UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA FITOMEJORAMIENTO PRÁCTICA
Profesor:
Chura Chuquija, Julian
Alumno:
Manchay Farceque, Reninger
Código: Tema:
20131227 informes
´´técnicas
de polinización en plantas alogamas´´ ´´mejoramiento genético en algodón´´ ´´recursos genéticos bancos de germoplasma´´ técnicas moleculares aplicada aplicadas s al al fitomejoramiento´ fitomejoramiento´´´ ´´ técnicas
Lima, 2018
TECNICAS DE POLINIZACION EN PLANTAS ALOGAMAS
I.INTRODUCCIÓN: EI problema fundamental en el control de la polinización ya sea para la formación de híbridos o de líneas puras, consiste en colocar el polen funcional sobre los estigmas receptivos en el momento oportuno. Generalmente, y según el caso, dentro de un programa de mejoramiento se debe evitar las posibles autofecundaciones y los cruzamientos indeseables. Las autofecundaciones se evitan por medio de la emasculación (eliminación de las anteras de las plantas femeninas antes de que maduren). Los cruzamientos indeseables se evitan utilizando bolsas u otros materiales apropiados para aislarlos de polen extraño. Por lo general, el equipo utilizado en las técnicas de emasculación; polinización no es complicado; por ejemplo, en plantas autógamas se utili zan pinzas, tijeras, pincel, bolsas de papel encerado, etiquetas, lápiz, clips, lentes de aumento o lupa, etc. En plantas alógamas se emplean bolsas, engrapadora, lápiz, mandil, etc. El éxito de la polinización depende del grado de dificultad que se presente para realizar la emasculación, en los di versos tipos de flores, y del momento oportuno para llevar el polen viable a los estigmas receptivos.
II.OBJETIVO Aprender en forma práctica las técnicas de emasculación, control de polinización, grado de eficiencia de polinizador y el equipo utilizado.
III MATERIALES Y MÉTODOS
Cultivo de maíz Bolsa de papel kraft Bolsitas de papel glassine Clip Lápiz Engrampadora Grapas Mandil Cuchilla
TECNICAS DE POLINIZACION EN PLANTAS ALOGAMAS
I.INTRODUCCIÓN: EI problema fundamental en el control de la polinización ya sea para la formación de híbridos o de líneas puras, consiste en colocar el polen funcional sobre los estigmas receptivos en el momento oportuno. Generalmente, y según el caso, dentro de un programa de mejoramiento se debe evitar las posibles autofecundaciones y los cruzamientos indeseables. Las autofecundaciones se evitan por medio de la emasculación (eliminación de las anteras de las plantas femeninas antes de que maduren). Los cruzamientos indeseables se evitan utilizando bolsas u otros materiales apropiados para aislarlos de polen extraño. Por lo general, el equipo utilizado en las técnicas de emasculación; polinización no es complicado; por ejemplo, en plantas autógamas se utili zan pinzas, tijeras, pincel, bolsas de papel encerado, etiquetas, lápiz, clips, lentes de aumento o lupa, etc. En plantas alógamas se emplean bolsas, engrapadora, lápiz, mandil, etc. El éxito de la polinización depende del grado de dificultad que se presente para realizar la emasculación, en los di versos tipos de flores, y del momento oportuno para llevar el polen viable a los estigmas receptivos.
II.OBJETIVO Aprender en forma práctica las técnicas de emasculación, control de polinización, grado de eficiencia de polinizador y el equipo utilizado.
III MATERIALES Y MÉTODOS
Cultivo de maíz Bolsa de papel kraft Bolsitas de papel glassine Clip Lápiz Engrampadora Grapas Mandil Cuchilla
IV PROCEDIMIENTO: En el campo de maíz se deberá realizar las siguientes labores: Cobertura de la inflorescencia femenina: consiste en recorrer surco por surco y panta por planta, observando que la planta ya tenga emergida el jilote superior y no esté presente el estigma, cubrir el jilote con las bolsitas de papel glassine quedando fijo el tallo. Cobertura de la inflorescencia masculina: un día antes durante el día, se cubre la panoja con la bolsa de papel kraft, poniéndose la fecha del día siguiente en plantas que hayan emergido las anteras solo 1/3 de la panoja, indicándose si es una autofecundación, cruza fraternal o cruza.
V.REVISIÓN LITERARIA POLINIZACIÓN Generalidades:
Autopolinización o autogamia Obligatoria (flores clesistógamas) clesistógamas) Posible Polinización cruzada cruzada o alogamia alogamia Más extendida que la autogamia. A través del viento viento (anemogamia), (anemogamia), por por el agua (hidrogamia) y por animales animales (zoogamia). La alogamia alogamia se se fuerza fuerza por: por: Separación total en el espacio o Dioecia: diferenciación diferenciación sexual y genética, genética, es decir, sexos sexos en individuos separados (palmera, lúpulo, espinaca). Monoecia o Diclinia: en un individuo individuo los órganos sexuales femeninos femeninos o están separados en el espacio de los órganos sexuales masculinos (maíz, rosal, vid, pepino, etc.). Diclinia: unisexualidad unisexualidad floral, flores masculinas y femeninas separadas, o aunque en el mismo individuo. Heterostilia (polimorfismo (polimorfismo estilar): estilar): Condición polimórfica de las flores o hermafroditas en la cual los elementos sexuales difieren en tamaño. Hace referencia al distinto nivel que ocupan en la misma flor los estambres respecto al estigma : estilos por encima de las anteras. Longistilia: estilos Enantiostilia: estambres estambres por encima encima de los estigmas. estigmas. o Hercogamia: condición condición en en la cual la autopolinización autopolinización no es posible posible por la posición relativa de los elementos sexuales en la planta. Distinta
situación en el espacio dentro de una misma flor, parecida a heterostilia, pero teniendo en cuenta la conformación de la flor. Separación parcial en el espacio Androdioecia: población de una especie con individuos hermafroditas y o otros masculinos. Ginodioecia: población de una especie con individuos hermafroditas y o otros femeninos. Separación en el tiempo o Dicogamia: los estambres y estigmas de una misma flor maduran en épocas distintas; si maduran primero los estambres se habla de Protandria (cebolla, cáñamo); si madura primero el estigma se habla de Protoginia (fresa, pimiento). Incompatibilidad homogenética
La clasificación más utilizada y práctica de los tipos de polinización es aquella fundamentada en el medio, abiótico o biótico, de transporte del polen. De acuerdo este criterio se reconoce los siguientes tipos:
Anemogamia: transporte por el viento. Hidrogamia: transporte por el agua (dulce, marina, de lluvia, etc.).
