INFORME DEL CICLO BIOLOGICO DE
I.
Diaphania nitidalis Stoll.
INTRODUCCION Según Bentancourt y Scatoni (2010), es una plaga de mayor incidencia en cultivos de melón, pepino, sandía y zapallo y otras cucurbitáceas durante el verano y comienzos del otoño. A medida que las larvas crecen horadan y barrenan las guías, que terminan por morir. También infestan los frutos a los que perforan hasta llegar al interior. Los frutos dañados muestran los orificios de entrada a veces en la zona de contacto con el suelo y junto a estos se observan los excrementos de las larvas. Los daños en los frutos son mayores en los meses de estación seca, estimulados por las altas temperaturas (González, 2006). Segura en 2014, indica que Diaphania nitidalis (Stoll) se alimenta del fruto de sandía y su daño puede observarse mediante perforaciones que atraviesan la pulpa e incluso puede encontrarse la larva dentro del mismo. Por otro lado, en pepino, los adultos de Diaphania nitidalis (Stoll), vuelan durante las horas de la tarde, t arde, pero la mayor actividad de vuelo ocurre de tres a cinco horas después de ocultarse el sol y la mayor ocurrencia sucede aproximadamente a la medianoche. Los adultos no se encuentran en los campos durante las horas luminosas del día, por lo que probablemente se dispersen en los árboles y malezas adyacentes (Dubón, 2006). En 2008, Chávez, afirma que Diaphania nitidalis (Stoll) oviposita en brotes tiernos yemas terminales, tallos y frutos pequeños de las cucurbitáceas; son distribuidos en pequeños grupos, usualmente dos o tres huevos por grupo. Una característica de Diaphania nitidalis (Stoll) es que se registra, desde la etapa de desarrollo vegetativo hasta fructificación, sin embargo, su densidad poblacional no es relevante a lo largo del cultivo.
II.
METODOLOGIA Para el estudio de la duración del Ciclo Biológico, se realizó una metodología con 20 individuos y de cada instar se sacará un promedio dura cada uno de ellos. Se trabajó con 20 taperes de 12 cm de largo y 12 de diámetro. A cada taper se le puso un código “T” de tratamiento y un número en forma
ascendente, por ejemplo, T1, T2, T3 hasta el T20. Cada tapa de los taperes se le hizo agujeros para permitir la ventilación. Dentro de cada taper se puso una hoja de papel higiénico doblada para simular una hoja de la planta, para que la larva se pueda esconder, y doblar con su seda; una bola de algodón húmedo y el ambiente este húmedo. En las paredes del taper se le anoto el día del muestreo, cabe resaltar que se han muestreado los días 21 /11/17, 29/11/17 y el 9/12/17 y se puso una lista del instar presente y de los que tendrá hasta adulto, y como según pasen los días se le colocará una letra en romanos, así se ira registrando el estadio. Cuando salgan los adultos, se procedió a poner en una pecera con una tela tol, dentro hojas de planta de jardín y posteriormente se cambió por hojas de zapallo, para la alimentación se preparó una solución de agua corriente con azúcar, y las gatas esparcidas en la hoja y en papeles recortados y remojados, al ver que no funcionaba, se puso en la tela tol y los adultos recién se alimentaban. Después de la copula, se les coloco brotes tiernos de zapallo.
III.
RESULTADOS Cuadro 1. Día del muestreo 21 de noviembre. Duración del ciclo
LARVA
LARVA
LARVA
LARVA
LARVA
PREPURA
HUEVO
TOTAL PUPA
ADULTO
1
2
3
4
5
1
2
-
4
2
2
11
5
24
4
2
2
8
2
18
1
2
2
11
1
17
4
2
2
11
5
24
T16
-
-
-
-
T17
.
.
.
.
