Manual Hongos

MANUAL

PRODUCCIÓN DE HONGOS COMESTIBLES Pleurotus spp.

MANUAL PRODUCCIÓN DE HONGOS COMESTIBLES Pleurotus spp. ALEJANDRO C. MICHEL ACEVES MARCO ANTONIO OTERO SÁNCHEZ ESTEBAN DÍAZ CASTRO Colegio Superior Agropecuario del Estado de Guerrero RAFAEL ARÍZA FLORES AYALA InstitutoARISTEO Nacional BARRIOS de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Campo Experimental Iguala Edición revisada por la sección editorial del Centro de Estudios Profesionales del Colegio Superior Agropecuario del Estado de Guerrero. Registrado con la clave MT-01-10 Prohibida la reproducción parcial o total sin el permiso por escrito del Colegio Superior Agropecuario del Estado de Guerrero y/o de los autores.

Edición con fines de difusión en el sector agropecuario, no lucrativo. Octubre de 2010. Contenido

Pág.

1. El cultivo de hongos comestibles Pleurotus spp.

4

Generalidades Estadísticas de producción Clasificación taxonómica Valor nutritivo 2. El proceso de producción Sustrato Pasteurización Siembra Incubación Fructificación Cosecha 3. Plagas y enfermedades Insectos

4 8 11 11 13 13 16 19 26 28 31 34 34

Enfermedades 4. Errores más comunes en la producción 5. Literatura citada

36 41 45

PRÓLOGO El cultivo de hongos seta representa un proceso biotecnológico, económicamente viable, capaz de convertir los residuos de plantas (lignocelulósicos) procedentes de la agricultura y la silvicultura, mediante el empleo de una tecnología microbiana relativamente barata, en alimento humano rico en proteínas. En la presente publicación se incluye el proceso productivo realizado en el modulo de producción tipo invernadero establecido en el Centro de Excelencia Educativa “José Vasconcelos” (CEXE), ubicado a la colonia la nopalera, a la salida de Tlapa, Gro., rumbo a Huamuxtitlán, Gro., financiado por la Fundación Produce de Guerrero, A.C. Los autores

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PRESIDENTE ING . ENRIQUE LUÍS RAMÍREZ GARCÍA VICEPRESIDENTE ING. ROGELIO FORTINO ALQUISIRAS BURGOS SECRETARIO ING. MIGUEL ÁNGEL ZAPATA LÓPEZ

TESORERO ING. ANTONIO MIGUEL CHÁVEZ AGRADECIMIENTOS A la Fundación de Guerrero, A. C., por el apoyo económicoProduce proporcionado que hizo posible la obtención de parte de la información y de la impresión de éste manual.

DIRECTORIO COLEGIO SUPERIOR AGROPECUARIO DEL ESTADO DE GUERRERO CENTRO DE ESTUDIOS PROFESIONALES

DR. ANGEL AGUSTÍN MASTACHE LAGUNAS DIRECCIÓN GENERAL M.C. FELIX VALENCIA ESPINOSA ENCARGADO DE LA DIRECCIÓN DEL CEP DR. HUMBERTO HERNÁNDEZ HERNÁNDEZ ENCARGADO DE LA COORDINACIÓN ACADEMICA M.C. JESÚS BASTIDA LÓPEZ COORDINACIÓN DE INVESTIGACIÓN Y EXTENSIÓN C.P. BEATRIZ ALEJANDRA AGUILERA ARIAS COORDINACIÓN ADMINISTRATIVA ING. MARGARITO RAMÍREZ LÓPEZ ENCARGADO DE LA COORDINACIÓN DE PLANEACIÓN Y VINCULACIÓN LIC. MARLENE ARCE MARBAN COORDINACIÓN JURÍDICA ING. FELIPE NIÑO CASTRO COORDINACIÓN DE INFORMÁTICA

