) para conservar las muestras a temperatura de refrigeración durante el envío.
Plumón indeleble.
Caja de cartón del tamaño adecuado para las muestras en formol.
Etiquetas rotuladas con los datos del Remitente y del Destinatario tipo autoadheribles o para ser pegadas con lápiz adhesivo, pegamento o cinta adhesiva. Originales de los formatos para el envío de muestras de EEB (CPA-ST048) y cuando corresponda a un caso de neuropatía, original y copia del formato SIVE – 02 debidamente llenados. Cinta adhesiva, lápiz adhesivo o pegamento.
Procedimiento: 1. Colocar las muestras frescas en una hielera añadiendo refrigerantes alrededor para su conservación.
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s a r t s e u m e d o í v n e y e u q a p m E
2. Cerrar y sellar la hielera para mantener las muestras a temperatura adecuada.
3. Introducir en el interior de la caja de cartón, la(s) muestra(s) en formol.
E m p a q u e y e n v í o d e m u e s t r a s
Cuando se envía tanto el encéfalo en formol como en refrigeración, hay que colocar la muestra en refrigeración (dentro de su hielera) y en formol en la misma caja de cartón.
4. Agregar material de embalaje a la caja de cartón, para evitar que los frascos se muevan, evitando derrames y daños a las muestras por maltrato durante el traslado.
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5. Cerrar la tapa de la caja y sellarla perfectamente con cinta adhesiva.
6. Introducir en un sobre, los formatos originales correspondientes a las muestras (formato para el envío de muestras CPA-ST-048 y cuando corresponda el formato SIVE-02) y pegarlo en el exterior de la tapa superior de la caja.
7. Colocar la hielera sellada con las muestras en refrigeración sobre la caja de cartón y unirlas con tape para que no se separen durante el envío.
8. Señalar con una flecha el lado que indica la parte superior de la caja (Esquema 1), para evitar derrames de conservadores.
Esquema 1. Ejemplo de flecha.
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s a r t s e u m e d o í v n e y e u q a p m E
9. Colocar una etiqueta autoadherible o para ser pegada con lápiz adhesivo o pegamento en ambos costados de la hielera, a la altura del extremo superior izquierdo, con la identificación del remitente (nombre, dirección y teléfono) de acuerdo al ejemplo del esquema 2.
Esquema 2. Ejemplo de etiqueta de Remitente.
REMITENTE REMITENTE
NOMBRE: Dirección: Teléfono(s): E m p a q u e y e n v í o d e m u e s t r a s
NOMBRE: Dirección: Teléfono(s):
10. Colocar otra etiqueta con los datos del Destinatario (Comisión México – Estados Unidos para la Prevención de la Fiebre Aftosa y Otras Enfermedades Exóticas de los Animales, Km 15.5 Carretera México – Toluca, 4to. Piso, Col. Palo Alto, Delegación Cuajimalpa, CP. 05110, México, Distrito Federal) en el centro de ambos costados donde colocó la etiqueta del remitente, como se muestra en el esquema 3.
Esquema 3. Ejemplo de etiqueta de Destinatario.
REMITENTE NOMBRE: Dirección: Teléfono(s):
DESTINATARIO “Comisión México-Estados Unidos para la Prevención de la Fiebre Aftosa y Otras Enfermedades Exóticas de los Anim ales” . Km. 15.5 Carretera México - Toluca, 4to. piso, Col. Palo Alto, Delegación Cuajimalpa, CP. 05110, México Distrito Federal.
DESTINATARIO Comisión México –Estados Unidos paralaPrevención de laFiebre Aftosay Otras EnfermedadesExóticas delos Animales Km 15.5CarreteraMéxico–Toluca,4to.Piso,Col.Palo Alto,Delegación Cuajimalpa, CP.05110,México, DISTRITOFEDERAL.
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11. Una vez identificado el paquete, llevarlo a la empresa de mensajería cuyas ciudades de reparto incluyan la Ciudad de México o comunicar al Coordinador Regional o de Zona de la CPA, para que sean ellos quienes recojan las muestras.
