Kerapuhan osmotik Setelah percobaan di platform berosilasi, sampel darah Disentrifugasi (3000 rpm, 5 menit, centrifuge klinis). Volume 1 ml supernatan dipisahkan untuk memverifikasi absorbansi pada 540 nm dalam spektrofotometer (Analyzer 800M, Optromic Instrumentos Científicos Ltda, Rio de Janeiro, Brasil) menggunakan 0,9% NaCl sebagai kosong Hemolisis dievaluasi dengan factor Perbandingan kerapuhan osmotik. Faktor ini ditentukan membagi Absorbansi supernatan sampel darah yang diobati (10 Dan 20 Hz) oleh supernatan sampel kontrol (0Hz). Itu Darah dihomogenisasi dan 0,06 ml digunakan untuk tabung reaksi Disiapkan dengan NaCl hypotonik berbeda (0,02 sampai 0,12 M). Dulu Dihomogenisasi tiga kali dengan lembut di setiap tabung, dan disentrifugasi Lagi (3000 rpm, 5 menit, centrifuge klinis). Akhirnya, 1 ml dari Supernatan kemudian dimanfaatkan untuk mendapatkan absorbansi pada 540 nm; bekas Untuk setiap urutan dalam tabung dengan 0,12 M NaCl sebagai blank. (Milena et al., 2011)
Ketika sel darah merah ditempatkan pada larutan hipotonik di Osmolaritas mana yang mengurangi keuntungan pada sel darah merah Air bersifat instan dan kuantitatif. Fenomena ini Dimasukkan ke dalam penggunaan praktis dalam kerapuhan osmotik sel darah merah Test, yang menentukan pelepasan hemoglobin Dari sel darah merah di hypotonic sodium chloride (NaCl) larutan. Oleh karena itu, indeks kerapuhan osmotik adalah ukuran Dari resistensi sel darah merah terhadap lisis oleh osmotic Stres (Oyewale dan Ajibade, 1990). Tesnya umumnya Berguna untuk mengetahui tingkat stabilitas dan fungsionalitas Membran plasma (Krogmeier et al., 1993), eritrosit Mean Cell Volume (MCV) dan Permukaan Area-to-Volume Rasio (SAVR) dan diagnosis herheritik spherocytosis.
Beberapa xenobiotik tertentu seperti primakuin dan Fava Ekstrak kacang adalah zat yang dapat mengganggu Status redoks sel darah merah, khususnya pada mereka Individu dengan gangguan glukosa-6-fosfat Aktivitas dehidrogenase (Mayes, 1983; Champe et al., 2005; Ojo et al., 2006). Senyawa lain mungkin berperan dalam Sedemikian rupa sehingga aktivitas eritrosit eritrosit tertentu Enzim, seperti glutathione reductase (Berker e t al., 1995; Forchetti et al., 2006), glutathione peroxidase (Mayes, 2003) dan glukosa-6-fosfat Dehidrogenase (Mayes, 2003; Champe et al., 2005; Ojo Et al., 2006), yang dibutuhkan untuk integritas membran adalah dikompromikan. Oleh kare na itu, penelitian ini bertujuan Pastikan kapasitas lima (5) umumnya diresepkan Obat antimalaria (FansidarTM, HalfanTM, Kina, CoartemTM dan klorokuin fosfat) untuk mengubah / mendistorsi integritas membran eritrosit dan secara implisit, Fungsionalitas. (Chikezie, Uwakwe and Monago, 2010)
Pengambilan sampel darah / persiapan eritrosit Haemolysate Lima mililiter (5,0 ml) darah vena manusia HbAA, HbAS, dan Ge notipe HbSS diperoleh dari peserta dengan venipuncture tersebut Disimpan di tabung antikoagulan EDTA. Darah genotip HbSS dan Sampel darah malarious berasal dari pasien yang masuk klinik di Federal Medical Center (FMC), Pengajaran Universitas Negeri Imo Rumah Sakit (IMSUTH), Orlu, St John Clinic / Medical Diagnostic Laboratorium, Laboratorium Diagnostik Medis Avigram dan Laboratorium Diagnostik Medis Qualitech. Pusat ini adalah Terletak di Owerri, Imo State, Nigeria. Eritrosit dicuci dengan metode seperti yang dije laskan oleh Tsakiris dkk. (2005). Dalam 2 jam pengumpulan sampel darah, Bagian dari 1,0 ml sampel dimasukkan ke dalam centrifuge Tabung reaksi yang mengandung 3,0 ml larutan buffer pH = 7 ,4: 250 mM Glukosa Tris-HCl / 140 mM NaCl / I.0 mM MgCl2 / 10 mM). Itu Eritrosit dipisahkan dari plasma dengan sentrifugasi pada 1200 G selama 10 menit, dicuci tiga kali oleh tiga sentrifugasi yang serupa Dengan larutan penyangga ini. Eritrosit diganti kembali dalam 1,0 Ml buffer ini dan pengujian dilakukan dengan mencuci ini dan Eritrosit utuh.
