BAB I PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Pemakaian herbal sebagai obat-obatan tradisional telah diterima luas di negara-negara maju maupun berkembang sejak dahulu kala, bahkan dalam 20 tahun terakhir perhatian dunia terhadap obat-obatan tradisional meningkat, baik di negara yang sedang berkembang maupun negara-negara maju. World Health Organization (WHO) atau Badan Kesehatan Dunia menyebutkan bahwa hingga Organization 65% dari penduduk negara maju menggunakan pengobatan tradisional dan obat – obat dari bahan alami. Indonesia
merupakan
keanekaragamannya,
salah
negara satunya
besar adalah
yang
terkenal
karena
keanekaragaman
hayati
(megabiodiversity megabiodiversity)) khususnya tumbuhan. Selain itu Indonesia juga memiliki keanekaragaman etnis yang memiliki berbagai macam pengetahuan tentang obat tradisional yang menggunakan bahan-bahan dari tumbuhan. Banyak dari jenis tumbuhan itu telahribuan tahun digunakan oleh nenek moyang bangsa Indonesia dan dokter sebagai bahan obat atau jamu tradisional untuk berbagai macam penyakit dan memberikan hasil yang baik bagi pemeliharaan kesehatan serta pengobatan. Di bumi ini diperkirakan terdapat 40.000 spesies tumbuhan. Dari jumlah tersebut sekitar 30.000 spesies hidup di kepulauan Indonesia dan sekurang-kurangnya 9.600 spesies diketahui berkhasiat obat, tetapi baru 300 spesies yang telah dimanfaatkan sebagai bahan baku obat tradisional dan industri obat tradisional. Tanaman Kelor (Moringa oleifera) merupakan salah satu jenis tanaman tropis yang mudah tumbuh di daerah tropis seperti Indonesia. Tanaman kelor merupakan tanaman perdu dengan ketinggian 7-11 meter dan tumbuh subur mulai dari dataran rendah sampai ketinggian 700 m di atas permukaan laut. Kelor dapat tumbuh pada daerah tropis dan subtropis pada semua jenis tanah dan tahan terhadap musim kering dengan toleransi terhadap kekeringan sampai 6 bulan. Kelor dikenal di seluruh dunia sebagai tanaman bergizi dan WHO telah memperkenalkan kelor sebagai salah satu pangan alternatif untuk mengatasi
1
masalah gizi (malnutrisi). Di Afrika dan Asia daun kelor direkomendasikan sebagai suplemen yang kaya zat gizi untuk ibu menyusui dan anak pada masa pertumbuhan. Semua bagian dari tanaman kelor memiliki nilai gizi, berkhasiat untuk kesehatan dan manfaat dibidang industri. Kandungan nilai gizi yang tinggi, khasiat dan manfaatnya menyebabkan kelor mendapat juluka n
sebagai Mother’s
Best sendiri pemanfaatan kelor masih belum banyak diketahui, umumnya hanya dikenal sebagai salah satu menu sayuran. ebaban kelor memiliki sifat farmakologis. Selain itu, telah diidentifikasi bahwa daun kelor mengandung antioksidan tinggi dan antimikrobia. Hal ini menyebabkan kelor dapat berfungsi sebagai pengawet alami dan memperpanjang masa simpan olahan berbahan baku daging yang disimpan pada suhu 4 0C tanpa terjadi perubahan warna selama penyimpanan. Kandungan nutrisi mikro sebanyak 7 kali vitamin C jeruk, 4 kali vitamin A wortel, 4 gelas kalsium susu, 3 kali potassium pisang, dan protein dalam 2 yoghurt. Oleh karena itu kelor berpotensi sebagai minuman probiotik untuk minuman kesehatan, atau ditambahkan dalam pangan sebagai fortifikan untuk memperkaya gizinya. Selain daun dan buah, biji kelor juga dapat diolah menjadi tepung atau minyak sebagai bahan baku pembuatan obat dan kosmetik yang bernilai bernilai tinggi. Disamping itu fungsinya sebagai koagulans dan penjernihan air permukaan (air kolam, air sungai, air danau sampai ke air sungai). sungai). Tanaman moringa (Moringa oleifera) oleifera) telah menjadi objek dari banyak penelitian karena
penggunaan multipel
dan terkenal
berpotensi
sebagai
antibakterisida. Berbagai peneliti melaporkan aktivitas antimikroba dari Moringa oleifera terhadap berbagai variasi Patogen termasuk S. aureus, S. albus, S. pyogenes P. Aeruginosa, Salmonella gallinarum, B.subtilis dan E. coli. Ekstrak biji yang hancur dari Moringa oleifera oleif era telah terjadi dilaporkan memiliki memili ki aktivitas anti-bakterisida melawan S. Pyogenes dan P. aeruginosa. Ekstrak aseton dari moringa oleifera melawan Salmonella typhi dengan penghambatan Zona 16 mm. Dalam penelitian ini ekstrak kloroform hanya menghambat E. coli. Tujuan penelitian ini adalah : studi fitokimia spesies penting obat M. Oleifera, isolasi, pemurnian dan karakterisasi isoflavon dari daun sebagai pengobatan penting spesies M. Oleifera, skrining ekstrak etanol dan isoflavon terisolasi untuk aktivitas antibakteri mereka.