T18
-
-
-
-
T19
-
-
-
-
-
Cuadro 2. Duración promedio de cada fase del ciclo, del muestreo 21/11/17. DURACION PROMEDIO DE CADA FASE DEL INSECTO FASE HUEVO
-
ORUGA
7.25
PUPA
10.25
IMAGO
3.25
CICLO TOTAL
20.75
Cuadro 3. Día del muestreo 29 de diciembre. Duración del ciclo INSTAR
LARVA
LARVA
LARVA
LARVA
LARVA
PREPURA PUPA
ADULTO
TOTAL
CODIGO
1
2
3
4
5
A
B
T1
-
-
-
-
5
1
ND
9
15
T2
-
-
-
-
1
2
2
10
15
T3
-
-
-
-
5
2
2
6
15
T4
-
-
-
-
9
2
2
2
15
T5
-
-
-
-
3
M
T7
-
-
-
-
5
2
T8
-
-
-
-
5
M
5
T10
-
-
-
5
5
M
10
T11
-
-
-
2
9
1
T13
-
-
-
5
6
M
T14
-
-
-
5
8
1
M
T15
-
-
-
-
1
2
2
T20
-
-
5
2
M
T21
-
-
-
-
2
3 2
ND
6
3
15
15 11 14
10
15 7
M
2
Cuadro 4. Duración promedio de cada fase del ciclo, del muestreo 29/11/17. DURACION PROMEDIO DE CADA FASE DEL INSECTO FASE HUEVO
-
ORUGA
7.07
PUPA
6.5
IMAGO
-
CICLO TOTAL
13.57
Cuadro 5. Fecha de muestreo 9 de diciembre. Ciclo biológico LARVA
LARVA
LARVA
LARVA
LARVA
PREPURA
HUEVO
TOTAL PUPA
ADULTO
5
A
B
T5
3
1
ND
T6
5
T9
2
T12
5
5
T24
5
5
1
2
3
4
1
5 5
2
ND
1
5
Cuadro 6. Duración promedio de cada fase del ciclo, del muestreo 29/11/17. DURACION PROMEDIO DE CADA FASE DEL INSECTO FASE
IV.
HUEVO
-
ORUGA
4.6
PUPA
1
IMAGO
-
CICLO TOTAL
5.6
DISCUSION Algunos autores mencionados en la revista peruana de entomología del año 1963. Mencionan a Quaintace que dice, “como 24 a 27 días en julio y agosto (verano), descubrió que el periodo de incubación de huevos es de 3 días, el periodo completo larval llego a 14 días y estado pupal fue de 7 días ”. El autor Smith menciona que “se crio larvas durante agosto y
septiembre, siendo 3.5 a 4 días para el periodo de incubación, 12 q 16 días para la larva y 7 a 11 días la pupa; la duración mínima del ciclo de vida fue de 22.5 días ”. En la revista mencionan a Fulton del cual describió “ se crio 10 larvas en verano (agosto y septiembre), obtenidas de huevos traídos de un campo de calabaza. Obtuvo 3 días para la incubación de los huevos; luego crio las larvas pequeñas en hojas tiernas y después las alimento con tajadas de calabaza de verano. La mariposa apareció 17 días
después de la incubación del huevo, considera que el ciclo total de vida desde la ovoposición hasta la emergencia de la mariposa, no puede ser menor de 20 días ”. Y menciono los datos hechos por autores de la revista, siendo los resultados de huevo en verano 3 días en invierno 4.5 días, la oruga es de 12 días en verano y 25 días en invierno, la pupa es de 7.7 días en verano y 15 días en invierno, el imago es de 2 días en verano y 4.5 días en invierno. Siendo el ciclo completo de 24.7 días en verano y 49.0 días para invierno. Con todas estos antecedentes y referencias con respecto al ciclo de vida de Diaphania nitidalis Stoll, informo como me ha sucedido hasta la fecha 13/12/17 con los respectivos días de muestreo y comportamiento. Con respecto al día del muestro 21/111/17 se obtuvieron larvas desde el instar 1 al 5 todos estos especímenes fueron sacrificados y puesto en cartuchos de vidrio de lidocaína para su preservación. Dejando 4 tratamientos que se mostraran su progreso en los anexos, de los cuales
uno
fue
sacrificado
para
poner
como
espécimen
específicamente el T18, siendo macho, y el T17 murió al segundo día. Del cual estos dos acontecimientos disminuyen los datos del ciclo de vida, si suprimimos los dos (T18 y T17) el promedio seria 8 días para la larva 5 y pre pupa y 11 días de pupa y 5 días en adulto, resalto que T16 es hembra y T 19 es macho. Cuando los 3 estaban como mariposa, se puso en una pecera con un tol en la mañana siguiente después que salgan como adultos, cabe mencionar que la emergencia
