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FICHA DE ANIMALES DE COMPAÑÍA propietario remitente: dirección envío informe: dirección envío factura: C.I.F.:
municipio
provincia tlfno.: fax: móvil: e-mail:
nº de cuenta:
ANIMAL especie: raza: edad: dias semanas animales enfermos/muertos: /
capa:
sexo: macho hembra id. animal: tiempo entre muerte y necropsia:
peso: años feto total animales en riesgo:
castrado
MARQUE O INDIQUE EL PROBLEMA CLÍNICO PRIMARIO aborto dermatología diarrea/entérico diagnóstico diferencial: ª 1 . c s n i , 7 7 9 4 1 a j o h , 9 2 1 o i l o f , 0 9 2 3 o m o t , a y a c z i V e d l i t n a c r e M o r t s i g e R l e n e a t i r c s n I 5 6 5 9 7 7 8 4 B : F I C . L . S T E V I G N U M A I R A N I R E T E V A C I T Í L A N A
músculo esqueleto/cojera neurológico reproductivo
respiratorio neoplasia muerte inesperada
falta de desarrollo urinario
HISTORIAL, HALLAZGOS CLÍNICOS/NECROPSIA, TRATAMIENTOS, ETC
Ventral
(use el reverso si necesario)
Dorsal
MUESTRAS ENVIADAS (Indique nº de muestras de cada órgano) fijado
fresco
corazón intestino grueso intestino delgado riñones hígado
ANALISIS SOLICITADOS:
fijado
fresco
g. linfático pulmones bazo tonsilas neoplasia
nº de animales enviados heces leche fluhido ocular sangre/plasma contenido estomacal
A menos que “a discreción del laboratorio” esté marcado, se realizarán exclusivamente los análisis solicitados.
a discreción del laboratorio necropsia con pruebas apropiadas necropsia microscopica sólo hastopatología citología cultivo bacteriano cultivo fúngico
parasitología serología toxicología uroanálisis virología antibiograma
PRECAUCIONES Las muestras para análisis microbiológicos se remitirán en torundas con medio de transporte (exudados, piel,....) o contenedores estériles (orina, heces,.piel,...). Las heces se extraerán directamente del recto. Las muestras sanguíneas se extraerán cuidadosamente, 5 c.c. de sangre, repartiendo 2 c.c. en el tubo con el anticoagulante EDTA y el resto en un tubo estéril. La coagulación se realizará a temperatura ambiente, conservando las muestras posteriormente en refrigeración (4 º C). La separación del suero sanguineo es una práctica que evita la hemólisis y permite prolongar la conservación del suero.
TOMA DE MUESTRAS PARA HISTOLOGÍA Es importante respetar las siguientes pautas: - manipular cuidadosamente el tejido, sin estirar ni comprimirlo más allá de lo indispensable. - evitar tanto la desecación como la autolisis fijando inmediatamente la muestra preferentemente en formol (una parte de formaldehído comercial al 40% más nueve partes de agua). La relación entre el volumen del formol y el de la muestra debe ser como mínimo de 3:1. - el grosor de la muestra no debe superar 1 cm. Si la muestra es mayor se pueden practicar cortes profundos o tomar varias porciones incluyendo siempre los márgenes de extirpación. - emplear contenedores herméticos, de boca ancha y preferiblemente de plástico.
la biopsia excisional:
es la técnica más adecuada para el estudio histopatológico de los nódulos y lesi ones cutáneas solitarias. En este caso se obtiene una elipse que debe contener la lesión y piel aparentemente sin afectar. Esta técnica también es de utilidad en dermatosis generalizadas. Tanto en este último caso como si la lesión es múltiple, es necesaria la toma de varias muestras, al igual que en los tumores de mama. En cuanto a la biopsia mediante aspiración con aguja, se emplea para muestrear lesiones superficiales y tejidos subcutáneos sólidos (no siendo adecuadas para las lesiones cutáneas vesiculares) así como para aspiración con aguja fina . En este último caso, se realizan una o, si es posible, varias extensiones que se dejan secar al aire. Posteriormente deben fijarse con metanol (o con el primer colorante de tinciones tipo Panóptico rápido). Se recomienda el envío de varios portas con el fin de poder realizar, en caso necesario, tinciones especiales para el análisis citológico.
la biopsia cutánea:
es una de las herramientas más útiles en dermatología. Esta indicada en aquellos casos en que la respuesta a la terapia inicial sea pobre, en lesiones de aspecto extraño o sospechosas de enfermedad severa, ante la posibilidad de lesiones neoplásicas, en úlceras persistentes. La correcta selección de la muestra es más crítica que el tamaño de ésta: - deben elegirse en primer lugar lesiones primarias (pústulas, máculas, pápulas, vesículas, nódulos, quístes) en sus variantes existentes e incluir también las secundarias (collaretes, costras, zonas alopécicas...). - cada caso debe incluir 3 ó 4 muestras para lesiones locales y el doble para lesiones difusas. Es conveniente incluir el margen entre la lesión y la piel sin afectar. - es conveniente incluir el margen entre la lesión y la piel sin afectar.
para realizar la biopsia cutanea:
- no afeitar la zona; emplear la tijera para depilar. Evitar la antisepsia prebiopsia, en especial con productos yodados (en caso necesario, lavar la zona con etand de 70º). - en la toma de muestras pequeñas evitar el electrocauterio. No utilizar trocar para muestrear vesículas y bullas. - en procesos crónicos conviene suspender la terapia con corticoides tres semanas previamente a la realización de la biopsia. - en el caso de piodermas bacterianas secundarias es recomendable la aplicación de antibioterapia sistémica antes de realizar la biopsia cutánea.
necropsias:
Dado que, para evitar la autolisis, la toma de muestras y fijación de las mismas debe de realizarse lo más rápido posible tras la muerte del animal, es preferible realizar ambas operaciones in situ, enviando posteriormente las muestras al laboratorio debidamente acondicionadas, que enviar el cadaver entero u órganos en fresco. Se aconseja remitir muestras de 1 cm de espesor de todos los órganos (pulmón, hígado, vesícula biliar, fragmentos intestinales, nódulos linfáticos, riñón, etc...) que incluyan las lesiones observadas macroscópicamente y el encéfalo completo. No es necesario utilizar envases individualizados para cada órgano.
ENVÍO DE LAS MUESTRAS Si se requieren exámenes parasitológicos y microbiológicos adicionales, es preferible enviar la muestra por duplicado, es decir, una parte fijada y otra en fresco, con el fin de evitar el deterioro para el examen histopatológico. Se deben emplear contenedores herméticos de boca ancha y preferentemente de plástico, con un volumen de formol al menos 3 veces superior al de la muestra. Los contenedores, correctamente identificados, deben enviarse acompañados de un completo historial que incluya los datos del animal, su historia clínica, la descripción de las lesiones y su localización, el resultado de la analítica anteriormente realizada, los tratamientos empleados y la respuesta a éstos. Aunque el transporte de las muestras puede re alizarse por e l medio que uste d elij a, suge rimos el ser vicio Seur 24 horas a portes debidos (tel. 902101010). Alternativamente, puede solicitar la recogida de las muestras llamando directamente a nuestro laboratorio (tel: 946744251).
HISTORIAL CLÍNICO
