TEKNIK DAN ANALISA USAHA PEMBENIHAN UDANG VANAME DI PT CENT AL PERTIWI BAHARI BREEDING OP RATION DE A SUAK, KECAMATAN SIDOMULYO, LAMPUNG SELATAN
Oleh : Willyarta Yudisti NRP : 4408418277
APORAN PRAKTEK INTEGRASI USULAN PRAKTEK AKHIR
PROGRAM DIPLOMA 4 PRO RAM STUDI TEKNOLOGI AKUAKULTUR JURUSAN TEKN LOGI PENGELOLAAN SUMBERDAY PERAIRAN SEKOLAH TINGGI PERIKANAN JAKARTA 2011
TEKNIK DAN ANALISA USAHA PEMBENIHAN UDANG VANAME DI PT CENT AL PERTIWI BAHARI BREEDING OP RATION DE A SUAK, KECAMATAN SIDOMULYO, LAMPUNG SELATAN
Oleh : Na a
: Willyarta Yudisti
NRP
: 4408418277
Pr gram studi
: Teknologi Akuakultur
LAPORAN PRAKTEK INTEGRASI Sebagai Salah Satu Syarat Un uk Mengikuti Perkuliahan Semester VII Pada Sekolah Tinggi Perikanan
PROGRAM DIPLOMA 4 PRO RAM STUDI TEKNOLOGI AKUAKULTUR JURUSAN TEKN LOGI PENGELOLAAN SUMBERDAY PERAIRAN SEKOLAH TINGGI PERIKANAN JAKARTA 2011
i
LEMBAR PENGESAHAN Nama
:
Willyarta Yudisti
NRP
:
4408418277
Judul
:
Teknik dan Analisa Usaha Pembenihan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) di PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation Desa SuakSidomulyo, Lampung Selatan
Program Studi
:
Teknologi Akuakultur
Jurusan
:
Teknologi Pengelolaan Sumberdaya Perairan
Menyetujui :
( Dra. Hj Rachmatun Suyanto.) Pembimbing
(Amyda Suryati Panjaitan, A.Pi.) Pembimbing
Mengetahui :
(Sinung Rahardjo, S.Pi, M.Si) Ketua Jurusan
Tanggal Pengesahan : ……..………………
(Maria Goreti Eny K, S.St.Pi.M.MPi) Ketua Program Studi
ii
Kata Pengantar
Laporan pratek integrasi ini merupakan bentuk pertanggungjawaban atas hasil pelaksanaan praktek integrasi yang dilaksanakan pada tanggal 5 Mei 2011 sampai dengan 3 Juli 2011. Dengan selesainya laporan praktek integrasi
ini tak lupa penulis
memanjatkan puji serta syukur kehadirat Allah swt. Judul dari Praktek Integrasi ini adalah “Teknik dan Analisa Usaha Pembenihan Udang Vaname di PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation Desa Suak Kecamatan Sidomulyo Lampung Selatan”.
Penulis menyadari bahwa di dalam penulisan laporan integrasi ini masih terdapat kekurangan. Oleh karena itu, penulis menerima segala saran, pendapat maupun kritik yang dapat memperbaiki untuk kesempurnaan isi laporan ini. Semoga laporan ini dapat bermanfaat bagi pembaca dalam rangka pengembangan dan pengelolaan sumberdaya perikanan yang berkesinambungan hingga masa yang akan datang.
Jakarta, Agustus 2011
Penulis
iii
Ucapan Terima Kasih
Penulis mengucapkan terima kasih kepada Dra. Hj. Rachmatun Suyanto dan Ibu Amyda Suryati Panjaitan, A.Pi. Selaku dosen pembimbing yang telah memberikan bimbingan, arahan dan semangat dalam penyusunan laporan praktek integrasi ini. Ucapan terima kasih juga disampaikan kepada Yth: 1. Bapak Dr. Aef Permadi, S.Pi, M.Si selaku Ketua Sekolah Tinggi Perikanan 2. Bapak Sinung Rahardjo, A.Pi, M.Si selaku Ketua Jurusan Teknologi Pengelolaan Sumberdaya Perairan. 3. Ibu Maria Goreti Eny K, S.St.Pi, M.MPi selaku Ketua Program Studi Teknologi Pengelolaan Sumberdaya Perairan. Dan kepada seluruh pihak terkait yang ikut membantu dalam penyelesaian laporan praktek integrasi ini.
iv
DAFTAR ISI
Halaman LEMBAR PENGESAHAN ................................................................................... i KATA PENGANTAR ........................................................................................... ii UCAPAN TERIMA KASIH ............................................................................... iii DAFTAR ISI ......................................................................................................... iv DAFTAR GAMBAR ........................................................................................... vii DAFTAR TABEL .............................................................................................. viii BAB 1 PENDAHULUAN ..................................................................................... 1
1.1. Latar Belakang ..................................................................................... 1 1.1. Tujuan................................................................................................... 2 1.2. Batasan Masalah ................................................................................... 3 BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA ............................................................................ 4
2.1. Biologi Udang Vaname ........................................................................ 4 2.1.1. Klasifikasi dan Morfologi ...................................................... 4 2.1.1. Habitat dan Penyebaran ......................................................... 5 2.1.2. Siklus Hidup dan Reproduksi ................................................ 5 2.1.3. Pakan dan Kebiasaan Makan ................................................. 6 2.1.4. Pergantian Kulit (Molting) ..................................................... 7 2.1.5. Perkawinan ............................................................................. 8 2.1.6. Maturasi ................................................................................. 8 2.1.7. Pemijahan dan Penetasan Telur ............................................. 9 2.2. Pemilihan Lokasi Hatchery ................................................................ 10 2.3. Penyediaan Air Pemeliharaan ............................................................ 11 2.4. Pengelolaan Induk .............................................................................. 12 2.4.1. Wadah Pemeliharaan Induk ................................................. 12 2.4.2. Pengangkutan dan Aklimatisasi Induk ................................. 13 2.4.3. Manajemen Pemberian Pakan Induk .................................... 14 2.4.4. Manajemen Kualitas Air Pemeliharaan Induk ..................... 15 2.5. Pemeliharaan Larva ............................................................................ 15
v
2.5.1. Persiapan Wadah Pemeliharaan Larva ................................. 15 2.5.2. Penebaran Nauplii ................................................................ 17 2.5.3. Pengelolaan Pakan ............................................................... 17 2.5.4. Perkembangan Larva............................................................ 18 2.5.5. Kualitas Air .......................................................................... 20 2.5.6. Hama dan Penyakit .............................................................. 22 2.5.7. Pencegahan Hama dan Penyakit .......................................... 22 2.6. Kultur Pakan Alami ............................................................................ 23 2.6.1. Kultur Fitoplankton .............................................................. 23 2.6.2. Penetasan Artemia................................................................ 27 2.7. Panen dan Transportasi Benur............................................................ 29 2.8. Analisa Usaha ..................................................................................... 30 2.8.1. Perkiraan Laba Rugi............................................................. 31 2.8.2. Aliran Kas ............................................................................ 31 2.8.3. Analisa Investasi .................................................................. 31 2.8.4. Break Even Point (BEP) ...................................................... 33 BAB 3 METODOLOGI ...................................................................................... 34
3.1. Waktu dan Tempat Praktek Integrasi ................................................. 34 3.2. Alat dan Bahan ................................................................................... 34 3.2.1. Alat....................................................................................... 34 3.2.2. Bahan ................................................................................... 35 3.3. Metode Kerja ...................................................................................... 36 3.3.1. Metode Pengumpulan Data .................................................. 36 3.3.2. Metode Analisis Data ........................................................... 48 BAB 4 KEADAAN UMUM LOKASI ............................................................... 51
4.1. Lokasi ................................................................................................. 51 4.2. Sumber Daya Manusia dan Struktur Organisasi ................................ 52 4.3. Kapasitas Produksi dan Wilayah Pemasaran ..................................... 53 4.4. Fasilitas............................................................................................... 53 4.4.1. Maturation and Nauplii Production Departement (MNPD) 54 4.4.2. Fry Production Departement (FPD) .................................... 55 4.4.3. Departemen Pengelola Air ( Water Departement) ................ 55 4.4.4. Biofeed Departement............................................................ 56 4.4.5. Departemen Pengendali Mutu (Quality Control)................. 56
vi
4.5. Sumber Tenaga Listrik ....................................................................... 57 4.6. Alur Produksi ..................................................................................... 57 BAB 5 HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................... 59
5.1. Penyediaan Air Pemeliharaan ............................................................ 59 5.2. Pemeliharaan Induk ............................................................................ 62 5.2.1. Persiapan Ruangan dan Media Pemeliharaan ...................... 62 5.2.2. Pematangan Induk ................................................................ 63 5.3. Produksi Nauplii ................................................................................. 66 5.3.1. Persiapan Bak dan Media Penetasan .................................... 66 5.3.2. Pemilihan Induk Mating dan Penetasan Telur ..................... 67 5.3.3. Penampungan Nauplii .......................................................... 71 5.3.4. Sampling Kualitas dan Kuantitas Nauplii ............................ 73 5.3.5. Panen Nauplii dan Transportasi Nauplii .............................. 75 5.4. Produksi Benur ................................................................................... 76 5.4.1. Persiapan Bak dan Media Pemeliharaan .............................. 76 5.4.2. Penebaran Nauplii ................................................................ 77 5.4.3. Pengamatan Perkembangan dan Kesehatan Larva ............... 77 5.4.4. Pemberian Pakan .................................................................. 78 5.4.5. Manajemen Kualitas Air ...................................................... 80 5.4.6. Panen Benur ......................................................................... 82 5.4.7. Pengemasan dan Transportasi Benur ................................... 82 5.5. Kultur Pakan Alami ............................................................................ 83 5.5.1. Kultur Fitoplankton .............................................................. 84 5.5.2. Penetasan Artemia................................................................ 85 5.6. Analisa Usaha ..................................................................................... 86 5.6.1. Perkiraan Laba Rugi............................................................. 86 5.6.2. Aliran Kas ............................................................................ 87 5.6.3. Analisa Investasi .................................................................. 88 5.6.4. Break Even Point (BEP) ...................................................... 91 BAB 6 KESIMPULAN DAN SARAN ............................................................... 93
6.1. Kesimpulan......................................................................................... 93 6.2. Saran................................................................................................... 93 DAFTAR PUTAKA ............................................................................................ 94
vii
DAFTAR GAMBAR
Gambar 1. Lokasi PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation ....................... 51 Gambar 2. Struktur Organisasi Perusahaan .......................................................... 53 Gambar 3. Ruangan Dalam Maturation and Nauplii Production Departement ... 55 Gambar 4. Bagan Alur Produksi Perusahaan ........................................................ 58 Gambar 5. Injeksi Kaporit Menggunakan Dosing ................................................ 60 Gambar 6. Sand Filter I dan II .............................................................................. 61 Gambar 7. Penampang Insang pada Induk Mati ................................................... 65 Gambar 8. Induk Matang dan Mating ................................................................... 68 Gambar 9. Penomoran pada Bak Penetasan .......................................................... 69 Gambar 10. Perbedaan Telur Fertil (a) dan Non Fertil (b) ................................... 71 Gambar 11. Penomoran Bak Penampungan Nauplii ............................................ 72 Gambar 12. Grafik pH Air Bak C25 Selama Pemeliharaan.................................. 81 Gambar 13. Grafik Kadar TAN pada Bak C25 ..................................................... 81 Gambar 14. Grafik Kadar Amonia pada Bak C25 ................................................ 82 Gambar 15. Pakan Alami yang Digunakan Selama Praktek ................................. 83 Gambar 16. Hatching Rate Artemia pada Beberapa Wakru Setelah Kultur ......... 85 Gambar 17. Grafik BEP Produksi dan Harga Benur............................................. 91
viii
DAFTAR TABEL
Tabel 1. Stadia Perkembangan Larva Litopenaeus vannamei .............................. 18 Tabel 2. Komposisi Pupuk Kultur Alga Skala Masal ........................................... 25 Tabel 3. Komposisi Pupuk Alga Skala Intermediate ............................................ 26 Tabel 4. Komposisi Pupuk Alga Murni (Guilard f/2 Medium) ............................ 26 Tabel 5. Alat yang Digunakan Selama Praktek .................................................... 34 Tabel 6. Daftar Bahan yang Digunakan Selama Praktek ...................................... 35 Tabel 7. Klasifikasi Karyawan Berdasarkan Latar Belakang Pendidikan ............ 52 Tabel 8. Contoh Pemberian Pakan pada Bak C25 ................................................ 79 Tabel 9. Daftar Bunga dan Angsuran SetiapTahun .............................................. 86 Tabel 10. Proyeksi Laba Rugi Selama 6 Tahun .................................................... 87 Tabel 11. Aliran Kas Usaha Selama 6 Tahun ....................................................... 87 Tabel 12. Kas Masuk Bersih dan Akumulasi Kas Bersih ..................................... 88
1
BAB 1 PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang Budidaya udang di Indonesia mulai berkembang pesat sejak tahun 1980 – an. Pada awalnya jenis udang yang dibudidayakan di Indonesia adalah udang windu (Penaeus monodon) yang merupakan udang asli Indonesia. Namun, karena serangan virus di tambak sejak tahun 1990 yang dikenal dengan sebutan WSSV (White Spot Syndrom Virus), produksi udang windu mengalami penurunan. Oleh karena itu, pada tahun 2001 Menteri Kelautan dan Perikanan mengintroduksi induk udang vaname (Litopenaeus vannamei) asal Amerika Selatan dan Hawai untuk meningkatkan kembali produksi udang nasional. Udang yang habitat aslinya di pantai dan laut Amerika Latin, seperti Meksiko dan Peurtrico ini telah diimpor oleh berbagai negara di Asia seperti Cina, Thailand, India, Bangladesh, Malaysia, dan Vietnam. Daya tariknya terletak pada ketahanannya terhadap penyakit dan tingkat produktifitas yang dapat dicapai. Udang ini memiliki beberapa keunggulan antara lain dalam hal kebutuhan kandungan protein yang relatif rendah, tumbuh cepat, toleran terhadap suhu air dan oksigen terlarut yang relatif rendah, dan mampu memanfaatkan seluruh kolom air dibanding udang windu. Selain itu, udang ini dapat matang gonad di tambak (Cholik dkk, 2005). Udang termasuk komoditas utama selain rumput laut yang diprogramkan dalam revitalisasi perikanan budidaya nasional. Teknologi budidaya udang telah banyak dikuasai dan berkembang dalam masyarakat. Peluang pasar udang untuk
2
ekspor serta serapan pasar luar negeri tinggi. Akan tetapi, potensi serapan pasar dalam negeri belum terkelola dengan maksimal. Semenjak budidaya udang vaname mendapat legalitas dari pemerintah, kebutuhan induk vaname dalam negeri pun mengalami peningkatan. Hal ini untuk memenuhi kebutuhan benur yang terus menerus meningkat. Benur yang diharapkan di pasar adalah benur yang berkualitas sehingga dapat menghasilkan udang yang berkualitas juga. Dalam memproduksi benur yang berkualitas diperlukan menajemen dan pengelolaan induk yang baik dari segi genetik, nutrisi, maupun lingkungan hidupnya. Melalui kegiatan pembenihan yang baik dan sesuai dengan kaidah yang ditetapkan, diharapkan dapat menghasilkan benur yang baik sesuai dengan permintaan pasar. Seluruh usaha pembenihan tidak lepas dari persoalan biaya. Suatu usaha tidak akan terlaksana apabila tidak ada sumber biaya yang mencukupi. Sehingga sebelum melakukan suatu usaha, suatu analisa keuangan sangat dibutuhkan untuk mengetahui kelayakan usaha tersebut. Berdasarkan latar belakang di atas, maka penulis tertarik untuk mempelajari teknik dan analisa usaha pembenihan udang vaname. Oleh karena itu, dalam pelaksanaan praktek integrasi ini penulis mengambil judul “ Teknik dan Analisa Usaha Pembenihan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) di PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation di Desa Suak – Sidomulyo Lampung Selatan”.
1.1. Tujuan a. Mengkaji penerapan teknik pembenihan udang vaname dari awal sampai akhir produksi.
3
b. Mempelajari analisa usaha pembenihan udang vaname. 1.2. Batasan Masalah Dalam praktek integrasi ini penulis membatasi masalah pada 1) Teknik pembenihan udang vaname yang meliputi pemeliharaan induk, penetasan telur, pemeliharaan larva, pemberian pakan alami dan pakan buatan, pengamatan kualitas air, serta pemanenan benur. 2) Analisa usaha pembenihan udang vaname yang meliputi proyeksi laba rugi, aliran kas, payback period, Net Present Value (NPV), Internal Rate
of Return, BC Ratio, dan Break Even Point.
4
BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Biologi Udang Vaname 2.1.1. Klasifikasi dan Morfologi Wyban dan Sweeney (1991) menggolongkan udang vaname dalam klasifikasi sebagai berikut: Phylum
: Arthropoda
Class
: Crustacea
Subclass
: Malacostraca
Seri
: Eumalacostraca
Superordo
: Eucarida
Ordo
: Decapoda
Subordo
: Dendrobrachiata
Infraordo
: Peneaeidea
Superfamily
: Penaeoidea
Family
: Penaeidae
Genus
: Penaeus
Subgenus
: Litopenaeus
Species
: Litopenaeus vannamei Udang vaname merupakan kelas krustasea dan termasuk kedalam ordo
dekapoda bersama udang, lobster, dan kepiting. Sesuai dengan namanya, hewan ini memiliki 10 kaki dan memiliki karapas yang berkembang baik yang menutupi kepala dan dada yang menyatu. Udang vaname termasuk kedalam famili penaeidae. Udang penaeid berbeda dengan ordo dekapoda lainnya, karena udang
5
ini menetas pertama kali menjadi stadia nauplius, dan induk betina melepaskan dan membiarkan telurnya menetas begitu saja dalam air. Udang ini juga memiliki
rostrum yang bergerigi (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.1.1. Habitat dan Penyebaran
Litopenaeus vannamei merupakan udang asli yang hidup di pesisir pasifik Meksiko, Amerika Tengah, dan Amerika Selatan yang memiliki perairan 0
dengan suhu umumnya tetap 20 C sepanjang tahun. Udang vaname ini telah banyak tersebar ke seluruh dunia karena teknik budidaya yang relatif mudah (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.1.2. Siklus Hidup dan Reproduksi
Litopenaeus vannamei merupakan hewan katadromus, yaitu udang dewasa berada di laut lepas sedangkan larva dan yuana bermigrasi menuju perairan pantai. Pada habitat aslinya, udang menjadi dewasa secara seksual, kawin, dan melepaskan telur di laut lepas yang memiliki kedalaman air sekitar 70 meter di perairan Amerika Utara, Amerika Selatan, dan Amerika Tengah pada 0
suhu 26-28 C. Air laut memiliki salinitas sekitar 35 ppt. Telur udang vaname menetas dan larva berkembang pada perairan ini dan bersifat planktonis. Post
larva udang vaname bergerak menuju perairan pantai dan hidup di dasar perairan estuari yang dangkal (Wyban dan Sweeney, 1991). Perairan estuari yang dangkal memiliki parameter kualitas air yang lebih bervariasi daripada kondisi di perairan laut lepas dan kaya akan nutrisi. Setelah beberapa bulan hidup di perairan estuari, udang dewasa kembali menuju lingkungan laut lepas tempat pematangan gonad, perkawinan, dan pelepasan telur terjadi menjelaskan bahwa setelah menetas udang penaeid bermetamorfosis
6
melalui tiga stadia utama, yaitu nauplius, zoea, dan mysis. Masing-masing stadia tersebut dapat dibagi lagi menjadi beberapa sub stadia yang memiliki perbedaan morfologi nyata dengan transisi yang ditandai dengan molting. Telur udang vaname menetas menjadi nauplii + 14-16 jam setelah fertilisasi terjadi. Nauplii berganti kulit satu kali setiap 7 jam. Jumlah pergantian kulit pada stadia nauplius ini adalah lima kali. Tiga puluh enam jam setelah menetas, nauplii telah melewati seluruh sub stadianya dan bermetamorfosis menjadi stadia zoea. Udang vaname umumnya melakukan perjalanan ke lepas pantai untuk melakukan perkawinan. Proses perkawinan udang vaname meliputi pemindahan spermatophore dari udang jantan ke udang betina. Peneluran berlangsung pada perairan yang lebih dalam. Telur yang dilepaskan mengalami fertilisasi secara eksternal di dalam air (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.1.3. Pakan dan Kebiasaan Makan Udang paneus umumnya cenderung bersifat omnivora maupun pemakan
detritus. Berdasarkan pengujian, diketahui bahwa isi pencernaan udang vaname terdiri dari krustasea kecil, amphipoda, dan polychaeta. Udang vaname merupakan hewan nocturnal sehingga sepanjang hari hewan ini tinggal pada substrat dan tidak mencari makan. Kegiatan makan dilakukan malam hari atau ketika suasana redup (Wyban dan Sweeney,1991). Udang vaname membutuhkan pakan dengan kandungan protein yang lebih rendah dibandingkan dengan udang windu. Kandungan protein dalam pakan udang vaname yang baik adalah 35 %. Sedangkan untuk udang windu, pakan paling tidak harus memiliki kandungan protein 45 % (Subaidah dan Pramudjo,
7
2008). Pakan yang mengandung ikan dan cumi-cumi akan memacu pertumbuhan (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.1.4. Pergantian Kulit (Molting) Pertumbuhan pada udang dan semua arthropoda tergantung kepada dua faktor yaitu frekuensi molting dan kecepatan tumbuh (seberapa tumbuh udang tersebut setiap telah melakukan molting) karena tubuh udang ditutupi oleh karapas yang keras. Udang harus melepaskan karapas yang lama dan mengganti dengan yang baru untuk tumbuh. Selama molting, terjadi keretakan dalam kutikula antara karapas. Melalui bagian inilah chepalothorax dan abdomen keluar. Udang melepaskan cangkang lamanya melalui suatu lecutan keras oleh ekornya. Cangkang baru tersebut mula-mula lunak namun kemudian mengeras dalam jangka waktu sesuai dengan ukuran udang. Udang berukuran kecil mengeras dalam beberapa jam, tetapi udang berukuran besar bisa memakan waktu satu sampai dua hari. Frekuensi molting juga berhubungan dengan ukuran udang. Interval waktu molting bertambah seiiring dengan pertambahan ukuran udang. 0
Molting terjadi setiap 30-40 jam (dalam suhu 28 C) pada stadia larva. Benur berbobot 1-5 gram melakukan molting setiap 4-6 hari tetapi benur yang berbobot lebih dari 15 gram molting setiap 2 minggu. Kondisi lingkungan dan nutrisi juga mempengaruhi frekuensi molting. Suhu yang tinggi meningkatkan frekuensi molting. Penyerapan oksigen oleh tubuh tidak efisien selama molting terjadi. Udang yang mati ketika molting umumnya mengalami hypoxia. Molting ini biasanya mengindikasikan tingkat stres udang (Wyban dan Sweeney, 1991).
