Gianmarco Rojas Moreno, MV. MV. Esp. MSc.
Se remonta a varios milenios de nuestros tiempos actuales, siendo que el uso de cerbatanas y dardos se inicio con los nativos sudamericanos y africanos en su afán de capturar animales para su propio sustento, en esta practica pr actica los nativos empleaban flechas o dardos cuyas puntas eran embebidas con substancias paralizantes que facilitaban la captura de sus presas, sin obviamente ninguna preocupación con la vida del animal animal (Nunes et al, 2006).
Se remonta a varios milenios de nuestros tiempos actuales, siendo que el uso de cerbatanas y dardos se inicio con los nativos sudamericanos y africanos en su afán de capturar animales para su propio sustento, en esta practica pr actica los nativos empleaban flechas o dardos cuyas puntas eran embebidas con substancias paralizantes que facilitaban la captura de sus presas, sin obviamente ninguna preocupación con la vida del animal animal (Nunes et al, 2006).
La seguridad del procedimiento anestésico, tanto para el animal como para el equipo de trabajo, dependerá del conocimiento de los aspectos biológicos relativos a las particularidades anatómicas, fisiológicas y etiológicos de la especie a ser inmovilizada (Cruz et al., 2008)
La contención y la anestesia de animales silvestres son de extrema importancia para quien trabaja o pretende trabajar con los mismos, ya que en la mayoría de los casos en los que se pretende manejar, transportar, colectara muestras, realizar curativos o procedimientos quirúrgicos, es indispensable contenerlos químicamente o inclusive anestesiarlos (Cruz et al., 2008).
Desarrollar un protocolo anestésico eficaz y seguro para la inmovilización de una especie silvestre.
Que este protocolo permita la realización de la colecta de muestras biológicas (sangre, heces, semen, etc).
Que este protocolo permita la realización de procedimientos cruentos cuando asociado a un analgésico
Muchas especies.
Muchas particularidades especificas.
Especies muy raras y de difícil manejo anestésico.
Difícil definir protocolos generales para todos los animales.
Inmovilización VS Neuroleptoanalgesia.
Comportamiento
Anatomia y fisiologia
CONSIDERAR
Farmacologia
Especie.
¿Ayuno previo?
Tipo de intervención.
Duración de intervención.
Efectos farmacológicos.
¿Ex. Físico clínico?
¿Ex. Laboratoriales complementarios?
Facilita el trabajo, Mejora la calidad del trabajo final (inmoviliza al animal), Disminuye el estrés del animal durante el procedimiento, Permite un adecuado manejo del dolor antes, durante y después de la intervención.
Costos (Fármacos, equipos, etc.)
Requiere de un anestesista en procedimientos mas complejos,
Riesgos anestésicos implicitos.
Efecto variable de sedación y analgesia.
Fácil de usar.
Duración variable.
Seguridad: Preserva los reflejos de protección vitales.
Efectos adversos: ESTRÉS.
Antagonización efectiva
Efecto variable de sedación. No produce analgesia. Fácil de usar. Duración corta. Seguridad: Preserva los reflejos de protección vitales. Disminuye la respuesta de liberación de catecolaminas. Pocas contraindicaciones.
Excelente sedación y analgesia. Rápida inducción Duración de mas de 50 min. efectivos. Seguridad: Preserva los reflejos de protección vitales y produce poco estrés metabólico. Disminuye la respuesta de liberación de catecolaminas. Uso seguro en pacientes geriátricos y pediátricos.
Acepromazina: 0.01 a 0.05 mg/Kg.
Potencializa el efecto de todos los fármacos.
Reduce el tiempo de inducción.
Prolonga el tiempo de sedación.
Disminuye la emesis y la
Excelentes analgésicos. Buena sedación. Buen relajamiento muscular. Son antagonizables. Opioides concentrados requieren de una preparación adecuada por parte del operador.
Tener protección en mucosas y piel durante la manipulación.
Nunca trabaje solo.
Deseche todo residuo en una caja apropiada.
Identifique la zona de aplicación del dardo para evitar contacto accidental con residuos del fármaco durante el manejo del animal.
Gianmarco Rojas Moreno, MV. Esp. MSc.
El éxito del trabajo en la contención química de animales silvestres depende en mucho de la eficiencia en la aplicación de los fármacos en ellos.
Contención comportamental. Contención manual. Contención mecánica.
Oral. Inyección manual. Bastón jeringa.
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Respuesta relativamente buena pero lenta. Usada comúnmente para tranquilización o sedaciones leves. Muy empleado para juntar animales nuevos dentro de un grupo.
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Reduce la posibilidad de traumas por ausencia de impactos fuertes. Seguridad en el punto donde se realiza la aplicación. Permita la aplicación IV.
Bastón jeringa Permite la aplicación rápida de grandes volúmenes de liquido en una única aplicación. No requiere de mucha destreza en su uso. Se puede asociar su uso a una contención física previa •
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Requiere cierta proximidad a los animales. Fácil de usar en animales entrenados. Mejores resultados cuando se asocia a contención física previa. •
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Dardos . Cerbatanas. Pistolas. Rifles.
Permiten inyectar fármacos de diversos volúmenes a largas distancias.
Su uso requiere destreza, entrenamiento y puntería.
Muy efectivos para captura de fieras o animales muy estresados.
Presentan dos cámaras (fármaco/propulsión).
Una vez que penetran el musculo se activa el sistema de propulsión del fármaco.
El fármaco se libera dentro del animal.
Son traumáticos a corta distancia. Pueden asustar a los animales con la explosión de la carga.
Permiten tiros a larga distancia.
Accionados por CO2 o pólvora.