El envío eficiente de muestras requiere una buena coordinación entre el remitente, los coordinadores de la CPA, la compañía de transporte y el destinatario (Laboratorio de la CPA), para asegurar que el material es transportado de forma segura y que llega a su destino oportunamente y en buenas condiciones. Este tipo de coordinación depende de una comunicación bien establecida y de una relación de colaboración entre las partes involucradas. 12. El remitente deberá seleccionar la ruta más directa del envío de muestras, evitando que su llegada sea en fines de semana o día inhábil. 13. En caso de efectuar el envío en forma directa, deberá notificarse a la Coordinación Regional o de Zona correspondiente y a las Oficinas Centrales de la CPA, a los teléfonos: 5259 – 1441 / 5259 – 3035 / 5259 – 5048 / 01 800 751 21 00 / 01 800 903 88 00, con el propósito de preparar el material de diagnóstico y estar al pendiente para su recepción.
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s a r t s e u m e d o í v n e y e u q a p m E
Recuerda: Ante la sospecha de cualquier caso de enfermedad exótica, notifica inmediatamente a:
R e p o r t e s d e s o s p e c h a d e e n f e r m e d a d e x ó t i c a y s o l i c i t u d d e i n f o r m a c i ó n
Coordinaciones Regionales y de Zona de la CPA. Oficinas Centrales de la CPA. Delegaciones Estatales de la SAGARPA. Comités Estatales de Fomento y Protección Pecuaria. Secretarías de Desarrollo Rural o Agropecuario. Centros de Salud Animal. Distritos de Desarrollo Rural (DDR). Centros de Apoyo al Desarrollo Rural (CADER). Asociaciones Ganaderas Locales.
Para mayor información o comunicación sobre el envío de muestras, así como para solicitar los formatos indicados en este manual, favor de llamar a:
Comisión México – Estados Unidos para la Prevención de la Fiebre Aftosa y otras Enfermedades Exóticas de los Animales (CPA) Km. 15.5 de la Carretera México – Toluca, 4to. piso, Col. Palo Alto, Delegación Cuajimalpa, CP. 05110, México, D.F. Teléfonos:
(01 55) 52 59 30 35 - 52 59 48 77 - 52 59 14 41 52 59 50 48 - 52 59 67 51 - 52 59 66 26
Fax: Extensión 15 de cualquier línea ó al (01 55) 52 59 73 47 Teléfonos de Emergencia: 01 800 903 88 00 01 800 751 21 00
Consultar la página de internet:
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SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD, INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA DIRECCIÓN GENERAL DE SALUD ANIMAL COMISION MEXICO - ESTADOS UNIDOS PARA LA PREVENCION DE LA FIEBRE AFTOSA Y OTRAS ENFERMEDADES EXOTICAS DE LOS ANIMALES
VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LA ENCEFALOPATIA ESPONGIFORME BOVINA FORMATO PARA EL ENVÍO DE MUESTRAS CPA-ST-F-048 Favor de leer el instructivo al reverso. Utilice un formato por cada muestra enviada. El tiempo máximo para el envío de muestras es de siete (7) días a partir de la fecha de la toma, cumpliendo con las condiciones de conservación. I.
CPA
IDENTIFICACIÓN 1. N° de Muestra en Origen:
2. Fecha de la toma de muestr a: DIA
II.
DATOS DEL RASTRO
III.
3. Nombre del rastro:
MES
AÑO
DATOS DEL PROPIETARIO
7. Actividad de la persona que lleva a sacrificio al animal:
Propietario
Introductor
Empresa o Empacadora
8. Nombre: 4. Tipo de Rastro :
Particular
Municipal
Otro
Planta TIF
N°
9. Teléfono y/o Fax:
5. Estado:
IV.
Certificado zoosanitario
10. Documento que permita la rastreabilidad:
6. Municipio:
Guía de tránsito
Factura
Otro:
DATOS DE LA EXPLOTACIÓN DE ORIGEN
13. Tipo de Explotación:
11. Nombre de la explotación:
Intensivo
12. Ubicación: Calle
Semintensivo
Número
Extensivo Localidad
Municipio
Traspatio Entidad
V.
