KULTUR JARINGAN TANAMAN GAHARU
D I S U S U N
O L E H
Fitrianda Ayu Utami Halimah Mardhiyah M.S.
XI MIA 7 SMA Negeri 9 Bandar Lampung
1. Sekilas Tentang Gaharu Secara umum pohon penghasil gaharu merupakan tumbuhan tinggi berkayu. Namun gaharupun dapat dihasilkan oleh tumbuhan liana dan perdu. Kualitas gaharu yang terbentuk berbeda sesuai jenis pohon penghasilnya. Perbedaan ini dapat terjadi pada bentuk, cirri, sifat, dan aroma keharumannya yang dapat diketahui setelah gaharu dibakar. Volume produksi dan kualitas gaharu secara umum ditentukan oleh kinerja mikroba penyakit pembentuk gaharu (inokulan), umur pohon, dan masa inkubasi. Sementara warna gaharu yang terkandung dalam kayu akan berbeda sesuai masa produksi, yaitu : hitam, cokelat, cokelat merah, merah kuning bergaris hitam, dan putih kekuningan. (Sumarna, 2002).
1.1
Klasifikasi dan jenis Gaharu
Sistematis beberapa tanaman penghasil Gaharu yang dikutip dari Sumarna (2002), adalah sebagai berikut : Dalam klasifikasi tumbuhan, tanaman penghasil gaharu ini termasuk divisi Spermatophyta dan kelas Dicotyledoneae. Tanaman penghasil gaharu terdiri dari famili Thymeleaceae, Leguminoceae, dan Euforbiaceae. Dari ketiga famili yang disebutkan diatas, yang penghasil gaharu terbaik dari Genus Aquilaria, akan tetapi dari kelompok Aquilaria inipun ada tiga spesies yang perpotensi penghasil gaharu berkualitas tinggi yaitu : Aquilaria beccanrian, Aquilaria microcarpa, dan Aquilaria malaccensis Lamk . Pada tabel dibawah ini memperlihatkan beberapa genus dan spesies ketiga famili tanaman penghasil gaharu. Tabel 1. Spesies Tanaman Penghasil Gaharu Famili
Genus
Thymeleaceae Aquilaria
Spesies
A. malaccensis Lamk A. hirta
A. microcarpa A. filaria A. becariana A. agalocha Aetoxylon
Aetoxylon sympethaluum
Enkleia
Enkleia malaccensis
Gonystylus
G. banccanus G. macrophyllus
Wikstroemia
W. androsaemofolia W. polyantha W. tenuriamis
Gyrinops
G. cumingiana
Leguminoceae Dalbergia
D. parvifolia
Euforbiaceae
E. agalocha
Excoccaria
Sumber: Sumarna (2002)
1.2
Sebaran Alami dan Tempat Tumbuh
Umumnya tanaman penghasil gaharu yang berkualitas baik tumbuh pada daerah beriklim panas dengan suhu 28°-34°C, kelembaban 60-80%, dan curah hujan 1.0002.000 mm/tahun. Penyebaran tanaman penghasil gaharu per spesies di Indonesia dan Malaysia bisa dilihat pada tabel berikut. (Sumarna, 2002).
Tabel 2. Jenis tanaman penghasil gaharu dan daerah penyebarannya di Indonesia dan Malaysia.
Daerah Penyebaran
Nama Latin
Aquilaria malccensis Lamk
Sumatera, Kalimantan, Seluruh semenanjung Malaysia, Sabah dan Serawak
Aquilaria hirta
Sumatera, Trengganu, Johar, dan Pahang.
Aquilaria agalloccha
Sumatera, Jawa, Kalimantan
Aquilaria microcarpa
Kalimantan, Sumatera, Nusa Tenggara, dan Johor Malaysia
Aquilaria beccariana
Sumatera, Kalimantan, dan sebagian Johor Malaysia.
