C. Hasil Percobaan Dan Pengamatan :
1. Uji Molisch
a. Tuliskan data hasil uji Molisch
Senyawa
Hasil Uji
Keterangan
Glukosa
+
Warna ungu tua dan larutannya paling pekat
Sukrosa
+
Warna cokelat tua dan larutannya paling pekat ketiga
Pati
+
Warna cokelat tua dan larutannya paling pekat kedua
b. Bahas dan bandingkan data-data hasil uji Molisch dari beberapa sampel dalam percobaan ini!
Prinsip uji molisch adalah suatu reaksi dehidrasi karbohidrat oleh asam sulfat atau H2SO4 membentuk cincin fuktural atau hidroksi metil fuktural ketika bereaksi dengan alfa naftol yang ada pada reagen. Reaksi ini kemudian akan membentuk suatu warna kompleks ungu pada permukaan larutan. Pada uji molisch, sampel monosakarida akan bereaksi lebih cepat daripada disakarida dan polisakarida. Hal ini dapat terjadi karena bentuk monosakarida yang sudah merupakan bentuk paling sederhana, sehingga tanpa perlu menunggu lebih lama, sampel monosakarida sudah bereaksi. Berbeda halnya dengan disakarida dan polisakarida yang berbentuk lebih kompleks sehingga sulit bereaksi.
Mekanisme reaksinya adalah adanya suatu karbohidrat yang ditambahkan asam sulfat pekat, membentuk hidroksi metil fuktural atau cincin fuktural. Cincin fuktural ini selanjutnya akan bereaksi dengan alfa naftol membentuk kompleks warna ungu. Reaksi lengkap mekanismenya digambarkan di bawah ini.
Karbohidrat H2SO4 pekat hidroksi metil fuktural/cincin fuktural alfa naftol kompleks warna ungu.
Langkah pertama dalam melakukan uji molisch adalah mempersiapkan alat dan bahan. Alat yang dibutuhkan di antaranya pipet ukur, tabung reaksi dan lemari asam. Sedangkan bahannya antara lain reagen molisch, asam sulfat pekat, sampel glukosa, fruktosa, sukrosa dan pati. Tambahkan masing masing 1 ml sampel ke dalam tabung reaksi. Gunakan masker dan sarung tangan, selanjutnya penambahan asam sulfat maupun reagen molisch ke dalam tabung reaksi dilakukan di lemari asam. Lemari asam mempunyai suatu pengaturan sirkulasi udara sehingga bau asam sulfat tidak akan meracuni seluruh praktikan dalam laboratorium. Bau asam sulfat juga cukup berbahaya bagi manusia. Selanjutnya di dalam lemari asam, tambahkan reagen molisch masing masing sebanyak 2 tetes ke dalam tabung reaksi, disusul 1 ml asam sulfat pekat. Kemudian kocok tabung reaksi. Pengocokan berfungsi agar sampel, asam sulfat pekat maupun reagen molisch dapat tercampur merata. Tunggu sebentar kemudian amati hasilnya. Catat pada tabel.
Berdasarkan uji molisch yang dilakukan, sampel glukosa menunjukkan hasil positif. Hasil positif sampel ditandai dengan terbentuknya kompleks warna ungu tua. Hal ini terjadi karena glukosa merupakan golongan monosakarida. Monosakarida adalah gula yang paling sederhana, hanya tersusun atas satu gugus gula saja, sehingga akan mudah bereaksi dengan asam sulfat pekat yang ditambahkan. Asam sulfat akan mendehidrasi gugus gula pereduksi membentuk cincin fuktural. Cincin fuktural yang sudah terbentuk ini kemudian akan bereaksi dengan alfa naftol yang terkandung dalam reagen molisch membentuk kompleks warna ungu. Hal ini sudah sesuai dengan literatur, dimana dalam literatur disebutkan, glukosa akan bereaksi positif dalam uji molisch. Glukosa merupakan salah satu jenis gula monosakarida dan merupakan gula paling sederhana, sehingga tidak perlu menunggu waktu dulu untuk terhidrolisis dan bereaksi dengan asam sulfat dan reagen molisch untuk membentuk kompleks warna ungu (Wrolstad, 2012).
