Pengantar Praktikum Parasitologi Kedokteran • Praktikum parasitologi mhs
Cara
pembelajaran
utk mengenal berbagai agen penyebab penyakit serta vektor dgn melihat sediaan/slide . • Tujuan : mengenal dan mengidentifikasi berbagai /
Tiga topik praktikum parasitologi : •
Parasit dalam tinja
•
Parasit dalam darah dan jaringan
•
Pengenalan serangga vektor
•
3 kali praktikum dgn 3 X pretes.
•
Mhs tdk perlu menggambar pahami dan beri keterangan.
Parasit-parasit dalam tinja manusia • Hal-hal yg perlu diperhatikan pada pemeriksaan
tinja utk parasit : > Yang terbaik: tinja baru/segar segera > Tinja dgn bahan pengawet, dikenal berbagai bhn pengawet, yg dipilih berdasar tujuan. Misal : formalin 5-10%, SAF, MIF,
ALUR PEMERIKSAAN TINJA PARASITOLOGIS
WHO&Garsia TINJA : Prot. Usus, telur/larva cacing, Coccidia
Tinja dgn pengawet : dipilih berdasar tujuan
Tinja baru
Sediaan basah langsung
Cara konsentrasi +
+
-
konstr
konstr
+
Sediaan permanen
-
DIAGRAM ALUR PROSEDUR DIAGNOSTIK PARASITOLOGI TINJA TANPA PENGAWET
NaCl 0.85%, IOD / Lar. BMB
SEDIAAN BASAH APUS
FORMALIN 5% ATAU 10%
METODE KONSENTRASI
TELUR – TELUR, /LARVA HELMINTH.
KISTA PROTOZOA
KISTA PROTOZOA
IOD : (-) NaCl 0.85% : (+)
SEDIAAN APUS CAT PERMANEN
TELUR – TELUR, /LARVA HELMINTH.
MOTILITAS :
FIKSASI PVA,SAF SCHAUDINN’S
MORFOLOGI UMUM BEBERAPA PROTOZOA TIDAK TERIDENTIFIKASI HANYA
TROPOZOIT DAN KISTA PROTOZOA
MORFOLOGI YANG DETAIL PROTOZOA : TROFOZOIT DAN KISTA DAPAT DIIDENTIFIKASI
Pemeriksaan Tinja : • Meliputi : > mikrobiologis dan parasitologis > tes biokimiawi : darah, lemak dll > tes serologi > kultur tinja. • Umumnya selektif disesuaikan dgn tujuan
Pemeriksaan tinja parasitologis • Pem. Makroskopik : > warna : kuning, putih , hijau /hitam > bau tinja : amis, atau bau busuk > adanya : lendir, darah, potongan jaringan, sisa mkn : lemak, serat2 ; sisa obat : zat besi, magnesium/barium. > konsistensi tinja : padat, lembek, cair
Pemeriksaan Tinja Mikroskopik • Pem. tinja cara langsung ( sediaan basah) > Dengan lar. Garam fisiologis Bufer MB > Dengan lar. Lugol • Pem. Tinja dgn cara konsentrasi : > Cara sedimentasi > Cara flotasi • Pem tinja khusus penghitungan telur. Penghitungan larva cacing. Dll
SPESIMEN PEMERIKSAAN PARASITOLOGIS 1. TINJA 2. DARAH 3. URIN 4. SPUTUM, ASPIRAT DAN BAHAN BIOPSI
I. TINJA Pemeriksaan rutin telur dan Parasit terdiri dari 3 hal :
•
Sediaan Basah Langsung
•
Pemeriksaan bahan konsentrasi tinja
•
Sediaan dengan pulasan permanen
CARA KOLEKSI DAN PENGAWETAN SPESIMEN TINJA I.
KEAMANAN Semua Spesimen segar adalah sumber bahan infeksius potensial (bakteri, virus, jamur, parasit) harus ditangani dengan hati2 dan semua pedoman umum pemeriksaan dan tindakan pencegahan khusus harus diterapkan di lab. Parasitologi diagnostik.
