Manual de Laboratorio de Farmacognosia

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Farmacotecnia II Suspensiones

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farmacognosia.pdf Diseño de Una Planta

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UNIVERSIDAD DE ANTIOQUIA FACULTAD DE QUÍMICA FARMACÉUTICA

MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO DE FARMACOGNOSIA F ARMACOGNOSIA I

Recopilado por: Cristina Lucía Mora Arango Elkin Galeano Jaramillo Edison Osorio Durango Sign up to vote on this title 

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PROGRAMA DEL CURSO DE LABORATORIO DE FARMACOGNOSIA F ARMACOGNOSIA I

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2013 Objetivo general: reconocer

y evaluar los parámetros de calidad aplicados a l

materias primas de origen natural con interés farmacéutico. Temas del curso:

Unidad 1. INTRODUCCIÓN. Presentación del curso, normas de seguridad en el laboratorio (3 horas).

Unidad 2. RECONOCIMIENTO DE LA FLORA MEDICINAL.

Reconocimiento de las diferentes especies de plantas medicinales que s

encuentran en el entorno del Campus Universitario o en el Huerto de planta medicinales del Jardín Botánico (3 horas).

Unidad 3. MANEJO DE LA INFORMACIÓN BIBLIOGRÁFICA EN FARMACOGNOSIA.

Búsqueda bibliográfica en bases de datos especializadas. Normas para report adecuadamente las referencias bibliográficas (3 horas).

Unidad 4. RECONOCIMIENTO DE LA MORFOLOGÍA VEGETAL.

Reconocimiento de la morfología morfología vegetal y tejidosSign internos en placas decolecció up to vote on this title

previamente preparadas. Reconocimiento morfológico Not useful de planta  Useful externo medicinales aprobadas en Colombia (6 horas).

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PROGRAMA DEL CURSO DE LABORATORIO DE FARMACOGNOSIA F ARMACOGNOSIA I

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2013 Objetivo general: reconocer

y evaluar los parámetros de calidad aplicados a l

materias primas de origen natural con interés farmacéutico. Temas del curso:

Unidad 1. INTRODUCCIÓN. Presentación del curso, normas de seguridad en el laboratorio (3 horas).

Unidad 2. RECONOCIMIENTO DE LA FLORA MEDICINAL.

Reconocimiento de las diferentes especies de plantas medicinales que s

encuentran en el entorno del Campus Universitario o en el Huerto de planta medicinales del Jardín Botánico (3 horas).

Unidad 3. MANEJO DE LA INFORMACIÓN BIBLIOGRÁFICA EN FARMACOGNOSIA.

Búsqueda bibliográfica en bases de datos especializadas. Normas para report adecuadamente las referencias bibliográficas (3 horas).

Unidad 4. RECONOCIMIENTO DE LA MORFOLOGÍA VEGETAL.

Reconocimiento de la morfología morfología vegetal y tejidosSign internos en placas decolecció up to vote on this title

previamente preparadas. Reconocimiento morfológico Not useful de planta  Useful externo medicinales aprobadas en Colombia (6 horas).

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Unidad 6. IDENTIFICACIÓN DE METABOLITOS SECUNDARIOS.

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Reconocimiento mediante pruebas químicas de compuestos fenólicos, terpénic y nitrogenados en muestras vegetales conocidas (6 horas).

Unidad 7. ANÁLISIS MICROSCÓPICO DE MATERIAL VEGETAL.

Reconocimiento de elementos de valor diagnóstico en el material vegetal (cristale

de oxalato de calcio, gránulos de polen, pelos epidérmicos, vasos lignificado

estomas), de acuerdo con la información reportada en las Farmacopeas oficiale (3 horas).

Unidad 8. RECONOCIMIENTO DE ADULTERACIONES Y/O FALSIFICACIONES EN E MATERIAL VEGETAL.

Aplicación

de

ensayos

físicos

(organolépticos-macroscópicos),

anális

microscópico (identificación de elementos de valor diagnóstico) y prueba

químicas de coloración en la identificación de adulteraciones y/o falsificaciones e el material vegetal (3 horas).

Unidad 9. PRÁCTICA ESPECIAL.

Selección de una planta medicinal, consulta bibliográfica, presentación previa

ejecución del esquema de trabajo experimental para la aplicación de lo

procedimientos experimentales que permitan permitan el reconocimiento de la morfolog m orfolog Sign up to vote on this title

de plantas medicinales, análisis microscópicoe Useful identificación de metabolito  Not useful primarios y secundarios (18 horas).

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PRESENTACIÓN

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El Manual de Prácticas de Laboratorio de Farmacognosia I incluye la revisión

actualización de las prácticas experimentales contenidas en el Manual d

Laboratorio de Farmacognosia preparado por las profesoras Luz Mariela Sorza

Gloria Amparo Valencia (2000) y en el Manual de Prácticas de Laboratorio d

Farmacognosia y Fitoquímica recopilado y revisado por los profesores Alejand

Martínez, Gloria Amparo Valencia, Nora Jiménez, Monica Mesa y Elkin Galean

En la presente actualización se incluye el desarrollo de nuevas práctica

experimentales que hacen parte del programa académico de Laboratorio d

Farmacognosia I y están dirigidas hacia la identificación de los diferentes factore

involucrados en la producción de drogas y aplicación de pruebas específicas pa el control de calidad de materia prima de origen natural.

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Programa de laboratorio de Faramacognosia I ………………………………………………

Práctica No 2. Reconocimiento de la flora medicinal ……………………………………… Práctica No 3.