Pada sampel selanjutnya, yaitu sukrosa, hasil uji yang didapat positif karena sukrosa juga termasuk jenis karbohidrat, namun tidak terjadi perubahan warna kompleks. Hal ini ditandai dengan warnanya yang tetap cokelat tua. Hasil yang didapat sudah sesuai dengan literatur. Sukrosa merupakan salah satu jenis disakarida, sehingga sulit bereaksi dengan asam sulfat dan reagen molisch karena gugus gulanya lebih dari satu. Namun sebenarnya tetap biasa bereaksi, hanya prosesnya lambat, karena gugus gulanya lebih dari satu. Karena gugus gula yang dimiliki lebih dari satu, sukrosa sulit didehidrasi oleh asam sulfat sehingga tidak terbentuk cincin fuktural. Karena tidak adanya cincin fuktural, tidak terjadi reaksi juga antara cincin fuktural dan alfa naftol sehingga sulit terbentuk kompleks warna (Wrolstad, 2012).
Pada sampel ketiga, pati, hampir sama dengan sukrosa dimana hasil uji yang didapat . positif karena sukrosa juga termasuk jenis karbohidrat, namun tidak terjadi perubahan warna kompleks. Hal ini ditandai dengan warnanya yang tetap cokelat tua. Hasil yang didapat juga sudah sesuai dengan literatur. Pati merupakan salah satu jenis karbohidrat kompleks, sehingga sulit didehidrasi oleh asam sulfat sehingga tidak terbentuk cincin fuktural. Namun sebenarnya tetap biasa bereaksi, hanya prosesnya lambat, karena gugus gulanya lebih dari satu, bahkan berjumlah banyak pada pati. Karena tidak adanya cincin fuktural, tidak terjadi reaksi juga antara cincin fuktural dan alfa naftol sehingga sulit terbentuk kompleks warna (Wrolstad, 2012).
Sementara itu kepekatan larutan dipengaruhi oleh massa molekul relatif, dimana semakin kecil massa molekul relatifnya maka akan semakin pekat. (Chang, 2005). Hal ini juga sudah sesuai dengan literatur, dimana glukosa dengan Mr paling kecil menunjukkan warna yang paling pekat.
2. Uji Yodium
a. Tuliskan data hasil uji Yodium!
Senyawa
Hasil Uji
Keterangan
Dekstrin
+
Berwarna biru tua agak keunguan
Maltosa
-
Tidak ada perubahan warna
Glukosa
-
Tidak ada perubahan warna
Pati
+
Berwarna biru tua gelap
b. Bahas dan bandingkan data-data hasil uji Yodium dari beberapa sampel dalam percobaan ini!
Prinsip uji yodium adalah larutan iodium dalam bentuk tri iodida akan masuk ke dalam struktur helikal pada karbohidrat kompleks dan akan membentuk biru pekat/biru kehitaman. Karbohidrat kompleks seperti pati atau dekstrin memiliki gulungan helix yang panjang sehingga akan bereaksi dengan yodium. Sedangkan pada monosakarida dan disakarida, gulungan helix yang dimilikinya kecil sehingga terbentuk warna biru pudar bahkan tidak terbentuk kompleks warna.
Mekanisme uji yodium adalah kalium iodida yang diteteskan pada sampel akan membentuk suatu ion kompleks tri iodida. Tri iodida ini kemudian akan masuk ke dalam struktur heliks karbohidrat kompleks dan membentuk kompleks warna biru/kehitaman.
Langkah pertama yang harus dilakukan dalam uji yodium ini adalah mempersiapkan alat dan bahan. Alatnya adalah cawan petri serta pipet tetes yang telah dilabeli sebanyak lima buah. Bahannya di antaranya keempat sampel yang akan diuji berupak glikogen, maltosa, glukosa dan pati serta larutan yodium itu sendiri. Selanjutnya gambar empat bagian pada kertas putih, tandai masing masing untuk keempat sampel. Letakan cawan petri di atas kertas. Teteskan larutan sampel di tempat yang sesuai di kertas. Kemudian tambahkan satu tetes larutan yodium ke masing masing sampel. Amati perubahan yang terjadi. Catat hasilnya pada tabel.
Pada sampel pertama, dekstrin, hasil uji yang didapat positif, ditandai dengan warna biru tua agak keunguan. Berdasarkan literatur, hasil positif yang didapat pada dekstrin sudah sesuai. Hal ini karena dekstrin merupakan salah satu jenis karbohidrat kompleks juga, meskipun tidak sekompleks pati. Dekstrin merupakan hasil hidrolisis pati yang tidak sempurna. Pada dekstrin, karena hidrolisis yang tidak sempurna, masih memiliki beberapa gulungan heliks dengan jumlah bervariasi, bisa satu, dua atau empat. Adanya gulungan heliks ini menyebabkan tri iodida dapat masuk ke gulungan helix dan membentuk warna biru keunguan. Biru yang terbentuk tidak terlalu pekat karena gulungan helix dekstrin tidak sepanjang pati (Sinnot, 2007).