1. EL CULTIVO DE HONGOS COMESTIBLES Pleurotus spp.

Generalidades Se desconoce el srcen de Pleurotus ostreatus (Jacq.:Fries) Kummer, la primera producción comercial se realizó en tocones y troncos en Europa en los inicios del siglo XX. A pesar de ser relativamente reciente, ha tenido un desarrollo y una aceptación rápida con un destacado crecimiento en la agroindustria (Sánchez y Royse, 2001); de tal manera que en la actualidad se cultiva en casi todas las latitudes del mundo, debido a la diversidad de sustratos sobre los que es capaz de crecer, aprovechando los desechos o subproductos agropecuarios (Arrúa y Quintanilla, 2007). México cuenta con una gran riqueza de especies forestales no maderables, entre las que destacan los

hongos silvestres. Debido a la variedad de climas con que cuenta nuestro país, éstos existen desde las selvas tropicales del sureste hasta los desiertos del norte, pasando por los bosques subtropicales y los de coníferas de las montañas. En forma silvestre, las diferentes especies del género Pleurotus son conocidas con varios nombres en México (“oreja”, “hongo oreja”, “oreja de cazahuate”, “oreja de judas”), pero los cultivadores de hongos y en el mercado lo llaman “seta”. En forma natural se desarrolla en la época de lluvias como saprófito sobre troncos y tocones de árboles muertos o en vías de descomposición. Las principales estructuras morfológicas de una seta se presentan en la Figura 1.

Figura 1. Morfología de una seta

Desde diversos puntos de vista el cultivo de hongos comestibles es relevante: Alimenticio: Contiene casi todos los aminoácidos esenciales, constituye una fuente rica de vitaminas como la D, ergoesterol, así como de minerales (fósforo, sodio, magnesio, calcio, hierro, manganeso, zinc y cobre entre otros); además, su buen sabor proveen de un valor nutritivo igual al de algunos alimentos ricos en proteínas, fibras y bajo en grasas (Romero et al., 2010). Ecológico: Los hongos

son componentes importantes de la vida de los bosques, ya que intervienen como agentes descomponedores de la materia orgánica y en el reciclamiento de los nutrientes que otros organismos requieren para su desarrollo (Anónimo, 2006b).

Médico-religioso: A algunas especies se les atribuyen propiedades anticancerígenas, revitalizante en general y disminución de colesterol en la sangre (Anónimo, 2006b). Económico: Los hongos tienen una extraordinaria capacidad para adaptarse y desarrollarse en diferentes sustratos y condiciones agroclimáticas, su producción es una fuente generadora de ingresos y empleos (Ancona et al., 2009). Es una alternativa de subsistencia alimentaría en las áreas rurales en la cual puede participar la familia, ya que permite mejorar la nutrición, en virtud de ser un sustituto de la carne de

srcen animal (Anónimo, 2006a), rico en proteínas con la simple conversión de residuos agroindustriales (Romero et al., 2010). Para cultivarlo, se requiere de un medio preparado con materiales lignocelulósicos que están presentes en grandes cantidades en los desperdicios o subproductos agrícolas, con aproximadamente de un 60-70% de celulosa y 15% de lignina. Estadísticas de producción En los comienzos de la década del '80, el champiñón representaba más del 70% de la oferta mundial. Solamente el 2,8% de dicha producción correspondía a Pleurotus ostreatus y el 14,3% al Shiitake. En tanto, las proyecciones actuales sitúan a la producción de setas en segundo lugar, representando el 20% de la producción Mundial de hongos comestibles. Sólo China

produjo 1.722.645 ton de setas en 2000, lo que representa un incremento del 70% de la producción total de hongos de ese país (Rodríguez, 2007). En nuestro país, la producción comercial de hongos comestibles ofrece notables ventajas sociales, económicas y ecológicas. Se estima que la producción comercial en fresco es de aproximadamente 47,468 toneladas anuales (Cuadro 1). El cultivo de hongos ha evolucionado más en México a diferencia de otros países donde se ha desarrollado como un negocio netamente privado, bajo dos vertientes principales: el desarrollo industrial privado y la producción rural por el sector social (Rodríguez 2007). En México el cultivo de Pleurotus spp., inicio en la población de Cuajimalpa, Estado de México. El interés

por cultivarlo se ha difundido en todos los ámbitos del país. Cuadro 1. Producción estimada de Pleurotus spp., (peso fresco) en países de América. País Toneladas México 1825 Estados Unidos 908 Canadá 568 Brasil 450 Guatemala 22 Venezuela 18 Cuba 12 Colombia 9 Otros 28 Total 3846 (Fuente : Rodríguez, 2007).

