2
2
KATA PENGANTAR
Praktikum ParasitologiVeteriner merupakan Mata Praktikum yang menjadi pendukung dari Mata Kuliah Parasitologi Veteriner yang keduanya dilaksanakan di Semester 3 Program Studi Pendidikan Dokter Hewan Universitas Brawijaya. Kegiatan praktikum ini mutlak harus dilaksanakan oleh setiap mahasiswa semester 3 dalam rangka pengembangan dasar keilmuan kedokteran hewan. Dengan adanya pelaksanaan praktikum ini diharapkan nantinya dapat meningkatkan pengetahuan dan keterampilan mahasiswa terutama di Semester 3 dalam kaitannya dengan Parasitologi Veteriner serta memperoleh manfaat hasil pembelajarannya yang nantinya bisa diterapkan di dunia kerja bidang veteriner.
Praktikum ini merupakan sarana bagi mahasiswa untuk lebih memahami mengenai morfologi umum dan khusus dari setiap parasit, ciri khas, siklus hidup parasit, dan teknik laboratorium yang berkaitan dengan pemeriksaan parasitologi veteriner. Pembelajaran mengenai parasit ini melingkupi 3 Kelas yakni Helminthologi (Cacing), Entomologi (Serangga), dan Protozoologi (Protozoa) yang dalam pelaksanaannya dibagi ke dalam 11 kali pertemuan termasuk Ujian Akhir Praktikum yang dilaksanakan setiap akhir dari pokok bahasan besar.
Demi kelancaran penyelenggaraan praktikum dan memudahkan praktikan untuk melaksanakan praktikum, maka disusunlah panduan praktikum ini yang wajib dimiliki oleh setiap mahasiswa dan wajib dibawa setiap kali pelaksanaan praktikum. Harapan kami selaku dosen pembimbing praktikum Parasitologi Veteriner, dengan buku panduan ini mahasiswa memiliki dasar yang cukup untuk melaksanakan praktikum dan dengan keaktifan setiap individu dapat meningkatkan pemahaman mengenai teknik laboratorik parasitologi juga sebagai dasar mata kuliah di semester selanjutnya.
Malang, 19 September 2014
Penyusun
DAFTAR ISI
Halaman
KATA PENGANTAR 1
DAFTAR ISI 2
TATA TERTIB PRAKTIKUM PARASITOLOGI 3
FORMAT LAPORAN PARASITOLOGI 4
TEKNIK PENGGUNAAN MIKROSKOP 5
HELMINTH 6
METODE PENGAMATAN 6
Metode Natif 6
Metode Apung Modifikasi 7
Metode Parfitt and Banks 7
BEDAH SALURAN CERNA UNGGAS 7
IDENTIFIKASI CACING DAN TELUR 8
ARTHROPODA 14
TEKNIK PEMBUATAN PREPARAT 15
Metode Pinning 15
Metode Scraping Kulit 15
Permanen Mounting Tanpa Pewarnaan 15
IDENTIFIKASI ARTHROPODA 16
PROTOZOA 20
METODE PENGAMATAN 20
Metode Ulas Darah 20
Metode Pewarnaan Giemsa 21
Swap Kerongkongan 21
Gerusan Organ 22
Pemeriksaan Tinja 22
IDENTIFIKASI PROTOZOA 23
JADWAL PRAKTIKUM 24
DAFTAR PUSTAKA 25
TATA TERTIB PRAKTIKUM PARASITOLOGI
Datang minimal 15 menit sebelum praktikum dimulai.
Jika terlambat > 10 menit, tidak boleh ikut pre test, tapi masih boleh praktikum.
Menggunakan jas lab dan berpakaian standart veteriner (kaos berkerah, kemeja, rok dibawah lutut (cewek), dilarang menggunakan jeans, sepatu tertutup) saat memasuki lab. Jika melanggar, mendapatkan konsekuensi yaitu pulang.
Membawa buku praktikum, buku catatan dan laporan praktikum sebagai tiket masuk
Apabila merusak barang di lab maka wajib mengganti (individu).