Pada sampel kedua, maltosa, hasil uji yang didapat negatif. Hal ini ditandai dengan sewaktu diteteskan pada sampel, warna larutan tetap cokelat tua, bahkan beberapa saat kemudian kembali bening. Berdasarkan literatur, hasil negatif yang didapat sudah sesuai dengan literatur. Maltosa merupakan jenis disakarida. Disakarida hanya terdiri dari dua gugus gula, sehingga gulungan heliks yang dimilikinya kecil. Hal ini menyebabkan tri iodida susah masuk ke gulungan helix maltosa sehingga tidak terbentuk warna biru tua (Sinnot, 2007).
Pada sampel ketiga, glukosa, hasil uji yang didapat juga negatif. Hal ini ditandai dengan sewaktu diteteskan pada sampel, warna larutan juga tetap cokelat tua, dan beberapa saat kemudian kembali menjadi bening. Berdasarkan literatur, hasil negatif yang didapat sudah sesuai dengan literatur. Glukosa merupakan jenis monosakarida. Monosakarida hanya terdiri dari satu gugus gula dan merupakan karbohidrat yang paling sederhana sehingga gulungan heliks yang dimilikinya kecil. Hal ini menyebabkan tri iodida susah masuk ke gulungan helix glukosa sehingga tidak terbentuk warna biru tua (Sinnot, 2007).
Pada sampel keempat, pati, hasil uji yang didapat positif. Hal ini ditandai dengan terbentuknya warna biru kehitaman setelah yodium diteteskan pada sampel. Berdasarkan literatur, hasil positif yang didapat juga sudah sesuai dengan literatur. Pati merupakan jenis karbohidrat kompleks. Pati memiliki gulungan helix yang panjang. Hal ini menyebabkan tri iodida dapat dengan mudah masuk ke gulungan helix pati dan membentuk warna biru kehitaman. Biru kehitaman terjadi karena gulungan helix pati sangatlah panjang (Sinnot, 2007).
3. Uji Barfoed
Tuliskan data hasil Barfoed test!
SENYAWA
HASIL UJI
KETERANGAN
Glukosa
Biru muda
Biru tua, ada endapan merah bata
+/kurang dari 5 menit pemanasan
Fruktosa
Biru muda
Biru tua, ada endapan merah bata
+/kurang dari 5 menit pemanasan
Maltosa
Biru muda
Tetap biru muda
-/lebih dari 5 menit
Sukrosa
Biru muda
Tetap biru muda
-/lebih dari 5 menit
Bahas dan bandingkan data-data hasil uji Barfoed dari beberapa sampel dalam percobaan ini!
Prinsip uji barfoed adalah suatu sampel monosakararida dan disakarida pereduksi dicampur dengan reagen barfoed kupri asetat dan asam asetat dalam keadaan basa. Akibat reaksi antara reagen dan gula pereduksi membentuk endapan Cu2O berwarna merah bata.
Mekanisme reaksinya adalah cupri asetat akan direduksi oleh gugus gula pereduksi, sehingga bilangan oksidasi Cu2+ akan turun menjadi Cu2O. Mekanisme reaksi tersebut dapat digambarkan pada reaksi di bawah ini.
R-COH + 2 Cu2+ + 2 H2O R-CO + Cu2O + 4 H+
Langkah pertama dalam melakukan uji barfoed adalah mempersiapkan alat dan bahan terlebih dahulu. Alat yang dibutuhkan di antaranya pipet ukur, pipet tetes untuk mengambil sampel, tabung reaksi, gelas beker berisi aquades, penjepit tabung reaksi dan pemanas listrik. Bahan yang diperlukan di antaranya sampel glukosa, fruktosa, maltosa dan sukrosa, reagen barfoed serta aquades. Selanjutnya ambil sampel menggunakan pipet tetes sebanyak 5 tetes, masukkan masing masing ke dalam empat tabung reaksi. Tambahkan reagen barfoed sebanyak 1 ml pada tabung reaksi. Sementara itu, siapkan gelas beker yang berisi aquades, kemudian panaskan pada pemanas listrik hingga mendidih. Dengan menggunakan penjepit, letakkan tabung tabung reaksi tersebut pada gelas beker. Tujuan pemanasan tidak langsung atau dengan melalui air pada gelas beker adalah karena reagen barfoed sudah cukup reaktif, sehingga tidak perlu didekatkan dengan api langsung selayaknya benedict. Tunggu hingga sampel berubah warna. Amati perubahannya dan catat hasilnya pada tabel.