8
2.1.5. Perkawinan Yano dkk, 1988 dalam Wyban dan Sweeney (1991) menjelaskan bahwa perilaku kawin udang vaname umumnya terjadi sesaat sebelum dan sesudah matahari terbenam. Biasanya perkawinan berlangsung 3 sampai 16 detik dan dapat dibedakan menjadi 4 tahap yaitu: 1)
Approaching, penjantan mendekati betina dari belakang dengan berenang di dasar perairan
2)
Crawling, pejantan merayap sehingga posisi kepala berada di bawah ekor betina
3)
Chasing, pejantan mengejar dari bawah dan selalu mengikuti setiap perubahan arah betina. Betina matang telur mengeluarkan pheromon dengan melepasnya dalam air atau melalui kontak fisik sehingga merangsang pejantan untuk melakukan pengejaran
4)
Mating, induk jantan memutar sisi ventralnya ke atas kemudian memegang induk betina dengan kaki jalannya. Posisi bagian ventral yang saling berhadapan
ini
berlangsung
1-2
detik
sewaktu
jatan
mengeluarkan
spermatophore yang lengket dari petasmanya. Spermatophore ini dilekatkan ke thellicum betina setelah proses perkawinan selesai. 2.1.6. Maturasi Maturasi berarti proses perkembangan telur ( oogenesis) dalam ovarium induk betina. Sistem reproduksi betina Litopenaeus vannamei terdiri dari sepasang ovari, oviduk, saluran genital, dan sebuah thellicum. Telur (oogonia) diproduksi secara mitosis oleh jaringan epitelium germinal sepanjang masa subur betina.
Oogonia selanjutnya melakukan meiosis, berdiferensiasi menjadi oocyte, dan
9
kemudian diselimuti oleh sel follicle. Oocyte (telur) yang dihasilkan kemudian menyerap bahan kuning telur dari darah induknya melalui sel follicle tersebut. Komponen utama kuning telur adalah lipoglycoprotein, yang disebut Lipovitellin. Sumber kuning telur, yang hanya ditemukan pada hemolymph betina matang gonad, umumnya dipercaya berasal dari hepatopankreas. Organ reproduksi utama jantan adalah testis, vas deferens, petasma, dan appendix masculina. Sperma udang tidak memiliki flagel, dengan sebuah nucleus yang kental. Bagian utama sperma matang adalah kepala, tudung, base, dan spike. Selama melewati vas
deferens sperma bergabung menjadi cairan kental dan terkumpul dalam sebuah spermatophore berkitin (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.1.7. Pemijahan dan Penetasan Telur Penetasan terjadi setelah induk betina mengeluarkan telur yang sudah matang. Proses ini umumnya berlangsung selama 2 menit. Induk betina berenang lambat kedepan, pada bagian tengah kolom air, dan dalam banyak kasus telur dilepaskan
seluruhnya.
Ketika
telur
dikeluarkan,
induk
betina
langsung
mencampurkan telur dengan sperma menggunakan hentakan kaki jalannya. Fertilisasi berlangsung ketika material genetik sperma dan telur bersatu (Wyban dan Sweeney, 1991). Sebuah rangkaian proses reaksi sel terjadi ketika sperma melekat pada permukaan telur sampai dengan penggabungan telur-sperma. Sekitar 20 sel sperma melekat pada sebuah sel telur tunggal. Sperma dan telur tersebut kemudian mengalami rangkaian proses perubahan biokimia yang akhirnya menghasilkan gabungan antara telur dan satu sel sperma terentu. Proses ini
10
0
berlangsung selama 11 menit pada suhu 28 C (Clark dkk, 1984 dalam Wyban dan Sweeney, 1991). Udang vaname biasanya melepaskan telur pada malam hari, dalam jangka waktu beberapa jam setelah perkawinan. Perhatian khusus perlu dilakukan untuk mengontrol reproduksi udang vaname dalam suasana gelap. Udang tersebut harus dibiarkan sendiri agar perkawinan alami terjadi, tetapi induk betina yang telah kawin segera ditangkap dan ditransfer menuju bak peneluran (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.2. Pemilihan Lokasi Hatchery Suyanto dan Panjaitan (1985) menjelaskan bahwa lokasi hatchery yang baik adalah berada di tepi pantai dengan tujuan untuk memudahkan penyediaan air laut bagi kegiatan operasional hatchery. Lokasi hatchery juga harus berada jauh dari pencemaran lingkungan, baik itu pencemaran limbah industri maupun pencemaran limbah rumah tangga. Djunaidah dkk (2002) menjelaskan bahwa persyaratan lokasi unit pembenihan udang untuk menunjang aspek teknis, ekonomis, dan kekuatan konstruksi antara lain sebagai berikut: a. Area pembenihan harus dekat dengan pantai, dengan dasar perairan tidak berlumpur, air laut jernih dan tidak tercemar, salinitas 29-34 ppt, pH 7,5-8,5, alkalinitas 33-60 ppm, bahan organik < 10 ppm. b. Tanah dasar untuk bangunan harus stabil, untuk menjaga daya tahan bangunan c. Letak strategis, mudah dijangkau untuk kelancaran operasional dan pemasarannya
11
d. Tersedia sumber tenaga listrik 24 jam, dari PLN atau generator e. Sumber
air
tawar
cukup,
bersalinitas
maksimal
10
ppt
dan
kesadahan 50-500 ppm 2.3. Penyediaan Air Pemeliharaan Air laut yang disediakan dalam hatchery digunakan untuk pemeliharaan induk, pemeliharaan larva, dan kultur pakan alami. Air laut mengalami proses filtrasi mekanik yang terdiri dari lapisan pasir dan kerikil yang tersusun dari ukuran yang semakin kecil ke arah pengeluaran. Penyaringan ini dilakukan untuk membersihkan air dari kotoran dan organisme laut yang tidak dikehendaki. Unit filtrasi bisa diletakan terpisah ataupun menyatu dengan bagian reservoir. Reservoir paling tidak harus dapat menampung 30-50% air dari total maksimal konsumsi air laut per hari (Suyanto dan Panjaitan, 1985). Moretti dkk (1999) menyatakan bahwa air laut yang digunakan harus terbebas dari patogen dan polutan. Air laut diolah untuk menghilangkan padatan terlarut, kontaminan, organisme, dan meningkatkan parameter kualitas air agar sesuai untuk pertumbuhan biota yang dipelihara. Pengolahan air tersebut meliputi filtrasi mekanik, sterilisasi ultraviolet, dan klorinasi. Perlakuan tambahan dilakukan untuk media pemeliharaan mikroalga.
Perlakuan tersebut adalah
sterilisasi autoclave, sterilisasi uap kering, dan pengkayaan media. Sterilisasi dilakukan untuk menjamin agar tidak ada mikroorganisme yang terbawa kedalam media pemeliharaan. Metode sterilisasi yang umum dilakukan adalah dengan menggunakan ultra violet, klorinasi, autoclave, dan oven. Sinar ultra violet memiliki panjang gelombang 265 nm (gelombang pendek UV atau UV-C) memiliki efek membunuh kuman yang kuat karena dapat
12
merusak rantai DNA. Sinar ini berasal dari uap lampu merkuri yang dioperasikan pada tekanan tertentu. Efek sterilisasi sinar UV ini tergantung oleh daya, kejernihan air laut yang disterilisasi, jenis dan kuantitas mikroorganisme, derajat pemurnian yang dibutuhkan, waktu kontak, dan suhu. Intensitas UV sedikitnya 40 2
mJ/cm dapat membunuh 99% dari semua organisme yang tak diinginkan (Moretti
dkk, 1999). Metode sterilisasi lainnya adalah klorinasi. Klorin aktif adalah agen pengoksidasi yang kuat. Tersedia dalam bentuk larutan pemutih (NaOCl) dan serbuk pemutih (CaOCl2). Persentase klorin aktif pada senyawa kimia tersebut berturut-turut yaitu 5-15% dan 60-70%. Dosis akhir yang umum digunakan untuk sterilisasi air laut adalah 5 – 10 ppm berupa klorin aktif. Waktu kontak antara air dan klorin paling tidak harus mencapai satu jam. Setelah itu semua residu klorin dinetralisir menggunakan Na-thiosulfat (Na2S2O3) (Moretti dkk, 1999). 2.4. Pengelolaan Induk 2.4.1. Wadah Pemeliharaan Induk Untuk pemeliharaan
memproduksi induk
berupa
nauplii bak-bak
udang yang
vaname
dibutuhkan
digunakan
untuk
wadah wadah
penampungan/karantina, pematangan dan perkawinan, serta bak pemijahan dan penetasan (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Bak penampungan/karantina berfungsi untuk menampung induk yang baru datang, diadaptasi, dan dilakukan pengecekkan penyakit. Bentuk bak bulat, oval, atau empat persegi panjang, bersudut tumpul dengan luas dasar minimal 20 2
m , dengan ketinggian bak minimal 1 m dan kedalaman air minimal 0,6 m. Warna dasar bak cerah dan warna dinding bak gelap, atau warna keseluruhannya cerah.
13
Bak dapat terbuat dari semen, fiber glass, atau plastik (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Subaidah dan Pramudjo (2008) menjelaskan bahwa bak pematangan dan perkawinan berfungsi untuk pematangan gonad induk. Setelah induk matang gonad dilakukan perkawinan pada bak yang sama. Bentuk bak bulat, oval, atau 2
empat persegi panjang, bersudut tumpul dengan luas dasar bak paling tidak 20 m , ketinggian bak minimal 1 m. Kedalaman air minimal 0,6 m. Padat tebar pada bak 2
pematangan adalah 8 ekor/m . Bak pemijahan dan penetasan berfungsi untuk memijahkan induk yang telah matang gonad. Bak dapat berbentuk bulat, oval, maupun empat persegi panjang dengan sudut tumpul. Kedalaman air minimal 0,6 m serta luas dasar bak 2
minimal 2 m . Bak pemijahan ada yag berfungsi sebagai bak penetasan bila telur tidak dicuci (Subaidah dan Pramudjo, 2008). 2.4.2. Pengangkutan dan Aklimatisasi Induk Menurut Kokarkin dkk (1986), pengangkutan calon induk dapat dibedakan menjadi dua sistem
yaitu pengangkutan sistem
terbuka dan
pengangkutan sistem tertutup. Sistem pengangkutan ini dipilih berdasarkan jarak tempuh perjalanan. Pengangkutan sistem tertutup dapat digunakan untuk lama pengangkutan yang
lebih
lama
dibandingkan
dengan
pengangkutan
sistem
terbuka.
Pengangkutan sistem tertutup ini menggunakan kantong plastik tebal yang diberikan air media dan penambahan oksigen. Kepadatan efektif menurut Kokarkin dkk (1986) adalah 2 ekor untuk setiap 10 liter media air laut. Lama pengangkutan yang disarankan adalah 6 jam perjalanan.
14
Menurut Kokarkin dkk (1986), saat aklimatisasi calon induk dapat diberikan desinfektan yang bersifat bakterisida, fungisida, dan bahan lain yang dapat mengeliminir penyakit yang bisa terbawa oleh calon induk. 2.4.3. Manajemen Pemberian Pakan Induk Pakan untuk induk sangat menentukan kesehatan dan kemampuan induk untuk memproduksi telur. Pakan yang baik akan disukai oleh udang dan tidak mudah menurunkan kualitas air media pemeliharaan. Pakan segar merupakan pakan yang paling cocok untuk induk udang. Jenis pakan yang umum digunakan sebagai pakan induk adalah cumi, kepiting, udang kecil, dan kerang (Kokarkin dan Sumartono, 1990). Cumi-cumi disediakan dalam bentuk potongan-potongan beku setelah sebelumnya dibersihkan dari kulit dan isi perut. Sedangkan kepiting, udang kecil, dan kerang diberikan dalam keadaan baru dipotong-potong (segar) tanpa pembekuan. Ketepatan penentuan dosis dan frekuensi pemberian pakan induk erat kaitannya dengan mudah menurunnya kualitas air dan efisiensi dalam penanganan induk secara ekonomis. Induk udang dalam satu hari rata-rata membutuhkan pakan sebanyak 5-20% dari berat tubuhnya. Dosis pakan yang terlalu banyak menyebabkan air mengental, berbuih, dan berwarna keputih-putihan. Frekuensi pemberian pakan sebanyak 3-5 kali sehari menunjukkan hasil yang memuaskan pada produktifitas induk (Kokarkin dan Sumartono, 1990). Wyban dan Sweeney (1991) menjelaskan bahwa pakan induk diberikan empat kali dalam sehari. Pakan yang digunakan dapat berupa cacing darah dan cumi beku. Cacing darah diberikan setelah dilelehkan terlebih dahulu dan dipotong-potong
menjadi
berukuran
panjang
3
inch.