Apabila tidak dapat mengikuti praktikum wajib izin ke dosen pengampu praktikum parasit dengan membawa surat yg dpt dipertanggung jawabkan.
Wajib membawa glove dan masker saat praktikum
Dalam setiap kelompok membawa disecting set minimal 1 set
1 kelompok hanya 1 HP yg dibawa, digunakan untuk dokumentasi preparat.
Menjaga kebersihan lab. sebelum dan setelah praktikum.
Dilarang merokok, makan dan minum.
Dilarang membuang bahan padat atau cairan kimia ke wastafel.
Setiap kelompok diwajibkan membawa sampel sesuai materi praktikum yg sudah ditentukan.
Presentase kehadiran praktikum 100%. Apabila tidak 100%, tidak diperkenankan mengikuti UAP
Kuku tidak boleh panjang, rambut diikat rapi (cewek).
Menjaga ketenangan selama praktikum berlangsung.
Praktikan dapat mengajukan saran dan kritik yang disampaikan dengan sopan baik kepada asisten, dosen, maupun melalui media kotak saran
FORMAT LAPORAN PRAKTIKUM PARASITOLOGI
BAB I Pendahuluan
Latar Belakang
Tujuan
BAB II Metodologi
2.1 Alat dan Bahan
Langkah Kerja -> Diagram Alir
BAB III Hasil dan Pembahasan
Hasil
Pembahasan
BAB IV Kesimpulan dan Saran
4.1 Kesimpulan
4.2 Saran
Daftar Pustaka
Buku (min. 2)
Jurnal (min. 2)
TEKNIK PENGGUNAAN MIKROSKOP
Ambil mikroskop dari tempat penyimpanan
Buka penutup mikroskop, cek kelengkapan mikroskop.
Buka gulungan kabel mikroskop dan hubungkan stacker ke sumber listrik.
Nyalakan mikroskop dengan menekan tombol "ON" atau tanda """, kemudian atur pencahayaan, kembali lakukan pengecekan dengan cara mengamati dari lensa okuler, baik kebersihan lapangan pandang maupun cukup tidaknya pencahayaan serta berfungsi atau tidaknya penggeser lensa maupun penggeser sampel.
Letakkan sampel (preparat pada objek glass) pada meja obyek dan jepit dengan penjepit, usahakan daerah yang akan diperiksa tepat berada di bawah lensa objektif.
Gunakan lensa objektif mulai dari pembesaran rendah (4x10) ke tinggi (100x10).
Untuk pembesaran 1000x (100x10), gunakan minyak emersi.
Geser penggeser meja objektif (makrometer) ke atas dan ke bawah, kombinasikan dengan putaran fokus lensa (mikrometer), untuk memfokuskan pandangan pada daerah yang akan diperiksa.
Gunakan penggeser samping dan atas bawah untuk mengamati lapangan pandang yang lain.
Matikan lampu mikroskop bila dalam waktu ± 15 menit, mikroskop tidak digunakan.
Jangan sekali-kali memindahkan mikroskop saat lampu menyala "ON".
Pindahkan mikroskop dengan cara diangkat, jangan memindahkan dengan cara digeser.
Setelah pemakaian, matikan lampu mikroskop, kemudian cabut stacker dari sumber listrik
Bersihkan lensa dengan kertas lensa, bila perlu gunakan larutan xylol-alkohol terutama pada pembesaran 1000x yang memakai minyak emersi.
Gulung kabel dan kembalikan mikroskop ke tempat semula.
HELMINTH
CLASS: TURBELARIACLASS : TREMATODACLASS : CESTODAHelminthes atau cacing secara garis besar terbagi menjadi Nematoda dan Cestoda serta Trematoda, masing-masing mempunyai morfologi yang spesifik.
CLASS: TURBELARIA
CLASS : TREMATODA
CLASS : CESTODA
PLATYHELMINTHES
PLATYHELMINTHES
HELMINTH
HELMINTH
CLASS: NEMATODACLASS: NEMATOMORPHACLASS : ACANTHOCEPHALA
CLASS: NEMATODA
CLASS: NEMATOMORPHA
CLASS : ACANTHOCEPHALA
NEMATHELMINTHES
NEMATHELMINTHES
Helminthes secara garis besar terdiri atas cacing pipih dan gilik yang mempunyai sistem organyang berbeda. Sebagian masih bersifat hemaphrodite terutama pada Cestoda dan Trematoda, sedangkan pada Nematode pada umumnya sudah mempunyai jenis kelamin yang terpisah dan berbeda antara jantan dan betina.