Pada sampel pertama, glukosa, terbentuk hasil uji yang positif. Hal ini ditandai dengan setelah pemanasan, larutan yang tadinya berwarna biru muda berubah menjadi biru tua dan terbentuknya endapan merah bata. Berdasarkan literatur, hasil positif yang didapat sudah sesuai. Hal ini terjadi karena glukosa mempunyai gugus gula pereduksi sehingga dapat mereduksi reagen barfoed dan membentuk endapan merah bata (Sinnot, 2007).
Pada sampel kedua, fruktosa, juga terbentuk hasil uji yang positif. Hal ini ditandai dengan setelah pemanasan, larutan yang tadinya berwarna biru muda menjadi biru tua dan terbentuk endapan merah bata. Berdasarkan literatur, hasil positif yang didapat sudah sesuai. Hal ini terjadi karena fruktosa juga mempunyai gugus gula pereduksi walopun gugus utamanya berupa keton. Karena mempunyai gugus gula pereduksi inilah, fruktosa dapat mereduksi reagen barfoed sehingga Cu2+ berubah menjadi Cu2O dan terbentuk endapan merah bata (Wrolstad, 2012).
Pada sampel ketiga, maltosa, hasil uji yang didapat negatif meskipun sudah dilakukan pemanasan hingga lima menit lebih. Hasil negatif ini kurang sesuai jika dibandingkan dengan literatur. Menurut literatur, hasil yang didapat seharusnya positif. Maltosa masih mengandung dua gugus gula pereduksi sehingga dapat mereduksi reagen barfoed dan membentuk endapan merah bata. Namun diperlukan waktu lebih lama jika dibandingkan dengan golongan monosakarida, karena kedua gugus gula pereduksi itu harus dihidrolisis terlebih dahulu menjadi satu gugus gula pereduksi sederhana sehingga dapat bereaksi dengan reagen barfoed (Bansal, 2009). Hal ini dapat disebabkan oleh beberapa faktor, di antaranya tabung reaksi atau pipet tetes yang tidak benar benar 100 % bersih berisi maltosa juga. Kemungkinan tercampur dengan zat lain dapat menyebabkan reaksi pada larutan sehingga larutan tidak menunjukkan hasil positif. Bisa juga karena faktor pemanasan yang kurang lama atau konsentrasi larutan maltosa tidak benar benar murni (Wrolstad, 2012).
Pada sampel keempat, sukrosa, hasil uji yang didapat negatif. Hal ini sudah sesuai dengan literatur. Hal ini terjadi karena sukrosa sudah tidak mempunyai gugus gula pereduksi. Sukrosa sebenarnya terdiri dari glukosa dan fruktosa yang masing masing memiliki gugus gula pereduksi dan akan bereaksi positif dengan reagen barfoed. Namun ketika membentuk sukrosa, kedua gugus gula pereduksi itu akan menyatu sehingga sukrosa jadi kehilangan kemampuan mereduksinya. Hal ini menyebabkan apabila dilakukan uji barfoed, sukrosa tidak akan dapat mereduksi reagen barfoed sehingga warna larutan baik sebelum pemanasan atau reaksi maupun setelah pemanasan tetap sama (Bansal, 2009).
Uji Benedict
Tuliskan data hasil Benedict test!
SENYAWA
HASIL UJI
KETERANGAN
Glukosa
Biru muda
Berubah menjadi merah bata
+/32,2 detik
Fruktosa
Biru muda
Berubah menjadi merah bata
+/27,8 detik
Sukrosa
Biru muda
Biru tua, tidak ada endapan
-/41,1 detik
Bahas dan bandingkan data-data hasil uji Benedict dari beberapa sampel dalam percobaan ini!
Prinsip uji benedict adalah gula pereduksi apabila direaksikan dengan larutan CuSO4 akan mereduksi CuO menjadi Cu2O dalam kondisi basa. Sebenarnya prinsip uji benedict dan uji barfoed ini hampir sama, bedanya adalah uji barfoed adalah pengujian gugus gula pereduksi dalam kondisi asam sedangkan uji benedict dalam kondisi basa.
