Silabo Biología Celular y Molecular 2014 - 1

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD Escuela de Medicina Humana “Fernando Cabieses Molina”

BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR MH 108 Contenido: 1. Dato Datoss gener general ales es 2. Sum Sumilla illa 3. Compet Competenc encias ias gener generale aless 4. Progra Programac mación ión de Conten Contenido idoss 5. Progra Programac mación ión de de Práctica Prácticass 6. Me Meto todo dolo logí gíaa 7. Líneas Líneas de de investi investigac gación ión 8. Recursos Recursos Didáct Didácticos icos 9. Sistem Sistemaa de eva evalua luación ción 10. Bibliografía d dee co consulta. 11. Plana Docente

2014 Lima – Perú

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SÍLABO BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR I. DATOS GENERALES: Facultad: Escuela: Asignatura: Condición Código: Naturaleza N° Créditos: Requisitos: N° de horas semanales: Aula y/o Laboratorio:

Fecha de inicio Fecha término Semestre Académico Ciclo N° Estudiantes Jefe del curso Docentes del curso

CIENCIAS DE LA SALUD MEDICINA HUMANA Biología Celular y Molecular Obligatoria MH108 Teoría- Práctica 4.0 Ninguno Teoría: 2 Seminario: 2 Práctica: 2 Teoría (T) y Seminarios (S): Aulas:1A, 1B, 1C, 1D: PJ-103 (T y S), 1E: PJ103 (T) y PJ-102 (S), 1F,1G: PJ-102 T y S) Ubicación: Villa 2 Práctica Laboratorio: Aula: Todos los grupos en el PA-301(Lab. Biología Celular y Molecular) Ubicación: Villa 1 31 de Marzo del 2014 23 de Julio del 2014 2014-I I Joyce Del Pino Robles Rafael Alvis Dávila Joyce Del Pino Robles Gisella Guillén Aguirre Danae Liviac Muñoz Alan Murillo Salas

II. SUMILLA El curso de Biología Celular y Molecular es de naturaleza obligatoria, pertenece al área de Ciencias Básicas de la Facultad de Medicina Humana es un curso teóricot eóricopráctico, comprende conocimientos y habilidades generales aplicadas a los campos de las Ciencias de la Salud. El desarrollo del curso abarca los conceptos básicos unificadores para la descripción y la explicación del comportamiento de los seres vivos desde su estructura molecular y su organización celular, hasta los mecanismos que sustentan su dinámica, metabolismo y reproducción razón por la cual está dividido en cuatro unidades didácticas. Al término del curso será capaz de utilizar y aplicar los conocimientos de la estructura y función celular en los diferentes niveles de organización de los seres vivos, así como dominará las técnicas de bioseguridad b ioseguridad y ejecutará con suficiencia 2

SÍLABO BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR I. DATOS GENERALES: Facultad: Escuela: Asignatura: Condición Código: Naturaleza N° Créditos: Requisitos: N° de horas semanales: Aula y/o Laboratorio:

Fecha de inicio Fecha término Semestre Académico Ciclo N° Estudiantes Jefe del curso Docentes del curso

CIENCIAS DE LA SALUD MEDICINA HUMANA Biología Celular y Molecular Obligatoria MH108 Teoría- Práctica 4.0 Ninguno Teoría: 2 Seminario: 2 Práctica: 2 Teoría (T) y Seminarios (S): Aulas:1A, 1B, 1C, 1D: PJ-103 (T y S), 1E: PJ103 (T) y PJ-102 (S), 1F,1G: PJ-102 T y S) Ubicación: Villa 2 Práctica Laboratorio: Aula: Todos los grupos en el PA-301(Lab. Biología Celular y Molecular) Ubicación: Villa 1 31 de Marzo del 2014 23 de Julio del 2014 2014-I I Joyce Del Pino Robles Rafael Alvis Dávila Joyce Del Pino Robles Gisella Guillén Aguirre Danae Liviac Muñoz Alan Murillo Salas

II. SUMILLA El curso de Biología Celular y Molecular es de naturaleza obligatoria, pertenece al área de Ciencias Básicas de la Facultad de Medicina Humana es un curso teóricot eóricopráctico, comprende conocimientos y habilidades generales aplicadas a los campos de las Ciencias de la Salud. El desarrollo del curso abarca los conceptos básicos unificadores para la descripción y la explicación del comportamiento de los seres vivos desde su estructura molecular y su organización celular, hasta los mecanismos que sustentan su dinámica, metabolismo y reproducción razón por la cual está dividido en cuatro unidades didácticas. Al término del curso será capaz de utilizar y aplicar los conocimientos de la estructura y función celular en los diferentes niveles de organización de los seres vivos, así como dominará las técnicas de bioseguridad b ioseguridad y ejecutará con suficiencia 2

destreza el trabajo de laboratorio. Además, tiene el propósito de iniciar la formación del estudiante como futuro profesional, potenciando a lo largo del curso el pensamiento científico, estratégico, competitivo y social, teniendo como base tres ejes: cognoscitivo, humanista y científico profesional, contribuyendo al perfil del egresado de Medicina Humana promoviendo la práctica del respeto de la vida, la naturaleza y la ética. III. COMPETENCIAS GENERALES Al final del proceso de enseñanza-aprendizaje el alumno: 

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El alumno adquirirá conocimientos, habilidades y destrezas para identificar al neonato, lactante, niño y adolescente sano o enfermo y podrá prevenir, diagnosticar y tratar El alumno sabrá cómo cómo evaluar una atención inmediata del recién nacido Sabrá realizar el examen clínico , la evaluación sindrómica, el diagnóstico diferencial y el manejo de las patologías prevalentes : respiratoria, diarreica, eruptivas e infecciosas Adquirirá el conocimiento, habilidad y destreza de la reanimación neonatal y pediátrico Conocerá la fisiología, ventajas, técnica de amamantamiento y sabrá manejar los problemas más más frecuentes de la lactancia materna materna Sabrá efectuar correctamente los principales procedimientos pediátricos Tendrá los conocimientos, habilidades y destrezas en el manejo inicial de las principales patologías de urgencias quirúrgicas pediátricas, intoxicaciones y trastornos genéticos Conocerá la importancia del entorno familiar, social, ambiental, cultural y económico como determinante de salud y enfermedad en el paciente pediátrico.

