UNIVERSIDAD ANDINA NESTOR CACERES VELASQUEZ FACULTAD DE INGENIERIAS Y CIENCIAS PURAS CARRERA ACADEMICA PROFESIONAL DE INGENIERIA SANITARIA Y AMBIENTAL
INFORME DE PRÁCTICAS PRE – PROFESIONALES EN LA EMPRESA PRESTADORA DE SERVICIOS SEDA JULIACA S.A.
PRESENTADO POR:
QUISPE LAURA SILVIA VERONICA CODIGO: 29144129
INDICE
I.
INTRODUCCION. ………………………………………………..... 02
II.
OBJETIVOS. ………………………………………………………. 04 a. OBJETIVO GENERAL……………………………………….. 04 b. OBJETIVOS ESPECÍFICOS. ……………………………….. 04
III.
ACTIVIDADES REALIZADAS. ………………………………… 05 3.1.
MONITOREO EN REDES……………………………….
05
3.2.
MONITOREO EN PLANTA. ………………………………. 08
3.3.
ANALISIS FISICOQUIMICOS. …………………………… 10 3.3.1. DETERMINACION DE PH Y TEMPERATURA. .. 10 3.3.2. DETERMINACION DE LA CONDUCTIVIDAD, CONDUCTIVIDAD, SOLIDOS TOTALES DISUELTOS Y SALINIDAD…………………………………………. 11
3.3.3. DETERMINACION DE TURBIEDAD TURBIEDAD…………….. 14 3.3.4. DETERMINACION DE COLOR COLOR…………………… 16 3.3.5. DETERMINACION DE ALUMINIO ALUMINIO……………….. 18 3.3.6. DETERMINACION DE NITRATOS………………. 22 3.3.7. DETERMINACION DE SULFATOS SULFATOS ……………… 25 3.3.8. DETERMINACION DE DUREZA DUREZA…………………. 28 28 3.3.9. DETERMINACION DE CLORUROS CLORUROS…………….. 30 3.4.
ANALISIS BACTEREOLOGICOS………………………… 32
3.5.
PRUEBA DE JARRAS…………………………………… 39
3.6.
PURGAS EN LAS REDES DE AGUA POTABLE……… 42
IV.
CONCLUSIONES…………………………………………………. 44
V.
RECOMENDACIONES…………………………………………… 46
VI.
BIBLIOGRAFIA…………………………………………………… 47
VII.
ANEXOS…………………………………………………………… 48 a. INFORMACION DE LA ENTIDAD…………………………... 48 1. RAZON SOCIAL…………………………………………… 48 2. PRESENTANTE LEGAL…………………………………. 48 3. SERVICIO QUE BRINDA………………………………… 48
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I.
INTRODUCCION
El presente informe menciona las actividades realizadas durante nuestra formación como profesionales de ingeniero sanitario y ambiental, en las Prácticas Pre profesionales según lo establecido en el plan de estudios del currículo vigente de la Universidad. Las practicas pre- profesionales es una etapa de transición entre la vida como estudiante y profesional el cual está orientada a la integración, profundización y aplicación de los conocimientos técnicos, científicos y habilidades adquiridas. En tal sentido el presente informe constituye una importante y fundamental herramienta, contiene las actividades realizadas y funciones desempeñadas que favorecieron el cumplimiento de los objetivos y resultados debidamente planteados a partir de la identificación de las necesidades necesidades de la l a empresa Las practicas Pre - Profesionales fueron desarrolladas en la EPS. SEDA JULIACA llevadas a cabo desde el 11de Noviembre del 2014 hasta el 11 de mayo del 2015. La Empresa Prestadora de Servicios SEDA JULIACA S.A. es una empresa de tratamiento empresarial de derecho privado, constituida como Sociedad Anónima, a cargo del Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento, con autonomía técnica, administrativa, económica y financiera. fi nanciera. Sus servicios son de abastecer agua potable a la población de Juliaca en el año 2010 Juliaca contaba con 41314 conexiones de agua potable, (Memoria Descriptiva de Gerencia de Operaciones de la EPS Seda Juliaca S.A., 2010), actualmente
Juliaca
cuenta
con
42702
Conexiones
domiciliarias
abasteciendo a una población servida de 150311 habitantes según el último informe trimestral 2015 - I. Dentro de las actividades realizadas en las prácticas fueron los análisis fí sicos químicos de diferentes parámetros como PH, Salinidad, Solidos Totales Disueltos, Conductividad, Turbiedad, Color, Nitratos, Sulfatos, Dureza, Cloruros y Aluminio. También se realizaron análisis microbiológicos y bacteriológicos como son los Coliformes Fecales, Totales y Bacterias 3
Heterotroficas. Del proceso de captación, análisis de agua de monitoreo en planta, análisis de agua de monitoreo en redes, también se realizaron purgas en las redes de la ciudad. La vigilancia de la calidad del agua de consumo puede definirse como la «evaluación y examen, de forma continua y vigilante, desde el punto de vista de la salud pública, de la inocuidad y aceptabilidad de los sistemas de abastecimiento de agua de consumo» (OMS, 1976).
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II.
OBJETIVOS:
a. OBJETIVO GENERAL: Aplicar los conocimientos teóricos y prácticos adquiridos en la formación universitaria, y conocer la manera adecuada del funcionamiento de todos los procesos de producción y tratamiento de agua potable en la planta de tratamiento.
b. OBJETIVOS ESPECIFICOS: -
Aprender los problemas sanitarios de la población y aplicar los planes de control de calidad de agua para consumo humano.