Aquilaria filaria
Nusa Tenggara, Maluku, Papua (Irian Jaya)
Aetoxylon sympethallum
Kalimantan, Papua, Maluku
Enkleia malaccensis
Sumatera, Nusa Tenggara, Papua
Gonystylus bancanus
Sumatera, Kalimantan
Gonystylus macrophyllus
Sumatera, Kalimantan
Wikstroemia androsaemofolia
Jawa, Kalimantan, Madura, NTT, Sulawesi Papua
Wikstroemia polyanta
Kalimantan, Nusa Tenggara, Papua
Wikstroemia tenuriamis
Sumatera, Bangka, Kalimantan
Gyrinops cumingiana
Nusa Tenggara
Dalbergia parvifolia
Sumatera, Kalimantan
Excoccaria agalocha
Jawa, Kalimantan
Sumber: Sumarna (2002)
1.3
Kegunaan Gaharu
Gaharu banyak diperdagangkan dengan harga jual yang sangat tinggi. Selain ditentukan dari jenis tanaman penghasilnya, kualitas gaharu juga ditentukan oleh banyaknya kandungan resin dalam jaringan kayunya. Semakin tinggi kandungan
resin di dalamnya maka harga gaharu tersebut akan semakin mahal dan begitu pula sebaliknya. Sampai saat ini, pemanfaatan gaharu masih dalam bentuk bahan baku (kayu bulatan, cacahan, bubuk, atau fosil kayu yang sudah terkubur. Setiap bentuk produk gaharu tersebut mempunyai bentuk dan sifat yang berbeda. Gaharu mempunyai kandungan resin atau damar wangi yang mengeluarkan aroma dengan keharuman yang khas. Dari aromanya itu yang sangat popular bahkan sangat disukai oleh masyarakat negara-negara di Timur Tengah, Saudi Arabia, Uni Emirat, Yaman, Oman, daratan Cina, Korea, dan Jepang sehingga dibutuhkan sebagai bahan baku industri parfum, obat-obatan, kosmetika, dupa, dan pengawet berbagai jenis asesoris serta untuk keperluan kegiatan keagamaan. Seiringnya dengan perkembangan ilmu pengetahuan dan teknologi industri, gaharu bukan hanya berguna sebagai bahan untuk industri wangi-wangian saja, tetapi juga secara klinis dapat dimanfaatkan sebagai obat. Gaharu bisa dipakai sebagai obat: anti asmatik, anti mikroba, stimulant kerja syaraf dan pencernaan ,obat sakit perut, penghilang rasa sakit, kanker, diare, tersedak, tumor paru-paru, obat tumor usus ,penghilang stress, gangguan ginjal, asma, hepatitis, dan untuk kosmetik.
2. Kultur jaringan Kultur jaringan adalah suatu metode untuk mengisolasi bagian dari tanaman seperti sekelompok sel atau jaringan yang ditumbuhkan dengan kondisi aseptik, sehingga bagian tanaman tersebut dapat memperbanyak diri tumbuh menjadi tanaman lengkap kembali.
2.1 Prinsip
Teknik kultur jaringan memanfaatkan prinsip perbanyakan tumbuhan secara vegetatif. Berbeda dari teknik perbanyakan tumbuhan secara konvensional, teknik kultur jaringan dilakukan dalam kondisi aseptik di dalam botol kultur dengan medium dan kondisi tertentu. Karena itu teknik ini sering kali disebut kultur in vitro. Dikatakan in vitro (bahasa Latin), berarti "di dalam kaca" karena jaringan tersebut dibiakkan di dalam botol kultur dengan medium dan kondisi tertentu. Teori dasar dari kultur in vitro ini adalah Totipotensi. Teori ini mempercayai bahwa setiap bagian tanaman dapat berkembang biak karena seluruh bagian tanaman terdiri atas jaringan-jaringan hidup. Oleh karena itu, semua organisme baru yang berhasil
ditumbuhkan akan memiliki sifat yang sama persis dengan induknya. Terdapat keuntungan yang diperoleh dari menggunakan kultur jaringan, yaitu bibit yang dihasilkan seragam dalam hal kualitas, ukuran, dan usia, sehingga akan memudahkan penanaman dan pemanenan; menjaga kontinuitas ketersediaan bibit dalam jumlah besar; menghasilkan bibit bebas dari penyakit. Hal ini dapat memberikan keuntungan besar dalam hal produktivitas yang tinggi, terutama jika ditunjang cara-cara budidaya yang optimal. Sedangkan kelemahan dari in vitro yaitu bibit hasil kultur jaringan sangat rentan terhadap hama penyakit dan udara luar, membutuhkan modal investasi awal yang tinggi, dan diperlukan persiapan sumber daya manusia yang handal . (Tini dan Amri, 2002).
2.2
Prasyarat
Pelaksanaan teknik ini memerlukan berbagai prasyarat untuk mendukung kehidupan jaringan yang dibiakkan Hal yang paling esensial adalah wadah dan media tumbuh yang steril. Media adalah tempat bagi jaringan untuk tumbuh dan mengambil nutrisi yang mendukung kehidupan jaringan. Media tumbuh menyediakan berbagai bahan yang diperlukan jaringan untuk hidup dan memperbanyak dirinya.