Penentuan kerapuhan osmotik eritrosit Kerapuhan osmik pada tiga genotipe sel darah merah, HbAA, HbAS, Dan HbSS ditentukan oleh ukuran hemoglobin yang dilepaskan Dari sel darah merah bila diletakkan di lingkungan yang mengandung Pengenceran serial larutan Fosfat Buffer Saline (PBS) sebagai Dijelaskan oleh Oyewale (1993), dengan sedikit modifikasi (Mafuvadze Et al., 2008). Dua puluh mikroliter (20 μl) porsi sel darah merah te rsuspensi Larutan buffer 1,0 ml: pH = 7,4 (TrisHCl / 140 MmNaCl / 1.0 MMMgCl2 / 10.0 mM glukosa), ditambahkan ke tabung reaksi yang mengandung 5,0 Ml larutan PBS, pH = 7,4- {NaCl (9,0 g) / Na2HPO4.2H2O (1,71 g) / NaH2PO4.2H2PO4.2H2O (2,43 g) per 1 L air suling}, dari serial Konsentrasi dalam urutan 0,9, 0,7, 0,6, 0,4, 0,3 dan 0,2 g / 100 Ml. Tabung uji ketujuh berisi air suling. Tabung uji Diizinkan berdiri selama 30 menit pada suhu kamar (24˚C). Selanjutnya, isi tabung reaksi disentrifugasi pada 1200 g Se lama 10 menit Supernatan itu tertuang dan hemoglobin Isi ditentukan secara spektrofotometri pada λmax = 540 nm Lar utan PBS (0,9 g / 100 ml) kosong. Haemolisis pada setiap tabung reaksi Dinyatakan sebagai persentase, mengambil 100% maksimal Nilai absorbansi tabung reaksi yang mengandung e ritrosit Disuspensikan dalam air suling (0,0 g / 100 ml).
Evaluasi persentase hemolisis eritrosit dan st abilisasi Hasil bagi absorbansi dari setiap tabung reaksi (1 -6 Th) dan tabung uji ketujuh dikalikan dengan faktor 100. The Kisaran nilai mewakili persentase lisis eritrosit pada Masing konsentrasi PBS yang sesuai (0,9 0,2 g / 100 ml). Itu Konsentrasi larutan PBS yang sesuai yang menyebabkan lisis 50% Sel darah merah mendefinisikan kerapuhan corpuscular rata-rata (MCF) Indeks (Dewey et al., 1982, Krogmeier et al., 1993). Kumulatif
Kurva kerapuhan osmotik eritrosit, sebidang persentase Lisis eritrosit versus konsentrasi larutan PBS digunakan untuk Dapatkan nilai MCF Kapasitas relatif dari lima obat antimalaria untuk menstabilkan atau Destabilisasi membran sel darah merah dievaluasi sebagai persentase Dari hasil bagi perbedaan antara nilai MCF uji dan Sampel kontrol ke sampel kontrol (Parpart et al., 1947;Chikezie, 2007). Demikian,
(Chikezie, Uwakwe and Monago, 2010)
Osmolalitas plasma darah mamalia dipertahankan pada kisaran mosmol 270-310. Zat utama yang mengatur sifat osmotik adalah kation, misalnya natrium (136-145 mM) dan kalium (3,6-5,4 mM), dan anion, misalnya klorida dan hidrogencarbonat. Konsentrasi molar metabolit osmotik aktif lainnya, seperti protein urea, glukosa, dan plasma, re ndah, tetapi mengandung 8-12 tekanan koloid mosillol koloid [1]. Tingkat resistensi sel darah merah (RBC) terhadap lisis sebagai akibat dari penurunan konsentrasi NaCl lingkungannya adalah dasar uji kerapuhan osmotik. Secara eksperimental, uji kerapuhan osmotik konvensional terdiri dari pe ngukuran intensitas cahaya yang ditransmisikan melalui larutan Hb yang dihasilkan dengan penghentian eritrosit pada media hipotonik. Panjang gelombang cahaya yang biasa digunakan adalah λ = 540 nm, dimana hanya hemoglobin, sebagai protein utama RBC, berkontribusi pada penyerapan cahaya. Kerapuhan osmotik didefinisikan oleh pergeseran kurva hemolisis, yang menghubungkan absorbansi dengan konsentrasi NaCl, dan seringkali ditentukan dengan penentuan 50% titik hemolisis.