-
Realizar el análisis fisicoquímico de agua potable para el óptimo consumo humano.
-
Conocer y manipular los equipos en el área de control de calidad de la planta.
-
Lograr una adecuada adaptación a la actividad profesional, científica y técnica.
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III.
ACTIVIDADES REALIZADAS DURANTE LAS PRACTICAS PREPROFECIONALES.
Las actividades realizadas corresponden básicamente a los análisis realizados dentro del laboratorio de control de calidad de la empresa prestadora de servicios seda Juliaca, se realizaron análisis físico químicos y bacteriológicos así también como monitoreo de planta y monitoreo de redes por toda la ciudad de Juliaca también se realizaron purgas de la redes de la ciudad.
3.1.
MONITOREO EN REDES: El monitoreo de redes es muy importante para el control de calidad, ya que estas nos muestran en qué condiciones llega el agua en las conexiones domiciliarias para dar un mejor servicio a la población, dentro del monitoreo de redes se realiza la capacitación a la población del uso adecuado de agua potable, estos monitoreo se realiza una vez por semana por toda la ciudad en la respectiva movilidad de la empresa se preparan los materiales y equipos necesarios para el monitoreo.
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MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS. -
Camioneta
-
Coolers
-
Botellas de vidrio
-
Mapas
-
Lapiceros
-
Hoja de datos
-
Manómetro
-
N,N-dietil-p-fenilendiamina (DPD).
METODOLOGIA: a. PREPARACION DE MATERIALES. -
Se realiza la preparación de los materiales uno o dos días antes del día de monitoreo, se lavan y preparan las botellas de plástico selladas y rotuladas con las zonas de muestreo de toda la ciudad.
-
También se realiza la preparación de las botellas de vidrio esterilizadas y rotuladas para análisis microbiológico.
-
se preparan dos coolers una para muestras de análisis físico químico y otra para muestras de análisis microbiológicos.
b. MUESTREO: El muestreo se realiza por toda la ciudad tomando muestras directamente de las viviendas o de las cajas de conexiones domiciliarias, se anota la hora del muestreo la dirección de la vivienda, la urbanización de la vivienda, el cloro libre y la presión de agua. El abastecimiento de agua potable es dividido por 12 zonas para una mayor eficiencia en el control de los parámetros.
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Urbanizaciones
Zona Sectores
I I I I
Cercado, Zarumilla, San Isidro, Túpac Amaru, I-A Guardia Republicana, Manco Capac, San José I, etc. Cercado, Santa Bárbara, Bellavista,Las mercedes, I-B Santa María I, Los Choferes,La Rinconada, Rinconada II etc. Jirones y/o Calles: Calixto Aréstegui, Salaverry, I-B Zona Sandia, Ica, Jáuregui, Ayacucho, Carlos Lavagña, 02 Piloto de Mayo, etc. La Capilla,Santa María II, Cesar Vallejo, Los I-C Geraneos, Selva Alegre, San Julían, etc.
I
I-D
I
I-E
I
I-F
I
I-G
II
II - A
II
II - B
III
III
IV
IV
Población Conexiones Servida Activas Nº de Usuarios 6067
21356
3823
13457
1563
5502
4322
15213
J. Chávez, Guardia Civil,y III, Sta Catalina, C.Cancollani, Sta Adriana, etc.
4067
14316
Las Gardenias, Horacio Zevallos,Santa Asunción,San José II, Mariano Melgar, San Carlos, Aeropuerto. P. J. La Revolución, Sr. De Huanca, San Francisco I y II, Cincuentenario Miraflores,fray p. Urraca, Villa Fátima, . San santiago, Villa hermosa del Misti, Santa Rosa, San Pedro, Prolong. Villa H. del Misti, Lo s Incas, San Luis. La Florida, Amauta, Taparachi, Tahuantinsuyo, Rinconada III, Los Keñuales, etc.
2321
8170
2065
7269
3463
12190
2803
9867
C. Colorado, 09 de octubre, Nueva Esperanza, 28 de Julio, La Pampilla, Fco Bolognesi. etc.
4942
17396
Sta Cruz, Inti Raymi, Víctor Raúl, Alto Rinconada, 03 de Mayo, Espinal, Saúl Cantoral, etc. Amp. 03 de Octubre , Tambopata, Amp. Independencia, Miraflores, Kantutani, 02 de mayo, Señor de los Milagros, etc.
1470
5174
4727
16639
41633
146548
Total
RESULTADOS. Los resultados del monitoreo de redes se realizan satisfactoriamente, con capacitación a los usuarios cumpliendo con el protocolo de muestreo y con los implementos necesarios para llevar acabo el monitoreo. Los resultados que se muestran a continuación son los promedios de cada mes.
8
CONTROL DE CLORO RESIDUAL EN REDES DE DISTRIBUCION REDES DE DIST RIBUCION IA
IB
IB Zona Piloto
0.9 0.9 1.0 1.2 1.0 0.9 0.8
0.8 0.7 0.9 1 0.9 0.9 0.9
1.1 1 1.0 1.2 1.1 0.9 0.6
MES
NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO ABRIL MAYO
IC
ID
IE
IF
0.7 0.7 0.8 1.0 1.0 0.8 0.9
0.7 0.7 0.9 1 1.2 1 1
0.8 0.7 0.9 1 1.2 1.1 1
0.7 0.8 0.9 0.9 1 1 0.9
IG
IIA
IIB
0.8 0.9 1 1.1 1 1.1 1 1.1 1 0.8 1 0.8 1.2 0.8 1.2 1.1 0.9 1 1 0.7 0.9
III
IV
0.8 0.7 0.8 1 0.8 0.9 0.6
0.7 0.7 0.8 1 0.7 0.6 0.7
El control de cloro en Juliaca es realizado en las 12 zonas, el límite máximo permisible para redes es de 0.5 a 1.5. Se puede observar que en el mes de abril el cloro está un poco bajo en comparación de los meces anteriores, y esto puede ser debido a la temperatura, ya que el cloro se disipa rápidamente cuando la temperatura es alta, pero esto no afecta a la calidad óptima para el consumo humano.