Porcentaje (%) 47.53 23.65 14.79 11.72 0.57 0.47 0.31 0.23 0.73 100.00

La mayor parte de la producción del país se concentra en los Estados de Jalisco, Hidalgo, México, Morelos, Puebla, Querétaro, Tlaxcala y Veracruz (Anónimo, 2006a). Reportes del 2008 indican a los principales estados productores que son: Distrito Federal, Jalisco,

México y Distrito Federal, con una producción total de 1,652.54 ton (Cuadro 2). Cuadro 2. Producción Agrícola de Hongos y setas. Cíclicos y Perennes 2008 (Modalidad de riego más temporal). Sup. Valor Lugar Sembr. Prod. Rend. PMR* Prod. (Ha) (Ton) (Ton/Ha) ($/Ton) (Miles $) D.F 0.96 67.04 69.83 29,597.25 1,984.20 JALISCO 2 1,170.00 585 12,000.00 14,040.00 MEXICO 4.4 415.5 94.43 15,367.03 6,385.00 Total 7.36 1,652.54 224.53 13,560.46 22,409.20 *Precio medio rural (Fuente : SIAP, 2008).

Clasificación taxonómica

La clasificación taxonómica según Noyd (2000), en la siguiente:Phylum: Basidiomycota ; Clase: Hymenomycetes ; ; Familia:Agaricaceae ; Género:Pleurotus; Orden: Agaricales Especie:ostreatus.

Valor nutritivo

Las setas son una excelente fuente de proteína, esto debido a que contienen a todos los aminoácidos esenciales, predominan la alanina, ácido glutámico y la glutamina (Cuadro 3). bromatológica de P. ostreatus Cuadro 3. Composición En 100 g de peso fresco. Componente Cantidad (%) Carbohidratos 29.80 - 62.00 Grasa 0.80 2.00 Proteína 14.50 - 25.00 Proteína soluble 4.20 8.90 Aminoácidos libres 0.05 0.23 Fibra cruda 7.00 - 15.60 Cenizas 0.83 - 13.30 Ac. Ascorbico (Vitamina C) 4.60 8.60 Tiamina (Vitamina B1) 0.12 Riboflavina (Vitamina B2) 0.52 Ac. Nicotinico (Complejo B) 5.82 Ac. Pantotenioco (Vitamina B3) 2.83 Biotina 0.02 Fuente : Cisterna (2002); Aguilar (2007).

El porcentaje de proteína varía de 10 - 40% (en peso seco) mayores a los de algunas frutas, hortalizas, arroz

y trigo. Contienen buenas cantidades de zinc, cobre, magnesio y fósforo y una proporción media de hierro, manganeso y potasio (Cisterna, 2002 ).

2. EL PROCESO DE PRODUCCIÓN Sustrato Para cultivar setas, se requiere de un sustrato que es el material que aprovechan los hongos para su alimentación. Deben ser materiales lignocelulósicos que están presentes en grandes cantidades en los residuos o subproductos agrícolas, de un 60-70% de celulosa y 15% de lignina. Se utilizan diversos materiales, dependiendo de su disposición en la región Los sustratos empleados para el cultivo de hongos se clasifican de la siguiente manera: a).- Pajas de trigo, avena, cebada, arroz, ajonjolí, etc. b).- Rastrojos de