del primer adulto (T19) fue a las 7 pm aproximadamente en el momento de rutina de observación de los tratamientos, luego salió T16, T18 y T17 salió al día siguiente, por la madrugada, luego procedió a alimentar según la revista peruana de entomología de 1963, con azúcar rubia diluida en agua de caño, ya sea gotas esparcidas en las hojas puestas a debajo o tiras de papel humedecidos en la solución, el día 10/12/17 no observe que se alimentaban por lo que pensé en innovar, y lo puse en la tela tol y al 5 día observe que se alimentó la hembra. Una vez que se murió T17 se quedaron T16 y T19 lo cual copularon el 11/12/17 a las 10:56 pm hasta donde pude percatarme que estaban copulando, luego la última vez que fui a revisar ese mismo día fue 1:00 am lo cual, pueden copular más de 2 horas. Resalto mi alegría de poder observar su copula y revisar que en la revista de entomología, describen que adecuaron ambientes con diferentes materiales y no lograron que copulen y mucho menos obtener huevos en laboratorio. Con las muestras del 29/11/17, se completó la mayor parte de los tratamientos, me organice mejor, y los rotule a cada uno y registre a la mayor parte sus cambios de instares dejando uno o dos días. El registro no fue uniforme, en el muestreo había larvas 3, 4 y 5. Las larvas 3 no duraron mucho tiempo y murieron, las larvas 4 que se pudieron tratar, no duraban, solo queda T11 y se nota moribunda. Con respecto a la última muestreada el 9 de diciembre, era para reemplazar a varios tratamientos que se murieron, de los cuales algunos obtuvieron el mismo código. Observe que las larvas 4 que se
caracterizan por aun tener tubérculos de color brumo, al entrar en estrés, por falta de alimento y espacio, desaparecieron y daba la impresión de que mudaron al instar 5, luego con alimento no lograban mantenerse con vida más de 10 días.
V.
REFERENCIAS BENTANCOURT, C. M. y SCATONI, I. B. 2010. Guía de Insectos y Ácaros de importancia agrícola y forestal en el Uruguay; Tercera edición. Universidad de la República, Fac. de Agronomía, Montevideo. Consultado 16 diciembre. 2015. Disponible en: http://laguiasata.com/joomla/index.php?option=com_content&view= article&id= 646:diaphania-nitidalis&catid=68:nombrescientifico&Itemid=70. DUBÓN, O. R. 2006. Principales plagas del cultivo de melón y sus enemigos naturales en el Valle de La Fragua, Zacapa, Guatemala. Consultado 30 diciembre 2015. Disponible en: http://es.slideshare.net/redubon/principalesplagas-del-cultivo-demelon-y-sus-enemigos-naturales FULTON, B. B. — "Biology and Control of the Pickleworm". North Carolin Agrie. Expt. Sta., Tech. Bul. N 85, 1947. 27 p. GONZÁLEZ, E. 2006. Manejo integrado de plagas, Manual Práctico. Centro Nacional de Sanidad Vegetal. La Habana, Cuba. 46 p. QUAINTANCE, A. L. — Some important insect enemies of cueurbits. Georgia Agrie. Expt. Sta., Bul. 45, pp. 36-45. 1899 (original no consultado; extractado de Reid, W. J. , Jr. , and F. P. Cuthbert, Jr. , "Biology Studies of the Pickleworm". Journal of Economic Entomology (49) 6:870-873. Published by the Entomological Society of America, Dec. 1956). SEGURA, C. A. 2014. Instructivo de inspección para la certificación fitosanitaria de melón y sandía. 9 p. SMITH, K. I.— "Two Important Cantaloupe Pests". N. C. Agrie. Exp. Sta., Bul. 214, pp. 105-146, 1911. (original no consultado; extractado de Fulton, B. B., "Biology and Control of the Pickleworm". North Carolina Agrie. Expt. Sta., Tech. Bul. No 85, 1947, 27 p.).
VI.
