2013
04/06/2013
FACULTAD DE INGENIERÍAS Y CIENCIAS PURAS C.A.P. INGENIERÍA SANITARIA Y AMBIENTAL
GESTIÓN DE LA BIODIVERSIDAD
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Gestión de la Biodiversidad
Blgo. Lucio Otazu Arana
- Brandon Hernán, Cuadros Amanqui. - Erick Rosso, Mamani Salazar. - Gianni, Condori Castillo.
Sexto
Única
2013 I –
GESTIÓN DE LA BIODIVERSIDAD
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Tabla de contenido
TITULO:.............................................................................................................. 6 AUTORES: ........................... ............. .......................... ......................... .......................... ........................... ........................... ......................... .............. 6 INTRODUCCIÓN: .............................................................................................. 6 OBJETIVOS: ...................................................................................................... 7 OBJETIVO GENERAL: ................................................................................... 7 OBJETIVOS ESPECÍFICOS: .......................................................................... 7 METODOLOGÍA ................................................................................................. 7 MARCO TEÓRICO ............................................................................................. 8 I.- ASPECTOS GENERALES.- ........................................................................... 8 1.1. Taxonomía de Trichomycterus dispar “mauri” ......................... ............ ......................... .............. 8 II.- MORFOLOGÍA .............................................................................................. 8 2.1. LAS CARACTERÍSTICAS BIOMÉTRICAS ........................... ............. .......................... ............... ... 9 2.2. LONGITUD ......................................................................................... 10 III.- FISIOLOGÍA ............................................................................................... 11 3.1 TRACTO DIGESTIVO ......................................................................... 11 IV.- HÁBITOS ALIMENTICIOS ......................................................................... 12 4.1. CONTENIDO ESTOMACAL.......................... ............ ........................... .......................... ........................ ........... 12 V.- HÁBITAT ..................................................................................................... 15 VI.- DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA ................................................................ 15 VII.- REPRODUCCIÓN NATURAL DEL MAURI. ............................................. 16 VIII.- REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL DE TRICHOMYCTERUS ............... ....... 18 8.1. REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL DE PECES NATIVOS EN LA CUENCA DEL TITICACA .......................................................................... 18 8.2. OBTENCIÓN DE REPRODUCTORES .............................................. 18 IX. CONSERVACIÓN EX SITU ........................................................................ 25 9.1. CRÍA Y MANEJO DE LAS ESPECIES ICTICAS NATIVAS ................... ............ ....... 25 9.2. ADAPTACIÓN DE REPRODUCTORES DE TRICHOMYCTERUS EN AMBIENTES CONTROLADOS CONTROLADOS ............................... ................. ........................... .......................... ........................ ........... 29 X. SITUACIÓN DE PESCA Y CONSERVACIÓN DEL MAURI......................... MAURI......................... 32 10.1. CAPTURAS DEL MAURI ..................................................................... 32 10.2. PRODUCCIÓN PESQUERA ARTESANAL: ........................................ 37 CONCLUSIONES ............................................................................................. 40
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ANEXOS ......................... ............ .......................... .......................... .......................... .......................... .......................... .......................... ................ ... 43 BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................ 50
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TITULO: MANEJO Y CONSERVACIÓN DEL "MAURI" INFORME
AUTORES: - Gianni, Condori Castillo. - Erick Rosso, Mamani Salazar. - Brandon Hernán, Cuadros Amanqui.
INTRODUCCIÓN: Para realizar un enfoque sistemático referido a la preservación de especies es necesario primero conocer una vasta revisión bibliográfica que solvente todas las futuras cuestiones que podrían generarse. En el área de ingeniería Sanitaria y Ambiental un campo del desarrollo profesional será la gestión ambiental por ende un factor esencial es la GESTIÓN DE LA BIODIVERSIDAD. En el presente artículo, hay información sistematizada referida a la especie ictica endémica de Puno Trichomycterus dispar “mauri”. Qué se está haciendo para la preservación de esta especie que está en peligro de extinción, qué actividades de investigación está desarrollando el Proyecto Especial Binacional Lago Titicaca (PELT), Cuales son los aportes de las universidades de nuestra región, los ministerios de agricultura y de ambiente qué funciones están cumpliendo, entre otros aspectos bibliográficos de suma importancia. Nosotros como estudiantes en plena formación profesional qué soluciones planteamos y cuáles son las recomendaciones que deben de cumplirse por parte de las instituciones avocadas a la preservación de este recurso hidrobiológico.
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OBJETIVOS: OBJETIVO GENERAL:
Conocer aspectos generales para un buen manejo y conservación de especies endémicas de nuestra región de Puno, en este caso del trichomycterus dispar "mauri".
OBJETIVOS ESPECÍFICOS:
Plantear alternativas para un mejor proceso de conservación y manejo de la especie trichomycterus dispar "mauri".
Identificar aspectos importantes para un enfoque sistemático para que se den niveles óptimos de conservación en nuestra región.
METODOLOGÍA Para la elaboración del presente material fue necesario realizar una metodología de acopio y recolección de información a partir de material bibliográfico.
DIAGRAMA 1: El siguiente diagrama describe los pasos realizados para realizar el presente informe.
1
• Recopilación de información. • Virtual y tangible.
2
• Ubicación e identificación de las fuentes. • Jerarquizar la información relevante.
3 4
• Selección y obtención del material bibliográfico.
• Elaboración y síntesis del material bibliográfico.
FUENTE: Los autores
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MARCO TEÓRICO I.- ASPECTOS GENERALES.1.1. Taxonomía de T r ic h o m y c t e r u s d i s p a r
“mauri”
El primer investigador en describir el género T r i c h o m y c t e r u s , fue HUMBOLDT (1811), identificando equivocadamente como el género E r e m o p h i l u s , nombre que fue descartado. VALENCIENNES (1833), dio una descripción más clara de este género. MEYEN (1834), WIEGMANN (1890), describen varias especies como pertenecientes al género P y g i d i u m ; pero el Dr. T. TCHERNAVIN (1943), ratifica la denominación de T r i c h o m y c t e r u s designada por VALENCIENNES (1833). El nombre específico originalmente fue dado por TSCHUDI (1845). (CIPP-CHUCUITO UNA PUNO, 2000)
CUADRO 1: Referencia taxonómica del Trichomycterus dispar. PHYLLUM SUB PHYLLUM CLASE SUB CLASE ORDEN SUB ORDEN FAMILIA GENERO ESPECIE NOMBRE COMUN
TAXONOMÍA Chordata Vertebrata Osteichthyes Actinopterygii Siluriformes Siluroidei Trichomycteridae Trichomycterus T r i ch o m y c t er u s d i s p ar "mauri" “mari” “huita”
ADAPTADO DE: TCHERNAVIN (1943)
II.- MORFOLOGÍA Son peces bentónicos por lo cual su cuerpo y algunos órganos están adaptados funcionalmente. Es un ejemplar teleósteo de carne amarillenta con pocas espinas, y piel lisa.
Cuerpo.- cuerpo desnudo (sin escamas) o con placas óseas. Soporta altas presiones producidas por el gran volumen de agua, por lo cual presenta un cuerpo aplanado, dorso ventralmente en los dos tercios y lateralmente en el tercio posterior; el vientre es aplanado.
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Órganos principales
Ojos.- Los ojos son pequeños y hundidos por su adaptación a escasa cantidad de luz.
Barbos.- Están premunidos de seis barbos en la cabeza (dos superiores y 4 inferiores). filamentosos en la base de la mandíbula superior, siendo órganos complementarios. Con barbillas sensitivas.