TÉCNICAS DE EMASCULACIÓN Y POLINIZACIÓN ARTIFICIAL La emasculación consiste en la remoción de los órganos masculinos, anteras, de la flor de la planta que se utilizará como hembra. Los procedimientos de emasculación comúnmente usados en el mejoramiento, son los siguientes: 1. Remoción de anteras: El más común se efectúa mediante pinzas, succión u otros medios, antes de que se derrame el polen; se aplica principalmente en autógamas. 2. Destrucción del polen por medio de calor, frío o alcohol: a. Agua caliente a temperaturas de 45 a 48 ºC durante 10 minutos; se aplica en sorgo, arroz y algunas gramíneas forrajeras. b. Temperaturas bajas (cercanas al punto de congelación); se recomiendan para trigo y arroz. c. Alcohol etílico a 57%, durante 10 minutos, se aplica en alfalfa. 3. Polinización sin emasculación: Procedimiento efectivo en plantas incompatibles (muchas forrajeras) y en autoestériles, las cuales no necesitan emascularse para producir plantas híbridas. Se usa en investigación y en producción de híbridos comerciales (por ejemplo, cebada). 4. Esterilidad masculina genética y citoplasmática. Se usa en Investigación y en producción de híbridos comerciales (maíz, sorgo, etc.). Al fin de realizar con éxito la emasculación es importante conocer el momento adecuado, ya que si se retrasa, se derrama el polen y puede causar autofecundación. Si se adelanta, se tienen problemas para eliminar las anteras y se, puede mutilar el pistilo.
Después de la emasculación, las, flores se cubren con bolsas de papel encerado (glassines) para protegerlas del polen extraño.
Prácticas de polinización:
La polinización debe efectuarse cuando el estigma sea receptivo; esto puede reconocerse por la apertura de las flores y el completo desarrollo del estigma. En algunas especies las polinizaciones pueden hacerse el mismo día de la emasculación de la flor (por ejemplo, soya, tabaco, algodón, etc.); en otras, se retrasa de 1 a 3 días; esto depende de los fenómenos de protandria (maduración de las anteras antes que los pistilos) y protoginia (maduración de los estigmas antes que las anteras). La polinización se efectúa colectando anteras maduras y esparciendo el polen sobre el estigma receptivo. El tiempo que el polen permanece viable es muy variable; depende de la especie de que se trate, del ambiente y de otr os factores. Por ejemplo: a. En altas temperaturas, el polen permanece viable sólo unos minutos (trigo y avena) o unas cuantas horas (de 3 a 4 para el maíz). b. En óptimas condiciones el polen puede durar de 6 a 10 días (maíz y caña de azúcar). c. El polen de la palma datilera ha permanecido viable hasta por 10 años. En general, la viabilidad del polen puede conservarse a bajas temperaturas y humedad relativa alta. Por otra parte, como la floración de la mayoría de las plantas ocurre por la mañana, se procede a recolectar polen y a efectuar las polinizaciones inmediatamente como en maíz, a fin de lograr mayores éxitos; sin embargo, en otras plantas como la avena, es mejor por las tardes; en días calurosos y brillantes se tiene también mayor éxito.
VI. CUESTIONARIO 1. Explique cómo se realiza la autofecundación ,cruza fraternal y cruza propiamente dicha en forma controlada de maíz
Autofecundación: La autofecundación o cruzamiento del maíz en forma manual se realiza tapando la mazorca antes de la emisión del estigma, para que una vez que el mismo esté afuera, se proceda a la fecundación. Para eso se cubre con una bolsa de papel la panoja, a fin de colectar el polen, a la mañana temprano, entre las 7:00 y las 9:00. Alrededor del mediodía se libera el polen dentro de la bolsa, sacudiéndola suavemente. Luego se saca y se la coloca sobre el estigma para que la mazorca reciba el polen de su misma planta, esto es la autofecundación.
Cruza fraternal: Tiene como objetivo aumentar la cantidad de semillas; se puede
realizar mediante: Medios hermanos (se conoce solo un progenitor)
Selección de fenotipos Cosecha de plantas seleccionadas Separación de la semilla en dos lotes o bolsas Siembra de semilla en lotes separados Evaluación de progenie Eliminar las los lotes o bolsas en las cuales hay mala progenie Nuevo siclo
Hermanos completos( se conocen ambos progenitores)
Estratificación Control de machos Cruzamiento selectiva Cosecha de semilla de híbrida Separar la semilla en dos bolsas Sembrar la semilla en lotes separados Evaluación de progenie Eliminar las bolsas que contengan semilla de mala progenie
2. Además del método explicado en la práctica que métodos más existen en maíz. Selección masal de S1´S :para eliminar efectos depresivos Selección recurrente :aumentar la frecuencia de alelos favorables sin reducir el bagaje genético y pueden ser: o Fenotípica o Genotípica Hibridación 3. Causas que determinan la baja fecundación de maíz Estrés hídrico Baja fertilidad Temperaturas máximas mayores a 32 C° Aumenta la velocidad de los procesos de diferenciación de los órganos reproductivos y resulta en mayor tasa de aborto de granos. Una mayor sincronía floral en el desarrollo dentro de la inflorescencia y con respecto al de la panoja incrementa la oportunidad de fecundación de la mayoría de los óvulos diferenciados. Los híbridos modernos presentan mayor sincronía floral que los más antiguos. En condiciones de campo, sin restricciones ambientales y con densidad de plantas moderadas, la aparición de estigmas ocurre en general poco después (uno o dos días) del comienzo de la emisión del polen (protandria), aunque en algunos genotipos modernos y con baja densidad de plantas y ambiente favorable, el orden de aparición puede invertirse (protoginia).