IV. PROGRAMACIÓN DE CONTENIDOS UNIDAD I: LA CÉLULA COMPETENCIAS ESPECÍFICAS Al final del proceso de enseñanza - aprendizaje el alumno: 

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Adquiere conocimientos teóricos y prácticos que le permiten obtener una visión completa de la célula, integrando las estructuras de los niveles molecular, macromolecular, subcelular y celular de organización biológica, así como el conocimiento de la ontogenia desde el origen de las células germinales hasta la fecundación, a través de una revisión documental y prácticas de laboratorio, eliminando cualquier prejuicio que tengan sobre el inicio de la vida. Describe cada uno de las organelas componentes de las células en los aspectos morfológicos, moleculares, funcionales, biogénesis y sus modificaciones básicas, empleando materiales educativos y otros recursos didácticos; poniendo interés, sobre todo, en aquellos cuya disfunción se relacionen con enfermedades humanas. Explica los procesos de almacenamiento, expresión o procesamiento de la información genética en células eucariotas y procariotas, así como su regulación, control y diferenciación a través de materiales educativos y otros recursos didácticos, manteniendo una actitud crítica y reflexiva sobre aquellos factores físico químicos que pueden alterar la expresión génica.

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Descubre los adelantos sobre el genoma humano, así como sobre ingeniería genética y biotecnología, mediante el conocimiento y análisis de sus implicaciones ético-sociales y su contribución al bienestar humano, desarrollando valores y actitudes positivas, pero también críticas cuando estas ciencias sean mal utilizadas por el hombre. Adquiere habilidades manuales y destrezas en el manejo, utilización y aplicación de los equipos, materiales y técnicas de laboratorio, desenvolviéndose con seguridad en el laboratorio, sin exponerse ni exponer a los demás a situaciones de peligro observando las normas de bioseguridad. Trabaja en equipo en las actividades dentro el aula como en las prácticas de laboratorio, resolución de ejercicios y elaboración de monografías que impliquen el intercambio y la discusión de ideas, mostrando gran observaciones de los preparados citológicos utilizados en Biología Celular, resaltando las características morfológicas que les permita identificar dichos preparados mostrando gran respeto por la opinión de los demás. Aprende a representar mediante dibujos las observaciones de los preparados citológicos utilizados en Biología Celular, resaltando las características morfológicas que les permita identificar dichos preparados. CONTENIDOS CONCEPTUALES

CONTENIDOS PROCEDIMENTALES

Comprende y explica la estructura, función e importancia de la célula. Explica las características estructurales y funcionales de los ácidos nucleicos. Describe los procesos realizados para extraer la información genética que portan los genes y poder llevar a cabo la síntesis de proteínas y la replicación del ADN

Reconoce los equipos y materiales de laboratorio y su manejo para un buen desarrollo de las prácticas. Desarrolla experiencias en el laboratorio relacionadas con los temas tratados. Investiga para la exposición de temas (teoría, lecturas y prácticas) y para la elaboración de informes de laboratorio.

PRIMERA SEMANA (del 31 de marzo al 6 de abril) Información general sobre el desarrollo de las clases teóricas. Características generales de la célula procariota y eucariota. Introducción al curso (criterios de evaluación). Elección de delegado. Información sobre la preparación de seminarios y talleres de discusión. Sorteo de seminarios. Lectura 1: Características generales de los seres vivos. Elección de delegado. Laboratorio1: Bioseguridad.

CONTENIDOS ACTITUDINALES Valora la importancia de la Biología Celular y Molecular dentro del campo de la salud. Demuestra respeto y solidaridad para el trabajo en equipo. Asume una posición crítica y analítica frente a desarrollados en clase. Demuestra puntualidad y orden durante el desarrollo de las clases

SEGUNDA SEMANA (del 07 al 12 de abril) Membrana generales.

celular. Características Composición molecular. 4

Permeabilidad, conceptos básicos. (Parte 1). Lectura 2: Lectura básica sobre membrana y anomalías. Desarrollo de ejercicios aplicativos a transporte a través de la membrana. Laboratorio 2: Fundamentos de Microscopía TERCERA SEMANA (del 14 al 19 de abril) Permeabilidad de la membrana. Transporte de moléculas de alto peso molecular (Parte 2) Seminario 1: Técnicas moleculares utilizadas en las Ciencias de la Salud y sus aplicaciones en la Medicina Humana Laboratorio 3: Membrana Celular I: Difusión y Diálisis. CUARTA SEMANA (del 21 al 26 de abril) Comunicación celular. Mensajeros y tipos. Receptores Celulares y tipos. Recepción, transducción y amplificación de señales intercelulares. Seminario 2: Proteínas G y su importancia clínica. Laboratorio 4: Membrana Celular II: Ósmosis. QUINTA SEMANA (del 28 de abril al 03 de mayo) Matriz extracelular. Interacciones de las células con los materiales extracelulares y entre sí. Lectura 3: Fagocitosis mecanismos y consecuencias parte I. Lectura 4: Matriz extracelular - casos clínicos Laboratorio 5: La célula procariota y eucariota: reconocimiento de estructuras. SEXTA SEMANA (del 05 al 10 de mayo) Componentes del citoplasma. Citoesqueleto de la célula eucariota. Microtúbulos, microfilamentos y filamentos intermedios. Seminario 3: Mecanismos moleculares de la contracción muscular. Laboratorio 6: Fraccionamiento Celular.

