1er Informe de Microbiología- Calibración Del Micrómetro Ocular y Medición de Microorganismos

UNIVERSIDAD NACIONAL DE INGENIERÍA FACULTAD DE INGENIERÍA AMBIENTAL

ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA SANITARIA

“Calibración del micrómetro ocular y medición de microorganismos” microorganismos”

Microbiología Sanitaria II

Ing. Jorge Gilberto Tello Cebreros

Dominguez Villafana Christian Jorge

MICROBIOLOGÍA SANITARIA II

UNI-FIA

LABORATORIO 1: Calibración del micrómetro ocular y medición de microorganismos

INDICE RESUMEN……………………………………………………………… RESUMEN……………………… …………………………………………………..………………………… …………..…………………………....…… ……2 2 INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………………………………… INTRODUCCIÓN……………………………………………………………………………………………....……. …….2 2 OBJETIVOS………………………………………………………... OBJETIVOS……………………………………………………… ...…………………………………………..……. …………………………………………..…….2 2 MARCO TEÓRICO………………………………………………………………………………....…….……….3 TEÓRICO………………………………………………………………………………....…….……….3 RESULTADOS…………………………………………………………… RESULTADOS……………………… ………………………………………………………..…………………….11 …………………..…………………….11 DISCUSIÓN DE RESULTADOS……………………………………………………………………………… RESUL TADOS………………………………………………………………………………12 12 CONCLUSIONES…………………………………………………………………………………………….……12 CONCLUSIONES…………………………………………………………………………………………….……12 RECOMENDACIONES………………………………………………… RECOMENDACIONES………… ………………………………………………………….………………… ………………….…………………...13 ...13 CUESTIONARIO………………………………………………….………………………….…………………...13 CUESTIONARIO………………………………………………….………………………….…………………...13 FUENTES DE INFORMACIÓN………………………………………………………….…………………. INFORMACIÓN………………………………………………………….…………………..16 .16 ANEXOS………………………………………………………………… ANEXOS………………………… …………………………………………………………………………… …………………………………………… ………17 17 

EQUIPOS, MUESTRAS Y MATERIALES

APENDICE……………………………………………………………………… APENDICE……………………………… ……………………………………………………………………… ………………………………....… …18 

PROCEDIMIENTOS

1


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En la práctica se realizó un análisis para determinar la calidad microbiológica del agua en la Universidad Nacional de Ingeniería, específicamente en los grifos de la FIA y FIC y en el estanque de FAUA. Para tal fin, se emplearon las técnicas de recuento heterotrófico de placas, el cual es un método muy utilizado para la detección y cuantificación de los microorganismos coliformes mediante el cultivo en un medio sólido en varias placas Petri y el cálculo de su Unidad Formadora de Colonias (UFC), los niveles de contaminación encontrados fueron altos.

Conocer la calidad microbiológica del agua resulta de gran relevancia, dado el riesgo asociado con la ingesta de agua contaminada con bacterias patógenas que resultan ser muy perjudiciales para la salud, por ello su control resulta ser primordial. El control de la calidad microbiológica del agua requiere de análisis dirigidos a determinar la presencia de microorganismos patógenos. La alternativa para realizar dicho control es el uso de algunos indicadores. Entre los indicadores de contaminación más utilizados se encuentran los coliformes totales y termotolerantes, Escherichia coli y enterococos. Las bacterias indicadoras permiten realizar la clasificación sanitaria de las aguas para diferentes usos, la determinación de criterios para las normas de calidad, la identificación de contaminantes, el control de procesos de tratamiento de agua y estudios epidemiológicos, etc. El presente trabajo aborda los principales aspectos acerca de la utilidad de las bacterias indicadoras en la evaluación de la calidad del agua.



Identificar el crecimiento de los microorganismos en un ambiente diferente estudiado hasta ahora, en este caso el agua



Explicar el concepto microbiológico de indicador de contaminación.



Evaluar la calidad sanitaria de muestras de agua obtenidas en la Universidad Nacional de Ingeniería.



Aplicar las técnicas de cuantificación de microorganismos mediante el recuento heterotrófico de placas.

