Test de Graham Corregido

INFORME PARASITOLOGIA Tema : Test de Graham Docente : Jesús Vázquez Porras Alumnos: Boza Huaroc Paul Arturo Yance Maribel Garay Monago Fecha de entrega : 14 – 05 - 2013

1

ESCRIBA EL TÍTULO DEL DOCUMENTO

Trusted by over 1 million members

Try Scribd FREE for 30 days to access over 125 million titles without ads or interruptions! Start Free Trial Cancel Anytime.





Tabla de contenido

1. Introducción Introducción………………………… …………………………3 3 2. Fundamento………………………… Fundamento…………………………4 4 2.1 Ciclo vital y morfología…….5 morfología…….5 3. Objetivo……………………………… Objetivo………………………………..6 ..6 4. Materiales…………………………… Materiales…………………………….7 .7 5. Técnica operatoria………... operatoria……….............8 ..........8 5.1. Observaciones………………8 5.2. Procedimiento……………… Procedimiento………………8 8 5.3. Imágenes de ……………...procedimiento……………….9 ……………... procedimiento……………….9 6. Conclusiones……………………… Conclusiones………………………10 10 7. Bibliografí Bibliografía a y anexos….………..11





1) Introducción: El Enterobius vermicularis es un nemátodo que causa oxiuriasis o enterobiasis, y es una de las parasitosis intestinales más frecuentes en todo el mundo (Ixora Requena-Certad, Vishna Lizardi, Luz Mery Mejía , Hector Castillo , Rodolfo Devera, 2002) pag 232, también se le conoce vulgarmente como oxiuro o pidulle , este parasito produce diversas molestias, entre las que se destacan el prurito anal y las perturbaciones nerviosas. Sinonimia: Oxiurasis, pinworm o threadworm (Atías, 1994) pag 188, Es por esto que la búsqueda de huevos se efectuara mediante el método de Graham en la región perianal con cinta transparente o papel scotch (Atías, 1994) pag 192.





2) Fundamento: Después de la cópula, los machos son eliminados con las heces y las hembras grávidas, en vez de colocar sus huevos en el lumen intestinal para su eliminación al medio exterior con las heces del hospedero, como hacen otros helmintos parásitos, emprenden una larga perenigración a lo largo de todo el intestino grueso y atraviesan el esfínter anal. En el ambiente exterior, disminuye su movilidad, sufre violentas contracciones que rematan con la eliminación de los huevos, los cuales son colocados en grupos y aglutinados con una sustancia pegajosa que los adhiere momentáneamente a la región perianal y cara interna de los muslos, alcanzando un área hasta de 6 cm del ano. Esta migración de las hembras y la postura de huevos ocurre en las ultimas horas de la tarde y en la noche. Luego de la postura, la hembra muere. Si bien los huevos larvados no son infectantes en el momento mismo de la postura, presentan una maduración extraordinariamente rápida, pues necesitan solo unas 6 horas a la temperatura del cuerpo

y de unas treinta y seis horas a 20 C para llegar a ser infectantes. Cada hembra de oxiuro coloca alrededor de 11.000 huevos, muy livianos, los cuales, luego que se ha secado la sustancia aglutinante que los mantenía adheridos a la piel, se diseminan en la ropa interior y de cama, el suelo y otras superficies. El hombre se infecta a través de la vía digestiva por ingestión e inhalación de los huevos del parasito. Los jugos digestivos disuelven sus envolturas y la larva se desarrolla a nivel del ciego, diferenciándose en macho o hembra. La vida del oxiuro en el intestino es alrededor de tres meses. Además de la vía digestiva, se ha descrito la infección directa por vía digestiva, se ha descrito la infección directa por vía rectal o retro infección: algunos huevos colocados en la región perianal, estallan y las larvas resultantes pueden migrar al intestino a través del esfínter anal y luego de recorrer el colon instalan en el ciego, alcanzando allí su madurez. (Atías, 1994) pag 189.





El parasito adulto es pequeño y recuerda un fragmento del hilo de algodón. El macho mide de 2 a 5 mm de largo, y su diámetro mayor es vecino de 0.2 mm; el extremo caudal es curvo. La hembra puede medir hasta 13 mm de largo y 0.5 mm de grueso. A ambos lados de la cabeza, se encuentra una pequeña expansión estriada. El cuerpo de la hembra grávida esta llena de huevecillos. En esta etapa, la hembra migra hasta el ano o más allá, y pone sus huevecillos en la piel perianal. Los huevecillos miden aproximadamente 50 X 20 u y son ovales, con una cara aplanada en forma característica; presentan una capsula de quitina gruesa, en cuyo interior puede verse un embrión enrollado, que abecés se mueve. Los huevecillos son llevados por los dedos del paciente, y puede producirse re infestación o infestación de terceros. (DR. Matthew J. Lynch, DR. Stanley S. Raphael, DR. Leslie D. Mellor, DR. Peter D. Spare, DR. Martin J. H. Inwood, 1972) 1972) pag 1054 - 1055





3) Objetivo: La técnica de Graham tiene por objetivo adherir los huevos a la cinta adhesiva transparente, la que se extenderá posteriormente en una lámina portaobjeto para su observación microscópica (Instituto Nacional de Salud, 2003)pag 52.