maíz, sorgo, garbanzo, frijol. c).- Forestales: aserrín de pino y encino, virutas, troncos y ramas. d).- Vainas secas de frijol, chícharo, etc. e).- Bagazo de henequén y de caña de azúcar, lirio acuático f).- Fibra de coco, cascarilla de cacahuate. g).- Pulpa de café. h).-Otros: Fragmentos de papel, olote, tamo de maíz, brácteas de piña, hojas y tallos de plátano, pasto ó zacates, desechos de industria textil, etc. (Andrade, 2005). Pueden ser pajas secas con bajos contenidos de resinas y/o materiales con altos contenidos de carbono (celulosa, hemicelulosa, lignina) (Anónimo, 2006c). La composición o proporción de nutrientes, redundará en la calidad y los rendimientos del cultivo. Se han obtenido buenos resultados en el Valle de Cocula, Gro., utilizando avena con eficiencias biológicas (EB) de 81.6-95.0% y con rastrojo de maíz

71.8% sembrando la var. BGAT. También con las variedades BR y BC cuando se utilizo avena se lograron EB de 99.2-103.8% (Rodríguez-Moran, 2010). Se recomienda guardar los sustratos en un almacén protegidos del agua y sol (Figura 2).

Figura 2. Bodega donde se almacena el sustrato Muchos manuales y textos recomiendan picar o trocear el sustrato, entre 10 y 15 cm es óptimo para facilitar la

acción enzimática del hongo, evitar compactación y permitir una buena invasión del sustrato. “Pasteurización”

El sustrato se debe preparar de tal manera que permita el crecimiento selectivo, rápido y robusto del Pleurotus spp y retarde el de sus competidores. La “pasteurización” tiene la función de disminuir los

organismos nocivos (contaminantes) que pueden competir con el hongo por espacio y nutrientes. El método de “pasteurización” con inmersión en agua caliente ha sido utilizado ampliamente y consiste en sumergir el sustrato en agua entre 70 - 80 °C, durante una hora (No se debe meter el sustrato mientras no alcance esa temperatura). Temperaturas inferiores a 55 °C son insuficientes y mayores a 85 °C predisponen al sustrato a contaminarse.

La forma más sencilla, barata y rápida de realizar la “pasteurización” cuando se trabaja a escala casera es la inmersión en agua caliente (Figura 3), de la siguiente manera: Poner agua en un tambo, tinaco, tina o bote metálico.  Llenar hasta dos terceras partes el recipiente para que no se derrame el agua caliente cuando se 

sumerja el sustrato.  Agregar de 2 a 3 g de cal por cada litro de agua.  Calentar el agua con leña o gas hasta que alcance 70 - 80°C.  Cuando realmente tenga mínimo 70 °C, sumergir el sustrato y cuidar que el agua lo cubra totalmente.

Para facilitar el manejo del sustrato se puede meter en arpillas.  Dejar 60 minutos y pasado este tiempo sacar el sustrato.  Escurrir 2 a 3 minutos y pasar a la sala de siembra  Sacar la paja de las arpillas y dejar que se enfrie. 

Figura 3. Tina de “pasteurización”, llenado e inmersión de arpillas

Siembra En esta área se requiere de una mesa con características que faciliten enfriado (Figura 4). Debe ser un espacio con mínimas corrientes de aire para prevenir la contaminación del sustrato (Anónimo, 2006c).

Figura 4. Mesa de trabajo y micelio (semilla de sorgo)

Se utilizan bolsas de plástico transparentes como contenedores del sustrato que mantienen la humedad y el intercambio gaseoso, así como protegen el micelio del hongo en su interior. Se recomienda mínimo calibre 200 para que tenga suficiente resistencia para contener el sustrato y permita la salida de las fructificaciones sin problemas. Calibres mayores de 300 pueden dificultar la fructificación.

Pueden usarse bolsas de 60 x 90 cm (en explotaciones pequeñas son más recomendables de 50 x 70 cm ó 40 x 60 cm debido a que la bolsa grande, puede sobrecalentarse si la temperatura del lugar de incubación es elevada). A la bolsa se le hace un nudo en la parte basal, para que al sembrar la bolsa se vaya llenando y quedando en la parte de abajo redonda y sea más fácil su manejo y también se desinfecta con un algodón impregnado con alcohol (Figura 5).