Kerapuhan osmotik banyak digunakan untuk menjelaskan mekanisme pengaruh berbagai faktor pada sifat osmotik membran RBC, seperti tegangan ge ser dan hemolisis mekanis [2], suhu [3], efek ultrasound [4], obat-obatan [2], dan Iradiasi [4]. Tes kerapuhan osmotik j uga berguna untuk diagnosis penyakit hematologis tertentu, misalnya anemia hemolitik, spherocytosis herediter, dan defisiensi elliptocytosis, glukosa-6-fosfat dehidrogenase, dan anemia sel sabit, dan juga untuk sel darah merah dari pasien uremi atau diabetes [ 5, 6]. Resistensi osmotik rendah dapat menyebabkan hemolisis intravaskular, yang menyebabkan pengurangan rentang kehidupan RBC [5, 7]. Kurva kerapuhan osmotik sel merah t idak hanya mencerminkan rata-rata membran dan sifat sitoplasma, namun juga dapat memberikan informasi mengenai distribusi sifat-sifat tersebut di dalam sampel [8]. Hemoglobin dilepaskan melalui pori hemolitik yang terbentuk di selaput membengkak sel bola yang membengkak dalam media hipotonik. Lisis sel terjadi segera setelah pembengkakan ke bentuk sferisnya. Selama hemolisis osmotik, RBC menjadi bola dengan volume maksimum 1,5 sampai 1,6 kali lebih tinggi dari volume diskrit dalam media isotonik [9]. Pembengkakan adalah proses pembatas lisis sel; Dengan
demikian kerapuhan osmotik mencerminkan kemampuan sel untuk menyerap air dalam medium hipotonik. Bila tekanan osmotik eksternal berkurang, volume sel akan meningkat. Hubungan antara tekanan osmotik dan volume sel dinyatakan dengan persamaan.
Dimana b adalah bagian dari volume RBCs osmotik tidak aktif dan Πiso dan V iso adalah tekanan osmotik dan volume untuk media isotonik dan Π dan V untuk media hipotonik. Tekanan osmotik kritis Πcj untuk sel individual, j, dan volume kritis V cj yang sesuai dengannya ditulis ulang dalam bentuk berikut [6]:
Distribusi volume kritis yang terkait dengan distribusi tekanan osmotik kritis diperkirakan terjadi. Nilai absolut air osmotically nonresponsible adalah sekitar 3,57 dan 0,33 g massa air / g kering dalam larutan hemoglobin dan pada eritrosit masing-masing [10]. Diusulkan bahwa tingkat air yang secara osmotik tidak responsif berkorelasi dengan air yang berinteraksi dengan protein. Inte raksi protein-air merupakan faktor kunci dalam pembatasan difusi air di dalam sel. Bogner dkk. Menunjukkan bahwa sekitar 20% air intraselular berhubungan langsung dengan protein intraselular dalam hal osmosis pada eritrosit m anusia [10].
Bentuk kurva hemolisis, yang menunjukkan tingkat lisis sel sebagai fungsi konsentrasi garam, dihasilkan dari fungsi distribusi kekuatan membran eritrosit [11, 12]. Penulis menduga bahwa fungsi distribusi kekuatan f d adalah Gaussian dalam bentuk dan dinyatakan dengan persamaan berikut:
Dimana c adalah konsentrasi NaCl dan p 1 dan p 2 adalah parameter yang menggambarkan lokasi maksimum fungsi distribusi dan dispersinya. Parameter p 1 dan p 2 positif dan tidak nol [11]. Fr aksi eritrosit yang memiliki kekuatan lebih besar dari nilai x diberikan oleh rasio integral sebagai berikut:
Dimana erf (x) adalah fungsi error dengan argumen x.