Cumi
beku
15
3
dipotong-potong seperti dadu dengan ukuran kurang lebih ¼ Inch . Perlakuan pakan seperti ini dapat mengurangi kekeruhan dalam air. Pemberian pakan dilakukan dengan cara menebar secara merata di sepanjang dinding bak. Dosis pakan yang diberikan lebih baik menggunakan metode satiasi daripada dengan cara menghitung kebutuhan pakan berdasarkan bobot induk. 2.4.4. Manajemen Kualitas Air Pemeliharaan Induk Air sebagai media hidup induk udang harus mendapat perhatian khusus karena air merupakan salah satu faktor yang menentukan tingkat keberhasilan pematangan gonad, oleh karena itu dari segi kualitas dan kuantitas harus terpenuhi. Air yang digunakan harus betul-betul bersih dan steril. Sistem pengaturan air dalam bak pemeliharaan dibuat sirkulasi. Pada sistem pemeliharaan induk, air media pemeliharaan dipasang pompa sirkulasi ukuran 1 inch dan dialirkan secara terus-menerus selama pemeliharaan berlangsung, kecuali pada saat sampling. Untuk menghindari penumpukan kotoran di dasar bak, maka perlu dibersihkan setiap pagi hari. Suhu air harus selalu dipantau dan diusahakan berada 0
pada kisaran 27-28 C (Djunaidah, 2002). Pembersihan dasar bak dilakukan dengan cara di sipon. Kegiatan ini dilakukan setiap hari sebelum pemberian pakan dengan menggunakan selang 1 inch. Selang ukuran ini cukup untuk menyipon sisa molting, udang mati, pakan, dan lain – lain tanpa mengakibatkan penyumbatan (Wyban dan Sweeney 1991). 2.5. Pemeliharaan Larva 2.5.1. Persiapan Wadah Pemeliharaan Larva Bak pemeliharaan larva dilapisi dengan cat U-poxy berwarna biru muda dan dilengkapi pipa saluran udara, instalasi air laut, instalasi alga, dan saluran
16
pengeluaran yang dilengkapi saringan sirkulasi dan pipa goyang serta terpal sebagai penutup bak agar suhu stabil selama proses pemeliharaan larva. Kemiringan bak 2-5%, hal ini bertujuan untuk memudahkan dalam pengeringan. Sistem aerasi pada bak pemeliharaan menggunakan aerasi gantung dengan jarak antar titik 40 cm dan jarak dari dasar 5 cm agar sisa pakan dan kotoran tidak teraduk (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Pencucian bak dilakukan dengan menggunakan kaporit 60% sebanyak 100 ppm yang dicampur deterjen 5 ppm dan dilarutkan dalam air tawar pada wadah berupa ember. Pencucian bak dilakukan dengan menggunakan scoring pad dan dibilas menggunakan air tawar, kemudian dikeringkan selama 2 hari. (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Kokarkin dan Sumartono (1990) menerangkan bahwa pengeringan mutlak dilakukan untuk memutus daur hidup berbagai jenis penyakit. Sinar matahari diketahui memiliki beraneka ragam gelombang cahaya dan salah satu di antaranya adalah ultra violet sehingga dapat dikatakan bahwa sinar matahari merupakan desinfektan alami. Bak pemeliharaan yang pernah digunakan sebagai wadah pemeliharaan larva yang terkena penyakit pada siklus sebelumnya direndam dengan air tawar serta ditambahkan kaporit 60%, dosis 100 ppm, dan PK 1 ppm selama dua hari kemudian air dibuang dan dicuci menggunakan kaporit 100 ppm (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Lay (1971) dalam Boyd (1988) menjelaskan bahwa PK dapat mengoksidasi bahan organik dan anorganik serta membunuh bakteri dengan cara mengurangi kadar COD dan BOD dalam air. Pengisian air laut ke dalam bak pemeliharaan menggunakan filter bag. Air laut langsung ditransfer dari tandon yang sebelumnya telah dilakukan
17
penyaringan dengan menggunakan sand filter dan disinari UV dan ditampung dalam bak tandon tertutup rapat serta dilakukan pemompaan ke tower yang dilengkapi UV juga untuk dialirkan ke bak-bak pemeliharaan larva (Subaidah dan Pramudjo, 2008). 2.5.2. Penebaran Nauplii Menurut Subaidah dan Pramudjo (2008) penebaran nauplii sebaiknya dilakukan pada pagi atau sore hari. Hal ini bertujuan untuk menghindari perubahan suhu yang terlalu tinggi. Aklimatisasi dilakukan sebelum penebaran. Aklimatisasi dilakukan terutama terhadap suhu dan salinitas selama 30 menit. Apabila bak penetasan berdekatan dengan bak pemeliharaan, proses pemindahan dapat dilakukan dengan menggunakan ember plastik (Lim dkk, 1989). Nauplii yang ditebar adalah nauplii muda (N3-N4) yang bertujuan untuk menekan gangguan proses metamorfosis sekecil mungkin dari stadia nauplius ke stadia zoea 1 karena dalam pemeliharan udang vaname sering dikenal istilah zoea
syndrom atau zoea lemah. Elovaara (2001) dalam Subaidah dan Pramudjo (2008) memberikan keterangan bahwa saat mengalami zoea syndrom, larva kelihatan lemah dan tubuh kotor sehingga dapat meneyebabkan kematian sampai 90%. 2.5.3. Pengelolaan Pakan Jenis pakan yang digunakan pada larva udang vaname ( Litopenaeus
vannamei) adalah pakan alami dan pakan buatan. Masing-masing pakan tersebut diberikan dengan jumlah dan frekuensi tertentu sesuai dengan stadia larva. Jenis pakan alami yang dikultur adalah Chaetoceros ceratos dan Artemia salina. Pemberian Chaetoseros ceratos dilakukan saat sub stadia zoea 1 sampai mysis 3. Pemberian artemia dimulai sejak sub stadia mysis 3 sampai dengan PL 10. Pakan
18
buatan juga diberikan pada larva untuk mencegah terjadinya kekurangan pakan selama pemeliharaan larva (Subaidah dan Pramudjo, 2008). 2.5.4. Perkembangan Larva Uraian perkembangan larva udang vaname ( Litopenaeus vannamei) dijelaskan dalam Tabel 1. berikut Tabel 1. Stadia Perkembangan Larva Litopenaeus vannamei No Stadia Karakteristik 1 Nauplius 1 - Panjang tubuh 0,4 mm, tidak termasuk furcal spine - Lebar tubuh 0,2 mm pada bagian terlebar - Dua ujung furcal spine melengkung ke dalam - Badan berbentuk cembung (convex) - Ada 3 terminal setae yang panjang pada exopoda antena ke-2 (3 pada sisi lateral/samping dan 2 pada sisi terminal/ujung) - Exopoda ini akan menambah setae setiap kali molting, sebagai indikator berubahnya sub stadia 2 Nauplius 2 - Panjang tubuh 0,45 mm - Lebar tubuh 0,2 mm pada bagian terlebar - Dua ujung furcal spine melengkung ke luar - Tubuh berbentuk cekung (concave) - Ada 3 terminal setae pada antena ke-1(1 panjang, 1 sedang, dan 1 pendek) - Ada 6 setae pada exopoda antena ke-2 (3 panjang pada sisi terminal, dan 1 pendek pada terminal), endopoda pada antena ke-2 mempunyai 2 terminal setae yang panjang - Terdapat setula pada setae yang panjang, tetapi setula ini sukar dilihat di bawah mikroskop dengan pembesaran kurang dari 40 x 3 Nauplius 3 - Panjang tubuh 0,49 mm - Lebar tubuh 0,2 mm pada bagian terlebar - Dua proses furcal spine masing – masing menjadi 3 spine - Pada antena ke-1 ada terminal setae (2 panjang dan 1 pendek) serta terdapat bekas segmentasi yang sukar dilihat pada pangkal antena ke-1 - Pada antena ke-2, exopoda memiliki 7 setae (3 panjang lateral, 3 panjang terminal, dan 1 pendek terminal) - Endopoda pada antena k-2 memiliki 8 terminal setae yang panjang
19
Lanjutan Tabel 1. No Stadia 4 Nauplius 4
5
Nauplius 5
6
Zoea 1
7
Zoea 2
8
Zoea 3
9
Mysis 1
10
Mysis 2
Karakteristik Panjang tubuh 0,55 mm Lebar tubuh 0,2 mm Masing – masing proses memiliki 5 spine Exopoda memiliki 8 setae (4 panjang lateral, 2 panjang terminal, 1 sedang, terminal, 1 pendek terminal) - Segmentasi appendage sudah mulai tampak, meskipun sukar dilihat secara jelas
-
- Maxila dan maxiliped (bagian dari mulut) juga mulai tampak tetapi sukar dilihat secara jelas - Panjang tubuh 0,61 mm - Lebar tubuh 0,2 mm - Masing – masing proses furcal memiliki 7 spine - Terdapat perbedaan yang nyata pada setae antara antena ke-1 dan ke-2 - Tubuh lebih ramping - Swollen (struktur seperti tombol dapat dilihat di pangkal mandibula) - Dari sisi dorsal batas perkembangan karapas dapat dilihat di bawah kutikula - Panjang tubuh : + 1mm - Lebar tubuh : 0,49 mm pada bagian terlebar - Bentuk tubuh: perubahan yang sangat nyata dari N5. Tubuh sudah dapat dibedakan antara chepalothorax dan abdomen dengan mata telanjang - Mata : sudah ada tetapi tidak berada pada karapas - Panjang tubuh : + 1,9 mm - Mata : mulai bertangkai, teletak di atas karapas - Rostrum tampak seperti duri di antara kedua mata - Panjang tubuh: + 2,7 mm - Biramous uropoda mulai terbentuk - Duri muncul pada abdominal somites (segmen) - Panjang tubuh: + 3,4 mm - Bentuk tubuh: bentuk dan struktur tubuh mirip udang dewasa - Pleopoda: pleopoda mulai berkembang pada segmen ke lima abdomen - Telson dan uropoda mulai terbentuk - Panjang tubuh : + 4 mm
- Pleopoda mulai tampak memanjang tetapi belum bersegmen 11 Mysis 3 - Panjang tubuh: + 4,4 mm - Pleopoda memanjang dan bersegmen - Duri dorsal telah tampak pada rostrum 12 PL - Bentuk sudah seperti udang dewasa Sumber: Wyban dan Sweeney (1991); Tabb dkk (1972) dalam (Wyban dan Sweeney (1991)
20
Perubahan sub stadia nauplius masing-masing 7 jam (Wyban dan Sweeney, 1991). 2.5.5. Kualitas Air A. Suhu Perubahan suhu berpengaruh terhadap proses fisika, kimia, dan biologi badan air. Organisme akuatik memiliki kisaran tertentu (batas atas dan batas bawah) yang menjadi suhu optimum untuk keberlangsungan hidup dan pertumbuhannya. Sebagai contoh, algae dari filum chlorophyta dan diatom akan 0
0
tumbuh dengan baik pada kisaran suhu berturut-turut 30-35 C dan 20-30 C sedangkan filum Cyanophyta lebih dapat bertoleransi terhadap kisaran suhu yang lebih tinggi dibandingkan dengan keduanya (Effendi, 2003). Cholik dkk (2005) menjelaskan bahwa suhu juga berpengaruh terhadap kualitas sperma yang dihasilkan oleh induk jantan udang vaname. B. Salinitas Salinitas adalah konsentrasi total ion yang terdapat di perairan (Boyd, 1988 dalam Cholik dkk, 2005). Cholik dkk (2005) juga menambahkan bahwa salinitas menggambarkan padatan total di dalam air, setelah semua karbonat dikonversi menjadi oksida, semua bromida dan iodida digantikan oleh klorida, dan semua bahan organik telah dioksidasi. Salinitas dinyatakan dalam satuan g/kg atau ppt (part per thausand). Wyban dan Sweeney (1991) menyatakan bahwa udang vaname hidup pada perairan bersalinitas 35 ppt pada habitat aslinya. C. Oksigen Terlarut Oksigen terlarut merupakan parameter kualitas air paling penting bagi kehidupan organisme air. Oksigen terlarut dalam air pada konsentrasi tertentu
21
dapat diserap oleh haemosianin dalam pembuluh darah lamella udang akibat perbedaan tekanan parsial. Oksigen yang diserap kemudian dimanfaatkan dalam proses metabolisme. Pada konsentrasi oksigen rendah (< 50% konsentrasi jenuh) tekanan parsial oksigen dalam air tidak cukup tinggi untuk memungkinkan penetrasi oksigen kedalam lamella sehingga mengakibatkan udang bisa mati lemas (Ahmad, 1991). Djunaidah dkk (2002) menyebutkan bahwa kadar DO air yang baik minimal sebanyak 4 ppm. D. pH
Posseince of Hydrogen (pH) adalah cerminan derajat kemasaman yang +
diukur dari jumlah ion hidrogen yang menggunakan rumus umum pH= - log (H ). +
-
Air murni terdiri dari ion H dan ion OH dalam jumlah yang berimbang hingga -
pH air murni adalah 7. Semakin banyak ion OH dalam suatu larutan, maka semakin rendah konsentrasi ion H+ dan semakin tinggi nilai pH, larutan demikian disebut dengan larutan alkalis. Dalam keadan sebaliknya disebut larutan asam (Ahmad, 1991). Nilai pH terletak antara 1-14 dengan angka 7 sebagai nilai netral. Air laut umumnya bersifat alkalis dengan pH lebih dari 7 karena banyak mengandung garam bersifat alkalis. pH yang baik bagi udang adalah berada pada kisaran 7-9 (Ahmad, 1991). E.
Amonia Ahmad (1991) menjelaskan bahwa sumber utama amoniak adalah bahan
organik baik dalam bentuk sisa pakan, kotoran udang, maupun dalam bentuk plankton dan bahan organik tersuspensi. Pembusukan bahan organik terutama yang mengandung banyak protein menghasilkan amonium dan amonia. Bila
22
proses lanjutan dari pembusukan (nitrifikasi) tidak berlangsung lancar, maka terjadi penumpukkan NH3 yang membahayakan udang. Perhitungan kadar amonia umumnya bersama sama dengan penghitungan amonium sebab amonia dan amonium sulit dipisahkan karena selalu dalam kondisi kesinambungan. Hasil perhitungan dikenal dengan sebutan Total
Ammonia Nitrogen (TAN). Konsentrasi TAN yang aman adalah < 0,5 ppm, sementara kandungan amonia sebaiknya < 0,1 ppm (Ahmad, 1991). Persentase amonia dari TAN dipengaruhi oleh suhu dan pH air. Semakin tinggi pH dan suhu, maka persentase amonia juga semakin tinggi. Boyd (1979)
dalam Ahmad (1991) memberikan contoh bahwa pada pH 8 dan suhu 26 0C 0
persentase NH3 hanya 5,71%, sedangkan pada pH 9 dan suhu 30 C mencapai +
44,84%. Proses perubahan NH4 menjadi NH3 dilanjutkan dalam proses nitrifikasi (Ahmad, 1991). 2.5.6. Hama dan Penyakit Hama biasanya merupakan jenis organisme yang dapat mengakibatkan kerugian bagi budidaya. Penyakit pada udang sering dijumpai pada udang berusia muda, baik periode larva maupun post larva. Proses timbulnya suatu penyakit sangat bergantung pada keadaan lingkungan. Penyakit pada pembenihan udang diantaranya adalah yang disebabkan oleh virus, bakteri, jamur, dan parasit (Subaidah dan Pramudjo, 2008). 2.5.7. Pencegahan Hama dan Penyakit Pengelolaan kesehatan udang adalah kegiatan operasional yang bertujuan untuk mencegah terjadinya penyakit. Aktifitas pencegahan penyakit hanya dapat dicapai melalui pengelolaan yang terintegrasi dari mulai penyediaan kualitas
23
lingkungan budidaya yang baik, memberi nutrisi yang cukup dalam hal kualitas dan kuantitasnya sehingga status kesehatan biota selalu prima, dan menjaga sanitasi lingkungan. Tanpa memberikan keseimbangan di antara ketiga aspek tersebut, maka upaya pencegahan tidak dapat dicapai. Hal tersebut terjadi karena kenyataannya biota selalu hidup bersama patogen yang setiap saat berpotensi menyebabkan penyakit. Budidaya udang yang menerapkan tenologi sterilisasi sekalipun tidak mampu untuk mengeliminasi seluruh patogen potensial dari lingkungan budidaya (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Subaidah dan Pramudjo (2008) menjelaskan pengendalian penyakit melalui proses skrining induk, pengelolaan kualitas air, dan penggunaan bahan pengendali penyakit yang aman. Skrining induk dilakukan untuk mencegah terjadinya transmisi penyakit secara vertikal dari induk kepada larva. Pengelolaan kualitas air bertujuan agar media pemeliharaan biota tetap optimal sehingga dapat mencegah munculnya penyakit dalam media pemeliharaan. Penggunaan bahan pengendali penyakit berupa antibiotik dikurangi dan diganti dengan penggunaan imunostimulan dan aplikasi probiotik. 2.6. Kultur Pakan Alami 2.6.1. Kultur Fitoplankton A. Manajemen Kultur Fitoplankton Murni Subaidah dan Pramudjo (2008) menjelaskan bahwa dalam upaya menyediakan persediaan pakan alami (alga), perlu adanya manajemen dan fasilitas pada suatu tempat laboratorium yang diupayakan agar kultur alga tetap terjaga kemurniannya. Manajemen alga murni dibagi menjadi 5 tahapan/kategori yaitu kultur pada media tabung reaksi (20 ml), botol (1 L), karboy (20L),
24
3
akuarium (100L), dan fiberglass 1 m . Untuk persediaan, alga murni dikultur dalam media agar ataupun media cair yang dapat disimpan dalam waktu yang lama pada suhu dingin. Persediaan dalam media cair menggunakan media dalam tabung reaksi bervolume 10 ml yang diberi pupuk tanpa aerasi, tetapi harus dilakukan pengadukan setiap hari. Biakan murni ini diletakan pada rak kultur dengan pencahayaan lampu TL. Stok murni ini dapat disimpan dalam lemari es dan dapat bertahan sampai satu bulan. Berhasil atau tidaknya usaha kultur murni berkaitan erat dengan persyaratan-persayaratan teknis yang harus dipenuhi antara lain masalah biologi, fisika, dan kimia untuk kelangsungan hidup spesies itu sendiri. Namun secara umum dapat dibuat batasan-batasan umum untuk keberhasilan kultur murni misalnya diatom membutuhkan unsur silikat, sedangkan alga hijau tidak (Subaidah dan Pramudjo, 2008). B. Kultur Semi Masal Kultur skala semi masal dimulai dari volume kultur 100-1000 liter yang diletakkan di luar laboratorium. Pupuk yang digunakan adalah pupuk teknis. Bibit yang digunakan berasal dari kultur murni yang sudah mencapai kepadatan 2 juta sel/ml. Pemanenan dilakukan setelah 5-7 hari ketika kepadatan dalam bak mencapai 5-7 juta sel/ml (Subaidah dan Pramudjo, 2008). C. Kegiatan Kultur Masal 3
Kegiatan ini dilakukan di tempat terbuka dengan volume bak 4 m 3
sampai 30 m . Sinar matahari yang masuk sangat diperlukan untuk proses fotosintesis. Inokulasi bibit dilakukan sebanyak 20 % dari volume total. Umur
25
kultur masal ini umumnya maksimal 4 hari bersamaan dengan habisnya pupuk di dalam media kultur alga (Subaidah dan Parmudjo, 2008). D. Pupuk Kultur Alga Kelangsungan hidup kultur fitoplankton berkaitan erat dengan terjaganya suatu kondisi bebas kontaminan yang menjadi penyebab kegagalan kultur baik itu kontaminan yang berasal dari spesies lain, bakteri, protozoa, maupun jamur. Untuk itu upaya sterilisasi perlu dilakukan (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Tumbuh pesatnya fitoplankton juga behubungan dengan faktor nutrisi yang ada di lingkungannya. Secara umum fitoplankton membutuhkan nutrisi yang tergolong sebagai unsur makro dan mikro. Unsur makro meliputi kebutuhan akan nitrat dan posfat sebagai dasar nutrien utama disamping unsur – unsur mikro trace
element seperti Fe, Mo, Cu, Zn, dan Co. Vitamin B1, B12, dan biotin merupakan mikronutrien lain yang juga diperlukan. Faktor kimia yang juga dapat menjadi fator pembatas adalah salinitas, pH, dan CO 2 (Subaidah dan Pramudjo, 2008). Komposisi pupuk untuk setiap skala kultur pakan alami fitoplankton bagi udang vaname dapat dilihat pada Tabel 2. sampai dengan Tabel 4. Tabel 2. Komposisi Pupuk Kultur Alga Skala Masal Kandungan Jumlah A. KNO3 3.750 gram Na H2PO4 250 gram B. Na2SiO3 300 gram C. FeCl3.6H2O 157,5 gram EDTA 217,5 gram Unsur mikro 50 gram D. Larutan campuran vitamin 50 ml Ket : 1. Larutan A, B, C, D diencerkan dalam akuades steril 10 liter 2. Bahan kimia yang digunakan adalah bahan teknis 3. Dosis pemakaian 1 ml/liter Sumber: Subaidah dan Pramudjo (2008)
26
Tabel 3. Komposisi Pupuk Alga Skala Intermediate Kandungan Jumlah A. KNO3 75 gram NaH2PO4.H2O 5 gram B. Na2SiO3.9H2O 30 gram C. Na2EDTA (Na2C10H14O8N2.H2O) 4,36 gram FeCl3.6H2O 3,15 gram Unsur mikro 1 ml D. Campuran vitamin 5 ml Ket :
1. Semua bahan kimia yang digunakan adalah kimia teknis 2. Larutan A,B,C,D masing – masing dilarutkan dalam akuades steril 3. Dosis pemakaian 1 ml/liter
Sumber: Subaidah dan Pramudjo (2008)
Tabel 4. Komposisi Pupuk Alga Murni (Guilard f/2 Medium) Kandungan Jumlah Solution A NaNO3 75 gram NaH2PO4.H2O 5 gram Solution B Na2SiO3.9H2O 30 gram Solution C Na2EDTA 4,36 gram FeCl3.6H2O 3,15 gram 1 ml Stok E Lanjutan Tabel 4. Kandungan Jumlah Solution D Stok F 5 ml Stok E CoCl2.6H2O 10 gram CoCl4.5H2O 9,8 gram MnCl2.4H2O 180 gram NaMoO4.2H2O 6,3 gram ZnSO4.7H2O 22 gram Stok F Thiamin HCl 20 gram Vit H (Biotin) 0,1 gram Vit B12 0,1 gram Ket: 1. Masing – masing solution dan stok dilarutkan dalam akuades 2. Kecuali solution D dan stok F, semua pupuk diautocalve 3. Semua bahan kimia menggunakan bahan Pro Analyse 4. Dosis pemakaian 1 ml/Liter Sumber: Subaidah dan Pramudjo (2008)
27
2.6.2. Penetasan Artemia Artemia (brine shrimp) diberikan pada larva sejak sub stadia akhir zoea 3. Artemia ini tersedia dalam bentuk kista kering yang masih dapat bertahan berbulan-bulan. Kista artemia akan menetas menjadi artemia ketika kista tersebut dihidrasi kembali. Seperti halnya udang, artemia juga mangalami molting secara periodik. Artemia tumbuh cepat sehingga ukuran atau umur artemia harus disesuaikan dengan ukuran udang agar mudah untuk dimangsa oleh udang. Proses penetasan artemia meliputi tahapan hidrasi, dekapsulasi, inkubasi, dan pemanenan (Wyban dan Sweeney 1991). A. Hidrasi Untuk menetaskan telur artemia yang telah kering (kadar air kurang dari 10%) yang embrionya dalam keadaan dorman, perlu melakukan perendaman terlebih dahulu. Telur-telur artemia yang sedang dalam proses perendaman akan menyerap sejumlah air hingga tampak menggembung. Apabila kadar airnya baru mencapai 10-30%, masih belum terjadi metabolisme. Metabolisme mulai terjadi jika kadar air telah mencapai 30-65%, tetapi metabolisme ini akan berhenti bila kadar air tidak bertambah lagi. Metabolisme yang aktif akan dimulai apabila kadar air melebihi 65%. Artemia membutuhkan kadar air sampai 140% untuk melangsungkan metabolisme sampai terjadi penetasan (Mudjiman, 1989). Proses penyerapan air kedalam telur tersebut berlangsung secara
hipoosmotik, yaitu tekanan osmotik di dalam telur lebih rendah dibanding dengan tekanan osmotik lingkungan luarnya. Proses ini akan berlangsung lebih baik apabila telur direndam dalam air tawar. Untuk menggembungkan telur kering menjadi bulat sempurna membutuhkan waktu sekitar 1 jam. Sumber energi untuk
28
melangsungkan metabolisme artemia menggunakan makanan cadangan yang berupa trehalose yang akan dipecah menjadi glikogen dan gliserol. Glikogen dapat menghasilkan tenaga, sedangkan gliserol akan meningkatkan tekanan osmotik dalam telur (Mudjiman, 1989). Moretti (1999) menambahkan bahwa tahap hidrasi merupakan tahap yang penting karena pelepasan korion hanya dapat terjadi ketika kista berbentuk bulat. Kapadatan kista maksimal untuk melakukan proses hidrasi adalah 0
200 g/liter pada suhu air antara 20-25 C. Selama proses hidrasi aerasi diberikan dengan cukup kuat untuk menjaga kista tetap teraduk. Kista dikumpulkan dengan menggunakan saringan dan harus langsung dilanjutkan dengan tahap berikutnya yaitu dekapsulasi. B. Inkubasi Inkubasi dilakukan segera setelah proses hidrasi dan dekapsulasi. Kista artemia akan bermetabolisme terus sampai dengan cangkangnya pecah. Tahapan ini disebut tahapan pecah cangkang ( emergence I atau E-I). Waktu yang dibutuhkan untuk mencapai tahap E-I ini sekitar 15 jam. Pada tahapan ini proses beralih menjadi hiperosmotik, yaitu tekanan osmotik dalam kista lebih tinggi dibandingkan lingkungannya. Terjadinya pemecahan cangkang merupakan proses yang dibantu oleh kegiatan enzim penetasan yang hanya dapat bekerja pada keadaan pH air lebih dari 8 (Mudjiman, 1989). Moretti dkk (1999) menyarankan penggunaan NaHCO 3 dengan dosis 1 gram/liter untuk mencapai pH tersebut. Enzim tersebut keluar bersamaan dengan pecahnya kista dan dapat membantu proses pemecahan cangkang-cangkang yang lain sehingga proses penetasan akan lebih baik bila kista berdekatan. Moretti dkk (1999) menyarankan
29
kepadatan kista saat inkubasi adalah 2 gram/liter. Kegiatan enzim penetasan dapat terhambat jika air penetasannya mengandung ion besi, dan ion tembaga (Mudjiman, 1989) Embrio yang masih terbungkus dalam selaput penetasan keluar dari cangkang saat inkubasi telah berlangsung 17 jam, bentuk visual seperti payung, maka disebut dengan tingkat payung (emergence II atau E-II). Embrio tersebut terus tumbuh dan akhirnya menetas menjadi nauplius pada waktu sekitar 19 jam (Mudjiman, 1989). C. Pemanenan Artemia Wyban dan Sweeney (1991) menyebutkan bahwa waktu pemanenan yang baik adalah ketika inkubasi telah berlangsung selama 17-22 jam. Artemia akan telah mencapai instar I sebanyak 50% saat inkubasi mencapai 24 jam sehingga kualitas nutrisi menjadi lebih rendah. Pemanenan dilakukan dengan mematikan aerasi dan menyinari bagian bawah bak penetasan dengan lampu 60 watt paling tidak selama 30 menit. Nauplii artemia akan mendekati cahaya karena bersifat fototaksis positif. Selanjutnya artemia ditampung dengan menggunakan saringan 100 mikron dan dicuci menggunakan air bersih untuk menghilangkan kotoran dan bakteri. Mudjiman (1989) menambahkan bahwa tujuan pencucian ini adalah untuk menghilangkan kandungan gliserol yang dapat digunakan oleh bakteri untuk tumbuh dan berkembang. 2.7. Panen dan Transportasi Benur Pemanenan benur dilakukan pada saat stadia PL 10 atau ukuran PL telah mencapai 1 cm dan yang telah memenuhi kriteria-kriteria benur yang siap dipanen. Pemanenan benur dimulai dengan menurunkan volume air sampai
30
dengan ketinggian air mencapai 30 cm (Subaidah dan Pramudjo, 1999; Djunaidah
dkk, tanpa tahun). Setelah mencapai ketinggian air tersebut, pipa saringan sirkulasi larva dibuka dan air dari saluran pengeluaran ditampung menggunakan hapa. Larva yang tertampung di dalam hapa dipindahkan ketempat lain menggunakan serokan (Subaidah dan Pramudjo, 1999). Djunaidah dkk (2002) menjelaskan bahwa benur yang berada dalam hapa 0
diserok dan dimasukkan kedalam tampungan dengan suhu air 24 C, setelah semua benih masuk kedalam bak penampungan bisa dilakukan penakaran dan pengemasan untuk transportasi. Untuk perjalanan jarak dekat (< 6 jam) air media transportasi dibuat 0
dengan suhu 22 C. Setiap kantong dengan volume air 8 liter bisa diisi sekitar 5.000 ekor benur dengan volume oksigen bervolume 12 liter. Suhu yang lebih dingin (17 0C) dan kepadatan per kantong lebih rendah (3.000 ekor) diterapkan pada transportasi jarak jauh dengan waktu tempuh lebih dari 6 jam. Proses pemasukkan kantong berisi benur kedalam styrofoam perlu dilakukan agar kondisi suhu terjaga serta penambahan batu terbungkus plastik juga dilakukan untuk mempertahankan suhu agar tidak cepat naik (Djunaidah dkk, 2002) 2.8. Analisa Usaha Tujuan menganalisis aspek keuangan adalah untuk menentukan rencana investasi melalui perhitungan biaya dan manfaat yang diharapkan, dengan membandingkan antara pengeluaran dan pendapatan, seperti ketersediaan dana, biaya modal, kemampuan proyek untuk membayar kembali dana tersebut dalam waktu yang telah ditentukan dan menilai apakah usaha akan dapat berkembang terus (Umar, 2005).
