MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS AL LABORATORIO
1. NORMAS GENERALES Para la adecuada recolección, conservación y envío de muestras, es indispensable tener presente las siguientes normas:
a. Toda muestra debe ser remitida con su historia clínica completa y perfectamente identificada. b. Las muestras ideales se obtienen de animales vivos en distintos estadios de la enfermedad. Si es necesaria la necropsia, debe esta guardar un orden y metodología adecuadas. Debe realizarse en el menor tiempo posible después de una hora muerto el animal. c. Las muestras para estudios bacteriológicos deben tomarse antes de la administración de medicamentos y empleando siempre material estéril. Es necesario el uso de medios de transporte para evitar la sequedad o mala conservación de la misma. d. Para recolectar otro tipo de muestra se debe usar material limpio y seco. e. Los envases en los que se enviará las muestras será en lo posible irrompible, hermético y de dimensiones adecuadas. Las precauciones a considerar varían en base al tipo de muestra, temperatura ambiente, duración del viaje, transporte, etc. El tiempo de obtención y la llegada al laboratorio no debería extenderse más de 24 horas.
2. IDENTIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS Es primordial para el laboratorio y debe estar acompañada de esta información:
Nombre, dirección y teléfono (fax) del Médico Veterinario.
Nombre, dirección y teléfono (fax) del propietario.
Nombre de la explotación pecuaria.
Ubicación: Provincia, Cantón y Parroquia.
Especie, raza, sexo y edad del animal.
Identificación o nombre del animal.
Número de animales en la explotación.
Porcentaje de morbilidad y mortalidad.
Signos y síntomas.
Tiempo de evolución de la enfermedad.
Tratamiento efectuado.
Vacunas aplicadas (número y fechas)
En caso de necropsia, descripción de los hallazgos macroscópicos.
Tipo de muestra, fecha y hora de la toma.
Diagnóstico presuntivo
Observaciones.
3. GENERALIDADES SOBRE EL MANEJO DE MUESTRAS PARA MICROBIOLOGÍA
3.1 Selección y recolección de muestras El éxito de examinar una muestra clínica en el laboratorio depende de la selección, recolección y envío de la muestra. Aquella que ha sido seleccionada, debe ser la que más probable que contenga el agente causal y se debe hacer un esfuerzo para evitar su contaminación con organismos del medio ambiente.
3.2 Envío de las muestras al Laboratorio (Anexo 2) 3.3 Muestras para cultivos Bacteriológicos: 3.3.1 Tejidos y órganos: el tamaño de la muestra debe ser 3x3cm colocadas en bolsas individuales de polietileno u otros recipientes estériles. Si no se los tiene es posible esterilizar los frascos o tubos de ensayo, poniéndolos a hervir con sus tapas, por espacio de 30 minutos. 3.3.2 Hisopos: son la forma preferida para enviar muestras de secreciones: nasal. Faríngea, ocular, cutánea, cervical, vaginal, etc), exudados,
contenido de abscesos, etc. Se los introducirá en un medio de transporte adecuado y enviados en refrigeración.
3.3.3 Heces: las muestras fecales deben recogerse directamente del ano para evitar contaminación, colocadas en un envase hermético y enviadas en refrigeración. Para evitar la alta probabilidad de contaminación no se debe enviar muestras expuestas al medio ambiente. 3.3.4 Leche: deben ser recolectadas en envases estériles con tapa rosca. Deben ser refrigeradas de inmediato luego de su recolección y enviadas de esta forma al laboratorio. Se pueden esperar resultados negativos cuando la muestra fue tomada durante el tratamiento. 3.3.5 Orina: se utiliza un recipiente estéril. La forma ideal para esta muestra evitando su contaminación es el sondeo vesical, otra técnica aconsejable es la micción espontánea. Se envía al laboratorio en refrigeración. 3.3.6 Cerebro: se toma la mitad del cerebro en una funda de polietileno. Envía al laboratorio en refrigeración.
3.4 Enfermedades que requieren consideraciones especiales:
3.4.1 Ántrax (Carbunco bacteriano): para la toma de muestra, se utiliza un hisopo con punta de algodón empapados en la sangre de las lesiones o en la sangre de la vena superficial de la oreja. En porcinos se tomará la muestra de los exudados y a la superficie del nódulo hemorrágico cortado. Se deberá alertar al laboratorio de la posible sospecha de ántrax.