• •
Pelabelan fiksasi yang benar Tempat penampungan spesimen bermulut lebar dan tertutup rapat (agar tidak mudah tumpah) Tempat khusus penanganan spesimen Cara pembuangan yang baik Peraturan larangan makan/minum di tempat kerja
• • •
II. KOLEKSI SPESIMEN SEGAR Harus dilakukan sebelum pemeriksaan radiologis dengan barium, terapi Antibiotik (mis. tetrasiklin mempengaruhi flora usus), antimalaria atau antidiare. Setelah pemberian preparat2 tersebut, pemeriksaan parasitologis ditunda minimal 2 minggu kemudian. Koleksi tinja tidak boleh tercampur air (karena dapat mengandung organisme bentuk bebas yang menyerupai parasit manusia) atau urin (karena urin dapat mengahncurkan organisme – organisme yang bergerak)
Jumlah spesimen: Dianjurkan 3 seri: 2 dari defekasi biasa, 1 setelah pemberian pencahar (MgSo4 / Minyak Fosfo Fleet). Jika curigai Amebiasis, dianjurkan pemeriksaan 6 spesimen dapat menjamin ditemukannya sampai 90% infeksi amebic (Faust and Sawitz, 1942) Waktu koleksi: Satu seri dari 3 spesimen hrs dikirim pd hari yang berbeda (selang sehari). Pengambilan spesimen pada waktu yang adekuat membantu penemuan parasit.
Jumlah dan waktu pengiriman spesimen: Dianjurkan 3 seri: 2 dari defekasi biasa, 1 setelah pemberian pencahar (MgSo4 / Minyak Fosfo Fleet). Jika curiga Amebiasis, dianjurkan pemeriksaan 6 spesimen dapat menjamin ditemukannya sampai 90% infeksi amebic (Faust and Sawitz, 1942). Satu seri pengiriman spesimen hrs dikirim pd hari yang berbeda (selang sehari). Jenis, stabilitas dan kebutuhan pengawetan spesimen: Spesimen segar - Dianjurkan utk pmx Trof. motil (ameba/flagellata) - Umumnya hanya trophozoit ditemukan di tinja cair. Tinja lunak bisa trophozoit dan kista, sedang tinja padat hanya kista. - Segera prx tinja cair 30 menit / tinja lunak 1 jam setelah dikeluarkan. Sedang tinja padat diperiksa setiap saat dalam 24 jam.
Spesimen dengan pengawet Tujuan : mengawetkan morfologi protozoa dan mencegah berkembangnya telur / larva. Pengawet yang umum digunakan: Pengawet
Sediaan hapus dengan pulasan permanen
Formalin 5%, 10% Formalin buffer 10% MIF SAF PVA Schaudinn (tanpa PVA)
Hematoksilinom atau Trikrom
Diagram pemeriksaan Tinja TINJA
SEGAR
PENGAWETAN
SEDIAAN LANGSUNG
POS
NEG
KONSENTRASI
POS
KONSENTRASI
NEG
POS
NEG
KONSENTRASI
POS
NEG PUL. PERMANEN
Beberapa Larutan Pengawet •
Formalin 5% atau 10% Biasanya 5% untuk mengawetkan protozoa; 10% untuk telur dan larva cacing. Pmx spesimen hanya dapat dilakukan mll sediaan basah saja.
•
Merthiolate-Iodine-Formalin (MIF) Baik untuk berbagai stadium dan semua jenis sampel. Terutama digunakan dilapangan. pmx spesimen biasanya dilakukan mll sediaan basah.
•
Sodium Acetate-Acetic Acid-Formalin (SAF) Mirip formalin 10%, Digunakan untuk teknik konsentrasi dan sediaan pulas permanen (HE). Bisa digunakan sebagai pengawet tunggal di laboratorium karena telur, larva, cacing, kista dan trofozoit bisa diawetkan dengan metode ini.
Beberapa Larutan Pengawet (…………l an ju t an ) •
Schaudinn Digunakan untuk spesimen tinja segar atau sampel dari permukaan mukosa usus dibuat sediaan hapusan permanen.