Mekanismenya hampir mirip dengan uji barfoed, dimana gugus gula pereduksi akan mereduksi CuO menjadi Cu2O sehingga bilangan oksidasinya akan turun dan terbentuk endapan merah bata. Lebih lengkapnya dapat dijelaskan pada reaksi di bawah ini.
2 Cu2+ + 5 OH- + R-COH R-COO- + 3 H2O + Cu2O (merah bata).
Langkah pertama melakukan uji benedict adalah mempersiapkan alat dan bahan. Alat yang harus disiapkan di antaranya tabung reaksi, pipet tetes, pipet ukur, penjepit tabung reaksi dan pembakar spritus. Semtarara itu bahannya meliputi ketiga sampel, glukosa fruktosa dan sukrosa serta reagen benedict. Langkah selanjutnya adalah ambil sampel dengan menggunakan pipet tetes sebanyak 5 tetes. Kemudian dengan menggunakan pipet ukur, ambil 1 ml reagen benedict. Siapkan pembakar spiritus. Kemudian panaskan tabung reaksi dengan menggunakan penjepit tabung reaksi. Panaskan sembari digoyang goyangkan tabungnya pada sekitar api bunsen. Hal ini bertujuan agar panas yang diterima pada seluruh bagian larutan di tabung reaksi merata, sehingga perubahannya akan lebih cepat terjadi. Sebelum dipanaskan, siapkan stopwatch terlebih dahulu. Hitung berapa lama waktu yang dibutuhkan untuk memanaskan hingga larutan berubah warna. Amati dan catat hasilnya pada tabel.
Pada sampel pertama, glukosa, hasil yang didapat dari uji benedict ini adalah positif. Hal ini ditandai dengan berubahnya warna larutan sebelum dan sesudah pemanasan. Sebelum pemanasan, larutan berwarna biru muda. Setelah pemanasan, larutan berubah warna menjadi merah bata. Hasil positif yang didapat ini sudah sesuai dengan literatur. Glukosa merupakan gula paling sederhana dan mempunyai gugus gula pereduksi sehingga dapat mereduksi reagen benedict dari CuO menjadi Cu2O. Namun perubahan warna menjadi merah bata tidak akan secepat apabila sampel fruktosa yang direaksikan dengan reagen benedict. Hal ini terjadi karena gugus gula yang dimiliki glukosa berupa aldosa, sehingga membutuhkan waktu untuk di transformasi menjadi ketosa untuk kemudian di dehidrasi membentuk cincin fuktural. (Sinnot, 2007). Kecepatan perubahan warna juga sudah sesuai dengan literatur, dimana glukosa berubah setelah pemanasan selama 32,2 detik, lebih lambat beberapa detik daripada sampel fruktosa.
Pada sampel kedua, fruktosa, hasil yang didapat pada uji benedict kali ini juga positif. . Hal ini ditandai dengan berubahnya warna larutan sebelum dan sesudah pemanasan. Sebelum pemanasan, larutan berwarna biru muda. Setelah pemanasan, larutan berubah warna menjadi merah bata. Hasil positif yang didapat ini sudah sesuai dengan literatur. Fruktosa juga mempunyai gugus gula pereduksi sehingga dapat mereduksi reagen benedict dari CuO menjadi Cu2O. Gugus utama dari fruktosa adalah keton. Fruktosa memiliki alfa hidroksi keton. Adanya alfa hidroksi keton ini menyebabkan tidak perlu waktu yang terlalu lama untuk mendehidrasinya menjadi bentuk fuktural, sehingga fruktosa akan berubah warna menjadi merah bata dalam waktu relatif paling cepat (Sinnot, 2007). Kecepatan perubahan warna setelah dipanasakan juga sudah sesuai dengan literatur, dimana fruktosa berubah warna menjadi merah bata dalam waktu paling cepat, sekitar 27,8 detik, dibanding glukosa yang berubah warna setelah 32,2 detik dan sukrosa yang tidak berubah warna meski sudah dilakukan pemanasan selama 41,1 detik.