Figura 5. Amarre y desinfección de la bolsa

En la empresa Productora y Distribuidora de Setas (PRODISET) de la ciudad de México (www.prodiset. com.mx) se puede adquirir el micelio del hongo, de diferentes variedades el cual viene desarrollado sobre semilla de sorgo en presentación de bolsas con 1.5 kg. Simbología BGAT BSMA BCL BPD BFL BR BC

Especie Pleurotus ostreatus Pleurotus sapidus Pleurotus culumbinos Pleurotus pulmonarius Pleurotus florida Pleurotus djamor Pleurotus djamor

Color Gris Blanca Gris claro Gris Blanca Rosa Blanca

Las variedades “BCL” y “BGAT” están adaptadas a condiciones de climas calidos. La siembra es el proceso que consiste en mezclar el micelio del hongo con el sustrato dentro de la bolsa de polietileno transparente. La cantidad de micelio depende del tamaño de bolsa utilizado. Bolsas de

50x70 cuando se llenan pesan 6 kg y utilizan 300 g de micelio. En general se utiliza el 20% del peso seco del sustrato y 1 kg de paja seca al estar al 75% de humedad pesará 4 kg (3 de agua y 1 de paja). Para la siembra, el contenido de humedad de la paja debe estar entre el 70 y el 75 %. En la práctica, el contenido de humedad se determina tomando un puño de paja y apretándola moderadamente, si caen gotas de agua o es notoria la humedad que queda en la mano, la paja tiene exceso de agua, en este caso se debe esperar a que escurra mas. No es recomendable sembrar con niveles de humedad mayores que los indicados, porque el hongo necesita para su crecimiento de espacio poroso en el sustrato (paja), esto le permite que el intercambio gaseoso sea el óptimo para su crecimiento, tanto de CO 2 como de oxígeno, evitando así la aparición de microorganismos

que puedan vivir sin oxígeno y que ocasionan pudrición del sustrato. La temperatura óptima para sembrar es en paja tibia (de preferencia) entre (20-25ºC), no se debe sembrar con paja caliente porque se muere el micelio, por otra parte si se siembra con paja fría se retrasa el crecimiento. Cuando la paja tiene la humedad y la temperatura óptima se procede a realizar el llenado de la bolsa colocando un poco de semilla en el fondo del la bolsa y encima una capa de sustrato de 5 - 10 cm seguido de una capa de inoculo o semilla (lo que alcance a tomar la mano esparciéndolo en la periferia de la bolsa), y así sucesivamente, colocando capas de sustrato y semilla (Figura 6); hasta casi llenar la bolsa.

Figura 6. Siembra del inoculo en el sustrato Entre cada capa de sustrato, se aprieta para que la bolsa quede firme, dejando unos 10 cm libres para cerrar la bolsa con liga ó rafia (Figura 7). Las bolsas se perforan con un cuchillo, clavo o aguja previamente desinfectadas, el todas sus paredes, así como también en la parte de abajo y de arriba, para facilitar la respiración del hongo y el intercambio gaseoso. Se realizan entre 60 – 100 perforaciones (Figura 7) que mejorará la velocidad de invasión del micelio

saludablemente. Se etiqueta con la fecha de siembra y se coloca en el área de incubación (Anónimo, 2006d).

Figura 7. Amarre de bolsas y perforaciones

Incubación Es el periodo de tiempo en que el sustrato será colonizado por el hongo (crecimiento vegetativo), el cual tarda de 20 a 30 días después de la siembra (dds) en estar totalmente invadido si las temperaturas dentro de las sala de incubación se mantienen en promedio de

25 a 28 ºC. La bolsa se pondrá blanca, que indica que el hongo ya invadió el sustrato. El área de incubación puede ser un cuarto oscuro (no totalmente) con bancales, literas y/o estructuras específicas para colocar las bolsas (Figura 7). En climas donde la temperatura es menor a 18 ºC se recomienda utilizar calefactores para regular la temperatura requerida para la incubación (Anónimo, 2006c).