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LA IMPORTANCIA DE LA CALIDAD DEL AGUA El agua, alimento esencial para los animales

incluido

el

hombre,

frecuentemente actúa como vehículo de transmisión entéricos.

de La

microorganismos

materia

fecal

puede

accidentalmente alcanzar una fuente de abastecimiento, siendo la forma más Ima en 1: A ua de consumo humano

común el ingreso a través de los sistemas

de pozo ciego a napas profundas .La dirección general de salud ambiental (DIGESA), la Organización Mundial de la Salud (OMS) en sus Guías para la calidad del agua potable, la Directiva 98/83/CE1 y otras normas internacionales, establecen o recomiendan requisitos de calidad para el agua de consumo humano. En general, la normativa establece que el agua es apta bacteriológicamente para consumo si se encuentra exenta de microorganismos patógenos de origen entérico y parasitario intestinal. Ellos transmiten enfermedades tales como salmonelosis (Salmonella), shigelosis (Shigella), colera (Vibrio Cholerae), amebiasis (Entamoeba histolytica), alteraciones gastrointestinales (Aeromonas mesófilas,

Helicobacter

cristosporidiosis

pylori,

Campylobacter);

(Crystosporidium),

esquistosomiasis

giardiasis

(Giardia

(Schistosoma),

lamblia),

desórdenes

hepáticos (virus de hepatitis), etc. La presencia de microorganismos patógenos en el agua de bebida es un riesgo que se incrementa en las áreas marginales de mayor densidad poblacional o en zonas sin disponibilidad de agua potable. La seguridad que un agua contaminada puede ser causal de enfermedades, ha conducido a la necesidad de controlar rutinariamente la calidad microbiológica de muestras de diversos orígenes. Los controles rutinarios de la totalidad de los microorganismos hídricos, potencialmente riesgosos para la salud, resultan difíciles de llevar a cabo debido a la gran variedad de bacterias patógenas cultivables, a la complejidad de los ensayos de aisla mientos y a la presencia en baja concentración de varias especies altamente agresivas, sin que el orden detallado indique prioridad. Por esta razón, los análisis bacteriológicos apuntan a la búsqueda

de

microorganismos

indicadores

3

de

contaminación

fecal.


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EL USO DE MICROORGANISMOS INDICADORES El reconocimiento de que las infecciones microbianas pueden ser transmitidas por el agua ha dado lugar al desarrollo de métodos para efectuar exámenes de rutina que garanticen que el agua destinada para el consumo se encuentre libre de contaminación bacteriana. Aunque es posible detectar presencia de múltiples organismos patógenos en el agua, los métodos de aislamiento y enumeración suelen ser complejos y demandan demasiado tiempo. Por esto, es impracticable someter a vigilancia

permanente el agua para

detectar todo posible microorganismo patógeno. Una opción más adecuada es detectar organismos que normalmente están presentes en las heces de los seres humanos y de los animales de sangre caliente como indicadores de contaminación fecal, siendo además, un método útil para controlar la eficacia en el tratamiento del agua y la desinfección de las instalaciones. La presencia de estos gérmenes indica que existe la posibilidad de que estén presentes organismos patógenos intestinales. Es un buen método de control de calidad. También es importante vigilar la calidad bacteriana del agua natural, no sólo para evaluar el grado de contaminación, sino también para la selección de la mejor fuente de abastecimiento y tratamiento requerido. Es imprescindible que los exámenes sean regulares y frecuentes, ya que la contaminación puede ser intermitente y no haber sido detectada por el análisis de una sola muestra. Deben controlarse sistemáticamente la fuente de abastecimiento, las diferentes etapas de su procesamiento y su distribución. Cuándo ocurran cambios en las condiciones establecidas que conduzcan al deterioro de la calidad del agua, se deberá intensificar la frecuencia de los exámenes; para lo cual es necesario elegir cuidadosamente una serie de muestras con el objeto de identificar el riesgo y adoptar medidas correctivas.

