“Año del Buen Servicio al Ciudadano”
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DOCENTE
: Q.F. Tox. Lizano Gutiérrez, Jesús Víctor.
INTEGRANTES
:
Arotinco Rojas, Karin Astuhuaman Tinoco, Mary Carmen. Churampi Pardo, Anali. Flores Escobar, Marizu. Peceros Solis, Andrea
SECCIÓN: FB9N1 GRUPO: N° 3 TURNO: Noche
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1. Indicar la importancia de la práctica de toxicología IMPORTANCIA: El etanol o alcohol vínico es el agente de toxicofilia y drogadicción más extendido y generalizado en todas las sociedades del mundo a través del tiempo. El consumo de bebidas alcohólicas o más específicamente el abuso de las mismas, se ha tornado en un problema de crecientes proporciones en nuestro país que traen como consecuencia accidentes de tránsito, muertes violentas y criminalidad debida a que las personas actúan bajo los efectos del alcohol etílico. Se ha vuelto de mayor importancia en el ámbito de los sucesos de tránsito, donde se ha observado en los últimos años un aumento extremadamente grande de víctimas ocasionándoles la muerte. Actualmente esta sustancia constituye un factor predisponente para los consumidores agudos y crónicos a cometer delitos en contra de la sociedad, convirtiéndose su consumo en un problema social y médico legal en el que los químicos farmacéuticos estamos comprometidos por ser quienes tenemos la labor de determinar la concentración de alcohol etílico en sangre(Alcoholemia) a través del análisis de Dosaje Etílico y contribuir al esclarecimiento de los hechos a fin de contribuir a una mejor administración de justicia en el Perú. Por ello en la práctica un alumno por grupo engirió la bebidas alcohólicas asignada, el cual fue pisco para así determinar cómo varia la concentración concentración del alcohol etílico y la muestra con la que se trabajo fue la orina . MUESTRA: Bebida alcohólica: Pisco.
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2. PROCEDIMIENTO: A. Dosaje etílico 1. MICRODIFUSIÓN : CAMARA DE CRONWAY Fundamento: La cámara de Conway consiste en un receptáculo con dos compartimentos concéntricos, generalmente de porcelana, y una tapa de vidrio esmerilada. Se utiliza para la separación de compuestos volátiles o gaseosos, fijándolos en una solución apropiada para luego cuantificarlos. La tapa de vidrio permite un cierre hermético, cuando se le aplica sellador en sus bordes (vaselina sólida, etc)
Agregar en la luna de reloj 2 mL de Cr 2O7K2 al 0.5% en H2SO4 al 50%
Fuera de la luna de reloj se agrega 1 mL de orina + 1 mL CO3Na2 al 10%
Tapar inmediatamente y llevar a un calor de 600C por 30 minutos
Extraer 1 mL del contenido de la luna de reloj y leer en el espectrofotómetro
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CALCULOS: [ ] Etanol= (D.O Bicromato – D.O. Muestra P.) x St (D.O. Bicromato – D.O. St) [ ] Etanol= (4.258 – 1.742) x 1 = 2.516 (4.258 – 3.800)
0.458
[ ] Etanol= 5.493
[] Etanol = D.O
DO st D.O MP
[ ] St [ ] M.P [ ] MP = [ ] MP =
[ ] . .
.
. .
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= .
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2. METANOL
2.2. mL de H2SO4 20% 1mL de orina 1 mL CO3K2 10% o cristales Tapar inmediatamente inmediatamente
Llevar a baño María x 30’
Luego:
Tomar en dos tubos: A y B
1 mL H2SO4 (ambos) V gts MnO4K 1% (tubo A)
Reposo por 5’
10 mg SO3Na2 (ambos) 10 mg ácido cromotrópico cromotrópico (ambos) 4 mL H2SO4 conc. (ambos) Llevar a baño María hirviente hirvient e
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RESULTADOS No se observa el cambio de coloración, ni la formación de un complejo rojizo por lo que se indica que el resultado en la prueba de metanol en orina es NEGATIVO.
Reacciones Químicas:
Metabolismo del Alcohol:
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Reacción química: 2KMnO4 + 8H2SO4 --> 2MnO2 + 8SO2 + 8H2O + K2SO4 Se ajusta por método ión-electrón a partir de las semirreacciones siguientes: MnO4(-) + 4H(+) + 3e(-) SO4(2-) + 4H(+) --> SO2 + 2e(-) + 2H2O
-->
MnO2
+
2H2O
Fundamento: Se basa en la oxidación del etanol a medio acido por acción de la mezcla oxidante KMnO4 Y H2SO4 , formando formaldehido, éste produce reacción coloreada violeta con el reactivo de schiff, cuya intensidad es proporcional a la cantidad de metanol presente.
Reacción química: La reacción ajustada, en forma iónica, es 5 SO32- + 2 MnO4- + 6 H+ → 5 SO42- + 2 Mn2+ + 3 H2O Sumamos en ambos miembros 10 mol de iones Na+, 2 mol de iones K+ y 3 mol de iones SO42-: 5 Na2SO3 + 2 KMnO4 + 3 H2SO4 → 5 Na2SO4 + 2 MnSO4 + K2SO4 + 3 H2O
Fundamento: El sulfito de sodio reacciona con el permanganato de potasio, en medio ácido sulfúrico, para obtener sulfato de sodio, sulfato de manganeso (II), sulfato de potasio y agua.