Figura 7. Área de incubación

Durante la incubación se estarán manteniendo y controlando las temperaturas por medio de diferentes formas: ventilación, riegos en las paredes, riegos en el piso y en bolsas, abriendo las puertas de entrada y ventanas. En el modulo de producción se realiza a través del sistema de nebulización, prendiéndolo según se requiera. Los factores críticos que se controlan en este proceso son la temperatura, CO 2, pH, humedad; así mismo influyen en el desarrollo de la incubación la

adaptación y vigor de la variedad, cantidad del micelio y sustrato utilizado (Anónimo, 2006g). Al cabo de unas semanas se podrán observar pequeñas formaciones de micelio que se van haciendo más densas, estas son conocidas como “primordios”, esto indica el inicio del crecimiento reproductivo (fructificación).

Fructificación A los dos o tres días de haber aparecido el primordio se nota como se diferencia un pequeño estípite y una cabecita como de alfiler (Figura 8), en este momento se considera como un fruto y no como un primordio. La temperatura de fructificación varía según la especies y la variedad; generalmente entre los 15 y 20°C, pero las variedades tropicales de Pleurotus spp, “CL” y “BGAT” fructifican bien entre 20-28°C

Figura 8. Los primordios son el Inicio de la fructificación Los factores más importantes de manejo en la fructificación son : Humedad.- Se debe mantener una humedad relativa promedio de 85% (70-95%), generalmente es necesario aplicar riegos en algunas horas del día para aumentar la humedad y disminuír la temperatura, evitando que el sustrato se reseque, los riegos pueden hacerse según la necesidad con el sistema de nebulización. Temperatura.- Para que los frutos maduren sin ningún retrazo debemos mantener una temperatura constante entre 20-28°C.

Ventilación.- Debe haber movimiento de aire. Cuando no se ventila y el aire tiene poco oxígeno los frutos se deforman, no se abre su sombrero y la pata les crece mucho. Iluminación.- La luz natural o artificial tiene un efecto parecido al del oxígeno en el desarrollo del fruto. Proporcionar cuando menos ocho horas de iluminación, de lo contrario los frutos serán patones, el sombrero no se extenderá y tampoco se estimulará una nueva brotación de primordios. En el modulo de producción habrá que mantener la temperatura y humedad con el sistema de nebulización según se requiera, permite buena iluminación y ventilación.

El periodo de fructificación dependerá de las condiciones que prevalezcan, puede iniciar a los 25 días de la siembra y terminar hasta los 90 dds o antes.

En ocasiones cuando la bolsa ya ha perdido mucha humedad en su interior, será necesario agregar agua limpia para favorecer al hongo.

Cosecha No todas las bolsas producen al mismo tiempo, hay diferencias de dos a cuatro días entre ellas, pero un 60% si produce al mismo tiempo. La primera cosecha se realiza de 25 al 30 después de la siembra, dependiendo de las condiciones climáticas. Para cosechar se debe observar que las setas alcancen el mayor tamaño posible y esté totalmente extendido (madurez fisiológica), suculento y bien definido, etapa en la cual contiene todos los elementos básicos que conforman el estado nutricional del producto (Anónimo, 2006g). No se debe permitir que el borde comience doblarse hacia arriba porque pierde

calidad, se deshidratan y además se propicia la diseminación de esporas. El tamaño varía según la especie y variedad utilizada. En la cosecha, las setas se pueden cortar manualmente o con alguna navaja y colocarlos en charolas para su manejo (Figura 9). Generalmente es posible realizar una segunda cosecha de 12 a 15 días después del primer corte, una tercera cosecha a los 20 días siguientes y hasta una cuarta cosecha (Anónimo, 2006g).

Figura 9. Cosecha de los hongos setas.

