LAPORAN PRAKTIKUM PENGOLAHAN LIMBAH INDUSTRI LUMPUR AKTIF KONVENSIONAL Dosen Pembimbing :Ir. Endang Kusumawati, MT
Kelompok / Kelas Nama
: 5 / 3A
: 1.Noer Khoiriyah
131411018
2. Nudia Rahmania
131411019
3. Nur Asmalah
131411020
4. Nurisya’ban Aziezah
131411021
Tanggal Praktikum
: 27 Oktober 2015
Tanggal Pengumpulan Laporan
: 3 November 2015
PROGRAM STUDI DIPLOMA III TEKNIK KIMIA JURUSAN TEKNIK KIMIA POLITEKNIK NEGERI BANDUNG TAHUN 2015 BAB I PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang Metode pengolahan air limbah dengan menggunakan system Lumpur Aktif Konvensional merupakan metode yang banyak digunakan dalam pengolahan air limbah industry. Terdapat beberapa alas an yang mendasari hal tersebut yakni efisiensi pengolahan cukup tinggi (penyisihan BOD ± 85%), desain reaktornya sederhana, dan rentang dari jenis limbah cair yang dapat diolah cukup luas. Alas an yang lain yaitu kandungan organic dalam air limbah industry masih berada dalam rentang yang sesuai untuk diolah dengan menggunakan metode ini. 1.2. Tujuan Percobaan Setelah melakukan praktikum ini diharapkan mampu:
Menentukan konsentrasi awal kandungan organik dalam lumpur aktif dan konsentrasi
kandungan organik setelah percobaan berlangsung selama seminggu, Menentukan kandungan Mixed Liquor Volatile Suspended Solid (MLVSS) yang
mewakili kandungan mikroorganisme dalam lumpur aktif, Menentukan konsentrasi nutrisi bagi mikroorganisme pendegradasi air limbah dalam
lumpur aktif, Menghitung efisiensi pengolahan dengan cara menentukan persen (%) kandungan bahan organik yang didekomposisi selama seminggu oleh mikroorganisme dalam lumpur aktif terhadap kandungan bahan organic mula-mula.
BAB II LANDASAN TEORI Pengolahan limbah dengan aerobic activated sludge (lumpur aktif) merupakan proses biologis menggunakan mikroorganisme untuk mendegradasi bahan-bahan organik yang terkandung dalam limbah cair. Proses lumpur aktif berlangsung dalam bak aerasi yang dilengkapi bak sedimentasi untuk memisahkan endapan lumpur dari air limbah yang telah terolah. Kualitas effluent tergantung pada karakter mikroorganisme pembentuk lumpur aktif, antara lain sifatpengendapannyadankondisibaksedimentasi (William, 1999). Proses biologis dalam pengolahan limbah organik, memerlukan nitrogen (N) dan fosfor (P). Namun kelebihan N dan P dalam effluent air limbah akan menyebabkan pencemaran terhadap lingkungan yang akan berdampak buruk terhadap keseimbangan ekologi dan kesehatan manusia. Untuk mengolah limbah dengan kandungan N dan P yang berlebih biasanya dilakukan proses activated sludge dilengkapi proses anoxic. Bakteri merupakan unsur utama dalam flok lumpur aktif.Lebih dari 300 jenis bakteri yang dapat ditemukan dalam lumpur aktif.Bakteri tersebut bertanggung jawab terhadap oksidasi material organik dan tranformasi nutrien, dan bakteri menghasilkan polisakarida dan material polimer yang membantu flokulasi biomassa mikrobiologi. Genus yang umum dijumpai adalah : Zooglea, Pseudomonas, Flavobacterium, Alcaligenes, Bacillus, Achromobacter, Corynebacterium,
Comomonas, Brevibacterium, dan Acinetobacter,
disamping itu ada pula mikroorganisme berfilamen, yaitu Sphaerotilus dan Beggiatoa, Vitreoscilla yang dapat menyebabkan sludge bulking. Dikarenakan tingkat oksigen dalam difusi terbatas, jumlah bakteri aktif aerobik menurun karena ukuran flok meningkat (Hanel, 1988).Bagian dalam flok yang relatif besar membuat kondisi berkembangnya bakteri anaerobik seperti metanogen.Kehadiran metanogen dapat dijelaskan dengan pembentukan beberapa kantong anaerobik didalam flok atau dengan metanogen tertentu terhdap oksigen (Wu et al., 1987).Oleh karena itu lumpur aktif cukup baik dan cocok untuk material bibit bagi pengoperasian awal reaktor anaerobik.