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El uso de microorganismos intestinales normales como indicadores de contaminación fecal es una metodología de aceptación universal en la vigilancia y evaluación de la seguridad en los sistemas de abastecimiento de agua. Estos microorganismos abundarán en los excrementos, pero estarán ausentes o sólo en número reducido en otras fuentes. Serán fáciles de aislar, identificar y enumerar, y deberán ser incapaces de desarrollarse en el agua. Igualmente deberán sobrevivir más tiempo en el agua que los gérmenes patógenos y ser más resistentes a los desinfectantes como el cloro. En la práctica, todos estos criterios no pueden darse en un solo organismo, aunque las bacterias coliformes cumplen con mucho de ellos, especialmente

, que es

el principal indicador de contaminación fecal.

Se reconoce que los organismos del grupo coliforme son un buen indicador microbiano de la calidad del agua potable, principalmente porque son fáciles de

detectar y

enumerar. Se caracterizan por fermentar la lactosa en cultivos a 35-37°C. Entre ellos se encuentran Este grupo no debería detectarse en sistemas de tratamiento de abastecimiento de agua, por lo cual es importante para evaluar la eficiencia del tratamiento. Es preciso tener en cuenta que las bacterias coliformes no provienen solo de las heces de los animales de sangre caliente, sino también de la vegetación y el suelo. Por lo expuesto, la presencia de algunos organismos coliformes (1-10 coliformes en 100 ml) sobre todo en aguas subterráneas, puede tener poca importancia, siempre que haya ausencia de organismos coliformes fecales.

Los organismos coliformes fecales son capaces de fermentar la lactosa a 44.0- 44.5°C. Entre ellos se encuentra el género

y en menor grado algunas cepas de

. De todos estos microorganismos, solo E. coli tiene origen específicamente fecal.

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Para que en un sistema de distribución se desarrollen organismos coliformes fecales deben existir suficientes nutrientes bacterianos, la demanda bioquímica de oxigeno (DBO) debe ser mayor de 14 mg/l, la temperatura del agua debe superar los 13°C, y no debe haber cloro libre residual.

Cuando existan dudas, sobre todo cuando se han encontrado organismos del grupo coliforme y hay ausencia de coliformes fecales, se pueden usar otros organismos que confirmen que la contaminación es de naturaleza fecal. Entre estos indicadores secundarios están los estreptococos fecales y los clostridios sulfito-reductores, especialmente Clostridium perfringens. se denominan así a los estreptococos que se encuentran normalmente en las heces humanas y animales. Raramente se multiplican en el agua contaminada y pueden ser algo más resistentes a la desinfección que los organismos coliformes. Sin embargo, pocas veces se los recomienda para controlar la calidad del agua potable, ya que persisten con concentraciones moderadas de sal, como podría suceder en abastecimientos donde el agua ha sido mezclada. se trata de organismos anaerobios esporulados, siendo el más frecuente Clostridium perfringens, normalmente presente en las heces, aunque en cantidad mucho menor que E. coli. Las esporas de clostridios pueden persistir por largos periodos, porque pueden resistir a la desinfección si el grado de concentración, tiempo de contacto y pH son inadecuados. Su persistencia en el agua que ha sido desinfectada puede indicar que existen deficiencias en el tratamiento. No es aconsejable su determinación para vigilancia habitual, ya que tiende a sobrevivir y acumularse, por lo que puede detectarse en puntos remotos en cuanto a tiempo y ubicación, respecto de la fuente de contaminación original, lo que podría dar lugar a falsas alarmas.

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Es un germen patógeno oportunista que afecta a niños muy pequeños, a adultos en edad avanzada o a personas debilitadas a causa de alguna enfermedad. Se aísla frecuentemente en personas que padecen infecciones del tracto urinario o quemaduras en la piel.