Al término de la cosecha, la paja utilizada puede servir como materia orgánica e incorporarse a plantas de cultivo. Si se quiere tener producción constante habrá que sembrar de manera escalonada; es decir, hacer siembras cada 15-20 días de al menos 70 bolsas cada siembra, para tener en dos meses 280 bolsas en diferente etapa de desarrollo, unas recién sembradas, en incubación y en fructificación (Figura 10).

Figura 10. Invernadero antes y después de la primera siembra

3.- PLAGAS Y ENFERMEDADES Como todo cultivo, está expuesto a alteraciones que pueden ocasionar pérdidas del rendimiento y demeritar la calidad de la seta. Pueden ser factores abióticos como la temperatura, humedad relativa, luz y CO 2; ó también bióticos como los insectos, ácaros, hongos y bacterias. Es importante identificarlos a tiempo y controlarlos.

INSECTOS Colémbolos. Son insectos diminutos (1-1.5 mm) sin alas que forman pequeñas galerías, secas y de sección oval en el píleo de los hongos. Se encuentran en gran cantidad entre las laminillas que hay bajo el sombrero de las setas (Anónimo, 2006f). Se controlan con una buena “pasteurización” y aplicaciones

bioinsecticidas.

de piretroides o

Dípteros: (Moscas). El daño lo causan sus larvas que se comen las hifas del micelio, hacen pequeñas galerías en el estipe de las setas y en los sombreros. Para el control se recomiendan medidas preventivas como la colocación de filtros junto a los ventiladores, eliminación de residuos, correcto tratamiento térmico de los sustratos para eliminar huevecillos y larvas, la colocación de plásticos amarillos, etc. También pueden utilizarse insecticidas piretroides como cipermetrina o deltametrina (Anónimo, 2006f) y biopesticidas. Otros insectos: pueden ser Coleopteros, Esciáridos, Fóridos, Cecidómidos, entre otros.

Figura 11. Coleoptero : Adulto y Larva ENFERMEDADES Trichoderma

spp. Hongo que se desarrolla en el sustrato durante la incubación (Figura 12) y obstaculiza el crecimiento de Pleurotus spp. Pueden srcinar pérdidas superiores al 77%. A diferencia de la mayoría de hongos competidores, no dependen exclusivamente de los nutrientes solubles fácilmente disponibles, ya que también son capaces de descomponer la celulosa del substrato. Su elevada tasa de crecimiento y su capacidad para funcionar eficazmente como saprofitos

o parásitos, los convierte en los hongos más dañinos del cultivo.

Figura 12. Bolsas contaminadas por Trichoderma spp. La infección del sustrato tiene lugar generalmente en la siembra, sobre todo cuando no se cuenta con normas de higiene. Los daños son proporcionales al número de bolsas sembrados y a la precocidad de la infección (Anónimo, 2006f). El control se realiza mediante el ajuste de pH del sustrato a valores de 7.5 o superiores, utilizando cal en el tratamiento térmico (1 – 2 g L-1) y

también se agrega el fungicida (Benomilo) a dosis de 7.5 a 10.0 g 100 L-1 (75–100 ppm). Otros hongos de color verde son los géneros Gliocladium y Penicillium. Los factores que favorecen su desarrollo son una elevada humedad relativa y temperaturas altas en la incubación, que eventualmente pueden estar asociados a una insuficiente ventilación y a la presencia de superficies mojadas en los basidiocarpos. Su dispersión se produce por salpicaduras de agua, por corrientes de aire y por recolectores (Anónimo, 2006f). Otros hongos competidores. Doratomyces stemonitis (Pres.) Morton & Smith (Bolor Preto), favorecido por la presencia de carbohidratos y cuya aparición está asociada a problemas de sobrecalentamiento de los sustratos durante la incubación. Mucor pusillus (Lindt.), es parecido al anterior, prevalece durante los meses de verano, cuando los rangos de temperaturas oscilan