ANEXO
Anexo 1 y 2. Progreso de T1 de prepupa fase 1 a pupa de 10 días, talvez salga más tarde. Proveniente del muestreo del día 29/11/17
Anexo 3. Actualmente se obtiene registro en pupa el cual va 10 días. Proviene del muestreo realizado el 29/11/17.
Anexo 4 y 5. Progreso del T3 de prepupa fase 1 a pupa con 6 días. Proviene del muestreo realizado el 29/11/17.
Anexo 6, 7 y 8. Progreso de T4 de larva 5 pasando a prepupa, luego a pupa en 16 días. En este tratamiento para un mejor desarrollo, se le agrego hojas de zapallo como alimento.
Anexo 9, 10. Progreso de T5 de larva V a pupa de una duración de 5 días. Proviene del muestreo realizado el 9/12/17.
Anexo 11. Archivo del T6 larva por empapar, pero murió del muestreo realizado el 29/12/17, el cual fue reemplazado en el muestre del 9/12/17 del cual murió hoy 14/12/17 se puede ver en Anexo 12.
Anexo 13. Progreso de larva 5 a pupa en 15 días del T7. Proveniente del muestreo realizado el 29/11/17.
Anexo 14. Archivo de la larva 5 del T8 proveniente del muestreo realizado el 29/11/17. El cual fue reutilizado su código un nuevo T8 proveniente del muestreo realizado el 9/12/17.
Anexo 15 y 16. Progreso del T9 de larva V a pupa en 5 días. Proviene del muestreo realizado el 9/12/17.
Anexo 17. Archivo del T10 cuando estaba en larva V proveniente del muestreo del 29/11/17, pero murió.
Anexo 18,19 y 20. Progreso de T11 de Larva v paso a prepupa luego a pupa en 15 días. Proviene del muestreo realizado el 29/11/17.
Anexo 21. Archivo del T12, en larva 3 . Proveniente del muestreo realizado el 29/11/17.
Anexo 22. Archivo del T13 en larva 5. Proveniente del muestreo realizado el 29/11/17, el espécimen murió.
Anexo 23. Archivo del T14 cuando estaba en larva V. Proveniente del muestreo realizado el 29/11/17.
Anexo 24. No hay registro cuando T15 estaba en larva V, el cual solo queda cuando está en pupa, transcurriendo 15 días. Proveniente del muestreo realizado el 29/11/17 .
Anexo 25,26,27 y 28. Progreso del T16, en pupa, se puede notar la primera foto cuando recién tenía un día de pupa, la segunda foto cuando tenía 11 días de pupa, luego en la noche emergió a adulto el cual se aprecia en la ultima foto.
Anexo 29,30,31,32 y 33. Progreso de T17 de larva 5 hasta adulto. En las imágenes se muestra como se diferencia la pupa, luego el adulto y su muerte.
Anexo 34,35,36,37 y 38. Progreso del T 18, se aprecia cómo va cambiando de color la pupa desde el primer día hasta el último. Luego el Adulto, este espécimen fue sacrificado como muestra.
Anexo 39, 40, 41 y 42. Progreso del T19 el cual tiene una duración de 23 días hasta la fecha, Se aprecia el cambio de color desde el primer día hasta el último, en el último día se aprecia claramente, el color de las alas estando en la pupa. Salió el adulto el 9/12/17 a las 11.47 pm. Proviene del muestreo realizado el 21/11/17.
Anexo 43. Archivo del T20, en larva IV. Proveniente del muestreo 29/11/17, murió el espécimen.
Anexo 44. Archivo de los 20 tratamientos. Obtenido el 29/11/17.
Anexo 45. Preparación de un ambiente para los adultos.
Anexo 46. Terminado la preparación del ambiente siendo una pecsera con una tela tol, encontrándose T16, T17 y T19.
Anexo 47. Copula del T16 y T19. En la noche a las 10:56, hasta las 1 am aproximadamente fue visto copulando, probablemente tuvieron más horas copulando. La copula se realizó al tercer día de emergidos de la pupa.
Anexo 48. Innovación, en la forma de como alimentar con una solución de agua con azúcar, se observa a la hembra alimentándose de una goya.
Anexo 49. Estado actual 14/12/17, deT16 y T19, alimentándose, con 6 días
Anexo 50. Plan de infestación al campo experimental con Diaphania nitidalis Stoll.