4. Como determinar que en una línea se ha efectuado una cruza involuntaria? El retro cruzamiento es una técnica de análisis genético que se utiliza para diferenciar los individuos homocigóticos dominantes de los heterocigóticos respecto del mismo carácter, ya que ambos presentan el mismo fenotipo dominante 5. Que, papel juega la humedad y la temperatura en la eficiencia de la polinización? Las altas temperaturas tienen un efecto directo sobre la polinización del maíz ya que la viabilidad del polen se reduce en forma importante por encima de temperaturas de 35°C (Westgate, 1994). Dado que el derrame del polen ocurre en las primeras horas del día, las temperaturas a esa hora difícilmente llegan a un nivel que pueda causar daño; sin embargo, si las altas temperaturas están asociadas a una baja humedad, la viabilidad del polen se puede reducir de tal manera que la formación del grano puede ser afectada. En el caso en que el abastecimiento de polen
viable descienda por debajo del 80%, la polinización puede ser una limitante del rendimiento. La humedad relativa alta dificulta la polinización, puesto que el polen húmedo se puede quedar pegado en los órganos masculinos. Sin embargo cuando la humedad relativa es baja di sminuye el crecimiento de la planta ,ocurre un cierre de estomas y baja la taza fotosintética. 6. Como influye la fertilización (N-P-K) en la polinización de maíz? Un bajo abastecimiento de nitrógeno en el momento de la floración limita el establecimiento de la capacidad de reserva del grano. Si el abastecimiento de nitrógeno es insuficiente durante el llenado del grano, el nitrógeno se moviliza de los tejidos del tallo y de las hojas para mantener la tasa de crecimiento; si el abastecimiento total de nitrógeno cae por debajo de ciertos niveles, también será afectado el flujo de carbohidratos. 7. Defina los siguientes términos: cruza, cruza fraternal, cruza regresiva, retrocruza ,cruza recíproca, mestizo, cruza simple, cruza triple, cruza doble, cruza simple cripticas, cruza dialécticas, variedad sintética ,variedad, habilidad combinatoria, habilidad combinatoria general, habilidad combinatoria específica, probador, test-cross, top-cross, Xenia. Cruza: Reproducción sexual hecha a base de individuos, en especial animales o plantas, que proceden de razas distintas, generalmente con el fin de mejorar la especie
o
o
o
Cruza fraternal: Producto de cruzas entre plantas hermanas de línea pura, de una variedad, etc., mediante polinización controlada (artificial) para fines de reproducción de semillas y conservación de la pureza genética. Cruza regresiva: Una cruza de híbrido con uno de sus progenitores o con un organismo equivalente genéticamente, o una cruza de híbrido con un homocigoto recesivo.
Retrocruza: Cruzamiento de un hibrido con algunos de sus progenitores o con un organismos genéticamente idéntico.
o
o
Cruza reciproca:
Par de cruzamientos entre dos plantas o líneas en los que el progenitor masculino de un cruzamiento es el progenitor f emenino del segundo cruzamiento ejm. AXB Y BXA Mestizo: Que procede de dos especies o variedades diferentes.
o
o
o
o
o
Cruza simple: Cruza entre dos líneas endogámicas, o cultivos de línea pura (en especies autopolinizadas).desendencia de una cruza entre dos líneas endogámicas o cultivares de líneas puras. Cruza triple: Cruzamiento de una cruza simple por una línea endocrinada. Cruza doble: Cruza entre dos cruzas simples o la progenie de F 1 de la cruza entre dos cruzas simples. cruza doble criptica:
Fuente:www.conacyt.gob.mx/cibiogem/images o
o
cruza dialélicas: Cruza de líneas endogámicas identificadas como poseedoras de aptitud combinatoria general se cruzan en todos los pares posibles. Variedad sintética: Es aquella que resulta de la cruza entre progenitores que han sido seleccionados por su aptitud combinatoria general.
Variedad: Subdivisión de una especie. Una variedad agrícola es un grupo de plantas similares que por sus características estructurales y rendimiento se distinguen de otras variedades dentro de una especie.
o
ACG Comportamiento promedio o general de una línea genética a lo largo de su descendencia. La selección recurrente para la aptitud combinatoria general significa usar un probador que posea una base genética amplia y permite identificar principalmente efectos genéticos aditivos.
o
HCE Son las desviaciones del comportamiento en las combinaciones específicas de líneas genéticas respecto al comportamiento promedio de las combinaciones. La selección recurrente para la aptitud combinatoria específica significa usar un probador que posea una base genética amplia y permite identificar efectos genéticos tanto aditivos como no aditivos.
o
Probador: Línea o variedad conocida por tener un buen valor parental. Línea usada para probar la presencia o ausencia de un gen en una determinada línea o cultivar
o
Test-cross: En genética, una prueba cruzada, introducida por primera vez por Gregor Mendel, implica la cría de un individuo con un individuo fenotípicamente recesivo, con el fin de determinar la cigosidad de los primeros mediante el análisis de proporciones de fenotipos de descendencia.
o
Top-cross: Híbridos que resultan de la cruza de un solo progenitor masculino con diferentes hembras.
o
Xenia: Efecto inmediato que tiene el polen sobre el grano en desarrollo. Cuando un polen de maíz amarillo fecunda un ovulo de maíz blanco, se forma un grano de color amarillo claro y cuando ocurre
o
en forma viceversa el grano que se forma es de color amarillo intermedio
8. Procedimiento empleado para la formación de híbridos comerciales, explique con ejemplos. a) Sembrar semillas en una proporción 4:1 de progenitores femenino y masculino. Mantener una distancia de 0.9 m entre surcos y de 0.5 m entre plantas (dos plantas por postura).
b)
Utilizar la androesterilidad para la formación de semillas hibridas.
9. Mencione los cultivos de plantas alegamas en donde se produce semilla hibrida comercial y el tipo de hibrido que se comercializa. Maíz, centeno, cebolla, forrajes, trigo, arroz, soya, sorgo, frutales, zapallo
10. Explique cuál es la finalidad de realizar el despanojamiento y en que proporciones se siembran los lotes de despanojamiento para formar híbridos, simples, tripes y dobles. El despanojado de maíz es un procedimiento agrícola que consiste en la eliminación de las flores que producen polen, panoja, en lo alto de las plantas de maíz y arrojarlas al suelo. Es una forma de control de polinización, se emplea para hibridar o cruzar dos variedades de maíz. La hibridación del maíz está ampliamente difundida debido al fenómeno de Heterosis o vigor híbrido. Los lotes de maíz que van a ser despanojados se siembran con dos variedades de maíz, uno que cumple la función de macho y la otra variedad cumple la función de hembra, normalmente en surcos diferentes. La proporción de siembra es de 4:1 o 5:2, donde 4 y 5 cumplen la función de hembras y 2 y 1 de machos 11. Describa la metodología de hibridación en dos especies alogamas cultivadas que no sea maíz.