Vejiga natatoria.- carecen de vejiga natatoria o está sumamente atrofiada.
Estómago.- El estómago es de tipo tubular, es frecuente en los peces carnívoros y se complementa con un Intestino relativamente corto y simple, se presenta a manera de una bolsa tubular bastante distensible, de tal modo que cuando el animal se encuentra en ayunas o exento de contenido estomacal, este se mantiene como un conducto tubular más o menos replegado. En cambio, cuando este se halla repleto de alimentos se ensancha ostensiblemente por distensión de su tejido y membranas que conforman sus paredes.
2.1. LAS CARACTERÍSTICAS BIOMÉTRICAS a) Boca bordeada por mandíbula dentada y rodeada internamente por válvulas orales. b) Cavidad oral con dientes vomerianos y palatinos en el techo y lengua con dientecillos linguales en su superficie. c) Faringe con dientes faríngeos en cojinetes hacia los lados de los arcos branquiales que protegen las aberturas branquiales internas. d) Esófago. e) Estómago. f) Píloro. g) Intestino corto. h) Intestino largo. i) Ano.
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IMAGEN 1: Características biométricas del Trichomycterus dispar “mauri” .
FUENTE: CIPP-UNA PUNO
2.2. LONGITUD La longitud del Trichomycterus dispar “mauri” en la zonas de Chucuito y Uros
fue de 15.74cm y se observa que en promedio las hembras miden 15.61 cm, son más pequeñas que los machos que tienen una longitud de 15.95 cm.
TABLA 1: Longitudes de trichomycterus dispar “mauri” en la zona de Chucuito- Uros (lago Titicaca) 1994- 1995. INTERVALO DE CLASE cm
MARCA DE CLASE
HEMBRAS Ni %
MACHOS Ni %
13 15 17 19 21
17 28.82 17 28.82 18 30.50 04 6.78 03 5.08 59 100.00 2.24 15.61 14.33
05 15 13 05 00 38
12-14 14-16 16-18 18-20 20-22 TOTAL DESVIACION ESTANDAR
PROMEDIO COEFICIENTE DE VARIABILIDAD
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TOTAL Ni %
13.16 22 26.68 39.47 32 32.68 34.21 31 31.68 13.16 09 9.28 0.00 03 3.09 100.00 97 100 1.79 2.07 15.95 15.74 11.19 13.14 FUENTE: Angles, 1996.
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La longitud de Trichomycterus dispar “mauri” en Uros Chulluni es de 15.74 cm y
se observa que en promedio las hembras miden 15.61 cm, son más pequeñas que los machos que tienen una longitud de 15.95 cm.
TABLA 2: Tallas en diferentes especies .asociación IIP QOLLASUYO - CIPP CHUCUITO UNA PUNO, 2002.
ESPECIE
Orestias agassii Orestias luteus Orestias ispi Trichomycterus dispar
LONGITUD EN mm LARVA
ALEVINO
JUVENIL
ADULTO
5-6 5-6 3-4 6-7
6-70 6-110 4-40 7-125
70-120 110-120 40-69 125-145
>120 >120 >69 >145
FUENTE: Angles, 1996.
III.- FISIOLOGÍA 3.1 TRACTO DIGESTIVO LAGLER (1980), menciona que: en los cetáceos y peces óseos, el tracto digestivo consiste en un conducto interrumpido que se inicia en la boca y termina en el ano o cloaca, según el pez que se trate. Pero existe gran variabilidad en lo referente a forma, característica y estructura del tracto digestivo entre las diferentes clases de peces, de acuerdo a su filiación taxonómica, mecanismo ingestivo, hábitos alimentarios etc., esto conlleva a diferencias en la fisiología del tracto digestivo. Todo alimento inicia su proceso digestivo, siendo ingerido mediante cualquiera de los mecanismos de ingestión que existen en los peces, de la cavidad bucofaríngea, que recepciona los alimentos, pasan estos al esófago, aunque los peces presentan una lengua en la cavidad bucal, esta es rígida, dura y no cumple ninguna función deglutora. Los alimentos acumulados en el sector bucofaríngeo provocan la distensión de las paredes esofágicas y por los movimientos musculares del tubo digestivo
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pasan lubricados por el mucus hacia el estómago, venciendo previamente la estrechez que ejerce el esfínter cardial, que se refleja o movimientos reflejos. Una vez que los alimentos ingresan al estómago se da inicio al proceso digestivo propiamente dicho, los movimientos peristálticos provocados por la acción muscular en las paredes del estómago al ataque químico de los jugos gástricos (HCI) y la acción bioquímica de enzimas o diastasas se encarga de completar la acción digestiva que tiene lugar en el estómago del pez.
IV.- HÁBITOS ALIMENTICIOS LAGLER (1980), manifiesta que un factor importante en la alimentación es la hora del día. Algunos peces como los bagres que encuentran su alimento mediante el olfato y el gusto, son predominantemente comedores nocturnos.
MONTOYA (1989), menciona que el T r i c h o m y c t e r u s s p . “mauri” es una especie altamente selectiva en su alimentación ya que el 91.79% en número y el 97.34% en volumen está representado por el anfípodo Hyalella sp p .; el anélido Helobdella spp . y ovas de peces, variando el porcentaje de acuerdo al tamaño del pez.
4.1. CONTENIDO ESTOMACAL 4.1.1. Número y po rcentajes del contenid o estom acal por lon gitud es
La composición de organismos que se hallan en el contenido estomacal se aprecia en detalle en el cuadro Nº 01, respectivamente; en el rango de longitudes comprendidas entre 13 y 14 cm. Se registró 96.03% de Hyalella , 2.84% larvas de chirómidos, 1.13% Ovas de peces. Para el rango de longitud de 14 a 16 cm, estuvo conformado por un 68.43% por el contenido estomacal de un 68.43% de Hyalella , 3.92% larvas de chironómidos, 6.71% Helobdella , 2.79% ninfas de odonatos, pupas de chironómidos y 15.36% ovas de peces. En el rango de longitud de 16 a 17.9 cm, el contenido estomacal es 59.94% de Hyalella , 33.42% larvas de chironómidos, 2.63% Helobdella , 1.17% ninfas de
odonatos, 0.88% pupa de chironómidos y 1.46% de peces, en estos rangos existe una variedad de preferencias en cuanto a los tipos de alimentación.
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Para el rango de longitud de 18 a 19.9 cm., el contenido estomacal está constituido por un 71.22% de Hyalella , 23.38% larvas de chironómidos y 5.4% de ovas de peces. Para el rango de longitud de 20 a 21.9 cm, el análisis del contenido estomacal estuvo conformado por un 73.32% de Hyalella , 28.98% larvas de chironómidos y el resto estuvo formado por otros organismos.
4.1.2. Con teni do esto m acal po r é po cas
En el Altiplano peruano no se manifiestan con toda claridad las estaciones de primavera, verano, otoño e invierno, por lo que normalmente solo se consideran dos épocas, la de intermedio que comprende los meses de abril hasta agosto y la época de lluvias de setiembre a marzo.
a. Época intermedia Se analizó 47 ejemplares, tal como se puede ver en el cuadro Nº 05, donde se observa, que el principal alimento de esta especie está conformada por 64.98% de
Hyalella , 30.58%
de
chironómidos, 0.86% de Helobdella , 2.18% ninfas de odonatos y 0.47% pupa de chironómidos y 0.93% ovas de peces.
b. Época de lluvia Se contó 50 ejemplares, representado en el cuadro Nº 05 cuyo análisis estomacal estuvo constituido por 82.63% Hyalella , 1.67% larvas de chironómidos, 3.99% de Helobdella , 0.26% pupa de chironómidos y un 11.45% de ovas de peces. Haciendo comparaciones en estas dos épocas, indudablemente el organismo principal de alimentación de los “mauris” es la Hyalella , para la época de lluvia este organismo toma mayor
frecuencia que en la intermedia .