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SÉPTIMA SEMANA (del 12 al 17 de mayo) Sistemas de endomembranas: Retículo endoplásmico liso y rugoso. Aparato de Golgi. Vesículas. Lisosomas: autofagia y heterofagia. Peroxisomas. Seminario 4: Aspectos moleculares de la transmisión del impulso nervioso. EXAMEN PARCIAL DE LABORATORIO OCTAVA SEMANA (del 19 al 24 de mayo) EXAMEN PARCIAL DE CONOCIMIENTOS NOVENA SEMANA (del 26 al 31 de mayo) Metabolismo celular: Glucólisis. Respiración aeróbica (mitocondrias). Respiración anaeróbica. Lectura 5: Enfermedades mitocondriales. Desarrollo de ejercicios de respiración celular. Laboratorio 7: Respiración Celular DÉCIMA SEMANA (del 2 al 7 de junio) Núcleo interfásico. ADN y cromatina. Replicación del ADN. Cuadro comparativo entre replicación en procariotas y eucariotas. Seminario 5: Telómeros, telomerasas y sus alteraciones. Desarrollo de ejercicios de replicación. Laboratorio 8: Extracción del ADN. DÉCIMO PRIMERA SEMANA (del 9 al 14 de junio) ARN. Tipos de ARN. Síntesis de proteínas I: Expresión del material genético. Relación de genes y proteínas. Transcripción en procariotas y eucariotas. Modificaciones post transcripcionales. Seminario 6: Mecanismos de reparación del daño producido en el ADN. Desarrollo de ejercicios de mecanismos de transcripción. Laboratorio 9: Fundamentos de la Reacción en cadena de la polimerasa (PCR). 6

Uso de enzimas de restricción DÉCIMO SEGUNDA SEMANA (del 16 al 21 de junio) Síntesis de Proteínas II. Codificación de la información genética. Decodificación de los codones. Traducción de la información genética. Lectura 6: ADN: El material genético. Desarrollo de ejercicios de aplicación de síntesis de proteínas. Laboratorio 10: Fundamentos de Electroforesis. DÉCIMO TERCERA SEMANA (del 23 al 28 de junio) Ciclo celular. Fase M: mitosis y citocinesis. Meiosis. Seminario 7: Modificaciones posttraduccionales. Ejercicios de síntesis de proteínas. Laboratorio 11: Ciclo celular: Mitosis y Meiosis. DÉCIMO CUARTA SEMANA (del 30 de junio al 5 de julio) Control del ciclo celular I. Seminario 8: Errores en el papel de las ciclinas y CdK. Aspectos clínicos Desarrollo de ejercicios de aplicación. Laboratorio 12: Desarrollo de ejercicios. DÉCIMO QUINTA SEMANA (del 7 al 12 de julio) Control del ciclo celular II. Muerte celular. Lectura 7: Métodos de detección de la apoptosis aplicaciones y limitaciones. La célula epitelial como factor etiopatogénico de la fibrosis pulmonar. Lectura 8: Virus Papiloma Humano: Biología Molecular, Genética y Mecanismo Oncogénico. Parte I y II EXAMEN FINAL DE LABORATORIO DÉCIMO SEXTA SEMANA (del 14 al 19 de julio) EXAMEN FINAL DE CONOCIMIENTOS

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DÉCIMO SÉPTIMA SEMANA (del 21 al 23 de julio) EXAMEN SUSTITUTORIO CRONOGRAMA DE CONTENIDOS - TEORÍA Semana

Teoría (2 horas)

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Primera Semana de clases

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Segunda semana de clases

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Tercera semana de clases

Contenido de enseñanza aprendizaje Explicación de las normas básicas de comportamiento durante el desarrollo del curso. Desarrollo de Sílabo. Criterios de evaluación. Prueba de entrada. Se desarrolla los conceptos y terminología de los tipos celulares existentes. Caso propuesto para desarrollar el tema. Membrana celular: composición molecular, características generales de las moléculas que constituyen la membrana celular (mosaico fluido), propiedades y funciones. Terminología básica usada en el transporte a través de la membrana celular. Sistema de transporte: transporte pasivo y activo. Transporte de moléculas de alto peso molecular:

Recursos didácticos

Docente encargado

Lluvia de ideas, videos, power point, animaciones, programas educativos.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac



Lluvia de ideas, videos, power point,

Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella 8

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Cuarta semana de clases

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Quinta semana de clases

Endocitosis (pinocitosis, endocitosis mediada por receptor y fagocitosis). Funciones. Exocitosis (excreción y secreción: diferencias fundamentales). Patologías asociadas. Componentes de la comunicación celular: Emisor o ligando, características generales, clasificación. Ejemplos. Receptor, características generales, clasificación: Proteína G y su modo de acción. Importancia en las Ciencias de la salud. Pasos de la comunicación celular. Tipos de comunicación celular. Patologías asociadas Componentes de la matriz extracelular, funciones e importancia. Moléculas de Adhesión celular: características, tipos representativas y funciones. Especializaciones de la membrana celular: tipos, características y funciones. (Interdigitaciones, microvellosidades, uniones

animaciones, programas educativos.