2
masalah gizi (malnutrisi). Di Afrika dan Asia daun kelor direkomendasikan sebagai suplemen yang kaya zat gizi untuk ibu menyusui dan anak pada masa pertumbuhan. Semua bagian dari tanaman kelor memiliki nilai gizi, berkhasiat untuk kesehatan dan manfaat dibidang industri. Kandungan nilai gizi yang tinggi, khasiat dan manfaatnya menyebabkan kelor mendapat juluka n
sebagai Mother’s
Best sendiri pemanfaatan kelor masih belum banyak diketahui, umumnya hanya dikenal sebagai salah satu menu sayuran. ebaban kelor memiliki sifat farmakologis. Selain itu, telah diidentifikasi bahwa daun kelor mengandung antioksidan tinggi dan antimikrobia. Hal ini menyebabkan kelor dapat berfungsi sebagai pengawet alami dan memperpanjang masa simpan olahan berbahan baku daging yang disimpan pada suhu 4 0C tanpa terjadi perubahan warna selama penyimpanan. Kandungan nutrisi mikro sebanyak 7 kali vitamin C jeruk, 4 kali vitamin A wortel, 4 gelas kalsium susu, 3 kali potassium pisang, dan protein dalam 2 yoghurt. Oleh karena itu kelor berpotensi sebagai minuman probiotik untuk minuman kesehatan, atau ditambahkan dalam pangan sebagai fortifikan untuk memperkaya gizinya. Selain daun dan buah, biji kelor juga dapat diolah menjadi tepung atau minyak sebagai bahan baku pembuatan obat dan kosmetik yang bernilai bernilai tinggi. Disamping itu fungsinya sebagai koagulans dan penjernihan air permukaan (air kolam, air sungai, air danau sampai ke air sungai). sungai). Tanaman moringa (Moringa oleifera) oleifera) telah menjadi objek dari banyak penelitian karena
penggunaan multipel
dan terkenal
berpotensi
sebagai
antibakterisida. Berbagai peneliti melaporkan aktivitas antimikroba dari Moringa oleifera terhadap berbagai variasi Patogen termasuk S. aureus, S. albus, S. pyogenes P. Aeruginosa, Salmonella gallinarum, B.subtilis dan E. coli. Ekstrak biji yang hancur dari Moringa oleifera oleif era telah terjadi dilaporkan memiliki memili ki aktivitas anti-bakterisida melawan S. Pyogenes dan P. aeruginosa. Ekstrak aseton dari moringa oleifera melawan Salmonella typhi dengan penghambatan Zona 16 mm. Dalam penelitian ini ekstrak kloroform hanya menghambat E. coli. Tujuan penelitian ini adalah : studi fitokimia spesies penting obat M. Oleifera, isolasi, pemurnian dan karakterisasi isoflavon dari daun sebagai pengobatan penting spesies M. Oleifera, skrining ekstrak etanol dan isoflavon terisolasi untuk aktivitas antibakteri mereka.
2
1.2 Perumusan Masalah
Berdasarkan uraian diatas, maka perumusan masalah dari penelitian ini adalah : 1.2.1 Apakah di dalam tanaman kelor terdapat kandungan senyawa isoflavon? 1.2.2 Bagaimana cara identifikasi senyawa isoflavonoid di dalam tanaman kelor? 1.3 Tujuan Penelitian
Berdasarkan uraian diatas, maka tujuan dari penelitian ini adalah : 1.3.1 Tujuan Umum
Mengidentifikasi kandungan isoflavon dalam jamu tanaman kelor. 1.3.2 Tujuan Khusus
a. Untuk mengetahui kandungan yang terdapat dalam t anaman kelor. b. Untuk mengetahui cara identifikasi kandungan senyawa dalam tanaman kelor. 1.4 Manfaat Penelitian
Manfaat yang dapat diambil dari penelitian ini adalah : 1.4.1 Diharapkan penelitian ini dapat menambah khasanah ilmu pengetahuan dan mengaplikasikan ilmu yang diperoleh mahasiswa selama kuliah dengan realita lapangan.
3
BAB II TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Tanaman Kelor
Moringa oleifera atau di Indonesia dikenal dengan nama kelor telah sejak dulu digunakan sebagai obat tradisional, baik dalam bentuk segar maupun dalam bentuk ramuan berupa jamu. Kelor (Moringa oleifera Lam.) merupakan tanaman perdu yang tinggi pohonnya dapat mencapai 10 meter, tumbuh subur mulai dari dataran rendah sampai ketinggian 1000 meter di atas permukaan laut. Juga dapat tumbuh dengan baik pada berbagai jenis tanah kecuali tanah berlempung berat dan menyukai pH tanah netral sampai sedikit asam. Daun kelor di Indonesia dikonsumsi sebagai sayuran dengan rasa yang khas, yang memiliki rasa langu dan juga
digunakan
untuk
pakan
ternak
karena
dapat
meningkatkan
perkembangbiakan ternak khususnya unggas. Selain dikonsumsi daun kelor juga dijadikan obat-obatan dan penjernih air 2.1.1
Klasifikasi Tanaman Kelor
Gambar 1. Tanaman Kelor
Kingdom
: Plantae (tanaman)
Sub kingdom : Tracheobionta (tanaman berpembuluh) Superdivisi
: Spermatophyta (menghasilkan biji)
Divisi
: Magnoliophyta (tanaman berbunga)
Kelas
: Magnoliopsida (berkeping dua/dikotil)
Subkelas
: Dilleniidae
Ordo
: Capparales 4
2.1.2
Famili
: Moringaceae
Genus
: Moringa
Spesies
: Moringa oleifera
Morfologi Tumbuhan
Tanaman ini berupa semak atau pohon dan mempunyai umur panjang (perenial). Batangnya berkayu, tegak, berwarna putih kotor, berkulit tipis dengan permukaan kasar dan mudah patah. Hal ini dikarenakan jenis kayunya lunak dan memiliki kualitas rendah. Daunnya tipis, bersirip tidak sempurna, berbentuk kecil dan menyerupai telur, serta hanya sebesar ujung jari. Buahnya berbentuk panjang sekitar 20
– 60 cm, ketika masih muda berwarna hijau, namun setelah tua
warnanya berubah menjadi cokelat, biji berbentuk bulat berwarna cokelat kehitaman dengan sayap biji ringan, sedangkan kulit biji mudah dipisahkan sehingga meninggalkan biji yang berwarna putih. 2.1.3
Daerah Tumbuh dan Penyebaran
Tanaman kelor, menurut sejarahnya berasal dari kawasan sekitar Himalaya dan India, kemudian menyebar ke kawasan disekitarnya hingga ke benua Afrika dan Asia Barat. Di beberapa negara di benua Afrika seperti Ethiopia, Sudan, Madagaskar, Somalia, Kenya dijadikan negara program pemulihan tanah yag kering dan gersang dengan ditanami kelor karena tanaman kelor mudah tumbuh pada tanah kering dan gersang. Di daerah pedesaan, tanaman kelor sering ditemukan sebagai tanaman pagar hidup, pembatas tanah atau penjalar tanaman lain. Penanaman kelor yang paling umum dilakukan adalah dengan cara stek batang tua atau cukup tua. Caranya dengan langsung ditancapkan ke dalam tanah. Persemaian biji kelor yang tua dapat juga dijadikan bibit tanaman, namun jarang digunakan. Kelor (Moringa oleifera) tumbuh di dataran rendah maupun dataran tinggi sampai di ketinggian ± 1000 dpl dengan kisaran suhu 25°C sampai 48°C. Kelor banyak ditanam sebagai tapal batas atau pagar di halaman rumah atau ladang. Daun kelor dapat dipanen setelah tanaman tumbuh 1,5 hingga 2 meter yang biasanya memakan waktu 3 sampai 6 bulan. Namun dalam budidaya intensif yang bertujuan untuk produksi daunnya, kelor dipelihara dengan ketinggian tidak lebih
5
dari 1 meter. Pemanenan dilakukan dengan cara memetik batang daun dari cabang atau dengan memotong cabangnya dengan jarak 20 sampai 40 cm di atas tanah Secara umum, parameter lingkungan yang dibutuhkan tanaman kelor untuk tumbuh dengan baik adalah sebagai berikut:
• Iklim
: Tropis atau subtropis
• Ketinggian : 0-2000 meter dpl • Suhu
: 25-35°C
• Curah hujan : 250 mm-2000 mm per tahun
2.1.4
• Tipe tanah
: Berpasir atau lempung berpasir
• pH tanah
: 5-9
Nama Lain Kelor
Kelor dikenal dengan nama
– nama daerah lain, diantaranya adalah
sebagai berikut :
Sunda dan Melayu
: Kelor
Sulawesi
: Kero, wori, kelo, atau keloro
Madura
: Maronggih
Aceh
: Murong
Ternate
: Kelo
Sumbawa
: Kawona
Minang
: Munggai
Kelor juga dikenal di banyak negara dengan nama yang berbeda – beda, berikut ini nama – nama kelor di berbagai negara yaitu :
Benin
: Kpashima
Burkina Faso
: La-Banyu
Cameroon
: Paizlava
Chad
: Kag n’dongue
Etiophia
: Shelagda
India
: Sajna
Myanmar
: Dandalonbin
Laos
: B’Loum
Malaysia
: Kelur 6
2.1.5
Brazil
: Cedra
Inggris
: Drumstick tree
Spanyol
: Moringa
Manfaat Tanaman Kelor
Kelor tidak hanya kaya akan nutrisi akan tetapi juga memiliki sifat fungsional karena tanaman ini mempunyai khasiat dan manfaat buat kesehatan manusia. Baik kandungan nutrisi maupun berbagai zat aktif yang terkandung dalam tanaman ini dapat dimanfaatkan untuk kepentingan mahluk hidup dan lingkungan. Oleh karena itu kelor mendapat
julukan sebagai “miracle tree”.