Núm. Telefónico y Fax
DATOS DEL ANIMAL
14. Identifi cación de animal:
16. Sexo: Hembra
15. Edad:
18. Funció n zootécni ca del animal:
Leche Doble propósito
19. Si es un animal de Import ación, anote la fecha de importación :
Carne Otra:
20. Si es de origen Nacional, señale si es:
semen: Pie de cría
VI.
17. Raza:
Macho
MESES
y el país de origen: DIA
MES
AÑO
21. En caso afirmativo, anote el país de origen de los padres o del
Descendiente de un animal importado
Producto de inseminación con semen importado
INSPECCIÓN ANTEMORTEM
22. ¿Presentó signos clínicos antes del sacrificio?
Si
No
23. Fecha de inicio: DIA
24. Signos
Sí
MES
No
AÑO
26. Señale con una X si corresponde a: Bovino de sacrificio de rutina
Delgadez excesiva, estado de salud en malas condiciones
Bovino de desecho
Ansi edad, m iedo , irr itab ili dad ex cesi va, reac ció n exc esiv a al ru ido
Bovino decomisado
Hipersensibilidad (hiperestesia) al tacto con la mano o con la ayuda de algún objeto fino, sobre todo en la región de la ubre y del cuello; tremores y estremecimientos musculares
Bovino caído
Nerviosismo, agresividad que se expresa como patear en respuesta a un ligero contacto de los miembros posteriores o cuando alguien se aproxima por detrás del animal
Bovino muerto o sacrificado de emergencia Bovino con signos neurológicos
Temor a pasar por alguna puerta o pequeños obstáculos puestos en el suelo (fosas) 25. Otros signos neurológicos
VII.
Especifique:
27. Diagnóstico presuntivo:
ENVIO DE MUESTRAS
28. Tipo de muestr a:
29. Conservador util izado:
30. Fecha de envío:
Tallo Cerebral
Refrigeración
Encéfalo Completo
Formol
DIA
MES
AÑO
Medio Encéfalo
VIII. 0
DATOS DEL MVZ RESPONSABLE DE LA TOMA DE MUESTRA
31. Nombre:
IX.
DATOS DEL MVZ RESPONSABLE DEL ENVÍO
36. Nombre: Nombre(s)
Apellido Paterno
Apellido Materno
Nombre(s)
32. Cargo:
37. Cargo:
33. Empresa:
38. Empresa:
34. Domicilio:
C.P.
N°
Municipio
Estado
Calle
Colonia o Localidad
35. Firma: N° Telefónico y Fax
Apellido Materno
39. Domicilio: Calle
Colonia o Localidad
Apellido Paterno
C.P.
N°
Municipio
Estado
40. Firma: N° Telefónico y Fax
KM. 15.5 CARRETERA MÉXICO — TOLUCA, COL. PALO ALTO, DEL. CUAJIMA LPA, C.P. 05110, MEXICO, D. F. TELS. 5259 1441, 5259 3035, 5259 5048, DE EMERGENCIA 01 (800) 9038 800 Y 01 (800) 7512 100
ORIGINAL: LAB ORATORIO COPIA: REMITENTE
SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD, INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA DIRECCIÓN GENERAL DE SALUD ANIMAL COMISION MEXICO-ESTADOS UNIDOS PARA LA PREVENCION DE LA FIEBRE AFTOSA Y OTRAS ENFERMEDADES EXOTICAS DE LOS ANIMALES
VIGILANCIA ACTIVA DE LA ENCEFALOPATIA ESPONGIFORME BOVINA FORMATO PARA EL ENVÍO DE MUESTRAS
CPA-ST-F-048
INTRUCTIVO DE LLENADO DEL FORMATO PARA EL ENVÍO DE MUESTRAS Favor de escribi r con l etra de molde y llenar un formato por cada muestra enviada a laboratorio. No llene el espacio donde se r egistrará el N° de la CPA. I.