Manejo de la información bibliográfica en farmacognosia …..............................

Práctica No 4. Reconocimiento de la morfología vegetal ………………………………… Práctica No 5.

Reconocimiento de metabolitos primarios

de interés en farmacognosia ……….....................................................................

Práctica No 6.

Reconocimiento de metabolitos secundarios…………………………….

Práctica No 7. Análisis microscópico de material vegetal ………………………………… Práctica No 8.

You're Reading Reconocimiento de adulteraciones y/oa Preview

……………………………………………… falsificaciones en el material Unlock fullvegetal access with a free trial.

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Práctica No 2

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RECONOCIMIENTO DE LA FLORA MEDICINAL OBJETIVO 

Reconocimiento de los ejemplares vegetales cultivados en el huerto d plantas medicinales del Jardín Botánico y/o en la flora universitaria.

METODOLOGÍA

Para el desarrollo de esta práctica el estudiante en visita guiada a las instalacione

del huerto de plantas medicinales del Jardín Botánico recibirá la información

capacitación brindada por parte del profesor, relacionada con las característica botánicas y la actividad terapéutica de las plantas medicinales. Una vez recibida

capacitación el estudiante procederá a la presentación del respectivo informe qu a Preview debe contener una tabla en You're la queReading se incluyan las plantas observadas con

Unlock full access with a free trial.droga aprobada y una bre nombre científico, nombre común, uso terapéutico,

descripción botánica.


CONSULTA

Consultar sobre las 10 especies de plantas medicinales de mayor comercializació  por en Colombia, sus condiciones de cultivo y el uso terapéutico aprobado Sign up to vote on this title

INVIMA.

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Práctica No 3

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MANEJO DE LA INFORMACIÓN BIBLIOGRÁFICA EN FARMACOGNOSIA OBJETIVOS 

Capacitar al estudiante el manejo de las bases de datos documentales y información consignada en la Biblioteca Central.



Explicar de manera práctica los modelos de búsqueda de información aplica a los temas de farmacognosia y plantas medicinales.



Aprender a reportar adecuadamente las referencias bibliográficas.

METODOLOGÍA

Para el desarrollo de esta práctica el estudiante en visita guiada a las instalaciones d You're Reading a Preview la biblioteca central recibirá la Unlock información y capacitación sobre manejo de bases full access with a free trial. datos documentales por parte de los profesores encargados. Download With Free Trial

Una vez recibida la capacitación el estudiante debe hacer entrega de un informe c el siguiente contenido: 

up to vote title 1. Consultar la monografía de una planta medicinal Sign asignada poronelthisprofesor, teniend Useful Not useful en cuenta los siguientes aspectos: nombre científico, descripción botánic

descripción microscópica, uso terapéutico aprobado, droga aprobada, reaccion

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Práctica No 4

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RECONOCIMIENTO DE LA MORFOLOGÍA VEGETAL OBJETIVOS 

Identificar los tejidos internos de las plantas monocotiledóneas dicotiledóneas,

realizando

observación

microscópica

sobre

cort

histológicos previamente preparados de raíces, tallos y hojas. 

Aplicar los criterios para clasificar las plantas en monocotiledóneas

dicotiledóneas a partir del análisis de las características de morfolog externa de las raíces, tallos, hojas y flores.

MARCO TEÓRICO Preview que estudia las formas La morfología vegetal es laYou're parteReading de la abotánica Unlock full access with a de free la trial. estructuras de las diferentes partes del cuerpo planta teniendo en cuenta

aspectos histológicos y fisiológicos en el proceso de modificación y transformació de las plantas.


Para estudiar la estructura interna de un órgano, generalmente se realizan corte transversales y se utilizan colorantes para diferenciar los tejidos. Sign up to vote on this title 

Raíz

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Raíz de plantas dicotiledóneas:

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En el corte transversal de la raíz de una planta dicotiledónea a nivel de la zon pilífera, se pueden identificar los siguientes tejidos:

1. Epidermis: capa de una célula de espesor en la parte externa de la raíz, n posee cutícula.

2. Córtex: grupo de tejidos que ocupa el mayor volumen de la raíz, el cual es comformado por: exodermis, parénquima cortical y endodermis. 2.1. Exodermis: células parenquimáticas subepidérmicas que se asemejan a

endodermis. 2.2. Parénquima cortical: células de pared celular delgada, especializadas en You're Reading a Preview almacenamiento de sustancias. Unlock full access with a free trial.

2.3. Endodermis: capa de células prismáticas que rodean el cilindro central, s Download With Free Trial

pueden identificar las células que hacen parte de las bandas de Caspary y la células de paso.

 y es primario de la raíz 3. Estela: corresponde al cilindro central del cuerpo Sign up to vote on this title

conformada por el periciclo, los tejidos vascularesprimarios y el vascula Useful  Notcambium useful

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3.2. Tejidos vasculares primarios: constituidos por células del xilema y del floema

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3.3. Cambium vascular: tejido meristemático de varias células de espesor co

paredes delgadas que bordean el xilema y lo separan del floema. En la figura 1, se presenta un corte transversal de una raíz dicotiledónea a nivel la zona pilífera, deben identificar los diferentes tejidos de acuerdo con información anterior.

You're Reading a Preview Unlock full access with a free trial.


Figura 1. Fotografía del corte transversal a nivel de la zona pilífera de la raíz de un

planta dicotiledónea en la que se observa el tejido parenquimático y los diferentes tejido que conforman el cilindro central.