3.2.
MONITOREO EN PLANTA: El monitoreo realizado dentro de la Planta es muy importante ya que nos indica si el funcionamiento de cada uno de los procesos del tratamiento funciona correctamente. La toma se realiza en cada unidad del proceso de tratamiento y cumpliendo con el protocolo de muestreo de agua.
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MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS: -
Botellas de plástico
-
Botellas de vidrio
-
Cucharon de muestreo
-
N,N-dietil-p-fenilendiamina (DPD).
METODOLOGIA: A. PREPARACION DE MATERIALES. -
La preparación de materiales se hace un día antes, se lavan y esterilizan las botellas de plástico, selladas y rotuladas.
-
Se preparan dos botellas de vidrio esterilizadas para el análisis microbiológico.
B. MUESTREO: a. CAPTACION: La toma de muestra en captación se realiza directamente del rio Coata en las 5 tuberías de captación, se toma dos muestras, una en botella 10
de plástico y otra en botella de vidrio (para análisis físico químico y bacteriológico) y se anota la hora de la toma de la muestra.
b. SEDIMENTADOR DE GRUESOS: Para sedimentador de gruesos tomamos la muestra después de la malla de retención de residuos sólidos con un cucharon, una muestra en botella de plástico.
c. LINEA DE IMPULSION 14”: Es uno de los dos reservorios de agua dentro de la planta donde se almacena el agua ya tratada para luego conducirla a través de bombeo a los respectivos reservorios, en la línea de impulsión 14” se toman 3
muestras una para el análisis físico químico y aluminio y otra para análisis microbiológico también se mide el nivel de cloro in situ con el reactivo (DPD) no debe ser menos de 1.5 y no debe ser más de 2.5mg/l.
d. FILTROS A PRESION 1 Y 2: Son unidades de filtración no convencional compuesta por placas de soporte para el lecho de arena de 80 cm de altura con una capacidad de filtración de 35 lps. La toma de muestra es en cada filtro en botellas de plástico.
e. SEDIMENTADORES DE FINOS: Unidad de tratamiento, que consta de 03 piscinas que reduce la velocidad del agua en el proceso para retener floculos por decantación. Se procede a tomar las muestras en cada una en la salida del proceso.
f. LINEA DE IMPULSIÓN 24”: Es uno de los dos reservorios de agua dentro de la planta donde se almacena el agua ya tratada para luego conducirla a través de bombeo a los respectivos reservorios, en la línea de impulsión 24” se toman 3
muestras una para el análisis físico químico, aluminio y para análisis bacteriológico también se mide el nivel de cloro in situ no debe ser menos de 1.5 y no debe ser mas más de 2.5mg/l.
g. FLOCULADOR: La muestra se toma en la unidad de tratamiento tipo hidráulico al final de las pantallas horizontales. 11
h. PLANTAS COMPACTAS: En las unidades compactas se toma la muestra en el punto de salida hacia los filtros.
i. FILTROS: La toma de muestra de los filtros es en el punto de salida de los mismos.
RESULTADOS: El monitoreo de agua dentro del proceso de tratamiento se realiza siempre satisfactoriamente cumpliendo con el protocolo de monitoreo de la calidad sanitaria; muestreo, preservación, conservación y envío de las muestras al laboratorio de análisis. Y con las medidas de seguridad necesarias para el monitoreo, por lo que al realizarse un monitoreo y muestreo adecuado nos dan resultados más confiables en los análisis. Los resultados que se muestran a continuación, son los promedios de cada mes.
CONTROL DE CLORO LIBRE EN PLANTA DE TRATAMIENTO. MES NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO ABRIL MAYO
LÍNEA DE LÍNEA DE IMPULSIÓN 14" IMPULSIÓN 24" 1.7 1.9 1.9 1.8 2.0 2.0 1.9
1.8 2.1 2.1 2.0 2.2 2.1 2.1
El cloro en planta es más que 1.5 y menos que 2.5, lo cual nos indica que está dentro del rango establecido, y puede ser enviado a los reservorios para la distribución a los usuarios. A pesar de que podemos ver que en la línea 24 el cloro es más alto, esto no es un problema ya que está dentro del rango.
12
3.3.
ANALISIS FISICOQUIMICOS. Se realizaron diferentes tipos de análisis para diferentes tipos de parámetros dentro del laboratorio en el área de control de calidad de la planta.
3.3.1. DETERMINACION DE PH Y TEMPERATURA. El pH es un parámetro que mide la concentración de iones hidronio presentes en el agua la medición del pH es muy importante al momento de tratar el agua ya que con solo el cambio de temperatura, el pH puede cambiar.
MATERIALES Y METODOLOGIA. MATERIALES Y REACTIVOS: -
PH metro
-
Termómetro
-
Vasos precipitados
METODOLOGIA: El método para el análisis de pH y temperatura es muy sencilla ya que solo necesitamos poner las muestras en un vaso precipitado y dentro de este poner el sensor del pH metro que también nos lectura temperatura debemos tener el equipo bien calibrado.