Cebolla El método de las líneas autofecundas es un método engorroso que transita por ocho ciclos de trabajo. En el primer ciclo se plantan 100 bulbos elegidos o bulbos madres de los cuales se obtienen semillas, cada línea se cubre durante la floración con una bolsa de papel, donde se colocan moscas esto ofrece como resultado 100 líneas autofecundas. Para el segundo ciclo las semillas se siembran por separado para la obtención de bulbos, estos se seleccionan por tamaño, forma, precocidad y se eligen de 15 ó 20 de los mejores bulbos de cada línea. En el tercer ciclo se plantan los bulbos elegidos para hacer nuevamente autopolinización y se obtiene semilla por segunda vez. El cuarto ciclo se utiliza para sembrar la semilla que se obtuvo por autofecundación y se eligen los bulbos en base a los objetivos fijados para la selección. Para el quinto ciclo los bulbos elegidos por cada línea se plantan en parcelas de 3-4 m de largo por el ancho de 2 surcos y se colocan los bulbos bien cerca unos de otros y se encierran en jaulas de malla fina y al iniciarse la floración se le colocan moscas o abejas para favorecer la fecundación cruzada y así recuperar vigor. En el sexto ciclo en cada jaula se obtiene semilla de una línea la cual se siembra ese mismo año para obtener y seleccionar los bulbos con los que se continuará el trabajo. Para el séptimo ciclo se siembran las líneas para observar los caracteres deseados, seleccionando rigurosamente los bulbos obtenidos por polinización abierta. En caso de que se mantengan en las líneas los objetivos perseguidos en el mejoramiento, se confecciona un octavo año de trabajo. En este octavo año siembro las variedades que he designado con las características deseadas, muy similares entre sí de forma muy cercana para favorecer el cruzamiento entre ellas y obtener así una variedad sintética; la cual, se mantiene mediante la producción de semilla pre básica por selección masal y con el aislamiento correspondiente de aproximadamente 800 m de otro cultivar.
Caña de azúcar En 1920, un grupo de fitomejoradores holandeses iniciaron los trabajos de cruzamientos en Java, ac uñando el término de “cañas nobles”, ellos usaron el término nobilizar para describir el proceso de hibridación entre especies silvestres de S. spontaneum y S. officinarum (noble) con varios retrocruzamientos hacia el padre noble. El término de cañas nobles, debería ser reservados para todas aquellas cañas de tallo grueso con alto contenido de sacarosa, número cromosómico de 2n=80, usados para la nobilización de las cañas silvestres. Sin embargo, las cañas nobles no son uniformes, distinguiéndose varios grupos: 1) Cañas de tallos gruesos, alto contenido azucarero, cuya cuarta gluma de la flor ha desaparecido 2) Un grupo contrario al anterior, de contenido bajo de azúcar, con la cuarta gluma en la flor. 3) Clones con tallo rojizo brillante de tricomas coloreados, tipo Badila, etc. 4) Clones de tallos y hojas cafés o púrpuras. Este proceso permitió desarrollar las cañas nobles y luego obtener las variedades o híbridos mejorados. La mayoría de híbridos provienen del cruzamiento entre especies silvestres de S. offcinarum, S. spontaneum y nobles; y, luego entre variedades comerciales. En algunos programas de fitomejoramiento, se usan otras especies silvestres para introducir genes de resistencia a enfermedades, incrementar la fibra y el azúcar. Estas especies son principalmente S. sinensis, S. barberi y S. robustum, a través de la introgresión de genes. Los cruzamientos de buenos progenitores se basan en la obtención de flores fértiles y el mantenimiento de las mismas hasta la formación de la semilla viable. Siendo la caña de azúcar una especie de polinización cruzada especialmente por el viento, el control del polen durante los cruzamientos es importante para asegurar el conocimiento de los parentales en cada cruzamiento. Por el tipo de inflorescencia y el esquema de mejoramiento empleado, y para obtener la mayor cantidad posible de semilla, los cruzamientos dirigidos en caña de azúcar pueden resumirse de la siguiente manera: biparentales, policruzamientos y eventualmente autopolinización. De ellos, los dos primeros son los más usados, ya que la autopolinización si bien ha mostrado en alguna medida la segregación de progenies, no existe mayor recombinación genética y se tiende a la producción de variedades homocigotas, con poca heterogeneidad y vigor. El cruzamiento biparental se realiza con dos progenitores o variedades que han mostrado buenas características agronómicas y buena h abilidad combinatoria, pero más que nada, se basa en la capacidad de uno de los padres en producir abundante polen viable. En cambio, la variedad que produce polen estéril con no más del 8% de polen viable se considera buen progenitor femenino. Los policruzamientos se usan principalmente para combinar varios progenitores masculinos con un progenitor femenino
que tenga alta esterilidad masculina y así ampliar la base genética de las progenies. Este método se usa también para estudiar la habilidad combinatoria general del progenitor femenino, al observar el comportamiento de sus progenies. La mayor desventaja del método es que no se dispone de la identificación precisa del progenitor masculino, y solamente se conoce del progenitor femenino. Este método puede ser muy útil cuando se aplique la metodología de selección recurrente, así como para escoger los mejores padres para los cruzamientos biparentales.
Bibliografía:
Paredes, W. (2017). Mejoramiento genético en plantas. [online] Infoagro.com. Disponible en: http://www.infoagro.com/agricultura_ecologica/mejora_genetica_plantas. htm. Vallejo Cabrera, F. and Estrada Salazar, E. (2002). Mejoramiento genético de plantas. 1st ed. Palmira (Cali): Universidad Nacional de Colombia, pp.267-275. Poehlman, J., Allen Sleper, D., Guzma ́ n Ort ́z, M. and Herna ́ndez Cuapio, M. (2003). Mejoramiento gene tico de las cosechas. 2nd ed. Me xico: ́ ́ Limusa, pp.275-278; 303-308.
RECURSOSO GENETICOS BANCO DE GERMOPLANSMA
I.
Objetivo Conocer las actividades de un banco de germoplasma la visita al INIA. Explorar 1la red de internet en búsqueda de información para iniciar un plan de mejoramiento complementar la teoría expuesta sobre el tema. Concientizar al alumno de la poderosa herramienta que es la informática en obtener temas 1de interés.
II.
Actividades https://www.cgiar.org/research/research-centers/ CGIAR es una red mundial de innovación agrícola más grande del mundo. Proporciona evidencias a los responsables de las políticas, innovación a los socios y nuevas herramientas para aprovechar el poder económico, ambiental y nutricional de la agricultura Revisar sobre:
Actividades que realiza El CGIAR es la única agrupación mundial que realiza investigación agrícola para el desarrollo y cuyo trabajo contribuye a los esfuerzos por combatir la pobreza, el hambre, los desbalances nutrimentales y la degradación del medioambiente a nivel mundial. Estas actividades las llevan a cabo los 15 centros de investigación del Consorcio del CGIAR, en estrecha colaboración con cientos de colaboradores, incluidos institutos de investigación nacionales y regionales, organizaciones de la sociedad civil, instituciones académicas, organismos de desarrollo y el sector privado. Los 15 centros del CGIAR generan y difunden conocimientos, tecnologías y políticas de desarrollo agrícola por conducto de los Programas de Investigación del CGIAR. El Fondo del CGIAR aporta financiamiento plurianual confiable y predecible, lo cual permite planear actividades de investigación a largo plazo, asignar recursos de acuerdo con las prioridades establecidas y desembolsar los fondos de manera oportuna y previsible. El fondo fiduciario de múltiples donadores financia la investigación que realizan los centros por conducto de los Programas de Investigación del CGIAR. Tenemos cerca de 10,000 científicos y empleados en 96 países, así como redes de infraestructura sin paralelo y dinámicas en todo el planeta. Nuestras colecciones de recursos genéticos son las más completas del mundo.