Raíz de plantas monocotiledóneas:


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A continuación en la figura 2, se observa el corte transversal de una

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monocotiledónea a nivel de la zona pilífera, con el fin de que se identifiquen lo tejidos correspondientes.


Figura 2. Fotografía del corte transversal a nivel de la zona pilífera de la raíz de un

Download With Free en Trial planta monocotiledónea. Se observan las diferencias cuanto a la disposición del xilem

y floema al interior del cilindro central.

Tallo 

Sign up to vote on thisdesempeña title El tallo es el órgano de la planta generalmente aéreo que la

siguientes funciones: produce y sostiene ramasy flores,conduce sustancias Useful

través del xilema y el floema.

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2. Córtex: está conformado por los tejidos comprendidos entre la epidermis y

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parte más externa del haz vascular como colénquima, parénquima cortica clorénquima, esclerénquima.

3. Estela: es la parte central del tallo, conformada por los tejidos vasculares, cambium vascular y la médula.

3.1. Tejidos vasculares: estructuras ovaladas conocidas como haces vascular

conformadas por esclerénquima, floema (elementos del tubo criboso y célula

compañeras), cambium vascular y xilema (elementos del vaso, traqueidas y fibra del xilema). 3.2. Médula: región central constituida por tejido parenquimático.

You're Reading a Preview En la figura 3 se presenta el corte transversal del tallo de una planta dicotiledóne full access withtejidos. a free trial. en el cual se deben identificarUnlock los principales



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En el corte transversal del tallo de una planta monocotiledónea, en general s

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observan los mismos tejidos que en el tallo de una planta dicotiledónea, con

diferencia de que en estos tallos el tejido esclerenquimático se presen internamente a la epidermis y los haces vasculares se encuentran dispersos en tejido parenquimático y están rodeados por una vaina de esclerénquima que

proporciona mayor resistencia a la planta. A continuación se presenta la image para identificar los principales tejidos.






 Useful  Not useful Figura 4. Fotografía del corte transversal del tallo de una planta monocotiledónea en

que se observa el tejido esclerénquima y la distribución de los haces vasculares.

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En el corte transversal de una hoja se observan los siguientes tejidos:

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1. Epidermis: capa de células que protege la hoja ubicadas en la superficie d

haz y del envés, recubierta por una cutícula impermeable. En la epidermis s

pueden identificar células epidérmicas comunes, células de guarda (oclusivas) células adyacentes (subsidiarias).

2. Mesófilo: es el tejido más abundante de la hoja, en el cual se realiza

fotosíntesis y está conformado por parénquima en empalizada y parénquim esponjoso.

2. 1. Parénquima en empalizada: una o dos capas de células cilíndricas ubicad

en la parte superior de la hoja, presentan gran cantidad de cloroplastos.

Reading Previewesféricas y células de form formado por acélulas 2.2. Parénquima esponjoso: You're

Unlock full espacios access with a intercelulares free trial. irregular que se distribuyen dejando denominados meat

o cámaras subestomáticas.


3. Nervaduras: son la continuación del xilema y el floema del tallo. En un cor

transversal de la hoja, en cada nervadura se observa el haz vascular con el xilem hacia el haz y el floema hacia el envés.




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Figura 5. Fotografía del corte transversal de la hoja. Se observa el tejido epidérmico, la



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células del mesófilo y los tejidos vasculares de las nervaduras.

METODOLOGÍA Para el desarrollo de la práctica se divide el estudio en: 1. Aspectos correspondientes al análisis de la morfología interna (histología).

El profesor pondrá a disposición de los estudiantes una serie de placa

previamente preparadas en las cuales deben identificar utilizando el microscop

las estructuras y tejidos internos presentes en las raíces, tallos y hojas de planta

monocotiledóneas y dicotiledóneas. El estudiante debe identificar y dibujar l

estructuras claramente diferenciadas en cada uno de los cortes observados incluir el análisis de resultados en el informe. 2.

Aspectos

correspondientes al análisis You're Reading a Previewde

(cuerpo de la planta).

la

morfología

exter

Unlock full access with a free trial.

De acuerdo con las características morfológicas externas observadas en la

With Free Trial plantas asignadas, realizarDownload la clasificación y consignar la informació

correspondiente en formato de tabla, incluyendo los siguientes aspectos para cad

una de ellas: nombre común, nombre científico, análisis de las hojas: complejida

filotaxia, características del peciolo y de las nervaduras; clasificación del tall Sign up to vote on this title



herbáceo, leñoso; clasificación de la raíz: fibrosa, pivotante; número de verticilo 

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florales y clasificación de acuerdo con las características externas e monocotiledóneas o dicotiledóneas.



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Práctica No 5

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RECONOCIMIENTO DE METABOLITOS PRIMARIOS DE INTERÉS EN FARMACOGNOSIA OBJETIVOS 

Aprender a identificar microscópicamente sustancias características d plantas, formadas por moléculas pertenecientes al metabolismo primario.



Identificar la presencia de almidón en diferentes fuentes vegetale mediante reacciones químicas y pruebas microscópicas.



Identificar microscópicamente la presencia de gránulos de aleuronas e diferentes fuentes vegetales.