31
Studi kelayakan terhadap aspek keuangan bertujuan untuk menganalisis prakiraan aliran kas yang terjadi. Pada umumnya ada empat metode yang biasa dipertimbangkan untuk penilaian aliran kas dari suatu investasi yaitu paybac
period, net present value, internal rate of return, dan profitability index, serta analisa break even point (Umar, 2005). 2.8.1. Perkiraan Laba Rugi Perkiraan laba rugi adalah bagian laporan keuangan sebagai salah satu perangkat analisis keuangan berbentuk tabel yang memperkirakan seluruh pendapatan dan seluruh biaya beserta selisihnya sehingga dapat mengetahui apakah usaha mengalami laba atau rugi. Perhitungan laba rugi dilakukan paling tidak sampai dengan kewajiban kredit selesai. Prakiraan laba rugi umumnya terdiri dari jumlah produksi, hasil penjualan, nilai sisa, biaya produksi, laba operasi, biaya lain – lain, laba sebelum bunga, laba sebelum pajak, dan laba bersih. 2.8.2. Aliran Kas Umar (2005) menjelaskan bahwa perubahan kas (cash flow statement) disusun untuk menunjukkan perubahan kas selama satu periode tertentu serta memberikan alasan mengenai perubahan kas tersebut dengan menunjukkan dari mana sumber – sumber kas dan penggunaan – penggunaannya. 2.8.3. Analisa Investasi
Payback period adalah suatu periode yang diperlukan untuk menutup kembali pengeluaran investasi awal dengan menggunakan aliran kas. Perhitungan
payback period adalah dengan membandingkan antara nilai invetasi awal dengan aliran kas masuk nya. Nilai yang dihasilkan memiliki satuan waktu. Selanjutnya nilai rasio tersebut dibandingkan dengan maximum payback period atau rencana
32
umur usaha (Umar, 2005). Jika payback period < umur usaha, maka dikatakan investasi dapat diterima. A. Internal Rate of Return Metode ini digunakan untuk mencari tingkat bunga yang menyamakan nilai dari arus kas yang akan datang, atau penerimaan kas, dengan mengeluarkan investasi awal. Teknisnya yaitu dengan menggunakan metode coba – coba yaitu, menghitung nilai sekarang dari suatu arus kas investasi dengan menggunakan suku bunga yang wajar. Suku bunga ditetapkan sampai dengan nilai sekarang (present value) = nilai investasi. Kriteria penilaian dilakukan bila IRR yang didapat lebih besar dari rate of return yang ditentukan, maka investasi dapat diterima (Umar, 2005). B.
Net Present Value Umar (2005) mengatakan bahwa NPV adalah selisih antara present value
dari investasi dengan nilai sekarang dari penerimaan – penerimaan kas bersih di masa yang akan datang. Kriteria penilaian NPV adalah sebagai berikut: NPV > 0, maka usulan usaha diterima NPV < 0, maka usulan proyek ditolak NPV = 0, maka dikatakan bahwa nilai usaha tetap walaupun usulan usaha diterima maupun ditolak. C. Profitability Indeks atau Benefit Cost Ratio Pemakaian metode ini adalah dengan menghitung perbandingan antara nilai sekarang dari rencana penerimaan – penerimaan kas bersih yang akan datang dari investasi yang telah dilaksanakan. Usaha dikatakan layak apabila Profitability
Index > 1 (Umar, 2005).
33
2.8.4. Break Even Point (BEP) Analisis pulang pokok atau break even point adalah suatu alat analisis yang digunakan untuk mengetahui hubungan antara beberapa variabel di dalam kegiatan
perusahaan,
seperti
luas
produksi
atau
tingkat
produksi
yang
dilaksanakan, biaya yang dikeluarkan, serta pendapatan yang diterima perusahaan dari kegiatannya. Biaya operasi merupakan pengeluaran yang ada karena kegiatan perusahaan. Biaya operasional terbagi menjadi tiga bagian, yaitu biaya tetap, biaya variabel, dan biaya semi variabel (Umar, 2005).
34
BAB 3 METODOLOGI
3.1. Waktu dan Tempat Praktek Integrasi Praktek integrasi ini dilakukan pada tanggal 5 Mei 2011 sampai dengan 3 Juli
2011. Lokasi praktek integrasi ini adalah di PT Central Pertiwi Bahari
Breeding Operation yang terletak di desa Suak, kecamatan Sidomulyo, Kab. Lampung Selatan, Provinsi Lampung. 3.2. Alat dan Bahan 3.2.1. Alat Alat yang digunakan pada pelaksanaan praktek integrasi adalah seperti Tabel 5. di bawah ini. Tabel 5. Alat yang Digunakan Selama Praktek No 1
Alat Ruang receiving
Jumlah 1 unit
Spesifikasi 24 m x 30 m
2 3
Bak maturasi Bak peneluran
6 unit 32 unit
3 m x 11 m x 0,9 m Ukuran 1000 liter
4
Bak penampungan
16 unit
Ukuran 500 liter
5 6
Tabung oksigen Bak intake
2 unit
7
Sand filter I
2 unit
8
Sand filter II
2 unit
9
Pompa listrik
10 unit
1,65 m x 5,12 m x 2,70 m 3,9 m x 5,12 m x 2,45 m 10 m x 5,12 m x 2,45 m 10 HP. 3PH. Tipe
10
Generator ozon
1 unit
11
Bak kultur plankton
28 unit
100X80.FSSF 575 merk Ebara Tipe NFW.130.A.S KOHLN Germany, kapasitas 130 g O3/jam 6,83 m x 5,7 m x 1,8 m
Kegunaan Penerimaan induk baru Pematangan induk Peneluran induk dan penetasan Penampungan nauplii Oksigenasi Filtrasi penyediaan air Filtrasi penyediaan air Filtrasi penyediaan air Transportasi air
Ozonisasi
Kultur masal plankton
35
Lanjutan Tabel 5. No Alat 12 Bak kultur artemia
12 unit
14
Bak pemeliharaan larva Beaker glass
Spesifikasi 1,6 m x 1,02 m x 1,48 m 9mx7mx2m
12 unit
500 ml
15
Seser benur
4 unit
13
Jumlah 25 unit
16
Jaring panen
4 unit
17
Timbangan pakan
1 unit
18
Filter bag
12 unit
19
Selang aerasi
20
Batu aerasi dan timah pemberat Mikroskop
21
Mesh size 56 (600 – 625 mikron) diameter 30 cm 70 cm x 90 cm x 75 cm mesh 56 Mettler Toledo PB 802 ketelitian 1 g Diameter 6 inch 88 cm x 30 cm Diameter 5 mm merek green marine Berat 100 gram
1 unit
Kegunaan Penetasan artemia Pemeliharaan larva sampai stadia PL Pengamatan visual larva Menyeser benur saat panen Menampung benur saat panen Menimbang pakan Filtrasi air masuk Pensuplai udara Pemerataan aerasi dan pemberat Pengamatan larva
3.2.2. Bahan Bahan yang digunakan pada pelaksanaan praktek integrasi adalah seperti Tabel 6. Tabel 6. Daftar Bahan yang Digunakan Selama Praktek No Nama Bahan Jumlah Spesifikasi 1 Induk Udang 2 3 4 5 6
Polychaeta Artemia beku Cumi beku CaOCl2 Formalin teknis
Bahan aktif 60% Bahan aktif 37%
7 8
Vitamin C Povidone iodin
Serbuk dan cair Bahan aktif 10%
9
Es balok
10
KMnO4
Kegunaan Pemproduksi telur dan nauplii Pakan induk Pakan induk Pakan induk Desinfektan Fumigasi dan uji stress benur Prophylaksis Desinfeksi peralatan dan bak Penurun suhu saat transportasi benur Fumigasi lingkungan
36
Lanjutan Tabel 6. No Nama Bahan 11 EDTA
Jumlah 5 ppm
Spesifikasi serbuk
12
Urea
25 ppm
padatan
13
NPK
10 ppm
padatan
14
TSP
5 ppm
padatan
15
Vitamin B
tablet
16
FeCl3
serbuk
17 18
CP – 00 – 03 H2O2
Serbuk Cair
Kegunaan Mengikat logam berat yang ada dalam air Sumber nutrisi fitoplankton Sumber nutrisi fitoplankton Sumber nutrisi fitoplankton Merangsang hormon pertumbuhan Unsur pembentuk klorofil Pakan buatan larva Menaikan cangkang kista secara cepat
3.3. Metode Kerja 3.3.1. Metode Pengumpulan Data Metode praktek yang digunakan adalah pola magang, yaitu melakukan pengamatan dan mengikuti kegiatan langsung di lapangan selama melaksanakan praktek di berbagai departemen yang telah ditentukan perusahaan yaitu departemen pengelolaan induk dan produksi nauplii, departemen pakan alami, serta departemen produksi benur. Selain itu juga melakukan wawancara kepada pihak terkait dan mencatat data sekunder yang ada di perusahaan untuk melengkapi data yang tidak dapat diperoleh melalui kegiatan praktek. Berikut ini merupakan langkah kerja dari masing – masing kegiatan yang dilakukan selama melakukan praktek di PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation.
37
A. Kegiatan Operasional Pendukung a.
Pengelolaan Air 1) Air dipompa dari laut menuju bak intake 2) Air dialirkan melalui dua kali proses filtrasi sand filter 3) Air hasil filtrasi ditampung dalam bak penampungan I 4) Air yang telah bersih dipompa dan ditampung di bak-bak reservoir dengan melewati pressurized filter dan proses ozonisasi 5)
Air yang telah diozon disirkulasi melewati pressurized filter paling tidak selama 4 jam dan diendapkan selama 4 jam.
6) Air
siap
didistribusikan
menuju
departemen-departemen
yang
membutuhkan b.
Kultur Fitoplankton (Diatom) 1) Mencuci
bersih
semua
peralatan
yang
akan
digunakan
dengan
menggunakan larutan detergen dan bilas dengan air tawar 2) Mengeringkan peralatan sebelum digunakan 3) Menyiapkan air dengan salinitas 28 ppt yang sudah diozon dan disaring dengan menggunakan filter bag 4) Memasukan EDTA2Na 3-5 ppm kedalam media dan beri aerasi dengan kekuatan sedang sedikitnya 4 jam 5) Memasukan pupuk sesuai dengan dosis
38
6) Setelah pupuk tercampur dengan air, menginokulasikan bibit diatom berumur 24 jam sebanyak 10-30 % 7) Diatom
yang
telah
berumur
24
jam
dipanen
dengan
cara
mendistribusikannya menggunakan pompa menuju modul-modul yang membutuhkan c.
Penetasan Artemia 1) Mengisi bak penetasan dengan air laut yang tlah diozon melalui filtrasi dengan filter bag 2) Membuka kran aerasi sehingga menghasilkan gelembung udara yang cukup besar untuk mengaduk kista yang akan ditetaskan 3) Memasukan kista yang teah didesinfeksi kedalam bak penetasan dengan kepadatan 1-2 gram per liter 4)
Menginkubasi selama 24-30 jam dengan menggunakan aerasi kuat
5)
Setelah 24 jam artemia yang sudah menetas siap untuk dipanen dengan cara: -
Memasang pipa panen pada lubang pengeluaran di dalam bak.
-
Mematikan aerasi selama 20-30 menit untuk membiarkan cangkang naik ke permukaan air dan terpisah dari nauplii artemia yang menetas sementara bagian atas bak ditutup dengan penutup berwarna hitam
-
Membuka kran pengeluaran air yang terdapat di sisi luar bak yang akan dipanen dan biarkan nauplii artemia keluar dengan kecepatan air rendah-sedang
-
Mencuci nauplii artemia menggunakan air tawar yang mengalir selama 5-10 menit hingga bersih dari lendir
39
-
Memindahkan nauplii artemia kedalam bak fiber kerucut yang berisi air tawar 250-500 liter ( 1,5-2 kg kista) dan beri aerasi kuat
-
Memberikan Peroksida (H2O2) dengan dosis 1000 ppm
-
Mematikan aerasi dan tutup bagian atas bak dengan penutup berwarna hitam selama 15-25 menit
-
Membuka kran pada pipa pengeluaran dengan kecepatan aliran rendah-sedang sampai nauplii artemia terpanen dan cangkangnya tidak terbawa lagi
-
Mencuci nauplii artemia dengan air tawar mengalir dan kemudian siap untuk diberikan kepada modul-modul yang membutuhkan
B. Pemeliharaan Larva dan Post Larva a.
Fumigasi 1) Menyiapkan ember/kaleng, gayung, PK, dan formalin teknis 2) Memasukkan 0,5 kg PK kedalam kaleng dan letakan di enam titik dalam ruangan modul/bagian luar bak serta masing-masing satu titik di dalam bak pemeliharaan 3) Secara bersama-sama dan hati-hati, memasukkan formalin teknis sebanyak 1 liter dalam setiap kaleng tersebut 4) Menutup rapat ruangan setiap bak dan ruangan dan biarkan paling tidak 24 jam 5) Proses fumigasi dapat dilakukan 2-3 kali tergantung lamanya masa pengeringan dan persiapan
40
b.
Pencucian Bak, Peralatan, dan Sanitasi 1) Mencuci bak dan semua peralatannya dengan menggunakan detergen kemudian keringkan 2) Melakukan perendaman seluruh peralatan pendukung operasional dengan larutan kaporit 100 ppm selama 24 jam, kemudian lakukan pencucian menggunakan detergen, lalu keringkan kembali 3) Menyiapkan larutan PK 100 ppm pada tempat cuci kaki ( foot bath) di depan ruang pemeliharaan larva 4) Menyiapkan larutan iodin 200 ppm di dalam ember-ember 20 liter dan tempatkan di masing-masing bak pemeliharaan larva untuk merendam beaker glass yang akan digunakan selama masa pemeliharaan. Gunakan satu alat untuk satu bak.
c.
Persiapan Air dan Penebaran Nauplii 1) Mengisi bak dengan air laut yang telah ditreatment sebanyak 70 % dari total kapasitas 2) Membuka saluran aerasi dan lakukan penyetelan besar kecilnya aerasi. Usahakan gelembung udara yang dihasilkan tidak terlalu kuat dan tidak terlalu lemah 3) Melakukan pemberian EDTA2Na 3-5 ppm 6 jam sebelum nauplii ditebar 4) Plankton (Chaetoceros sp) diberikan 6 jam sebelum penebaran nauplii 5) Melakukan Penebaran Nauplii dengan Cara: -
Membuka ikatan kantong plastik berisi nauplii dan bilas bagian luar kantong dengan larutan iodin 200 ppm
41
-
Memasukan naupli dalam kantong plastik kedalam ember tebar yang telah disiapkan
-
Memasukan ember tebar kedalam bak pemeliharaan dan beri aerasi kedalamnya
-
Membuka penyumbat dasar ember agar air dalam bak sedikit demi sedikit masuk ke dalam ember dan biarkan ember tenggelam secara perlahan-lahan
d.
Menebar naupii secara perlahan-lahan kedalam bak pemeliharaan
Pemberian Fitoplankton 1) Plankton diberikan pada stadia zoea sampai dengan PL 1 2) Frekuensi pemberian plankton adalah tiga kali sehari yaitu pada pukul 08.00, 13.00, dan 19.00. 3) Jumlah plankton yang diberikan pada setiap stadia dibedakan sesuai dengan kebutuhan makannya 4) Persiapan dan penyediaan plankton dapat dilakukan sesuai standar operasional yang telah ditetapkan (terlampir) 5) Mentransfer plankton menggunakan pompa
e.
