GEL AL OE
VERA VERA
- Aloe vera vera mengandung dua jenis Aloin yaitu Nataloin, menghasilkan pikrat dan asam oksalat dengan asam nitrat, dan Barbaloin yang menghasilkan asam aloetat (C7H2N3O5), asam krisamat (C7H2N2O6), pikrat dan asam oksalat dengan asam nitrat. - Lidah buaya memproduksi setidaknya enam agen antiseptic seperti lupeol, asam salisilat, nitrogen urea, asam cinnamonat, fenol dan sulfur. Semua senyawa tersebut dikenal sebagai antiseptic karena kemampuannya membunuh dan mengontrol bakteri, jamur, dan virus secara internal maupun eksternal. Lupeol dan asam salisilat yang terdapat pada cairan lidah bua ya adalah dua penghilang rasa sakit sak it yang efektif - Lidah buaya mengandung saponin yang mempunyai kemampuan membunuh kuman, serta senyawa antrakuinon dan Kuinon sebagai antibiotik dan penghilang rasa sakit. Lidah buaya juga merangsang pertumbuhan sel baru dalam kulit. Dalam gel lidah buaya terkandung lignin yang mampu menembus dan meresap ke dalam kulit, sehingga sel akan menahan hilangnya cairan tubuh dari permukaan tubuh. - sediaan gel Aloe vera yang digunakan secara topical. Sediaan dibuat dengan terlebih melakukan ekstraksi ekstraksi Aloe Aloe vera vera dengan metode maserasi dengan pelarutt etanol (95%). Dibuat sediaan gel karena mudah pengaplikasiannya pada kulit terutama sebagai antiseptic dan penyembuh luka, selain itu proses penyembuhan akan berlangsung relative cepat serta gel akan memberikan efek dingin pada kulit. - Khasiat : laksatif, biogenic stimulator yang mempercepat proses reepitelisasi jaringan, penyubur rambut, antibakteri, antiviral, dan antifungi, arthritis dan rematik, tukak lambung dan gangguan pencernaan, hepatoprotektor, menurunkan kadar lemak dalam darah dan imunomodulator
METODE 3.1 Cara Kerja 1. Pembuatan Ekstrak
a. Ekstraksi
b. Pengeringan Ekstrak
2. Penetapan Kadar Senyawa Aktif
a. Pembuatan Larutan Pembanding Berberin
b. Pembuatan Larutan Uji
c. Penetapan Kadar Berberin dengan Metode KLT-Densitometri
Penotolan
: meenotolkan 2μl pembanding dan 10μl larutan uji dengan posisi larutan uji di
tepi dan pembanding di tengah
Fase gerak
: toluena : etil asetat (95 : 5)
Fase diam
: silika gel 60 F254
Deteksi
: mengamati pada UV 254 nm
Warna noda
: gelap (meredam sinar UV). Rf berberin ±0,30
Perhitungan
: kadar berberin dalam ekstrak kering dihitung dari kurva baku larutan
pembanding, dinyatakan dalam mg berberin/g ekstrak
Replikasi
: tiga kali. Menentukan nilai koefisien variasi (KV) kadar berberin dari 3 replikasi.