2.3
Jenis kultur jaringan
Berdasarkan jenis eksplan (sel atau jaringan asal), jenis kultur jaringan dapat dibedakan menjadi beberapa jenis, yaitu : a. Meristem culture, yaitu teknik kultur jaringan dengan menggunakan eksplan dari jaringan muda atau meristem. b. Pollen atau anther culture, yaitu teknik kultur jaringan dengan menggunakan eksplan dari serbuk sari atau benang sari. c. Protoplast culture, yaitu teknik kultur jaringan dengan menggunakan eksplan dari protoplasma ( sel hidup yang telah dihilangkan dinding selnya). d. Chloroplast culture, yaitu teknik kultur jaringan dengan menggunakan eksplan dari kloroplas dengan tujuan perbaikan sifat tanaman dengan membuat varietas baru. e. Somatic cross atau silangan protoplasma, yaitu penyilangan 2 macam protoplasma menjadi 1, kemudian dibudidayakan hingga menjadi tanaman yang mempunyai sifat baru.
2.4
Media
Ada dua penggolongan media tumbuh: media padat dan media cair. Media padat pada umumnya berupa padatan gel, seperti agar, dimana nutrisi dicampurkan pada agar. Media cair adalah nutrisi yang dilarutkan di air. Media cair dapat bersifat tenang atau dalam kondisi selalu bergerak, tergantung kebutuhan. Komposisi media yang digunakan dalam kultur jaringan dapat berbeda komposisinya. Perbedaan komposisi media dapat mengakibatkan perbedaan pertumbuhan dan perkembangan eksplan yang ditumbuhkan secara in vitro. Sebelum membuat media, maka terlebih dahulu kita harus menentukan media apa yang akan kita buat. Jenis media dengan komposisi unsur kimia yang berbeda dapat digunakan untuk media tumbuh dari jaringan tanaman yang berbeda pula. Kita mengenal beberapa macam media dasar yang pada umumnya diberi nama sesuai dengan nama penemunya, antara lain adalah: 1. Media dasar Murashige dan Skoog (MS): digunakan untuk hampir semua macam tanaman, terutama tanaman herbaceous. Media ini mempunyai konsentrasi garam-garam mineral yang tinggi dan senyawa N dalam bentuk NO3- dan NH4+. 2. Media dasar B5 atau Gamborg: digunakan untuk kultur suspensi sel kedele, alfalfa dan legume lain. 3. Media dasar White: digunakan untuk kultur akar. Media ini merupakan media dasar dengan konsentrasi garam-garam mineral yang rendah. 4. Media Vacin Went (VW): digunakan khusus untuk media anggrek. 5. Media dasar Nitsch dan Nitsch: digunakan untuk kultur tepung sari ( pollen) dan kultur sel. 6. Media dasar Schenk dan Hildebrandt: digunakan untuk kultur jaringan tanaman monokotil. 7. Media dasar Woody Plant medium (WPM): digunakan untuk tanaman yang berkayu. 8. Media dasar N6: digunakan untuk tanaman serelia terutama padi. (Hendaryono dan Wijaya, 1994)
2.5
Teknik kultur jaringan
1. Sumber Eksplan Eksplan
adalah
bagian
pada
tanaman yang digunakan sebagai sumber perbanyakan dalam kultur jaringan. Syarat : 1) Mudah disterilisasi 2) Dari jaringan muda, karena lebih mudah diregenerasi 3) Responsif terhadap media pertumbuhan Sumber eksplan pada tanaman gaharu, yaitu : a. Tunas pucuk dan tunas buku
1) Tunas pucuk ataupun tunas buku dapat diambil dari kecambah in vitro atau dari bibit di polybag. 2) Tunas dari bibit sebaiknya diambil dari bibit di polibag yang memiliki tinggi sekitar 1 m, karena : a. Lebih mudah penanganan dan pemeliharaan. b. Tunas dapat langsung dipotong dan disterilisasi. 3) Untuk mengurangi kontaminasi jamur waktu eksplan pertama kali dikulturkan, bibit di polibag disemprot dengan fungisida seminggu sebelum sterilisasi eksplan.