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TABLA 3: Porcentaje de número de organismos del contenido de trichomyterus dispar “mauri”, en epocas intermedias de lluvias del (titicaca) 1994 – 1995. S A C O P É
INTERMEDIA 47 LLUVIA + 50
. m E c D D O U T G I N G A N R O L
14-15.9 16-17.9 18.19.9 20-21.9 12-13.9 14-15.9 16-17.9 18-19.9
. p s a l l e l a y H
o d i ) m s o a n v r a o l r ( i h c
75.70 9.72 61.46 34.55 67.34 32.66 62.32 28.98 96.02 2.84 66.66 0 64.52 4.84 80.50 0
a l l e d b o l e h
7.64 0 0 0 1.4 6.37 29.03 0
) a f i n ( o t a n o d O
6.94 1.33 0 7.25 0 0 0 0
o d i ) m a o p n u o p r ( i h c
) L s s A a e T v c o e p O T (
0 0 100 1 1.66 100 0 0 100 0 1.45 100 0 0 100 0 26.97 100 1.61 0 100 0.62 19.48 100 FUENTE: Angles, 1996.
4.2. Número d e organism os d e contenido estom acal respecto al rango de lo ng itu des par a la é po ca in term edi a
Para el número de organismos del contenido estomacal respecto al rango de longitudes para la época intermedia se estructuró el cuadro N° 08 donde se muestra que el rango de longitud 12.6 – 13.9 cm., en dicha época no se encontró ningún ejemplar. Para las tallas 14.0 – 15.9 cm. encontró el siguiente número de organismos: 109 individuos de Hyalella , 14 larvas de chironómidos, 11 individuos de Helobdella , 10 ninfas de odonatos en total 144 organismos. Para las tallas 16.0 – 17.9 se puede ver que hay una variedad de alimentos o Items donde se encontró: 370 individuos de Hyalella , 208 larvas de chironómidos, 08 ninfas de odonatos, 6 pupa de chironómidos y 10 ovas de peces teniendo un total de 602 organismos. En este rango se nota que hay más consumo de organismos. Para las tallas de 18.0 – 19.9 se hallaron 268 individuos de Hyalella y 130 larvas de chironómidos, haciendo un total de 398 organismos y por último para las tallas de 20.0 – 21.9 de 86 individuos de Hyalella , 40 larvas de chironómidos, 10 ninfas de odonatos y 2 ovas obteniendo un total de 136 organismos. Los promedios finales para la época intermedia son los siguientes: 64.97% de Hyalella , 30.58% larvas de chironómidos, 0.86% de Helobdella ,
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2.18% ninfas de odonatos, 0.47% pupas de chironómidos y un 0.94% ovas de peces.
TABLA 4: Número de organismos de contenido estomacal respecto al rango de longitudes para la época intermedia de trichomycterus dispar “mauri” 1994 – 1995. ORGANISMOS E D D U T I . O G m G N N c A O R L
a I I e l a y H
o d i ) m s o a n v r a o l r i ( h c
a l l e d b o l e H
12-13.9 14-15.9 109 14 11 16-17.9 370 208 0 18-19.9 268 130 0 20-21.9 86 40 0 TOTAL 833 392 11 2 X 228001.0 61 11960.0 121.0 % 64.97 30.58 0.8
o ) t a a f n n o i n d ( o
10 8 0 10 28 264.0 2.18
o d i ) m a o p n u o p r ( i h c
0 6 0 0 6 36 0.47
) s s a e v c o e p (
L A T O T
0 1444 10 602 0 398 2 138 12 1.282 104.0 2220486.0 0.94 100.0 FUENTE: Angles, 1996.
V.- HÁBITAT AYALA (1982), manifiesta que el T r ic h o m y c t e r u s d i s p a r “mauri” tiene hábitos bentónicos en profundidades de 0 a 20 m, con fondos cenagosos o terrosos con abundante vegetación acuática sumergida, prefiriendo fondos arenosos, formados en su mayoría por cantos rodados; además elige habitar aguas tranquilas, sin mucha corriente buscando albergarse entre plantas acuáticas o algún otro obstáculo como medio de defensa contra los predadores y en casos muy especiales realizan el fenómeno del mimetismo.
VI.- DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA CANALES (1982), manifiesta que la distribución normal del "mauri" está circunscrita a ciertos grupos de agua del Altiplano Peruano Boliviano, pues no se tiene conocimiento de su existencia fuera de estos países, se podría decir que tiene una distribución endémica; requiriendo por tal razón un tratamiento especial para asegurar la propagación y supervivencia de la especie.
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Es indudable que los hábitos de reproducción son determinantes lo que pueda ocasionar un consiguiente período de extinción.
AYALA (1983), dice que la pesquería de T r ic h o m y c t e r u s s p "mauri" es amplia en su distribución, comprendiendo lagunas de Arapa, Saracocha, Lagunillas y el lago Titicaca, siendo en esta última la de mayor disponibilidad en la zona Norte, Sur y bahía de Puno. Dentro de la pesquería del Altiplano Peruano representa el 30% del volumen, la distribución territorial, abarca especialmente la península de Chucuito, islas de los Uros, y siendo la época de mayor extracción las de lluvia, cuando salen a buscar zonas de desove.
FIGURA 1: Distribución geográfica del mauri en la hoya del Titicaca, cabe destacar que dentro de la pesquería del Altiplano Peruano representa el 30% del volumen total.
Fuente: Wikipedia, accedida en junio 2013 / Lake Titicaca Modis Sensor, 2001 (www.esacademic.com).
VII.- REPRODUCCIÓN NATURAL DEL MAURI. Estos especímenes se encuentran maduros sexualmente y con mayor frecuencia en dos épocas, en los meses de febrero a marzo y de octubre a noviembre (primavera). Las ovas que producen son demersales más pesadas que el agua, y no presentan filamentos y son de color blanquecino. GESTIÓN DE LA BIODIVERSIDAD
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Es indudable que los hábitos de reproducción son determinantes lo que pueda ocasionar un consiguiente período de extinción.
Zonas de desove de Trichomycteridos en el lago Titicaca ámbito peruano Salen a desovar hacia la orilla del lago, donde las hembras hacen sus nidos cavando un hoyo en la arena entre 50 a 70 cm de diámetro y 10 cm de profundidad seguidamente el macho fecunda las ovas: La cantidad de ovas que tuvo una hembra fue aproximadamente de 3000 a 3600 en cada desove Realizan migraciones de reproducción saliendo de su hábitat normal (zonas profundas), hacia zonas litorales con sustrato de arena, se caracteriza por ser psamofílico es decir requiere de sustratos blandos como arena para su desove. Presentan dimorfismo sexual, los machos son generalmente de tallas más pequeñas que las hembras.
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Las ovas tienen un diámetro de 1.7 a 1.9 mm,
El color de las ovas es amarillo pálido en los “mauris”.
La proporción de sexos en ambientes naturales es de 5 a 6 hembras por un macho.