Pemberian Artemia 1) Artemia diberikan pada stadia MPL sampai dengan PL panen 2) Frekuensi pemberian artemia adalah tiga kali sehari yaitu pada pukul 09.00, 15.00, dan 21.00. 3) Jumlah total artemia yang diberikan adalah sekitar 5 kg per juta benur yang dihasilkan dengan contoh pemberian terlampir
42
4) Persiapan dan penyediaan artemia dapat dilakukan sesuai standar operasional yang telah ditetapkan 5) Melakukan penebaran nauplii artemia ke dalam bak pemeliharaan secara merata dengan menggunakan gayung pakan 6) Penentuan kista artemia yang ditetaskan f.
Pemberian Pakan Buatan 1) Mencatat jumlah pakan yang diperlukan sesuai dengan nomor bak 2) Menimbang pakan bersama tempat (plastik) yang sudah diberi nomor bak yang akan diberi pakan 3) Satu per satu, Menuangkan pakan kedalam saringan pakan dengan ukuran sesuai kebutuhan, kemudian hancurkan serta larutkan di dalam air laut 10 liter yang sudah disiapkan di dalam ember agar ukuran partikel pakan sesuai dengan bukaan mulut larva 4) Menyebarkan pakan secara merata ke dalam bak pemeliharaan dengan menggunakan gayung 5) Setelah selesai, mencuci ember dan gayung hingga bersih dan simpan kembali di tempat masing-masing
g.
Pengamatan dan Pencatatan Aktifitas Larva / PL 1) Mengambil
media
pemeliharaan
dan
benur
dalam
bak
dengan
menggunakan beaker glass 500 ml 2) Mengamati larva di tempat terang mengenai respon terhadap cahaya maupun aktifitas dan cara renangnya yang menjadi indikator kesehatan benur
43
3) Mengamati keberadaan partikel makanan di dalam air dengan melihat kekeruhan maupun warna media. 4) Melakukan pengamatan terhadap keberadaan feces di media pemeliharaan terutama pada stadia zoea 5) Melakukan pengamatan terhadap kondisi fisik larva/PL dengan mengamati warna tubuh/pigmentasi serta abnormalitas morfologinya. h.
Pendugaan Populasi 1) Mengambil sampel secara acak di tempat titik dalam bak pemeliharaan dengan mempergunakan beaker glass 500 ml 2) Menghitung jumlah larva/PL pada setiap pengambilan dan konversikan hasilnya dengan persamaan berikut:
C. Panen Benur a.
Persiapan Air Panen 3
1) Memasukkan 10 m air laut di bak tandon, lengkapi dengan aerasi kuat dan lakukan pemerikasaan terhadap salinitasnya 2) Memasukkan air tawar dan sesuaikan salinitasnya sampai mencapai 1 ppt lebih tinggi dari salinitas air panen 3) Menambahkan 13 balok es dalam bak 4) Memasukkan sensor termometer kedalam bak tersebut untuk mengetahui perubahan suhu 5) Menghidupkan
pompa
untuk
mensirkulasi
air
dan
pencampuran air dengan es yang telah mencair 6) Mematikan pompa setelah 15 menit, sek salinitas dan suhu
mempercepat
44
7) Setelah suhu dan salinitas yang diinginkan di bak tandon tercapai, memindahkan air tersebut ke dalam bak-bak fiber penampungan berukuran 1m
3
8) Menginjeksi air dalam bak fiber penampungan tersebut dengan oksigen untuk memperoleh kadar DO > 20 ppm. Biasanya diperlukan waktu minimal 7-10 menit untuk meningkatkan DO sesuai dengan standar tersebut 9) Menambahkan artemia dengan kepadatan 1-2 ekor/ml ke dalam bak-bak fiber penampungan tersebut untuk kemudian siap digunakan sebagai air
packaging benur b.
Persiapan Air Penampungan Benur 1) Menyiapkan tank fiber 500 liter untuk menampung benur dari bak pemeliharaan (1 bak = 500.000 ekor benur) 2) Mengisi sepertiga bagian bak tersebut dengan air bersalinitas sesuai dan 0
suhu 28 C dan dilengkapi dengan aerasi oksigen murni maupun oksigen dari blower dengan kekuatan sedang c.
Persiapan Air Aklimatisasi Suhu 1) Menyiapkan bak fiber ukuran 300 liter sebanyak 3 unit dan atur posisinya berurutan 2) Mengisi bak-bak tersebut dengan air laut yang telah disiapkan di bak 0
tandon yang bersuhu 23
C dan lakukan penyesuaian suhu pada 0
masing-masing bak sehingga diperoleh suhu akhir 26 C, 0
0
0
24 C, dan 23 0
C untuk proses aklimatisasi. Peningkatan suhu dari 24 C dan 26 C dapat
45
dilakukan dengan menambahkan air laut langsung dari pipa air laut yang belum diturunkan suhunya. d.
Pemanenan Benur 1) Menyiapkan rangka panen yang terbuat dari stainless steel dan dilengkapi net panen 2) Menyiapkan seser benur 3) Melakukan penurunan air di bak pemeliharaan yang akan dipanen sampai tesisa 25% dari total volume bak 4) Memasang rangka dan jaring panen pada pipa pembuangan di luar bak 5) Menutup sebagian siring (jalan air) yang terdapat di bak panen dengan papan sampai ketinggian tertentu agar air tetap tergenang 6) Mencabut pipa saringan pembuangan agar benur dapat keluar 7) Menyiapkan dan mengisi ember transfer dengan air dari bak asal 75% bagian dan injeksi dengan oksigen dari tabung yang telah disiapkan selama + 2 menit untuk meningkatkan DO menjadi > 12 ppm. Lakukan injeksi oksigen tersebut dengan aerasi sedang 8) Benur yang keluar dan tertampung dalam net panen diseser/diserok dengan menggunakan seser mesh size 56, kemudian ditampung dalam ember transfer yang telah dioksigenasi dengan kepadatan benur per ember kurang lebih 50.000 ekor 9) Membawa ember berisi benur tersebut ke packing area dan masukkan kedalam fiber penampungan benur dengan kepadatan maksimal 500.000 ekor benur per bak
46
e.
Pengepakan 1) Memindahkan benur menggunakan seser mesh size 56 dari fiber 0
penampungan ke tank aklimatisasi I (26 C) dan tampung di dalam net aklimatisasi dengan kepadatan maksimal 100.000 ekor benur 2) Melakukan penyesuaian suhu minimal selama dua menit. Selanjutnya pindahkan ke net aklimatisasi berikutnya (24
0
0
C dan 23 C) dengan
rentang waktu yang sama 3) Pada masing-masing net aklimatisasi, melengkapi dengan aerasi oksigen murni dan aerasi blower untuk mensuplai oksigen bagi benur 4) Menyerok benur dari net aklimatisasi terakhir dengan seser mesh 56 kemudian lakukan penakaran (scooping) benur dengan menggunakan takaran dan masukkan kedalam kantong benur yang sudah terisi air laut 8 liter. Kepadatan benur per kantong adalah 4-7 ribu ekor. Selama dilakukan penakaran, posisi seser harus tetap terendam air dan dilengkapi aerasi pada bagian luar seser agar suplai oksigen tetap terjamin 5) Menambahkan es diantara kantong plastik yang terisi benur dan kantong kedua 6) Melakukan penambahan oksigen kedalam kantong plastik benur dengan perbandingan 1 bagian air : 2 bagian oksigen 7) Mengikat plastik dengan karet 8) Memasukan kantong berisi benur kedalam master karton / styrofoam box untuk selanjutnya diikat dengan strapping band 9) Benur siap didistribusikan/transportasi
47
f.
Pendugaan Jumlah Benur per Kantong 1) Mengambil secara acak kantong-kantong plastik yang telah berisi benur yang telah ditakar sebanyak tiga kantong 2) Sampel yang diambil adalah kantong saat awal penakaran, pertengahan, dan akhir untuk meningkatkan akurasi 3) Menghitung benur pada masing-masing kantong 4) Mengestimasi per kantong ditetapkan sebagai jumlah minimum dari tiga sampel yang diambil
g. Pengeringan 1) Mencabut batu aerasi dan timah pemberat segera setelah proses panen selesai dan lakukan perendaman dengan detergen selama 24 jam, selanjutnya dilakukan pencucian dan pembilasan dengan air tawar 2) Menjemur batu aerasi dan timah tersebut di dalam modul sampai kering 3) Melepas selang aerasi dalam bak, lakukan pencucian dengan deterjen dan air laut 4) Merendam selang aerasi tersebut dalam larutan formalin 1000 ppm selama 24 jam dan selanjutnya lakukan penjemuran sampai kering 5) Melakukan pencucian bak pemeliharaan dengan larutan deterjen dan bilas dengan air tawar 6) Melakukan
pencucian
seluruh
peralatan
pendukung
operasional
pemeliharaan benur dengan larutan deterjen selanjutnya kering udara kan 7) Melakukan penggelontoran terhadap dinding dan lantai bak serta lantai ruangan pemeliharaan dengan larutan kaporit 1000 ppm dan biarkan sampai akan digunakan kembali
48
3.3.2. Metode Analisis Data Analisis data diawali dengan kegiatan pengolahan data yang meliputi kegiatan tabulasi dan sortasi data. Setelah ditabulasikan dan dipilih, selanjutnya data diolah sesuai dengan tema dan tujuan praktek yaitu usaha pembenihan udang vaname. Hasil pengolahan data disajikan dalam bentuk tabel, gambar, maupun grafik. Selanjutnya data dianalisis atau dikaji secara lebih mendalam mengarah kepada tujuan praktek yaitu menjelaskan ruang lingkup usaha pembenihan udang vaname dilihat dari apek teknis dan keuangan. Metoda analisa data yang digunakan adalah analisa deskriptif atau kualitatif dan analisa kuantitaif A. Analisa Deskriptif (Kualitatif) Dilakukan dengan menggambarkan dengan jelas mengenai usaha pembenihan udang vaname (Litopenaeus vannamei) di lokasi praktek dan membandingkan dengan kepustakaan yang ada. B. Analisa kuantitatif Analisa kuantitatif dilakukan dengan menganalisa data di lapangan dengan menggunakan berbagai persamaan. Data kuantitatif yang dapat dianalisa adalah sebagai berikut: 1)
Derajat fertilitas telur
jumlah telur yang fertil (butir) ×100% Derajat fertilitas (%) = jumlah telur yang dihasilkan (butir) 2)
Fekunditas induk
telur yang dihasilkan (butir) Fekunditas = jumlahbobot induk betina (g)
49
3)
Hatching Rate
nauplii yang menetas (ekor) ×100% HR (%) = Jumlahjumlah telur fertil (butir) 4)
Kepadatan nauplii
jumlah nauplii (ekor)
Kepadatan nauplii = 5)
volume bak pemeliharaan (liter)
Survival Rate (Wyban dan Sweeney, 1991)
jumlah populasi terhitung SR (%) = jumlah nauplii yang ditebar pada hari ke 1 ×100% 6)
NPV (Umar, 2005)
CF୲ − I NPV= (1+K) ୲ ୲ Keterangan: NPV
7)
= Net Present Value
CFt
= aliran kas per tahun t
I0
= investasi awal
K
= suku bunga
IRR (Umar, 2005)
IRR=P − C × CP −− PC Keterangan:
P1 = tingkat bunga ke 1 P2 = tingkat bunga ke 2 C1 = NPV ke 1 C2 = NPV ke 2
50
8)
B/C Ratio (Umar, 2005)
value kas masuk PI = Present investasi awal 9)
BEP
BEP=
Biaya tetap biaya variabel 1 − jumlah penjualan
51
BAB 4 KEADAAN UMUM LOKASI
4.1. Lokasi PT CPB Breeding Operation merupakan perusahaan yang bergerak di bidang pembenihan udang vaname (Litopenaeus vannamei) terletak di Desa Suak, Kecamatan Sidomulyo, Kabupaten Lampung Selatan - Provinsi Lampung, seperti 0
yang digambarkan oleh Gambar 1. Letak astronomis PT CPB adalah 5 39` LS dan 0
105 28` BT. Sedangkan secara geografis PT CPB terletak pada sebuah teluk, sebelah utara dan sebelah timur berbatasan dengan Desa Budidaya, sedangkan sebelah barat dan selatan berbatasan dengan samudera Hindia. Lokasi area perusahaan yang terletak pada teluk ini sangat strategis karena dapat terhindar dari pengaruh musim yang sangat ekstrim sepanjang tahun sehingga sejak berdirinya perusahaan tidak pernah mengalami banjir maupun terkena abrasi.
Gambar 1. Lokasi PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation
52
Luas total wilayah perusahaan ini adalah 123,37 ha yang terdiri atas 35% sebagai area produksi, 20% sebagai area pendukung, 10% sebagai area riset dan sisanya 35% sebagai area ekspansi. 4.2. Sumber Daya Manusia dan Struktur Organisasi Jumlah total karyawan di PT CPB Breeding Operation adalah sebanyak 452 orang yang terdiri dari 93% pria dan 7% wanita. Adapun latar belakang pendidikan karyawan beragam mulai dari tingkat sekolah dasar sampai dengan tingkat sarjana. Berikut ini adalah Tabel 7. mengenai penggolongan karyawan berdasarkan latar belakang pendidikan. Tabel 7. Klasifikasi Karyawan Berdasarkan Latar Belakang Pendidikan Latar Belakang Pendidikan Persentase SD 3% SMP 6% SMA 73 % Diploma 8% Sarjana 10%
Perusahaan ini dipimpin oleh seorang manajer tertinggi hatchery yang membawahi beberapa wilayah produksi di seluruh Indonesia. Pimpinan tertinggi di Hatchery Suak, Sidomulyo adalah Bapak A. Musyafik yang secara langsung memimpin seluruh departemen yang ada di bawahnya sesuai dengan tugas dan fungsinya masing – masing. Struktur organisasi perusahaan dapat dilihat pada Gambar 2.
53
Hatchery (Breeding Operation) Hatchery di Desa Suak
Admin Produksi
MNPD
PD
Support Production
Biofeed
FIS
Engineering & GA - BO
ambar 2. Struktur Organisasi Perusahaan
4.3. Kapasitas Prod ksi dan Wilayah Pemasaran Perusahaan ini mampu melakukan produksi sampai dengan 6,6 milyar benur per tahun. Dis ribusi benur 90% menuju wilayah pertamb kan CPB farms yang terletak di kabupaten Tulangbawang. Dan sisanya menuju asar bebas yaitu kepada tambak – tambak pembesaran milik pihak lain baik i u milik pribadi maupun afiliasi perusahaan yang bergerak di bidang pembesaran dang. 4.4. Fasilitas Fasilitas ya g dimiliki PT CPB Breeding Operation da pat digolongkan menjadi 2 kelompok yaitu fasilitas fungsional dan fasilitas pen ukung. Fasilitas fungsional terdiri ata
Fry
Production
aturation and Nauplii Production Depar ement (MNPD), epartement
(FPD),
Biofeed
Departeme t
(BD),
area
54
pengemasan, dan laboratorium. Fasilitas pendukung antara lain perumahan, perkantoran, kantin, koperasi, dan sarana olahraga. 4.4.1. Maturation and Nauplii Production Departement (MNPD)
Maturation and Nauplii Production Departement (MNPD) adalah sebuah departemen yang berfungsi untuk mengelola induk dari mulai pengadaan induk, penerimaann induk, pemeliharaan induk, sampai dengan menghasilkan nauplii. Induk yang dipelihara di MNPD merupakan induk vaname yang berjenis Specific
Patogen Free (SPF) dan Specific Patogen Resistant (SPR) berasal dari Shrimp Improvement System (SIS), Florida. Departemen ini memiliki sebuah ruangan pengelolaan induk yang terdiri dari empat ruangan yaitu receiving room,
maturation room, spawning and hatching room, dan holding room. Gambar setiap ruangan dapat dilihat pada Gambar 3. Induk yang baru datang kemudian diaklimatisasi dan dipelihara di dalam bak receiving selama kurang lebih dua minggu. Setelah induk beradaptasi dengan lingkungan baru yang ditandai dengan nafsu makan meningkat, induk betina selanjutnya diablasi dan dipindahkan menuju bak pematangan telur (maturaion tank) bersama – sama dengan induk jantan. Kemudian setelah terjadi perkawinan, induk betina dipindahkan menuju bak peneluran dan penetasan telur ( spawning and hatching tank). Telur yang telah keluar dibiarkan sampai dengan menetas menjadi nauplii dan dipindahkan menuju bak penampungan (holding tank). Setelah itu kemudian nauplii ditransfer menuju departemen lain yang bertugas untuk memelihara nauplii sampai menjadi benur dan siap jual yaitu FPD.
55
Gambar 3. Ruangan Dalam Maturation and Nauplii Production Departement
4.4.2. Fry Production Departement (FPD)
Fry Production Departement (FPD) adalah departemen yang berfungsi untuk memproduksi benur. Departemen ini merupakan suatu depertemen yang terintegrasi untuk memproduksi benur sehingga lokasinya berdekatan dengan departemen lain yang menunjang bagi kelangsungan produksi seperti departemen pakan alami, departemen air, dan departemen pengendali mutu. Dalam departemen ini nauplii yang berasal dari MNPD dipelihara sampai dengan stadia PL 10 untuk kemudian dipanen dan didistribusikan menuju pasar, baik itu menuju lokasi tambak (pond site), pasar bebas, maupun menuju afiliasi perusahaan. Departemen ini terdiri dari lima unit hatchery. Masing – masing hatchery terdiri dari 5 modul yang masing – masing memiliki 12 bak pemeliharaan dengan 3
volume maksimal 100 m . Target produksi setiap modul adalah 60 juta benur per siklus. 4.4.3. Departemen Pengelola Air ( Water Departement) Departemen ini berfungsi untuk memproduksi air steril yang memiliki kualitas sesuai dengan permintaan yang dibutuhkan departemen lain. Air yang diolah berasal dari air laut yang diproses melalui filtrasi dan ozonisasi. Air yang sudah memliki kualitas air sesuai, disimpan dalam bak penampungan besar atau 3
resevoir bervolume 700 m . Fasilitas yang dimilki departemen pengelola air ini
56
antara lain pipa pemasukan air, filter pasir, reservoir, filter bertekanan, dan generator ozon. 4.4.4. Biofeed Departement
Biofeed
departement
adalah
departemen
yang
berfungsi
untuk
mendukung kelangsungan proses produksi benur dengan menyediakan pakan alami bagi larva yang sesuai dengan stadia larva. Departemen ini terdiri dari unit kultur alga dan unit penetasan artemia. Unit kultur alga berfungsi untuk menyediakan alga mulai dari skala laboratorium sampai dengan skala masal dan akhirnya ditranfer menuju bak pemeliharaan larva sesuai dengan permintaan modul. Kultur alga skala laboratorium dimulai dari kultur dalam ukuran tabung, botol, sampai dengan galon. Kultur selanjutnya adalah kultur skala intermediate yang dilakukan dalam bak berkapasitas 9 m3. Tahapan kultur masal dilakukan dalam bak bervolume 60 3
m. Unit penetasan artemia berfungsi untuk menyediakan kebutuhan nauplii artemia hidup bagi setiap modul. Penetasan artemia ini menggunakan bak 3
bervolume 2 m dengan kepadatan kista 1,5 – 2 gram per liter. 4.4.5. Departemen Pengendali Mutu (Quality Control) Departemen ini berfungsi untuk melakukan pengecekan kualitas biota yang dipelihara pada masing-masing departemen. Hal ini untuk memastikan agar output masing-masing departemen memenuhi standar yang telah ditetapkan. Kualitas yang diamati adalah kualitas induk, nauplii, alga, dan benur. Selain itu juga, pemeriksaan dilakukan terhadap keberadaan bakteri, epibion, virus, serta kualitas air media pemeliharaan.
57
4.5. Sumber Tenaga Listrik PT CPB Breeding Operation memiliki sumber listrik yang berasal dari PLN dengan daya 1,2 mega watt. Sebagai cadangan, perusahaan ini juga memiliki empat unit generator dengan kapasitas 500 kVA per unit. 4.6. Alur Produksi PT CPB Breeding Operation memiliki dua departemen utama untuk melaksanakan kegiatan produksi. Departemen tersebut adalah Maturation and
Nauplii Production Departement (MNPD) dan Fry Production Departement (FPD). Proses produksi dimulai dari penentuan kapasitas produksi berdasarkan permintaan benur dari tambak CPB, afiliasi, dan pasar bebas. Sejumlah induk didatangkan oleh MNPD sesuai dengan rencana produksi tersebut untuk memproduksi nauplii. Nauplii yang dihasilkan ditransfer menuju FPD dan dipelihara sampai dengan PL 10. Benur yang telah lolos pengecekkan laboratorium selanjutnya dipanen dan dikirim menuju tambak pembesaran. Alur produksi dapat dilihat pada Gambar 4. Proses produksi tersebut didukung oleh divisi lain untuk menjamin kelancaran produksi dan mengontrol mutu benur yang akan dipasarkan. Divisi tersebut antara lain adalah Algae Production Departement (APD), kultur artemia,
water departement, dan bagian laboratorium.