Proses lumpur aktif relative sederhana, namun untuk limbah yang mengandung bahan-bahan organik, N dan P dengan konsentrasi tinggi, cara pengolahan ini memiliki beberapa kendala, antara lain berpotensi menghasilkan ‘bulking sludge’ akibat adanya microorganism berfilamen dan menghambat proses sedimentasinya. Demikian juga efisiensi proses akan menurun bila beban organic limbahyang diolah terlalu fluktuatif. Untuk mengatasi kelemahan dari system lumpur aktif konvensional, maka dicoba suatu proses lumpur aktif yang dilengkapi dengan menggunakan Submerged Membrane Bioreactor (SMBR). Konsep SMBR secara teknis hampir sama dengan pengolahan limbah biologis konvensional, kecuali proses pemisahan activated sludge dengan effluent yang dilakukan menggunakan membrane filtrasi sebagai pengganti sedimentasi. Penggunaan Membrane Bioreactor (MBR) diantaranya mampu mengolah bahan organic dengan konsentrasi yang tinggi dan beban yang berfluktuasi. Kualitas air effluent akan meningkat, yang ditandai dengan minimnya kandungan padatan tersuspensi, virus, dan bakteri didalamnya (Chang et al, 2002). Beberapa tahun belakangan ini, integrasi dari proses activatedsludge dan SMBR dikenal sebagai salah satu proses pengolah limbah inovatif yang berpotensi untuk mendapatkan produk air ulang (reused) didalam industry (Katayon, 2004). Beberapa penulis berpendapat bahwa persoalan fouling pada membrane akibat hadirnya mikroorganisme yang terkait dengan konsentrasi, ukuran partikel dan produk microbial merupakan kendala operasi SMBR. Berbagai strategi penbersihan membrane telah diusulkan dan dicoba dengan cara mencuci (washing) atau backwashing untuk menjaga agar flux permeat didalam system MBR terjaga baik. (Marrot.B, 2004).Selama ini kontribusi oksigen didalam membrane bioreactor masih belum banyak dilaporkan, padahal kehadiran O2 tidak bias dia baikan begitus aja. Beberapa peneliti telah menunjukkan makin besar kehadiran biomasa akan memerlukan suplai O2 yang lebih banyak., sehingga akan mereduksi kapasitas aerasi yang telah ada pada system biologis. Lebih lanjut, bertambahnya konsentrasi suspense lumpur aktifakan menyebabkan naiknya viskositas cairannya. Kondisi ini dapat menyebabkan terhambatnya transfer O2 kedalam air dan selanjutnya ke dalam mikroba (Marrot. B, 2004).
Gambar 2.1 Diagram Proses Pengolahan Air Limbah Dengan Proses Lumpur Aktif Konvensional
Gambar 2.2 Proses Lumpur Aktif
BAB III METODOLOGI PERCOBAAN
3.1 Alat dan Bahan 3.1.1 Alat-alat yang digunakan No 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9.
Nama Alat Labu Erlenmeyer Corong Gelas Cawan Porselin Desikator Tabung Hach Neraca Analitis Oven dan Furnace Hach COD Digester Buret
Spesifikasi 250 ml -
Jumlah 2 buah 2 buah 2 buah 1 buah 2 buah 1 buah 1 buah 1 buah 1 buah
Spesifikasi 98% -
Jumlah 50 ml 4.6875 gram 0.0325 gram 0.0107 gram 3.5 ml 1.5 ml 50 ml
3.1.2 Bahan-bahan yang diperlukan No 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7.
Nama Bahan Sampel Glukosa KNO3 KH2PO4 H2SO4 K2Cr2O7 FAS 0.1 N
8. 9. 10.