Guillén Danae Liviac





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Sexta semana de clases

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Séptima semana de clases

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Octava semana de clases

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Novena semana de clases

intercelulares). Patologías asociadas Componentes del citoplasma de la célula eucariota: Hialoplasma o citosol: componentes y características generales. Citoesqueleto: componentes, estructura molecular, características generales y funciones. Centrosoma, cilios y flagelos eucarióticos: estructura, función. Patologías asociadas. Probable origen de las organelas del sistema de membrana. Características generales de los compartimientos celulares, estructura, función. Patologías asociadas. Examen parcial de conocimientos

Aspectos generales del metabolismo celular. Desarrollo de las etapas de la glucolisis y las enzimas involucradas. Características generales de las mitocondrias, funciones e importancia en la respiración celular.






Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac

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Décima semana de clases

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Décimo primera semana de clases

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Décimo segunda semana

Respiración aeróbica y anaeróbica: procesos moleculares involucrados, importancia a nivel celular y orgánico. Patologías asociadas Núcleo interfásico. Componentes: características y funciones. ADN: características generales, tipos, unidad monomérica, Ley de Chargaff. Replicación del ADN. Diferenciación de la replicación en procariotas y eucariotas. ARN: características generales, unidad monomérica, tipos. Funciones de cada tipo de ARN. Relación entre los genes y proteínas. Síntesis de proteínas en procariota: Etapa de transcripción: Unidad de transcripción. Promotores procarióticas y eucarióticos. Importancia. Modificación posttranscripcionales. Traducción en eucariotas, características e importancia. Fases: activación del ARNt, iniciación, elongación y finalización. Código Genético: características y funciones en la traducción.







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Patologías asociadas. 13

Décima tercera sesión

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Décimo cuarta sesión

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Décimo quinta sesión

Ciclo celular en eucariotas. Etapas. Interfase: G1, S, G2, características generales de cada fase. Etapa de división celular: mitosis (empaquetamiento de la cromatina), meiosis y citocinesis: características generales y diferencias entre citocinesis animal y vegetal. Importancia de la mitosis y meiosis desde el punto de vista genético, celular y orgánico. Células en G0. Características generales. Control del ciclo celular: Regulación extracelular e intracelular (ciclinas, cdks, inhibidores del complejo de ciclinas y cdks). Protooncogenes y genes supresores: Características y funciones de los más importantes. Muerte celular: tipos, características más importantes. Aspectos moleculares de la muerte celular. Factores extrínsecos e intrínsecos. Diferencias entre apoptosis y necrosis.







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Décimo Sexta semana

Examen Final de laboratorio

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Décimo séptima semana

Examen Sustitutorio

CRONOGRAMA DE CONTENIDOS CONTENIDO DE DÍA/HORAS SEMANA ENSEÑANZA APRENDIZAJE Semana Lunes: 1A Información general 1 Martes :1B sobre el desarrollo de 08:00 a 10:00am las clases teóricas. Martes:1C Características 10:00 a 12:00m generales de la célula Lunes: 1D procariota y eucariota. 12:00 a 14:00am Introducción al curso Lunes: 1E (criterios de 12:00 a 14:00am evaluación). Elección Miércoles: 1F de delegado 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am Miércoles:1A Información sobre la 08:00 a 10:00am preparación de Miércoles:1B seminarios y talleres 10:00 a 12:00m de discusión. Sorteo iernes 1C de seminarios. 08:00 a 10:00 Lectura 1: Miércoles: 1D Características 10:00 a 12:00m generales de los ueves 1E seres vivos. 08:00 a 10:00am Elección de delegado. ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am

Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac RECURSOS DIDÁCTICOS Y PONENTES Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones Ponentes: Docente y estudiantes

Taller de discusión de Lectura: Ponentes: Estudiantes. Docente: Desarrollo de conclusiones.

DOCENTE ENCARGADO Joyce Del Pino Danae Liviac Danae Liviac Joyce Del Pino Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén

Alan Murillo Alan Murillo Rafael Alvis Alan Murillo Rafael Alvis Joyce Del Pino Danae Liviac

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1 A 1: Martes Animaciones, ppt, lluvia de 08:00 a 10:00am ideas. 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am Laboratorio1: 1 B 2: Miércoles Bioseguridad. 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm Semana Lunes: 1A Membrana celular. Exposición 2 participativa Martes :1B Características utilizando ppt, 08:00 a 10:00am generales. videos, Martes:1C Composición animaciones 10:00 a 12:00m molecular. Ponentes: Lunes: 1D Permeabilidad, Docente y 12:00 a 14:00am conceptos básicos. estudiantes. Lunes: 1E (Parte 1). 12:00 a 14:00am Miércoles: 1F 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am Miércoles:1A Lectura 2: Lectura Exposición 08:00 a 10:00am básica sobre participativa Miércoles:1B membrana y utilizando ppt, videos, 10:00 a 12:00m anomalías. iernes 1C Desarrollo de animaciones. 08:00 a 10:00 ejercicios aplicativos Ponentes: Estudiantes Miércoles: 1D a transporte a través Docente 10:00 a 12:00m de la membrana. desarrollará las ueves 1E conclusiones 08:00 a 10:00am finales. ueves 1F Se desarrollarán 10:00 a 12:00 ejercicios de iernes 1G aplicación 08:00 a 10:00am propuestos por el docente.

Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Gisella Guillén Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Gisella Guillén Danae Liviac Danae Liviac Joyce Del Pino Danae Liviac Danae Liviac Joyce Del Pino Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén


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1 A 1: Martes 08:00 a 10:00am 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am 1 B 2: Miércoles 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm Semana Lunes: 1A 3 Martes :1B 08:00 a 10:00am Martes:1C 10:00 a 12:00m Lunes: 1D 12:00 a 14:00am Lunes: 1E 12:00 a 14:00am Miércoles: 1F 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am

Laboratorio Fundamentos Microscopía

Informe de laboratorio. 2: Lluvia de ideas, de ppt, guía de laboratorio.

Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Gisella Guillén Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Gisella Guillén Danae Liviac Danae Liviac

Permeabilidad de la membrana. Transporte de moléculas de alto peso molecular. (Parte 2)

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones Ponentes: Docente y estudiantes

Joyce Del Pino Danae Liviac Danae Liviac Joyce Del Pino Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén

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Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am 1 A 1: Martes 08:00 a 10:00am 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am 1 B 2: Miércoles 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm

Seminario 1: Técnicas moleculares utilizadas en las Ciencias de la Salud y sus aplicaciones en la Medicina Humana

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes


Laboratorio 3: Membrana Celular I: Difusión y Diálisis. Informes de laboratorios. Exposición


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Semana Lunes: 1A 4 Martes :1B 08:00 a 10:00am Martes:1C 10:00 a 12:00m Lunes: 1D 12:00 a 14:00am Lunes: 1E 12:00 a 14:00am Miércoles: 1F 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am 1 A 1: Martes 08:00 a 10:00am 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am 1 B 2: Miércoles 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm

Comunicación celular. Mensajeros y tipos. Receptores Celulares y tipos. Recepción, transducción y amplificación de señales intercelulares.



Seminario 2: Exposición Proteínas G y su participativa utilizando ppt, importancia videos, clínica. animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes


Laboratorio 4: Informes de Membrana Celular II: laboratorios. Exposición Ósmosis.


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Matriz extracelular. Interacciones de las células con los materiales extracelulares y entre sí.



Lectura 3: Exposición participativa Fagocitosis mecanismos y utilizando ppt, consecuencias parte videos, I. Lectura 4: Matriz animaciones. extracelular - casos Artículos científicos de los clínicos dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes


Laboratorio 5: La Informes de célula procariota y laboratorios. Exposición eucariota: reconocimiento de estructuras.


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Componentes del citoplasma. Citoesqueleto de la célula eucariota. Microtúbulos, microfilamentos y filamentos intermedios.


Seminario 3: Exposición participativa Mecanismos moleculares de la utilizando ppt, videos, contracción animaciones. muscular. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes



Laboratorio Fraccionamiento Celular.

6: Informes de laboratorios. Exposición


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Sistemas de endomembranas: Retículo endoplasmático liso y rugoso. Aparato de Golgi. Vesículas. Lisosomas: autofagia y heterofagia. Peroxisomas.



Seminario 4: Aspectos moleculares de la transmisión del impulso nervioso.



Examen Parcial de laboratorio


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Semana Horario único para Examen Parcial de 8 todos los grupos conocimientos Lunes 08:00 a 10:00 Semana Lunes: 1A 9 Martes :1B 08:00 a 10:00am Martes:1C 10:00 a 12:00m Lunes: 1D 12:00 a 14:00am Lunes: 1E 12:00 a 14:00am Miércoles: 1F 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am

Metabolismo celular: Glucólisis. Respiración aeróbica (mitocondrias). Respiración anaeróbica.


Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac Alan Murillo Joyce Del Pino Danae Liviac Danae Liviac Joyce Del Pino Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén

Lectura 5: Enfermedades mitocondriales. Desarrollo de ejercicios de respiración celular.

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Ponentes: Estudiantes Docente desarrollará las conclusiones finales. Se desarrollarán ejercicios de aplicación propuestos por el docente.


21

1 A 1: Martes 08:00 a 10:00am 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am 1 B 2: Miércoles 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm Semana Lunes: 1A 10 Martes :1B 08:00 a 10:00am Martes:1C 10:00 a 12:00m Lunes: 1D 12:00 a 14:00am Lunes: 1E 12:00 a 14:00am Miércoles: 1F 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am

Laboratorio 7: Informes de laboratorios. Respiración Celular Exposición


Núcleo interfásico. ADN y cromatina. Replicación del ADN. Cuadro comparativo entre replicación en procariotas y eucariotas.





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Laboratorio 8: Informes de laboratorios. Extracción del ADN. Exposición


ARN. Tipos de ARN. Síntesis de proteínas I: Expresión del material genético. Relación de genes y proteínas. Transcripción en procariotas y eucariotas. Modificaciones post transcripcionales.


Seminario 6: Mecanismos de reparación del daño producido en el ADN. Desarrollo de ejercicios de mecanismos de transcripción.

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Se desarrollarán ejercicios de aplicación y casos propuestos

Joyce Del Pino Danae Liviac Danae Liviac Joyce Del Pino Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Alan Murillo Alan Murillo Rafael Alvis Alan Murillo Rafael Alvis Joyce Del Pino Danae Liviac

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por el docente. Laboratorio 9: Informes de Fundamentos de la laboratorios. Reacción en cadena Exposición de la polimerasa (PCR). Uso de enzimas de restricción


Síntesis de Proteínas II. Codificación de la información genética. Decodificación de los codones. Traducción de la información genética.



24

Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am

Lectura 6: ADN: El material genético. Desarrollo de ejercicios de aplicación de síntesis de proteínas.

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Se desarrollarán ejercicios de aplicación y casos propuestos por el docente. 10: Informes de de laboratorios. Exposición

1 A 1: Martes 08:00 a 10:00am 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am 1 B 2: Miércoles 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm

Laboratorio Fundamentos Electroforesis.