Disamping itu, kelor sangat berpotensi digunakan dalam pangan, kosmetik dan industri. Di beberapa wilayah di Indonesia, utamanya Indonesia bagian timur kelor dikonsumsi sebagai salah satu menu sayuran. Di Filipina, daun kelor sangat terkenal dikonsumsi sebagai sayuran dan dapat berfungsi meningkatkan jumlah ASI (Air Susu Ibu) pada ibu menyusui sehingga mendapat julukan Moth er’s Best Friend. Hal ini disebabkan karena daun kelor mengandung unsur zat gizi mikro yang sangat dibutuhkan oleh ibu hamil, seperti beta karoten, thiamin (B1), Riboflavin (B2), Niacin (B3), kalsium, zat besi, fosfor, magnesium, seng, vitamin C, sebagai alternatif untuk meningkatkan status gizi ibu hamil. Sebagai pangan fungsional, bagian daun, kulit batang, biji hingga akar dari tanaman kelor tidak hanya sebagai sumber nutrisi tetapi juga berfungsi sebagai herbal buat kesehatan yang sangat berkhasiat. Saat ini penelitian dan uji klinis tentang fungsi kelor sebagai obat mulai berkembang meskipun manfaat dan khasiatnya belum banyak diketahui oleh masyarakat. Penemuan terbaru adalah fungsi daun kelor sebagai farmakologis, yaitu antimikroba, antijamur, antihipertensi, antihyperglikemik, antitumor, antikanker, anti-inplamasi. Hal ini karena adanya kandungan diantaranya asam askorbat, flavonoid, phenolic dan karotenoid. Selain itu hasil penelitian telah menunjukkan bahwa ekstrak daun kelor dapat berfungsi sebagai antidiare (antidiarraheal activity) dengan dosis oral 300 mg/kg berat badan.
7
2.1.6
Pasca Panen Kelor
Pasca panen kelor meliputi penanganan segar, pengolahan untuk bahan baku antara (seperti daun kelor kering atau tepung daun kelor), pengolahan untuk kebutuhan farmasi (seperti moringa capsul, moringa tablets, moringa tea), pengolahan untuk kosmetik (seperti moringa oil, moringa soap, moringa face wash, moringa cream) dan pengolahan kelor menjadi berbagai bentuk olahan siap saji (pudding kelor, cake, biskuit, crackers, jus, minuman prebiotik). Terdapat tiga cara yang dapat dilakukan untuk mengeringkan daun kelor yaitu: 1) pengeringan di dalam ruangan, 2) pengeringan dengan cahaya matahari, dan 3) menggunakan mesin pengering. Daun yang sudah kering dan dapat dijadikan tepung dicirikan dengan daunnya rapuh dan mudah dihancurkan. Daun yang sudah kering dibubukkan menggunakan mortar ataupun penggilingan. Tepung daun kelor sebaiknya disimpan dalam wadah kedap udara dan terhindar dari
panas,
kelembaban,
dan
cahaya
untuk
menghindari
pertumbuhan
mikroogranisme dan masalah lain yang berbahaya. Tepung yang disimpan dalam keadaan bersih, kering, kedap udara, terlindung dari cahaya dan kelembaban serta suhu di bahwa 24 0C dapat bertahan hingga 6 bulan. Satu-satunya kelemahan dari daun kelor adalah adanya faktor flatulensi yang dapat menyebabkan perut kembung. Hal ini disebabkan oleh adanya kandungan rafinosa, sukrosa, dan stakiosa. Untuk mengurangi sifat flatulensi yaitu melalui proses fermentasi, diantaranya dengan Lactobacillus plantarum. Salah satu produk minuman yang terbuat daun kelor melalui proses fermentasi L. plantarum dan E. hirae dapat mengurangi flatulensi yang disebabkan oelh kandungan rafinosa. Melalui proses fermentasi dapat memperpanjang masa simpan minuman selama 30 hari pada penyimpanan suhu 4 0C. Selain itu dilaporkan bahwa daun kelor secara signifikan dapat memperpanjang masa simpan butter dan ekstrak daun kelor dapat mencegah terjadinya ketengikan pada roti daging kambing akibat reaksi oksidasi.