13
RESULTADOS: La temperatura es un parámetro físico que afecta mediciones de otros parámetros como pH, alcalinidad o conductividad. Las temperaturas elevadas resultantes de descargas de agua caliente, pueden tener un impacto ecológico significativo por lo que la medición de la temperatura del cuerpo receptor, resulta útil para evaluar los efectos sobre éste. Los resultados de los análisis del agua en captación regularmente depende de la estación en invierno la temperatura del agua es de 07 a 11 °C, en época de verano la temperatura del agua es de 12 a 17 °C. Los resultados que se muestran a continuación, son promedios sacados de cada mes.
DETERMINACION DE PH Y TEMPERATURA EN PLANTA DE TRATAMIENTO
MES NOVIEMBRE
CAPTACIÓN DE AGUA CRUDA T PH (C°) 7.019 14.5
LÍNEA DE IMPULSIÓN 14" T PH (C°) 7.936 13.3
LÍNEA DE IMPULSIÓN 24" T PH (C°) 7.567 12.8
DICIEMBRE
7.643
14.9
7.637
12.8
7.579
13.2
ENERO
6.997
12.4
7.472
13.6
7.383
12.9
FEBRERO
7.081
12.3
7.286
15.0
7.185
14.6
MARZO
7.295
12.9
7.899
13.6
7.912
13.7
ABRIL
8.002
13.9
7.880
13.4
7.863
13.3
MAYO
7.201
12.5
7.449
14.5
7.314
14.0
Los resultados del pH en el análisis de agua de captación suele ser alcalina con un pH mayor a 7, en el transcurso del proceso de tratamiento el pH se va regulando hasta llegar a un ph optimo dentro del rango de PH para agua que es de 6.5 a 8.5 según el REGLAMENTO DE CALIDAD DEL AGUA PARA CONSUMO HUMANO – DS N° 031-2010-SA. Ver tabla N° 01. El PH en la captación de agua cruda, suele variar, esto es debido al 14
problema del rio Coata y a la turbidez, ya que en el rio sufre una contaminación de parte de la misma población de Juliaca.
DTERMINACION DE PH Y TEMPERATURA EN REDES DE DISTRIBUCION MES
PH
T (C°)
NOVIEMBRE
7.11
13.83
DICIEMBRE
7.06
13.50
ENERO
7.05
13.68
FEBRERO
7.05
13.78
MARZO
7.05
13.80
ABRIL
7.03
13.63
MAYO
7.00
13.28
En redes también afecta un poco la contaminación del rio Coata, pero como podemos ver en los resultados, esto no es de gran preocupación. En el mes de noviembre el PH es un poco alto, esto puede ser debido a la turbidez ya que en esa época estaba empezando las lluvias.
3.3.2. DETERMINACION
DE
LA
CONDUCTIVIDAD,
SOLIDOS
DISUELTOS Y SALINIDAD. Los sólidos disueltos pueden afectar adversamente la calidad de un cuerpo de agua o un efluente de varias formas; las aguas para el consumo humano, con un alto contenido de sólidos disueltos, son por lo general de mal agrado para el paladar y pueden inducir una reacción fisiológica adversa en el consumidor. Por esta razón los análisis de sólidos disueltos son también importantes como indicadores de la efectividad de procesos de tratamiento biológico y físico de aguas usadas. La conductividad de un agua es producida por los electrolitos que lleva disueltos. Es el inverso de la resistencia que opone el agua al paso de la corriente eléctrica. Se mide en micro siemens/cm (µS/cm).
15
El término sólido hace referencia a la materia suspendida o disuelta en un medio acuoso. Una de las características físicas más importantes del agua es el contenido total de sólidos. La determinación de sólidos disueltos totales mide específicamente el total de residuos sólidos filtrables (sales y residuos orgánicos). Los sólidos disueltos pueden afectar adversamente la calidad de un cuerpo de agua o un efluente de varias formas; las aguas para el consumo humano, con un alto contenido de sólidos disueltos, son por lo general de mal agrado para el paladar y pueden inducir una reacción fisiológica adversa en el consumidor. Por esta razón los análisis de sólidos disueltos son también importantes como indicadores de la efectividad de procesos de tratamiento biológico y físico de aguas usadas. La salinidad es una propiedad importante de aguas. Originalmente este parámetro se concibió como una medida de la cantidad total de sales disueltas en un volumen determinado de agua.
MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS: -
Vaso precipitado.
-
Conductividimetro. 16
-
Ficha de datos.
-
Lapicero.
METODOLOGIA: Se calibra el equipo antes de realizar el análisis. Luego se vierte la muestra de agua previamente agitada en un vaso precipitado, con el censor conductivimetro dentro de la muestra, este equipo nos dará los resultados de conductividad, solidos totales disueltos y salinidad.
RESULTADOS: Los resultados de los análisis de estos parámetros no exceden los límites máximos permisibles lo que nos indica que la planta está en óptimas condiciones para el tratamiento de agua para consumo humano.
DETERMINACION DE LA CONDUCTIVIDAD, SOLIDOS DISUELTOS Y SALINIDAD EN PLANTA DE TRATAMIENTO
MES
NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO ABRIL MAYO
CAPTACIÓN DE AGUA CRUDA
LÍNEA DE IMPULSIÓN 14"
CND
Sal.
S.T.D.
CND
(uS/cm)
(%)
(mg/l) (uS/cm)
219
0.1
104
1213
0.6
586
224
0.1
104
1219
0.6
243
0.1
114
1215
247
0.1
117
259
0.1
265 278
LÍNEA DE IMPULSIÓN 24"
Sal.