3.4.2 Pierna negra (carbunco sintomático), Edema maligno: para su análisis se tomará una muestra de tejido fresco afectado, ya que otros tipos de Costridium invaden los tejidos rápidamente desde el intestino del animal muerto. Es de mucha ayuda la realización de dos frotis (portaobjetos) del área afectada.
3.4.3 Metritis equina contagiosa: la muestra será tomada con hisopos tomados del cérvix, uretra, fosa clitorial de la yegua y de la fosa uretral de los caballos, siendo enviados al laboratorio en el medio de cultivo de transporte (bacteriológico no entérico).
3.4.4 Enterotoxemia clostridial: se tomará unos gramos de contenido intestinal fresco o un segmento del intestino seleccionado amarrado por los extremos con contenido intestinal. Enviarlo al laboratorio en refrigeración.
3.4.5 Paratuberculosis (Enfermedad de Johne´s): la muestra será tomada del recto del animal (2g). El tejido de predilección es la unión ilecocecal y nódulos linfáticos de la zona. No se usará refrigeración, ni preservantes químicos para el envío de la muestra al laboratorio. Pero las muestras de tejido serán congeladas o refrigeradas.
3.4.6 Micoplasmosis: los micoplasmas son sensibles a temperaturas cálidas, por ende a líquidos corporales y tejidos, siendo estos congelados de inmediato después de su recolección y enviados así al laboratorio. Hisopos secos no tienen ninguna utilidad.
3.4.7 Disentería porcina: para el diagnóstico de esta enfermedad se tomará 15 cm del colon (espiral9 del animal. Siendo refrigerados y mantenidos a 4°C durante su trasporte al laboratorio.
3.4.8 Campilobacteriosis (Vibriosis): las muestras: lavados prepuciales, contenido estomacal fetal y moco cervical, serán recolectados de manera aséptica y enviados en condiciones de refrigeración al laboratorio. Las muestras pueden ser congeladas con huelo seco y enviadas al laboratorio.
En porcinos, se tomará 20 cm de íleon lesionado, se enviara al laboratorio lo más rápido posible y en refrigeración. El agente causal
puede ser observado por medio de coloración alcohol-resistente modificada, previo raspado de mucosa.
3.4.9 Brucelosis: en esta enfermedad, se tomará contenido estomacal de fetos abortados, nódulos linfáticos mamarios y leche, que son las muestras necesarias para aislar dicha bacteria. Se enviará al laboratorio en refirgeración.
3.5 Cultivos Micóticos: 3.5.1 Micosis superficiales: en este caso se tomara raspados cutáneos del borde de una lesión activa; enviados al laboratorio en caja petri. Para el aislamiento de dermatofitos, se requiere muestras de pelos. Los hongos saprofíticos proliferan en las muestras enviadas en medios de cultivo.
3.5.2 Micosis profundas: se tomarán en las mismas condiciones que las muestras bacteriológicas.
3.5.3 Muestras de alimentos: se enviaran en bolsas de papel o de ziplop al laboratorio muestras de: granos forrajeros, balanceados o cama. Si su llegada tomase tiempo se deben refrigerar.
3.6 Hemocultivos: En la mayoría de las infecciones, se toma de tres a cuatro muestras de sangre (2 a 5 ml) tomadas en un período de 24 horas, para cultivo anaerobio y aerobio, obteniendo el 90% de cultivos positivos. Animales que tengan una infección severa y bajo quimioterapia pueden requerir más muestras. Se recolectarán en botellas con 50 ml de medio de cultivo; en animales pequeños, 20 ml es suficiente. Si la sangre es colocada de inmediato en el medio de cultivo no se usará anticoagulante, ni citrato u oxalato; sino SPS, Deberá de inocularse en la botella e incubadora a 37°C.
3.7 Cultivos anaerobios: La muestra es obtenida aspirando con una jeringuilla sin introducirle aire, el contenido de ésta se transferirá a un frasco que contenga medio de transporte.
3.7.1 Condiciones clínicas que sugieren una infección por anaerobios:
Infecciones producidas causadas por penetración de una mucosa o piel. Tejido necrótico, pseudomembrana.
gangrena
o
formación
Gas en el tejido o exudado.
Endocarditis con hemocultivo negativo.
3.7.2
Exudados mal olientes
de
una
Infección asociada con una condición maligna u otra enfermedad que produce destrucción de tejido y afecta la circulación. Heridas causadas por mordedura. Abscesos o infeccione que no responden a terapia con gentamicina u otros aminoglucósidos.