Quienes financian al CGIAR
Países Australia,Bélgica,EstadosUnidos,Canadá,China,Dinamarca,Franci a,Italia,Japon,Corea,India,Portugal,Sudafrica,Sudan,Suecia, Nueva Zelanda, Países Bajos, Marruecos. Banco Mundial IDRC FIDA Comisión Unión Europea.
Centros internacionales
Obtener la siguiente información de cada centro internacional
Nombre del centro al cual visitó, dirección de la página web. http://www.inia.gob.pe/
Objetivos Promover y ejecutar diversas actividades que faciliten el desarrollo y fortalecimiento de la innovación tecnológica agraria nacional para la seguridad alimentaria e incremento de los niveles de competitividad de la producción agraria, especialmente, a la inclusión social de los pequeños y medianos productores
Productos Semillas Plantones Reproductores Biocontrolador Laboratorios Publicaciones Asistencia técnica Biotecnológicos DRGB-SDB
estrategias de trabajo generar conocimientos que permitan la innovación agraria con los actores del sistema nacional Innovación Agraria-SNIA. Fortalecer el posicionamiento de INIA para elevar la productividad del sector agrario. Articular y regular la investigación, desarrollo e Innovación (I+D+I) con los actores del sistema Nacional de Investigación Agraria – SNIA, orientada a competividad, seguridad alimentaria y al cambio climático. Fortalecer la institucionalidad del INIA para elevar la producción del sector agrario proyectos conjunto con otras instituciones ADEX e INIA desarrollan proyectos de innovación agraria y capacitación. En representación del Ministro de Agricultura y Riego, Juan Manuel Benites Ramos, el Dr. Alberto Maurer Fossa, jefe del INIA, inauguró este importante evento y dijo que el Perú está promoviendo y facilitando el aprovechamiento de los recursos genéticos del INIA para aumentar y diversificar la producción
nacional de ají nativo, ya que esta institución conserva 712 accesiones de esta especie.
MINAGRI Y INIA conjuntamente con CABI-Plan Wise instalará en este mes diversos Módulos de Asistencia Técnica en la región Junín con la finalidad de que los agricultores agropecuarios de la zona puedan tratar diversas enfermedades en sus plantas de cultivos.
contactos (a quien dirigir la correspondencia para pedir material, dirección) Entrar en http://www.inia.gob.pe/prod-servicios/semillas ir al icono de productos y servicios y poder acceder para ver precios de semillas, plantones y además poder contactarte con el responsable de las diferentes sedes en el Peru.ejm.
III.
preguntas a) redactar el informe de la visita al INIA actividades que realiza. La visita a la INIA se realizó el 4 de mayo del presente conjuntamente con el profesor de prácticas en horas de las 11am-
1pm.la visita que se realizó solo se pudo acceder al banco de germoplasma de semillas debido a en los campos se estaba haciendo un control químico.
b) realizar un comentario sobre conservación Ex situ y In situ y en casos se realiza estos tipos de conservación.
EX situ: La conservación ex situ involucra distintas técnicas para almacenar plasma germinar de organismos de valor excepcional como recursos geneticosy,generalmente,y generalmente se encuentran ligados a programas de fitomejoramientos.se dice que almacenan germoplasma de valor excepcional porque ,en general ,las técnicas que emplea son muy costosas y su capacidad para almacenar diversidad es,por lo tanto,limitada.entre las técnicas de conservación ex situ ,las mas destacadas son los bancos de germoplasma que pueden incruir muestras deplantas,animales,hongos y microorganismos.estos bancos incluyen propágulos en dormancia manteniendo atraves de métodos de crio-conservacion,principalmente: 1. gametos, que pueden incluir polen,espermatoziodes y óvulos. 2.semillas. 3.esporas 4.tejido in vitro. 5.embriones.
Pueden además incluir bancos de germoplasma de campos de cuyas semillas recalcitrantes no pueden preservarse bajo los métodos de crio. Conservación y se incluyen entonces, plantaciones con muestras de organismos de especies y poblaciones de distintas partes del mundo. Un ejemplo clásico es la conservación de bancos de germoplasma de cacao.
In situ
Es la conservación de plantas silvestres en el lugar de ori gen y que gracias a este tipo de conservación se mantiene la cultura, innovación culinaria, artesanía de un determinado lugar. Permite una evolución natural de la especie porque interactúa libremente. Sin embargo tiene una desventaja de perder su diversidad debido a factores como desastres
naturales, incendios, terremotos etc. Por lo cual se debe tener precauciones de protección
c) De los cultivos siguientes:
o o o o o o o o o o o o o
Maíz ……………………………………………..Ex situ Frijol ………………………………………………Ex situ Papa ……………………………………………In situ,Ex situ Oca ………………………………………………..In situ Yuca ……………………………………………Ex situ Cebada…………………………………………..Ex situ,In situ Trigo……………………………………………Ex situ ,In situ Habas…………………………………………….In situ,In situ Palta …………………………………………….Ex situ Maní……………………………………………..Ex situ Pallar …………………………………………….Ex situ Camote…………………………………………Ex situ Chirimoya …………………………………….Ex situ
Como podrían conservarse? En forma Ex Situ ,In Situ ó Ex sito y In situ.
d) mencione 10 cultivos de semillas ortodoxas y 10 de semillas recalcitrantes. Ortodoxas - palmera - pinos - ciprés - melocotón manzano - pera - olivo - almendra - nogal ciruelo Recalcitrante
- Mango - zanahoria
- cacao - frejol
- zapallo - lechuga - maíz
- pimiento
- berenjena -tomate
e) En el Perú que instituciones conservan germoplasma de los diferentes cultivos, indique los cultivos y el número de acciones que conserva. El Programa Nacional de Innovación Agraria en Recursos Genéticos desarrolla sus actividades en el ámbito de acción de las estaciones experimentales agrarias del INIA, en donde se conservan las Colecciones Nacionales de Germoplasma ex situ.