S.T.D.
CND
Sal.
S.T.D.
(%)
(mg/l) (uS/cm)
(%)
(mg/l)
1177
0.6
564
589
1211
0.6
586
0.6
591
1241
0.6
598
1235
0.6
601
1252
0.6
605
123
1245
0.6
602
1252
0.6
605
0.1
126
1255
0.6
607
1263
0.6
610
0.1
131
1242
0.6
606
1273
0.6
615
17
Según el reglamento de la calidad del agua para consumo humano y los límites máximos permisibles nos dice que para la conductividad no debe pasar de 1500 uS/cm, para solidos totales disueltos no debe exceder los 1000 mg/l y para salinidad los 200 mg Na/l. según el REGLAMENTO DE CALIDAD DEL AGUA PARA CONSUMO HUMANO (Ver tabla N° 01). Y como podemos observar en los resultados obtenidos, no pasan los límites máximos permisibles, lo que nos quiere decir que está en óptimas condiciones para el consumo humano.
TABLA N° 1 LIMITES MAXIMOS PERMISIBLES DE PARAMETROS DECALIDAD ORGANOLEPTICA
3.3.3. DETERMINACION DE TURBIEDAD. La turbiedad de las aguas se debe a la presencia de sólidos 18
suspendidos, tales como arcilla, limo, materia orgánica e inorgánica finamente dividida, plancton y otros organismos microscópicos. La transparencia del agua es muy importante cuando está destinada al consumo del ser humano, a la elaboración de productos destinados al mismo y a otros procesos de manufactura que requieren el empleo de agua con características específicas, razón por la cual, la determinación de la turbiedad es muy útil como indicador de la calidad del agua El análisis de la turbiedad dentro de planta es muy importante ya que esta nos indica el funcionamiento adecuado de los filtros para el caso de redes, nos indica el momento adecuado para el mantenimiento de las tuberías de impulsión.
MATERIALES Y METODOLOGIA. MATERIALES Y REACTIVOS: -
Vaso precipitado
-
Turbidimetro
-
Celdas de vidrio
-
Ficha de datos
-
Papel tisú
-
Lapicero
METODOLOGIA: -
Se agita la muestra para que no se encuentren sólidos sedimentados.
-
Vertimos la muestra en la celda de vidrio para el turbidimetro.
-
Limpiamos la celda de vidrio con papel tisú.
-
Colocamos la celda en el turbidimetro, lecturamos y anotamos los resultados en la ficha de datos.
RESULTADOS: En las Redes y purgas (limpieza de tuberías en las redes) no debe pasar de los 5 NTU según Ministerio de Salud Reglamento de la Calidad del Agua para Consumo Humano. 19
CONTROL DE TURBIDEZ EN PLANTA DE TRATAMIENTO
NOVIEMBRE
CAPTACI N DE AGUA CRUDA TURBIEDAD 17.60
L NEA DE IMPULSIÓN 14" TURBIEDAD 0.931
L NEA DE IMPULSIÓN 24" TURBIEDAD 0.682
DICIEMBRE
11.20
1.190
1.090
ENERO
7.78
1.110
0.812
FEBRERO
6.62
0.675
1.470
MARZO
5.39
1.300
1.310
ABRIL
4.26
1.210
1.310
MAYO
3.49
0.720
1.330
MES
Los resultados obtenidos en captación son de una turbiedad de 3, 5 NTU a mas dependiendo de la temporada, en escorrentía suele ser más de 5 NTU. Los resultado de turbiedad después del tratamiento y en las conexiones domiciliarias el menor que 1 NTU, lo que nos indica que la filtración es óptima en relación al tratamiento del agua ya que los resultados están por debajo de los límites máximos permisibles (Ver tabla N° 01). Los resultados que se muestran a continuación, son los pr omedios de cada mes. 20
CONTROL DE TURBIDES EN REDES DE DISTRIBUCION REDES DE DIST RIBUCION MES
NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO ABRIL MAYO
IA
IB
IB Zona Piloto
1.4
0.9
0.7
0.8
0.8
1.2
0.7
1.4
0.8
0.9
1.0
1.1
1.3
0.8
0.9
0.8
1.1
1.0
1.0
1.2
0.8
0.7
1.2
1.2
1.2
1.1
1.4
1.0
1.1
1.0
1.4
1.2
0.8
0.7
1.1
1.1
1.1
1.2
1.3
0.8
1.0
1.4
1.4
1.4
1.0
1.2
1.2
1.4
1.0
1.1
0.8
0.8
0.9
1.0
0.7
1.3
1.1
0.8
1.1
1.2
1.3
1.2
1.3
1.1
1.2
1.4
1.3
1.4
1.1
1.2
1.2
1.4
1.3
1.4
1.2
1.2
1.4
1.4
1.4
1.3
1.2
1.1
1.4
1.1
IC
ID
IE
IF
IG
IIA
IIB
III
IV
La turbidez en redes también es por causa del agua que transita por las tuberías, ya que estas estas en malas condiciones, ya que tienen muchos años de funcionamiento, pero esto no afecta la calidad del agua, ya que podemos encontrar cloro residual presente.
3.3.4. DETERMINACION DE COLOR. El color en el agua puede deberse a la presencia del contenido natural de metales o iones metálicos en disolución, humus o residuos orgánicos, plancton o desechos industriales. Por lo general se elimina el color para cualquier propósito de uso del agua. Es por ello, importante la determinación de color en aguas naturales. para analizar el color en planta se hacen con mustras de la linea de impulsion 14”, 24” y captacion se hace en el equipo de filtrado al vacio.