Setiap jenis cacing dewasa mempunyai organ predileksi pada hospes, baik definitive maupun sementara. Pada Praktikum ini mahasiswa di tugaskan melakukan koleksi feses segar dan cacing dewasa pada berbagai spesies hospes, untuk dilakukan determinasi jenis di laboratorium.
METODE PENGAMATAN
a. Metode Natif
Letakkan tinja + setetes cairan (aquades/NaCl 0,85%, larutan eosin 2% dalam aquadestilata/lugol 1%) di atas gelas obyek
Hancurkan dengan lidi sampai homogen, buang benda kasar dengan lidi
Tutup dengan gelas penutup harus tidak boleh ada gelembung udara di dalamnya atau langsung di amati di bawah mikroskop (mulai dari pembesaran 40x sampai 400x)
ATAU
Campurkan 1 bagian tinja dengan 5-10 bagian air
Ambil dengan menggunakan pipet, buang tetesan pertama dan letakkan 1 tetes berikutnya pada objek glass
Tutup dengan coverglass, usahakan tidak ada gelembung udara sehingga tidak mengganggu identifikasi telur
Bila tidak ditemukan, pemeriksaan dapat diulangi dengan meneteskan lagi larutan feses
Metode Willis / Apung Modifikasi
Larutkan feses dengan air sehingga didapatkan konsentrasi 10% (1 bagian feses dengan 10 bagian air)
Ambil krg lebih 1 cc (25 tetes)larutan, masukkan dalam tabung reaksi yang diletakkan tegak pada rak tabung
Letakkan tabung pada rak tabung dengan posisi tegak
Tambahkan NaCl jenuh sampai membentuk cembung pada permukaan tabung
Tutup dengan gelas penutup dan biarkan 15 menit
Ambil gelas penutup dan letakkan pada objek gelas dan dilihat di bawah mikroskop dengan perbesaran 40-400x
Metode Parfitt and Banks(untuk membedakan telur Trematoda)
Ambil 2 gram tinja taruh dalam mortir dan tuangkan air secukupnya lalu aduk.
Tuangkan cairan tinja kedalam tabung reaksi sampai ¾ tabung kemudian tunggu 10 menit.
Buang supernatan sehingga hanya tersisa endapannya. Lakukan sebanyak 2 kali
Tetesi endapan dengan NaOH 10 % 3 tetes.
Tambahkan air sampai ¾ tabung lalu aduk.
Tunggu 10 menit, buang supernatan sehingga hanya tersisa endapan.
Tetesi endapan tinja dalam tabung dengam methylene blue 0,5 % sebanyak 2 tetes dan aduklah.
Ambil endapan paling bawah dengan menggunakan pipet lalu letakkan diatas objek glass dan diamati dengan mikroskop perbesaran 100 kali
BEDAH SALURAN CERNA UNGGAS (identifikasi cacing dewasa)
Amati saluran cerna unggas secara makroskopik sebelum dilakukan pembedahan
Amati dan catat adanya ptechiae atau bentukan abnormal lainnya
Buka organ pencernaan dari depan ke belakang (esophagus kloaka )
Amati adanya cacing pada saluran cerna unggas, ambil cacing tersebut, masukkan pada cawan petri dan catat predileksi ditemukannya cacing tersebut
Masukkan ke dalam formalin 10% dalam wadah tertutup
Bila ditemukan cacing pita, tarik sampai didapatkan skoleksnya
Amati cacing tersebut secara makroskopis dan tentukan perkiraan spesiesnya.
Beri label pada wadah tertutup berisi cacing yang berisi genus/spesies cacing, predileksi dan hostnya.