Indikator Ferroin Kertas Saring Aquades
-
∞ 20 ml ∞
3.2 Prosedur Kerja 3.2.1 Penentuan Kandungan Organik (COD) dari sampel Memasukan 2.5 ml sampel ke tabung hach dan ditambah dengan 1.5 ml K2Cr2O7 dan 3.5 ml H2SO4
Memasukan tabung hach pada hach digester dan memanaskan larutan (T = 1500C ; t = 2 jam)
Mengeluarkan tabung hach dan membiarkan larutan dingin
Mentitrasi larutan dengan larutan FAS 0.1 N dan indicator ferroin
Melakukan prosedur diatas untuk larutan blanko
3.2.2 Penentuan Kandungan MLVSS Memanaskan cawan pijar di dalam furnace (T = 6000C ; t =1 jam) dan kertas saring di dalam oven (T = 1050C ; t =1 jam)
Menimbang cawan pijar dan kertas saring hingga konstan
Mendinginkan dan menurunkan suhu dengan bantuan desikator
Menyaring 40 ml sampel dengan kertas saring
Memanaskan kertas saring dan cawan pijar tersebut ke dalam oven (T = 1050C ; t =1 jam)
Menimbang cawan pijar yang berisi kertas saring dan endapan
Memanaskan kertas saring dan cawan pijar tersebut ke dalam furnace (T = 6000C ; t =2 jam)
Menimbang hingga beratnya konstan
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Kondisi Awal sample 4.1.1 PengukuranKeadaanAwal Sample 4.1.2
pH Temperatur DO awal
= 8.4 = 28.4oC = 2.7 mg/L
Penentuan Kandungan COD Jenislarutan
4.1.3
Volume FAS yang digunakan (mL) Secara duplo Tabung 1
Tabung 2
Rata-rata
Blanko
3,35
3,25
3,3
Sampel
3
3,15
3,075
Penentuan Kandungan MLVSS
Sebelum penambahan nutrisi Volume sampel = 40 ml Massa Cawanpijarkosong(a)
Penimbangan (gram) 39.4179
Kertassaring(b) Cawanpijar + kertassaring + endapansetelahpemanasan di dalam oven (c)
40.5740
Cawanpijar + kertassaring + endapansetelahpemanasan di dalamfurnance(d)
39.4489
1.1561
4.1.4
Penentuan Konsentrasi Nutrisi Bagi Mikroorganisme
Jumlah yang dibutuhkan (gram) Glukosa
4.6875
KNO3
0.0169 gram
KH2PO4
2.056 x 10−4
4.2 Perhitungan 4.2.1 Perhitungan COD (Chemical Oxygent Demand)
Standarisasi Ferro Amonium (FAS) Normalitas K 2 Cr 2 O7 × ml K 2 Cr 2 O7 Normalitas FAS = ml FAS Normalitas FAS =
0.025 N ×10 ml 22.55 ml
Normalitas FAS =0.11 N
COD sebelum penambahan nutrisi
COD sebagai mg O2 / L=
Dengan
( a−b ) c ×1000 ×d × p ml sampel
: a = mL FAS untuk blanko b = mL FAS untuk sampel c = normalitas FAS (0,11N) d = berat equivalen oksigen (8) p = pengenceran
1
Tabung Hach ke-1 COD sebagai mgO2 / L=
( 3.35−3 ) × 0.11 N × 1000 ×8 ×25 2,5 ml
COD sebagai mgO2 / L=2464 mgO2 / L
2
Tabung Hach ke-2
COD sebagai mg O 2 / L=
( 3.25−3.15 ) × 0.11 N × 1000× 8 ×25 2,5 ml
COD sebagai mgO2 / L=704 mgO2 / L
Rata−rataCOD sebagai mg O2 / L=
( 2464 +704 ) mg O2 / L =1584 mg O 2 /L 2
COD Akhir
COD akhir sebagaimg O2 / L=785 mgO2 / L
PerhitunganEfisiensiPengolahan (%) Parameter : COD η=
COD awal−COD akhir ×100 COD awal
η=
1584 mg O2 /L−785 mgO2 / L ×100 1584 mgO2 / L
η=50.4419
4.2.2
Penentuan Kandungan MLVSS
Beratcawanpijar (a gram)
39,4179 gr
Beratkertassaring (b gram)
1,1495 gr