4) Materiales:

a) Láminas portaobjetos desengrasadas b) Cinta adhesiva (engomada) transparente de 12 cm de largo por 1 centímetro de ancho c) Solución salina o tolueno d) Microscopio e) Aplicador (baja lengua) f) Guantes (2) g) Mascarilla

(1)





5) Técnica operatoria 5.1)

Observaciones La obtención de la muestra se realiza en la noche, 2 a 3 horas después que el paciente (generalmente niños) este dormido, o a la mañana siguiente y sin que se haya realizado el aseo en la región perianal (esto implica también el uso de talco, aceite o sustancias que intervengan con el resultado) . El paciente debe Nacional estar inclinado exponiendo la región glútea. (Instituto Nacional de Salud, 2003) pag 52 sección 8

5.2)

Procedimiento a) Pegar la cinta adhesiva en la lámina portaobjeto, dejando que sobresalgan ambos extremos de la cinta(4). b) Colocar el lado plano del baja lengua debajo del portaobjeto(4). c) Separar la cinta adhesiva del portaobjeto con suavidad y doblarla sobre le extremo del mango del baja lengua, de tal modo que la parte pegante quede hacia fuera(4). d) Sostener el extremo formado (baja lengua y la cinta adhesiva) con la mano derecha, presione firmemente el portaobjeto contra el mango del baja lengua(4). e) Separar con la mano izquierda las nalgas del paciente. Aplicar presionando el extremo del baja lengua cubierto con la cinta adhesiva, en varios sitios de la piel que rodea el ano(4).





5.3)

Imágenes de procedimiento

a)

b)

c)

d)





6) Conclusiones Se sabe que el test de Graham es un método utilizado en laboratorio para la detección de oxiuros, y por tal motivo se debe tener criterio al momento de la toma de muestra, de no ser así los resultados podrían ser erróneos y perjudicar al paciente , en nuestra opinión (Boza Huaroc Paul Arturo, Yance Maribel Garay Monago), la capacitación de quien vaya a tomar la muestra es muy importante para el diagnostico, y debe tener en cuenta lo siguiente.

El test de Graham habrá de realizarse cuando haya sospechas clínicas y prurito anal. Mayormente afecta ah niños La hora adecuada para la toma de muestra será en la noche o de madrugada cuando la larva hembra haya migrado hacia el ano para poner sus huevecillos.

No realizar un aseó previo en la zona de donde se le extraerán los huevecillos, ni tampoco aplicar crema, talco, aceites u otras sustancias que interfieran con la identificación de estos. El sitio indicado para la toma de muestra será la región perianal.





7) Bibliografía

Ixora Requena-Certad, Vishna Lizardi, Luz Mery Mejía , Hector Castillo , Rodolfo Devera. (2002). Infección por Enterobius vermicularis en niños preescolares de Ciudad Bolívar, Venezuela. Revista Biomédica , 13 (4), 10. Atías, A. (1994). Enterobiosis. En A. Atías, Parasitología Médica (Tercera ed., pág. 618). Chile, Santiago, Chile: Mediterraneo. Ministerio de Salud. (1997). Procedimientos de Laboratorio. En I. N. Salud, & C. P.-B. 3701.PE (Ed.), Procedimientos de Laboratorio (págs. 241-244). Perú. Instituto Nacional de Salud. (2003). Manual de Procedimientos De Laboratorio Para El Diagnostico De Los Parasitos Intestinales Del Hombre (Vol. Nro 37). (D. L. García, Ed.) Lima, Lima, Perú. DR. Matthew J. Lynch, DR. Stanley S. Raphael, DR. Leslie D. Mellor, DR. Peter D. Spare, DR. Martin J. H. Inwood. (1972). Metodos de Laboratorio (Segunda edición ed., Vol. 1). (Interamericana, Ed., & D. R. Fabre, Trad.) México, Mexico, Mexico: INTERAMERICANA. Anexos http://medicalimages.wordpress.com/2011/10/13/medical-images2/pinworm-enterobius_vermicularis/ (Sobre imagen de portada pag 1) http://www.crecerfeliz.es/var/ezflow_site/storage/images/muyutil/enfermedades-infantiles/lombrices-ninos/320010-2-esl-ES/lombricesninos_articulo_landscape.jpg (imagen de la pag 4 – Fundamento) http://parasitologiajmv-hilda.blogspot.com/2010/10/nematelmintos-parasitosenterobius.html (imagen de la pag 4 – Fundamento) http://www.buzzle.com/articles/symptoms-of-pinworms.html (imagen de la pag 4 – Fundamento) http://www.microbeworld.org/images/stories/twip/adult_female_enterobius_v ermicularis_h.jpg - (imagen de la pag 5)

Test de Graham Corregido

Recommend Documents