ETOLOGÍA Los reproductores tienen una conducta de protección de sus ovas y descendiente Es una especie de costumbres nocturnas, la temperatura ideal para el crecimiento está dentro un rango de 15 a 20 °C (Oliaslii. et al., 1992).
VIII.- REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL DE TRICHOMYCTERUS La siguiente información fue anexada gracias al aporte académico del Laboratorio de Acuicultura de la PELT, ubicada en la carretera panamerica Km. 17, barco Chucuito N° 1090.
8.1. REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL DE PECES NATIVOS EN LA CUENCA DEL TITICACA Género Trichomycterus: agrupa a los suches y mauris La reproducción artificial implica el desove, fecundación y el desarrollo del proceso embrionario en incubadoras de diferentes tipos. Existe una variedad de incubadoras modernas y sofisticadas, pero que no están al alcance de los pescadores. La técnica de la reproducción artificial en Trichomycteridos, con fines de repoblamiento en el lago Titicaca, fue estudiado por el PELT (1995). El IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno; realizó trabajos de reproducción artificial en Trichomycterus rivulatus “suche” y Trichomycterus dispar “mauri”,
cuyos resultados, logros y dificultades se exponen más adelante.
8.2. OBTENCIÓN DE REPRODUCTORES La obtención de reproductores se realiza en la zona litoral, instalando redes agalleras para su captura o comprando directamente de los pescadores. Es
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muy importante que los peces estén vivos, para lo cual los especímenes se extraen de la red directamente a un contenedor con agua. Las especies del género Trichomycterus, realizan el desove naturalmente en la zona litoral o en la orilla, generalmente a la entrada de afluentes, donde hay la presencia de arena y grava.
IMAGEN 2: Obtención de reproductor, que se puede hacer al momento de la pesca o en mercados donde se venda aún vivo a esta especie.
La obtención de reproductores se realizó a través de capturas directas y acopio de reproductores de los pescadores, como se detalla en el Cuadro N° 11. Para la captura de Trichomycteridos, las redes fueron caladas en horas de la tarde y cobradas en la madrugada del día siguiente, con una duración aproximada de 13 horas.
Mantenimiento de Peces Se realiza en Acuarios de Laboratorio adecuadamente acondicionados con flujo de agua continua y plantas acuáticas sintéticas, hasta que los reproductores se recuperan del estrés causado por el manipuleo de la captura.
Control de madurez. Es el proceso en donde se realiza el sexado (separación de machos y hembras) y selección de peces sexualmente maduros, lo cual consiste en palpar el abdomen y presionar el lugar del poro urogenital, si sale una ova o
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líquido blanquecino, significa que está sexualmente maduro la hembra o macho, respectivamente.
IMAGEN 3: Control de madurez
DESOVE Es el proceso de la extracción de las ovas del pez hembra, la cual se realiza secando al pez con mía toalla y apretando el abdomen suavemente con los dedos pulgar e índice, donde las ovas son depositadas en mía caja petri o bandeja pequeña, previamente el pez debe ser anestesiado con eugenol o benzoeaina para evitar daños y contracción Las ovas extraídas no deben tener impurezas como ser: sangre, orina o heces fecales.
IMAGEN 4: Proceso de desove.
Extracción del semen Es el proceso de la extracción de la lecha espermática de los reproductores machos, para lo cual se recomienda el método de succión, el cual consiste en presionar el abdomen del pez a la altura del poro urogenital y succionar el esperma utilizando una jeringa incorporado con un tip de laboratorio.
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IMAGEN 5: Extracción del semen.
Control de motilidad de espermatozoides Es muy inportante conocer la calidad de los espermatozoides, para lo cual se debe observar la motilidad (es el desplazamiento o movimiento de los espermatozoides), cuyo proceso es como sigue: en un porta objeto verter 0.0l cc esperma, mezclar con O.l cc de solución Ringer y llevar al Microscopio óptico para su respectiva observación.
FECUNDACIÓN Para el proceso de fecundación artificial se debe tener en cuenta la proporción sexual de 2 machos por 1 hembra en “mauri” y en de 1 a 1 para “suche”.
La fecundación se realiza por el método seco (Braskii), que consiste en extraer la totalidad de las ovas aptas de la hembra, sobre una bandeja completamente seca y en un lugar donde no haya incidencia directa de los rayos solares; friccionando el vientre con la mano. Se esparce el líquido seminal sobre la ovas, luego se mezcla los dos productos sexuales con la ayuda de una pluma de ave y solución salina, . después de un minuto se lavan las ovas del esperma excedente con agua normal y se deposita en incubadora con flujo de agua horizontal para su reabsorción, para que se produzca la fecundación de las ovas y dar origen al huevo o cigoto. Los productos sexuales se dejan reposar una hora para una mejor fecundación. Posteriormente se lavan las ovas fecundadas con agua fresca hasta que
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queden translúcidas. Las ovas son libres por lo que no es necesario la separación..
IMAGEN 6: Fecundación artificial.
Los periodos de incubación varían en función de la temperatura del agua, mayor temperatura, menor período de incubación.
Conteo de ovas fecundadas Se cuantifica directamente el número de ovas y luego se mide el diámetro que es de aproximadamente de 1.7 a 1.9 mm, depositándolas en los vasos de incubación. Después de 24 horas las ovas fecundadas se hidratan aumentando en su diámetro de 2.4 a 4 mm.
INCUBACIÓN. La incubación es una etapa importante en la que se utilizan incubadoras de flujo horizontal, mediante el empleo de artesas o incubadoras de flujo vertical, utilizando la „jarra soung modificada”, este último método es muy eficiente para
las ovas de Trichomycterus siempre y cuando se tenga un flujo de agua constante y uniforme.
IMAGEN 7: Incubación.
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LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN. Se debe realizar la limpieza de las ovas muertas diariamente y la desinfección con verde de malaquita a una concentración de 3 ppm durante 15 minutos, cada cuatro días.
ECLOSIÓN Y LARVAJE - La incubación tiene un período de 6 a 15 días para “mauri” y “suche” - El periodo de eclosión dura 3 a 5 días, dependiendo de la temperatura del agua. - Las larvas se caracterizan por presentar un saco vitelino previsto de reserva vitelina. - La reabsorción del saco vitelino en la población de larvas dura de 7 a 12 días dependiendo de la temperatura del agua. - Las larvas tienen tallas aproximadas de 6 a 7 mm. - La alimentación de las larvas es endógena, utilizando el vitelo.
IMAGEN 8: Imagen de una larva de la especie trichomycterus.
PARÁMETROS BIONORMATTVOS En los procesos embrionarios y larvaje de Trichomycterus dispar y trichomycterus rivulatus, se tiene:
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Proceso embrionario Especie
(Grados/día)
(Días)
Larvaje (Días)
Trichomycterus dispar
168-224
dic-16
15-17
Trichomycterus livulatus
140-182
oct-13
dic-16 Fuente: CIDAB. 2002
En el cuadro anterior, se expresa el tiempo de proceso embrionario (fecundación - eclosión) y larvaje (absorción del saco vitelmo) de Trichomycterus, a una temperatura del agua de 14°C, pH 8.2 y Oxígeno disuelto de 5mg/l.
TABLA 5: Cantidad de ovas según reproductores de trichomycterus Long
Peso
Total (cm) Trichomycterus Trichomycterus
15.1 28.3
Peso
Diámetro
Ova (gr)
39.2 271.