Identificar microscópicamente la presencia de gránulos de aceites fijos e diferentes fuentes vegetales. You're Reading a Preview

MARCO TEÓRICO


El metabolismo primario es el grupo de procesos metabólicos esenciales “ vitale Download With Free Trial

para los organismos vivos, estos procesos están asociados a 4 grandes grupos d reacciones anabólicas/catabólicas:

1. Metabolismo de los carbohidratos:




Los carbohidratos, también llamados hidratos de carbono glúcidos, Useful ó Not usefulson un grup

de moléculas formadas principalmente por carbono, oxígeno e hidrógeno. Alguno

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El almidón: Está formado por unidades de glucosa y se encuentra en los cereale

a Preview como maíz, arroz y trigo, You're y enReading tubérculos como papas, ñame y yuc

Frecuentemente se encuentra formado 25% Unlock full accessen withun a free trial. por amilosa y un 75% p

amilopectina. A continuación se presentan las estructuras químicas de do Download With Free Trial

polisacáridos de importancia en los vegetales: celulosa y almidón. CH2OH O

H H

Celulosa

H

OH

H H

H

OH

OH CH OH

H

H

H

OH O

CH OH

H

OH H

O

OH

H H Sign up to vote on this H title

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O CH2OH

H O

H

H

O

H

HO

CH2OH

OH

H

Useful OH

CH2OH

H

 Not useful O CH2OH CH2OH

 R

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general lineales; solubles en solventes orgánicos apolares (como cloroform

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hexano), y son casi insolubles en agua. Los mamíferos los acumulamos com

grasas, los peces como ceras y en las plantas en forma de aceites. Lo

fosfolípidos y esteroles constituyen alrededor de la mitad de la masa de la membranas biológicas.

Consultar y complementar el siguiente diagrama sobre la clasificación de lo lípidos:






A continuación se presentan las estructuras químicas de compuestos lipídicos mayor importancia a nivel biológico.



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3. Metabolismo de las proteínas:

Las proteínas son biomóleculas formadas básicamente por carbono, hidrógen

oxígeno y nitrógeno. Pueden además contener azufre y en algunos tipos d

proteínas: fósforo, hierro, magnesio y cobre entre otros elementos. Puede

considerarse polímeros de unas de aminoácidos unidos mediante enlac peptídicos.

Consultar y complementar el siguiente diagrama sobre la clasificación de la proteínas:



A continuación se encuentran las estructuras químicas de tres aminoácid

importantes en el metabolismo vegetal (Ala, Arg, His) y un modelo de la estructu secundaria de una proteína.


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localizado en la parte externa del endospermo y que tienen la función de s

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material de reserva para el crecimiento del embrión, se encuentran principalmen en los cereales y algunas raíces.

METODOLOGÍA Material vegetal: 

Maíz: _____________________ (nombre científico)



Yuca: _____________________



Arroz: _____________________



Papa: _____________________

ANÁLISIS QUÍMICO:

Cortar o rallar 15 g de material vegetal sin cáscara y extraer con 10 ml de agu

Reading areacciones Preview (sin calentar). Filtrar y realizarYou're las siguientes por separado en tubos d Unlock full access with a free trial.

ensayo: 2 ml almidón + lugol




____________________________________________

2 ml almidón + 6 ml H 20: Medir pH ____________________________________ Sign up to vote on this title

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ANÁLISIS MICROSCÓPICO:

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Almidón de maíz: Se observa como gránulos irregulares y poligonales con hilu

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concéntrico de forma mixta: se puede observar como un punto en forma d asterisco, una línea o una cruz. El tamaño promedio de los gránulos es de 12 con una desviación estándar de ±6 μm.

Almidón de yuca: Se observa como gránulos elípticos o redondeados, con hilu concéntrico de forma puntual. El tamaño promedio de los gránulos es de 10 con una desviación estándar de ±5 μm.

Almidón de arroz: Se observa como gránulos poliédricos y poligonales pequeño

en algunos casos formando agregados entre 2-150 unidades, con hilu concéntrico de forma puntual difícil de observa al microscópio convencional.

tamaño promedio de los gránulos es de 5 μm con una desviación estándar de ± μ

m.

You're Reading a Preview almidón: canela, ruibarb Muestras de plantas medicinales que contienen Unlock full access with a free trial. valeriana, ginseng, jengibre, regaliz.


RESULTADOS

Almidón Análisis Color Textura

papa

maíz

arroz yuca Sign up to vote on this title 

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 Muestr

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remover el exceso de reactivo con una tira de papel filtro y agregar 1 gota d

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H2SO4 60%. Colocar el cubreobjetos y observar al microscopio, las paredes d celulosa se observan en colores desde el azul al violeta.

Muestras vegetales donde se pueden evidenciar las paredes de celulos eucalipto, canela, lino, sen, entre otras. A continuación se presentan las fotografías de las placas microscópicas de

montajes correspondientes para la observación de celulosa en semillas de lin molidas.



Figura 9. Fotografía de las paredes de celulosa presentes en las semillas de lino Sign up to vote on this title



Useful

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 Not useful

2. Detección de granos de aleurona: Colocar 2 a 10 mg de la droga en polv

sobre un portaobjetos. Verter 2 ó 3 gotas de solución de yodo/etanol. Los gránulo



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A continuación se presentan las fotografías de las placas microscópicas de



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montajes correspondientes para la observación de celulosa de gránulos d aleurona presentes en semillas de lino molidas:



Figura 10. Fotografía de los gránulos de aleurona presentes en las semillas d lino. Sign up to vote on this title



en polv Detección de lípidos y aceites esenciales: mezclar Notmuestra useful  Usefulbien  la colocar 2 mg de la droga en polvo sobre un portaobjetos. Verter 2 ó 3 gotas

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A continuación se presentan las fotografías de las placas microscópicas de

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montajes correspondientes para la observación de aceites fijos presentes e semillas de lino molidas:

Figura 11. Fotografía de las gotas de aceite fijo presentes en las semillas de lino You're Reading a Preview

Consulta


1. Funciones biológicas en la célula vegetal de los carbohidratos, lípidos Download With Free Trial proteínas. 2. Aplicaciones en Farmacognosia de los carbohidratos, lípidos y proteínas. 3. Esquema de las reacciones realizadas en el laboratorio. Sign up to vote on this title

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BIBLIOGRAFÍA

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Práctica No 6

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ANÁLISIS MICROSCÓPICO DE MATERIAL VEGETAL OBJETIVO 

Reconocer elementos de valor diagnóstico en el material vegetal: cristal

de oxalato de calcio, gránulos de polen, pelos epidérmicos, vas

lignificados, estomas, de acuerdo con las monografías de planta medicinales textos de referencia y farmacopeas oficiales.