Cawanpijar + kertassaring + endapan (c gram)
40,5740 gr
Cawanpijar + kertassaring + endapan (d gram)
39,4489 gr
TSS (Total Suspended Solid) TSS (mg/L)
=
( c−a ) 6 x 10 mLsampel
=
(40.5740−39.4179) x 106 40
= 28902,5mg/L
VSS (volatile Suspended Solid) VSS (mg/L)
=
( c−d ) 6 x 10 mLsampel
=
(40.5740−39.4489) x 106 40
= 28127,5 mg/L
FSS (Fixed Suspended Solid) FSS (mg/L)
= TSS – VSS = 28902,5-28127,5 = 775mg/L
4.2.3 Penentuan KonsentrasiNutrisiBagi Mikroorganisme Diketahui
:BOD dalam lumpur aktif = 500 mg/L dengan perbandingan BOD : N : P = 100 : 5 : 1 Volume tangkilumpur = 10 L
Reaksi
:
C6 H 12 O6 +6 O2 →6 C O2 +6 H 2 O
Beratglukosa yang ditambahkan :
Berat glukosa yang ditambahkan=500
mg 180 mg/mmol 1 1 mg × × ×10 L × L 32mg /mmol 6 1000 gram
Berat glukosa yang ditambahkan=4.6875 gram
Berat KNO3 sebagai sumberNitrogen yang ditambahkan : Mr KNO3 = 101 mg/mmol Ar N
= 14 mg/mmol
Berat KN O3 yang ditambahkan=500 mg/L ×
101 mg/mmol 5 1 mg × ×10 × 14 mg/mmol 100 1000 gram
Berat KN O3 yang ditambahkan=1.8036 gram
Berat KH2PO4 sebagai sebagaiPhospor yang ditambahkan : Mr KH2PO4
= 136 mg/mmol
Ar P
= 31 mg/mmol
Berat K H 2 PO 4 yang ditambahkan=500
mg 136 mg/mmol 1 1 mg x × × L 31 mg/mmol 100 1000 gram
Berat K H 2 PO 4 yang ditambahkan=0.219 gram
4.3 Pembahasan Pada praktikum ini dilakukan metode pegolahan air limbah dengan menggunakan metode lumpur aktif konvensional.Kedalam sampel limbah ditambahkan nutrisi, nutrisi yang ditambahkan adalah sumber makanan untuk mikroorganisme yang akan mendekomposisi bahan organik, hal ini yang menyebabkan kandungan organik dalam sampel dapat diturunkan. Pengolahan ini memanfaatkan kerja mikroba aktif untuk mendegradasi bahanbahan organik yang terdapat dalam air limbah.Penentuan konsentrasi kandungan organik dalam lumpur aktif dengan menghitung besarnya COD. COD (Chemical Oxygen Demand) merupakan jumlah oksigen yang digunakan untuk mendegradasi senyawa organik pada limbah dengan bantuan oksidator kuat seperti K2Cr2O7 dan KMnO4.Sedangkan MLVSS untuk mengetahui kuantitas mikroba yang mendekomposisi bahan organik. Pada proses pendokomposisian oleh mikroba ini yang diperhatikan adalah adanya oksigen (aerasi) sebagai sumber oksigen bagi mikroba untuk menghasilkan energi untuk mendekomposisi bahan organic 1. Penentuan Konsentrasi Nutrisi Bagi Mikroorganisme
Sebelum dilakukan pengukuran COD setelah proses pendekomposisian, kedalam sampel
dimasukan
sejumlah
nutrisi
sebagai
sumber
makanan
untuk
mikroba
pendekomposisi.Nutrisi ini harus memilki kandungan senyawa glukosa, unsur nitrogen dan unsur posfor Langkah pertama yang dilakukan pada percobaan ini adalah menghitung berapa komposisi substrat glukosa yang merupakan sumber karbon, kalium nitrat (KNO 3) sebagai sumber Nitrogen, dan Kalium dihidrogen fosfat (KH2PO4) sebagai sumber fosfor yang harus ditambahkan sebagai nutrisi pertumbuhan lumpur aktif dengan volume tangki 10 liter. Fungsi dari penambahan