•
Polivinil Alkohol (PVA) Biasanya digunakan bersama dengan Schaudinn. Keuntungan: dapat dibuat sediaan hapus dengan pulasan permanen. Sangat dianjurkan untuk pemeriksaan Kista dan Trofozoit yang akan diperiksa dikemudian hari (jika perlu waktu pengiriman yang lama)
PENGIRIMAN SPESIMEN TINJA Paket lab/klinik harus mengikuti peraturan pos yg dirancang untuk melindungi pegawai yang terlibat transfer, meliputi:
Harus ada penampung ganda. Lembar instruksi, keterangan pasien dll. Disampulkan pada botol tsb. Sebelum diletakkan dipenampung luar.
Kaca obyek/sediaan pulasan pulasan tinja tidak perlu penampung ganda, hanya dalam kotak/kardus.
Semua label harus diperiksa untuk menjamin pengiriman yang baik.
PEMERIKSAAN SPESIMEN TINJA • PEMERIKSAAN MAKROSKOPIS: spesimen diperiksa mengenai konsistensi (keras, lunak, cair), warna, terdapatnya abnormalitas (bau, lendir, nanah, darah, cacing) • PEMERIKSAAN MIKROSKOPIS Dilakukan dengan beberapa macam pemeriksaan: 1. Drect wet mount (Sediaan basah dengan Pengecatan langsung) 2. Fecal flotation (Tehnik pengapungan tinja) 3. Permanent stain (pengecatan permanen)
Pemeriksaan Mikroskopis Tinja secara langsung
Pemeriksaan Mikroskopis Tinja secara langsung
ELEMEN-ELEMEN DALAM PEMERIKSAAN MIKROSKOPIK 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7.
Trofozoit dan kista prot usus Telur dan larva cacing Eritrosit menunjukkan adanya ulserasi Lakosit (PMN) tanda peradangan Eosinofil tanda respon immun akibat inf parasit. Makrofag pada inf bakteri / parasit Kristal Charcot-Leyden ditemukan bila terjadi disintegrasi eosinofil (bisa disebabkan bukan o/ parasit) 8. Jamur (mis. Candida sp, “yest-like fungi” atau ragi.) 9. Sel-sel tanaman, butiran tepung sari atau spora jamur (menyerupai beberapa telur cacing atau kista protozoa) 10. Serat-serat tanaman/ akar rambut (menyerupai larva cacing)
Metode pemeriksaan sediaan basah langsung dengan menggunakan obyektif 10x
CATATAN: Jika diperlukan untuk memastikan ciri-ciri khusus dari organisme yang dicurigai, sebaiknya dikerjakan pulasan permanen
Metode Konsentrasi • Tujuan : deteksi sejumlah kecil parasit yang mungkin tidak ditemukan pada pmx. Sediaan langsung. • Dasar : memisahkan org. protozoa, telur dan larva cacing dari kotoran tinja melalui perbedaan Berat Jenis (Faust dkk, 1938) • Ada 2 macam: Flotasi dan Sedimentasi
Prosedur Flotasi • Memisahkan kista protozoa, telur dan larva cacing ttt dg menggunakan cairan Berat Jenis tinggi • Elemen2 parasit ditemukan lap. Permukaan atas dan kotoran tetap didasar tabung. • Keuntungan: menghasilkan sediaan yang bersih (dp. Sedimentasi) • Kerugian : beberapa telur cacing (beroperkulum dan/ telur yang sangat padat, misal ascaris yg belm dibuahi) tidak terkonsentrasi dengan baik mll metode ini.
Prosedur konsentrasi-Flotasi Seng Sulfat Berguna untuk menemukan kista protozoa dan telur cacing, Kecuali: Telur trematoda,Cestoda dan Ascaris lumbricoides yg blm dibuahi tidak dapat dikonsentrasi dg metode ini.