MARCO TEÓRICO

El planteamiento sistemático de la identificación de drogas en polvo pued

realizarse por varios caminos, sin embargo cuando se trata de drog

organizadas, todos los métodos dependen del reconocimiento microscópico de lo

a Preview tipos celulares característicos:You're fibrasReading tabicadas, pelos epidérmicos, tricomas; a

Unlock full accessalmidón, with a free trial. como de los contenidos de las células: cristales de oxalato de calci

gránulos de aleurona. Estas estructuras pueden considerarse como elementos d Download With Free Trial

valor diagnóstico porque resultan de gran valor para la identificación del materi vegetal como materia prima.

 Existen reactivos específicos que permiten destacar cada una de las estructura Sign up to vote on this title

para la observación de los gránulos de almidón se Useful el Not usefulen agua y e  realiza montaje

solución de lugol, los cristales de oxalato de calcio se observan con may

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METODOLOGÍA

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Bajo la orientación del profesor el estudiante procederá a realizar las siguiente actividades:

1. Ensayos preliminares para la identificación de las características organoléptic del material vegetal para identificar el color, el olor y el sabor.

Color: es importante analizar el color del material vegetal, cuando se trata d

raíces el color va desde blanco amarillento hasta pardo, en el caso de l

cortezas, en general el color es castaño y en el caso de hojas y flores, el colo depende de la especie.

Olor: el olor se puede expresar como aromático, cítrico, mentolado y cuando no e

posible establecer comparacion, se describe como característico. You're Reading a Preview

Unlock full accesscomo: with a free trial. describir auténticos (amargo, dulce, ácid Sabor: los sabores se pueden

salado) o insípidos.


2. Preparación de placas o montajes respectivos de las plantas medicinales sec

y en polvo sobre porta objetos, utilizando según el caso agua, hidrato de cloral floroglucina. Recuerde colocar el cubreobjetos antes de la observación. Sign up to vote on this title 

Useful

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Observacion de almidon: montar placa en agua, observar los diferentes gránulos

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clarificante. Colocar 2 a 10 mg de la droga en polvo sobre un portaobjetos

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Sheet Music

agregar de 2 -8 gotas que impregnen todo el material vegetal y calent suavemente.

El hidrato de clorar disuelve contenido celular y sustanci

extracelular (granos de almidón, granos de aleurona) y permite una mej visualización de tejidos celulares como: pared celular, fibras, vasos, cristales de oxalato de calcio, tricomas, estomas y polen.

Observación de lignina: colocar 2 a 3 mg de la droga en polvo sobre u

portaobjetos y humedecer este material vegetal con una solución alcohólica d

floroglucina (1% en etanol del 90%) y dejarlo secar a temperatura ambient

Agregar 1 gota de HCl concentrado, poner el cubreobjetos y observar los vas lignificados en colores desde el rosado hasta el color rojo carmín. Observar presencia de fibras, parénquima, esclereidas, pelos. You're Reading a puede Previewcomplementarse mediante La información de los montajes anteriores access with ala free observación trial. aplicación de otros ensayosUnlock quefullpermiten de otros tejidos

estructuras como paredes de celulosa, granulos de aleurona y oleorresinas. Download With Free Trial

3. Observar las estructuras presentes en los ejemplares seleccionados de l

plantas medicinales, identificar los elementos de valor diagnóstico en cada una d las plantas y realizar el dibujo correspondiente.




CONSULTA

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Práctica No 7

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RECONOCIMIENTO DE ADULTERACIONES Y/O FALSIFICACIONES EN EL MATERIAL VEGETAL

OBJETIVO 

Aplicar los ensayos físicos (organolépticos-macroscópicos), anális

microscópico (identificación de elementos de valor diagnóstico) y prueba

químicas de coloración en la identificación de adulteraciones y falsificaciones en el material vegetal. 

Identificar una muestra problema de material vegetal en polvo mediante su

características organolépticas, macro y microscópicas y pruebas químicas

MARCO TEÓRICO

El material vegetal es clasificado acuerdo a sus características sensoriale You'rede Reading a Preview

macroscópicas y microscópicas. Unfullexamen estas característica Unlock access withpara a free determinar trial. es en primer paso establecer la identidad y el grado de pureza del material, para Download With Free Trial

después llevarse a cabo posteriores análisis. Siempre que sea posible, patrones del material o muestras de calidad farmacopéica debe de estar disponible como referencia. Sign up to vote on this title



Una inspección visual provee una simple y rápida useful identificar  Usefulmedida  Notpara material, pureza y, posiblemente, calidad. Si una muestra es encontrada s

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tamaño, color, características superficiales y textura. Sin embargo, mientras esa

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cualidades son juzgadas subjetivamente y sustituciones o adulteraciones puede

ser muy parecidas al material genuino, a menudo es necesario respaldarse e análisis microscópicos y/o fisicoquímicos. La inspección microscópica del material vegetal es indispensable por

identificación del material en polvo, el material debe de ser tratado con reactivo

químicos. Los ensayos microscópicos se deben asociar con otros métod analíticos para garantizar una completa identificación, en los casos en los que

comparación con material de referencia revela algunas características no descrit

en los requerimientos, estos pueden ser atribuidos a material extraño, antes qu un a un constituyente normal.