Pleuritis séptica, neumonía por aspiración.
Fracturas asociadas con un trauma grave de tejidos.
Infecciones asociadas con cirugía del sistema gastrointestinal.
Procesos sépticos con piometra.
Muestras aceptables para cultivos anaerobios:
Líquidos corporales normalmente estériles: pleural, peritoneal, LCR, bilis, líquido articular.
Muestras quirúrgicas de lugares normalmente estériles.
Muestras de abscesos y aspirados de heridas profundas.
Aspirados tras-traqueales.
Sangre si es recolectada apropiadamente.
3.7.3 Muestras no aceptadas para cultivo anaeróbico:
Saliva.
Muestras cervicales o vaginales.
Heces.
Exudados traqueales, nasotraqueales y faríngeos
Efluentes de ileostomía y colestomia.
Piel o exudados de heridas superficiales.
Muestras de orina excepto las obtenidas por punción.
3.8 Análisis de agua Se tomará la muestra de agua (50 ml) sin preservativos. Debe ser enviada al laboratorio en un frasco estéril en condiciones de refrigeración.
4. TECNICAS PARA RECOLECCIÓN DE LAS MUESTRAS 4.1 LECHE 4.1.1 Para estudios bacteriológicos: a. Lavar, enjuagar y secar la ubre. b. Con solución de alcohol al 70% desinfectarse las manos. c. Usando algodón más el alcohol al 70%, desinfectar los pezones. Dejar secar (2 min.) d. Ordeñar recogiendo en un recipiente estéril sin topar sus bordes 3ml aproximadamente, tomando de manera proporcional de todos los cuartos. e. Cuando la infección está presente en uno de los cuartos, de aquel se tomará de 2 a 3 ml de leche. Si hay otro cuarto afectado la muestra se hará por separado. f. Identificar la muestra de la forma ya mencionada y mantenerla en refrigeración hasta su llegada al laboratorio.
4.1.2 Para la prueba de Ring Test: En un tubo de ensayo con 0.5 ml de formalina al 10% tomar 3ml de leche mezclada de forma homogénea, de acuerdo al siguiente indicación de número de animales ordeñados:
# de animales de 2 o + años < 200 201 – 500 501 - 900
Volumen de leche 1 ml 2 ml 3 ml
Al existir más de 900 animales, se recomienda dividir el rebaño en grupos menores para recoger las muestras. La identificación de la muestra debe hacerse de forma correcta y mantenerla refrigerada hasta la llegada al laboratorio.
Nota: NO TOMAR CON EL MISMO TUBO LECHE PROVINIENTE DE MÁS DE UN TANQUE.
4.1.3 Técnica de campo para mastitis CMT (Californian Mastitis Test): Es un método simple que permite la cuantificar la situación sanitaria del hato con respecto a la mastitis sub-clínica. Reactivos: D
etergente aniónico + azul de bromocresol.
Procedimiento:
a. b. c. d.
Lavar, enjuagar y secar la ubre. Desinfectarse las manos con alcohol al 70%. Desinfectar los pezones con alcohol al 70% y secarlos. (Secados 2 min) Extraer de cada cuarto 3 ml de leche y colocarlos en cada una de las copas de la paleta de CMT e. Añada el reactivo en igual cantidad que la leche f. Mezcle por 2 minutos en una ligera rotación circular de la paleta mantenida en posición horizontal. Resultado:
Los resultados son aplicados para muestras individuales o aquellas que vienen de distintas vacas, teniendo en mente:
Interpretación
Resultado en la paleta
Trazas
Forma un ligero precipitado que se disuelve al mezclar.
+
Forma gel mucoso
++
Gel denso y floculento
+++
Gel viscoso y pegajoso
Interpretación:
En los primeros chorros de leche de una sola vaca, la reacción + puede clasificarse como sospechosa ; mientras que ++ o más indican mastitis. Leche a granel que proviene de un rebaño sugiere que por lo menos el 20% de las vacas lactantes presentan mastitis o que están cerca del final de esta etapa. Hay resultados más seguros cuando se usan muestras de 3 a 5 horas después del ordeño.