A. Kawat ujung bulat scr hati2 di letakkan pada permukaan lapisan air. A. Kemudian kawat diletakkan pada gelas obyek.
Prosedur Sedimentasi • Dengan menggunakan Centrifuge
• Keuntungan: dapat ditemukan semua protozoa, telur dan larva; namun lebih banyak mengandung kotoran. • Teknik ini lebih dianjurkan sebagai pemeriksaan rutin dibanding teknik flotasi. • Ada beberapa teknik: 1. teknik Eter-Formalin – bahan segar 2. teknik Formalin eter _ Pengawet Bahan Pemeriksaan SAF
Sediaan Hapusan dengan Pulasan Permanen • Kelebihan: 1. Identifikasi parasit secara benar 2. Preparat dapat disimpan permanen 3. Dapat digunakan untuk mengadakan konsultasi dengan pakarnya (jika ditemukan bentuk aneh) Garc ia dk k , 1979
“Pulasan permanen dianjurkan untuk setiap sampel tinja yang dikirim guna pemeriksaan rutin parasitologis.”
Beberapa Teknik Pemulasan: 1. TRIKROM 2. HEMATOKSILIN-BESI 3. PEMULASAN KH KHUSUS UNTUK Cryptosporodium spp dan spp dan Coccidia lainnya.
I. Pemulasan Trikrom •
Dianjurkan untuk pemeriksaan rutin, karena prosedur lebih simpel, memberikan hasil yang baik untuk bahan segar maupun yang diawetkan dengan PVA/SAF.
•
Merupakan modifikasi dari pemulasan GOMORI GOMORI..
• 1. 2. 3. 4.
TAHAP-TAHAP PENGECATAN: Fiksasi : rendam 30‟ di Lar Schaudin (u/ tinja segar) Pengeringan Rendam da dalam al alkohol-yodium. Pemulasan Trikrom
Sifat-sifat Pemulasan Organisme dengan Trikrom Masalah biasanya timbul karena: • Spesimen yang sudah terlalu lama • Sediaan terlalu tebal • Sediaan mengering sebelum difiksasi, • Fiksasi tidak adequat
Mengakibatkan gagalnya organisme terpulas atau akan Mengakibatkan terpulas menjadi kemerahan. Mestinya, pemulasan yang baik akan menghasilkan latar belakang hijau sedangkan sitoplasma organisme berwarna biru kehijauan/ungu; kromatin inti, benda kromatoid/benda kromatoid/bend a inklusi lain berwarna merah-merah
II. Pemulasan Hematoksilin-Besi Ada 2 metode yang terkenal: 1.
Metode Spencer-Monroe Tidak memerlukan „destaining‟. latar blk materi dan organisme berwarna biru abu-abu s/d hitam.
2.
Metode Tompkins-Miller menggunakan Asam Fosfotungstat untuk „destain” protozoa”. Hasilnya sangat memuaskan, meskipun dilakukan oleh yang kurang ahli.
III. Tehnik-tehnik khusus untuk Cryptosporidium spp dan Coccidia Lainnya • Pemeriksaan tinja rutin yang telah dibicarakan sebelumnya tidak dianjurkan untuk memeriksa Cryptosporidium spp. • Ekstra hati2 dalam memeriksa spesimen pasien AIDS. Untuk menghindari pemaparan yang tidak perlu dari bahan tinja yang mungkin mengandung AIDS dan infeksi patogen lainnya, dianjurkan Teknik modifikasi Flotasi.
Catatan Mengenai Karakteristik Pemulasan Cryptospodridium 1.
Dengan pulasan tahan asam, organisme cenderung berwarna merah muda s/d merah.
1.
Latar belakang hiasanya berwarna uniform, yaitu biru/hijau/dll, tergantung dari “counterstain” yang digunakan
1.
Pada spesimen padat, sangat penting untuk meningkatkan lama pemulasan (memungkinkan organisme lebih menonjol)
1.
Metode tahan asam dengan panas, akan memaksimalkan penemuan dan identifikasi org. pada spesimen-spesimen yang sulit.
Diagram Kerja Untuk Spesimen Tinja (Coccidia) TINJA
segar
Diawetkan
Sediaan langsung
konsentrasi Pos
Neg
konsentrasi
Pos
Pos
konsentrasi
Neg
Pos
Neg
SEDIAAN APUS PULASAN PERMANEN
Neg
Teknik Tambahan untuk Pemeriksaan Tinja KULTUR DARI STADIUM LARVA NEMATODA
Kultur Kertas Saring Harada-Mori Kultur kertas saring miring Kultur arang PEMERIKSAAN TELUR
1.