METODOLOGÍA

Reading a Preview 1. Ensayos preliminares para You're la identificación de las características organoléptic Unlock full free trial. del material vegetal para identificar el access color,with el aolor y el sabor.


2. Detección histoquímica de tejido vegetal y su contenido.

Realizar las placas para la detección de celulosa, aleuronas, lípidos y aceite

esenciales, las cuales se describieron en la práctica No 4 y las pruebas para  No detección de almidón, oxalato de calcio y ligninaSigndescritas en la práctica up to vote on this title

complementar esta información si es necesario  conUseful el montaje de las siguiente  Not useful placas:

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Detección de lípidos y aceites esenciales: colocar 2 a 10 mg de la droga en polv

sobre un portaobjetos. Verter 2 ó 3 gotas de solución de Sudan III (0.5 g Sudan II calentados a reflujo en etanol o isopropil alcohol) y dejar actuar durante 2

minutos. Escurrir el líquido y lavar bien con alcohol 70 %. Colocar el cubreobjeto

y observar al microscopio a 10x y 40x. Los lípidos aparecen como gotas de col rojo.

Detección de taninos: colocar 2 mg de la droga en polvo sobre un portaobjetos

verter 2 ó 3 gotas de solución de cloruro férrico al 5 %. Colocar el cubreobjetos observar al microscopio a 10x y 40x. La presencia de taninos se evidencia por aparición de masas oscuras de color pardo, azul o negro.

Detección de celulosa: Colocar 2 a 3 mg de la droga en polvo sobre u

You're Reading ade Preview portaobjetos. Verter 1 ó 2 gotas de solución cloruro de zinc yodado (disolver 2

full accessde withpotasio a free trial. en 10.5 mL de agua), deja g de cloruro de zinc y 6.5 g Unlock de yoduro

reposar 2 minutos y agregar 1 gota de yodo (0.1 mol/l), dejar reposar 1 minuto Download With Free Trial

remover el exceso de reactivo con una tira de papel filtro y agregar 1 gota d

H2SO4 60%. Colocar el cubreobjetos y observar al microscopio, las paredes d celulosa se observan en colores desde el azul al violeta. Sign up to vote on this title



Procedimiento: combinar la solución A, solución By Useful la Solución y agregar 2.5  NotCuseful

ml de HCl con agitación (No filtrar). Colocar 2 a 10 mg de la droga en polvo sobr

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3. Pruebas químicas rápidas

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Solubilidad en agua: tomar en un tubo de ensayo aproximadamente un gramo d

muestra, adicionar agua en cantidad suficiente para cubrir la muestra; mezclar dejar en reposo durante 15 minutos. Al cabo de este tiempo observar concluir.

Los extractos acuosos y jugos concentrados se disuelven casi completamente,

drogas como la goma arábiga, tragacanto y semillas de lino, ponen de manifies su naturaleza gomosa o mucilaginosa.

Presencia de carbonato de calcio: tomar en un tubo de ensayo una pequeñ

cantidad de la muestra y adicionar unas gotas de ácido sulfúrico diluido, si ha

presencia de carbonato de calcio como adulterante, tiene lugar una efervescenc seguida de disolución. You're Reading a Preview para la prueba de aceites fijos Presencia de aceites fijos y/o aceites esenciales:

full access a free trial. debe comprimir una pequeñaUnlock cantidad dewith muestra en un pequeño trozo de pap

kraft, si aparece una mancha oleosa que persiste luego de someterla Download With Free Trial

calentamiento a una temperatura de 50°C, la muestra contiene aceite fijo. Ejempl semillas de lino y maní.  Los aceites esenciales se reconocen por su olor aromático y a la temperatura de Sign up to vote on this title

50°C desaparece la mancha oleosa, la detección del aroma se pued useful  Useful  Nottambién apreciar al calentar la muestra en el baño maría.

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prueba de antraquinonas (5 ml). Realizar las pruebas de identificació

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correspondientes de acuerdo con el procedimiento descrito en la práctica No. 7.

BIBLIOGRAFÍA

WHO. Quality control methods for medicinal plant material. Geneva: WHO. 199 ISBN 92 4 154510 0.

TREASE G.E., EVANS W.C. Tratado de Farmacognosia . Editorial Bailliere Tinda 12a Edición. Mexico. 1989.




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Práctica No 8

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IDENTIFICACIÓN DE METABOLITOS SECUNDARIOS OBJETIVO 

Realizar pruebas químicas rápidas de coloración y precipitación para

identificación de compuestos fenólicos, terpénicos y nitrogenados e muestras vegetales conocidas.