Usados principalmente para captura de animales de grande porte o de difícil captura física.
Muchos son de un uso único.
Materiales
Jeringas de 3 a 5 ml. Pegamento para plástico. 1 Aguja de 18 Gauge. 2 Agujas de 21 Gauge. Lana. Cuter. Lima de precisión.
Cortar la base de la jeringa con un cúter. cúter.
Cortar la punta de jebe del embolo con la base plástica incluida.
Colocar un poco de la lana dentro del jebe de un embolo y pegarlo con adhesivo.
Armar el dado con sus componentes.
Para cerbatana
Para pistola o rifle
Mal funcionamiento del dardo. Fallas con los fármacos. Aerodinámica del dardo. Lesiones en los animales por el impacto.
Usadas para disparos de dardos a distancias cortas (18 m. max). Calibres variados (10 a 16 mm. Diametro). Son de materiales variados (metal o fibra de carbono).
El disparo depende únicamente de la potencia de soplo y de la precisión de tiro del operador.
Poquísimo ruido en el disparo.
Es el método mas empleado en la captura química de animales en cautiverio. Disparos poco traumáticos.
Usados para tiros de corta distancia hasta 30 m.
Son de uso practico en condiciones controladas (precaptura física).
Son activadas con cargas de pólvora o CO2.
Son poco precisas a distancias largas.
Requieren de cierta destreza de tiro del operador.
Son empleadas para anestesiar megavertebrados a distancias cortas (piel gruesa)
Permiten tiros de distancias de mas de 20 m hasta 120 m efectivos. Requieren de entrenamiento especial para su uso. Originalmente eran activados por cartuchos de pólvora (Calibre determina la distancia)
Son activados por cartuchos de CO2 o por aire comprimido. Son mucho mas ligeros y menos ruidosos. Los disparos son poco traumáticos cuando se calcula bien la distancia de tiro. Trabajan con dardos de metal y nylon.
Contar con todo el material listo antes de iniciar la captura.
Pitfall (tapires)
Trampas de lazo
Usado principalmente en zonas de llanuras extensas y para megavertebrados, cérvidos o antílopes.
Ofrecer la mayor comodidad al animal.
Terapia de soporte.
Pesaje de los animales.
Recuperar los dardos dentro de lo posible.
Verificar si el protocolo esta resultando dentro de lo esperado.
Monitoreo de constantes inmediata.
Análisis de gases sanguíneos portátiles (Istat)
Monitor multiparamétrico:
FC. PR. FR. Temp. PANI. PAI. SO2.
Contar con a logística adecuada para la manipulación y transporte del animal.
El desafío de la anestesia es reducir el estrés fisiológico que ocurre durante el procedimiento a fin de asegurar una optima oxigenación tisular.
El estrés fisiológico es le resultado de la depresión de los sistemas cardiovascular y respiratorio provocando una ineficiente perfusión tisular.
Una captura segura de animales silvestres no solo debe garantizar una baja mortalidad, sino que también debe ofrecer una baja morbilidad además de ofrecer una adecuada estabilidad fisiológica.
Las alteraciones fisiológicas provocadas por la captura química en animales silvestres esta asociada a:
Método de captura, Horario de captura, Tipo de anestésico, Especie capturada, Respuesta individual.
Hipertermia (causas)
Asociado a la captura de animales en ambientes cálidos. Producida por la actividad muscular de los animales durante la captura. Estrés genera vasoconstricción periférica disminuyendo la capacidad de perdida de calor. Iatrogénica: Ketamina o T/Z.
Hipertermia (consecuencias)
Acidosis metabólica. Aumento del consumo de O2. CID. Edema pulmonar no cardiogénico. Arritmia cardiaca. Convulsiones. T° > 42 °C genera falla multiorgánica aguda por hipoxia celular.
Hipotermia (causas)
Asociado a la captura de animales en ambientes fríos. Perdida de calor en animales pequeños con superficie corporal muy grande. Secuestro sanguíneo central provocado por efectos farmacológicos. Iatrogénica: alfa2-agonistas o fenotiazinicos.
Hipotermia (consecuencias)
Aumenta el riesgo de infección de heridas. Prolonga muchísimo la recuperación anestésica (5x). Disminuye la capacidad de coagulación sanguínea.
Hipercapnia (causas)
Inadecuada ventilación pulmonar. Aumento de la actividad metabólica provocada por la hipertermia
Hipercapnia leve o moderada (consecuencias)
Puede ser benéfica. Estimula la respuesta respiratoria del sistema nervioso simpático. Efecto positivo inotrópico de vasoconstricción vascular (mejor retorno venoso). Mejora la liberación de oxigeno de la hemoglobina circulante.
Hipercapnia grave (consecuencias)
Letal. Provoca inestabilidad hemodinámica. Genera taquirritmia. Afecta la contractibilidad diafragmática. Puede llevar al coma y muerte.
Hipoxemia (causas)
Inadecuada ventilación pulmonar. Alteraciones cardiopulmonares. Aumento de la actividad metabólica provocada por la hipertermia. Ambientes con pobre oxigenación (hipoxia).
Hipoxemia (consecuencias)
Lleva al aparecimiento de hipoxia tisular. Daño celular de los órganos mas sensibles (cerebro, riñones e hígado). Falla multiorgánica por necrosis tisular.
Acidosis metabólica (causas)
Hipercapnia. Acumulación de acido láctico circulante (miopatía de captura).
Acidosis metabólica (consecuencias)
Disminución de la contractibilidad del miocardio. Hipoxia tisular provoca mayor liberación de acido láctico. Fatiga muscular. Falla multiorgánica.
