Muestreo de Anfibios y Reptiles

Técnicas de Muestreo y Monitoreo ANFIBIOS & REPTILES Dr. Raúl Maneyro TECRENAT Facultad de Ciencias 2008

INVENTARIO y MONITOREO Inventario:

riqueza a – ár área eass poc pocoo con conoc ocid idas as b – bú búsq sque ueda da de un unaa esp espec ecie ie c – co comp mpar arac ació iónn entr entree regi region ones es

Monitoreo: Monitoreo:

riqueza y abundancia a - en un si siti tioo (te (temp mpor oral al)) b – en var vario ioss siti sitios os (es (espa paci cial al)) c – es espa paci cioo-te temp mpor oral al

INVENTARIO y MONITOREO Inventario:

riqueza a – ár área eass poc pocoo con conoc ocid idas as b – bú búsq sque ueda da de un unaa esp espec ecie ie c – co comp mpar arac ació iónn entr entree regi region ones es

Monitoreo: Monitoreo:

riqueza y abundancia a - en un si siti tioo (te (temp mpor oral al)) b – en var vario ioss siti sitios os (es (espa paci cial al)) c – es espa paci cioo-te temp mpor oral al

OBJETIVO DE LOS ESTUDIOS Presencia de especies (lista de especies) Abundancia y distribución de determinada especie (en el espacio y/o el tiempo) Patrones de diversidad y procesos evolutivos asociados

CONSIDERACIONES GENERALES Escala: adecuación en función de objetivos Ej: - Número de individuos en un charco - Nú Núme mero ro de de indi indivi vidu duos os en en un áre áreaa - Núm Número ero de ind indivi ividu duos os en en un eco ecosis sistem temaa Restricciones Los ambientes no son homogéneos “El azar también existe”

Aleatoriedad: comparación entre estudios - reconocer la variación (estratificar) - ignorarla y realizar muestreo aleatorio Réplicas: intervalos de confianza minimiza factores localizados - las réplicas son randómicas - las muestras son independientes Importante Tamaño de muestras

TIPO DE MUESTREOS Directos: se ve al animal - sin captura - con captura

manual trampas

Indirectos: no se ve al animal - vocalizaciones - “rastros” (nidos, cuevas, mudas)

TÉCNICAS CUALI Y CUANTITATIVAS • Inventarios de especies • Muestreos por encuentro visual • Muestreos auditivos • Transectos • Cercos de deriva con trampas

Inventarios de especies Interesan todas las especies largos períodos de muestreos alta intensidad de muestreo Objetivo: compilación de listas de fauna Fuentes: Colecciones Bibliografía Datos de campo

Análisis: curvas de riqueza acumulada 20   a 16    d   a    l   u   m12   u   c   a   a   z 8   e   u   q    i    R 4

0 0

20

40

60

80

N°de salida de campo

100

120

140

Muestreos por encuentro visual Interesan los individuos unidad temporal de muestreo (h/h) requiere visibilidad Objetivo: riqueza y abundancia relativa Fuentes: Trabajo de campo Restricciones: no sirve para densidad C–M–R

Supuestos: todos los individuos son = visibles todas las especies son = visibles visibilidad = entre muestreos cada individuo es contado una vez no hay “efecto de observador”

Muestreos auditivos (anfibios) Interesan los machos de cada especie Objetivo: riqueza abundancia relativa de machos uso microhábitat fenología reproductiva Fuente: Trabajo de campo Restricciones: deben conocerse los cantos

Supuestos: cada individuo es contado una vez cada individuo canta en una faja la detectabilidad es constante la detectabilidad media es válida todo hábitat es muestreado

Campo del abasto

SP1 Pasp

Monte Ch. temporal Ch. permanentes Ch. semi-permanentes Monte inundable Pajonales Praderas inundables

M

SP2

Pa2

P2 T

C2 Pa1

Ma2 Ma3p

C1 P1

C3 P3

Pa3p

Ma3d Pa3d

8     

5   

3 11 0      3      1

Transectos Interesan todos los individuos unidad espacial de muestreo (faja) detecta gradientes ambientales Objetivo: riqueza de especies abundancia y densidad comparaciones espacio-temporales Fuente: Trabajo de campo

Diseños de transectos a – en gradientes

- H vs riqueza - media & varianza - densidad

Diseños de transectos b – en ambientes homogeneos

Cercos de deriva con trampas Interesan todos los individuos unidad espacial de muestreo (sistema) detecta gradientes ambientales Objetivo: riqueza de especies abundancia y densidad comparaciones espacio-temporales Fuente: Trabajo de campo Restricciones: no todas las especies tienen igual capturabilidad

Sistemas de trampas “pit – fall”

Alambre uniendo los piques (opcional) Nivel del terreno

OTRAS TÉCNICAS DE TRABAJO • Captura – Marcaje – Recaptura • Dinámica reproductiva • Estudio Parámetros ecofisiológicos • Muestreos de larvas • Análisis de vocalizaciones

Captura – Marcaje – Recaptura Objetivos: abundancia absoluta estudios comportamentales 1 - Captura: manual (tendencia a capturar machos) trampas (no selectivo) 2 – Se marca y se libera 3 – Nuevo(s) evento(s) de captura

Tipos de marcas Toe - clipping

7000

4000

400

2000

700

200

1000 100

50

5 4

3

2

1

10 20

30

40

Uso de elastómeros

Señales

Marcas

Recaptura Método de Petersen R = r X n m r = n° animales capturados en t = 1 n = n° animales capturados en t = 2 m = n° animales marcados en t = 2 Poblaciones cerradas Distribución homogénea Método de Bailey ( m < 10)

R = r X (n +1 ) (m + 1)

Dinámica reproductiva Objetivo: biología reproductiva de poblaciones y/ ensambles Métodos indirectos: vocalizaciones y nidos 1

Chfer  Chsch  Matro  Legra  Lelat  Lemys  Lepoc  Odam  Phbil  Phcuv  Pfal  Dsan  Hypul  Pihe  Pmin  Scfus  Scgra  Scsq  Elov 

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20 4 4 3 10 10 7 7 9 3 5 14 17 15 2 19 4 8 18 4

Modelo de fenología comunitaria

Métodos directos: captura de ejemplares Índices FTO = CO X DO CO = complemento ovárico DO = media del diámetro LHC LHC = tamaño del animal Inversión reproductiva = peso del ovario LHC Análisis gonadales con técnicas histológicas

Estudios ecofisiológicos Objetivos: autoecología • Dieta • Uso de hábitat • Fisiología digestiva

Muestreo de larvas Objetivos: estructura y dinámica de poblaciones y ensambles • Riqueza • Abundancia relativa y absoluta • Densidad

Tabla de Gosner (anuros)

Análisis de vocalizaciones Objetivos: historia natural ecología sistemática

Canto de H. leucophyllata 

(Lougheed et al. 2006)

PREPARACIÓN DE ANFIBIOS Y REPTILES CON FINES CIENTÍFICOS

COLECTA Ética

Normativa

Fines y objetivos

SACRIFICIO Anestésicos Ketamina 50 mg/ml – 100 a 150 mg/kg (intraperitoneal) Xilocaína (tópico) Eter sulfúrico Gas carbónico Congelación Inyección alcohol 70 %

PROCEDIMIENTOS PREVIOS Búsqueda de ectoparásitos Extracción de tejidos (alcohol 96%) Eyección de hemipenes FIJACIÓN Inyección de Formol 10% Lavado - etiquetado Conservación el alcohol