8
2.1.7 Kandungan dan Manfaat Tanaman Kelor 2.1.7.1 Bunga Kelor Kelor merupakan tanaman yang berumur panjang dan berbunga sepanjang tahun. Bunga kelor ada yang berwarna putih, putih kekuning kuningan (krem) atau merah, tergantung jenis atau spesiesnya. Tudung pelepah bunganya berwarna hijau dan mengeluarkan aroma bau semerbak. Umumnya di Indonesia bunga kelor berwarna putih kekuning-kuningan. Kandungan kimia bunga kelor disajikan sebgai berikut: KOMPONEN
NILAI (g/100g)
Kadar air (%)
93,02
Protein (%)
24,5
Serat (%)
5,07
Lemak (%)
6,01
Karbohidrat (%)
58,08
Mineral (%)
6,21
Tabel 1. Kandungan kimia bunga kelor
2.1.7.2 Daun Kelor Daun kelor berbentuk bulat telur dengan tepi daun rata dan ukurannya kecilkecil bersusun majemuk dalam satu tangkai. Daun kelor muda berwarna hijau muda dan berubah menjadi hijau tua pada daun yang sudah tua. Daun muda teksturnya lembut dan lemas sedangkan daun tua agak kaku dan keras. Daun berwarna hijau tua biasanya digunakan untuk membuat tepung atau powder daun kelor. Apabila jarang dikonsumsi maka daun kelor memiliki rasa agak pahit tetapi tidak beracun. Rasa pahit akan hilang jika kelor sering dipanen secara berkala untuk dikonsumsi. Untuk kebutuhan konsumsi umumnya digunakan daun yang masih muda demikian pula buahnya. Daun kelor merupakan salah s atu bagian dari tanaman kelor yang telah banyak diteliti kandungan gizi dan kegunaannya. Daun kelor sangat kaya akan nutrisi, diantaranya kalsium, besi, protein, vitamin A, vitamin B dan vitamin C. Daun kelor mengandung zat besi lebih tinggi daripada sayuran lainnya yaitu sebesar 17,2 mg/100 g. Selain itu, daun kelor juga
9
mengandung berbagai macam asam amino, antara lain asam amino yang berbentuk asam aspartat, asam glutamat, alanin, valin, leusin, isoleusin, histidin, lisin, arginin, venilalanin, triftopan, sistein dan methionin. Berdasarkan penelitian bahwa daun kelor mengandung fenol dalam jumlah yang banyak yang dikenal sebagai penangkal senyawa radikal bebas. Kandungan fenol dalam daun kelor segar sebesar 3,4% sedangkan pada daun kelor yang telah diekstrak sebesar 1,6%. Penelitian lain menyatakan bahwa menunjukkan bahwa daun kelor mengandung vitamin C setara vitamin C dalam 7 jeruk, vitamin A setara vitamin A pada 4 wortel, kalsium setara dengan kalsium dalam 4 gelas susu, potassium setara dengan yang terkandung dalam 3 pisang, dan protein setara dengan protein dalam 2 yoghurt. Selain itu, telah diidentifikasi bahwa daun kelor mengandung antioksidan tinggi dan antimikrobia. Hal ini disebabkan oleh adanya kandungan asam askorbat, flavonoid, phenolic, dan karotenoid. Selain untuk kebutuhan konsumsi, pengobatan alternatif, daun kelor juga dapat berfungsi sebagai bahan pengawet alami. Hasil penelitian menunjukkan bahwa ekstrak daun kelor atau yang dikenal dengan istilah Moringa Leaf Extract (MLE) dapat mempertahankan warna daging segar dalam kemasaan MAP selama 12 hari penyimpanan pada suhu dingin. Hal ini disebabkan oleh karena daun kelor sebagai sumber senyawa phenolik yang baik yang mampu mencegah terjadinya oksidasi lemak pada daging segar selama penyimpanan. 2.1.7.3 Buah/biji Kelor Buah kelor berbentuk panjang dan segitiga dengan panjang sekitar 20-60 cm, berwana hijau ketika masih muda dan berubah menjadi coklat ketika tua. Biji kelor berbentuk bulat, ketika muda berwarna hijau terang dan berubah berwarna cokelat kehitaman ketika polong matang dan kering dengan rata-rata berat biji berkisar 18 - 36 gram/100 biji. Buah kelor akan menghasilkan biji yang dapat dibuat tepung atau minyak sebagai bahan baku pembuatan obat dan kosmetik bernilai tinggi. Selain itu biji kelor dapat berfungsi sebagai koagulans dan penjernihan air permukaan (air kolam, air sungai, air danau sampai ke air sungai). Penelitian tentang ini sudah diawali sejak tahun 1980- an oleh Jurusan Teknik Lingkungan ITB. Kemampuan memperbaiki kualitas air disebabkan oleh kandungan protein yang cukup tinggi pada biji sehingga mampu berperan sebagai
10
koagulan terhadap partikelpartikel penyebab kekeruhan air. Konsentrasi protein dari bi ji kelor (biji dalam kotiledon) sebesar 147.280 ppm/gram. Kandungan kimia buah dan biji kelor disajikan pada Tabel 2.
Komponen
Buah
Biji
Kadar air (%)
90.86
3.11
Protein (g)
12.36
32.19
Lemak (g)
0.98
32.40
Serat (g)
22.57
15.87
Mineral (g)
13.40
5.58
Kalori (Kcal/100g)
50.73
15.96
Tabel 2. Kandungan nutrisi buah dan biji kelor per 100g bahan (bk)
Selain bagian daun, biji kelor juga dapat dimanfaatkan sebagai sayuran. Selain dimanfaatkan sebagai bahan pangan, biji kelor juga dapat diekstrak sebagai minyak nabati. Minyak dari biji kelor terdiri dari 82% asam lemak ini sama dengan seperti minyak zaitun kecuali untuk asam linoleate. Saat ini belum banyak dimanfaatkan minyak hasil ekstraksi dari biji kelor baik dalam industri pengolahan dan belum banyak diperjual belikan di kalangan industri ekstraksi minyak nabati. Akan tetapi sangat berpotensi tidak hanya dalam bahan pangan, tetapi juga untuk kosmetik kebutuhan industri lainnya. 2.2
Flavonoid
2.2.1
Pengertian dan Kerangka Dasar Flavonoid
Senyawa flavonoid adalah senyawa polifenol yang mempunyai 15 atom karbon yang tersusun dalam konfigurasi C6 -C3 -C6 , yaitu dua cincin aromatik yang dihubungkan oleh 3 atom karbon yang dapat atau tidak dapat membentuk cincin ketiga. Flavonoid terdapat dalam semua tumbuhan hijau sehingga dapat ditemukan pada setiap ekstrak tumbuhan. Golongan flavonoid dapat digambarkan sebagai deretan senyawa C6 -C3 -C6, artinya kerangka karbonnya terdiri atas dua gugus C6 (cincin benzena tersubstitusi) disambungkan oleh rantai alifatik tiga karbon.