Pada sampel ketiga, sukrosa, hasil yang didapat pada uji benedict kali ini adalah negatif. Hal ini ditandai dengan tidak adanya endapan merah bata. Hal ini juga sudah sesuai dengan literatur. Ini terjadi karena sukrosa sudah tidak mempunyai gugus gula pereduksi. Sukrosa sebenarnya terdiri dari glukosa dan fruktosa yang masing masing memiliki gugus gula pereduksi dan akan bereaksi positif dengan reagen barfoed. Namun ketika membentuk sukrosa, kedua gugus gula pereduksi itu akan menyatu sehingga sukrosa jadi kehilangan kemampuan mereduksinya. Hal ini menyebabkan apabila dilakukan uji benedict, sukrosa tidak akan dapat mereduksi reagen barfoed sehingga warna larutan baik sebelum pemanasan atau reaksi maupun setelah pemanasan tetap sama (Bansal, 2009). Karena ketiadaan gugus gula pereduksi ini akibat sudah berikatan satu sama lain, meskipun waktu pemanasan sukrosa paling lama ketimbang glukosa dan fruktosa, sekitar 41,1 detik, larutan juga tetap tidak menunjukkan terbentuknya endapan merah bata, hanya sedikit perubahan warna dari biru muda menjadi biru tua.
PERTANYAAN
Bagaimana membedakan monosakarida dan disakarida dengan menggunakan Barfoed test?
Prinsip uji barfoed adalah apabila monosakarida dan disakarida dicampur dengan reagen Barfoed kupri asetat dan asam asetat akan membentuk endapan Cu2O berwarna merah bata. Cara membedakannya adalah golongan monosakarida akan bereaksi dengan reagen Barfoed membentuk endapan merah bata. Gugus gula pereduksi akan mereduksi Cu2+ menjadi Cupri Asetat (Cu2O) sedangkan golongan disakarida tidak akan bereaksi dengan reagen Barfoed dan tetap berwarna biru muda (Solomon, 2009).
Bagaimana mengidentifikasi gula pereduksi sampel pada uji Benedict?
Prinsip uji benedict adalah larutan CuSO4 atau reagen benedict yang berada dalam suasana basa apabila direaksikan dengan gula pereduksi sehingga Cu2O menjadi CuO. Cara mengidentifikasi mana sampel yang mengandung gugus gula pereduksi dapat dilihat perubahan warna setelah dicampurkan dengan reageen benedict membentuk warna merah bata. Sedangkan sampel yang tidak mengandung gugus gula pereduksi akan tetap berwarna biru muda (Bellitz, 2009).
KESIMPULAN
Praktikum analisis kualitatif karbohidrat bertujuan untuk mengetahui prinsip dasar uji kualitatif karbohidrat dan mengetahui serta memahami masing masing prinsip atau metode dari uji molisch, uji yodium, uji barfoed, uji benedict, serta penggunaannya masing masing untuk pengujian apa. Prinsip uji molisch adalah reaksi dehidrasi karbohidrat oleh asam sulfat pekat membentuk cincin fuktural. Cincin fuktural ini kemudian akan bereaksi dengan alfa naftol sehingga terbentuk kompleks warna ungu. Prinsip uji yodium adalah larutan iodium dalam bentuk tri iodida akan masuk ke struktur helikal pada pati sehingga terbentuk warna biru kehitaman. Prinsip uji barfoed adalah monosakarida dan disakarida pereduksi apabila dicampur dengan reagen barfoed kupri asetat dan asam asetat dalam keadaan asam akan mereduksi reagen barfoed sehingga terbentuk endapan Cu2O berwarna merah bata. Prinsip uji benedict adalah larutan CuSO4 dalam suasana basa direaksikan dengan gugus gula pereduksi akan mereduksi CuO menjadi Cu2O membentuk endapan merah bata.
Pada uji molisch, hasil positif sampel ditunjukkan oleh glukosa, sukrosa dan pati. Glukosa menunjukkan hasil paling positif dengan terbentuknya warna ungu tua, sementara sukrosa dan pati tetap berwarna cokelat tua. Hasil positif uji yodium ditunjukkan oleh dekstrin dengan warna biru keunguan dan pati biru kehitaman, sementara maltosa dan glukosa tidak menunjukkan perubahan warna. Hasil positif uji barfoed ditunjukkan oleh glukosa dan fruktosa dengan adanya endapan merah bata, sementara maltosa dan sukrosa tetap berwarna biru muda dan tidak ada endapan. Hasil positif uji benedict ditunjukkan oleh glukosa dan fruktosa dengan endapan warna merah bata dan perubahan warna setelah 32,2 dan 27, 8 detik, sementara sukrosa tidak terbentuk perubahan warna setelah pemanasan 41,1 detik.