entre 25-35ºC, es visible por sus esporangios negros en el sustrato entre el 2° y 4° día de incubación y puede ocasionar retrasos de 3 a 4 días en la fructificación (Anónimo, 2006f). También se presentan algunas especies de Coprinus spp., en sustratos suplementados con compuestos orgánicos ricos en nitrógeno (Anónimo, 2006f). Existen más hongos competidores de menor importancia. Mancha parda. La bacteria Pseudomonas tolaasii (Paine) causa pudrición de primordios y manchas de color pardo en la seta, inclusive en el micelio (Figura 13). Puede causar pérdidas significativas durante la primera cosecha, aunque a veces sólo aparece en la segunda cosecha. La humedad relativa elevada, temperaturas templadas y vectores como las moscas son condiciones favorables para que se presente la enfermedad (Anónimo, 2006f).

Figura 13. Seta contaminada por la bacteria Pseudomonas tolaasii

Otra bacteria, Pseudomonas agarici produce manchas de distintos tamaños de color amarillo, beige o naranja, ocasionando a veces depresiones sobre la superficie de los primordios, que terminan poco desarrollados, de color amarillo o naranja y deformes, se llegan a podrir y huelen mal. Temperaturas de 24-28°C junto humedades relativas superiores a 90% favorecen el desarrollo de la enfermedad. El control es a través de mantener la humedad relativa y temperatura optima para el desarrollo de las setas y controlando vectores.

4.- ERRORES MÁS COMUNES AL CULTIVAR SETAS

Los errores frecuentemente relacionados con la preparación del sustrato y su desinfección.  Uso

de sustrato en mal estado. Compra de pacas podridas. Sustrato mojado por no cubrirlo adecuadamente en el almacén.  Cortar el sustrato dentro del área de pasteurización o siembra, creando una nube de polvo que queda flotando en el aire. hidratar adecuadamente el sustrato.  “Pasteurizar” en áreas contaminadas o próximas a ellas.  No escurrir adecuadamente el sustrato.  Sembrar con el sustrato caliente.  No

 Sembrar

el sustrato 2 o 3 días después de “pasteurizado”.  No desinfectarse las manos para sembrar.

 No

colocarse cubrebocas, cubrepelo ni ropa limpia para sembrar.  Platicar durante la siembra.  Utilizar demasiado o escaso micelio (semilla).  Empleo de micelio (semilla) de baja o dudosa calidad o incapacidad para reconocerla.  Utilizar bolsas demasiadas gruesas o delgadas.  Exponer el micelio (semilla) o las bolsas sembradas al sol.  Mezclar micelio (semilla) de distintas var. en una misma bolsa  Congelar el micelio (semilla). Recomendaciones de higiene como preventivas Antes de iniciar el ciclo de cultivo, limpiar y desinfectar la nave de cultivo. Prevenir la entrada de insectos con mallas antiáfidos No tocar cuerpos fructíferos enfermos durante la recolección. Desinfectar los utensilios de recolección con cloro al 1%.

5.- LITERATURA CITADA Aguilar, D, .L. 2007. Producción de inóculo liquido para el cultivo de Pleurotus spp. Obtenido de la red: http://www.biotecnologia red:.upibi.ipn.mx/recursos /posgrado/Tesis/M.C.%20Leticia%20Aguilar%20Doroteo.pdf (Consulta: 30/05/10). Ancona, M.L., Flores, N.A., Pech, M.V., Rejon, A.M. 2009. Caracterización de los agentes comerciales: Supermercados y restaurantes, en la dinámica del mercado de las setas Pleurotus ostreatus en Mérida, Yucatán, México. Revista Mexicana de Agronegocios 25:68-79. Andrade, T.A. 2005. Análisis Financiero de la Producción de Hongos setas (Pleurotus ostreatus) en el Municipio de San Juan Teotihuacan México. Tesis de Licenciatura en Fitotecnia. Universidad Autónoma Chapingo. México. Anónimo, 2006a. Hongos. Dirección en http://www.hongos. pdf. (Consulta. 27/08/06).

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