3.2 Formulasi Gel Lidah Buaya 0,001%
Ekstrak lidah buaya
0,001%
Gliserin
10 %
Metil paraben
0,2%
Carbopol
0,5 %
Trietanolamin
1%
Propilen glikol
10 %
Aquadest
ad 100 %
Cara Pembuatan
PROSEDUR EVALUASI
1. Organoleptis Uji organoleptik dilakukan untuk melihat tampilan fisik sediaan dengan cara melakukan pengamatan terhadap bentuk,warna dan bau dari sediaan yang telah dibuat (Anief, 1997). Prinsip Kerja : evaluasi yang dilakukan yaitu dengan melakukan pengamatan sediaan gel secara kualitatif yaitu warna, bau, dan bentuk sediaan. Gel yang baik akan berwarna jernih dan transparan. 2. Pengujian pH Alat : Kertas pH indikator Prinsip Kerja : Uji pH dilakukan untuk melihat tingkat keasaman sediaan gel untuk menjamin sediaan gel tidak menyebabkan iritasi pada kulit. pH sediaan gel diukur dengan menggunakan stik pH universal. Stik pH universal dicelupkan ke dalam sampel gel yang telah diencerkan (1:10), diamkan beberapa saat dan hasilnya disesuaikan dengan standar pH universal. pH sediaan yang memenuhi kriteria pH kulit yaitu dalam interval 4,5 – 6,5 3. Pengujian Viskositas Alat : Viskotester VT-04 Prinsip Kerja : gel dimasukkan kedalam cawan porselen, pasangkan alat spindel pada viskotester. Pasang spindel hingga tercelup semuanya dalam sediaan, catat viskositas yang ditunjukkan oleh viskotester. Nilai viskositas sediaan gel yang baik yaitu 2000-4000 cps (Garg et al., 2002). 4. Uji Daya Sebar Alat : Double Plate Transparan Prinsip Kerja :Uji daya sebar dilakukan untuk menjamin pemerataan gel saat diaplikasikan pada kulit yang dilakukan segera setelah gel dibuat. Gel ditimbang sebanyak 1 g kemudian diletakkan ditengah kaca bulat berskala. Di atas gel diletakkan kaca bulat lain dan pemberat mulai dari 5g sampai persebaran konstan, setiap penambahan beban didiamkan 2 menit, kemudian dicatat diameter penyebarannya. Daya sebar gel yang baik antara 5-7 cm (Garg et al .,2002). 5. Uji Homogenitas Alat : Object glass dan cover glass Prinsip Kerja : Sediaan gel yang dihasilkan dioleskan pada sekeping kaca kemudian diamati apakah terdapat bagian-bagian yang tidak tercampurkan dengan baik. 6. Uji Konsistensi Uji konsistensi dilakukan untuk mengetahui stabilitas sediaan gel yang dibuat dengan cara mengamati perubahan konsistensi sediaan setelah disentrifugasi. Uji konsistensi dilakukan dengan cara mekanik menggunakan sentrifugator dengan cara sediaan disentrifugasi pada kecepatan 3800 rpm selama 5 jam.
Perubahan fisik diamati apakah terjadi pemisahan atau bleeding antara bahan pembentuk gel dan pembawanya yaitu air dan pengujian hanya dilakukan pada awal evaluasi (Djajadisastra, 2009). 7. Daya Lekat Sampel 0,25 gram diletakkan diantara 2 gelas obyek, kemudian ditekan dengan beban 1 kg selama 5 menit. Setelah itu beban diangkat dari gelas obyek, kemudian gelas obyek dipasang pada alat test. Alat uji diberi beban 80 gram dan kemudian dicatat waktu pelepasan gel dari gelas obyek (Miranti, 2009). 8. Kestabilan Gel o
Evaluasi dilakukan sebelum dan setelah kondisi penyimpanan dipercepat yaitu penyimpanan pada suhu 5 C o
dan 35 C secara bergantian setiap 48 jam (1 siklus) selama 10 siklus atau dengan penambahan suhu dan siklus dipercepat.
HASIL PENGAMATAN
Kondisi analitis yang digunakan : Fase gerak : toluen: etanol : NH3 25% ( 3:4:1) Fase diam : silica gel 60 F 254 Deteksi : sinar UV 254 nm. Warna noda : gelap meredam UV Rf berberin 0.30 Penotolan : 2 µl pembanding dan 10 µl larutan uji. Dari hasil ini didapatkan 10,41 ng dalam 6µl dengan konsentrasi uji 100.000 ppm. Sehingga untuk mendapatkan kadar berberi 0,001 % dalam sediaan gel (20 gr) membutuhkan ekstrak 11,527 gram ekstrak namun ekstark gel yaang dihasilkan hanya 49 gram sehingga untuk memenuhi kadar berberin 0,001 % dihasilkan formulasi : Ekstrak lidah buaya
0.001%
: 49 gram
Gliserin
10 %
: 6,75 ml
Metil paraben
0,2%
: 0,17 g
Carbopol
0,5 %
: 0,42 g
Trietanolamin
1%
: 0,746 ml
Propilen glikol
10 %
: 8,195 g
Aquadest
ad 100 %
: 17,6 ml
Dan rendemen yang dihasilkan 2.45 %. a.