MARCO TEÓRICO

Los compuestos denominados metabolitos secundarios son subproductos de ruta

metabólicas normales que ocurren en ciertas especies, siendo particulares dentro

de un grupo taxonómico, estado de vida o tejido presentando una distribució

restringida dentro del Reino Vegetal dando origen a la quimiotaxonomía. S You're Reading Preview ocurrencia depende de condiciones externasa tales como ataques de patógenos, Unlock full access with a free trial.deficiencias nutricionales depredadores, cambios térmicos o lumínicos,

presencia de otros organismos intra o interespecíficos. Download With Free Trial

El

metabolismo

secundario

es

una

característica

fundamental

de

especialización, es decir que el compuesto resultante, puede no ser importan para la célula

 pero sí para el organismo como un todo. Los metabolit Sign up to vote on this title

secundarios pueden ser bioactivos, pero no  jugar un  papel esencial en lo Useful Not useful procesos fisiológicos del organismo. Algunos metabolitos secundarios

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Reconocimiento de metabolitos: el reconocimiento de metabolitos secundari

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se realiza por medio de pruebas fitoquímicas preliminares, las cuales son un

prueba cualitativa de caracterización consistente en una reacción química qu

produce alteración rápida en la estructura molecular de un compuesto, p ejemplo, la modificación de un grupo funcional, la apertura de un sistema anular,

formación de un aducto o un complejo, lo cual genera como resultado un

manifestación sensible como el cambio de coloración, la formación de u

precipitado o el desprendimiento de un gas, lo cual indica la presencia o ausenc de un metabolito secundario en particular.

1. Alcaloides: los alcaloides son sustancias básicas que contienen nitrógeno e

un anillo heterocíclico, son derivados de aminoácidos, presentan distribució

taxonómica limitada y se encuentran en plantas superiores como sales de u ácido orgánico. You're Reading a Preview Unlock full access with a free trial.


Figura 11. Estructura química de la nicotina Sign up to vote on this title



Useful  Not useful Atendiendo a su solubilidad, propiedad empleadapara extraerlos y purificarlos, la

base del alcaloide es soluble en solventes orgánicos y pueden formar sale

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Figura 12. Estructura química de una catequina.

3. Cardiotónicos: las agliconas cardiotónicas químicamente estan constituid

por el sistema esteroidal (ciclo pentano perhidrofenantreno) con los grupos metilo

en las posiciones C –18 y C-19, 7, un grupo hidroxilo en el carbono 3 y un ani lactónico

α-β insaturado de cuatro carbonos unido al carbono 17 del núcle

esteroidal, como se observa en la estructura química de la digoxina que aparece continuación. You're Reading a Preview Unlock full access with a free trial.





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 Not useful

Figura 13. Estructura química de la digoxina.

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agua formando espuma abundante. Las saponinas por hidrólisis dan origen a l

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llamadas sapogeninas.

Figura 14. Estructura química de la diosgenina.

La sapogenina puede tener el sistema anular esteroidal o el de un triterpen pentacíclico. Los anillos E y F de la saponina estereoidal conforman el llamado sistema espirostanal. El enlace glicosídico siempre se forma con el oxigeno del carbono 3.


5. Cumarinas: las cumarinas son un grupo muy amplio de principios activ

With Free Trial de 1-benzopiran-2-ona. S fenólicos y tienen en comúnDownload la estructura química

caracterizan porque presentan fluorescencia bajo la luz ultravioleta a 365 nm.


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6. Taninos: los taninos son polímeros de polifenoles, sustancias con alto peso

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molecular, comprendido entre 500 a 3000 g/mol. Se consideran productos d

excreción de muchas plantas, involucrados como mecanismos de defensa de l mismas, contra organismos parásitos. Se clasifican en:

Taninos hidrosolubles o pirogálicos: son ésteres fácilmente hidrolizables formad

por una molécula de azúcar (glucosa) unida a un número variable de moléculas d

ácidos fenólicos (ácido gálico o su dímero, el ácido elágico). Son comunes e plantas dicotiledóneas.



Figura 16. Estructura química de los taninos hidrolizables.

Taninos no hidrosolubles ó condensados: tienen una estructura químicasimilar Sign up to vote on this title

la de los flavonoides. Por hidrólisis generan azúcar y ácido elágico, alguno Useful Not useful 



taninos condensados son conocidos como pro-antocianidinas porque por hidrólis ácida producen antocianidinas y leucoantocinidinas.

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Figura 17. Estructura química de los taninos no hidrolizables o proantocianidinas

7. Esteroides: los esteroides son compuestos cuya estructura presenta el núcle

ciclopentano perhidrofenantreno, metilos en los carbonos 10 y 13 y un radic lineal en el carbono 17.




 Figura 18. Estructura químicadel ergosterol. Useful

Not useful

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del ácido quínico. Las quinonas se pueden clasificar en benzoquinona

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naftoquinonas y antraquinonas (las más numerosas).

Figura 19. Núcleo químico de las antraquinonas.

9. Antocianinas: las antocianinas son pigmentos flavonoides que se comport como indicadores ácido – base debido a la reacción:



Figura 20. Reacciones químicas de las antocianinas en diferente pH.  Sign up to vote on this title



Useful

 Not useful

Estos pigmentos suelen presentarse en forma de glucósidos, lo que explica su solubilidad en agua y la fácil extracción con solventes acuosos. Se encuentran

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METODOLOGÍA

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Sobre el extracto de la planta seleccionada, el estudiante realizara prueba

químicas de coloración y/o precipitación, para identificar la presencia d metabolito respectivo. 1. Recono cimiento de alcaloides

Los alcaloides son bases nitrogenadas, las cuales pueden convertirse en s respectivas sales mediante la adición de un ácido diluido y formar precipitados

reaccionar con los reactivos específicos para alcaloides. En esta práctic utilizaremos los reactivos de: Mayer y Dragendorff.