IDENTIFIKASI CACING DAN TELUR
IDENTIFIKASI CACING
TREMATODA
Ciri umum :
Pipih seperti daun, Hermaphrodite, kecuali Schistosoma sp., memiliki sucker
Jenis Trematoda :
Fasciola hepatica
Fasciola gigantica
Eurytrema pancreaticum
Cotylophoron cotylophorum
Gigantocotyle explanatum
Paramphistomum cervii
Paragonimus westermanii
Schistosoma japonicum
Paramphistomum cervii Fasciola hepatica
Paramphistomum cervii
Fasciola hepatica
Bagian – bagian tubuh cacing Trematoda (umum)
CESTODA
Ciri Umum :
Pipih ventrodorsal
Bersegmen seperti pita
Memiliki skoleks (kepala) yang dilengkapi rostrum
Hermaphrodite
Jenis Cestoda, a.l. :
Dipyllidium caninum
Diphyllobothrium latum
Taenia saginata
Taenia solium
Moniezia expansa
Dll.
Dipylidium caninum
Dipylidium caninum
Scoleks dari Dipylidium caninumSegmen dari Moniezia expansa
Scoleks dari Dipylidium caninum
Segmen dari Moniezia expansa
NEMATODA
Ciri Umum :
Bentuk badan gilig, radial simetri
Tidak bersegmen
Berkelamin ganda (Diosceus)
Telur keluar dalam bentuk telur berembrio (L1)
Jantan umumnya memiliki spikula
Contoh cacing NEMATODA:
Haemonchus contortus
Toxocara canis, Toxocara cati
Ascaris suum
Toxocara vitulorum
Heterakis gallinarum
Parascaris equorum
Gaigeria sp.
Mecistocirrus digitatus
Oesophagustomum sp.
Bagian Anterior dari Ascaris suum (3 bibir dorsal) Trichuris ovis
Bagian Anterior dari Ascaris suum (3 bibir dorsal)
Trichuris ovis
Bagian Posterior dari Ascaridia galli jantan (ujung petunjuk : spikula)
Bagian Posterior dari Ascaridia galli jantan (ujung petunjuk : spikula)
IDENTIFIKASI TELUR CACING
Secara umum telur cacing dapat diidentifikasi dengan melihat adanya dua lapis selubung putih telur (lapisan albumin) yang melindungi bentukan bulat yang umumnya berisi blastomer atau larva. Telur cacing dapat dibedakan dengan bentukan lain seperti butir air melalui ada tidaknya blastomer (isi telur), sedangkan bila dibandingkan dengan telur jenis lain dapat dilihat dari ukuran dan tebal tipisnya lapisan albumin yang menyelubungi telur.
TREMATODA
Ciri khas telur cacing Kelas Trematoda :
Memiliki operculum pada salah satu sisinya
Isi telur tampak padat
Umumnya berbentuk oval-bulat lonjong dengan lebar masing-masing ujung yang tidak sama (ujung yang satu lebih lebar dibanding ujung yang lain)
Dengan Metode Parfitt and Banks dapat dibedakan antara telur Fasciola dan telur dari genus lainnya
Telur cacing Paramphistomum cervii(ujung petunjuk: operculum)
Telur cacing Paramphistomum cervii
(ujung petunjuk: operculum)
CESTODA
Ciri khas telur cacing Kelas Cestoda :
Berbentuk bulat, segitiga, sampai persegi, tergantung kepada spesies cacing
Memiliki embrio dengan 6 pasang kait di dalam telur onkosfer/hexacanth embrio
lapisan albumin yang mengelilingi embrio umumnya tebal
telur nyaris tampak seperti transparan
biasanya keluar bersama dengan segmen proglotid yang matang (gravid)
Telur cacing Railletina tetragona(ujung petunjuk: onkosfer)
Telur cacing Railletina tetragona
(ujung petunjuk: onkosfer)
NEMATODA
Merupakan jenis cacing yang memiliki keragaman bentuk telur yang relatif banyak. Ciri khas yang membedakan adalah adanya blastomer, tidak memiliki operculum dan tidak nampak adanya kait (hexacanth embrio), lapisan albumin umumnya tampak jelas. Beberapa jenis telur Nematoda :
Telur dengan isi penuh, berbentuk bulat-oval, memiliki lapisan albumin yang sangat tebal Famili Ascarididae (ex: Toxocara sp., Ascaris suum, Parascaris equorum)
Telur cacing Toxocara canis (lapisan albumin sangat tebal)Telur cacing Ascaris suum (lapisan albumin sangat tebal)
Telur cacing Toxocara canis
(lapisan albumin sangat tebal)
Telur cacing Ascaris suum
(lapisan albumin sangat tebal)
Telur dengan isi penuh berbentuk oval-lonjong dengan lapisan albumin yang relatif tipis, telur tampak agak transparan Famili Heterakidae (ex: Ascaridia galli, Heterakis gallinarum)
Telur cacing Ascaridia galli
Telur cacing Ascaridia galli
Telur yang berisi larva, berbentuk lonjong, relatif transparan Famili Strongylidae (ex: Strongyloides sp.)