Perkiraan banyaknya cacing a. Metode Beaver b. Metode Pengenceran hitung Stoll 2. Penetasan telur Schistosoma MENEMUKAN SKOLEX CACING PITA Setelah pengobatan, apabila skolex tidak keluar pasien diberi garam pencahar mengumpulkan semua tinjanya selama 24 jam dalam Formalin 10% diperiksa.
Kultur Kertas saring Harada-Mori • Metode deperkenalkan oleh Harada dan Mori (1955) dan dimodifikasi oleh Hsieh (1962). • Untuk mendeteksi infeksi ringan cacing tambang, Strongyloides, dan Trychostrongylus spp., serta mempermudah identifikasi spesifiknya. • Bahan tinja tidak boleh dimasukkan kulkas, karena Necator americanus sensitif terhadap suhu dingin, sehingga tdk akan melanjutkan perkembangannya. • Hati-hati karena larva infektif strongyloides dapat bermigrasi keatas maupun kebawah.
Kultur Kertas saring Harada-Mori
Kertas saring
Tinja pada cellophan
air
Penetasan telur Schistosoma •
•
Jika ditemukan telur skistosoma di urin/tinja, harus diperiksa secara seksama untuk menentukan viabilitasnya. Adanya mirasidium hidup menunjukkan suatu infeksi aktif, pasien harus diobati.
Viabilitas telur murasidium dapat ditentukan dengan 2 cara: (1) Silia mirasidium mungkin terlihat pada sediaan basah karena aktif bergerak. (2) Dengan teknik penetasan. Telur akan menetas dlm bbrp jam bila diletakkan dalam 10 vol air yang telah dide-klorinasi. Mirasidium bersifat Fototropik positif, maka dapat diidentifikasi dalam air yang diterangi.
Daftar Permintaan dan Laporan Pemeriksaaan Laboratorium Parasitologi
Pemeriksaan Spesimen lain:
1. Pemeriksaan Cacing Kremi 2. Bahan dari Sigmoidoskopi 3. Bahan pemeriksaan dari Duodenum 4. Spesimen Urogenital
Pemeriksaan Cacing Kremi (“Pin Worm”=“Seat Worm”)) •
Cacing betina migrasi keluar anus, pada malam hari, untuk meletakkan telurnya di sekitar perianal telur jarang ditemukan pada tinja.
Beberapa cara pengmbilan sampel: 1. Menggunakan Pita Plastik Perekat (“Cellulose Tape”=“Adhesive Cellophane Tape”). 2. Anal Swabs. Sample harus diambil pada pagi hari sebelum pasien mandi/BAB
“Cellulose Tape”=“Adhesive Cellophane Tape”.
Spesimen Urogenital • Sediaan basah sekret vagina, uretra dan prostat atau sedimen urin. • Spesimen diencerkan dengan setetes garam fisiologis dan langsung diperiksa dg mikroskop dengan sedikit cahaya untuk melihat gerakan aktif organisme Trichomonas vaginalis. • Banyaknya laporan hasil positif atau negatif palsu, menguatkan anjuran untuk menggunakan monoklonal Ab dalam menegakkan Dx. • Pemeriksaan sedimen Urin bisa dilakukan untuk inf filaria (Onchocerca volvulus) • Tehnik filtrasi membran untuk menemukan telur Schistosoma haematobium juga sangat berguna.
Tehnik filtrasi membran pada sample Urin 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8.