58
Sumber : PT Central Pertiwi Bahari Breeding Operation
Gambar 4. Bagan Alur Produksi Perusahaan
Bagian laboratorium khusus melakukan kegiatan pengamatan terhadap kualitas output dari masing-masing departemen seperti artemia, alga, nauplii, benur, jumlah bakteri, virus, dan bahkan kualitas air.
59
BAB 5 HASIL DAN PEMBAHASAN
5.1. Penyediaan Air Pemeliharaan Sumber air yang dipakai untuk melakukan kegiatan produksi berasal dari perairan di sekitar hatchery. Dasar perairan di sekitar hatchery merupakan karang berpasir. Sehingga secara visual perairan ini selalu jernih. Keadaan sumber air ini sesuai dengan pendapat Djunaidah dkk (2002) yang menyatakan bahwa air laut yang jernih merupakan salah satu faktor dalam penentuan lokasi hatchery. Air langsung diambil dari laut menggunakan pompa yang berjarak 300 meter ke arah laut dengan kedalaman air 20 m melalui pipa saluran utama berdiamter 6 inch. Desinfeksi dilakukan dengan larutan kaporit 60% yang diinjeksi kedalam pipa utama menggunakan alat yang disebut dosing, seperti tampak pada Gambar 5. alat tersebut memompakan sejumlah volume larutan kedalam pipa pada interval waktu tertentu. Alat ini diset agar dapat menginjeksi kaporit untuk mendesinfeksi air dengan dosis 100 ppm. Klorinasi ini melebihi dosis sterilisasi yang di sarankan oleh Moretti dkk (1999) yaitu sebanyak 5 – 10 ppm klorin aktif.
60
Gambar 5. Injeksi Kaporit Menggunakan Dosing
Sistem injeksi ini memanfaatkan gaya gerak air dalam pipa untuk melakukan proses pengadukan kaporit dengan air laut yang masuk sehingga proses desinfeksi berlangsung saat proses transfer dilakukan. Air laut ini kemudian disalurkan menuju dua departemen utama yaitu Maturation and Nauplii
Production Departement (MNPD) dan Fry Production Departement (FPD). Pembagian jalur ini dilakukan karena kualitas air yang dibutuhkan oleh kedua departemen berbeda terutama pada parameter salinitas. MNPD membutuhkan air dengan salinitas 31 ppt-33 ppt sedangkan FPD membutuhkan air dengan salinitas 28 ppt-30 ppt. Pembagian ini bertujuan untuk menyesuaikan kondisi media pemeliharaan udang agar mendekati kondisi habitat aslinya. Wyban dan Sweeney (1991) menjelaskan bahwa induk udang hanya dapat bereproduksi di perairan laut lepas dengan salinitas di atas 30 ppt, sementara udang muda bermigrasi menuju estuari yang memiliki salinitas lebih rendah. Untuk memenuhi kebutuhan air yang bersih dan siap digunakan, maka air yang telah mengalami klorinasi ini selanjutnya dialirkan kedalam serangkaian filter menggunakan sand filter dan pressurized filter serta melalui proses
61
ozonisasi. Proses filtrasi ini dimulai dengan sand filter I dan sand filter II, seperti yang tampak pada Gambar 6. Fungsi dari sand filter ini adalah untuk menyaring partikel-partikel berukuran besar maupun kecil secara bertahap. Selanjutnya air hasil filtrasi tersebut dipompa dan ditampung di bak reservoir melewati
pressurized filter untuk mereduksi bahan-bahan terlarut yang tidak diinginkan di dalam air seperti amonia dan H2S. Untuk kebutuhan pemeliharaan induk, salinitas air laut tidak diturunkan sedangkan untuk keperluan produksi benur, salinitas diturunkan dengan penambahan air tawar. Selama proses transfer tersebut, air dialirkan melalui generator ozon untuk membunuh bakteri atau mikroorganisme lain yang masih terdapat dalam air. Rangkaian proses ini sama dengan yang dijelaskan oleh Djunaidah dkk (2002) bahwa untuk memproduksi air bersih perlu dilakukan pengendapan, penyaringan, dan ozonisasi.
Gambar 6. Sand Filter I dan II
Sand filter I tersusun atas 20 cm batu kali, 10 cm batu split, dan 60 cm pasir silika. Sedangkan sand filter II tersusun dari 15 cm arang batok dan 70 cm pasir silika .Fungsi dari batu kali adalah untuk menahan pasir yang tersusun di atasnya, dan juga untuk memberikan rongga bagi air dari bak intake untuk
62
dapat mengalir ke sand filter II dimana saat yang sama berfungsi juga untuk menahan kotoran yang berukuran besar. Batu split berfungsi untuk menyaring kotoran yang masih lolos dari tahapan penyaringan baru kali. Begitu juga halnya dengan pasir silika berfungsi sebagai filtrasi. Akan tetapi arang batok disisipkan dalam rangkaian proses filtrasi berfungsi sebagai penyerap bahan-bahan anorganik yang tidak diinginkan misalnya amonia dan H 2S, bahkan Djunaidah dkk (2002) menyatakan bahwa karbon aktif dapat menyerap sisa ozon dan logam berat. Bagan aliran air dan susunan bahan filter digambarkan pada Lampiran 15. 5.2. Pemeliharaan Induk Pemeliharaan induk ini meliputi kegiatan persiapan bak dan media pemeliharaan, pematangan induk, dan seleksi induk. Rangkaian proses tersebut mendekati rangkaian proses yang diurutkan oleh Subaidah dan Pramudjo (2008), yaitu pengadaan induk, pematangan gonad, perkawinan, serta pemijahan dan penetasan. 5.2.1. Persiapan Ruangan dan Media Pemeliharaan Ruangan pemeliharaan dikondisikan agar tercipta suasana gelap untuk memberikan kesesuaian dengan kebiasaan udang agar melakukan proses perkawinan. Untuk mencapai kondisi tersebut, dipasang orchid net
di atas
ruangan pemeliharaan. Selanjutnya memasang selang-selang aerasi beserta kelengkapannya mengelilingi bak dengan jarak 30 cm untuk menambah suplai oksigen dalam air. Setelah bak siap untuk digunakan maka dilakukan fumigasi dengan mencampur PK dengan formalin. Gas yang dihasilkan dari pencampuran tersebut dapat membunuh organisme-organisme patogen yang berada di dalam ruangan
63
maupun yang melekat di dinding-dinding bak. Sanitasi bak dan kelengkapannya juga dilakukan dengan menggunakan larutan campuran deterjen dan povidone
iodine 1000 ppm. Sanitasi ini dilakukan untuk mencuci bak dan juga memastikan tidak ada organisme yang masih hidup pada bak pemeliharaan. Bahan – bahan yang digunakan tersebut seperti PK, formalin, dan iodin merupakan bahan desinfeksi yang umum digunakan. 5.2.2. Pematangan Induk Pematangan induk dilakukan pada ruangan maturasi setelah induk diaklimatisasi di ruang receiving dan diablasi. Tujuan pemindahan induk ke ruang maturasi ini adalah untuk memelihara induk agar mencapai matang telur dan kawin. Dalam ruang maturasi terdapat 12 bak yang terpakai untuk memelihara induk. Bak yang digunakan ini berbentuk empat persegi panjang. Induk yang dipelihara dalam ruang maturasi ini sebanyak 2.225 ekor dengan berat rata-rata 52 gram/ekor. Induk-induk ini ditebar pada bak maturasi dengan padat tebar rata-rata 2
5 ekor/m . Rasio kelamin (sex ratio) rata-rata setiap bak adalah
6 jantan : 5
betina. Perbandingan jantan dan betina ini mendekati perbandingan yang dijelaskan oleh Wyban dan Sweeney (1991) yaitu 9 jantan : 7 betina. Kegiatan yang dilakukan selama proses maturasi ini adalah pengelolaan air, pemberian pakan, pemilihan induk mating, dan pengecekan induk yang mati. Sistem pengelolaan air pada bak maturasi adalah dengan sirkulasi secara
flowtrough, yaitu pergantian air dengan cara mengalirkan air baru terus menerus dan membiarkan air lama terbuang. Sehingga air bak maturasi selalu jernih. Pergantian air pada bak maturasi rata-rata maksimal mencapai empat kali per hari.
64
Pergantian air sebanyak ini melebihi persentase pergantian air minimum per hari yang dianjurkan oleh Oceanic Institute dalam buku Wyban dan Sweeney (1991) yaitu sebanyak 200% per hari. Debit air yang dialirkan rata-rata sebesar 3/
4,2 m jam. Air yang digunakan berasal dari divisi khusus yang menangani proses pengolahan air laut mentah menjadi air siap pakai untuk pemeliharaan. Setiap bak maturasi diisi air dengan ketinggian 0,5 m. Volume air 3
dipertahankan pada volume 26 m . Aerasi dipasang sejajar dengan panjang bak. Batu aerasi dipasang tepat di pinggir bak, sesuai dengan yang dijelaskan Djunaidah dkk (2002). Tujuannya adalah untuk menambah DO dalam air tetapi tidak mengganggu kegiatan induk untuk melakukan perkawinan ( mating). Aerasi tersebut diset agar debit udara yang keluar sedang, yaitu tidak terlalu besar dan juga tidak terlalu kecil. Secara kuantitatif, debit udara yang keluar diusahakan berkisar 0,1 liter/detik. Data perhitungan debit air bak maturasi terdapat pada Lampiran 5. Penyiponan dilakukan pada pukul 07.30 WIB untuk membuang kotoran yang berasal dari sisa pakan dan feces dan mengendap di dasar. Dengan demikian dasar bak selalu bersih setiap hari. Hal ini sesuai dengan yang dijelaskan oleh Wyban dan Sweeney (1991) bahwa penyiponan bak maturasi dilakukan sebelum pemberian pakan pada pagi hari. Pakan yang diberikan pada induk udang selama maturasi adalah berupa pakan beku dan pakan hidup. Pakan beku terdiri dari cumi, artemia, cacing, dan krill. Sedangkan pakan hidup yang diberikan berupa cacing laut (polychaeta). Dosis pakan induk rata rata sebesar 31,9 % dari biomass induk per hari. Pakan diberikan dengan frekuensi delapan kali pemberian per hari. Pakan berupa
65
cumi beku, dicacah engan menggunakan pisau sehingga diperoleh ukuran yang kecil sekitar dua sam pai empat sentimeter. Teknis pemberian pa an beku dengan cara direndam terle ih dahulu dengan air tawar agar tidak
eras, kemudian
ditebarkan ke dalam bak pemeliharaan secara merata. Begitu j ga halnya yang dijelaskan oleh Wyb n dan Sweeney (1991) bahwa salah satu te nik pemeberian pakan beku adalah d ngan cara dicairkan terlebih dahulu. Pengecekan induk udang mati ini dilaksanakan setiap
agi pada pukul
08.00. Pengecekan d lakukan untuk mengetahui keberadaan pato en dalam tubuh induk yang mati. Bagian tubuh induk yang dijadikan sampel adalah insang. Sampel insang dipotong dengan menggunakan gunting sebesar 5 mm x 5 mm. Selanjutnya sampel dibawa ke laboratorium Broodstock and Nauplii Quality
Control (BNQC). Patogen yang ditemukan selama praktek adal h dari golongan jamur dan filamenteus bacteria. Selain keberadaan patogen, kelainan jaringan juga ditemukan pad sampel insang induk yang mati, yaitu necrosis. Keadaan insang yang ditumb hi patogen ini dapat dilihat pada Gambar 7. Pengamatan keberadaan patogen ini menggunakan mikroskop dengan pembesaran 400 kali.
Ga bar 7. Penampang Insang pada Induk Mati
66
Salah satu penyakit yang menyerang udang adalah bakteri berbentuk filamen. Umumnya menempel pada bagian tubuh udang terutama pada insang. Penyakit lain yang sering menginfeksi udang adalah serangan jamur Lagenidium
sp yang disebut dengan lagenidosis. Darmono (1991) menjelaskan bahwa penyakit necrosis disebabkan oleh sejenis bakteri yang termasuk kedalam genus
Vibrio. Necrosis ini merupakan infeksi sekunder yang disebabkan oleh luka, erosi bahan kimia, dan lain-lain. 5.3. Produksi Nauplii Proses produksi nauplii mencakup beberapa kegiatan yaitu persiapan bak peneluran dan penetasan, pemilihan induk mating dan penetasan telur, penampungan nauplii, pengamatan kualitas dan kuantitas nauplii, panen dan transportasi nauplii. 5.3.1. Persiapan Bak dan Media Penetasan Persiapan wadah dimulai dengan kegiatan pencucian bak menggunakan larutan deterjen, pembilasan, dan pengeringan selama 24 jam. Selanjutnya bak yang telah siap diisi air menggunakan air dari bak reservoir MNPD. Persiapan bak ini penting dilakukan untuk memutus daur hidup penyakit yang kemungkinan masih tersisa dari siklus sebelumnya. Pengisian air dilakukan pada pukul 12.30 WIB. Proses ini bersamaan dengan proses pemindahan nauplii menuju bak penampungan. Air dalam bak diisi sampai dengan volume 800 liter. EDTA ditambahkan pada setiap bak dengan dosis 10 ppm per bak. Dengan kata lain, EDTA yang dimasukkan pada setiap bak adalah sebanyak 8 gram. Agar EDTA teraduk sempurna, aerasi diatur maksimal. Secara kuantitatif diusahakan agar debit udara yang keluar adalah sebesar
67
0,3 liter/detik. Pengisian air bak ini dilakukan sebagai persiapan media spawning pukul 19.00 WIB pada hari yang sama. 5.3.2. Pemilihan Induk Mating dan Penetasan Telur Pemilihan induk ini dilaksanakan pada pukul 19.00 WIB. Pemilihan ini dilakukan terhadap induk-induk yang matang gonad secara visual dengan bantuan cahaya lampu neon yang telah tersedia di atas setiap bak maturasi. Induk udang ini umumnya melakukan perkawinan saat menjelang matahari terbenam. Setelah
mating, induk akan mengeluarkan telurnya beberapa jam kemudian. Sehingga pemilihan induk dilakukan pada waktu tersebut. Apabila terdapat spermatophora menempel pada bagian thellicum, maka induk segera dipindahkan ke dalam bak penetasan telur untuk melakukan spawning. Sedangkan Induk yang matang gonad namun tidak terdapat spermatophora pada thellicum nya dimasukkan kedalam kotak waring agar tidak terpilih kembali (Wyban dan Sweeney, 1991). Induk yang matang telur terlihat jelas dengan adanya gumpalan warna gelap memanjang di sepanjang bagian dorsal tubuh induk udang betina dari mulai
chepalothorax sampai dengan bagian pangkal ekor. Sedangkan induk yang telah melakukan perkawinan (mating) ditandai dengan adanya spermatophora di bagian
thellicum nya (Wyban dan Sweeney, 1991). Hal ini jelas terlihat pada Gambar 8. berikut ini. Proses peneluran induk dilakukan bersamaan dengan proses pemilihan induk mating, yaitu pada pukul 19.00. Induk yang telah mating dipindahkan kedalam bak peneluran menggunakan seser khusus untuk induk yang dibungkus dengan handuk agar induk tetap basah. Selanjutnya induk dicelupkan sesaat kedalam larutan iodin 500 ppm dengan tujuan desinfeksi, karena menurut
68
Djunaidah dkk (2002) media peneluran harus steril dari mikroorganime yang dapat mengganggu proses perkembangan telur. Setelah itu induk langsung dimasukkan kedalam bak peneluran dan penetasan dengan kepadatan per bak 3
adalah empat sampai lima ekor pada bak bervolume 800 m . Kepadatan induk
a
b
Gambar 8. Induk TKG III (a) dan Induk Mating (b) Pelaksanaan pemilihan induk ini tidak boleh terlambat, karena bila itu terjadi induk yang telah mating akan spent (mengeluarkan telur) dalam bak maturasi dan akhirnya telur terbuang percuma. Hal ini terbukti pada bak penetasan, yaitu pada pukul 08.00 telur sudah ada yang menetas. Hal ini menunjukan bahwa telur sudah dilepaskan oleh induk pada 13 jam sebelumnya, yaitu sekitar pukul 19.00, induk sudah ada yang melepaskan telurnya. Udang vaname umumnya kawin pada saat menjelang matahari terbenam dan akan melepaskan telur sekitar 2 jam kemudian. Dalam bak peneluran ini melebihi kepadatan yang dianjurkan oleh Wyban dan Sweeney (1991) yaitu 3 ekor induk dalam volume 800 liter. Agar induk tidak terganggu saat melakukan peneluran, aerasi dalam bak dimatikan. Selanjutnya bak ditutup dengan orchid net kemudian seluruh penerangan dalam ruangan dimatikan. Proses peneluran ini memerlukan kondisi
69
yang gelap. Induk-induk tersebut dipindahkan kembali ke dalam bak maturasi pada pukul 05.00 WIB. Sama seperti pemindahan induk sebelumnya, induk dipindahkan melalui proses pencelupan kedalam larutan iodin 500 ppm dengan tujuan desinfeksi. Aerator pada bak dipasang kembali dengan aerasi kecil, atau secara kuantitatif diusahakan agar debit udara yang keluar adalah 0,02 liter/detik. Lampu sorot pada setiap bak juga dinyalakan untuk meningkatkan suhu air saat penetasan berlangsung. Penetasan telur merupakan proses lanjutan dari proses spawning karena dilakukan pada bak yang sama. Pada bak penetasan ini diberi penomoran untuk tujuan sampling telur dan kualitas nauplii. Satu nomor penetasan mewakili 2 bak penetasan yang berdampingan. Sistem penomoran ini dapat dilihat pada Gambar 9. berikut ini.
Gambar 9. Penomoran pada Bak Penetasan
Suhu air bak penetasan berkisar antara 29
0
C sampai 30 0C. Untuk
mencegah telur mengendap di dasar bak sehingga tidak mendapat oksigen yang cukup, maka selama proses penetasan telur dilakukan pengadukan dengan
70
menggunakan alat yang telah tersedia. Alat pengaduk terbuat dari gabungan pipa PVC dengan plat PVC di bagian ujungnya. Pengadukan telur dilakukan setiap setengah jam sekali sampai telur menetas. Suhu air saat penetasan ini berada pada kisaran optimum penetasan yang yang disarankan oleh (Wyban dan Sweeney, 0
1991) yaitu 27-28 C. Pada saat proses penetasan ini dilakukan sampling telur. Sampling telur ini bertujuan untuk mengetahui jumlah telur pada setiap kode nomor bak dan derajat fertilisasi telur. Sampling dilakukan pada pukul 07.00 WIB, karena telur akan segera menetas. Pengambilan sampel dibedakan menurut tujuannya. Tujuan pertama adalah untuk mengestimasi jumlah telur dalam bak, sedangkan tujuan kedua adalah untuk mengetahui derajat fertilisasi telur pada setiap nomor. Sampel untuk mengestimasi jumah telur pada setiap kode nomor bak adalah sebanyak 100 ml. Sampel diambil pada dua titik untuk setiap bak dengan alat scooping bervolume 25 ml. Sedangkan untuk estimasi derajat fertilisasi dilakukan dengan mengambil sampel sebanyak 500 ml. Pengambilan sampel mewakili masingmasing 50 % dari setiap bak. Penghitungan
sampel
dan
pengamatan
fertilitas
dilakukan
di
laboratorium BNQC (Broodstoc and Nauplii Quality Control). Pengamatan derajat fertilisasi dilakukan di bawah mikroskop. Telur diamati apakah telur mengalami pembuahan (fertil ) atau tidak mengalami pembuahan (non fertil). Perbedaan telur yang mengalami pembuahan dan yang tidak mengalami pembuahan dapat dilihat pada Gambar 10. Telur yang tidak terbuahi dihitung dan dipersentasikan dengan jumlah sampel telur yang diamati. Derajat fertilisasi telur
71
berdasarkan samplin dan perhitungan berkisar antara 64 % sa pai 69 %. Data derajat fertilisasi yan teramati selama praktek terdapat pada lam iran 6.