Telur cacing Strongyloides westermanii (ada larva)
Telur cacing Strongyloides westermanii (ada larva)
Telur dengan blastomer terlihat jelas, 2-16 buah blastomer dalam telur yang berlapis albumin Famili Ancylostomatidae (ex: Bunostomum trigonocephalum, Ancylostoma caninum), Famili Trichostrongylidae (ex: Haemonchus contortus)
Telur cacing Nematodirus sp.(ujung petunjuk: blastomer)
Telur cacing Nematodirus sp.
(ujung petunjuk: blastomer)
Telur dengan sumbat di ujung posterior maupun anterior (polar plug) Famili Trichuridae (ex: Trichuris vulpis)
Telur cacing Trichuris sp.(ujung petunjuk: polar plug)
Telur cacing Trichuris sp.
(ujung petunjuk: polar plug)
PENGHITUNGAN TELUR CACING
Penghitungan telur cacing ini dilakukan dengan cara menghitung total jumlah telur cacing per spesies pada setiap tetes larutan feses pada metode NATIF. Penghitungan dilakukan dengan menggunakan rumus:
N x n x 10
N x n x 10
Ket:
N = jumlah tetes dlm 1 cc larutan (±20 tetes)
n = jumlah telur cacing
10 = pengenceran (1:10)
Satuan : ... telur cacing per gram tinja
ARTHROPODA
Phylum Arthropoda dipelajari dalam ilmu yang umum disebut dengan Entomologi. Nama phyllum ini berasal dari bahasa Greek (Yunani) arthros (persendian) dan podos (kaki). Berdasarkan kenyataaan anggota phyllum ini mempunyai kaki-kaki yang serupa dengan kaki kepiting.
Artropoda adalah binatang bersegmen banyak. Segmen-segmen arthropoda cenderung menjadi kelompok tertentu, yaitu bagian anterior membentuk kepala, bagian tengah thorax dan bagian posterior abdomen.
Phyllum artrophoda dibagi dalam 5 kelas ialah :
Klas I : Crustacea Lmark, 1815
Subklas : Entomostraca Muller, 1785
Subklas : Malacostraca Latreile, 1802
KLAS II : Myriapoda, 1904
Klas III : Insecta Linnaeus, 1958
Klas IV : Arachnida arachnida, 1815
Klas V : Pentastomida heymonds, 1926
Arthropoda yang berpengaruh terhadap kesehatan hewan
KELAS
NAMA ILMIAH
CONTOH
Kelas: Insecta
Lalat penghisap darah
Ordo : Diptera
Lalat kandang, stable fly (Stomoxys calcitran), nyamuk, lalat hitam, lalat kuda, lalat tanduk, bitingmidges
Lalat tidak menghisap darah
Ordo : Diptera
Lalat rumah (Musca domestica), lalat-lalat yang berhubungan dengan kondisi kotor
Lalat invasiv (menyebabkan Myasis)
Ordo : Diptera
Lucilia, Calliphora, Phormia, Chrysomya, M domestica, dan gastrophyllus
Kutu penghisap
Ordo : Anoplura
Hog louse (Haematopinus suis)
Kutu penggigit
Ordo : Mallophaga
Cattle biting louse (Bovicola bovis)
Pinjal
Ordo : Siphonaptera
Pinjal kucing
Kelas : Arachnida
Tungau
Ordo : Acari
Scabies atau Itch mite (Sarcoptes scabei)
Caplak
Ordo : Acari
American dog tick (Dermacentor variabilis)
TEKNIK PEMBUATAN PREPARAT
METODE PINNING
Sampel yang didapat setelah dimatikan kemudian ditusuk di daerah medial thorax dengan jarum pentul.
