Curso de Histología Vegetal para Profesores de Secundaria y Bachillerato Profesorado Dr. José Reig Armiñana Dr. Francisco García Breijo
Día 24 (lunes) Lugar: Seminario del Jardín Botánico de Valencia (c/ Quart, 81) Programa del día :
1. 2. 3. 4. 5. 6. 7.
Presentación general del curso, profesores y alumnos. Breve visita a las instalaciones del edificio de investigación del Jardín Botánico. Entrega de materiales. Audiovisual con la explicación general del curso. Introducción general a las distintas técnicas, a cargo de cada uno de los profesores. Confección de los grupos de trabajo. Preparación de fijadores y colorantes para histología vegetal (I) a. Preparación de FAA, safranina-verde rápido, azul de toluidina, et c.
Día 25 (martes) Lugar: Laboratorio de Botánica de la ETSIAMN (2º piso del edificio 3P; Universidad Politécnica de Valencia) Programa del día:
1. Observación . Observación de tr icomas a. Preparación de las muestras (olivo, carrasca, plátano de sombra, lavanda) b. Montaje y tinción de las muestras. c. Observación al microscopio. 2. Observ . Observ ación de est est omas a. Preparación de las muestras de hojas (lirio, geranio, clavel, plátano de sombra, Trasdecantia, Sedum, etc.) b. Montaje y tinción de las muestras. c. Observación al microscopio. 3. Prepar ación ación de f ij adores y color ant es para hist ología vegeta l (II)
Día 26 (miércoles) Lugar: Laboratorio de Botánica de la ETSIAMN (2º piso del edificio 3P; Universidad Politécnica de Valencia) Programa del día:
1. Observación de cri stal es . a. Preparación de las muestras [tallo geranio, hojas de Dieffenbachia sp., oreja de elefante (Colocasia sp.), hojas del árbol del caucho ( Ficus elástica), etc.] b. Montaje y tinción de las muestras. c. Observación al microscopio. 2. Observ ación de plast os . a. Manejo del microtomo de mano. b. Preparación de las muestras: Cloroplastos: Elodea, Spirogyra, musgo. Amiloplastos: plátano, patata, garbanzo, trigo, etc. Cromoplastos: zanahoria, tomate, pimiento (rojo, amarillo, verde) c. Tinción de las muestras. d. Observación al microscopio. • • •
2. Conf ección de una pr epar ación de mi t osis de ápices de mer ist ema de r aíz de cebol la. 3. Prepar ación de f ij adores y colorant es para histol ogía veget al (III)
Día 27 (jueves) Lugar: Laboratorio de Anatomía Vegetal “Julio Iranzo” del Jardín Botánico de Valencia. Programa del día: 1.
Uso del micr ot omo de congelación
a. Preparación del material para cortes en fresco y congelación (tallo de cucurbitácea, tallo de Pothos, hoja de adelfa, etc.) b. Confección de bloques en el microtomo de congelación. c. Corte en congelación. d. Selección de cortes. e. Tinción y montaje de los cortes. f. Observación al microscopio. 2. Int erp r et ación de t ej id os vegeta les en micr oscopía . a. Observación de cortes al microscopio (tallo, raíz, hojas, etc.). b. Uso del microscopio de fluorescencia. c. Programas de ordenador para tratamiento fotográfico.
Día 28 (viernes) Lugar: Laboratorio de Anatomía Vegetal “Julio Iranzo” del Jardín Botánico de Valencia. Programa del día: 1. Uso d e l m i c r o t o m o d e p a r a f i n a a. Preparación de albúmina de Mayer. b. Preparación de material para incluir en parafina. Procesos de fijación y deshidratación. c. Inclusión en parafina. Confección de los bloques. d. Manejo del microtomo de parafina. e. Recogida de los cortes y desparafinado. f. Tinción y montaje de cortes. 2. Uso d e l u l t r a m i c r o t o m o a. Fijación y postfijación para cortes semifinos y ultrafinos. b. Deshidratación e inclusión en resinas (Spurr, LR White, etc.) c. El uso del ultramicrotomo. Montaje de las cuchillas de v idrio y seccionamiento. d. Recogida de las muestras y pegado de los cortes. e. Tinción con azul de toluidina.