Los heterótrofos son un grupo de microorganismos, entre los que se incluyen las levaduras, los hongos y las bacterias, que utilizan el carbono orgánico como fuente única de energía y carbono. Esta clasificación se contrapone a la de los organismos autótrofos, como las algas, que emplean el carbono inorgánico y la luz del sol para satisfacer sus necesidades. El número abrumador de especies conocidas de bacterias, tanto aerobias como anaerobias, son heterótrofas. Muchos organismos heterótrofos consumen compuestos de carbono, tales como azúcares, alcohol y ácidos orgánicos, como fuente de alimento. No obstante, existen algunos organismos especializados que son capaces de descomponer la celulosa, la lignina, la quitina, la queratina, los hidrocarburos complejos, el fenol y otras sustancias. Los organismos heterótrofos suelen encontrarse en el suelo, el agua, los alimentos y los lechos de los suelos de las masas de agua.

Por lo general, los microorganismos crecerán en el agua y como biopelículas en las superficies que están en contacto con el agua. El crecimiento de estos organismos después de tratar el agua suele entenderse como un rebrote. La aparición de un rebrote normalmente se caracteriza por el aumento de los valores del recuento heterotrófico en placas (HPC) de las muestras de agua. Suelen encontrarse valores elevados del HPC en las zonas estancadas de los sistemas de distribución, en las instalaciones del agua de uso doméstico y en las aguas embotelladas; además, se asocian con el plomo de dispositivos tales como los descalcificadores y filtros de carbono, y las máquinas expendedoras de bebidas. Los tests de HPC se llevan utilizando desde hace mucho tiempo para verificar la calidad de los proveedores de agua.

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El recuento de colonias puede emplearse para evaluar el contenido bacteriano general del agua. Esto no representa el número total de microorganismos presentes, sino aquellos que tienen capacidad de formar colonias visibles en medios nutritivos bajo ciertas condiciones. No debe considerarse esencial para evaluar la inocuidad de los abastecimientos de agua, pero un incremento repentino en el recuento de colonias en una fuente de aguas subterráneas puede ser un primer indicio de contaminación del acuífero. Es útil para evaluar la eficiencia de los sistemas de tratamiento y el grado de limpieza e integridad del sistema de distribución. Debe elegirse la combinación de método y medio que produzca el mayor número de colonias en un tiempo predeterminado de incubación.



Es fácil de poner en práctica y puede adaptarse a volúmenes de muestras puras o diluidas que oscilan entre 0.1 y 2.0 ml. Las colonias que se producen son relativamente pequeñas y compactas, y muestran menor tendencia a rodear unas a otras que cuándo se siembra en superficie. Sin embargo, suelen tener crecimiento más lento y son difíciles de transferir. Para mantener la temperatura del agar es necesario contar con un baño termostatizado, pero aun así puede producirse un choque de calor a la exposición de la muestra al agar a 45-46°C. 

No se produce choque de calor y todas las colonias se encuentran sobre la superficie del agar, de donde pueden distinguirse fácilmente de las partículas y burbujas, y son fáciles de transferir. Este método está limitado por el pequeño volumen de muestra que puede absorber el agar, 0.1-0.5 ml, según el grado de secado de las placas.

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

Permite analizar grandes volúmenes de agua de baja turbidez y es el método elegido para aguas de bajos contenidos (menos de 1-10 UFC). El problema que tiene este método es el costo del equipo de filtración y las membranas. Otro inconveniente es la menor área expuesta, con la dificultad de visualizar colonias mediante luz reflejada contra un fondo blanco, en caso de no utilizarse filtros coloreados o con tinciones de contraste.

Las muestras que se tomarán para el análisis deben ser representativas para poder determinar así su calidad microbiológica. Hay normas para la toma de muestras de aguas según sus distintas procedencias (grifos, pozos, depósitos, lagos, ríos, manantiales, etc.). Para su recogida debe utilizarse frascos estériles y debe recolectarse cantidades comprendidas entre 500 y 1000 ml. 

Ima en 2: Toma de muestras de a ua

Agua de los grifos: Se tiene que dejar correr el agua durante un periodo de 1 a 2 minutos. Destape el frasco esterilizado con los cuidados necesarios a modo de no contaminar el medio y luego ciérrelo. Si el agua estuviera clorada (piscinas) el frasco con el que se tomara la muestra

de 100 ml deberá contener 0.1 ml de

solución de tiosulfato de sodio al 3% para neutralizar el cloro residual. 