Gambar 10. Perbedaan Telur Fertil (a) dan Non Ferti (b)
Jumlah telu setiap kode nomor bak penetasan berkisar ntara 2.844.167 butir sampai 3.881.667 butir dengan jumlah spawner sembilan kor. Fekunditas rata-rata induk berd asarkan perhitungan adalah 7.110 butir t lur/gram bobot induk, sehingga den an ABW induk 52 gram jumlah telur yan
dihasilkan oleh
satu ekor induk dias msikan sebanyak 369.720 butir. Kepadata rata-rata setiap bak penetasan adalah 2.095 butir/liter saat penetasan berlangsung. Fekunditas induk tersebut jauh
elebihi fekunditas induk yang diamati di Ocenic Institute
yaitu hanya berkisar 2.463 butir telur/gram bobot induk (Wyba n dan Sweeney, 1991). Telur yang d pat diproduksi di MNPD ini setiap hariny berkisar antara 40.217.184 butir sampai dengan 60.325.776 butir. 5.3.3. Penampunga Nauplii Enam belas jam setelah proses spawning telur akan
enetas menjadi
nauplii. Agar nauplii mendapatkan air yang baru, nauplii yan g baru menetas
72
tersebut dipindahkan kedalam bak penetasan. Nauplii dipindahkan sesuai dengan penomoran bak penetasan. Bak penampungan masing-masing memiliki kapasitas maksimal 500 liter. Setiap satu bak penampungan menampung nauplii yang berasal dari dua bak penetasan dengan kode nomor bak yang sama. Teknis pemindahan nauplii ini sama seperti proses pemanenan nauplii, yaitu dengan mematikan aerasi dan membiarkan nauplii naik ke permukaan air untuk selanjutnya diseser dengan menggunakan seser nauplii dengan mesh size 100-110 mikron. Proses pemindahan ini dilakukan pada pukul 12.30 WIB bersamaan dengan pemanenan nauplii di ruang penampungan. Perbedaan suhu maksimal
antara
bak
penetasan
dengan
bak
penampungan
berdasarkan
pengamatan adalah sebesar satu derajat celcius. Penomoran bak penampungan nauplii disesuaikan dengan nomor pada bak penetasan. Dua bak penetasan ditampung dalam satu bak penampungan dengan nomor yang sama. Sistem penomoran bak penampungan dapat dilihat pada Gambar 11. Nauplii yang ditampung dalam bak penampungan ini akan dipanen pada 24 jam kemudian.
Gambar 11. Penomoran Bak Penampungan Nauplii
73
Pengisian air dilakukan pada pukul 08.00. Air bak penampungan diisi sampai dengan volume mencapai 400 liter. EDTA ditambahkan pada setiap bak dengan dosis 10 ppm. Untuk membuat EDTA tercampur sempurna, aerasi diatur agar debit udara yang keluar diusahakan sebesar 0,3 liter/detik. Penambahan EDTA kedalam media penampungan nauplii ini didukung oleh pernyataan Djunaidah dkk (2002) yang menyatakan bahwa EDTA dapat mengurangi pengaruh logam berat terlarut. 5.3.4. Sampling Kualitas dan Kuantitas Nauplii Sampling nauplii dilakukan pada pukul 07.30 bersamaan dengan sampling telur. Sampling nauplii ini bertujuan untuk mengetahui kualitas dan kuantitas nauplii yang akan ditransfer menuju Fry Production Departement (FPD). Nauplii yang ditransfer menuju FPD hanya nauplii yang berkualitas baik, sedangkan nauplii yang berkualitas buruk di flushing atau dibuang dan tidak digunakan. Volume sampel yang diambil adalah sebanyak 100 ml dengan cara mengambil sampel pada empat titik berbeda dalam satu bak masing-masing sebanyak 25 ml. Pengamatan nauplii dilakukan di laboratorium Broodstock and
Nauplii Control (BNQC). Parameter nauplii yang diamati yaitu morfologi, dan keaktifan. Pengamatan kualitas nauplii ini menggunakan mikroskop sebagai alat bantu pengamatan. Pembesaran yang digunakan selama pengamatan adalah antara pembesaran 40 kali sampai dengan pembesaran 400 kali. Abnormalitas nauplii yang teramati selama pengamatan diantaranya adalah concentrated pigmen, curly spine, tail deformity, dan nauplii yang terinfeksi jamur jenis Lagenidium sp. Perbedaan abnormalitas tersebut dapat
74
dilihat pada Lampiran 2. Persentasi abnormalitas nauplii tersebut masih di bawah ambang batas kelayakan menurut standar pengendali mutu nauplii perusahaan sehingga nauplii masih layak untuk ditransfer. Aktivitas nauplii yang diamati selain dari morfologinya adalah keaktifan nauplii tersebut. Pengamatan aktifitas nauplii dilakukan dengan pengujian cahaya. Bila nauplii bergerak menuju cahaya (fototaksis positif) maka dikatakan nauplii tersebut aktif dan sebaliknya. Pengujian ini dilakukan dengan menggunakan
beaker glass yang didekatkan dengan sumber cahaya. Nauplii yang mengendap atau tidak aktif dihitung dan dipersentasikan dengan jumlah sampel. Nauplii dikatakan aktif apabila jumlah nauplii yang mendekati cahaya lebih dari 70 %. Kualitas nauplii yang dikatakan layak transfer menurut manajemen MNPD adalah sebagai berikut: a. Warna cokelat-jingga b. Warna yolk sac cenderung jingga daripada cokelat c. Berenang aktif, frekuensi berenang lebih banyak daripada diam d. Fototaksis ≥ 70 % e. Deformity < 25 % f.
Kepadatan transportasi 15.000-30.000 ekor per liter, tergantung waktu dan jarak tempuh
Nauplii yang diamati selama pengamatan di lapangan memilki kriteria lebih baik dari batas standar yang ditetapkan manajemen. Aktifitas nauplii rata-rata mencapai 97,9 % fototaksis positif, deformity 4,7 %,dan kandungan
yolksac masih penuh. Angka-angka tersebut diperoleh dari hasil sampling dan
75
perhitungan. Dengan demikian, selama pelaksanaan praktek ini tidak ditemukan masalah serius mengenai kualitas nauplii. Jumlah nauplii rata-rata pada setiap bak penampungan adalah sebanyak 1.430.665 ekor. Dengan demikian kepadatan nauplii setiap baknya adalah 3.577 ekor/liter. Derajat penetasan telur yang dihitung selama melakukan praktek ini berkisar antara 60 % sampai 73 %. 5.3.5. Panen Nauplii dan Transportasi Nauplii Pemanenan nauplii dilaksanakan pada pukul 12.30 WIB. Proses panen ini dilakukan setelah mendapat kepastian dari pihak BNQC. Apabila nauplii layak untuk ditransfer, maka panen dilakukan dan sebaliknya, bila nauplii dikatakan tidak layak, maka nauplii pada bak tersebut dibuang ( flushed). Pemanenan nauplii ini dilakukan untuk ditranportasikan menuju Fry Production Departement (FPD) yaitu departemen yang berfungsi untuk memproduksi benur yang akhirnya dijual ke pasaran. Pemanenan nauplii dimulai dengan mematikan aerasi. Nauplii akan segera naik ke permukaan air karena sifatnya yang fototaksis positif. Setelah nauplii berkumpul dipermukaan, selanjutanya dilakukan penyeseran nauplii dengan seser nauplii. Nauplii yang dipanen tersebut dimasukkan kedalam kantong plastik dengan kepadatan masing-masing 30.000 ekor/liter. Produksi nauplii MNPD setiap harinya berkisar antara 17.167.860 ekor sampai dengan 25.751.790 ekor. Teknis transportasi nauplii adalah menggunakan kantong plastik yang telah diberi nomor sesuai dengan bak pemeliharaan larva di FPD dan diisi air laut sebanyak 2 liter. Oksigen ditambahkan dalam kantong sehingga perbandingan
76
volume antara oksigen dan air 4 : 1. Jarak antara MNPD dengan FPD adalah kurang lebih 1 km. 5.4. Produksi Benur Produksi benur merupakan kegiatan lanjutan dari produksi nauplii di PT CPB Breeding Operation. Kegiatan yang dilakukan pada produksi benur ini antara lain persiapan bak dan media pemeliharaan, penebaran nauplii, pengamatan perkembangan dan kesehatan larva, pemberian pakan, pengelolaan kualitas air, 5.4.1. Persiapan Bak dan Media Pemeliharaan Persiapan bak dimulai dari pemasangan selang aerasi dan semua 3
kelengkapanya. Bak yang digunakan memiliki kapasitas maksimal 120 m dan 3
hanya akan diisi air sampai volume 60 m saja. Jarak antara titik aerasi adalah 50 cm dan posisi batu aerasi menggantung dari dasar bak dengan jarak 5 cm. Persiapan selanjutnya berturut-turut adalah fumigasi dan pencucian bak beserta peralatannya. Prosedur ini dilakukan secara rutin sesuai ketentuan di PT Central Pertiwi Bahari. Bak yang telah siap digunakan selanjutnya diisi air laut yang berasal dari bak reservoir FPD. Fitoplankton jenis Chaetoceros muleri ditambahkan dengan cara mengalirkannya melalui saluran transfer alga seperti yang terlihat pada Gambar 5.20. sehingga kepadatan di bak pemeliharaan mencapai 50.000 sel / ml. EDTA dengan dosis 3 ppm ditambahkan pada media pemeliharaan untuk mengikat logam berat yang ada dalam air. Penambahan fitoplankton tesebut bertujuan
untuk
memastikan
agar
larva
mendapatkan
makanan
ketika
bermetamorfosis menjadi stadia zoa. Oleh karena itu pengisian air dan penambahan fitoplankton ini dilakukan sekitar 4 jam sebelum penebaran nauplii
77
dilakukan atau pada pukul 09.00 WIB. Volume total pada bak saat awal 3
penebaran adalah 35 m . Aerasi sudah dinyalakan sejak saat itu. Pemberian EDTA ini bertujuan untuk menghindari terjadinya peristiwa
zoea 1 syndrom. Etilen diamin tetraasetat ini diduga dapat mengikat logam berat yang dapat menyebabkan kelainan bentuk ketika perubahan stadia dari nauplii menjadi zoea. 5.4.2. Penebaran Nauplii Penebaran
nauplii
dilakukan
pada
pukul
13.00
WIB
dengan
menggunakan ember khusus untuk aklimatisasi yang telah dimodifikasi. Ember ini memiliki 2 lubang kecil di bagian dasar yang disumbat dengan karet yang mudah ditarik saat ember berada dalam bak. Nauplii yang datang dimasukkan ke dalam ember aklimatisasi kemudian ember tersebut dimasukkan kedalam bak dan diberi aerasi. Selanjutnya karet penyumbat dasar ember ditarik sehingga air dari dalam bak perlahan-lahan masuk ke dalam ember sehingga ember tersebut tenggelam. Ketika ember tenggelam, nauplii dikeluarkan dari dalam ember secara perlahan-lahan. Padat tebar nauplii pada bak adalah 150 ekor/liter. Sehingga jumlah nauplii yang ditebar pada setiap bak sebanyak 9 juta ekor nauplii. Padat tebar nauplii ini melebihi anjuran kepadatan tebar nauplii dalam bak penebaran menurut Wyban dan Sweeney (1991) yaitu 75 ekor/liter. 5.4.3. Pengamatan Perkembangan dan Kesehatan Larva Pengamatan larva dilakukan di laboratorium maupun secara visual di lapangan dengan menggunakan beaker glass. Nauplii yang di tebar pada bak pemeliharaan ini adalah N5. Dengan demikian akan segera berubah menjadi stadia
78
zoea yang mulai membutuhkan makanan dari luar. Berdasarkan pengamatan di lapangan, pada bak pemeliharaan yang tidak bermasalah baik dalam segi kualitas air maupun pemenuhan kebutuhan pakan, Nauplii sudah memasuki stadia zoea 100 % pada pukul 23.30 WIB akan tetapi mulai terjadi perubahan stadia pada pukul 19.00. Itu berarti perubahan stadia dari N5 menuju zoea adalah sekitar 10 – 13 jam.
Survival rate (SR) benur selama pengamatan terdapat pada Lampiran 4. berupa grafik populasi larva perhari. Penurunan populasi umumnya terjadi pada perubahan stadia zoea 1 menuju zoea 2. Hal ini disebabkan terjadinya penurunan nafsu makan larva sehingga menyebabkan dampak sekunder lain berupa penyakit. Fenomena ini biasa disebut dengan zoea 1 syndrom yaitu ketika akhir sub stadia zoea 1 dan awal sub stadia zoea 2 tidak mau makan dan mengalami mortalitas tinggi karena serangan bakteri (Graindorge dkk, 2003). Berdasarkan hasil pengamatan di lapangan, pada stadia ini warna larva terlihat pucat yang menunjukkan bahwa larva tidak memakan pakan yang telah diberikan. Berdasarkan pengamatan dari 11 bak yaitu bak C25 sampai dengan C35 SR rata rata larva selama pemeliharaan adalah 35%, data populasi panen selengkapnya terlampir dalam Lampiran 14. 5.4.4. Pemberian Pakan Larva mulai membutuhkan makanan dari luar tubuh pada stadia zoea 1. Pemberian pakan yang pertama diberikan berupa fitoplankton jenis diatom spesies
Chaetoceros muleri. Pemberian fioplankton ini dilakukan pada saat stadia akhir nauplii karena perpindahan stadia larva umumnya tidak sama. Pemberian ini yang dilakukan di awal ini bertujuan untuk memastikan bahwa keberlangsungan makan
79
larva tidak terhambat. Fitoplankton Thallasiosira sp mulai diberikan pada saat larva mencapai stadia mysis 1 sementara pemberian Chaetoceros muleri mulai dikurangi dan dihentikan. Kepadatan alga di bak larva berkisar antara 20.000 sel/ml sampai dengan 40.000 sel/ml. Pemberian fitoplankton dilakukan 3 kali sehari yaitu pada pukul 08.00, 13.00, dan 19.00. Pakan alami berupa fitoplankton ini diberikan sampai stadia PL 1 atau sampai stadia mysis tidak ada menurut prosedur standar operasional hatchery yang ada. Pemberian pakan buatan juga mulai dilakukan pada stadia zoea 1. Pakan yang diberikan adalah PL 00 sampai dengan PL 02 serta mulai diberikan TBS Flake pada stadia PL 1. Pemberian pakan buatan diberikan 8 kali sehari yaitu pada pukul 07.00, 11.00, 13.00, 16.00, 19.00, 23.00, 01.00, dan 04.00. Pemberian pakan artemia mulai dilakukan pada stadia mysis 3. Pengamatan pemberian pemberian pakan bak C25 dijelaskan melalui Tabel 8. Tabel 8. Contoh Pemberian Pakan pada Bak C25
jenis pakan buatan (g) PL PL TBS 01 02 Flake 10 0 0 0 180 0 0 0 340 0 0 0 600 0 0 0 970 0 0 0 420 700 0 0 0 1420 0 0 0 2250 0 0 0 2790 0 0 0 2812 0 320 0 1299 1332 560 0 0 3114 640 0 0 2000 516
Populasi (x103)
stadia
9.282 8.000 6.000 5.457 5.250 5.100 5.000 5.000 4.950 4.823 4.800 4.790 4.728
N5 Z1 Z2 Z3 ZM M1 M2-M3 M3 MPL PL1 PL2 PL3 PL12
4.790
PL4
0
0
2613
576
600
4.790
PL5
0
0
2753
692
600
PL 00
kista artemia yang ditetaskan (g) 0 0 0 0 0 0 0 500 1200 1200 1500 600 0
80
4.790
PL6
0
0
2187
616
600
4.790
PL7
0
0
2280
704
600
4.790
PL8
0
0
2155
599
600
4.790
PL9
0
0
2030
536
600
4.790
PL10
0
0
2000
516
0
4.790
PL11
0
0
2000
516
0
Pemberian nauplii artemia hidup dihentikan pada stadia PL 10 bertujuan untuk efesiensi pakan karena pada stadia PL lanjut, benur lebih bersifat bentik dan dapat memakan alga atau sisa pakan yang telah diurakan oleh bakteri probiotik berupa floc. 5.4.5. Manajemen Kualitas Air Pengelolaan air dalam bak pemeliharaan larva bertujuan agar kondisi lingkungan media tetap optimal bagi pertumbuhan dan perkembangan larva. Menurunnya kualitas air di bak pemeliharaan umumnya disebabkan oleh terakumulasinya sisa pakan mupun produk buangan benur itu sendiri seperti feces sehingga menyebabkan peningkatan jumlah bakteri, serta kandungan amonia dalam air. Pengelolaan air yang dilakukan adalah pergantian air bila kualitas air bak pemeliharaan tidak sesuai dan diatas ambang batas. Kualitas air diukur satu kali pada setiap stadia, dari mulai nauplii sampai dengan PL. Parameter yang diamati adalah pH, salinitas, alkalinitas, TAN dan amonia. Hal yang sama diljelaskan oleh Subaidah dan Pramudjo (2008) bahwa pengukuran parameter kualitas air dilakukan pada setiap perubahan stadia. Parameter pH mengalami penurunan selama melakukan pengamatan seperti yang digambarkan oleh Gambar 12. Berdasarkan data pengukuran pihak laboratorium kualitas air. Penurunan ini disebabkan oleh aktifitas bakteri pengurai yang menguraikan bahan-bahan organik. Proses yang terjadi merupakan salah satu
81
proses fermentasi oleh bakteri probiotik sehingga mengakibatkan penurunan pH air. 8,4 8,2 8 H 7,8 p 7,6 7,4 7,2 7
pH Naupli
Zoea
Mysis
PL
stadia
Gambar 12. Grafik pH Air Bak C25 Selama Pemeliharaan Parameter lain yang diukur adalah TAN. Nilai TAN ini merupakan gabungan dari kadar NH 3 dan NH4 dalam air. Parameter ini juga terus meningkat seiiring perkembangan stadia larva seperti yang tampak pada Gambar 13. Hal ini disebabkan oleh pemberian pakan yang terus meningkat seiiring berubahnya stadia larva dari nauplii sampai PL. ) m p p (
2,5 2 1,5
N A T 1 r a d a 0,5 k
TAN
0 Naupli
Zoea
Mysis
PL
stadia
Gambar 13. Grafik Kadar TAN pada Bak C25 Amonia terus meningkat seiring dengan kenaikan nilai TAN. Berikut ini adalah Gambar 14. yang menjelaskan kadar amonia dalam air bak pemeliharaan larva.
82
0,25
) m 0,2 p p ( a i 0,15 n o m 0,1 a r a d 0,05 a k
Amonia
0 Naupli
Zoea Mysis stadia
PL
Gambar 14. Grafik Kadar Amonia pada Bak C25
Parameter kualitas air lain seperti salinitas dan suhu memiliki nilai yang sama selama pemeliharaan. Salinitas air bak pemliharaan C25 adalah 30 ppt 0
0
sedangkan suhu berada pada kisaran 32 C sampai dengan 34 C. Keadaan suhu yang tinggi ini dapat mempercepat perkembangan larva namun diikuti juga dengan perkembangan bakteri dan jamur. Data kualitas air selengkapnya dapat dilihat pada lampiran 7. 5.4.6. Panen Benur Panen benur dilakukan apabila benur minimal telah mencapai stadia PL 10 dan lolos pengujian laboratorium. Panen dilakukan dengan mengeluarkan benur melewati pipa pembuangan dan menampungnya dalam jaring panen. Selanjutnya benur di transfer ke tempat pengemasan dengan menggunakan ember volume 5 liter. Ember tersebut diisi air sekitar 2,5 liter dengan jumlah maksimal benur per ember 50.000 ekor. 5.4.7. Pengemasan dan Transportasi Benur Air yang digunakan untuk media benur selama masa transportasi dikondisikan dengan suhu rendah (23
0
C) dengan tujuan untuk menurunkan
83
metabolisme dan mencegah timbulnya kanibalisme. Proses pengemasan benur dimulai dari persiapan air panen, aklimatisasi suhu, scooping (penakaran), pengepakan, dan estimasi jumlah benur per kantong. Agar benur tahan selama perjalanan, maka diusahakan agar kandungan oksigen dalam kantong menjadi 10 0
ppm dengan mengisi kantong plastik menggunakan oksigen murni dan suhu 23 C dengan memasukan es batu yang dibungkus plastik sebanyak 2 buah. Selama pengamatan, dengan sistem pengemasan dan transportasi seperti ini, benur mampu bertahan dalam perjalanan selama kurang lebih 10 jam dengan SR lebih dari 90%. 5.5. Kultur Pakan Alami Pakan alami yang digunakan selama melaksanakan praktek integrasi adalah fitoplankton dari jenis diatom dan zooplankton berupa nauplii artemia. Fitoplankton yang digunakan terdiri dari dua jenis yaitu Chaetoceros muleri dan
Thallasiosira weissflogii. Chaetoceros mulerii diberikan pada stadia awal karena ukuran selnya yang lebih kecil yaitu 5 mikron dibandingkan dengan Thallasiosira
weisflogii yang memiliki diameter sel 10 mikron. Berikut ini adalah Gambar 15. pakan alami yang digunakan selama praktek integrasi, sesuai dengan prosedur PT Central Pertiwi Bahari.