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B. Determinación de ácido Cianhídrico Objetivo: Extraer e identificar el tóxico t óxico gaseoso Ácido Cianhídrico a partir de ácidos fuertes y afinidad a otros compuestos.
a. Destilar
NaOH 5% Muestra del destilado
Muestra brindada por el docente.+ ácido sulfúrico. b. Identificar 1. Ácido Pícrico (También conocido como ensayo de Grignard) Fundamento: El ácido pícrico en presencia del HCN, liberado de la muestra ácida, forma isopurpurato alcalino, de color rojo al rojo naranja en el transcurso de cinco minutos. 1mL del destilado + 1mL Ac. Pícrico + BM hirviendo.
− − → − →
Figura N°1
Isoporpurato alcalino (Color marrón concha de vino)
Reacción +: color marrón concha de vino FB9N1
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2. CL3Fe 5% (También conocido por ensayo de Magnin) Fundamento: Se basa en la formación de azul de Prusia.
1mL del destilado + SO4Fe 10mg + HCl conc. gts
Reacción +: color azul
Figura N°2
− − → −
Luego: − − → [() ]− + − → () . (( ))
→ ( ( )) á
( ( )) [ (( )) ]− + + → (( ))
Azul ferrocianurico
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3. Rx. Denigés o Técnica del del Azul de Prusia modificada o técnica de Chellen-Klassen. Fundamento: En la formación de un precipitado azul por formación de azul de Prusia (ferrocianuro férrico) a partir del destilado, efectuando un ajuste previo del PH a un valor de 8 para favorecer la precipitación . 1mL del destilado + 1 gts. Fenolftaleína + H2SO4 20% hasta decoloración + CO3Na2 hasta que aparezca color fucsia + 10mg SO4Fe + agitar + reposar x30min + gts. HCl [ ]
Reacción +: color azul de prusia
Figura N°3
− − → −
Las reacciones correspondientes son las siguientes: ( )) → ( ( )) [ (( )) → → [ (( )) ]
Se agrega HCL y se agita: [()] () → [() ] [ [ (( ))] → → [ (( )) ] ( ( ) )
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3. Conclusiones: -
Se concluye concluye que la bebida bebida (pisco) que se ingirió, no contenía contenía metanol por el resultado negativo de la prueba.
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La reacción para la determinación de metanol metanol generalmente se utiliza en toxicología para averiguar si una bebida ha sido adulterada o si una persona ha consumido una bebida con metanol, ya que éste alcohol es tóxico por el metabolito que se origina (Formol).
-
En la determinación de la presencia presencia de ácido cianhídrico con el uso uso de ácido pícrico, por norma general el cianuro reacciona con un ácido fuerte convirtiéndolo en ácido cianhídrico, corrocando la presencia de estos con un cambio de color a marrón concha de vino, como se muestra en la figura N°1.
-
En la determinación de la presencia de ácido ácido cianhídrico cianhídrico con el método de Magnin o Tricloruro férrico, se debería evidenciar un azul ferrocianurico ya que el cianuro tiene gran afinidad por el Hierro en estado férrico, debido a esta propiedad al unirse debería formar un complejo llamado azul de Prusia, en la práctica realizada no se evidencia estos resultados debido a una mala manipulación de los participantes ya que en la Reacción de Grignard si se evidencia presencia de cianuro.
-
En la determinación de la presencia de ácido ácido cianhídrico cianhídrico con el método de Azul de Prusia modificada o Reacción de Denigés también se utiliza sulfato ferroso y ácidos fuertes, ya que el cianuro es a fin a ellos, debiendo reaccionar y evidenciar su presencia en Azul de Prusia o Ferrocianurico férrico. Pero en la práctica se evidencio un ligero azul, según teoría se puede aumentar la sensibilidad de la reacción agregando gotitas de solución de cloruro de Bario al 10% y dejar reposar varias horas hasta formar puntos azules.
- Actualmente la “norma de oro” dice que los Métodos Cromatográficos
de detección del cianuro, por ejemplo el HPLC es mejor, debido a la especificidad y sensibilidad de la técnica de detección.
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Otras pruebas rápidas para la detección de HCN son: Reacción Reacción sulfociánica o de Von Liebig, Métodos de formación de manchas de Azul de Prusia, Método de microdifusión de Feldstein-Klendshoj, Feldstein-Klendshoj, utilización de papel de Guayaco y ensayo de O-tolidina. O -tolidina.
4. Referencias Bibliográficas: 1. Revista Illinois Departament of public health health (2005).Ácido cianhídrico. EE.UU.
Recuperado:
https://illinoispoisoncenter.org/ipc_media/pdf/HC_spa.pdf 2. Acta toxicológica argentina. (2009). Revisión Revisión de la toxico cinética y la toxico dinamia del ácido cianhídrico y los cianuros. Argentina. Recuperado:http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S 1851-37432009000100003 3. Comisión del Codex Codex Alimentarius (2013). (2013). Normas alimentarias para para los niveles máximos para el ácido cianhídrico en la yuca y derivados. Italia. Recuperado: ftp://ftp.fao.org/codex/meetings/cc ftp://ftp.fao.org/codex/meetings/cccf/cccf7/cf07_10s.pdf cf/cccf7/cf07_10s.pdf 4. Estación Experimental Experimental Agropecuaria Bordenave. Bordenave. Reacción Reacción de Grignard para detectar compuestos del ácido cianhídrico en sorgo. Perú. Recuperado:
https://inta.gob.ar/sites/default/files/script-tmp-
inta_reaccion_de_grignard_para_detectar_acido_cianidr.pdf
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