Las reacciones observadas se relacionan con el número de células somáticas así:
Interpretación
Células Somáticas (células/ml)
+
400.000 – 1 500.000 células/ml
++
1 500.000 – 5 000.000 células/ml
+++
>5 000.000 células/ml
4.2. HERIDAS ABIERTAS Y EXUDADOS En heridas abiertas, exudados y raspados de garganta, los hisopos de algodón previa esterilización son la elección ya que tienen muchas ventajas.
a. En casos de heridas y exudados que estén sucios se lava y seca la zona a muestrear. b. Con un hisopo estéril se raspa la zona afectada evitando el contacto con otra. Para mantenerla, se colocará en un tubo estéril con 3ml de medio de transporte no entérico. c. Si el medio es semisólido se traspasará hasta ¾ partes del tubo, se romperá el hisopo para taparlo sin problema evitando toda contaminación. d. Identificar y enviar al laboratorio en refrigeración (si se tarda más de 2 horas en llegar) 4.3. ABSCESOS, EDEMAS Y LÍQUIDO ARTICULAR Para este tipo de muestra se usa una aguja fina con la cual, se realizará una punción de la zona.
a. Lavar, desinfectar y depilar el sitio de la punción. b. Introducir la aguja de manera perpendicular a la zona y a la profundidad que requiera el caso. (RECUERDE EL USO DE MATERIAL ESTÉRIL) c. Aspirar la muestra para obtener la cantidad suficiente que se necesite (1ml2ml) d. Se trasfiere la muestra a un tubo estéril o bien se sella la punta de la jeringuilla con un corcho o tapón de caucho. e. Identificar y mandar al laboratorio en refrigeración (si la muestra demorara más de 2 horas en llegar) f. Cuando la muestra no puede ser aspirada POR LO DENSO DEL MATERIAL, se puede colocar en el sitio una solución salina estéril. 4.4. ORGANOS Y TEJIDOS Se realiza con asepsia y máximo una hora después de la muerte del animal.
a. Evitando topar el lugar de la lesión a muestrar, corte un trozo de tejido u órgano afectado de un grosor no menor de 3x3 cm. b. Para evitar la contaminación y sangrado, son topar el sitio de lesión, flameé directamente o use una espátula flameada. c. Deposite el tejido, en un frasco estéril individual de boca ancha. d. Identificar y enviar al laboratorio en refrigeración. 4.5. EXUDADO PREPUCIAL Esta muestra nos ayuda a determinar un diagnóstico de las enfermedades infecciosas que afectan al sistema reproductor del macho.
a. Depilar, lavar con agua y jabón toda el área externa del prepucio, verificando que su orificio externo se mantenga seco. Se recomienda realizar el lavado prepucial con aproximadamente 30 ml de solución salina estéril junto con un masaje de abajo hacia arriba por espacio de 5 a 20 minutos. b. Introducir una pipeta de plástico conectada a una jeringa (todo estéril), hasta la parte más profunda de la cavidad. c. Atar el orificio externo del prepucio con una liga de caucho y aspirar el lavado interior de la jeringa. d. Pasar la muestra a un tubo estéril o bien sellar la jeringa con un tapón de caucho. e. Identificar la muestra y transportar en refrigeración al laboratorio. (si tardará en llegar más de 2 horas) 4.6. SEMEN Al sospecharse de problemas de infertilidad en el macho es importante el análisis del semen. Existen tres métodos para su obtención:
1. Electroeyaculador 2. Estimulación de órganos sexuales 3. Vagina artificial La metodología adecuada es la estimulación manual de los órganos genitales:
a. Se realiza mediante la palpación rectal, estimulando la próstata, vesículas seminales y la raíz del pene. b. Los frascos para la recolección tienen que ser estériles sin ninguna clase de preservante. c. Las muestras serán conservadas en refrigeración y procesadas lo más pronto posible. (2 horas de tomadas) 4.7. FETO Y PLACENTA Estas muestras son importantes en casos de aborto, para investigación de brucelosis, leptospirosis, listeriosis, vibriosis, etc.
4.7.1. Placenta Es similar a la recolección de órganos
a. Utilizando un guante de cheque ginecológico, tome porciones frescas que se encuentren dentro de la vagina. b. Colóquelas en un frasco de boca ancha estéril. c. Identificar y enviar al laboratorio en refrigeración. También es útil una muestra de sangre de la madre sobre todo si se sospecha de brucelosis o leptospirosis, para la realización de las pruebas serológicas correspondientes.
4.7.2. Feto a. Utilizando un guante de cheque ginecológico , limpie el estiércol y paja b. Coloque el feto completo en un recipiente adecuado (bolsa de polietileno) c. Envíe al laboratorio en refrigeración. Si se sospecha de infección micótica, se deberá incluir una muestra de líquido abomasal, tomada de la misma forma que las muestras de abscesos o líquidos articulares pero enviando la muestra sin refrigerar. Se debe tomar una muestra mediante raspado cutáneo del feto de esta forma:
a. b. c. d. e. f.