Akhirnya, berdasarkan (4), fraksi sel darah merah hemolisa, H f, pada tegangan tertentu x (konsentrasi NaCl kritis) dapat dihitung lebih lanjut dalam hal fungsi kesalahan gratis: Ncbi (Walski et al., 2014)
Bentuk cakram biconcave dari eritrosit Memberikan luas permukaan terhadap r asio volume, optimal untuk gas Tukar dan mentolerir sejumlah besar gaya ge ser. Eritrosit ini dilengkapi dengan spesialisasi Sitoskeleton memberikan stabilitas mekanis dan Fleksibilitas. Membran eritrosit memiliki elastis Jaringan protein skelet yang membuatnya bisa mengatasinya Tekanan cairan [1]. Saat eritrosit ditempatkan Solusi hipotonik dengan osmolaritas yang berkurang Berubah menjadi bola Fenomena ini praktis Gunakan dalam uji kerapuhan osmotik, yang menentukan Pelepasan hemoglobin dari eritrosit secara hipotonik Larutan garam. Indeks kerapuhan omotis didefinisikan Pengukuran resistansi eritrosit terhadap lisis oleh Tegangan osmotik [2, 3]. Tes ini berguna untuk menent ukan Tingkat stabilitas dan fungsi membran plasma [3], sel darah merah rat a-rata (MCV) dan permukaan Rasio luas terhadap volume (SAVR) dan diagnosis Spherocytosis herediter [4-6]. Penentuan kerapuhan osmotik Kerapuhan osmosis dari eritrosit itu Ditentukan oleh metode yang dijelaskan oleh Benford dan Kenned [10]. 20μl darah ditambahkan ke dalam tabung Mengandung 5 ml garam buffer fosfat (pH 7,4) Konsentrasi serial yang berkisar antara 0 - 0,85% Garam. Campuran diizinkan berdiri selama 1 jam di Suhu kamar (24 ° C). Setelah itu mereka Disentrifugasi pada 1580g selama 5 menit. Supernatan Tertuang dan kandungan hemoglobinnya Ditentukan secara spektrofotometri 450 nm dengan menggunakan Air suling sebagai blank Persentase hemolysis Dalam setiap konsentrasi garam penyangga ditentukan Dengan asumsi hemolisis 100% dalam konsentrasi dengan Absorbansi tertinggi.
(Wodu, Uwakwe and Monanu, 2015)
Hemolisis biasanya dikenali oleh hemoglobin bebas di sel darah merah (RBC) -pemain media penanda. Tes kerapuhan osmotik eritrosit (EOF) digunakan untuk menentukan tingkat hemolisis sel darah merah yang dihasilkan oleh stres osmotik. Tingkat ini tergantung pada volume sel, luas permukaan, dan integritas fungsional membran sel. Karena dapat diikuti oleh perubahan absorbansi pada 540 nm, uji
EOF sering diterapkan pada diagnosis penyakit hemo litik dan perubahan oksidan yang menyebabkan kerusakan eritrosit [1,2,3]. Misalnya, transportasi jalan ke rumah pemotongan hewan yang terkait dengan tekanan panas telah ditunjukkan untuk menyebabkan peningkatan hemolisis pada babi [3], kambing [4] dan unta [5]. Meskipun demikian, kualitas teknis dari tes ini mudah dipengaruhi oleh perubahan lingkungan. Faktanya, hemolisis telah terbukti dipengaruhi o leh kondisi teknis pengujian dan beberapa faktor, termasuk usia [6], je nis kelamin [7], suhu, pH [8], musim [9], transportasi [10,11], Kondisi penyimpanan yang tidak tepat, cacat pada selaput RBC dan kelainan pada darah [12]. F aktorfaktor ini telah disarankan untuk mempengaruhi uji EOF dan harus benar-benar standar untuk mendapatkan hasil yang dapat direproduksi. Oleh karena itu, kami telah melakukan penelitian untuk menentukan nilai kerapuhan osmotik (OF) nilai RBC dalam beberapa kondisi pada unta. Kami telah menilai efek antikoagulan (EDTA dan heparin), waktu penyimpanan, suhu, pH, hidrogen peroksida, vitamin, jenis kelamin, usia dan musim pada EOF pada spesies ini. (Islah et al., 2016)
Sel darah merah atau eritrosit adalah jauh Paling banyak sel darah. Sel darah merah Ukuran sekitar 8μm dengan diameter, muncul Sebagai c akram biconcave tanpa inti dan rentang hidup 120 hari.1 Eritrosit itu sangat dinamis Unit fungsional meski relatif sederhana kapan Dibandingkan dengan sel somatik lainnya. Itu baik Diorganisir untuk biosintesis lebih dari 400 juta Molekul hemoglobin yang akhirnya membentuk Sampai 95% berat keringnya untuk memenuhi oksigen Fungsi pengangkutan Ada yang dibutuhkan Struktur kimia membran yang dimaksud Termodinamika stabil dan metabolisme aktif Untuk permeabilitas selektif material dan Informasi.3
kapasitas sel darah merah bertahan Tekanan osmotik mendefinisikan indeks kerapuhan osmotiknya Tes ini bermanfaat secara klinis untuk diagnosis Spherocytosis herediter6 Dan untuk memastikan Stabilitas dan fungsi plasma eritrosit selaput. Komposisi relatif asam lemak, Fosfolipid dan kolesterol sel darah merah Membran plasma berhubungan erat dengan Stabilitas dan fungsi membran.9,10,11 Baru-baru ini, Aldrich et al., 2006, melaporkan bahwa morfologi, Ukuran dan populasi sel darah merah nukleasi Adalah faktor fisiologis lain yang dapat secara signifikan Mengubah permeabilitas membran er itrosit dan stabilitas.