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Semana Lunes: 1A 13 Martes :1B 08:00 a 10:00am Martes:1C 10:00 a 12:00m Lunes: 1D 12:00 a 14:00am Lunes: 1E 12:00 a 14:00am Miércoles: 1F 08:00 a 10:00am Miércoles: 1G 10:00 a 12:00am Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am

Ciclo celular. Fase M: Exposición mitosis y citocinesis. participativa utilizando ppt, Meiosis. videos, animaciones Ponentes: Docente y estudiantes


Seminario 7: Modificaciones posttraduccionales. Ejercicios de síntesis de proteínas. .

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Se desarrollarán ejercicios de aplicación y casos propuestos por el docente.


26


Laboratorio 11: Ciclo Informes de celular: Mitosis y laboratorios. Exposición Meiosis.


Control del celular I.

ciclo Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones Ponentes: Docente y estudiantes


Seminario 8: Errores en el papel de las ciclinas y CdK. Aspectos clínicos Desarrollo de ejercicios de aplicación.

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Se desarrollarán ejercicios de aplicación y casos propuestos


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Laboratorio Desarrollo ejercicios.

por el docente. 12: Informes de de laboratorios. Exposición


Control del ciclo Exposición celular II. Muerte participativa utilizando ppt, celular. videos, animaciones Ponentes: Docente y estudiantes


28

Miércoles:1A 08:00 a 10:00am Miércoles:1B 10:00 a 12:00m iernes 1C 08:00 a 10:00 Miércoles: 1D 10:00 a 12:00m ueves 1E 08:00 a 10:00am ueves 1F 10:00 a 12:00 iernes 1G 08:00 a 10:00am

Lectura 7: Métodos de detección de la apoptosis aplicaciones y limitaciones. La célula epitelial como factor etiopatogénico de la fibrosis pulmonar. Lectura 8: Virus Papiloma Humano: Biología Molecular, Genética y Mecanismo Oncogénico. Parte I y II Examen Final de laboratorio

Exposición participativa utilizando ppt, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes.

1 A 1: Martes Informes de laboratorios. 08:00 a 10:00am Exposición 1 A 2: Martes 10:00 a 12:00m 1 B 1: Miércoles 08:00 a 10:00am 1 B 2: Miércoles 10:00 a 12:00m 1 C 1: Jueves 08:00 a 10:00am 1 C 2: jueves 12:00 a 14:00m 1 D 1: Viernes 10:00 a 12:00am 1 D 2: Viernes 12:00 a 14:00m 1 E 1: Lunes 12:00 a 14:00 1 E 2: Jueves 10:00 a 12:00m 1G1: Miércoles 12:00 a 14:00pm 1G2: Viernes 08:00 a 10:00am 1F1: Martes 12:00 a 14:00pm 1F2: Viernes 14:00 a 16:00pm Semana Horario único para Examen Final de 16 todos los grupos conocimientos Lunes 08:00 a 10:00


Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Gisella Guillén Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Rafael Alvis Gisella Guillén Danae Liviac Danae Liviac Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac Alan Murillo

29

Semana Horario único para Examen Final de Abarcará todas 16 todos los grupos las sesiones del conocimientos curso, teoría, Lunes 08:00 a seminarios, 10:00 lecturas y laboratorio.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Gisella Guillén Danae Liviac Alan Murillo

V. PROGRAMACIÓN DE PRÁCTICAS CRONOGRAMA DE PRÁCTICAS. Semana

Tema de Prácticas

Lugar

Docente encargado

Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301) Laboratorio de Biología celular y Molecular PA-301 Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301) Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301)

Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac

5

Laboratorio 5: Laboratorio de Biología La célula procariota y eucariota: celular y Molecular reconocimiento de estructuras. (PA-301)


6

Laboratorio 6: Fraccionamiento Celular.

Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301) Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301) Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301) Laboratorio de Biología celular y Molecular PA-301 Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301)



1

Laboratorio 1: Bioseguridad.

2

Laboratorio 2: Fundamentos de Microscopía

3

Laboratorio 3: Membrana Celular I: Difusión y Diálisis. Laboratorio 4: Membrana Celular II: Ósmosis.

4

7

Examen Parcial de laboratorio

8

No hay actividades

9

Laboratorio 7: Respiración Celular.

10

Laboratorio 8: Extracción del ADN.

11

Laboratorio 9: Laboratorio de Biología Fundamentos de la Reacción en celular y Molecular cadena de la polimerasa (PCR). (PA-301) Uso de enzimas de restricción. Laboratorio 10: Laboratorio de Biología Fundamentos de Electroforesis. celular y Molecular (PA-301)

12

Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac

Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac Rafael Alvis/Gisella Guillén/Danae Liviac


30

13

Laboratorio 11: Ciclo celular: Mitosis y Meiosis.

14

Laboratorio 12: Desarrollo de ejercicios.