IDENTIFICACIÓN 1. Registre el número de identificación de la muestra en origen (número asignado en el rastro, laboratorio, explotación o por el coordinador de la CPA). 2. Anote la fecha de la toma de muestra (día, mes y año).
II.
DATOS DEL RASTRO 4. Registre el nombre completo del rastro o unidad de sacrificio. 5. Indique con una X el tipo de rastro de donde se obtuvo la muestra. En caso de ser una Planta TIF, anote el número de planta. 6. Escriba la entidad federativa donde se localiza el rastro. 7. Anote el nombre del municipio donde se localiza el rastro.
III.
DATOS DEL PROPIETARIO 8. Marque con una X el tipo de actividad de la persona que lleva a sacrificio al animal. 9. Escriba el nombre del propietario del animal o de la persona que lo lleva a sacrificio. 10. Anote el número telefónico y/o fax del propietario o introductor. 11. Indique con una X el documento que puede apoyar la rastreabilidad del animal (certificado zoosanitario, guía de tránsito, factura de compra). En caso de contar con otro documento (por ejemplo: pase para sacrificio de la asociación de productores), favor de anotarlo en el espacio.
IV.
DATOS DE LA EXPLOTACIÓN DE ORIGEN 12. Escriba el nombre de la explotación de origen del animal. 13. Registre la ubicación de la explotación de origen: incluyendo la calle, número oficial si lo tiene, localidad o colonia, delegación o municipio, entidad federativa, número telefónico y fax. 14. Marque con una X el tipo de explotación (intensivo, semintensivo, extensivo o traspatio).
V.
DATOS DEL ANIMAL 15. Anote la identificación del animal (bovino), de acuerdo al método utilizado (arete de la campaña de tuberculosis, arete particular, marcas de fuego, etc.). 16. Indique la edad del animal según el número de meses cumplidos. Para propósitos de la vigilancia de EEB, se debe considerar preferentemente una edad mayor de 30 meses con alguna característica de riesgo y/o la presencia de signos clínicos compatibles con EEB. En caso de no conocer esa información por parte del propietario o introductor, debe estimarla de acuerdo a la dentición del animal (consulte el Manual para la toma de muestras de la Encefalopatía Espongiforme Bocina). 17. Marque con una X el sexo del animal. 18. Anote la raza del animal. 19. Señale con una X la función zootécnica del animal (leche, carne, doble propósito ó pie de cría), en caso de tener otra función anótela en el espacio correspondiente. 20. Si el animal es de Importación, anote la fecha de importación y el país de origen. Si es Nacional, no conteste esta pregunta y pase a la siguiente. 21. En caso de origen Nacional, marque con una X si es descendiente de un animal importado o es producto de inseminación con semen importado. 22. Sólo en caso de marcar una de las categorías anteriores (descendiente de un animal importado o producto de inseminación con semen importado), indique el país de origen de los progenitores o del semen.
VI.
INSPECCIÓN ANTEMORTEM 23. Señale con una X si el bovino muestreado presentó signos antes del sacrificio. En caso negativo, marque una X en No y pase a la pregunta 26. 24. En caso afirmativo, anote la fecha de inicio (fecha en que se presentaron los primeros signos) (día, mes y año). 25. En el siguiente recuadro señale con una X si presentó o no los signos anotados en cada renglón. 26. Si presentó otros signos neurológicos, marque una X en el recuadro y anote los signos, después de la palabra “Especifique:”. 27. Señale con una X, si corresponde a un bovino de sacrificio de rutina (aquel que se envía a sacrificio por haber cumplido su ciclo productivo), bovino de desecho (aquel que por su bajo nivel de producción, problemas reproductivos o bajo peso ha sido enviado a sacrificio), bovino decomisado (animal cuya canal o vísceras sean marcadas como inspeccionadas y rechazadas), bovino caído (animal que por su condición recumbente está imposibilitado a entrar a la sala de sacrificio), bovino muerto o sacrificado de emergencia (aquel que murió en la explotación o aquel que por haber sufrido recientemente lesiones traumáticas o alguna afección fue sacrificado) o bovino con signos neurológicos (aquel que presentó signos neurológicos compatibles con EEB). 28. En caso de sospechar algún padecimiento en particular que sugiera la signología presentada, anote su diagnóstico presuntivo.