Lavar la zona con abundante agua y jabón. Desinfectarla con alcohol al 70%. Dejar secar por 2 minutos al ambiente. Con una hoja de bisturí o una placa portaobjetos, raspar la zona afectada. Si existiera pelos, se deben arrancar desde la raíz con ayuda de pinzas Enviar la muestra al laboratorio en cajas petri, sobres de papel o entre dos placas portaobjetos. SIN REFRIGERAR
4.8. SECRECIÓN VAGINAL Infecciones uterinas como piometra, endometritis e infecciones localizadas se manifiestan con secreciones.
a. Introducir en el canal vaginal un espéculo estéril. b. Con un hisopo estéril, realizar un barrido del contenido o secreción vaginal. c. Mezclar la muestra con el medio de transporte adecuado y romper el mango del hisopo para eliminar la parte que ha tenido contacto con la mano. d. Identificar y enviar la muestra al laboratorio.
4.9. MUESTRAS DE SANGRE Para recolectar sangre hay que tomar en cuenta el sitio de punción y el calibre de la aguja a usar para cada especie.
4.9.1. Consideraciones generales para la toma de muestras: a. Evitar que el bisel de la aguja este hacia abajo pues, imposibilita el paso de la sangre. b. No usar agujas húmedas ya que, los glóbulos rojos se hemolizan. c. Evite el uso de anticoagulantes en solución pues diluye la sangre. d. Se debe retirar la aguja de la jeringa antes de llenar el tubo donde se depositará la sangre para evitar hemólisis. e. Al usarse anticoagulantes, hay que mezclarlos homogéneamente con la sangre para que no se formen coágulos. Se puede usar para la toma de muestras de sangre los sistemas de tubos al vacío (tipo VACUNTAINER), que al ser cerrados prestan mayor garantía en cuanto a la asepsia y preservación de las muestras. Al ser bien utilizado, evitará el riesgo de hemólisis que ocurre con mucha frecuencia con el uso de jeringuillas.
4.9.2. Para estudios bacteriológicos: a. b. c. d. e. f.
Depilar y lavar la zona donde se hará la punción. Localizar la vena (si es necesario ligarla) Desinfectar la zona con savlon 1% (solución yodada de alcohol al 70%) Dejar secar la piel (2 min) Evitar tocar la zona. Usar materiales estériles. Extraer de 5 a 10 ml de sangre en un tubo estéril con anticoagulante (es el polyanetosulfonato de sodio (SPS) al 0.05-0.25%). El oxalato, citrato y EDTA no son recomendadas por inhibir el crecimiento de los microorganismos. g. Identificar y enviar la muestra al laboratorio. Se puede utilizar una botella de hemocultivo, permitiendo que la recolección de sangre e manera directa.
4.10. MUESTRA DE ORINA Este tipo de análisis es importante para el diagnóstico, tanto de enfermedades generalizadas como septicemias o localizadas en el tracto genitourinario (pelonefritis, candidiasis, tricomoniasis, etc)
Existen dos métodos utilizados:
1. Durante la micción espontánea: se usa solo en machos denominado Método de Beson. 2. a. Atar una bolsa de hule o caucho limpia y estéril si es para análisis bacteriológico, de manera que su abertura coincida con el orificio uretral. El aparato consta de una correa mediante la que se sujeta y fija. b. Luego de la micción, colocar la muestra a un recipiente limpio y estéril. c. Identificar y enviar al laboratorio de inmediato en condiciones de refrigeración. En caso de pequeñas especies (perro y gato):
a. Ejercer presión sobre la vejiga urinaria. b. Recoger por lo menos 15 ml de orina en un recipiente estéril. c. Identificar y enviar al laboratorio en refrigeración. 3. Sondeo vesical: se obtiene con este método muestras de mayor pureza, es usado de preferencia en hembras de la cualquier especie. 4. a. El animal debe ser sondeado sin causarle dolor por acción traumática así el animal no tendrá infecciones post muestreo. b. Todo el proceso se hará en condiciones estériles. c. Deberá realizarse por una persona capacitada.