Usahakan serangga dalam kondisi: sayap terkembang, kaki dibentangkan, agar mudah untuk dipelajarinya. Serangga-serangga kecil dapat diletakkan diatas ujung kertas segitiga dan ditempel menggunakan lem atau kuteks. Lem harus cepat kering, dan bila kering cukup keras.
Pemberian label: berguna untuk memberikan informasi tentang tanggal dan lokasi spesimen tersebut diperoleh. Label disesuaikan dengan keperluan.
Kotak penyimpan serangga : Dasar kotak harus lunak agar mudah untuk menancapkan ujung pin/jarum, ukuran tergantung serangga yang dikumpulkan. Penyimpanan dalam kotak diberikan kapur barus untuk mencegah dimakan serangga kecil lain.
METODE SCRAPING KULIT
Siapkan mata pisau yang relatif tajam atau scalpel
Lakukan pengerokan / scraping pada daerah yang diduga terkena scabiosis atau demodecosis berkerak tebal, aloplesia, deformitas (kadang-kadang)
Kerokan dilakukan dengan menggunakan pisau dengan sudut miring, kerok sampai kerak terlepas dan mengeluarkan darah
Bagian yang disimpan adalah hasil scraping terakhir yang dekat dengan permukaan yang mengeluarkan darah
Pemeriksaan dilakukan dengan cara merendam /mencampur hasil scraping dengan KOH 10%
Amati di bawah mikroskop dengan perbesaran 40x – 100x untuk mengamati adanya tungau (Sarcoptes scabiei, Demodex sp., Otodectes sp., Knemidocoptes sp., dll.)
PERMANEN MOUNTING TANPA PEWARNAAN
Clearing. Untuk melepas pigmen dari serangga dibunuh kemudian masukan dalam KOH 10% selama 1-10 jam, bila pigmen tebal semakin baik. Atau panaskan pada air mendidih dengan waktu disesuaikan tebalnya kutikula (tubuh serangga tampak trasparan).
Dehidrasi : menggunakan alkohol dengan konsentrasi semakin naik mulai 30 – 50 – 70 - 95 – 96% masing 3-5 menit selanjutnya dicelup dalam xylol /minyak cengkeh selama 1 menit.
Mounting/perekatan: letakkan serangga pada gelas objek dan menggunakan permount (canada balsem) secukupnya, ditutup dengan gelas penutup
Labelling: identifikasi dibawah mikroskop 40 – 100x kemudian diberi label.
Masukkan dalam inkubator sampai preparat kering untuk kutu, larva, nimfa caplak/pinjal dengan chitin tipis, maka setelah dimatikan langsung ditaruh pada glass objek, dikeringkan dengan kertas saring, di mounting dan dilabel, masukkan dalam inkubator sampai preparat kering.
IDENTIFIKASI ARTHROPODA
LALAT
Pengamatan untuk membedakan spesies lalat, dilihat dari :
Ukuran
Bentukan atau garis pada thorax dan abdomen
Venasi sayap
bentuk kepala dan tipe mulut
NYAMUK
Pengamatan untuk membedakan spesies nyamuk, dilihat dari :
Ukuran
Bentuk thorax dan abdomen
Bentuk dan morfologi khusus pada sayap
bentuk kepala dan tipe mulut
KUTU
Ciri Umum :
Pipih ventrodorsal
Abdomen sangat lebar
Thorax kecil /pendek
Kaki terletak pada thorax sebanyak 3 pasang
Bentuk kepala membedakan golongan kutu (penghisap, penggigit, atau peralihan)
Haematopinus eurysternus
Haematopinus eurysternus
Contoh spesies kutu :
Columbicola columbae (unggas)
Damalinia ovis
Damalinia bovis
Menacanthus sp.