Pozos: Cuando no hay grifos u otro tipo de conducción, amarre una cuerda esterilizada al frasco de toma de muestras y recolecte la muestra. El frasco debe estar lleno hasta sus 4/5 de su volumen.



Agua de superficie: Recolecte la muestra contra la corriente, lo más distante de la orilla y siempre bajo la superficie (más o menos a 30 cm de profundidad).

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Su análisis debe comenzar antes de que hayan transcurrido 6 h desde el momento de la toma de muestras. En circunstancias excepcionales, las muestras pueden conservarse a una temperatura de 4ºC durante un periodo máximo de 24 h antes de su análisis.

Transcurrido el tiempo de incubación pertinente se cuentan todas las colonias crecidas en las placas. Se elige aquella dilución en la que el número de colonias por placa se encuentre entre 30 y 300 descartando las otras diluciones para el recuento. Solo se contaran las colonias de aquellas placas que posean menos de 30 en el caso de que sea una muestra sin diluir. El resultado se expresara en unidades formadoras de colonias (UFC) por ml A la hora de obtener este resultado hay que tener en cuenta que se han sembrado 0.1 ml y el factor de dilución. Veamos un caso práctico: Se han contado las tres placas sembradas de la dilución 10-4 y se ha obtenido un recuento de 43, 45 y 47 colonias respectivamente en las tres placas. Para expresar el resultado del recuento, primeramente se hace la media de las tres placas (43+45+47:3=45) que sería de 45 colonias. Puesto que se ha sembrado 0.1 ml. para saber el número de colonias por mililitro será necesario multiplicar por 10, por tanto será 45x10=4.5X102 en el mililitro de la dilución 10-2. Así, en la muestra original el número de unidades formadoras de colonias por mililitro (UFC /ml) será de 4.5x102 x104 es decir, 4.5x106 UFC/ml

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LABORATORIO 1: Calibración del micrómetro ocular y medición de microorganismos V. Tabla 1: Resultados de recuento de bacterias heterotróficas

Medición Calibración Microsc opio

Objetivo 10X

Objetivo 43X

1

1X <> 10 Y=10μm

1 X <> 43 Y=2.33μm

2

1X <> 12 Y=8.33μm

1 X <> 43 Y=2.33μm

4

1X <> 7 Y=14.29μm

1 X <> 32 Y=3.13μm

6

1x <> 6.5y Y=15.38μm

1x <> 27.5Y Y= 3.63μm

9

1X <> 6 Y=16.67μm

1 X <> 27 Y= 3.7μm

11

3X <> 20 Y=10μm

1 X <> 28 Y=2.33μm

12

1X <> 10 Y=10μm

1 X <> 43 Y= 2.33μm

13

2X <> 20 Y=10μm

1 X <> 28 Y= 3.57μm

14

1X <> 7 Y=14.3μm

1 X <> 27 Y= 3.7μm

15

1X <> 6.5 Y=15.38μm

1 X <> 28 Y=3.57μm

Objetivo 10X Ancho 2Y 20μm 2Y 16.66μm 1Y 14.29μm 1Y 15.38μm 1Y 16.67μm 1.5Y 22.5μm 2Y 20μm 2Y 20μm 1.5Y 21.45μm 1.5Y 23.07μm

Error

Objetivo 43X

Calibración %

Largo

Ancho

Largo

7Y 70μm

9Y 20.97μm

20Y 46.6μm

Ancho=4.63% Largo=50.21%

8Y 66.64μm

5Y 11.65μm

25Y 58.25μm

Ancho=43% Largo=14.4%

4Y 57.16μm

5Y 15.65μm

17Y 53.21μm


4Y 61.52μm

4Y 14.52μm

17Y 61.71μm


4Y 66.68μm

5Y 18.5μm

16Y 59.2μm


4.5Y 67.5μm

6Y 21.42μm

18.5Y 66.05μm


4Y 40μm

10Y 23.3μm

19Y 44.27μm

Ancho=14.16 % Largo=9.65%

7Y 70μm

8Y 28.56μm

27Y 96.39μm

Ancho=29.97 % Largo=27.34%

4Y 57.2μm

6Y 22.2μm

15Y 55.5μm


6Y 92.28μm

6.5Y

27Y 96.39μm


23.21μm

Donde: 

U.F.C/ ml: Unidades formadoras de colonias por cada mililitro.