Hasil uji derajat keasaman Alat
: ph universal
Hasil
: 10
b.
Hasil uji viskositas Alat
: viskotester spindle 1
Hasil
c.
: 30 dpas
Uji daya sebar Alat
: kaca arloji berdiameter dan beban 10,20,dan 3o gram
Bahan
:
Hasil
: sebelum : 2cm ; 10 gram : 4cm ; 20 gram : 6cm ; 30 gram : 7cm
0,5 gram gel
PEMBAHASAN
Pada praktikum kali ini dilakukan pembuatan sediaan gel dari daging daun lidah buaya (Aloea Verae Folium). Gel merupakan suatu sistem setengah padat yang terdiri dari suatu disperse yang tersusun baik dari partikel kecil anorganik atau molekul-molekul besar organic yang diinterpenetrasikan dalam sebuah cairan (Anonim,1979). Sedangkan Lidah buaya (Aloe vera L.) merupakan tanaman yang fungsional karena semua bagian dari tanaman dapat dimanfaatkan. Lendir lidah buaya kaya akan nutrisi serta zat pelembab dan mengandung kurang lebih 96% air, aloektin B yang menstimulasi sistem imun dan memberikan lapisan perlindungan pada bagian kulit yang rusak serta mempercepat tingkat penyembuhan. Antrakuinon dan kuinonnya memiliki efek untuk menghilangkan rasa sakit (analgetik). Saponin lidah buaya berperan sebagai pembersih sekaligus antiseptik. Kandungan polisakarida (terutama glukomannan) yang bekerja sama dengan asam-asam amino, enzim oksidase, enzim katalase, lipase, dan protease memecah jaringan kulit yang sakit akibat kerusakan dan membantu memecah bakteri, sehingga lendir bersifat antibiotik dan penggati sel yang rusak (Nur Ida, 2012). Ekstrak daun lidah buaya (Aloea Verae Folium) dibuat sediaan gel karena Aloe vera sangat potensial untuk diformulasi menjadi sediaan topikal. Salah satu bentuk sediaan yang efektif untuk terapi topikal adalah gel. Gel lebih disukai krn pd pemakaian meninggalkan lapisan tembus pandang, elastis, pelepasan obatnya baik dan penampilan sediaan yg menarik. Tahap pertama yang dilakukan yaitu pengupasan daun lidah buaya untuk mendapatkan daging lidah buaya, kemudian daging lidah buaya yang diperoleh diblender yang bertujuan untuk memperkecil ukuran partikel, sehingga akan mempercepat proses maserasi. Tahap selanjutnya yaitu maserasi dilakukan dengan menimbang 2000 gram lidah buaya, kemudian dilarutkan dengan etanol 96%, dan didiamkan selama beberapa jam. Setelah dilakukan proses penyaringan ekstrak, kemudian ekstrak cair dipekatkan dengan menggunakan rotavapor hingga terbentuk ekstrak kental. Ekstrak kental yang dihasilkan kemudian dipanaskan untuk mendapatkan ekstrak pekat. Bobot ekstrak yang diperoleh sebesar 49 gram, sehingga randemen yang dihasilkan sebesar 2,45 % Pada praktikum ini, dilakukan penetapan kadar berberin dalam ekstrak Aloe vera menggunakan metode KLT-Densitometri. Dalam metode ini digunakan nilai Rf standart berberin yang dibandingkan dengan nilai Rf sampel untuk mengetahui kadar berberin dalam ekstrak untuk mengetahui adanya kandungan berberin dalam ekstrak. Berdasarkan hasil analisis KLT selanjutnya discan dengan densitometri untuk melihat pola kromatogram. Scanning dilakukan dari awal penotolan sampai akhir eluasi pada panjang gelombang 254 nm karena pada panjang gelombang tersebut pola kromatogram dari berberin d apat diamati secara maksimal.