(gr)
0.0031 0.0043
(min)
1.85 1.98
Peso
Nº
Edad
total
Aprox
Ovas
.
(gr)
Ovas
(años)
4.185 1350 2+ 22.6 4708 4+ Fuente: CIDAB. 2002
En el cuadro anterior, se muestra los parámetros de producción de ovas de Trichomycterus dispar es así que un mauri de 15.1 cm de longitud y 39,2 g. de peso puede producir aproximadamente 1350 ovas.
ALEVINAJE - Las larvas pasan a ser alevinos, con la reabsorción del saco vitelino. - La alimentación de los alevinos es exclusivamente exógena, con base a fitoplancton, zooplancton, larvas de insectos acuáticos y en algunas oportunidades con alimento balanceado. - Los alevinos son diferentes morfológicamente a los adultos en los primeros días de vida, pero con el transcurso de los días los vestigios morfológicos de las aletas van tomando la forma definitiva del adulto.
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IMAGEN 9: Alevinos en formación adulta.
IX. CONSERVACIÓN EX SITU 9.1. CRÍA Y MANEJO DE LAS ESPECIES ICTICAS NATIVAS Las especies ícticas nativas del Lago Titicaca son salvajes, por lo tanto su adaptación en cautiverio es muy difícil, cuyas causas de la muerte son; estrés, inanición (no se alimentan por estrés), ataque de hongos por las heridas causadas en su captura y condiciones medio ambientales diferentes a su hábitat natural. La crianza de las especies nativas en acuarios de laboratorio es difícil, por lo tanto, para solucionar este problema, se ha realizado pruebas de crianza en estanques rústicos y cercos de confinamiento, los resultados preliminares alcanzados hasta el momento son significativamente mejores. Antes de este proceso, es muy importante conocer las zonas de reproducción y las épocas de desove por especie para poder conseguir a los reproductores. Así como contar con los medios de transporte lacustres necesarios. En lo que respecta a la incubación de las ovas de las especies del género Orestias, se alcanzaron mejores resultados en incubadoras de flujo horizontal, en cambio los Trichomycterus dan mejor resultado en incubadoras de flujo vertical.
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La producción artificial de zooplancton destinada a la alimentación de alevinos de las especies nativas es de vital importancia para la crianza en cautiverio, dado que. en ciertas épocas del año, no existe alimento natural en el lago. Los estanques constituyen la infraestructura básica en la piscicultura; las tienen que responder a las características bioecológicas de la especie cultivarse. El IIP Qollasuyo y el CIPP Chucuito-UNA-Puno dentro del marco del Proyecto PER/98/G-32 “Conservación de la Biodiversidad en la cuenca del TDPS”, propone una alternativa tecnológica para la construcción de estanques, destinado al mantenimiento y cultivo de especies ícticas nativas del lago Titicaca. Es necesario que los pescadores y todos los pobladores de la cuenca del lago Titicaca, conozcan la importancia que tiene la conservación de las especies nativas y consideren a la piscicultura de especies ícticas nativas, como una perspectiva potencial de la actividad socio-económica en el Altiplano, la que implique la preservación de las especies en peligro de extinción y una posibilidad de diversificar la actividad productiva en la cuenca del lago Titicaca. Para alcanzar la eficiencia en el manejo de estas especies.
a) Bastidores de tres divisiones Con la experiencia del bastidor simple, se confeccionó bastidores de tres divisiones; con dimensiones de 0.90 x 0.30 x 0.05 m El uso de bastidores con estas características en este trabajo no es recomendable para la etapa de larvaje y alevinaje de Orestias y Trichomycteridos, porque las larvas y alevinos se enredaban en las uniones del bastidor ocasionando su muerte.
Figura 2: Bastidores de tres divisiones para larvas y alevinos de Trichomycteridos “mauri" y “suche”
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b) Jaulas de estructura flexible Las jaulas de estructura flexible se utilizaron en los Centros Piloto de Chucuito y Pomata. La estructura fue armada con cordón nylon de 1/8”, revestida en el fondo y laterales con tela organza; se hicieron “ojales” cada 10 cm en la base, la parte
superior para amarrar dándole forma y rigidez, y evitar que la jaula flote. Estas estructuras se colocaron dentro del estanque sujetadas a armazones de troncos de eucalipto. Se confeccionaron de diferentes medidas: - De 1 x 0.20 x 0.25 m de profundidad; con 5 divisiones de 0.20 m cada uno. - De 1.50 x 0.50 x 0.50 m de profundidad; con 2 divisiones de 0.75 m cada uno. - De 3 x 0.50 x 0.50 m de profundidad; con 6 divisiones de 0.50 m cada uno.
IMAGEN 10: Jaula de estructura flexible instalada en bs estanques naturales
Se recomienda su uso por tener mejores resultados en la crianza de Orestias y Trichomycteridos para la etapa de larvaje y alevinaje. Las jaulas fueron instaladas en la caída del agua del estanque seminatural, garantizando la oxigenación e ingreso del plancton que alimentó a los peces.
c) Jaula de estructura flexible de 1.60 x 1.40 x 1.00 m En el Centro Piloto de Pomata se armó una jaula de nylon de 1.60 x 1.40 x 1.00 m para la crianza de alevinos. La estructura fue de hilo nybn de 1/8”, revestida
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en la base con un paño de yute, los laterales con tela de nylon de 1 mm de malla, se hicieron “ojales” cada 50 cm en la base y parte superior, para el
anclaje y amarre. Se instaló dentro del estanque, sujeta a un armazón de troncos de eucalipto. Esta jaula estuvo destinada a la crianza de alevinos y juveniles de “mauri” y “suche”, pero con resultados negativos por los niveles de mortalidad elevados.
IMAGEN 11: Jaula de nylon de 1.60 x 1.40 x 1.00 m del Centro Piloto de Pomata
La jaula de nylon con base de polietileno no es recomendable para la crianza de alevinos y juveniles de Trichomycteridos, por el material que se usó en la base de la jaula (polietileno), que no fue adecuado para este fin.
Usar fuentes de agua natural (río, manantial, lago) para la incubación, larvaje, alevinaje y adaptación de reproductores de Orestias y Trichomycterus.
Construir estanques seminaturales de piedra y barro pequeños para la adaptación de reproductores de Orestias y Trichomycteridos.
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9.2. ADAPTACIÓN DE REPRODUCTORES DE TRICHOMYCTERUS EN AMBIENTES CONTROLADOS Adaptación de reproductores de Trichomycteridos Para la adaptación de reproductores de Trichomycteridos se tuvo que seguir todo un proceso, los primeros ensayos se realizaron en la Ciudad Universitaria de la UNAPuno, luego en los estanques del Centro Piloto de Chucuito; y en base a toda esta experiencia se inició la adaptación de reproductores en el Centro Piloto de Pomata.
Utilización
del
tipo
de
infraestructura
en
la
adaptación
de
Trichomycteridos En la adaptación de los Trichomycteridos se utilizó infraestructura de forma similar al de las Orestias, en el Cuadro N° 06, se observa la infraestructura utilizada para la adaptación de reproductores:
TABLA 6: Características del tipo de infraestructura utilizada para la adaptación de reproductores de trichomycteridos CENTRO PILOTO POMATA
INFRAESTRUCTURA TIPO Estanque cemento
MEDIDAS 4 x2.2 x 1 m
CHUCUITO
Estanque seminatural
4.1 x 2.3 x 0.7
ESPECIES EN ADAPTACIÓN Trichomycterus dispar “mauri” y
m LABORATORIO Estanque cemento
10 x2.75 x0.8 m
Trichomycterus rivulatus
U.N.A. Puno.