11
Kelas-kelas yang berlainan dalam golongan ini dibedakan berdasarkan cincin hetero siklik-oksigen tambahan dan gugus hidroksil yang tersebar menurut pola yang berlainan. Flavonoid sering terdapat sebagai glikosida. Golongan terbesar flavonoid berciri mempunyai cincin piran yang menghubungkan rantai tiga karbon dengan salah satu dari cincin benzena. Sistem penomoran flavonoid dapat dilihat pada gambar dibawah.
Gambar 2. Penomoran Flavonoid
2.2.2
Penyebaran flavonoid
Flavonoid merupakan kandungan khas tumbuhan hijau dengan mengecualikan alga. Flavonoid sebenarnya terdapat pada semua bagian tumbuhan termasuk daun, akar, kayu, kulit, tepung sari, nectar, bunga, buah, dan biji. Penyebaran jenis flavonoid pada golongan tumbuhan yang terbesar, yaitu angiospermae. Segi penting dari penyebaran flavonoid dalam tumbuhan ialah adanya kecenderungan kuat bahwa tetumbuhan yang secara taksonomi berkaitan akan menghasilkan flavonoid yang jenisnya serupa. Jadi, informasi yang berguna tentang jenis flavonoid yang mungkin ditemukan pada tumbuhan yang sedang ditelaah sering kali dapat diperoleh dengan melihat pustaka mengenai telaah flavonoid terdahulu dalam tumbuhan yang berkaitan, misalnya dari marga atau suku yang sama. Pada tumbuhan tinggi, flavonoid terdapat baik dalam bagian vegetatif maupun dalam bunga. Sebagai pigmen bunga flavonoid berperan jelas dalam menarik burung dan serangga penyerbuk bunga. Beberapa flavonoid tak berwarna, tetapi flavonoid yang menyerap sinar UV barangkali penting juga dalam mengarahkan serangga. Beberapa kemungkinan fungsi flavonoid untuk tumbuhan yang mengandungnya adalah pengaturan tumbuh, pengaturan fotosintesis, kerja
12
antimikroba dan antivirus, dan kerja terhadap serangga. Sifat berbagai golongan flavonoid dapat dilihat pada tabel 3.
Tabel 3. Sifat berbagai golongan flavonoid
2.2.3
Penggolongan flavonoid Penggolongan jenis flavonoid dalam jaringan tumbuhan mula-mula
didasarkan kepada telaah sifat kelarutan dan reaksi warna. Kemudian diikuti dengan
pemeriksaan
ekstrak
tumbuhan
yang
telah
dihidrolisis,
secara
kromatografi satu arah, dan pemeriksaan ekstrak etanol secar a dua arah. Akhirnya, flavonoid dapat dipisahkan dengan cara kromatografi. Komponen masing-masing diidentifikasi dengan membandingkan kromatografi dan spektrum, dengan memakai senyawapembanding yang sudah dikenal. Senyawa baru yang sudah ditemukan sewaktu menelaah memerlukan pemeriksaan kimia dan spektrum yang lebih terinci. Struktur berbagai tipe atau golongan flavonoid bervariasi sesuai dengan kerangka dasar heterosiklik beroksigen yang dapat berupa gama piron, piran atau pirilium. Kecuali pada auron dan khalkon, siklisasi terjadi antara atom karbon didekat cincin benzen (B) dan satu gugus hidroksil cincin A. Kelas-kelas yang
13
berlainan di flavonoid dibedakan berdasarkan cincin heterosiklik oksigen dan juga hidroksil yang tersebar menurut pola yang berlainan. Perbedaan di bagian rantai karbon nomor 3 menentukan klasifikasi dari senyawa flavonoid yaitu flavon, flavonol, flavanon, flavanonol, isoflavon, auron dan khalkon. Kerangka flavonoid cincin benzoil dan cinnamoil dapat dilihat pada gambar 3. Kerangka dari tipe-tipe flavonoid dapat dilihat pada gambar 5.
Gambar 3. Kerangka flavonoid cincin benzoil dan cinnamoll
Gambar 5. Kerangka dari tipe – tipe flavonoid
14
2.2.4 Ekstraksi dan isolasi senyawa flavonoid Aglikon flavonoid adalah polifenol dan karena itu mempunyai sifat kimia senyawa fenol, yaitu bersifat agak asam sehingga dapat larut dalam basa. Karena mempunyai sejumlah gugus hidroksil yang tak tersulih, atau suatu gula, flavonoid merupakan senyawa polar dan seperti kata pepatah lama suatu golongan akan melarutkan golongannya sendiri, maka umumnya flavonoid larut cukupan dalam 11 pelarut polar seperti etanol (EtOH), metanol (MeOH), butanol (BuOH), aseton, dimetilsulfoksida (DMSO), dimetilformamida (DMF), air, dan lain-lain. Sebaliknya, aglikon yang kurang polar seperti isoflavon, flavanon, dan flavon serta flavonol yang termetoksilasi cenderung lebih mudah larut dalam pelarut seperti eter dan kloroform. Idealnya, untuk analisis fitokimia, harus digunakan jaringan tumbuhan segar.
Beberapa
menit
setelah
dikumpulkan,
bahan
tumbuhan
harus
dicemplungkan ke dalam alkohol mendidih. Kadang-kadang tumbuhan yang ditelaah tidak tersedia dan bahan mungkin harus disediakan oleh seorang pengumpul yang tinggal di benua lain. Dalam hal demikian, jaringan yang diambil segar harus disimpan kering di dalam kantung plastik, dan biasanya akan tetap dalam keadaan baik untuk dianalisis setelah beberapa hari dalam perjalanan dengan pos udara. Pada prosedur ekstraksi terdapat jalan pintas yang dapat dipelajari dari pengalaman. Misalnya, bila mengisolasi kandungan dari jaringan daun, yang larut dalam air, seharusnya lipid dihilangkan pada tahap dini sebelum pemekatan, yaitu dengan mencuci ekstrak berulang-ulang dengan eter minyak bumi. Kenyataannya, bila ekstrak etanol diuapkan dengan penguap putar, hampir semua klorofil dan lipid melekat pada dinding labu. Dengan keterampilan, pemekatan dapat dilakukan tepat sampai suatu saat tertentu sehingga larutan air yang pekat dapat dipipet hampir tanpa mengandung cemaran lemak. 2.2.5 Karakteristik dan identifikasi senyawa flavonoid Karakteristik flavonoid dapat didasarkan atas reaksi warna dan kelarutannya. Jika tidak ada pigmen yang mengganggu, flavonoid dapat dideteksi dengan uap amonia dan memberikan warna spesifik untuk masing-masing golongan. Reaksi warna flavonoid dapat dilihat pada tabel 3. Penafsiran bercak dari segi struktur flavonoid dapat dilihat pada tabel 4.