Obtención del extracto: tomar aproximadamente 5 g del material vegetal fresc

macerar en un mortero y adicionar un volumen suficiente de ácido clorhídrico 5%, calentar al baño maría durante 10 minutos, enfriar y filtrar. You're Reading a Preview

access de withensayo a free trial. aproximadamente 0.5 ml d dosfull tubos Prueba cualitativa: colocar enUnlock

filtrado ácido y agregar a uno de los tubos 2 gotas del reactivo de Dragendorff y Download With Free Trial

otro tubo 2 gotas del reactivo de Mayer. Si se observa turbidez o precipitado e

ambos tubos se considera como prueba presuntiva de la presencia de alcaloides 2. Reconoc imiento d e esteroides y/o triterpenoides




Obtención del extracto: en un beaker limpio y seco, tomaruna cantida Notpequeña useful  Useful

de material vegetal seco y molido, adicionar diclorometano en cantidad suficien

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aparición de coloraciones: verdes, azules, rojas o violeta es prueba positiva pa

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esteroides y/o triterpenoides en la muestra.

3. Reconocim iento de sapon inas

Obtención del extracto: tomar aproximadamente 5 g del material vegetal fresco

macerar en un mortero, adicionar suficiente cantidad de agua que cubra muestra, filtrar a través de gasa.

Prueba cualitativa: pasar 4 ml del filtrado a un tubo de ensayo y agit

vigorosamente durante un minuto, si se forma abundante espuma que permanec

estable durante 5 minutos es prueba presuntiva de la presencia de saponinas e la muestra. 4. Reconocim iento d e compu estos fenólicos y taninos

Reading a Preview aproximadamente 5 g del material vegetal fresc Obtención del extracto : tomarYou're

Unlock full with a free trial.facilitar el rompimiento de lo macerar en un mortero hidratando laaccess muestra para

tejidos, pasar la muestra completamente macerada a un beaker y adicion Download With Free Trial

cantidad suficiente de agua para cubrir la muestra, calentar en baño maría de 1 minutos y filtrar en caliente.

 2 gota Prueba cualitativa: tomar 1 ml del filtrado en un tubo de ensayo y adicionar Sign up to vote on this title

de solución de tricloruro férrico (FeCl 3 al 1%). Laaparición deNot unuseful color verde, az Useful  o negro es prueba positiva para compuestos fenólicos.

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5. Reconocim iento de flavonoides, leuco antocianidinas y cardiotónicos:

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Obtención del extracto : macerar en un mortero aproximadamente 10 g del mater

vegetal finamente picado, adicionar suficiente cantidad de etanol, calentar al bañ maría durante 5 minutos, enfriar y filtrar.

Prueba cualitativa para flavonoides (Ensayo de Shinoda): tomar un 1 ml del filtrad

etanólico en un tubo de ensayo, agregar varias limaduras de magnesio y por

pared del tubo dejar caer lentamente HCl concentrado (37%). La aparición d colores: naranja, rojo, violeta ó rosado, indican es prueba presuntiva de presencia de flavonoides en el material vegetal.

Prueba cualitativa para leucoantocianidinas: tomar 2 ml del filtrado en un tubo d

ensayo y adicionar 1 ml de ácido clorhídrico concentrado (37%). Calentar en bañ

maría durante 15 minutos. La aparición de coloraciones rojas es prueba presunti You're Reading Preview de la presencia de leucoantocianidinas en laamuestra. Unlock full access with a free trial.

Prueba para la detección de cardiotónicos y lactonas α, β insaturadas: adicionar Download With Free Trial

ml de filtrado en un tubo de ensayo y agregar 0.5 ml de reactivo de Kedd

(mezclar 1 ml de solución A con 1 ml de solución B para preparar este reactiv

antes de usarlo). La aparición de coloraciones violetas o púrpuras es prueb presuntiva de la existencia de cardiotónicos en la Sign muestra. up to vote on this title 

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Extracción con tolueno: adicionar 5 ml de tolueno al extracto previamen

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hidrolizado, agitar suavemente sin emulsionar, utilizando la cabina de extracción.

Prueba cualitativa: tomar 2 ml de la fase orgánica en un segundo tubo de ensayo

adicionar 1 ml de la solución previamente preparada de hidróxido de sodio al 5

en amoníaco al 2%. La aparición de un color rojo cereza en la capa acuosa indic presencia de quinonas en la muestra. 7. Reconoc imiento de antoc ianinas

Obtención del extracto: en un erlenmeyer colocar 100 g de muestra fres

finamente desmenuzada, añadir 200 ml de agua, calentar a ebullición durante minutos y filtrar.

Prueba cualitativa: adicionar 2 ml del filtrado en un tubo de ensayo y añadir 1 m Reading a Preview de NaOH diluido. Observar la You're coloración formada. Unlock full access with a free trial.

En otro tubo de ensayo adicionar 2 ml del filtrado y añadir 6 gotas de algún áci Download With Free Trial

mineral diluido (HCl ó H 2SO4 al 10%). Observar la coloración formada. Las antocianinas se reconocen por producir diferentes color es a diferentes pH. Sign up to vote on this title

8. Reconocim iento de cum arinas

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En un tubo de ensayo grande adicionar 1 g de material vegetal fresco y macerad

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Consultar las reacciones químicas que se presentan en cada una de las prueba de identificación de metabolitos secundarios.

BIBLIOGRAFÍA

DOMÍNGUEZ X.A. Métodos de investigación Fitoquímica . Ed.Limusa. Méxic 1973.

Arango A. Gabriel J., Quijano T. Jairo. Facultad de Ciencias Exactas y Naturale Marcha Fitoquímica Semicuantitativa. Universidad de Antioquia. Medellín.




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