Tinas de
100 litros
“suche”
Fuente: Asociación IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno, 2000 – 2002.
Resultados de la adaptación en la infraestructura utilizada El proceso de captura y el uso de un tipo de malla fue decisivo en la supervivencia de los reproductores.
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TABLA 7: Tiempo de supervivencia de trichomycteridos en la infraestructura utilizada ESPECIE
TIPO DE
TIEMPO DE
INFRAESTRUCTURA SUPERVIVENCIA Trichomycterus dispar “mauri”
Tinas
70 días
Estanque cemento
330 días
Trichomycterus rivulatus
Tinas
70 días
“suche”
Estanque cemento
30 días
Estanque Seminatural 360 días
Fuente: Asociación IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno, 2000 - 2002.
En la tabla 7 se observa el tiempo de supervivencia de los reproductores de Trichomycteridos; en el caso de Trichomycterus dispar “mauri” el mayor tiempo de supervivencia se obtuvo en estanques de cemento y el menor tiempo en tinas; en el caso de Trichomycterus rivulatus “suche” el mayor tiempo de
supervivencia se registró en estanques seminaturales y el menor tiempo en estanques de cemento. En todos los casos se usó una solución de verde de malaquita (3 gr/lt), para evitar la presencia de hongos en los reproductores
CONSTRUCCIÓN DEL ESTANQUE Comprende bs siguientes aspectos:
Los estanques deben estas ubicados en:Cerca de una fuente de agua.
El agua debe ser disponible en cantidad y calidad necesaria.
El terreno debe tener una pendiente moderada, para la circulación del agua y su correspondiente oxigenación (menores a 10º)
El estanque debe estar ubicado en un terreno semi permeable, para evitar o controlar la filtración.
Los estanques deben ubicarse en terrenos que no compitan con la agricultura y ganadería, salvo que ofrezcan una alta y sostenible rentabilidad.
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ADECUACIÓN DEL ESTANQUE Antes de colocar a los peces, el estanque debe estar adecuado y preparado para la recepción de los especímenes. La adecuación incluye los siguientes aspectos: a) Sanidad Remoción del piso y limpieza de las raíces y restos de vegetales, piedras y elementos extraños. Secado del piso, por lo menos 2 días. Desinfección de los taludes y el fondo del estanque con cal viva. b) Hábitat Consiste en preparar el fondo de acuerdo a la bioecología de la especie y la producción de alimento natural. Esta abarca los siguientes aspectos:
1 - Preparación del fondo; comprende: Preparación del sustrato para el desarrollo de fitoplancton, zooplancton y macrófitos. El sustrato debe tener 4 capas cada uno de 3 a 5 cm de espesor, las que deben tener las siguientes características: Primero: tierra arcillosa, segundo: tierra negra, tercero: abono orgánico (estiercol de cerdo o ave) y cuarto: tierra negra.
2.- Preparación del filtro natural.- Debe estar constituido por tres capas de arena de diferente espesor entre 3 a 5 cm. Empezando del fondo las capas son: primero arena fina lavada, segundo cascajo grueso de 3 - 6 mm de diámetro y tercero una capa superficial de cascajo (tipo hormigón) de piedras planas de 10 a 20 mmde diámetro.
3.- Plantación de macrófitos.- De acuerdo al hábitat de la especie se realiza la plantación de macrófitos: Elodea potamogeton “llachu” y Myriophyllum elatinoides “hinojo”, Schoenoplectus tatora “Totora”, Chara sp. etc.
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4 - Preparación de cobertizos.- considerando que los tríchomycteridos son huraños y de hábitat bentónico, requiere de refugios; por lo que es necesario preparar una zona de penumbra y cobertizos, con piedras largas y planas.
Recomendaciones Realizar la producción de ovas de Trichomycterus en los meses donde la temperatura es alta, mas no así en meses de temperaturas bajas. Por los buenos resultados obtenidos en la supervivencia de alevinos y juveniles de Trichomycterus usando estanques seminaturales se recomienda usar este tipo de infraestructura. Producir alevinos de Trichomycteridos con fines de repoblamiento Impulsar la creación de mayor número de Reservas Naturales para la recuperación,
conservación
y
repoblamiento
de
Trichomycterus
(especialmente: Arapa, Challapampa, Laqunillas, y Saracocha).
X. SITUACIÓN DE PESCA Y CONSERVACIÓN DEL MAURI 10.1. CAPTURAS DEL MAURI Tallas de captura Mauri: se registraron tallas entre 10 - 23 cm, con modas que fluctuaron de 13,5 (diciembre) a 16 cm (julio) y una longitud media de 14,5 cm (Tabla 6). Se registro 48,7% de ejemplares en tallas menores a la talla mínima comercial (TMC 14,5 cm).Tabla 8.
TABLA 8: Parámetros de crecimiento obtenidos a través del PROGRAMA FISAT II (FAO-ICLARM)
Parámetros Longitud asintotica (Loo) cm Factor de crecimiento (k) año Score Rango longitud (cm) Numero de muestras (n)
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-1
Carachi amarillo
Carachi gris
Mauri
19,43 0,67 0,181 (8.518,5) 20.632
22758 0,39 0,197 (9-21,5)
24,25 0,63 0,202 (10-23)
8.630
9.272
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En base al muestreo biométrico de 9 272 ejemplares, se determinó una longitud asintótica (L∞,24,25 cm) y una curva de crecimiento de k = 0,63 año- 1
para un rango de tallas de 10 - 23 cm. Los valores estimados indican un pez de vida corta y crecimiento moderado. Tabla 9.
TABLA 9: Parámetros de madurez sexual para especies desembarcadas del lago Titicaca 2008.