Selanjutnya, beberapa xenobiotik tertentu seperti Ekstrak biji primaquine dan fava telah dilaporkan sebagai agen yang dapat mengganggu Status redoks sel darah merah terutama pada mereka Individu dengan gangguan glukosa-6-fosfat Aktivitas dehidrogenase.13,14,15 Sel darah merah Individu tersebut memiliki kapasitas yang dikompromikan Untuk menahan stres osmotik. Juga, yang malaria Parasit, Plasmoduim spp, adalah agen biologis Yang menyebabkan hemolisis sel darah merah.16 Beberapa Senyawa, dengan pengaruh yang cukup besar Integritas me mbran atau destabilisasi, mengerahkan
Tindakan melalui kontak kimia langsung dengan Biomolekul yang m erupakan architechtural Struktur membran plasma. Lainnya Senyawa beraksi sedemikian rupa sehingga aktivitasnya Enzim redoks eritrosit tertentu, seperti Glutathione reductase, 17,18 glutathione Peroksidisasi, 13 dan glukosa-6fosfat Dehidrogenase13-15 dibutuhkan untuk membrane Inte gritas dikompromikan.
Tes Kecerdasan Osmotik Erythrocyte Penentuan sel darah merah osmotic Kerapuhan dilakukan berdasarkan metode Dijelaskan oleh Dewey dkk, 1982,19 dengan minor Modifikasi seperti dilansir Chikezie, 2007.20 The F raksi sel darah merah dilisis saat ditangguhkan Dalam larutan garam dari berbagai konsentrasi adalah Diselidiki melalui spektrofotometri. Larutan stok dari buffer sodium klorida, Osmotically setara dengan 100g / L NaCl, adalah Disiapkan sebagai berikut: NaCl (90 g), Na2HPO4.2H2O (17.1g), dan NaH2PO4.2H2O (2,43 g) Dilarutkan dalam 1 liter air suling. Pengenceran Setara dengan 9.0, 7.0, 5.0, 4.0, dan 3.0 g / l NaCl, Masing, disiapkan. Setiap pengenceran memiliki a Volume akhir 50ml Lima mililiter (5,0 ml) larutan garam masing-masing (9.0 - 3.0 g / l Nacl) dimasukkan ke dalam yang sesuai Tabung reaksi sementara 5.0ml air suling ditambahkan Ke tabung reaksi ke-6. 0,5 ml setiap anti malaria Larutan obat dengan berbagai konsentrasi sebagai Ditentukan dikirim ke masing-masing set yang diberikanTabung uji (1/6). Untuk setiap tabung reaksi, 0,05 ml Lima mililiter (5,0 ml) larutan garam masing-masing (9.0- 3.0 g / l Nacl) dimasukkan ke dalam yang sesuai Tabung reaksi sementar a 5.0ml air suling ditambahkan Ke tabung reaksi ke-6. 0,5 ml setiap anti malaria Larutan obat dengan berbagai konsentrasi sebagai Ditentukan dikirim ke masing-masing set yang diberikan Tabung uji (1/6). Untuk setiap tabung reaksi, 0.05ml. (Chikezie, Uwakwe and Monago, 2009)
Kerapuhan osmotik eritrosit (EOF) telah diminati sejak 1883, ketika Hamburger mengembangkan metode untuk Menentukan kerentanan eritrosit terhadap hemolisis pada larutan garam hipotonik (Perk et al., 1964). Itu Tingkat EOF telah digunakan sebagai ukuran viabilitas sel darah merah dan juga secara klinis, sebagai diagnosis Karakteristik (Coldman, 1969; Figueiredo et al., 2012). K erapuhan eritrosit pada hemolisis mungkin terjadi Peningkatan atau penurunan penyakit (Perk et al., 1964; Binder & Mathois, 1986) dan ini dipengaruhi oleh beberapa