MATERIALES Y METODOLOGIA. MATERIALES: -
Celdas de vidrio
- Agua destilada -
Equipo de Filtrado al vacío
-
Espectrofotómetro
-
Ficha de datos 21
-
Lapicero
METODOLOGIA: -
Armar el equipo de filtrado al vacío, filtro de membrana, soporte de filtro, tubo de filtro, y aspirador.
-
Verter 50ml de la muestra de agua atravez del filtro.
-
Llenar una celda de 25 ml de agua destilada para nuestra muestra en blanco o otra celda de 25 ml con muestra de agua filtrada.
-
Calibrar el espectrofotometero con la muestra de agua destilada, una vez calibrada a cero lecturar la muestra de agua filtrada.
RESULTADOS: Los resultados de los analisis de color en captacion, linea 14 y 24 son las siguentes -
Captacion es de 0- 14
-
Linea 14” es de 0-1
-
Linea 24” es de 0-1
Los resultados de captacion varian dependiendo del nivel de turbiedad, pero los resultados de las lineas 14” y 24” no varian por que
son lineas donde sale agua tratada. 22
Los resultados que se muestran a continuacion, son los promeios de cada mes. MES NOVIEMBRE
CAPTACI N DE AGUA CRUDA COLOR 11.367
L NEA DE IMPULSIÓN 14" COLOR 0.387
L NEA DE IMPULSIÓN 24" COLOR 0.323
6.700
0.419
0.419
14.290
0.400
0.419
9.871
0.161
0.600
4.968
0.533
0.419
5.161
0.258
0.233
6.355
0.065
0.194
DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO ABRIL MAYO
Los valores determinados en la linea 14” y 24” nos indican que estan
dentro de limites maximos permisibles según el REGLAMENTO DE CALIDAD DE AGUA PARA CONSUMO HUMANO – DS N° 031-2010SA. (Ver tabla N° 01).
3.3.5. DETERMINACION DE ALUMINIO. El aluminio es el elemento metálico más abundante y constituye alrededor del 8% de la corteza terrestre. Además de la presencia de aluminio natural, su presencia también se debe al tipo de coagulante usado para el tratamiento de agua potable en seda Juliaca que es el Poli Cloruró de Aluminio, por ese motivo su análisis es muy importante ya que los niveles altos de aluminio pueden presentar problemas de salud en la población.
MATERIALES Y METODOLOGIA. MATERIALES: - Probeta. -
Vaso precipitado.
-
Celdas de vidrio. 23
-
ECR REAGENT POWDER PILLOWS.
- HEXAMETHYLENETETRAMINE. -
ECR MASKING REAGENT SOLUTION.
-
Agua destilada.
- Espectrofotómetro. - Guantes. - Barbijo.
METODOLOGIA: - En una probeta de verter 50 ml de la muestra de agua a analizar
verter la muestra en un vaso precipitado, también se debe verter 50 ml de agua destilada en otro vaso precipitado para nuestra muestra en blanco y calibrar nuestro espectrofotómetro. - Echar nuestro primer reactivo de ECR REAGENT POWDER
PILLOWS esperar 1 minuto mientras este reacciona no olvidar echar también a nuestro blanco. - Una vez transcurrido el tiempo del primer reactivo, echar el
segundo reactivo de HEXAMETHYLENETETRAMINE y esperar 5 minutos para que este también reaccione. - Una vez pasado el tiempo de reacción de los dos reactivos, se
añade la solución estabilizador ECR MASKING REAGENT SOLUTION a la muestra en blanco para que no varié sus resultados y podamos calibrar el equipo. - Una vez calibrado el espectrofotómetro se procede a lecturar la
muestra en concentración, absorbancia y transmitancia. - Se anotan los resultados en nuestra hoja de análisis.
24
RESULTADOS: Los resultados de los análisis de aguas tratadas para consumo humano en aluminio no exceden los límites máximos permisibles que es de 0.2 mg/l según las normas de calidad de agua para consumo humano. Ver tabla N° 01 y tabla N° 02. Los resultados que se muestran a continuación, son los promedios de cada mes. 25
L NEA DE IMPULSIÓN 24" ALUMINIO 0.032
REDES DE DISTRIBUCION ALUMINIO
NOVIEMBRE
L NEA DE IMPULSIÓN 14" ALUMINIO 0.046
DICIEMBRE
0.041
0.042
0.04183871
ENERO
0.092
0.054
0.048
FEBRERO
0.053
0.043
0.06608
MARZO
0.074
0.067
0.070
ABRIL
0.053
0.045
0.071
MAYO
0.066
0.065
0.079
MES
0.081167
Podemos observar que en el mes de enero el aluminio es un poco alto, esto se deve a la turbidez, cuando la turbides es alta se agrega un poco mas de policloruro de aluminio para que sedimente mas rapido y esto pude dejar residuos de aluminio, pero como podemos ver los resultados son optimos para el consumo humano.