15
Tabel 3. Reaksi warna flavonoid
16
Tabel 4. Penafsiran bercak dari segi struktur flavonoid
2.2.6 Metode Penyarian Penyarian merupakan peristiwa perpindahan massa zat aktif yang semula berada dalam sel, ditarik oleh cairan penyari sehingga zat aktif larut dalam cairan penyari. Pada umumnya penyarian akan bertambah baik apabila permukaan serbuk simplisia yang bersentuhan dengan penyari semakin luas. Cara penyarian dapat dibedakan menjadi infundasi, soxhletasi, maserasi dan perkolasi. a.
Infundasi
Infusa adalah sediaan cair yang dibuat dengan menyari simplisia dengan air pada suhu 90 0 C selama 15 menit. Infundasi adalah proses penyarian yang umumnya digunakan untuk menyari zat kandungan aktif yang larut
17
dalam air dari bahan-bahan nabati. Penyarian dengan cara ini menghasilkan sari yang tidak stabil dan mudah tercemar oleh kuman dan kapang. Oleh sebab itu sari yang diperoleh dengan cara ini tidak boleh disimpan lebih dari 24 jam. b. Soxhletasi Cairan penyari diisikan pada labu, serbuk simplisia diisikan pada tabung dan kertas saring atau tabung yang berlubang-lubang dari gelas, baja tahan karat, atau bahan lain yang cocok. Cairan penyari dipanaskan hingga mendidih. Uap cairan penyari naik ke atas melalui pipa samping, kemudian diembunkan kembali oleh pendingin tegak. Cairan turun ke labu melalui tabung yang berisi serbuk simplisia cairan penyari sambil turun melarutkan zat aktif serbuk simplisia karena adanyasifon maka setelah cairan mencapai permukaan sifon, seluruh cairan akan kembali ke labu. c. Maserasi Maserasi adalah cara ekstraksi yang sederhana. Maserasi dilakukan dengan cara merendam serbuk simplisia dalam cairan penyari. Cairan penyari akan menembus dinding sel dan masuk ke dalam rongga sel yang mengandung zat aktif, zat aktif akan larut dan karena adanya perbedaan konsentrasi antara larutan zat aktif di dalam sel dengan yang di luar sel, maka larutan yang terpekat didesak 17 keluar. Peristiwa tersebut berulang sehingga terjadi keseimbangan konsentrasi antara larutan di luar sel dan di dalam sel. Maserasi pada umumnya dilakukan dengan cara: sepuluh bagian simplisia dengan derajat halus yang cocok dimasukkan ke dalam bejana, kemudian dituangi dengan 75 bagian cairan penyari, ditutup dan dibiarkan selama 5 hari terlindung dari cahaya, sambil berulang-ulang diaduk. Selama 5 hari serbuk diserkai, ampas diperas. Ampas ditambah cairan penyari secukupnya diaduk dan diserkai, sehingga diperoleh seluruh sari sebanyak 100 bagian. d. Perkolasi Perkolasi adalah cara penyarian yang dilakukan dengan mengalirkan cairan penyari melalui serbuk simplisia yang telah dibasahi. Kekuatan
18
yang berperan dalam perkolasi antara lain gaya berat, daya larut, tegangan permukaan, difusi, osmosa, adesi, daya kapiler dan gaya gesekan. Perkolasi dilakukan dalam wadah berbentuk silindris atau kerucut (perkolator) yang memiliki jalan masuk dan keluar yang sesuai. Bahan pengekstraksi dialirkan secara berkesinambungan diatas, mengalir turun secara lambat melintasi simplisia yang umumnya berupa serbuk kasar. Melalui penyegaran bahan pelarut secara berkesinambungan akan terjadi proses maserasi berulang-ulang. Jika pada maserasi sederhana, terjadi ekstraksi
yang
sempurna
dari
simplisia,
karena
akan
terjadi
keseimbangan konsentrasi antara larutan dalam sel dengan cairan disekelilingnya. Pada perkolasi melalui suplai bahan pelarut segar, perbedaan konsentrasi tidak selalu dipertahankan, sehingga terjadi ekstraksi yang sempurna. 2.3
Metode Identifikasi
Metode identifikasi yang digunakan adalah kromatografi lapis tipis (KLT), spektrofotometer infra merah (IR), Spektrometri Nuclear Magnetic Resonansce (NMR). 2.3.1
Kromatografi lapis tipis (KLT)
Kromatografi lapis tipis (KLT) digunakan untuk menentukan jumlah komponen suatu senyawa. Pemisahan terjadi karena suatu proses keseimbangan yang berturut-turut dari molekul komponen antara dua fasa, yaitu fasa diam dan fasa gerak. Perbedaan interaksi dari berbagai molekul komponen dengan fasa diam akan menyebabkan komponen bergerak dengan kecepatan yang berbeda, hingga komponen tersebut terpisah satu sama lain. Fasa diam yang biasa digunakan dalam KLT adalah serbuk silika gel, alumina, tanah diatomae, selulose dan lain-lain yang mempunyai ukuran butir sangat kecil yaitu 0,063 – 0,125 mm dan dilapiskan pada kaca, lembar Al atau plastik dengan ketebalan tertentu. KLT mempunyai dua tujuan dalam penggunaannnya. Pertama, KLT dipakai sebagai metode untuk mencari hasil kualitatif dan kuantitatif. Tujuan kedua untuk menjajaki pelarut yang akan dipakai pada
19
kromatografi kolom atau kromatografi cair kinerja tinggi. Pemilihan eluen yang cocok mendeteksi jumlah komponen yang berada dalam ekstrak kasar yang terpisah berdasarkan Rf dari masing-masing senyawa. Pemilihan eluen dimulai dari pelarut organik yang tidak polar seperti heksana kemudian meningkatkan kepolaran misalnya dengan etil asetat atau pelarut yang lebih polar lainnya. 2.3.2
Spektrometri Massa Spektometri yang menggunakan penguraian senyawa organik dan perekaman pola fragmentasi menurut massanya. Uap cuplikan berdifusi ke dalam sistem spektrometer massa yang bertekanan rendah, kemudian diionkan dengan energi yang cukup untuk memutuskan ikatan kimia. Dalam spektrometri massa reaksi pertama suatu molekul adalah ionisasi awal sebuah elektron. Hilangnya sebuah elektron menghasilkan molekul. Tabrakan antara sebuah molekul organik dan salah satu elektron berenergi tinggi menyebabkan lepasnya sebuah elektron dari molekul dan menyebabkan terbentuknya ion organik. Ion organik yang dihasilkan oleh penembakan elektron berenergi tinggi ini tidak stabil dan pecah menjadi fragmen kecil, baik berbentuk radikal bebas maupun ion-ion lain. Umumnya