Principales actividades Las actividades del PNIA en Recursos Genéticos se desarrollan en base a dos proyectos: Proyecto 1. Gestión, conservación y uso de los Recursos Fitogenéticos Subproyecto1: Conservación de los recursos fitogenéticos a través de bancos de germoplasma ex situ Subproyecto2: Fortalecimiento de la conservación in situ de la agro biodiversidad en chacra de agricultores. Subproyecto 3: Valoración de los recursos genéticos con aptitud agroindustrial. Subproyecto 4: Sistematización y Ordenamiento de la Inf ormación generada por el Banco de Germoplasma de la Sub Dirección de Recursos Genéticos y Biotecnología. Proyecto 2. Gestión, conservación y uso de los Recursos Zoogenéticos Asimismo, se realizan actividades con diferentes fuentes de financiamiento: Proyecto “Descubriendo el potencial de la diversidad de los cultivos olvidados para la diferenciación de productos de alto valor y la generación de ingresos para los pobres: El caso del ají en su centro
de origen”. Fuente de Financiamiento de GIZ. Proyecto “Desarrollo y Valoración de Recursos Genéticos de Lycopersicon spp, para su Mejoramiento Genético de solanáceas
frente a Estrés Biótico y abiótico”. Fuente
de financiamiento
FONTAGRO.
Proyecto “Recolección, evaluación y conservación de recursos genéticos de Pachyrhizus spp. (P. tuberosus y P. ahipa) en Perú”. Proyecto “Utilización de la diversidad de papa para afrontar el cambio climático” financiado por FONTAGRO y ejecutado en convenio con PROINPA – Bolivia y CIP. Proyecto “Caracterización morfológica, evaluación agronómica y química del Banco Nacional de Germoplasma de Quinua (Chenopodium Quinoa) para la promoción de la seguridad alimentaria y el desarrollo de Colorantes, cosméticos y biocidas
naturales”. Fuente de financiamiento CONCYTEC. f) Revisar el siguiente link http://www.minagri.gob.pe/portal/dvpacgiar que actividades realiza el STC-CGIAR en el Perú y quien es la persona encargada. El Grupo Consultivo sobre Investigación Agrícola Internacional, "Consultative Group on International Research", en adelante CGIAR, es una alianza mundial creada en el año 1971, reúne a organizaciones comprometidas con la investigación para un futuro sin hambre.
Su misión es lograr la seguridad alimentaria sostenible y reducir la pobreza en los países en desarrollo, a través de la investigación científica y la realización de actividades relacionadas con la investigación en los campos de la agricultura, ganadería, silvicultura, pesca, mejora de la política y la gestión de los recursos naturales. Esta labor se realiza por medio de quince (15) centros internacionales que integran el Consorcio CGIAR, en cercana colaboración con cientos de organizaciones socias, incluidos institutos de investigación nacional y regional, la sociedad civil, y el sector académico y privado. El Perú es miembro del CGIAR desde 1997; en 1998, mediante R.S. N° 001-98-AG, se creó la Secretaría Técnica de Coordinación del CGIAR, STC-CGIAR, la cual está encargada de coordinar, evaluar y canalizar las demandas de investigación y transferencia de tecnología requeridas por el Sector Agrario ante los Centros Internacionales de Investigación Agraria y los Organismos Asociados; así como de efectuar el seguimiento de la implementación de dichas demandas en el marco de la política del Gobierno Nacional en materia agraria. La STC-CGIAR, desde el 2001, cuenta con una Coordinación Ejecutiva (CE) facultada para el manejo técnico-administrativo de la STC-CGIAR.
TECNICAS MOLECULARES APLICADAS AL FITOMEJORAMIENTO
1. ¿Cuáles son las aplicaciones de la biotecnología en la mejora de plantas genéticas? La biotecnología agrícola se refiere a la aplicación de las técnicas de la ingeniería genética al mejoramiento de los cultivos, con el objetivo de generar beneficios para el productor agropecuario, el consumidor, la industria, la salud animal y humana y el medioambiente. Entre sus aplicaciones se encuentran la obtención de plantas tolerantes a herbicidas, resistentes a insectos y enfermedades, así como plantas que pueden sobrevivir mejor en suelos salinos, a bajas temperaturas o en ambientes con lluvias escasas. También se incluye la obtención de alimentos más nutritivos o más saludables, frutos que resistan mejor al transporte y almacenamiento, así como plantas productoras de moléculas de uso farmacológico, biopolímeros o destinadas a la producción de lubricantes o biocombustibles.
Las nuevas variedades vegetales obtenidas por ingeniería genética son los llamados cultivos transgénicos los cuales son compatibles con el manejo integrado de plagas y con la agricultura sustentable.
2. Señale las ventajas y desventajas del mejoramiento genético convencional y el genético moderno que se usa como herramienta la biotecnología? EL mejoramiento genético clásico (MGC) y el mejoramiento por ingeniería genética (MIG) son fundamentalmente distintos, a pesar de su similitud superficial. El MGC recurre a caracteres fenotípicos cualitativos y cuantitativos favorables, ya existentes en la diversidad genética de la especie al desarrollar fenotipos superiores para un agro-ecosistema. En cambio, en el ámbito operativo actual, el MIG excluye a los caracteres cuantitativos, que lo hace dependiente del MGC al desarrollar un fenot ipo superior en el agro-ecosistema. Entre algunas de las ventajas de las plantas transgénicas tenemos:
• Resistencia a plagas • Resistencia a herbicidas • Resistencia a enfermedades microbianas • Mejoras en la calidad de la planta y en sus semillas • Mejoras en el rendimiento de cosechas Entre algunas de las desventajas tenemos:
• Eliminación de insectos que no representan peligro para la planta, afectando a la fauna.
• Resistencia por parte de insectos • Contagio genético hacia otras plantas mediant e la polinización • Posibles riesgos para la salud humana. 3. ¿Identifique y explica los marcadores moleculares en mejoramiento de plantas?
Marcadores moleculares Los marcadores moleculares han sido definidos como cualquier diferencia notípica controlada genéticamente. Se puede considerar que cualquier molécula, orgánica o inorgánica, que sea característica de un organismo o proceso sea un marcador. Los marcadores idóneos son los de ADN, siendo válido cualquier fragmento que se encuentre muy cerca del gen o de la secuencia de interés y que lógicamente no afecte al carácter en estudio (SIDTA 1999). Para Valadez y Kahl (2000) un marcador se refiere a cualquier molécula de proteína, ARN o ADN de tamaño o peso molecular conocido que sirve para monitorear o calibrar la separación de las mismas utilizando electroforesis o cromatografía, y un marcador genético como cualquier gen cuya expresión permite un efecto
fenotípico que puede ser detectado fácilmente (por ejemplo, un gen que ocasiona resistencia para algún antibiótico).