Especie Carachi amarillo Carachi gris Mauri Pejerrey Ispi
Talla
Primera Madurez sexual
Talla
Primer desove (Estadio VU- VIII)
Rango
Rango
(cm)
Muestra
(cm)
(cm)
Muestra
(cm)
10,9
(n) 912
(09-17)
12
(n) 341
(09-18)
10,2 12,7 23,4 6,3
1.200 81 619 225
(09-21) (11-19) (14-45) (05-09)
12,6 14,7 25,1 7
429 136 86 108
(10-21) (12-21) (20-45) (07-09)
Tabla 10: Volumen estimado (t) de la extracción de los recursos hidrobiológicos según especies (1981 - 2008). Años
Boga
Carachi
Ispi
Mauri
Pejerrey
Trucha
1981 1982 1983 1984 1985 1 986 1987 1988 1989 1990 1991 1992 1993 1994 1995 1996 1997 1998 1999 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007* 2008*
22 425 199 43 14 36 65 52 52 8,2 0,6 0 1,7 3 0,9 0,5 0,8 0 0 1,8 0 0 0 0 0 0 0 0
344 1.874,0 1.900,0 2.029,0 2.003,0 2.270,0 2.974,0 3.367,0 3.000,0 3.1 70,5 2.617,8 3.336,1 2.136,4 1.478,6 1.019,8 456,1 723,9 730,8 407,4 420,5 1.562,8 570,5 859,6 668,4 1.034,7 752,5 525,2 396,0
116 629 1.445,0 597 557 1.136,0 1.199,0 276 86 39,4 0,3 145,2 453,6 1.086,5 458 2,5 107,7 326,1 94,9 459,6 198 15,7 327,9 267,9 519,9 116,2 502,9 465
25 222 57 184 78 165 206 175 160 93,9 1,8 1,4 5,8 70 18,4 4,3 7 4,9 3,2 38,3 74,4 3,4 24,2 21,4 22,3 30,6 48,1 28,7
202,0 1.066,0 1.197,0 1.552,0 1.604,0 2.035,0 2.574,0 3.250,0 4.229,0 4.433,2 3.823,0 2.806,8 1 413,9 1.845,9 1.696,5 843,8 1.190,7 1.148,7 839,5 934,4 2.193,9 81 5,3 957,1 292,7 4 18,1 482,3 1.096,3 432,8
151 196 85 28 55 55 123 105 46 6 2,4 0,5 2,5 28,7 10,4 13 21,3 45,8 46,1 71,8 3,3 15 36,3 48 154,9 60,1 7,2 29,3
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total 860 4412 4883 4433 4311 5697 7141 7225 7573 4580,7 3828,1 6290 463,6 4512,7 3204 1320,2 2051,4 2256,3 1391,1 1926,4 4032,4 604,6 2205,1 1298,4 1731,8 1441,7 2179,7 1351,8
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DIAGRAMA 2: Gráfico obtenido a partir de la tabla 10, datos proporcionados por IMARPE – PUNO. Boga
Carachi
Ispi
Mauri
Pejerrey
Trucha
5000 4500 4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500 0 1 8 9 1
2 8 9 1
3 8 9 1
4 8 9 1
5 6 7 8 9 8 8 8 8 8 9 9 9 9 9 1 1 1 1 1
0 9 9 1
2 9 9 1
1 9 9 1
3 9 9 1
4 9 9 1
5 9 9 1
6 9 9 1
7 9 9 1
8 9 9 1
9 9 9 1
0 0 0 2
1 0 0 2
2 0 0 2
3 0 0 2
4 0 0 2
5 0 0 2
6 * * 0 7 8 0 0 0 2 0 0 2 2
Tabla 11: Volumen determinado para los años 2006, 2007 y 2008. Datos proporcionados por la IMARPE – PUNO.
COMPOSICIÓN ESPECIES
Desembarque 2006 (Jun - Dic) Volumen (Kg)
%
Desembarque 2007 (Ene - Dic ) Volumen (kg)
Desembarque 2008 (Ene- Dic ) Volumen (kg)
%
%
ESPECIES NATIVOS
48.327,2
45,2
193.631,9
49,37
206.462,0
65,83
Genero orestias
46.066,2
43,1
184.985,6
47,17
199.800,1
63,71
Carachi Amarillo
26.492,3
24,8
74.374,5
18,96
68.804,4
21,94
Carachi Gris/Negro
11.293,3
10,6
19.531,5
4,98
21.178,1
6,75
Carachi Enano/Gringo
545,6
0,5
588,5
0,15
1.852,2
0,59
Ispi
7.735,0
7,2
90.491,0
23,07
107.965,3
34,43
Boga Genero Trichomycterus Mauri
0,0
0
0,1
0
0.1
0
2.261,0
2,1
8.646,3
2,2
6.661,9
2,12
2.212,9
2,1
8.283,5
2,11
6.394,5
2,04
Suche
48,1
0
362,8
0,09
267,4
0,09
INTRODUCIDOS
58.505,7
54,8
198.559,9
50,63
107.156,3
34,17
Pejerrey
58.288,5
54,6
197.260,4
50,3
100.368,0
32
Trucha
217,2
0,2
1.299,5
0,33
6.788,4
2,16
TOTAL
106.832,9
100
392.191,8
100
313.618,3
100
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Tabla 12: Captura en toneladas métricas por quinquenios de los géneros orestias y trichomycterus en el lago Titicaca.
AÑOS
1980 1985 1990
ORESTIAS
818
2189
5
TRICHMYCTERUS
156
337
0.3
Tabla 13: Capturas en toneladas métricas de mauri en diferentes años en el lago Titicaca. ESPECIES 1981 1982 1983 1984 1985 1986 1987 1988 1989 1998 1999 Mauri
25
204
55 155
62
154 202 175 160
Suche
1
18
2
16
11
29
4
3
4
DIAGRAMA 3: Revela datos expresados en la tabla 13.
250 200 150 100
MAURI
50
SUCHE
0 1981 1982
1983 1984 1985 1986 1987 1988 1989 1998 1999
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MAURI
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Primera madurez sexual y talla al primer desove Tabla 14: Desembarque (kg) de la pesquería en el Lago Titicaca para el periodo Junio 2006 al Diciembre -2008. Desembarque
Desembarque
Desembarque
ESPECIES
2006 (Jun - Dic) Volumen (Kg)
%
2007 (Ene - Dic) Volumen (kg)
%
2008 (Ene-Dic) Volumen (kg)
%
ESPECIES NATIVOS
48.327,2
45,2
193.631,9
49,37
206.462,0
65,83
Genero orestias
46.066,2
43,1
184.985,6
47,17
199.800,1
63,71
Carachi Amarillo
Boga
26.492,3 11.293,3 545,6 7.735,0 0,0
24,8 10,6 0,5 7,2 0
74.374,5 19.531,5 588,5 90.491,0 0,1
18,96 4,98 0,15 23,07 0
68.804,4 21.178,1 1.852,2 107.965,3 0.1
21,94 6,75 0,59 34,43 0
Genero Trichomycterus
2.261,0
2,1
8.646,3
2,2
6.661,9
2,12
Mauri Suche
2.212,9 48,1
2,1 0
8.283,5 362,8
2,11 0,09
6.394,5 267,4
2,04 0,09
INTRODUCIDOS
58.505,7
54,8
198.559,9
50,63
107.156,3
34,17
Pejerrey
58.288,5 217,2
54,6 0,2
197.260,4 1.299,5
50,3 0,33
100.368,0 6.788,4
32 2,16
106.832,9
100
392.191,8
100
313.618,3
100
COMPOSICIÓN
Carachi Gris/Negro Carachi Enano/Gringo Ispi
Trucha TOTAL
Tabla 15: Desembarque (kg) de la pesquería de la pesquería en el lago Titicaca por estaciones (enero-diciembre) ESPECIE Boga Carachi gringo Ispi grande Pejerrey Trucha Carachi albus Carachi amarillo Carachi enano Carachi gris Mauri Suche TOTAL
VERANO 0 210 31.081,50 32.444,40 802,3 0 18.690,10 45,5 5.529,40 1.410,90 53,3 90267,4
OTOÑO 0 0 11.081,50 20.583,90 1.949,70 0 12.940,10 6,5 1.977,40 565,7 47,1 49151,9
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INVIERNO 0,1 620,5 61.612,50 26.587,70 2.440,20 5,5 15.156,30 40,7 4.825,30 2.122,40 114 113525,2
PRIMAVERA 0 714 4.189,80 20.752,00 1.596,20 0 22.017,90 209,5 8.846,00 2.295,50 53 60673,9
TOTAL 0,1 1544,5 107965,3 100368 6788,4 5,5 68804,4 302,2 21178,1 6394,5 267,4 313618,4
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DIAGRAMA 4: Cantidad extraida de especies ictiológicas del Lago Titicaca en (Kg) y de acuerdo a temporadas del clima. 70000 60000 50000 40000 30000 20000 10000 0 Boga
Carachi gringo
Ispi grande
Pejerrey
VERANO
OTOÑO
Trucha
Carachi amarillo
INVIERNO
Carachi gris
Mauri
Suche
PRIMAVERA
10.2. PRODUCCIÓN PESQUERA ARTESANAL: La pesca artesanal y la acuicultura son en la actualidad dos fuentes importantes de producción de alimentos para el consumo humano. El primer destino de la actividad pesquera es el autoconsumo, mientras tanto los excedentes y las especies de mayor valor son destinados al mercado. Las principales especies de pesca son el Karachi e ispi (nativas), pejerrey, (introducida), mientras que el mauri y la boga son mínimos o simplemente despreciables. La pesca de la trucha arco iris, durante los últimos 10 años, significa menos del 3% de la extracción total, siendo su mayor producción en jaulas y piscigranjas. TABLA 16: Cantidad de pescado que cada pescador puede capturar al año, este valor se determina del Recurso pesquero. ESPECIES:
Orestia ispi orestias agassi orestias luteus trichomycterus dispar Orestuas olivareus total
% DE CUOTA TOTAL CUOTA TOTAL POR CAPTURA TN/AÑO PESCADOR KG/AÑO
35 30 20
1050 900 600
280 240 160
10
300
80
5 100
150 3000
40 800
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DIAGRAMA 5: Gráfico que expresa en porcentajes, cuota total y cuota por pescador según especies. 1200 1000 800 600
% de captura
400 cuota total tn/año
200 0
cuota total por pescador kg/año
El volumen total estimado de extracción de especies nativas e introducidas en Puno para el período 1997-2008 es de 25.857.785 kg, con una tendencia decreciente en dicho período; sin embargo, se registró una producción excepcional de Karachi y pejerrey el año 2001 con 4.032.422 kg, cuyas especies son de la mayor importancia económica (DIREPRO-PUNO, 2008).