Phtirus pubis
Pedunculus humanus
Lipeurus caponis
Felicola subrostata
Tricodectes canis
Dll.
PINJAL
Ciri Umum :
Pipih laterolateral
Memiliki sepasang kaki belakang yang panjang dan kuat untuk melompat
Bentuk kepala membulat dengan genal comb
Kaki depan pendek
Abdomen besar, thorax pendek
Ctenocephalides felis
Ctenocephalides felis
Contoh Spesies Pinjal :
Xenopsylla cheopis (tikus)
Ctenocephalides canis (anjing)
Ctenocephalides felis (kucing)
Dll.
CAPLAK
Ciri Umum :
Pipih ventrodorsal
Lapisan chitin tebal
Abdomen pada betina tidak tertutup chitin
Kaki 4 pasang
Memiliki mulut tipe penghisap dengan gigi
Ixodes ricinus
Ixodes ricinus
Contoh Spesies Caplak :
Boophilus microplus (sapi)
Rhipicephalus sanguineus (anjing,kucing)
Ixodes ricinus
Aponnoma sp.
Amblyomma sp.
Dll.
TUNGAU
Ciri Umum :
Kepala tersembunyi pada bagian ventral
Tampak dorsal hanyalah bagian abdomen
4 kakinya pendek dan berambut
Biasanya bagian badannya berduri
Ukuran sangat kecil
Psoroptes sp.
Psoroptes sp.
Contoh Spesies Tungau :
Sarcoptes scabiei
Demodex sp.
Knemidocoptes gallinae
Otodectes canis
Dll.
PROTOZOA
Protozoa merupakan organisme ber sel tunggal
Mempunyai variasi ukuran dan bentuk
Dari sejumlah protozoa, hanya sebagian kecil bersifat parasiter
Di dapatkan dalam jaringan tubuh dan tinja
Sebagian tidak membahayakan hospes
Tetapi sebagian akan bersifat pathogen dan mengakibatkan penyakit
Contoh jenis protozoa parasitic
TrypanosomabruceiTrypanosomaequiperdumLeishmaniadonovaniLeishmaniainfantumGiardiaduodenalisTrichomonasgallinaeTritrichomonasfoetusHistomonasmeleagridisCryptosporidium parvum
Trypanosomabrucei
Trypanosomaequiperdum
Leishmaniadonovani
Leishmaniainfantum
Giardiaduodenalis
Trichomonasgallinae
Tritrichomonasfoetus
Histomonasmeleagridis
Cryptosporidium parvum
Balantidium coliEimeriaacervulinaEimeriatenellaIsosporacanisToxoplasmagondiiNeosporacaninumHammondiahammondiBesnoitiabesnoitiBabesiadivergens
Balantidium coli
Eimeriaacervulina
Eimeriatenella
Isosporacanis
Toxoplasmagondii
Neosporacaninum
Hammondiahammondi
Besnoitiabesnoiti
Babesiadivergens
METODE PENGAMATAN
METODE ULAS DARAH
*Darah dapat diambil dari vena telinga pada kuda, sapi, kambing, babi, anjing atau vena sayap pada unggas
Siapkan darah yang akan diperiksa (darah segar atau darah+EDTA atau lokasi pengambilan darah pada hewan yang sudah dilukai)
Siapkan dua objek glass (A dan B) yang bersih. Objek glass A adalah objek glass alas sedangkan objek glass B adalah objek glass pengulas
Teteskan setetes darah dengan bantuan pipet pasteur pada ujung objek glass A atau sentuhkan tepi lebar objek glass pengulas (B) pada lokasi pengambilan darah pada hewan tanpa menyentuh kulit atau bulu.
Pegang dengan kuat objek glass A memakai jari telunjuk / tengah dan ibu jari atau letakkan pada bidang datar.
Ambil objek glass pengulas dan letakkan tepi lebar objek glass pengulas pada tetesan darah sampai semua tepi lebarnya terbasahi oleh darah. (Untuk objek glass yang langsung disentuhkan pada lokasi pengambilan darah, proses 1-4 langsung dilanjutkan ke proses no.6.)