5. MEDIOS DE TRANSPORTE PARA MUESTRAS PARA ESTUDIOS BACTERIOLÓGICOS
Medio AMIES AMIES CON CARBÓN CARY – BLAIR TIOGLICOLATO SÓDICO STUART
Tipo de muestra Heridas, exudados y secreciones. Hisopos en general (garganta, conjuntiva, oído, nariz, etc) Secreciones vaginales Hisopos de cérvix, fosa del clítoris en yeguas, fosa uretral de caballos. Heces Búsqueda de bacterias anaerobias: (Costridium) tejidos necróticos, gangrena o pseudomembranas.
FORMOL AL 10%:
Para conservación de huevos de parásitos en muestras que tardaran más de 2 horas en llegar al laboratorio.
FORMOL AL 10% AMORTIGUADO
Para muestras de órganos y tejidos para estudios patológicos.
5.1. RECIPIENTES SEGÚN MUESTRAS PARA CULTIVOS
Tipo de muestra SANGRE ORINA LECHE TEJIDOS Y ÓRGANOS OTROS: LCR, líquidos articulares, líquidos pleurales, etc.
Recipiente Botella de hemocultivo Tubo estéril con anticoagulante (SPS) Tubo estéril en refrigeración Frasco estéril de boca ancha en refrigeración. Al no tener una buena refrigeración se puede usar solución estéril de glicerina al 50% en solución salina. 1. Tubo estéril 2. Medio de cultivo (caldo BHI) 3. Jeringuilla estéril con aguja sellada (caucho o corcho)
6. EMPAQUE Y SISTEMA DE ENVIO DE MUESTRAS La muestras biológicas son potencialmente infecciosas, teniendo en mente el transporte personal o la participación directa de un veterinario. Cuando esto no es posible, deben enviarse las muestras con estas instrucciones:
1. El medio ideal de conservación es la refrigeración con hielo natural, hielo seco o gel refrigerante en fundas herméticas (existen excepciones descritas en los procedimientos de recolección de muestras)
2. La totalidad de la muestra recolectada debe ser enviada utilizando un sistema de empaque en doble caja:
a. La caja interna de preferencia debe ser de un material aislante de temperatura externa siendo recomendada las cajas de espumaflex por su bajo peso y fácil manipulación, b. Las muestras se enviarán en recipientes individuales y bien identificados. En cada funda, frasco o recipiente que contenga la muestra se coloca un material que amortigue golpes, que se mantengan fijas y que absorban la humedad (más cuando se usa hielo natural o seco como refrigerante). Puede usarse espumaflex con este fin. c. La información de las muestras se envía en un sobre debidamente protegida y en una funda plástica entre la caja interna y la externa. d. La caja externa estará cerrada de tal manera que las esquinas y/o tapas queden selladas con cinta adhesiva (aumentando la resistencia del recipiente y se garantiza el aislamiento de las muestras).
3. Sería adecuado envolver la caja externa con papel empaque, sellar con cinta adhesiva y colocar con letra grande y clara:
MANEJESE CON CUIDADO MATERIAL BIOLÓGICO REFRIGERADO
4. Hay que anotar la dirección a donde se envía el empaque, por ejemplo: DESTINO: LABORATORIO DE DI AGNÓSTICO “LIFEX”
CALLE JUAN GALARZA Y AV. DE LA PRENSA TEL: 2465758 LIFE ECUADOR
5. El paquete en las condiciones mencionadas será transportado dependiendo del lugar de recolección, al sitio más cercano de donde se encuentre un transporte hacia el laboratorio que a bien desee usarse para el diagnóstico.
CUADRO DE PUNCIÓN Y CALIBRE DE LA AGUJA
Especie
Sitio de punción
EQUINO
Vena yugular
BOVINO OVINO
Vena: yugular, coxígea, ventral o subcutánea abdominal Vena yugular
CAPRINO
Vena yugular
PORCINO
Vena cava anterior o auricular externa Punción cardíaca o vena radial
AVE HAMSTER CANINO
Punción cardíaca o seno retroorbitario Vena cefálica o safena
FELINO
Vena cefálica o safena
CONEJO
Punción cardíaca, vena yugular o auricular Punción cardíaca o seno retroorbitario
CUYES
Calibre de aguja Longuitud (pulgadas) 14 – 18 2.5 – 3.0 14 – 18 2.5 – 3.0 16 – 18 2.5 – 3.0 16 – 18 2.5 – 3.0 19 – 21 1.5 – 4.0 21 – 27 1.0 22 – 25 1.5 20 – 22 1.5 20 – 22 1.0 19 - 23 2.0 22 – 25 2.5