glukosa ini adalah sebagai sumber karbon yang merupakan unsur utama dalam pembentukan sel baru selama biosintesis karbon yang merupakan sumber berbagai senyawa organik seperti asam amino, asam lemak, gula, basa nitrogen, senyawasenyawa aromatik, dan berbagai substansi organik lainnya, serta karbon dioksida. Adapun fungsi dari penambahan KNO3 adalah sebagai sumber Nitrogen yang berfungsi sebagai pembangun sel dan merupakan konstituen utama dari protein dan asam nukleat dari sel. Sedangkan penambahan KH2PO4 yang merupakan sumber fosfor berfungsi sebagai penyumbang sekitar 3% massa dalam sel kering. Setelah dilakukan perhitungan, .Nutrisi yang ditambahkan adalah glukosa, KNO3 dan KH2PO4. Untuk glukosa ditambahkan sebagai sumber karbohidrat atau gula, sedangkan KNO3 sebagai sumber nitrogen dan KH2PO4 sebagai sumber posfor dimana perbandingan yang diberikan adalah glukosa: KNO 3:KH2PO4 100:5:1, hal ini dikarenakan mikroba dapat tumbuh pada komposisi nutrien tersebut. Didapat komposisi penambahan C6H12O6 sebesar 4.6875 gram, KNO3 sebesar
1.8036 gram, dan
KH2PO4 sebesar 0.219 gram.
2. COD (Chemical Oxygent Demand) Pada percobaan dilakukan pengukuran COD yaitu untuk mengetahui kandungan organik dalam sampel, pengukuran COD ini untuk mengetahui berapa banyak oksigen yang dibutuhkan untuk mengoksidasi kandungan organik dalam sampel, sehingga bila semakin banyak zat yang dibutuhkan untuk mengoksidasi zat organik maka semakin banyak pula kandungan zat organiknya. Artinya semakin tinggi nilai COD maka kandungan organik dalam sampel semakin banyak atau kualitas air semakin buruk. Sebelum dilakukan analisis pada COD, sebelumnya dilakukan terlebih dahulu standarisasi FAS oleh K2Cr2O7, dimana
reaksi yang terjadi reaksi redoks dalam keadaan asam karena penambahan H 2SO4 dimana dalam keadaan asam ini berfungsi untuk mengasamkan larutan sehingga K 2Cr2O7 dapat mengoksidasi Fe . Berdasarkan percobaan terlihat bahwa nilai COD pada sampel limbah sebelum proses degradasi adalah tinggi yaitu sebesar 1584 mgO 2/L. Nilai COD sebelum proses masih tinggi sehingga dilakukanlah proses dekomposisi bahan organik untuk menurunkan kandungan organiknya. Sedangkan nilai COD setelah proses selama 5 hari adalah sebesar 785 mgO 2/L. Nilai COD setelah proses ini lebih kecil dibanding nilai COD sebelum proses. Hal ini menunjukan adanya penurunan kandungan organik pada sampel limbah, dimana penurunan kandungan organik ini disebabkan mikroorganisme yang mendekomposisi bahan organik tersebut menjadi CO2, H2O dan NH4 sehingga kandungan organik setelah proses menjadi turun. Besarnya penurunan kandungan organik ini menghasilkan efisiensi sebesar 50,441 %, sedangkan berdasarkan literatur pengolahan limbah menggunakan lumpur aktif dapat menurunkan konsentrasi COD >85 % (Lestari, 2003). Bila dibandingkan dengan literatur, hasil percobaan efisiensi penurunan COD sudah kurang dari 