spektrum
massa
diperoleh
dengan
mengubah
senyawa suatu sampel menjadi ion-ion yang bergerak cepat yang dipisahkan berdasarkan perbandingan massa terhadap muatan (m/e). Proses ionisasi menghasilkan partikel-partikel bermuatan positif dimana massa yang terdistribusi spesifik terhadap senyawa induk. 2.3.3
Spektrometri Nuclear Magnetic Resonansce (NMR) 1 Dimensi Spektrometri Nuclear Magnetic Resonansce atau resonansi magnetik inti (RMI) merupakan metode yang sering dipakai dalam mempelajari struktur molekul. Untuk melengkapi bagian-bagian lain dari suatu molekul organik yang tidak diketahui (unknown) dapat digunakan RMI yang memberikan informasi yang berguna dalam penentuan struktur yaitu RMI 1 dimensi terdiri dari RMI proton (1H), RMI karbon ( 13C), DEPT (Distortionless Enhancement by Polarization Transfer). Prinsip
20
RMI proton adalah inti atom hidrogen mempunyai sifat-sifat magnet, bila suatu senyawa mengandung hidrogen diletakkan dalam bidang magnet
yang
sangat
kuat
dan
diradiasi
menggunakan
radiasi
elektromagnetik maka inti atom hidrogen dari senyawa tersebut akan menyerap energi melalui suatu proses absorpsi yang dikenal dengan resonansi magnet. Penyerapan gelombang pada fenomena RMI ataau NMR (Nuclear Magnetic Resonance), terjadi bila inti menyerah terhadap medan magnet yang digunakan untuk merubah arah orientasi spin. Spektrum RMI karbon dan DEPT memberikan informasi jenis atom karbon primer (CH3), sekunder (CH2) tersier (CH), dan kuarterner (C). DEPT merupakan salah satu tipe spektra RMI karbon yang memberikan informasi jumlah karbon dari CH3, CH2, CH dan C yang diukur berdasarkan sudut pengukuran RMI karbon. 2.3.4
Spektrometri Nuclear Magentic Resonansce (NMR) 2 Dimensi
NMR dua dimensi merupakan spektrometri yang paling penting untuk memecahkan masalah struktur. NMR dua dimensi meliputi COSY (Correlation
Spectroscopy),
NOESY
(Nuclear
Overhauser
Enhancement Spectroscopy) HSC (Heteronuclear Shift Correlation) dan TOCSY (Total Correlation Spectroscopy). Spektrum COSY menunjukkan hubungan antara proton dan proton dalam molekul yang digabungkan satu sama lain. Spektrum COSY adalah spektrum simetris yang memiliki 1H-NMR yang mempunyai dua sumbu pergeseran kimia.
21
BAB III PROSEDUR KERJA
3.1
Bahan dan Metode
3.1.1
Bahan Tanaman
Daun M. Oleifera dikumpulkan dari Khartoum – sudan dan disahkan oleh departemen botani, Universitas Khartoum. 3.1.2 Metode 1. Pembuatan ekstraksi tanaman untuk penyaringan fitokimia 100g sampel tanaman kering (M. Oleifera) diekstraksi dengan etanol 95% selama empat jam (Soxhlet). Larutan yang telah didinginkan disaring dan ditambahkan etanol secukupnya dalam 100 ml filtrat. Ekstrak yang disiapkan (PE) digunakan untuk tes berikutnya. 2. Tes untuk alkaloid Sekitar 30ml PE diuapkan sampai kering dalam penangas air. 5 ml asam hidroklorida 2N ditambahkan dan larutan dipanaskan sambil diaduk didalam penangas air selama 10 menit. Campuran kemudian didinginkan dan disaring. Untuk bagian 2ml dari filtrat, ditambah beberapa tetes reagen mayer. Warna putih atau endapan krem menandakan bahwa tes tersebut positif. 3. Uji flavonoid 17.5ml PE diuapkan sampai kering pada penangas air, dinginkan dan residu dihilangkan dengan beberapa ekstraksi dengan petroleum eter dan residu yang dihilangkan lemaknya dilarutkan dalam 30ml etanol dan disaring. (A) untuk 3ml filtrat, ditambahkan beberapa tetes methanolik
alumunium
1%.
Pembentukan
dari
warna
kuning
menunjukkan tes tersebut positif. (B) sampai 0,3ml filtrat, ditambahkan beberapa tetes metrokolik klorida 1%. Ditambahkan pengembangan dan memberikan hasil positif. 4. Tes untuk sterol dan triterpen 10 ml larutan PE diuapkan sampai kering pada penangas air dan residunya diektraksi dengan petroleum eter untuk keluarkan sebagian
22
besar bahan pewarna. Residu kemudian diektraksi dengan kloroform 20ml. Larutan kloroform dikeringkan diatas natrium suldat anhidrat. 5 ml bagian dari ekstrak kloroform dicampur dengan 0,5ml asetas anhidrat kemudian ditambahkan dua tetes sulfat pekat. Merah muda ke ungu mengindikasikan tes triterpen positif. Hijau ke warna biru memberikan tes sterol positif. 5. Tes untuk saponin 1 g sampel tanaman bubuk kering ditempatkan tabung reaksi yang bersih. 10ml air suling ditambahkan dan dihentikan dan kertas digoyang selama sekitar 30 detik. Formasi kombinasi madu mengindikasikan adanya saponin. 6. Ekstraksi flavonoid dari daun Moringaoleifera Daun bubuk kering (500g) disaring pada suhu kamar dengan etanol 95% (5L) selama 48 jam. Pelarut diuapkan dalam vakum hingga didapatkan masa pada (30g). 7. Isolasi senyawa (I) Ekstrak etanol diambil pada kolom kromatografi menggunakan heksana atau kloroform, kloroform atau etil asetat dan metanol sebagai pelarut eluting. Fraksi 7-10 memberikan gambar KLT yang sama. Mereka dikumpulkan bersama – sama dan digunakan sebagai titik konsentrasi pada (20x20cm) pelat silika gel sebagai lupasan sempit. Pelat itu dikembangkan dengan sistem pelarut; Butanol : asam asetat : air (BAA) (5:1:4) dan kromatogram berada dibawah sinar UV. Setelah senyawa ditingkatkan biasa (I), 195-197 0C (CHCl3:MeOH 7:3) diisolasikan. Senyawa (I) bereaksi positif dengan larutan ferrik klorid. 3.1.3 Aktifitas antibakteri 1.