Kumpulkan sampel urin Ambil 1 ml urin dengan spuit Isi sisa spuit dengan udara Tempelkan pemegang filter yang berisi filter „Nucleophore‟ dg uk pori 8 mm Semprotkan urin melalui filter Pindahkan filternya dan letakan filter secara terbalik pada gelas objek mikroskop Filter dilembabkan dengan lar NaCl 0.85% Periksa filter dengan pembesaran 100x untuk melihat adanya telur
Sputum • Organisme yang dapat ditemukan dalam sputum adalah: Cacing: Ascaris lumbricoides, Strongyloides stercoralis, cacing tambang, telur paragonimus westermani, kait Echinococcus granulossus. Protozoa :
Pneumocystis carinii, Entamoeba histolytica, Entamoeba ginggivalis, Trichomonas tenax, dan Cryptosporidium
S p u t u m (…….. l an ju t an ) • Biasanya diperiksa sebagai sediaan basah, yang tidak dikonsentrasi. • Sputum harus berasal dari sal pernapasan (bukan ludah/cairan mulut). Usahakan sputum pagi dan harus segera dikirim ke laboratorium. • Bila sputum kental tambahkan NaOH3% dengan jumlah yang sama campur rata centrifuge buang supernatan periksa sedimen dengan NaCl atau Iodium. • Jika pemeriksaan tidak segera formalin 10% atau PVA dipulas Giemsa, tahan asam atau Ab Monoklonal.
S p u t u m (……..l an ju t an ) • Biasanya diperiksa sebagai sediaan basah, yang tidak dikonsentrasi. • Sputum harus berasal dari sal pernapasan (bukan ludah/cairan mulut). Usahakan sputum pagi dan harus segera dikirim ke laboratorium. • Bila sputum kental tambahkan NaOH3% dengan jumlah yang sama campur rata centrifuge buang supernatan periksa sedimen dengan NaCl atau Iodium. • Jika pemeriksaan tidak segera formalin 10% atau PVA dipulas Giemsa, tahan asam atau Ab Monoklonal.
A s p i r a t Paru • Biasanya pada pasien Pneumocystis carinii. • Organisme Pneumocystis carinii dapat dilihat dengan sediaan hapus-tekan bahan paru2 yang didapat dari biopsi terbuka atau “brush” dan telah dipulas. Pemeriksaan sputum umumnya tidak dpt digunakan u/ dx pneumocystis • Pemeriksaan spesimen pada kasus Pneumocystis seringkali disebut sbg prosedur STAT dan secara rutin dikerjakan di PA.
AspIrat Hati
• Trofozoit E histolytica dapat ditemukan pada pemeriksaan aspirat paru dan hati; sering sangat sulit untuk mendemostrasikan organisme. • Bahan aspirat hati harus diambil dari bag. Tepi abses, bukan tengahnya yang nekrotik. • The Amebiasis Research Unit, Durban, South Africa menganjurkan enzim proteolitic untuk membebaskan organisme dari bahan aspirat.
A s p I r a t Hati
Pemeriksaan bahan Kista Hidatid • Aspirasi ini merupakan prosedur yang berbahaya, biasanya hanya dikerjakan pada tehnik operasi terbuka untuk pengambilan kista. • Cairan akan berisi “Hidatid sand” (skolex intact/degeneratif, kait-kait dan korpuskel kalkareus) • Dx dibuat dengan melihat kait-kaitnya. • INGAT: tidak ditemukannya skolek/kait-kait tidak berarti tdk ada penyakit hidatid, karena beberapa kista bersifat steril dan tidak mengandung anak.
Dikenal 2 (dua) macam sediaan darah tepi :
1. Sediaan darah tebal 2. Sediaan darah tipis •
Dianjurkan untuk membuat 2 sediaan darah, Tipis dan tebal, agar dapat mendeteksi infeksi ringan.
•
Akan tetapi untuk identifikasi morfologi lebih baik dengan sediaan apusan darah tipis.
Bbrp ctt penting 1.
Darah harus mengalir bebas dari jari yang ditusuk (tidak boleh dipencet). Karena darah akan diencerkan dan mengurangi jumlah parasit/lap pandang.
2.
Untuk darah yang langsung dikirim ke lab, sebaiknya dengan menggunakan EDTA (20mg EDTA/10mL darah)
3.
Saat pengambilan spesimen harus jelas tertulis, sehingga dokter dapat menghubungkan antara hasil pemeriksaan dengan pola demam/gx lain pasien.
4.
Dari lap. Yang dikirimkan kembali ke dokter, terdapat juga bbrp petunjuk, bahwa hasil pemx negatif dari suatu spesimen, tidak menyingkirkan kemungkinan infeksi parasit.