TABLA N° 2 LIMITES MAXIMOS PERMISIBLES (LMP) REFERENCIALES DE LOS PARAMETROS DE CALIDAD DE AGUA
26
3.3.6. DETERMINACION DE NITRATOS. El nitrato es una de las formas de nitrógeno de mayor interés en las aguas naturales, residuales y residuales tratadas, se presenta generalmente a nivel de trazas en el agua de superficie, pero puede alcanzar niveles elevados en las subterráneas. 27
El Nitrógeno es un nutriente fundamental para los organismos foto sintetizadores, pero si está en exceso puede determinar graves problemas en la calidad de agua. Aguas que estén contaminadas con materia orgánica rica en nitrógeno puede tener bajas concentraciones de nitratos. La descomposición de la materia orgánica disminuye el nivel de oxígeno disuelto, lo cual disminuye la velocidad a la cual el amoníaco (NH3, una forma más reducida del Nitrógeno), es oxidado a nitrito (el que es considerablemente más tóxico que el nitrato) y luego a nitrato. Por esto es útil monitorear también la concentración de nitritos. Las bacterias naturales del suelo pueden convertir nitrógeno al nitrato.
MATERIALES Y METODOLOGIA. MATERIALES Y REACTIVOS: - Celdas de vidrio - Espectofotometro - Agua destilada - NitraVer 5 - Ficha de datos - Guantes.
28
METODOLOGIA: - Agitar la muestra de agua para que esta esté bien disuelta. - Llenar una celda con 25ml de la muestra y otros 25 ml de agua destilada para nuestro blanco (muestra para la calibración del espectrofotómetro).
- Agregar a la celda el contenido de una bolsa de polvo de reactivo de nitrato NitraVer 5 a la celda.
- Programar el espectrofotómetro con los 2 tiempos establecido para que reaccione el reactivo. El primero es de un minuto para la agitación y la mezcla del reactivo, la segunda es de 5 minutos para determinar el color, lo mismo para la muestra de agua destilada (el blanco).si hay nitrato se desarrollara un color ámbar.
- Cuando haya transcurrido los 5 minutos se deberá colocar el blanco en el soporte de la celda para calibrar el equipo y ponerlo a cero.
- Colocar la muestra preparada en el soporte de la celda, quedara un depósito de cadmio después de disolver el polvo del reactivo NitratoVer 5 y no afectara al resultado.
RESULTADOS: 29
La lectura de la absorbancia de la muestra frente a la curva patrón da directamente la concentración de NO3 en ppm. En el caso de una muestra diluida tener en cuenta el factor de dilución. REDES DE DISTRIBUCION MES
NITRATOS
NOVIEMBRE
5.427
DICIEMBRE
4.245
ENERO
4.97
FEBRERO
4.467
MARZO
1.735
ABRIL
1.071
MAYO
1.440
Los resultados de los análisis siempre nos dan por debajo de los límites máximos permisibles, los resultados también varían dependiendo de la turbiedad del agua. Ver tabla N° 02 y tabla N°03. En los meces de noviembre, diciembre, enero, y febrero, los nitratos son altos, esto puede ser debido a la turbidez, ya que era época de lluvias. Pero como podemos ver en los resultados, no sobrepasan los límites máximos permisibles, lo que nos demuestra nuevamente que el agua está en óptimas condiciones.
TABLA N° 3 30
LIMITES MAXIMOS PERMISIBLES DE PARAMETROS QUIMICOS INORGANICOS.
3.3.7. DETERMINACION DE SULFATOS. El ion sulfato es abundante en aguas naturales. Un amplio rango de concentraciones se encuentra presente en aguas de lluvias, y su determinación proporciona valiosa información respecto a la contaminación y a los fenómenos ambientales. Al igual que los cloruros, el contenido en sulfatos de las aguas naturales es muy variables, y puede ir desde pocos miligramos por litro hasta cientos de miligramos por litros. Los sulfatos pueden tener su origen en que las aguas atraviesen terrenos ricos en yesos o a la contaminación con aguas residuales industriales.
MATERIALES Y METODOLOGIA: 31
MATERIALES Y REACTIVOS: -
Celdas de vidrio.
-
Espectrofotometro.
- Agua destilada. -
SulfaVer 4.
-
Fichas de datos.
-
Guantes.
METODOLOGIA: - Agitar la muestra de agua para que esta esté bien disuelta, - Llenar una celda con 25ml de la muestra y otros 25 ml de agua destilada para nuestro blanco (muestra para la calibración del espectrofotómetro).
- Agregar a la celda el contenido de una bolsa de polvo de reactivo de Sulfato SulfaVer 4 a la celda.
- Programar el espectrofotómetro con el tiempo establecido para que reaccione el reactivo. El tiempo es de 5 minutos para determinar el color, lo mismo para la muestra de agua destilada (el blanco).
32
- Cuando haya transcurrido los 5 minutos se deberá colocar el blanco en el soporte de la celda para calibrar el equipo y ponerlo a cero.
- Colocar la muestra preparada en el soporte de la celda, quedara un depósito de polvo después de disolver el reactivo SulfaVer 4 y no afectara al resultado.
RESULTADOS: El contenido de sulfatos no suele presentar problema de potabilidad a las aguas de consumo, pero en ocasiones, contenidos superiores a 300 mg/l pueden ocasionar trastornos gastrointestinales en los niños. Se sabe que los sulfatos de sodio y magnesio pueden tener acción laxante, por lo que no es deseable un exceso de los mismos en las aguas de bebida.
REDES DE DISTRIBUCION MES NOVIEMBRE DICIEMBRE
SULFATOS
78.333 76.667
33
ENERO
110.42
FEBRERO
30.917
MARZO ABRIL MAYO
24.750 23.333 35.417
La reglamentación técnico-sanitaria peruana establece como valor orientador de calidad como límite máximo 250 mg/l de concentración máxima admisible, y como podemos observar en los resultados, el agua una vez más está en óptimas condiciones para el consumo humano. Ver tabla N° 01 y tabla N°02.