TABLA 17: Extracción mensual de especies icticas de Puno (kg)
PROVINCIAS
PUNO CHUCUITO EL CALLAO YUNYUGO HUANCANE MOHO AZANGARO LAMPA OTROS
NATIVAS
NATIVAS
NATIVAS
KARACHI
ISPI
MAURI
PEJERRY
TRUCHA
294.111 82.042 82.766 49.517 140.375 43.689 77.981 2.061 0
23.652 5.081 10.468 3.569 46.242 25.247 1.737 245 0
7.472 4.180 3.435 2.343 9.343 1.905 1.585 362 0
121.130 27.636 38.495 31.231 133.404 61.961 64.033 4.381 86
4.058 29.438 1.784 230 4.375 1.077 7.417 9.810 1.936
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INTRODUCIDAS INTRODUCIDAS
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DIAGRAMA 6: Extracción mensual de especies icticas de Puno (kg)
350,000 300,000 250,000 200,000
KARACHI ISPI
150,000
MAURI PEJERRY
100,000
TRUCHA 50,000 0
TABLA 18: Extracción trienal de recursos hidrobiológicos en Puno1997-2008 (en kilogramos) ESPECIES
1997-1999
2000-2002
2003-2005
2006-2008
768.171
1.114.971,00
1248762,67
1522969,01
288
661
0
0
135.262,57
851.243,33
854.237,67
686.352,67
47.120,50
224.421,00
371.896,00
819.163,67
mauri
1.070,65
38.701,67
22.629,00
17.452,67
suche
0,00
0,00
65.51,50
B INTRODUCIDAS
0 1.009.265,0 2
1.344.611,67
635.670,67
535.650,67
PEJERRY
993.979,00
1.314.561,67
555.973,00
464.921,00
TRUCHA
15.286,02
30.050,00
79.697,67
70.729,67
A NATIVAS
boga karachi ispi
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DIAGRAMA 7: Extracción trienal de recursos hidrobiológicos en Puno1997-2008 (en kilogramos)
1,600,000 1,400,000 1,200,000 1,000,000 800,000
1997-1999
600,000
2000-2002
400,000 200,000 0
2003-2005 2006-2008
CONCLUSIONES Se destacan las siguientes conclusiones:
Para realizar un enfoque sistemático referido a una clase de conservación de especies será necesario contar con datos actualizados sobre la alimentación, población, reproducción, habitad, distribución geográfica, morfología, entre otros factores que son particulares de las especies endémicas.
Para lograr la conservación y el manejo adecuado del trichomycterus dispar “mauri” es sumamente importante conocer la distribución
geográfica en donde habita y ello para saber el estado de conservación y la población de especímenes que hay. Para ello según bibliografía se establece que esta especie es propia del lago Titicaca no habiendo en otras partes del mundo, por tanto esta especie ictiológica nativa es fuente de genes que sirven para un buen desarrollo sustentable de nuestro ecosistema.
Si bien es cierto que existen diversas formas de reproducción artificial para los recursos hidrobiológicos una de las más económicas y sustentables para la pesquería artesanal que se da en nuestra región el
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el método Chaass con una incubadora rústica que se puede elaborar fácilmente, en los anexos están las indicaciones. Estos procesos reproductivos se basan en la misma metodología aplicada en la piscicultura para la crianza de truchas. Para que haya una buena fecundación para obtener más población de mauris es importante hacer un control de parámetros tales como la temperatura, la calidad del agua, entre otros aspectos que están relacionados al buen desarrollo i ctico.
Nuestro gobierno del Perú propuso dictámenes para la conservación de la especie trichomycterus dispar el 17 de setiembre de 1998 mencionando que se prohíbe la extracción de especies ícticas de “boga” y “mauri” en las aguas públicas del Lago Titicaca, esta información también está anexada a este documento.
Una de las más preocupantes problemáticas en esta última década es la amenaza de extinción en la que se encuentra el mauri , esto se debe a que en la década de los sesenta se hizo la introducción de especies exóticas como el pejerrey y la trucha que por ser peces de mayor tamaño se sirven de alimento al mauri y hay una competencia por el habitad. Se dice que el gobierno de ese año impulsó campañas de pesca donde promovía a las especies exóticas dejando de lado y no previendo futuros, casos como el actual, sobre nuestras especies nativas.
De acuerdo a datos estadísticos sobre la pesca artesanal para autoconsumo en nuestra región, ubica al ispi con mayor cantidad de consumo ascendiendo a 686.352 Kg entre los años 2006 – 2008; seguido del carachi con 686 352 Kg para los años 2006 – 2008; en tercer lugar se ubica el mauri con 17 452 Kg para los años 2006 – 2008. En comparación si se hace la sumatoria de especies nativas asciende a 1 522 969 Kg mientras que las especies introducidas están en una cantidad de 535 650 Kg para los años respectivos mencionados. Todo de acuerdo a los datos proporcionados por la DIREPRO-PUNO. Es necesario conocer estos datos para realizar gestiones necesarias y ver la realidad actual en la que se encuentra esta especie.
El PELT está realizando investigaciones al respecto no logrando resultados del todo positivos debido a que hay situaciones políticas que
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atrasan el buen desarrollo de actividades no sólo de investigación si no de su misma gestión.
Si se quiero realizar un criadero para la especie trichomycterus dispar según bibliografía lo más recomendable es hacerlo en estanques seminaturales que funcionen con agua de manantial o agua del lago y que se haga un control de parámetros de calidad del agua periódicamente. Otro método ideal es la incursión de granjas de piscicultura en el lago lo cual también dio resultados positivos y es lo que actualmente está realizando la PELT en su laboratorio de investigación ubicado en Chucuito, cabe mencionar que hay mucho más desarrollo de investigación avocada al carachi, siendo un tanto escasa para el mauri.
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ANEXOS
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BIBLIOGRAFÍA
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