85%, sehingga dapat dikatakan bahwa proses ini kurang optimum untuk menurunkan COD dalam sampel air limbah. Hasil akhir dari proses ini menghasilkan kandungan organik yang masih tinggi dimana nilai ini masih lebih besar bila dibandingkan dengan standar kualitas air bersih dimana batas COD adalah 100 mgO2/L ( Peraturan Menteri Kesehatan RI. 416/Menkes/Per/IX/1990), sehingga dapat dikatakan dari hasil COD setelah proses ini kandungan organiknya masih tinggi dan tidak memenuhi syarat kualitas air bersih. Maka hasil proses pengolahan ini bila diterapkan tidak dapat langsung dibuang ke lingkungan sehingga harus diolah kembali untuk menurunkan nilai COD hingga batas yang diperbolehkan. Kandungan organik setelah proses dekomposisi yang masih tinggi dari nilai yang diperbolehkan diakibatkan karena pada percobaan ini kurangnya pengecekan lingkungan pada bak proses seperti pH dan suhu. Dimana kedua parameter ini tentunya harus selalu dicek secara rutin, untuk pH seharusnya pH dalam keadaan netral dimana mikroba dapat bekerja, serta temperatur tidak boleh terlalu tinggi ataupu terlalu rendah, sehingga temperatur berada pada suhu dimana mikroba dapat bekerja optimal. Selain pH dan temperatur yang harus diperhatikan adalah oksigen yang ditambahkan (aerasi), dimana keadaan aerasi ini seharusnya dicek secara rutin dimana adanya oksigen tidak boleh kurang (jika kurang oksigen tidak akan cukup digunakan oleh mikroba untuk mendekomposisi bahan organik) dan juga tidak boleh lebih (jika oksigen berlebih maka akan menjadi racun untuk mikroba itu sendiri), sehingga jumlah oksigen kedalam bak aerasi
harus cukup mengingat bak aerasi dan dekomposisi ini adalah bak diam dan statis/tidak mengalir sehingga jumlah oksigen yang ditambahkan adalah faktor penting. Parameterparameter ini merupakan kondisi yang mendukung untuk proses lumpur aktif, sehingga kemungkinan tidak optimalnya parameter ini memungkinkan mikroba yang mendekomposisi bahan organik tidak bekerja secara optimal yang menyebabkan efisiensi pengolahan belum efektif. 3. kandungan Mixed Liqour Volatile Suspenkded Solid (MLVSS). Sedangkan untuk pengukuran MLVSS dilakukan pada sampel limbah sebelum proses dimana nilai MLVSS sama dengan nilai VSS. Nilai VSS adalah bahan organik yang mudah teruapkan, dimana jumlahnya mewakili jumlah mikroorganisme yang ada didalamnya. Hal ini dikarenakan bahan organik yang mudah menguap seperti protein, karbohidrat, glukosa, dll.ada dalam bakteri sehingga jumlahnya mewakili banyaknya bakteri didalam sampel. Dari hasil percobaan nilai TSS dari sampel adalah sebesar 28902,5 mg/L. Berdasarkan literatur, nilai TSS yang diperbolehkan adalah sebesar 50 mg/L (Pergub Bali No. 8 Tahun 2007). Bila dibandingkan hasil percobaan dengan nilai literatur maka nilai TSS pada sampel, diatas nilai yang
diperbolehkan
sehingga
padatan
tersuspensi
yang
terendapkannya
cukup