Faktor: pH, suhu, oksigenasi, ukuran sel, sel membran, umur hewan, jenis, jenis kelamin, lipemia, umur Eritrosit dan nilai yang diperoleh bervariasi sesuai dengan laboratorium (Jain, 1993). Perbedaan yang ditandai dalam perilaku osmotik eritrosit antara hewan dewasa dan muda telah dilaporkan Sapi, domba (Soliman & Amrousi, 1996; Ayres et al, 2005), dan kambing (Perk et al., 1964). Peningkatan EOF Betis baru lahir telah digambarkan, saat betis matang, dan akhirnya mereka mendapatkan kerapuhan osmotik yang khas Orang dewasa (Holman, 1956). Nilai konsentrasi NaCl yang hemolyses 50% dari eritrosit hadir dalam sampel lebih banyak digunakan Untuk mengevaluasi resistan eritrosit maka hemolisis minimal (H5%) dan hemolisis maksimal (H95%) Resistensi, digunakan oleh sebagian besar penulis (Coldaman, 1969; Pillai et al., 1976; Olusanya & Adepoju, 1979; Soliman & Amrousi, 1996; Sant'Ana et al., 2001). Di Brasil, pengaruh varietas Zebu Nellore diamati pada nilai hematologis (Ayres et al., 1996), Dan juga pengaruh breed ternak pada EOF, antara Holstein dan Nellore (Ayres et al., 2005) .. Zebu sangat penting dalam produksi sapi potong, dan kemudian tujuan dari penelitian ini adalah untuk mempelajari EOF Di Nellore ternak, mengevaluasi pengaruh usia, jenis kelamin dan berkembang biak baris, pada hewan dibesarkan di Negara Bagian Sao Paulo, Brazil. (Consuêlo et al., 1987)
Heparin adalah polisakarida, dan heparin memiliki beberapa Karakteristik yang tidak biasa Pertama, polydisperse di alam; Artinya, ia tidak memiliki struktur tunggal yang didefinisikan di dalamnya Cara obat sederhana dengan berat molekul rendah seperti aspirin. Sebaliknya, heparin mengandung berbagai r antai sakarida
Dari panjang variabel dan keragaman struktural dan biasanya Memiliki berat molekul rata-rata 14 sampai 18 kDa, tapi bisa Mengandung polisakarida dari 10 sampai lebih dari 100 monosakarida Unit [1]. Fitur kedua adalah heparin yang sangat Molekul sulfat, dan karena properti ini sangat Muatan negatif tinggi yang memungkinkannya untuk mengikat yang sangat Beragam bahan biologis bermuatan positif (lihat [2] Untuk review). Heparin termasuk dalam glycosaminoglycan (GAG) keluarga polisakarida yang ditandai oleh Asam heksuronat berganda dan hexosamine disakarida sebagai Struktur tulang punggung (lihat Gambar 1), meskipun ada a Jumlah molekul lain yang termasuk dalam keluarga GAG (lihat Tabel 1) (Page, 2013)
Heparin, salah satu obat tertua yang masih digunakan secara luas, Adalah glycosaminoglycan alami yang utamanya Fungsi ini untuk menghambat koagulasi darah. Dulu Ditemukan hampir seabad yang lalu dan membutuhkan waktu bertahun-tahun Pindah dari laboratorium ke samping tempat tidur. Telah ada Kontroversi yang signifikan mengenai distribusi kre ditnya penemuan. James Marcum telah mencatat penemuan itu Dan pengembangan (Marcum, 1990, 1997), dan perselisihan tersebut (Marcum, 2000).