Bila darah pada tepi lebar terlalu banyak, pindahkan objek glass B di depan tetesan darah pertama sehingga diperkirakan hasil usapan akan habis sebelum lapangan pada objek glass A habis
Buat sudut antara objek glass B dan A sebesar ± 30°.
Gesekkan objek glass B ke depan dengan cepat untuk mengulaskan darah pada objek glass B sehingga didapatkan hasil semakin ke ujung objek glass A semakin tipis.
Tidak diperbolehkan menghentikan pengulasan pada tengah lapangan objek glass A sebelum darah habis dan usahakan darah habis pada ujung lapangan objek glass A.
Keringkan hasil ulasan darah pada suhu kamar.
30°
Preparat apus
METODE PEWARNAAN GIEMSA
Siapkan ulas darah tipis yang sudah dikeringkan
Fiksasi ulas darah tipis dalam methanol absolut selama 3 menit.
Tanpa dikeringkan, masukkan onjek glass pada larutan Giemsa 10-20% selama 30 menit.
Setelah 30 menit, ambil objek glass dan cuci dengan air mengalir dengan pelan sampai zat warna yang berlebih hilang. Tidak diperbolehkan menggosok hasil usapan darah.
Keringkan objek glass dengan cara meletakkan objek glas pada posisi berdiri pada bidang pengering suhu kamar. Pengeringan dapat dipercepat dengan menggunakan kipas angin.
Periksa di bawah mikroskop dengan pembesaran 400x – 1000x (pada pembesaran 1000x, gunakan minyak emersi).
SWAP KERONGKONGAN
Siapkan objek glass dan cawan petri yang berisi NaCl fisiologis.
Pegang unggas yang didiagnosa terserang trichomoniasis dan buka mulut lebar-lebar.
Masukkan cotton swab yang sudah dibasahi NaCl fisiologis dan campur sampai homogen.
Ambil satu tetes campuran NaCl dan hasil swab menggunakan pipet pasteur teteskan pada objek glass dan tutup dengan cover glass.
Lihat di bawah mikroskop dengan perbesaran 400-1000x
KEROKAN USUS
Ambil dan gunting saluran pencernaan secara horisontal sehingga lumen saluran pencernaan terbuka
Kerok lapisan mukosa saluran pencernaan, terutama yang memiliki lesi patologi
Campur hasil kerokan dengan NaCl fisiologis
Ambil satu tetes hasil kerokan dan letakkan pada objek glass dan tutup dengan cover glass.
Periksa di bawah mikroskop dengan pembesaran 400x -1000x.
PEMERIKSAAN TINJA
Buatlah preparat apus tinja sederhana pada gelas obyek, dengan cara mengambil dari sekum dengan cover glass atau dari larutan feses hasil dari metoda natif, sedimentasi, atau apung lalu tutup dengan gelas penutup
Amati di bawah mikroskop adanya ookista/ protozoa saluran cerna
IDENTIFIKASI PROTOZOA
PROTOZOA DARAH
Trypanosoma equiperdum
Trypanosoma equiperdum
Haemoproteus sp.
Haemoproteus sp.
Leucocytozoon sp.
Leucocytozoon sp.
PROTOZOA JARINGAN
Skizon dari Eimeria sp. (pada gerusan jaringan usus)
Skizon dari Eimeria sp.
(pada gerusan jaringan usus)
Balantidium coli (stadium kista)
Balantidium coli
(stadium kista)
DAFTAR PUSTAKA
Ballweber, L.R. 2001. ThePractical Veterinarian. Veterinary Parasitology. USA: Butterworth-Heinemann
Gosling, P.J. 2005. Dictionary Of Parasitology. CRC Press.
Kaufmann, J. 1996. Parasitic Infection on Domestic Animal: A Diagnostic Manual. Germany: Birkhäuser.
Monnig, H.O. 1950. Veterinary Helminthology And Entomology. The Diseases Of Domesticated Animal Caused By Helminth And Arthropod Parasites. Third Edition. Baltimore : Thw William &Wilkins Company.