b. Biji Biji
merupakan
bagian
tumbuhan
yang
bersifat
rekalsitran
(cepat
kehilangan
daya
tumbuh)
sehingga
disarankan untuk memilih biji yang baru dipanen dari pohon. 2. Sterilisasi Sterilisasi diperlukan untuk mencegah adanya mikroba berupa bakteri dan jamur yang terdapat pada eksplan maupun alat yang digunakan. i. Sterilan Sterilan adalah zat yang mempunyai karakteristik dapat mensterilkan. Sterilan yang biasa digunakan untuk sterilisasi peralatan, yaitu etanol, atau larutan kaporit. Untuk sterilisasi eksplan dapt dilakukan dengan menggunakan alkohol, bahan pemutih pakaian, atau HgCl 2.
ii. Sterilisasi eksplan
3. Perbanyakan (Multiplikasi) Multiplikasi adalah kegiatan memperbanyak calon tanaman dengan menanam eksplan pada media. Kegiatan ini dilakukan di laminar air flow
cabinet
untuk
menghindari
adanya
kontaminasi
yang
menyebabkan gagalnya pertumbuhan eksplan. Tabung reaksi yang telah ditanami eksplan diletakkan pada rak-rak dan diletakkan di
tempat yang steril pada suhu kamar. Proses perbanyakan dalam kultur jaringan tanaman Gaharu terdiri dari 3 macam, yaitu : i. Perbanyakan tunas aksilar ii. Perbanyakan tunas adventif iii. Embriogenesis somatik Hal-hal yang dibutuhkan dalam proses perbanyakan (multiplikasi) yaitu : 1)
Media : sebagai sumber makanan (nutrisi) bagi eksplan untuk
tumbuh dan berkembang. Formulasi media yang banyak dipakai di kultur jaringan gaharu yaitu Murashige and Skoog (MS), diformulasikan tahun 1962. Komposisi media kultur jaringan meliputi:
Unsur hara makro (> mg/L) : N, P, K, Ca, Mg, S
Vitamin : myo-inositol, nicotinic acid, thiamin (B1), Pyridoxin (B6)
Fitohormon :
Unsur hara mikro (< mg/L) : Fe, B, Mo, Zn, Cu, Mn Asam amino : Glycine Sumber karbon : sukrosa a. Auksin
Merangsang pertumbuhan akar dan pembentukan kalus.
Auksin alami, yaitu IAA, diproduksi di ujung tunas dan dialirkan ke tunas lateral dan akar.
Auksin sintetik : NAA, 2,4-D, IBA, picloram, 2,4,5-T.
b. Sitokinin
Merangsang pembentukan tunas adventif.
Sitokinin alami, yaitu zeatin, diproduksi di ujung akar kemudian dialirkan ke tajuk.
Agar-agar
Sitokinin sintetik: BAP, kinetin, thidiazuron.
2)
Kondisi tumbuh
Kondisi tumbuh yang diperlukan pada proses multiplikasi, yaitu :
Suhu : 22-250C
Kelembaban
Cahaya
Aseptik
4. Induksi Akar Induksi akar adalah tahap dimana eksplan menunjukkan adanya pertumbuhan akar, yang menandai bahwa proses kultur jaringan yang dilakukan mulai berjalan baik. Pengamatan dilakukan setiap hari untuk melihat pertumbuhan dan perkembangan akar, serta melihat ada tidaknya kontaminasi jamur/bakteri.
5. Aklimatisasi Aklimatisasi adalah kegiatan memindahkan eksplan keluar dari ruangan aseptik ke bedeng. Pemindahan dilakukan secara hati-hati dan bertahap, yaitu dengan memeberikan sungkup. Sungkup
digunakan untuk melindungi bibit dari udara luar dan serangan hama penyakit, karena bibit hasil kultur jaringan sangat rentan terhadap serangan hama penyakit & udara luar. Setelah bibit mampu beradaptasi dengan lingkungan barunya, maka secara bertahap sungkup dapat dilepas & pemeliharaan bibit dilakukan dengan cara yang sama seperti pada pemeliharaan bibit secara generatif.
3. Metode Praktikum 3.1
Alat : 1.
botol kultur
8.
magnetic stirrer
2.
bunsen
9.
hot plate
3.
Laminar Air Flow Cabinet (LAFC)
10.
labu takar
11.
beker gelas
12.
erlenmeyer
13.
autoklaf
4.