tinggi.Sedangkan untuk mengetahui jumlah mikroba yang mendekomposisi bahan organik dilakukan dengan mengukur VSS dimana pengukuran VSS ini didapat dari berat yang dipanaskan pada oven dengan berat yang dipanaskan pada furnace, sehingga dapat diketahui berat yang teruapkan dimana berat ini menunjukan banyaknya mikroorganisme yang ada pada sampel.Dari hasil VSS didapat nilai VSS adalah sebesar.28127,5mg/L. Hal ini mewakili banyaknya kandungan organik yang akan didekomposisi oleh mikroorganisme pada proses lumpur aktif. Dari nilai yang didapat, nilai VSS masih tinggi sehingga kandungan organik yang akan didekomposisipun tinggi, sehingga membutuhkan banyak mikroba untuk mendekomposisinya pada proses. Sedangkan untuk FSS atau padatan yang tidak mudah teruapkan yang didapat adalah sebesar 775 mg/L. Pada ketiga parameter tersebut baik nilai VSS, TSS maupun FSS masih tinggi dalam sampel limbah, hal ini dikarenakan belum adanya pengolahan bahan organik pada limbah yang menyebabkan masih tingginya kandungan padatan organik dan anorganik. Sedangkan untuk pengukuran DO pada awal proses DO pada sampel air limbah adalah sebesar 2,7mg/L dimana oksigen terlarut pada sampel masih kecil (bila dibandingkan dengan literatur SNI 01-3553-1996 dimana DO tidak boleh kurang dari 500 mg/L), bila nilai
DO diukur setelah proses lumpur aktif maka seharusnya nilai DO akan meningkat, dimana dari hasil proses akan terjadi aerasi yang akan mengalirkan O 2 kedalam sampel sehingga akan menghasilkan okigen yang akan larut dalam sample.
BAB V SIMPULAN Dari praktikum Lumpur Aktif Konvensional yang dilakukan dapat diambil kesimpulan, antara lain : 1. Konsentrasi awal kandungan organik dalam lumpur aktif (COD) untuk sampel adalah sebesar 1584 mg O2/L dan konsentrasi akhir COD sebesar 785 mg O2/L. 2. Kandungan mikroorganisme dalam lumpur aktif (VSS/MLVSS) sebesar 28127,5 mg/L, kandungan TSS sebesar 8902,5 mg/ L dan FSS sebesar 775 mg / L.
3. Nutrisi yang diberikan untuk proses pertumbuhan mikroorganisme dalam 10 L air limbah dengan BOD 500 mg /Liter dengan perbandingan BOD:N:P sebesar 100:5:1 yaitu :
Glukosa = 4,6875 gram
KNO3 = 1.8036 gram
KH2PO4 = 0.219 gram
4. Efisiensi pengolahan senyawa organik (COD) yang diperoleh adalah sebesar50,4419
%.
BAB VI DAFTAR PUSTAKA Budiastuti, Herawati. 2011. Lumpur Aktif Konvensional. Bandung : Politeknik Negeri
Bandung.
LAMPIRAN 1. Gambar N o
Gambar
Keterangan
1
2
3
4
Pemanasan kertas saring dalam oven pada suhu 105 oC selama 1 jam
Pengenceran sampel
Penambahan 2,5 mL sampel ke dalam 4 tabung hach
Penambahan 1.5 ml K2Cr2O7 ke dalam 4 tabung hach
4 tabung hach yang terdiri dari Larutan 5
yang mengandung sampel, K2Cr2O7, dan H2SO4
6
7
8
Pemanasan larutan pada hach digester selama 2 jam
Proses titrasi menggunakan larutan FAS 0,1 N
Terjadi perubahan warna pertama menjadi hijau toska selama proses titrasi
9
Terjadi perubahan warna kedua menjadi cokelat/merah bata pada proses titrasi