Persiapan larutan suspensi bakteri 1ml bagian kultur kaldu 24 jam dari organisme yang diuji (Staphyllococcus aureus ATCC25923- G + ve, Escherichia coli ATCC25922- G-ve, pseudomonas aeruginosa ATCC27853- G-ve dan Proteus vulgaris NCTC8196) secara aseptik didistribusikan ke nutrien agar dan diinkubasi pada suhu 37 0C selama 24 jam. Pertumbuhan
23
bakteri diambil dan dicuci dengan garam normal steril, untuk menghasilkan suspensi yang mengandung 108-109 unit pembentuk koloni per ml. Suspensi disimpan di kulkas pada suhu 4 0C sampai habis. Pengenceran stok serial suspensi dibuat dalam larutan garam normal steril, dan volume 0,02 ml dari pengenceran yang tepat dipindahkan ke permukaan piring nutrien agar kering. Piring dibiarkan berdiri selama dua jam pada suhu kamar sampai kering lalu diinkubasi pada suhu 370C selama 24 jam. 2.
Pengujian untuk aktifitas antibakteri Metode difusi cup-plate agar diambil dengan beberapa modifikasi minor untuk menilai aktivitas antibakteri dari ekstrak yang disiapkan. 1ml bakteri standar stok suspensi dicampur dengan 100ml cair nutrien agar ssteril yang dipertahankan pada suhu 45 0C. 2oml bagian dari nutrien agar yang diinkubasi dibagikan petridish steril. Agar
– agar
dibiarkan tersisa. Masing – masing dari tempat 4 bagian (diameter 10mm) dipotong menggunakan penggerek gabus streil (No. 4) dan cakram agar – agar diangkat. Cangkir diisi dengan sampel 0,1ml dari masing – masing ekstrak menggunakan pipet yang disesuaikan, dan dibiarkan menyebar pada suhu kamar selama dua jam.
3.2
Hasil dan Diskusi
1. Hasil skiring fitokimia Penyelidikan fitokimia sebagai fitokonstituen dalam ekstrak daun yang disiapkan M. Oleifera menunjukkan adanya alkaloid, flavonoid, sterol, triterpen dan saponin. Pelat kemudian diinkubasi pada posisi tegak pada suhu 370C selama 18 jam. Pengujian ini dilakukan untuk ekstrak kasar dan senyawa murni terhadap masing – masing organisme yang diuji. Setelah inkubasi diameter dari pengukuran zona penghambatan pertumbuhan yang dihasilkan.
Spektrum IR (Gbr. 1) menunjukkan í (cm-1, cakram KBr): 742 (CH,Ar bending), 1125 (C-O), 1273, 1460 (C = C, Ar), 1728(C = O), dan 2925 (C-H,
24
alifatik).Spektrum UV (Gambar 2) memberi 'maks (MeOH): 260.305(Sh.) NmSpektrum 1HNMR (Gbr.3) (400MHz, CDCl3) mengungkapkan:7.68, 7.51, 4.19, 2.01, 1.36, 0.88Spektrum massa (Gbr.4) memberi m / z 324 untuk molekul ion.
25
Senyawa yang terisolasi tidak bisa menjadi antosianin atauKatekin karena spektrum IR (Gambar 1) mengungkapkanAdanya fungsi karbonil (1728 cm-1) dan Kelas (antosianin dan katekin) tidak berfungsi seperti itu. Spektrum UV (Gambar 2) menunjukkan λmax (MeOH):260nm di samping
karakteristik bahu isoflavon di λmax305nm. Penambahan pereaksi peralihan sodium
methoxide
batokromikShift
keLarutan
menunjukkan
metanol tidak
senyawa adanya
(I) 3
tidak dan
memberikan 4
/
-OH.
PenambahanPergeseran reagen natrium asetat menjadi larutan metanol. Senyawa (I) tidak memberikan pergeseran bathochromic yang menunjukkanTidak adanya kelompok 7- hidroksil. Aluminium kloridaSpektrum tidak menunjukkan pergeseran yang menunjukkan adanya 3-, 5-OH dan bagian katekin. Spektrum 1HNMR senyawa (Gambar 3)Tidak memiliki karakteristik
singlet turun dari olefinProton isoflavon yang biasanya muncul pada ƒÔ 7.8Menyarankan adanya substituen di C2. Sinyal diƑÔ 4.19 (m, 6H) sesuai dengan dua kelompok metoksi, satu dari mereka terletak di ring B sementara yang lainnya ada di ring A dikte oleh retro-Diels-Alder fission of scheme (I). Sinyal
pada ƒÔ 2.01 (s, 3H), ƒÔ 1,36 (m, 3H) danƒÔ 0,88 (s, 3H) sesuai dengan tiga
26
kelompok metil. Resonansi pada ƒÔ 7.68(3H, s) dan ƒÔ 7.51 (s, 2H) sesuai dengan aromatik proton masing – masing cincin B dan A. Atas dasar data kumulatif di atas dan skema retero-Diels-Alder dari skema (I) mengikuti struktur tentatif disarankan untuk senyawa (I) Konsentrasi yang digunakan = 100ì g / ml - mm = tidak ada hambatan 1-9 mm = hambatan lemah 10-14mm = hambatan sedang 15-19mm = hambatan kuat Aktivitas antibakteri ekstrak etanol dan murni senyawa tersebut diselidiki terhadap empat mikroba standar,Staphylococcus aureus, Escherichia coli, PseudomonasAeruginosa dan Proteus vulgaris. Hasil penelitian menunjukkan bahwa ekstrak etanol daun Moringa olifera memberi kekuatan penghambatan terhadap S. aureus dan penghambatan moderat terhadap mikroba lainnya. Senyawa (I) menunjukkan derajat yang bervariasi aktivitas antibakteri terhadap mikroba yang diuji. (tabel 1). Variasi kecil antara hasil kami dan yang dilaporkan data mungkin karena kondisi iklim, variasi tanaman dan sumber mikroba yang digunakan.
27
28
BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN
4.1
Kesimpulan
Penyelidikan fitokimia daun M.Oleifera menunjukkan adanya alkaloid, flavonoid,Sterol, triterpen dan saponin. Hasil ini disarankan bahwa daun Moringa.oleifera mungkin mengandung
Terapi baru farmakologis.Dari daun
senyawa M.oleifera (I) ituterpencil. Dalam uji antibakteri, ekstrak etanol menghasilkan penghambatan kuat melawan S. aureus dan penghambatan moderat melawan mikroba lainnya. Senyawa murni (I) menunjukkan berbagai tingkat aktivitas antibakteri terhadap mikroba yang diuji. Aktivitas antimikroba M. oleifera ditemukan konsisten dengan penggunaan tradisional tanaman ini oleh orang lokal.
29