3.2
peralatan diseksi (pinset besar, pinset kecil dan pisau scalpel )
5.
timbangan analitik
14.
pipet ukur
6.
plastik prophopilen (PP) 0,3 mm
15.
aluminium foil
16.
lemari pendingin
7.
hand sprayer 17.
rak kultur
Tunas A.
sukrosa
Malaccensis
akuades
media Murashige and
fungisida
Skoog (MS) yang
desinfektan
Bahan :
diberi tambahan ZPT
3.3
(Clorox/bayclin)
2,4-D dan BAP
sabun cuci
agar
kapas
alkohol 70%
Langkah Kerja :
a) Sterilisasi alat 1. Peralatan meliputi botol kultur, scalpel , dan pinset dicuci dengan menggunakan sabun cuci, dibilas, kemudian dikeringkan. Alat-alat yang sudah kering dibungkus dengan aluminium foil (kecuali botol kultur). 2. Semua alat tersebut disterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121°C dan tekanan 1,5 Psi selama 45 menit. 3. Kemudian, peralatan diletakkan di tempat yang bersih. b) Pembuatan larutan stok 1. Pembuatan larutan stok dilakukan dengan cara menimbang bahanbahan kimia, hara makro, hara mikro, serta ZPT sesuai komposisi media MS. 2. Bahan-bahan tersebut dilarutkan dengan akuades steril lalu diaduk menggunakan magnetic stirrer , lalu dimasukan ke dalam botol dan disimpan dalam lemari pendingin. c) Pembuatan media tanam 1.
larutan stok dilarutkan dengan akuades sampai volume larutan mencapai 250 ml (¼ liter).
2.
Kemudian ditambahkan gula sebanyak 7,5 g.
3.
Larutan dimasukkan dalam beker gelas dan diaduk dengan menggunakan magnetic stirer.
4.
Lalu, Larutan dikondisikan pada pH 6,3 dengan menambahkan NaOH bila pH terlalu rendah dan bila pH terlalu tinggi ditambahkan dengan HCl.
5.
Kemudian, larutan ditambahkan agar-agar sebanyak 2 g.
6.
Larutan tersebut diaduk dan didihkan dengan magnetic stirer dan hot plate. Setelah mendidih, larutan tersebut dituangkan ke botol kultur ± 25 ml setiap botolnya. Botol ditutup dengan aluminium foil.
7.
Media disterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121°C, tekanan 1,5 psi selama 30 menit. Setelah itu, botol-botol ditempatkan pada rakrak kultur
d) Sterilisasi eksplan gaharu 1.
Siapkan tunas pucuk muda tanaman gaharu. Potong menjadi bagian-bagian pendek.
2.
Lalu, rendam tunas tersebut dalam larutan fungisida selama 30 menit. Bilas dengan air.
3.
Kemudian, rendam dalam larutan desinfektan (Clorox/bayclin) selama 20 menit.
4.
Cuci dengan air steril 3-4 kali hingga bersih dari desinfektan.
e) Penanaman eksplan 1. Penanaman eksplan dilakukan pada media inisiasi tunas in vitro di dalam Laminar Air Flow Cabinet (LAFC). 2. Botol ditutup dengan aluminium foil dan melapisinya dengan plastik PP 0,3 mm. f) Pemeliharaan Tunas-tunas yang ditanam dalam media in vitro, di simpan di ruang steril. Botol steril disimpan pada rak kultur yang diberi cahaya lampu TL dengan intensitas cahaya 1000-4000 lux. Lampu TL diatur 16 jam menyala dan 8 jam padam agar sesuai dengan keadaan siang dan malam. Ruangan tempat penyimpanan dijaga suhunya di temperatur 22-250C. Inisiasi in vitro pertama adalah saat tunas berusia 3 minggu dan pemanjangan tunas 3-4 minggu. g) Memindahkan tanaman eksplan (induksi akar) 1. Keluarkan tanaman eksplan yang akan dibersihkan kalusnya dengan menggunakan pinset. 2. Letakkan di sebuah wadah dengan kapas diatasnya. 3. Jepit bagian batang eksplan dengan pinset, kemudian potong bagian kalusnya menggunakan pinset dengan hati-hati. 4. Potong kalus dari keempat sisinya, jangan sampai kalus tersebut terpotong semua. 5. Setelah selesai, bersihkan kalus tersebut dari media dengan menggunakan kapas steril.