Tipos de marcadores Isoenzimas Las isoenzimas, o aloenzimas, son las proteínas más ampliamente usadas como marcadores moleculares y éstas fueron los primeros marcadores moleculares usados en genética de plantas (Tanksley et al. 1981). Su análisis se realiza extrayendo la enzima de los tejidos de la planta, tras lo cual, las variantes son separadas con electroforesis y visualizadas mediante la tinción del gel con colorantes específicos (Powell 1992; Haines 1994). Entre las variantes enzimáticas frecuentemente empleadas se mencionan; malato deshidrogenasa, fosfoglucomatasa, glutamato oxaloacetato transmitasa, shikimato deshidrogenasa y peroxidasas.
o
Forrest (1994) menciona que las isoenzimas han probado ser de gran valor en estudios de mejoramiento tanto en poblaciones naturales como en plantaciones de árboles y mantienen cierto valor de utilidad, especialmente en estudios a gran escala de estructura poblacional y en relación con la resistencia a plagas y enfermedades. o
Marcadores de ADN Otro grupo de marcadores son los marcadores de ADN. Según Karp et al. (1997) dentro de este grupo se incluyen tres categorías básicas. Categoría 1: métodos que no se basan en la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) - -
RFLP número variable de repeticiones en tandem (VNTRs)
Categoría 2: técnicas que utilizan iniciadores (“primer”) arbitrarios o semiarbitrarios. iniciadores PCR múltiples arbitrarios (MAAP) - RAPD - RAMPO -
Categoría 3: PCR con sitio “objetivo específico”. -
Inter secuencias simples repetidas (ISSR).
Las categorías 2 y 3 son marcadores basados en la PCR.
I- Polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción (RFLP) El análisis RFLP es una técnica usada en los programas de investigación desde los años 1970. Inicialmente fue empleada para el mapeo físico de los adenovirus (Grodzicker et al. 1974) y en la construcción de un mapa genético de ligamiento para humanos (Botstein et al. 1980). Los marcadores RFLP se comportan como marcadores codominantes, en tanto que los marcadores morfológicos y los marcadores basados en PCR, poseen alelos que interactúan de manera dominante/recesiva. Además, el nivel de variación alélica de los marcadores RFLP en poblaciones naturales de plantas es mayor que con los marcadores morfológicos (Helentjaris et al. 1985). Los pasos generales para el análisis RFLP son los siguientes: Paso 1. Aislamiento del ADN. 2. El ADN se digiere con endonucleasas de restricción, que cortan el ADN en puntos que poseen una secuencia particular de reconocimiento. 3. Los fragmentos son separados con base en su tamaño usando electroforesis en gel de agarosa. 4. Luego se aplica
la técnica denominada “Southern Transfer” (Transferencia de ADN), la cual involucra la transferencia del patrón de fragmentos de electroforesis, a un soporte sólido y
manipulable, por ejemplo a una membrana de “nylon”. 5. Luego de la transferencia, la membrana se expone a una sonda marcada, que posee una secuencia homóloga a uno o más fragmentos o a parte de estos, de tal manera que se produce la hibridación del ADN. 6 y 7. La técnica general para producir la sonda marcada se conoc e como “Nick Traslation” y se basa en la remoción en la sonda, de pequeños grupos de nucleótidos (aproximadamente 10) con una exonucleasa. Mediante la acción de la enzima ADN polimerasa I, la cadena se resintetiza a través de la reincorporación de nucleótidos marcados radioactivamente o por medio de otras técnicas. 8. La detección de las bandas de hibridación se realiza por luminiscencia (Phillips et al. 1995). Uno de los procedimiento
pasos del análisis de electroforesis.
RFLP incluye En general,
un
la electroforesis es una técnica comúnmente empleada para la separación, identificación y purificación de moléculas de ácidos nucléicos. Se basa en el hecho de que las moléculas de los ácidos nucleicos están
cargadas negativamente y migran hacia el ánodo en un campo eléctrico. La electroforesis del ADN usualmente se realiza en una matriz de agarosa o poliacrilamida, inmersa en un buffer salino que permita el establecimiento de un campo eléctrico (Paterson 1996). II- Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) El análisis PCR es un procedimiento in vitro para la síntesis y duplicación de secuencias específicas de ADN. Esta tecnología utiliza secuencias de oligonucleótidos que i nician la síntesis de fragmentos de ADN de longitudes variables, no mayores de 6 Kb en promedio (Valadez y Kahl 2000). La ADN polimerasa ADN dependiente es una enzima que, en unas condiciones determinadas y en presencia de una pequeña cadena de ADN, que actúa como cebador, es capaz de producir millones de copias de determinados fragmentos del ADN. Estos fragmentos se separan posteriormente por peso molecular y conformación mediante técnicas electroforéticas, obteniéndose un patrón de bandas específico que nos permite diferenciar individuos (Rallo et al. 2002).
III- Amplificación aleatoria del ADN polimórfico (RAPD) Phillips et al. (1995) mencionan que en esencia es la misma metodología PCR, por lo que a veces se le refiere con este nombre. Los polimorfismos producidos con la técnica RAPD se denominan marcadores RAPD, y pueden resultar de cualquier cambio en la secuencia o sitio de unión del iniciador (mutación puntual), lo cual impide que el iniciador se una a la cadena, o también pueden ser el producto de cambios que alteren el tamaño o impidan la exitosa amplificación del ADN molde. Los RAPDs generan un número inmenso de marcadores y, al contrario de los RFLPs, no requieren de sondas específicas para cada especie y la cantidad de ADN necesaria para el análisis es mucho menor (Phillips et al. 1995). El análisis RA
IV- Polimorfismo en la longitud de los fragmentos amplificados (AFLP)
Los AFLPs son considerados marcadores de alta eficacia, permiten el análisis de un elevado número de loci por experimento sin requerir información previa sobre su secuencia, son en su mayoría dominantes y altamente reproducibles. Sin embargo, la técnica es más complicada de ejecutar que la de los RAPD y el SSR, además requieren una mayor cantidad de ADN (Karp et al. 1997; SIDTA 1999).
V- Microsatélites o secuencias simples repetidas (SSR; MP-PCR) Los microsatélites o secuencias simples repetidas (SSR) son regiones de secuencias pequeñas (dos a 10 pares de bases) repetidas, arregladas en serie, las cuales se asume que están distribuidas azarosamente por todo el ADN. Son secuencias de ADN altamente variables dispersas a través de los genomas de hongos, plantas y animales, los cuales pueden o no estar asociadas con genes, son loci altamente mutables que pueden estar presentes en muchos sitios del genoma. El desarrollo de marcadores SSR es muy laborioso debido a que deben identificarse y secuenciarse regiones genómicas concretas (bordes del microsatélite), aunque una vez conseguido presenta un sistema muy informativo. Estos marcadores son ideales para el estudio de ligamiento genético en plantas y el mapeo físico, los estudios poblacionales y la identificación de variedades (SIDTA 1999).
4.¿mencione y explique los cultivos mejorados por la biotecnología?