Karena kadar berberin pada ekstrak Aloe vera hanya sedikit, kami sedikit kesulitan menentukan kadarnya, sehingga membuat kami melakukan penetapan kadar berberin dalam ekstrak tersebut dengan metode KLTDensitometri sebanyak 3 kali, dengan melakukan beberapa cara seperti, memekatkan konsentrasi ekstrak, maupun mengganti fase gerak dengan membuat fase gerak baru yakni : Toluen : Etanol : Ammonia (3:4:1). Hingga akhirnya kadar berberin dapat terdeteksi walaupun sangat kecil yang berhasil di deteksi. Kondisi analitis yang digunakan :
Fase gerak : toluen: etanol : NH3 25% ( 3:4:1) Fase diam : silica gel 60 F 254 Deteksi : sinar UV 254 nm. Warna noda : gelap meredam UV Rf berberin 0.30 Penotolan : 2 µl pembanding dan 10 µl larutan uji. Dari hasil ini didapatkan 10,41 ng dalam 6µl dengan konsentrasi uji 100.000 ppm. Berdasarkan hasil analisis sebagai parameter adanya hubungan linier atau tidaknya digunakan koefisien korelasi yaitu “r” dan persamaan regresi linier y = bx + a. Linieritas menunjukkan kemampuan metode analisis untuk memperoleh hasil pengujian yang sesuai dengan konsentrasi analit dalam kisaran konsentrasi tertentu. Pada penetapan ini diperoleh kadar berberin ekstrak sebesar 10,41 ng dalam 6 µl dengan konsentrasi 100.000 ppm sehingga dari hasil ini dapat dihitung kadar berberin dalam 20 g ekstrak sediaan sebesar 0,001%. Dari hasil penetapan kadar tersebut, maka kami dapat menyusun formula gel dengan bahan aktif berberin. Pada literature menyebutkan bahwa konsentrasi berberin yang digunakan sbg sediaan topical sebesar 0,2%, namun perhitungan ekstrak yg didapatkan kecil shg menggunakan konsentrasi 0,001 % dg total ekstrak 49 g. Pada praktikum kali ini dilakukan uji daya sebar dengan cara menimbang 0.5 gram gel dan meletakkan dengan hati-hati di atas kertas grafik yang dilapisi kaca transparan dan dibiarkan sesaat (15 detik) kemudian di ukur diameter pada tiap sisi (5 sisi) pada saat di beri beban 10 g terjadi penambahan diameter 2 cm dari awal acm menjadi 4 cm, dengan beban 20 g menjadi 6cm, dengan 30 g beban menjadi 7 cm.Persyaratan daya sebar untuk sediaan topikal yaitu sekitar 5-7 cm, maka berdasarkan hasil uji daya sebar pada sediaan dapat dikatakan bahwa sediaan sudah memenuhi syarat daya sebar yang baik. Daya sebar yang baik menyebabkan kontak antara obat dengan kulit menjadi luas, sehingga absorpsi obat ke kulit berlangsung cepat. (Maulidaniar dkk, 2011) Kemudian dilakukan uji pH menggunakan pH meter. Berdasarkan hasil pengujian diketahui pH sediaan gel adalah sebesar 10, pH tersebut memenuhi tidak persyaratan pH sediaan topikal yaitu antara 4,5 – 6,5. Kulit yang normal memiliki pH antara 4,5 - 6,5 sehingga sediaan topikal harus memiliki pH yang sama dengan pH normal kulit tersebut. Kesesuaian pH kulit dengan pH sediaan topikal mempengaruhi penerimaan kulit terhadap sediaan. Sediaan topikal yang ideal adalah tidak mengiritasi kulit. Kemungkinan iritasi kulit akan sangat besar apabila sediaan terlalu asam atau terlalu basa. Dibandingkan dengan kelompok lain dimana mendapat rendemen yang lebih besar yaitu 2,9365 % sedangkan kelompok kami 2,45%, namun kadar berberin tidak terdeteksi perbedaan ini dapat diakibatkan karena perbedaan kondisi analisis yang digunakan berbeda.