6. Pindahkan tanaman eksplan yang telah bersih dengan menggunakan pinset kedalam media agar pada botol yang baru. 7. Untuk menginduksi pembentukan akar digunakan auksin NAA 1.0 mg/l 8. Kemudian, Tutup botol dengan aluminium foil, jaga agar tetap steril. h) Proses aklimatisasi Setelah tanaman menghasilkan akar, perlu adanya proses aklimatisasi (adaptasi), yaitu: 1. Tanaman di botol dicuci dengan air bersih untuk menghilangkan sisa agar dan media yang melekat di akar. 2. Kemudian, Tanaman dipindahkan ke pot yang berisi media kompos, lalu ditutup dengan plastik untuk menjaga kelembaban. 3. Tanaman kemudian diletakkan di dalam rumah kaca. 4. Selama masa aklimatisasi maka dalam perawatannya dapat diberi makan berupa ramuan MS (murashige and Skoog) dengan 1/2 dosis dan di tambah kandungan Kalsium dan kaliumnya menjadi dua kali lipatnya. Proses aklimatisasi bisa berlangsung sekitar 1 - 2 bulan. 5. Lalu, larutan Larutan dikondisikan pada pH ± 5,5 – 5,8 dengan menambahkan NaOH bila pH terlalu rendah dan bila pH terlalu tinggi ditambahkan dengan HCl. 6. Setelah itu, plastik penutup dapat dibuka. i)
Proses Pembesaran Bibit 1. Dimulai dari pemindahan bibit hasil kultur jaringan di dalam bak semai ke dalam pot atau polibag. 2. Kemudian, diletakkan pada nursery yang diberi paranet dan agar bibit hasil kultur jaringan dapat terkena sinar yang memadai baik intensitas maupun durasinya. 3. Sebaiknya masih terlindung dari hujan. Dalam perawatannya boleh mulai pakai pupuk lengkap, tetap di tambah kalsium dan kaliumnya serta dibantu dengan hormon sedikit. 4. Yang harus dijaga adalah jangan sampai bibit tersebut dehidrasi kekurangan air, kondisi iklim dan fluktuasinya jangan sampai terlalu ekstrim. Proses pembesaran bibit dapat berlangsung selama 1 bulan.
3.4
Hasil Kerja dan Pembahasan Dalam pelaksanaan kultur jaringan sangat diperlukan ketelitian dan keterampilan supaya tidak terjadi kontaminasi pada eksplan yang dapat berimbas pada kegagalan seluruh proses pembuatan kultur jaringan. Adapun macam-macam dari kontaminasi antara lain : 1. Tipe-tipe kontaminasi Eksplan atau kultur dapat terkontaminasi oleh berbagai mikroorganisme seperti jamur, bakteri, serangga, atau virus. Organisme-organisme tersebut secara umum terdapat pada jaringan tumbuhan. Banyak yang bersifat non-patogenik (pada kondisi normal), namun pada in vitro yang mengandung sukrosa, zat hara, dan kelembaban tinggi disukai mikroorganisme yang seringkali tumbuh & berkembang sanagt cepat, mengalahkan eksplan. 2. Kontaminasi permukaan Kontaminasi mungkin terjadi pada permukaan tanaman, antar sel ataupun di dalam sel tanaman. Kontaminasi permukaan dapat diatasi dengan pencucian menggunakan berbagai bahan kimia. 3. Kontaminasi endogenus Organisme yang hidup pada jaringan tanaman lebih susah ditangani. Hal ini dapat diminimalisir dengan pemberian pestisida atau fungisida sistemik yang diberikan pada tanaman stok sebelum dijadikan eksplan/ dapat juga diberikan pada kultur itu sendiri. Teknik kultur jaringan akan berhasil dengan baik apabila syarat-syarat yang diperlukan terpenuhi. Syarat-syarat tersebut meliputi pemilihan eksplan sebagai bahan dasar pembentukan kalus, penggunaan media yang cocok, dan keadaan yang aseptik. Kelebihan bibit hasil kultur jaringan yaitu :
Kontinuitas ketersediaan bibit dalam jumlah besar akan terjaga sepanjang waktu.
Bibit yang sama memiliki sifat yang sama dengan induknya. Bibit yang dihasilkan bebas dari penyakit dan virus. Lebih cepat tumbuh.
DAFTAR PUSTAKA
http://www.blogku-agroteknologi.com/2013/kultur-jaringan/ http://www.eshaflora.blogspot.com/2012/05/budidaya-gaharu-super-intensif/ http://www.rintise.blogspot.com/2011/09/variasi-kultur-jaringan/ http://www.gaharublog.files.wordpress.com/kultur-jaringan-gaharu/ http://www.luqmanmaniabgt.blogspot.com/kuljar-gaharu/ http://www.pasaiagarwood.blogspot.com/teknik-kuljar-gaharu/ Irnaningtyas. 2013. Biologi kelas XI. Jakarta : penerbit Erlangga