Sediaan darah tebal Keuntungan : Parasit mudah dapat ditemukan walaupun parasite count relatif rendah. Berguna untuk pemeriksaaan darah filaria. Kerugian : Struktur masing-masing stadium kurang begitu jelas
Sediaan darah tipis Keuntungan : Struktur Plasmodium dari masing-masing stadium dapat dilihat dengan jelas. Kerugian: Parasit sulit ditemukan bila parasite count rendah. Mikrofilaria bisa rusak bila dibuat sediaan darah tipis.
Persiapan dan Alat pembuatan apusan darah tepi Alat : 1. Jarum steril 2. Alkohol 70 % 3. Kapas 4. Gelas objek yg bersih dan bebas lemak 5. Larutan Giemsa (1 ml Giemsa induk dilarutkan dalam 14 ml Buffer pH 7,2) 6. Methyl alkohol
Apusan darah tebal Jari tengah
Jarum steril
1. Darah diambil dari jari tengah, jari manis atau daun telinga. 2. Sebelumnya jari tsb dibersihkan dengan alkohol 70%, kemudian ditusuk dengan jarum steril sampai keluar darah.
Gelas objek
3. Tetesan darah pertama diusap dengan kapas bersih. 4. Tetesan selanjutnya diletakkan di atas gelas objek, satu tetes di tengah. 5. Ratakan sehingga membentuk lingkaran dengan garis tengah ± ½ cm. 6. Keringkan dalam suhu kamar (untuk darah tebal)
Apusan darah tebal (………………..lanjutan) Gelas benda
1. Lebarkan darah memakai bagian sudut dari gelas benda yang lain.
Tetesan darah
2. Menilai ketebalan hapusan yang benar : jarum aloji atau huruf cetak hitam yang di letakkan di bawahnya masih dapat terlihat.
Jarum arloji Gelas benda
Cetakan huruf
Sediaan darah tipis 1. Kira2 ½ tetes darah diletakkan di tepi gelas benda. 45°
2. Ambil gelas benda yg lain, letakkan tepinya di pinggir tetesan darah dengan membentuk sudut 45° d atas tetesan darah. 3. Tunggu sampai darah mengalir merata pada tepi gelas benda ini.
Cara pengamatan
4. Geserkan gelas benda ini dengan cepat ke depan (berlawanan dengan sudut 45° yg terbentuk, darah berada di belakang persinggungan gelas benda).
5. Keringkan pada suhu kamar.
Buffer pH 7,2
Pengenceran 1:15 Giemsa induk
1. Pada tetes darah tebal yang sudah kering, tuangkan larutan Giemsa sebanyak ± 3 cc, tunggu 45 menit. 2. Tuang larutan Giemsa tsb. dan cuci di bawah air mengalir secara tidak langsung selama ± 10 detik. 3. Tunggu sampai kering, kemudian periksa di bawah mikroskop dengan perbesaran kuat, memakai minyak imersi.
1. Plasmodium falciparum • SEDIAAN DARAH TIPIS • Dalam darah tepi biasanya hanya terlihat stadium trofozoit muda bentuk cincin dan atau gametosit memberikan gambaran yang monoton. • Bila penyakit berat semua stadium bisa terlihat dalam darah tepi. • Umumnya stadium skizon ada dalam organ dalam.
Pengenalan serangga vektor • Tujuan : mengenal serangga2 yg penting dlm parasitologi kedokteran, shg mhs dapat : > mengidentifikasi serangga yg menjadi vektor,dan hospes perantara > menjelaskan peran serangga tsb dlm hubu-
Topik praktikum : serangga vektor • Arthropoda (filum): > badan beruas-ruas > mempunyai eksoskelet > mempunyai umbai2 yg beruas2 > badan bilateral simetris
Yang penting dlm kedokteran : • Kelas Crutacea : Ordo Copepoda : C, D Decapoda : K, U • Kelas Diplopoda : Lengkibang • Kelas Chilopoda : Kelabang • Kelas Arachnida • Kelas Insekta