Gambar 15. Pakan Alami yang Digunakan Selama Praktek
84
5.5.1. Kultur Fitoplankton Kultur fitoplankton Chaetoceros muleri maupun Thallasiosira weisflogii terdiri dari 3 tahapan kultur yaitu tahap kultur murni, intermediate,dan kultur masal. Kultur murni dimulai dari kultur pada wadah tabung reaksi 20 ml, botol kaca 1 liter, dan galon 19 liter. Kultur intermediate menggunakan bak beton 3
dengan volume masing-masing 9 m . Kultur masal dilakukan di luar ruangan 3
dengan menggunakan bak beton yang memiliki volume masing-masing 60 m . Teknik kultur murni dilakukan secara aseptis di laboratorium pakan alami dengan menggunakan media air laut bersalinitas 28 ppt.
Pupuk yang
digunakan adalah pupuk analis. Fitoplankton hasil kultur murni dalam media wadah galon memiliki kepadatan sel rata-rata 5 juta sel / ml untuk Chaetoceros
muleri dan 1 juta sel/ml untuk Thallasiosira weissflogii setelah berumur 4 hari sejak inokulasi. Upscaling kultur selanjunya diteruskan kepada kultur semi masal selama 2 hari. Bibit kultur alga skala semi masal ini diberikan sebanyak 3% dari volume kultur. Kepadatan rata-rata pada kultur semi masal saat dipanen adalah 2 juta sel/ml untuk Chaetoceros muleri dan 400.000 sel/ml untuk Tahllasiossira
weisflogii. Kultur alga skala masal dilakukan selama 2 hari. Pemberian bibit sebanyak 30% dari volume kultur. Kepadatan alga saat panen adalah 500.000 sel/ml untuk Chaetocers muleri dan 120.000 sel/ml untuk Thallasiosira
weissflogiii . Apabila kepadatan alga dalam bak kultur masal tidak mencapai kepadatan seperti itu, maka seluruh alga dibuang ( flushed) karena tidak terpakai. Pemanenan dilakukan dengan menggunakan pompa yang memiliki pipa hisap 2
85
inch dengan cara langsung mendistribusikan ke seluruh unit bak pemeliharaan larva yang membutuhkan. 5.5.2. Penetasan Artemia 3
Penetasan artemia menggunakan bak beton dengan volume 2 m . Kepadatan kista selama penetasan adalah sebanyak 2 g kista per liter. Berdasarkan perhitungan, HR artemia yang digunakan sebesar 53 %. Data HR (Hatching Rate) kista artemia disajikan pada Gambar 16. dan hubungannya dengan waktu penetasan. HR tertinggi yang teramati terjadi pada jam ke 28 setelah kultur. 0,54 0,52 0,5
) % ( 0,48 R H
0,46
HR artemia
0,44 0,42 14
18
22
24
28
Jam ke-
Gambar 16. Hatching Rate Artemia pada Beberapa Wakru Setelah Kultur Artemia ditetaskan selama 24 jam. Pemanenan artemia dilakukan melalui 2 tahap penyaringan. Penyaringan pertama dilakukan saat memisahkan cangkang 3
kista dengan nauplii artemia dari bak penetasan bervolume 2 m dan ditampung dalam bak kerucut yang memilki volume 200 liter. Penyaringan kedua dilakukan saat proses penampungan artemia dari bak penampungan kedalam kantong plastik. Platik – plastik tersebut diikat dan kemudian dibawa menuju bak unit pemeliharaan larva yang membutuhkan.
86
5.6. Analisa Usaha Analisa usaha pembenihan yang dilakukan selama praktek integrasi adalah satu modul produksi. Satu modul produksi memiliki 12 bak pemeliharaan 3
larva dengan kapasitas volume masing-masing 60 m . Kebutuhan investasi pada satu modul terdaftar pada lampiran . Analisa usaha ini bertujuan sebagai simulasi melakukan usaha produksi benur dari stadia nauplii. Data yang digunakan berasal dari pengamatan selama praktek baik itu berupa data primer maupun sekunder. 5.6.1. Perkiraan Laba Rugi Investasi yang digunakan sebesar 3 milyar rupiah dengan pembagian 2 milyar rupiah berasal dari pinjaman bank dan 1 milyar rupiah merupakan modal pribadi. Pinjaman diasumsikan memiliki bunga 15% per tahun dan jangka waktu pelunasan selama 5 tahun. Daftar angsuran dan bunga tercantum dalam Tabel 9. bunga pada tahun ke-0 dikapitalisasi. Tabel 9. Daftar Bunga dan Angsuran SetiapTahun tahun pinjaman angsuran bunga (15%) pokok 0 2.000.000.000 300.000.000 1 2.300.000.000 400.000.000 285.000.000 2 1.900.000.000 400.000.000 225.000.000 3 1.500.000.000 400.000.000 165.000.000 4 1.100.000.000 400.000.000 105.000.000 5 700.000.000 400.000.000 45.000.000 6 300.000.000 300.000.000
angsuran + bunga Dikapitalisasi 685.000.000 625.000.000 565.000.000 505.000.000 445.000.000 300.000.000
Proyeksi laba rugi secara lengkap dapat dilihat pada Lampiran 9. Proyeksi dilakuan untuk enam tahun karena kewajiban kredit selesai selama waktu tersebut. Pada tahun pertama penerimaan yang didapat adalah sebesar Rp 6.615.000.000,-. Seluruh biaya yang dikeluarkan sebanyak Rp 3.515.316.000,-.
87
Bunga pada tahun pertama sebesar Rp 285.000.000,-. Pendapatan sebelum pajak per sikulus dapat dihitung menggunakan persamaan:
Laba sebelum pajak = pendapatan − total biaya − bunga Laba sebelum pajak = 6.615.000.000 − 3.515.316.000 − 285.000.000 Laba sebelum pajak =perhitungan, Rp 2.767.435.000,− Berdasarkan usaha pembenihan ini mengalami laba atau dapat dikatakan bahwa usaha menguntungkan. Laba bersih pada tahun pertama sampai tahun ke 6 tercantum dalam Tabel 10. Kapasitas produksi dianggap stabil setiap siklus yaitu sebanyak 189.000.000 ekor benur per tahun dengan harga jual per ekor sebesar Rp 35,-. Total keseluruhan biaya dapat dilihat pada Lampiran 8. Tabel 10. Proyeksi Laba Rugi Selama 6 Tahun Tahun Laba sebelum pajak Pajak penghasilan (Rp) 1 2.767.435.000 830.230.500 2 2.827.435.000 848.230.500
Laba Bersih (Rp) 1.937.204.500 1.979.204.500
3 4 5 6
2.021.204.500 2.063.204.500 2.105.204.500 2.136.704.500
2.887.435.000 2.947.435.000 3.007.435.000 3.052.435.000
866.230.500 884.230.500 902.230.500 915.730.500
5.6.2. Aliran Kas Proyeksi aliran kas disusun untuk mengetahui akumulasi dana riil yang keluar maupun yang masuk selama berlangsungnya proses produksi. Proyeksi aliran kas dapat dilihat pada Lampiran. Berdasarkan data tersebut dapat diketahui bahwa usaha pembenihan vaname ini dapat membiayai usahanya sendiri dan bahkan melakukan ekspansi atau perluasan produksi. Data akumulasi kas yang usaha tercantum dalam Tabel 11. Tabel 11. Aliran Kas Usaha Selama 6 Tahun Tahun Aliran masuk bersih Aliran keluar (Rp) (Rp) 0 3.000.000.000 2.079.486.000
Komulatif (Rp) 920.514.000
88
1 2 3 4 5 6
1.642.124.500 1.684.124.500 1.726.124.500 1.768.124.500 1.810.124.500 1.941.624.500
4.972.875.500 4.930.875.500 4.888.875.500 4.846.875.500 4.804.875.500 4.673.375.500
2.562.638.500 4.246.763.000 5.972.887.500 7.741.012.000 9.551.136.500 11.492.761.000
Aliran masuk bersih merupakan selisih antara kas total keluar dengan kas total masuk (pendapatan) kecuali pada tahun ke 0 sebagai investasi. Aliran kas ini dapat menghitung kriteria investasi berupa payback period yang akan dibahas selanjunya. Proyeksi arus kas dapat dilihat pada Lampiran 10. 5.6.3. Analisa Investasi Investasi yang digunakan adalah sebesar 2 milyar rupiah yang diperoleh dari pinjaman bank. Untuk menganalisis apakah investasi ini layak untuk diajukan, maka investasi ini harus dianalisis terlebih dahulu. A. Payback Period Payback period dapat dihitung melalui bantuan aliran masuk kas bersih yang terdapat dalam aliran kas usaha. Seluruh kas masuk bersih dijumlahkan sampai dengan dapat menutup dan mengganti investasi awal yang dikeluarkan. Data kas masuk terdapat bersih pada Tabel 12. Tabel 12. Kas Masuk Bersih dan Akumulasi Kas Bersih Tahun Aliran masuk bersih (Rp) akumulasi (Rp) 1 1.642.124.500 1.642.124.500 2 1.684.124.500 3.326.249.000 3 1.726.124.500 5.052.373.500 4 1.768.124.500 6.820.498.000 5 6
1.810.124.500 1.941.624.500
8.630.622.500 10.572.247.000
Dari tabel di atas diketahui bahwa kas masuk bersih telah mampu menutupi investasi sebesar 2 milyar pada tahun ke 2. Paybac period investasi
89
berada antara tahun ke 1 dan tahun ke 2. Sisa kas masuk yang diperlukan untuk mencapai angka 2 milyar rupiah adalah Rp 357.875.500.-. Kekurangan ini dapat diperoleh dari kas masuk pada tahun ke 2. Dengan menggunakan perhitungan matematis, sisa waktu pengembalian adalah sebagai berikut:
investasi − akumulasi kas masuk sampai tahun ke 1 waktu = kas masuk12tahun ke 2 ×1 bulan −1.642.124.500 × 1 = 2.000.000.000 3.326.2469.000 12 = 357.875.500 277.187.417 × 1 =1,3 Payback period dari investasi ini adalah 1 tahun 1,3 bulan. Waktu pengembalian ini kurang dari waktu pengmbalian maksimal yaitu 5 tahun. Dapat dikatakan bahwa investasi ini layak untuk diajukan. B. Net Present Value
Net Present Value (NPV) dihitung dengan menjumlahkan seluruh present value dari penerimaan-penerimaan bersih dan menguranginya dengan investasi awal. Data tabel perhitungan NPV dapat dilihat pada Lampiran 11. Perhitungan NPV ini dilakukan untuk 20 tahun ke depan karena umur ekonomis dari aktiva tetap adalah 20 tahun. Persamaan perhitungan NPV adalah sebagai berikut:
= (1 + ) − Keterangan: NPV
= Net Present Value
CFt
= aliran kas per tahun t
I0
= investasi awal
90
K
= suku bunga
Net Present Value yang didapat dari hasil perhitungan adalah sebesar Rp 4.214.591.752,-. Usulan proyek dapat diterima karena nilai NPV > 1.
C. Internal Rate of Return Internal Rate of Return dihitung dengan dengan cara coba-coba trial and eror, yaitu mengalikan aliran kas dengan bunga yang mengahasilkan 2 NPV positif dan negatif terdekat. Data perhitungan NPV terdapat dalam Lampiran 12. Setelah data NPV positif-negatif didapat, maka dilakukan interpolasi IRR dengan persamaan sebagai berikut:
= − × −− Keterangan:
P1 = tingkat bunga ke 1 P2 = tingkat bunga ke 2 C1 = NPV ke 1 C2 = NPV ke 2
Perhitungan NPV 1 dan NPV 2 yang didapat berturut turut Rp 15.446.796,- dan Rp -7.694.901,-. Suku bunga 1 sebesar 79% dan suku bunga ke 2 sebesar 80%. Hasil IRR dapat diperoleh dengan persamaan di atas yaitu:
80%−79% =79%−15.446.796× −7.694.901−15.446.796 =79,67% Perhitungan di atas menghsailkan nilai IRR lebih besar dari tingkat suku bunga rata-rata saat ini yaitu 15% sehingga dikatakan bahwa menurut kriteria ini proyek layak dilaksanakan. D. Profitability Index
91
Profitability
Index
atau
Benefit
Cost
Ratio
dihitung
dengan
membandingkan antara Present value aliran kas masuk dengan investasi awal. Persamaannya adalah sebagai berikut:
value kas masuk PI = Present investasi awal = 6.214.591.752 2.000.000.000 =3,11 Berdasarkan perhitungan, PI > 1, maka menurut kriteria ini investasi untuk usaha dinyatakan layak. 5.6.4. Break Even Point (BEP)
Break event point harga dan produksi disajikan dalam Gambar 19. Break event point merupakan titik perpotongan antara persamaan garis hasil penjualan dengan garis persamaan total biaya. Harga jual benur per ekor adalah Rp 35,-. dan biaya variabel per ekor benur adalah Rp 20,-. Kapasitas produksi benur per tahun mencapai 178.200.000 ekor.
7.000
) p R ( a g r a h
s n 6.000 o il il 5.000 M
4.000 3.000
biaya tetap
2.000
total penjualan
1.000
total biaya
0 0
20
40
60
80 100 120 140 160 180
jumlah produksi benur (dalam juta ekor)
Gambar 17. Grafik BEP Produksi dan Harga Benur
92
Titik perpotongan dari kedua garis di atas dapat dicari melalui persamaan berikut ini.
Biaya tetap biaya variabel 1 − jumlah penjualan 512.920.000 BEP= 1 − 2.835.000.000 6.615000.000 BEP = Rp 897.610.000 atau 25.646.000 ekor BEP=
Berdasarkan perhitungan, maka usaha pembenihan ini mengalami titik impas (tidak untuk dan tidak rugi) apabila dapat memproduksi sebanyak 25.646.000 ekor benur per tahun atau dengan mendapatkan penerimaan sebesar Rp 897.610.000,- per tahun.
93
BAB 6 KESIMPULAN DAN SARAN
6.1. Kesimpulan 1) Derajat fertilisasi telur udang vaname di PT CPB Breeding Operation berkisar antara 64% sampai dengan 69% 2) Derajat penetasan telur udang vaname di PT CPB Breeding Operation berkisar antara 60% sampai 73% 3) Jumlah produksi benur dalam satu siklus rata-rata sebanyak 37. 800.000 ekor benur 4) Kualitas air selama pemeliharaan masih dalam batas-batas yang optimal yaitu pH 7-8, Amonia < 0,2 ppm, TAN < 2,5 ppm, dan suhu 0
berkisar antara 30-31 C. 5) Berdasarkan analisa investasi, diketahui bahwa payback period 1 tahun 1 bulan, NPV Rp 4.214.591.752,-, IRR 79%, dan BC Ratio 3,11. Dapat dikatakan usaha pembenihan udang vaname di PT CPB Breeding Operation layak dilaksanakan. 6.2. Saran 1) Monitoring pakan larva sebaiknya dilakukan lebih cermat agar tidak terjadi
penumpukan
pakan
yang
tidak
termanfaatkan
sehingga
menimbulkan masalah pada kualitas air 2) Penetasan artemia sebaiknya melalui tahapan hidrasi dan dekapsulasi terlebih dahulu sebelum dikultur
94
DAFTAR PUTAKA
Ahmad, T. 1991. Pengelolaan Peubah Mutu Air yang Penting dalam Tambak
Udang Intensif. Direktorat Jenderal Perikanan. Jakarta Bachtiar, I. 1987. Induk Udang Windu. Direktorat Jenderal Perikanan. Jakarta Boyd, C. E. 1988. Water Quality in Warmwater Fish Ponds. Auburn University. Inggris Chamberlain, G. W. 1988. Coastal Aquaculture Jilid V No 2. Texas Agricultural. Texas Cholik, F., A. Jagatraya, R.P Poernomo, dan A. Jauzi. 2005. Akuakultur Tumpuan
Harapan Masa Depan. MPN dan TMII. Jakarta Darmono. 1991. Budidaya Udang Penaeus. Kanisius. Yogyakarta Djunaidah, I. S., M. Mardjono, D. Suwoyo, dan J. Sumarwan. 2002. Petunjuk
Teknis Pembenihan Udang Rostris. DKP Dirjen Budidaya BBAP. Jepara Effendi, H. 2003. Telaah Kualitas Air Bagi Pengelolaan Sumberdaya dan
Lingkungan Perairan. Kanisius. Yogyakarta Graindorge, V. A., M. A. Galvez, R. Arthur, L. Becerra, R. A. B. Guardado, M. Boada, M. Briggs, C. Cabrera, R. Cadenas, F. C. C. Romero, F. Carranza, M. C. C. Sanchez, E. de la C. Suarez, R. Doyle, J. Erraez, F. D. E. Navarrete, D. F. Fegan, L. Galli, C. Graf, L. Harris, A. Heres, F. Jimenez, E. V. Krauss, A. L. Rojo, L. A. L. Paredes, G. Maranges, L. Mariduena, E. M. Salas, A. B. M. Rocha, L. M. Rodriguez, M. Moreno, E. E. O. Acosta, A. O. Fallas, T. Pacheco, G. Perez, M. B. Reantaso, A. Reneau, R. Roman, L. S. Cuadra, L. S. Gilabert. 2003. Health Management and
95
Biosecurity
Maintenance
in
White
Shrimp
(Penaeus
vannamei)
Hatcheries in Latin America. FAO. Roma Kokarkin, C., dan B. Sumartono. 1990. Upaya Pencegahan Penyakit pada
Pembenihan Udang. Seminar Nasional II Penyakit Ikan dan Udang 16 – 18 Januari. Jakarta Kokarkin, C., M. L. Nurjadjana, dan B. S. Ranoemihardjo. 1986. Produksi Induk
Masak Telur dalam Pembenihan Udang Windu. Direktorat Jendral Perikanan. Jakarta Lim, H. C., H. H. Heng, dan L. Cheong. 1989. Manual on Breeding of Banana
Prawn. International Development Research Center. Singapura Moretti, A., M. P. F. Criado, G. Cittolin, dan R. Guidastri. 1999. Manual on
Hatchery Production of Seabass and Gilthead Seabream Volume 1 . FAO of United Nation. Rome Mudjiman, A. 1989. Udang Renik Air Asin (Artemia salina). Kanisius. Jogjakarta Murtidjo, B. A. 2003. Benih Udang Windu Skala Kecil. Kanisius. Yogyakarta Omar, S., H. Sunusi. 2010. Keragaan Reproduksi Udang Windu (Keragaan
Reproduksi Udang Windu (Penaeus monodon)Asal Sulawesi Selatan. Prosiding Seminar Nasional Tahunan VII Hasil Penelitian Perikanan dan Kelautan Tahun 2010 Jilid: Budidaya Perikanan. Yogyakarta Subaidah, S., dan S. Pramudjo. 2008. Pembeihan Udang Vaname. Seksi Standarisasi dan Informasi BBAP Situbondo. Jawa Timur Suwoyo, D., dan M. Soleh. 2010. Peningkatan Mutu Benih dengan Dosis
Optimum dan Cara Aplikasi Probitok Bacillus sp Dalam Produksi
96
Massal Postlarva Udang Vaname, L.vannamei. Prosiding Indonesian Aquaculture Buku 2. Bandar Lampung Umar, H,. 2005. Teknik Menganalisis Kelayakan Rencana Bisnis secara
Komprehensif. Gramedia. Jakarta. Wyban, J. A., dan J. N. Sweeney. 1991. Intensive Shrimp Production Technology. The Oceanic Institute. Honolulu