Ejemplos de RFLP Los RFLP han sido utilizados como marcadores de caracteres agronómicos de gran interés en especies de gramíneas y leguminosas, en el estudio de ligamientos e incompatibilidades de polen y estilo en especies como manzano, cerezo y en la identificación de resistencia a enfermedades en cebada, maíz, etc. (SIDTA 1999). Mayes et al. (2000) utilizaron marcadores RFLP, para tasar la diversidad genética dentro de 54 palmas aceiteras. Estas palmas representan la mayoría de los padres en los cruces realizados en los programas de mejoramiento. Se obtuvo un total de 157 bandas a partir de las cuales se calculó la distancia genética entre las palmeras. El análisis molecular corresponde correctamente con el origen y el pedigree esperado. Estos autores resaltan el potencial de los marcadores en programas de mejoramiento, a través del examen de la estructura genética de un grupo de plantas para estimar los cruces que se pueden realizar con mayor o menor éxito. También mencionan, que permite conocer el pool genético de los padres que son cruzados y estimar el de la descendencia. Así como, evaluar la fidelidad genética de la descendencia. También, N-Goran et al. (2000), mediante la utilización de marcadores RFLP, analizaron la estructura genética de 175 genotipos de Theobroma cacao L. procedentes de Centro y Sur América. Este análisis les per mitió determinar: una alta diversidad genética entre los materiales, que el número de alelos por locus nunca fue mayor de cuatro, que los genotipos de Centro América son distintos a los de Sur América y por último, determinaron que dentro de una población la diversidad de genes es alta.
Ejemplos de RAPD Mediante el uso de la técnica RAPD se evaluó la estabilidad genética de las selecciones regeneradas in vitro de Annona cherimola y A. muricata. 29 iniciadores fueron evaluados, de ellos seis fueron seleccionados por su patrón de repetición en ambas especies y selecciones. Los resultados confirmaron la estabilidad genética de las plantas micropropagadas de acuerdo con los iniciadores seleccionados. Esta investigación presenta por primera vez, hasta donde es conocido, un protocolo que permite la propagación clonal in vitro de A. cherimola y A. muricata, el cual es confirmado por la técnica molecular RAPD. Con este protocolo se pueden regenerar y propagar árboles selectos de A. cherimola y A. muricata y conservando la estabilidad genética de los mismos, por lo que se puede
garantizar que el material propagado es “fiel al tipo” (Bridg 2001).
Con el uso de los marcadores RAPD fue posible caracterizar los genotipos de cacao pertenecientes a la colección 95 de la Estación Experimental de Ocumare de la Costa, Aragua, Venezuela. Los resultados permitieron la clasificación de los árboles de cacao en dos grandes grupos; cacaos criollos antiguos y cacaos criollos actuales. Además, se evidenció que los materiales que provienen de la misma localidad presentan patrones de banda similares y conforman grupo locales, posiblemente por presentar un origen común (Salazar y Efraín 2002). La técnica de RAPD es efectiva para caracterizar genotípicamente variedades de mango. Para la extracción del ADN, en mango, fue preferible usar el tejido foliar proveniente de hojas verdes con textura suave y tierna, evitando las de color bronce o rojizas. Las concentraciones
de ADN genómico por debajo de 20 ng/μl y por encima de 25 ng/μl resultaron ser inhibitorias para la amplificación mediante PCR. Los iniciadores que produjeron mayor cantidad de fragmentos polimórficos fueron OPA-04, OPA-15, OPB-06, OPB-07 y OPM-05. Para lograr una mejor resolución y definición de las bandas se usó un gel de agarosa al 1,4% con el bromuro de etidio incluido en concentraciones de 0,1-0,5
μg/ml. Cada uno de los genotipos estudiados presentó un conjunto de patrones de bandas RAPD que le son característicos y permite su identificación. A pesar de la gran uniformidad morfológica que se observó en la población de árboles, con solo el uso de los iniciadores mencionados se logró separar genotípica los materiales de la colección, lo que demuestra el poder de resolución de la técnica para discriminar, a nivel de variedad, en esta especie (Salazar y Efraín 2002).
Ejemplos de AFLP Garcia-Mas et al. (2000) evaluaron tres tipos de marcadores moleculares; AFLP, RAPD y RFLP para medir la diversidad genética entre seis variedades de melones (Piel de sapo, Ogen, PI161375, PI414723, Agrestis y C105). El análisis de los grupos (“cluster”) realizado usando los tres tipos de marcadores, separan los genotipos en dos grupos principales: (1) los de tipo dulce, que son los melones cultivados (Piel de sapo y Ogen) y (2) los exóticos, tipos no cultivados (resto de genotipos). Con los datos obtenidos se sugiere que los tres tipos de marcadores utilizados son informativos. El marcador AFLP da la mayor eficiencia en la detección del polimorfismo.
Ejemplos de SSR Crouch et al. (2000b) construyeron iniciadores a partir de las regiones genómicas que bordean varios microsatélites de Musa con la idea de detectar polimorfismo en los materiales de la colección. Con la especificidad de los iniciadores desarrollados se logró distinguir entre los diversos materiales del germoplasma; por ejemplo, híbridos triploides y
tetraploides de familias híbridas de plátanos. Aun más, los marcadores permitieron demostrar la ocurrencia de recombinación durante la formación de gametos 2n a partir de plátanos triploides y la heterocigoticidad de una accesión de banano comúnmente utilizada como
un genotipo “fiel al tipo” en estudios genéticos y programas de mejoramiento. Lavi et al. (1994) generaron un SSR útil como marcador del ADN. Para la construcción se utilizó una librería genómica de ADN para aguacate (Persea americana). Para la creación de la librería se realizaron cuatro pruebas con los dinucleótidos (AG), (AT), (GC) y (CA). Luego, los clones positivos fueron secuenciados para validar la presencia de los SSRs y para generar los iniciadores PCR basados en las secuencias simples repetidas de los flancos. Se sintetizaron 26 pares de iniciadores que generaron productos PCR en el primer tamizado. El SSR A1E11 tiene 11 alelos y el A3F8 tiene ocho. Los SSRs fueron heredados en distribución Mendeliana. BIBLIOGRAFIA
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Turrent Fernández, Antonio, Cortés Flores, José Isabel, Espinosa Calderón, Alejandro, Serratos Hernández, José Antonio, & Mejía Andrade, Hugo. (2011). Diferencias entre el mejoramiento genético clásico del maíz y el mejoramiento por ingeniería genética. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 2 (6), 955-969. Recuperado en 18 de julio de 2018, de http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S200709342011000600012&lng=es&tlng=es
Axel,T.F(2012),fundamentos de mejoramiento genético vejetal. http://www.ira.cinvestav.mx/portals/0/Documentos/Publicos/Fundamento sMejoramientoGenetico38EAE6.pdf
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plantas; trópico.