15

Examen Final de laboratorio

Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301) Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301)


Laboratorio de Biología celular y Molecular (PA-301)



VI. METODOLOGÍA Se conduce el proceso de enseñanza aprendizaje dándole una orientación a la acción activa independiente que le permita conocer todo lo relacionado con la actividad celular. Se emplearán formas de enseñanza donde predomine la participación activa de los alumnos con guía del profesor. Las clases se dictarán usando estrategias heurísticas para motivar en el estudiante la capacidad de manejar la información, darle un sentido personal que le ayude a continuar el proceso de construcción del conocimiento usando la creatividad y el pensamiento divergente siendo consciente de los avances y dificultades que se le van presentando. Las clases teóricas son expositivas pero promueven el debate, el diálogo y la investigación en base al análisis. Los estudiantes asistirán a las clases con el conocimiento previo del tema a tratarse en base a su programación, así como a la información proporcionada al inicio del curso o a las referencias indicadas por el docente. Las prácticas son efectuadas por los estudiantes con la guía del profesor, se les proporcionará la guía de prácticas al inicio del semestre la cual comprende el fundamento científico, objetivos, metodología y fuentes de información básica. El estudiante elaborará un informe que será presentado la clase siguiente cuya calificación forma parte del proceso de evaluación continuo. Los seminarios promueven el interés por el conocimiento de temas de importancia y aplicación en las carreras de Ciencias de la Salud, tienen como fin adiestrar al estudiante en la búsqueda de información, sistematizarla y exponerla apropiadamente con los métodos que estime convenientes. Los temas serán expuestos paralelamente al desarrollo de las clases teóricas con el objetivo de afianzar lo desarrollado en clase. El tiempo de ponencia será de 30-40 minutos y 10 minutos adicionales para responder preguntas. Se entregarán artículos científicos publicados en los últimos años sobre temas relacionados a las clases teóricas y/o prácticas para su lectura, discusión y comentarios, los cuales afianzarán los conocimientos aprendidos e incentivarán la actitud crítica del estudiante, posteriormente a este proceso se realizarán controles de lectura. En base a fuentes de información básica proporcionada, el estudiante tendrá las principales herramientas para ampliar los conocimientos vertidos en clase; esta revisión bibliográfica será permanente en la elaboración de los ejercicios de aplicación, informes de práctica, preparación del seminario y controles de lectura respectivos, la misma que será citada según el sistema Vancouver.

31

Los ejercicios de aplicación y estudio de casos, constituyen un espacio de afianzamiento del aprendizaje en el que el alumno tiene la oportunidad de aplicar los conocimientos aprendidos en las diferentes sesiones (teóricas, laboratorio y seminarios), donde ejercitará su capacidad de retención, observación y análisis adquiriendo destrezas y habilidades en la aplicación de los conocimientos aprendidos. Es una instancia efectiva de articulación entre la teoría y la práctica. VII. RECURSOS DIDÁCTICOS Entre los métodos de enseñanza-aprendizaje que vamos a usar se encuentra el Mapa Conceptual, mapas mentales, lluvia de ideas, etc., con la ayuda de apoyo audiovisual como presentaciones en Power Point, gifs, vídeos, libros, revistas científicas. Para las prácticas de laboratorio cada estudiante trabajará con su microscopio óptico, se trabajará con microscopía de campo oscuro, contraste de fase y fluorescencia, termociclador, electroforesis, además, de otros equipos y materiales de laboratorio. VIII. LÍNEAS DE INVESTIGACIÓN Efecto biosida de extractos extraídos de plantas medicinales. Determinación de genes de resistencia a los antibióticos en bacterias. IX. SISTEMA DE EVALUACIÓN La evaluación será de diagnóstico (al inicio del proceso mediante una prueba de entrada), formativa (durante el proceso que equivale al ítem de evaluación continua) y sumativa (al finalizar el proceso que está representada por los parciales y finales de teoría y práctica). Esta será de forma permanente (en todas las sesiones), integral (todos los ejes) y colaborativa (participación del estudiante); se comparará la asimilación de los estudiantes en relación con las macro y microcompetencias propuestos, lo que permitirá controlar los procesos, informar a los estudiantes de su desempeño y la retroalimentación constante del proceso de enseñanza - aprendizaje de forma integral.  

Las evaluaciones comprobarán la adquisición de habilidades de forma integral a través de preguntas orales y escritas, en forma teórica o práctica. La nota final contemplará la siguiente ponderación:

Evaluaciones Porcentaje Prueba de entrada 0% (Prueba de referencia para evaluar el nivel del alumno) Evaluación Continua Evaluación Continua de teoría 15% [Promedio de pasos (6%) + Promedio de lecturas (4%) + Promedio de exposiciones (5%)] Evaluación Continua de laboratorio 19% 60% [Promedio de Pasos (10%) + Promedio de Informes (7%)+ Trabajo en el laboratorio (2%)  Examen parcial de laboratorio 13% Examen final de laboratorio Evaluación del Conocimiento  Examen parcial de teoría  Examen final de teoría

13% 20% 20%

40%

32

Prueba de salida (Prueba de referencia para evaluar el nivel del alumno)

0%

Nota: Las evaluaciones del proceso de evaluación continua y los exámenes de laboratorio son insustituibles. Si el alumno no rindiera alguna de estas evaluaciones sin ninguna justificación, se le calificará con 00 (cero) a excepción de las faltas justificadas y aprobadas por Decano de Facultad, donde se procederá a tomarles las evaluaciones respectivas (de acuerdo a lo establecido en el Reglamento de Estudios de la Universidad Capitulo N° 4, articulo N° 31) El estudiante sólo tendrá derecho a un sustitutorio que abarcará todas las sesiones desarrolladas durante el curso. No habrá sustitutorios de otras evaluaciones. El estudiante tiene 48 horas para revisar sus respectivas evaluaciones luego de publicados y/o entregados sus resultados (en fechas coordinadas por sus docentes, las cuales se les avisará oportunamente); una vez pasada esa fecha, no habrá lugar a reclamos. (De acuerdo a lo establecido en el Reglamento de Estudios de la Universidad Capitulo N° 4, articulo N° 36) El estudiante tiene 72 horas para justificar sus inasistencias luego de realizada la falta, de no realizar el proceso el alumno no tendrá el derecho a que se le tomen las evaluaciones tomadas en las fechas no asistidas. Consideraciones que se tomarán en cuenta en las evaluaciones: 





Todos los trabajos, informes, seminarios que sean asignados ya sea en clase de teoría o en laboratorio son de carácter grupal o individual de acuerdo a las especificaciones de los docentes deben ser realizados por el estudiante o por el grupo constituido. Si los trabajos entregados por dos o más estudiantes, o por dos o más grupos según sea el caso; son iguales, esto es considerado copia. Si usted desea discutir las tareas con sus compañeros usted es libre de hacerlo pero cada uno debe redactarlo en forma independiente. Si el trabajo presentado es presentado exactamente igual a un libro, revista, página web, o cualquier otra fuente y no es referenciado esto es considerado fraude. No copie de las fuentes, consulte la información que necesite y referénciela correctamente.