T.I: tiempo de incubación. U.F.C/ml = N° de colonias x

11

 dilución

Medición %


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(*): En el grupo 1 se observó que en la segunda placa de dilución 10-2 no se formaron colonias, lo que se supone se debió por que no se rotuló correctamente la placa Petri. (*) y (***): En el grupo 3 y 5 existe una inconsistencia en los datos de las diluciones 10-1 y 10-2, ya que en teoría se sabe que a medida que disminuyen las concentraciones la cantidad de colonias también deberían de disminuir, esto se debió a que quizá al realizar las experiencia se hayan contaminado las muestras lo que cual produjo el crecimiento de otras colonias.



No se puede determinar las unidades formadoras de colonias (UFC) por mililitro de muestra, pues los datos obtenidos están muy dispersos y si se calcula así los resultados obtenidos no son viables.



Se puede precisar que el agua del estanque de arquitectura está mucho más contaminada que el agua de la FIA; pero no se puede precisar qué nivel de contaminación que tiene cada muestra.



Los resultados obtenidos no son fiables; y se debe realizar nuevamente el laboratorio.



Existe una inconsistencia entre los datos obtenidos a partir del agua de los grifos de FIA y FIC y los estanques de arquitectura; ya que este presenta en varias de las muestras valores que no guardan relación con cantidad de colonias en agua potable que por norma de ser 0 U.F.C.



A medida que disminuye la concentración de muestra en las placas Petri, las colonias formadas también disminuyen; esto debido a que en la dilución se

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reduce la cantidad de bacterias en la muestra. En la práctica no se observó esto debido a la contaminación u otras causas. 

En la muestra del estanque de Arquitectura notamos el alto grado de contaminación del agua y tiene sentido ya que el agua estancada usualmente está muy contaminada por diversos factores.



En el estanque de arquitectura los factores para el crecimiento y desarrollo de microorganismos

han sido favorables debido a la temperatura, nutrientes,

partículas, turbidez del agua, etc. necesarias para el crecimiento bacteriano. 

Se observa que casi todas las bacterias son de color crema las cuales corresponden a bacterias que viven en el agua.



El tiempo de incubación es un factor importante en la obtención de los resultados, afecto considerablemente en la formación de las colonias.



Para la determinación de las U.F.C/ ml se deben tomar placas que contengan entre 30 y 300 colonias.



Rotular correctamente cada placa Petri para evitar equivocaciones con respecto a la dilución que se está trabajando.



Antes de tomar cada mililitro de la muestra problema para su disolución hay que agitar el recipiente que lo contiene para homogenizar la muestra.



Trabajar en condiciones de esterilidad.



Si se desea obtener datos veraces es necesario repetir los experimentos varias veces, para evitar cometer los mismos errores.



Para disminuir la concentración de microorganismos en el caso del Estanque de FAUA, podríamos hacer un tratamiento con cloro residual, y analizamos el contenido bacterial una vez terminado el proceso.



Para obtener datos con mayor exactitud se debe contar las colonias formadas por lo menos dos veces.



El tiempo de incubación debe ser medido con la mayor exactitud posible.

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“Con las denominaciones de Agua potable de suministro público y Agua potable de uso domiciliario, se entiende la que es apta para la alimentación y uso doméstico: no deberá contener substancias o cuerpos extraños de origen biológico, orgánico, inorgánico o radiactivo en tenores tales que la hagan peligrosa para la salud. Deberá presentar sabor agradable y ser prácticamente incolora, inodora, límpida y transparente. El agua potable de uso domiciliario es el agua proveniente de un suministro público, de un pozo o de otra fuente, ubicada en los reservorios o depósitos domiciliarios. Ambas deberán cumplir con las características físicas, químicas y microbiológicas siguientes:

NMP a 37 °C- 48 hs. (Caldo Mc Conkey o Lauril Sulfato), en 100 ml: igual o menor de 3. ausencia en 100 ml. ausencia en 100 ml.