VII.
ENVIO DE MUESTRAS 29. Marque con una X el tipo de muestra enviada. La muestra indicada para el diagnóstico de encefalopatía espongiforme bovina (EEB) es el Tallo Cerebral Completo. 30. Señale con una X el conservador utilizado. Para el diagnóstico de EEB debe hacerse un corte sagital del Tallo Cerebral, colocar la mitad en refrigeración y la otra mitad en formalina al 10% (preferentemente buferada). La relación de muestra y conservador es de una parte de muestra por 10 de conservador. Cuando corresponda a un animal muestreado en una explotación o rancho por signología sugerente de EEB (vaca caída, etc.), realice un corte sagital al encéfalo completo incluyendo el tallo cerebral, coloque una mitad del encéfalo en refrigeración para el diagnóstico de EEB y rabia por inmunoflourescencia directa. La otra mitad debe enviarse en formol para la prueba de inmunohistoquímica. 31. Anote la fecha del envío de la muestra (día, mes y año).
VIII.
DATOS DEL MVZ RESPONSABLE DE LA TOMA DE MUESTRA y IX. DATOS DEL MVZ RESPONSABLE DEL ENVÍO 32. y 36. Anote el nombre completo del responsable de la toma de muestra y del envío. 33. y 37. Registre el cargo de los responsables. 34. y 38. Anote el nombre de la empresa o institución a la que prestan sus servicios. 35. y 39. Registre la dirección completa incluyendo número telefónico y fax, para cualquier aclaración. 36. y 40. Firme este formato con el propósito de validar la información.
El tiempo máximo para el envío de las muestras es de s iete (7) días a partir d e la fecha de la tom a, cumpliendo s iempre con las condicio nes de conservación mencionadas en el punto 29 y en el “ Manual para la toma de muestras de Encefalopatía Espongif orme Bovina”
KM. 15.5 CARRETERA MÉXICO — TOLUCA, COL. PALO ALTO, DEL. CUAJIMA LPA, C.P. 05110, MEXICO, D. F. TELS. 5259 - 1441, 5259 - 3035, 5259 - 5048, DE EMERGENCIA 01 (800) 9038 - 800 Y 01 (800) 7512 – 100
ORIGINAL: LAB ORATORIO COPIA: REMITENTE
Coordinaciones Regionales de la CPA
Región I Sede: Hermosillo, Son. Baja California, Baja California Sur, Sonora, 01(662) 259 98 26 Chihuahua, Sinaloa y Nayarit 01(662) 259 98 20 Región II Coahuila, Durango, Nuevo León y Región Lagunera
Sede: Monterr ey, N.L. 01(81) 8126 75 08 01(81) 8126 75 32
Región III Sede: San Luís Potos í, S.L.P. San Luís Potosí, 01(444) 822 70 21 Tamauli as Veracruz Norte 01(444) 822 49 12
Región IV Sede: Guadalajara, Jal. Aguas calien tes, Col ima, Guanajuato, Jalisco, 01(33) 3838 64 36 Michoacán y Zacatecas 01(33) 3635 36 06
Región V Sede: Puebla, Pue. Guerrero, Puebla, 01(222) 235 48 75 Tlaxcala y Veracruz Centro 01(222) 235 33 99
Región VI Sede: Tuxtla Gutiérrez, Chiapas Chiapas, Oaxaca, 01(961) 602 02 56 Tabasco Veracruz Sur 01(961) 602 02 80
Región VII Sede: Mérida, Yuc. Campeche, Yucatán 01(999) 943 15 35 y Quintana Roo 01(999) 943 34 35 Región VIII Sede: México , D.F. Distrito Federal, Hidalgo, México, 01(55) 5259 14 41 Morelos y Querétaro 01(55) 5259 30 35
s e l a m i n A s o l e d a c i t ó x E d a d e m r e f n E e d a h c e p s o S e d e t r o p e R