VIII. BIBLIOGRAFÍA DE CONSULTA  Obligatorio:

Karp G. Biología Celular y Molecular: Conceptos y experimentos. 6ta ed. México D.F: Mc Graw Hill Interamericana; 2011.  Libros de revisión: Alberts B. y Johnson A. Biología Molecular de la Célula. 5ta. Ed. Barcelona; Omega. 2010. Wilson J y Hunt T. Biología Molecular de la Célula. Libro de problemas. 5ta. Ed. Barcelona, Omega. 2010. De Robertis E. Biología Celular y Molecular. 15ª. Ed. Buenos Aires; El ateneo. 2012.  Páginas

Web de interés: Audesirk T, Audesirk G y Byers B. Biología: la vida en la tierra http://books.google.com.pe/books?id=uO486v7GcoC&printsec=frontcover&dq=Biolog%C3%ADa:+la+vida+en+la+tierra .+Audesirk&ei=FfxiS8bED6DWMMSf0JQO&cd=1#v=onepage&q=&f=false E-BOOK:Disponible en:http://www.infoenlace.grupolink.com/elibro/itweb/ucsur HINARI: Disponible en:http://www.per.ops HINARI 33

Biblioteca Virtual de Salud – Perú (BVS) Disponible en:: http://www.bvs.com Sumanas (Animaciones varias en biología general, biología molecular, etc) http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/biology/biology.html IX. PLANA DOCENTE RAFAEL ALVIS DÁVILA Biólogo con Mención en Genética y Biología Celular. Bachiller en Biología. UNMSM. Ms(c) Maestría en Genética. UNMSM. Investigador Asociado en el Laboratorio de Reproducción y Biología del Desarrollo, Laboratorio de Genética Humana en la Facultad de Ciencias Biológicas de la UNMSM y al Parque Zoológico de Huachipa. Lima – Perú. Consultor en Genética Toxicológica y Mutagénesis en el Laboratorio de Investigación e Impacto Genético (IMPACGEN.SAC). Email: [email protected] JOYCE DIONE DEL PINO ROBLES. Biólogo con Mención en Biología Celular y Genética. Bachiller en Biología. UNMSM. Título de Biólogo UNMSM. Magister en Recursos Vegetales y Terapéuticos. Farmacia y Bioquímica. UNMSM. Doctorado en Medio Ambiente y Desarrollo Sostenible UIGV. Diplomado en Educación Superior UCSUR. Diplomado en Gerencia Educativa a Nivel Superior UCSUR. Diplomado en Gerencia Estratégica en Instituciones Educativas. Diplomado en Docencia en Educación Superior. UCSUR. Diplomado en Investigación en Docencia Superior UCSUR. Estudios completos en Maestría en Educación Superior UCSUR. Especialista en el Manejo de animales de Laboratorio. Email: [email protected] GISELLA KATIA GUILLÉN AGUIRRE Bióloga con Mención en Zoología UNMSM. Estudios de Maestría en Docencia en Educación Superior UCSUR. Diplomado en Docencia en Educación Superior. UCSUR. Diplomado en Investigación en Docencia Superior UCSUR. Es docente de la UCSUR desde el año 2006. Ha sido miembro del Departamento de Zoología de Invertebrados de la Facultad de Biología UNMSM. Se desempeñó como docente de los cursos de Entomología, Biología Celular y Ecología en la Facultad de Ciencias de la Universidad Nacional San Luis Gonzaga de Ica. Correo electrónico: [email protected] DANAE MARCELA LIVIAC MUÑOZ Bióloga con Mención en Biología Celular y Genética. Bachiller en Biología UNMSM. Máster en Iniciación en la Investigación en Genética obtenido en la Universidad Autónoma de Barcelona. Doctorado en Genética de la Universidad Autónoma de Barcelona. Línea de Investigación de Mutagénesis y Genética toxicológica. Profesor de Prácticas en la Facultad de Biociències, UAB. Asignatura: Genética Molecular. Curso 2008/2009. Profesor de Prácticas en la Facultad de Biociències, UAB. Asignatura: Genética. Curso 2006/2010. Docente Invitado en la Escuela Académica Profesional de Tecnología Médica, Laboratorio Clínico y Anatomía Patológica; Departamento Académico de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM). Asignatura: Citogenética Humana 2002-2004. [email protected] ALAN PATRICIO MURILLO SALAS Médico Colegiado. Bachiller en Medicina Humana UCSM. Título de Médico Cirujano UCSM. Maestría en Fisiología UNMSM. Líneas de investigación Fisiología de la Altitud y del Ejercicio. Ayudante de prácticas. Departamento de Ciencias Dinámicas. UNMSM. Docente encargado del curso Morfo fisiología, Fisiopatología de la Nutrición, Cineantropometría aplicada, Temas selectos en Fisiología, Biología 34

Silabo Biología Celular y Molecular 2014 - 1

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