Tabla 2: Valores microbiológicos a dmisibles del agua de consumo humano

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El agua de las piscinas suele ser potable y clorada, pero también puede provenir de fuentes termales o del mar. Las piscinas modernas tienen un sistema de re-circulación que permite filtrar y desinfectar el agua. Los microorganismos que habitualmente pueden producir problemas son los procedentes del cuerpo de los bañistas y de sus orificios, entre los que se encuentran los que pueden producir infecciones del oído, de las vías respiratorias superiores, de la piel y de los aparatos digestivo y urinario. La calidad del agua depende de la eficacia de la desinfección y del número de bañistas en un determinado momento, así como del número diario de bañistas.

: Se debe determinar periódicamente los niveles residuales de desinfectantes y la turbidez en los periodos de máxima actividad de bañistas, o bien cuando la turbidez supere 1 UNT y el recuento en placa de bacterias heterótrofas totales supere las 500 UFC/ml. El recuento en placa de bacterias heterótrofas totales es el indicador fundamental de la eficacia de la desinfección. Otros indicadores complementarios se refieren a la flora cutánea normal de los bañistas, entre las que se encuentran especies de Streptococcus,Staphylococcus y Pseudomonas. Estos microorganismos son los responsables de un alto porcentaje de enfermedades asociadas al uso de las piscinas y pueden ser relativamente resistentes al efecto del cloro.

Los indicadores fundamentales de la contaminación por animales de compañía, roedores, agua de lluvia y fuentes humanas son los coliformes fecales. Otros indicadores complementarios son el recuento en placa de bacterias heterótrofas totales y especies de Streptococcus, Staphylococcus y Pseudomonas.

Los indicadores pueden ser las bacterias coliformes termotolerantes.

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Tabla 4: Valores microbiológicos admisibles del agua de mesa y mineral

Agua mineral, Agua de mesa, hielo. Agente microbiano

Categoría

Clase

n

c

Bacterias Heterotróficas

2

3

5

Coliformes

5

2

Pseudomonas aeruginosa

10

2

Límite por mL m

M

2

10

50

5

0

<2,2

----

5

0

Ausencia/100mL

----

Para la creación de este informe se tuvo como base la teoría encontrada en los siguientes libros y sitios web: 

Michael Madigan,John Martinko,Jack Parker ,Biología de los microorganismos ,Madrid,Editorial Pearson ,2004.

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LABORATORIO 1: Calibración del micrómetro ocular y medición de microorganismos 

Michael J.Pelczar ,Elementos de Microbiología ,México,Editorial Mc-Graw Hill,1984. 

http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/P7_EnumeracionMicroorganis mos_19616



file:///C:/Users/Administrador/Downloads/619.pdf



http://www.monografias.com/trabajos15/analisis-agua/analisis-agua.shtml



https://es.scribd.com/document/325555011/Determinacion-de-La-CalidadDel-Agua-Lab-3



Contador de colonias – QUEPEC



Contador digital



Agua de los grifos de FIC y FIA, estanque de FAUA.



Frasco de boca ancha con tapón esmerilado



Papel Kraft



1 pipeta de 1mL

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

1 pipeta de 1.1mL

Ima en 4: Contador di ital

Ima en 3: Contador de colonias



Colocar el micrómetro de ocular en el ocular y el micrómetro de platina en la platina previamente de haber limpio dichos materiales.  Ajustar el microscopio para ver con el objetivo las divisiones del micrómetro de platina.  Coincidir las divisiones del micrómetro de platina con las divisiones del micrómetro del ocular.

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

Una vez que coincidan paralelamente los micrómetros calibración del micrómetro del ocular:

realizamos la

Imagen 5: Método de cultivo en placas para el análisis microbiológico del agua

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1er Informe de Microbiología- Calibración Del Micrómetro Ocular y Medición de Microorganismos

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