(Wardrop and Keeling, 2008)
Heparin adalah antikoagulan endogen alami agen bertindak baik di pembuluh darah in vivo, dan ex vivo saat ditambahkan ke sampel darah. Heparin menghambat konversi prothrombin menjadi trombin aktif, dan sehingga mencegah konversi fibrinogen menjadi fibrin. (Agirbas, Feyzioglu and Kopuz, 2014)
Antitrombin III (AT3) adalah peptida yang menghambat beberapa faktor pembekuan yang diaktifkan. Obat yang menambah fungsi AT3 berfungsi sebagai antikoagulan. Unfractionated heparin (UFH) mengikat dan meningkatkan aktivitas antitrombin III dengan mendorong perubahan konformasi ke Factor Xa, yang pada akhirnya menyebabkan penghambatan pada Xa dan II a dalam rasio 1: 116 Unfractionated heparin juga memiliki beberapa penghambatan pada faktor IXa, XIa, XIIa.17 Heparins dengan berat molekul rendah (LMWH), yang juga mengikat AT3, lebih kecil dan memiliki dampak proporsional yang lebih tinggi pada Xa, versus IIa, dalam rasio 3: 1 atau 2: 1 .16,17 Sebagai hasil dari Penghambatan ini, baik UFH dan LMWH akhirnya menghambat aktivasi trombin.
DAPUS : Agirbas, E., Feyzioglu, A. M. and Kopuz, U. (2014) ‘Seasonal Changes of Phytoplankton Chlorophyl a, Primary Production and threir Relation in the Continental Shelf Area of the South Eastern Black Sea’, Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Science, 14, pp. 713 –726. doi: 10.4194/1303-2712-v14. Chikezie, P. C., Uwakwe, A. A. and Monago, C. C. (2010) ‘Comparative osmotic fragility of three erythrocyte genotypes ( HbAA , HbAS and HbSS ) of male participants administered with five antimalarial drugs’, African Journal of Biochemistry Research, 4(March), pp. 57 –64. Chikezie, P., Uwakwe, A. and Monago, C. (2009) ‘Studies of human HbAA erythrocyte osmotic fragility index of non-malarious blood in the presence of five anti-malarial drugs’, Iranian Journal of Blood and Cancer , 1(2), pp. 49 –54. Available at: http://www.ijbc.ir/browse.php?a_code=A-10-218&slc_lang=en&sid=1. Consuêlo, M., Ayres, C., Brazil, B., Harry, E., Birgel, B., Paulo, S., Júnior, B., Jr, B., Emilia, L. and Martins, P. (1987) ‘Influence of Age , Sex and Breed Lines of Zebu Nellore Cattle on the Erythrocytes Osmotic Fragility , raised in São Paulo , Brazil’, 4(October 2014), pp. 70–75. Islah, L., Rita, B., Youssef, C., Abdarrahmane, B., Abdarrahman, H. and Mohammed, E. K. (2016) ‘Study of Incubation Conditions for Erythrocytes Osmotic Fragility Testing in Dromedary Camel (Camelus dromedarius)’, International Journal of Research in Environmental Science, 2(2), pp. 2454 –9444. doi: 10.20431/2454-9444.0202004.
Milena, O. B. M., Nelson, de S. P., Pedro, J. M., Sebastiatilde o, D. S. F. and Mario, B. F. (2011) ‘Effect on osmotic fragility of red blood cells of whole blood submitted to vibrations in an oscillating platform’, African Journal of Biotechnology , 10(66), pp. 14197 –14202. doi: 10.5897/AJB11.2022. Page, C. (2013) ‘Heparin and Related Drugs: Beyond Anticoagulant Activity’, ISRN Pharmacology , 2013, pp. 1 –13. doi: 10.1155/2013/910743. Walski, T., Chludzińska, L., Komorowska, M. and Witkiewicz, W. (2014) ‘Individual osmotic fragility distribution: A new parameter for determination of the osmotic properties of human red blood cells’, BioMed Research International . Hindawi Publishing Corporation, 2014. doi: 10.1155/2014/162102. Wardrop, D. and Keeling, D. (2008) ‘ The story of the discovery of heparin and w arfarin’, British Journal of Haematology , 141(6), pp. 757 –763. doi: 10.1111/j.1365-2141.2008.07119.x. Wodu, E., Uwakwe, A. A. and Monanu, M. O. (2015) ‘Osmotic Fragility Index and Stability of Human Erythrocytes in the Presence of Four Oral Antiretroviral Drugs’, 3, pp. 884–887.