3.3.8. DETERMINACION DE DUREZA. La dureza del agua se define como la concentración de todos los cationes metálicos no alcalinos presentes (iones de calcio, estroncio, bario y magnesio en forma de carbonatos o bicarbonatos) y se expresa en equivalentes de carbonato de calcio y constituye un parámetro muy significado en la calidad del agua. Esta cantidad de sales afecta la capacidad de formación de espuma de detergentes en contacto con agua y representa una serie de problemas de incrustación en equipo industrial y doméstico, además de resultar nociva para el consumo humano.
MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS: - Probeta. -
Vasos precipitados.
- Buffer. -
Titulador EDTA.
-
Agitador magnético. 34
- CaCO3. -
Ficha de datos.
- Guantes.
METODOLOGIA: -
Hacer una dilución 50 en 100 de la muestra de agua, en una probeta de 100 ml verter 50ml de la muestra y 50 ml de agua destilada.
-
Verter la muestra en un vaso precipitado y colocar el reactivo en polvo con 5 ml de la solución Buffer solución de Dureza PH 10.
-
Agitar la muestra en nuestro equipo agitador magnético Escoger un tamaño de muestra y un cartucho de titulación EDTA correspondiente al calcio esperado como concentración de carbonato de calcio (CaCO3).
-
Si la salinidad es más del 2% se escoge el EDTA con la mayor concentración.
-
Una vez que la muestra haya cambiado de un color rosa a azul se procede a contar los dígitos del titulador y anotarlos en nuestra ficha de datos.
35
RESULTADOS: Para los resultados de dureza en agua potable se toma en cuenta los dígitos del titulador al cambio de color de nuestra muestra, t ambién se toma en cuenta la turbiedad del agua, en agua tratada (agua potable) la dilución es de 50 en 100. REDES DE DISTRIBUCION MES
DUREZA
NOVIEMBRE
234.583
DICIEMBRE
209.583
ENERO
179.17
FEBRERO
154
MARZO
62.500
ABRIL
65.833
MAYO
92.333
Los resultados de la dureza no exceden los limiten máximos permisibles, para el caso de agua potable según norma no debe de exceder los 500 mg CaCO/l. ver tabla N° 01 y tabla N° 02.
36
3.3.9. DETERMINACION DE CLORUROS. El ion cloruro es uno de los iones inorgánicos que se encuentran en mayor cantidad en aguas naturales, residuales y residuales tratadas, su presencia es necesaria en aguas potables. En agua potable, el sabor salado producido por la concentración de cloruros es variable. En algunas aguas conteniendo 25 mg Cl- /L se puede detectar el sabor salado si el catión es sodio. Por otra parte, éste puede estar ausente en aguas conteniendo hasta 1g Cl- /L cuando los cationes que predominan son calcio y magnesio. Un alto contenido de cloruros puede dañar estructuras metálicas y evitar el crecimiento de plantas. Las altas concentraciones de cloruro en aguas residuales, cuando éstas son utilizadas para el riego en campos agrícolas deteriora, en forma importante la calidad del suelo. Es entonces importante el poder determinar la concentración de cloruros en la planta de tratamiento.
MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS: -
Probeta.
-
Vasos precipitados.
-
Reactivo Chloride.
- Agitador magnético. -
Titulador EDTA.
-
Fichas de datos
-
Guantes.
METODOLOGIA: -
Hacer una dilución 50 en 100 de la muestra de agua, en una probeta de 100 ml verter 50ml de la muestra y 50 ml de agua destilada.
-
Verter la muestra en un vaso precipitado y colocar el reactivo en polvo CHLORIDE.
-
Agitar la muestra en el equipo agitador magnético. 37
-
Escoger un tamaño de muestra y un cartucho de titulación EDTA correspondiente a cloruros.
-
Si la salinidad es más del 2% se escoge el EDTA con la mayor concentración.
-
Una vez que la muestra haya cambiado a un color rosa se procede a contar los dígitos del titulador y anotarlos en la hoja de datos.
RESULTADOS: Para los resultados de cloruros en agua potable, al igual que en dureza, se toma en cuenta los dígitos del titulador al cambio de color de la muestra, también se toma en cuenta la turbiedad del agua, mientras más turbia este la dilución será mayor en la determinación de cloruros en agua tratada (agua potable), la dilución es de 50 en 100. Los resultados que se muestran a continuación, son los promedios de cada mes.
38
REDES DE DISTRIBUCION MES
CLORUROS
NOVIEMBRE
206.250
DICIEMBRE
199.583
ENERO
197.08
FEBRERO
153.333
MARZO
46.583
ABRIL
44.583
MAYO
91.000
Los resultados de cloruros en aguas tratadas no exceden los limiten máximos permisibles, que para el caso de agua potable según norma no debe de exceder los 250 mg /l. ver tabla N° 01 y tabla N° 02.
3.4.
ANALISIS BACTEREOLOGICO. La determinación de la calidad bacteriológica tiene gran importancia en el ámbito de la salud pública ya que permite garantizar la inocuidad del
agua
destinada
al
consumo
evitando
así
epidemias
gastrointestinales. El agua destinada al consumo humano puede ser contaminada por las agua residuales o por desechos humanos y animales
que
pueden
contener
microorganismos
patógenos
(principalmente intestinales) como son los causantes de la tifoidea (Salmonella typhi), la disentería (Shigella dysenterieae) o el cólera (Vibrio cholerae) entre otros.
MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y RECATIVOS: -
Placas Petri.
- Pinzas. - Alcohol. - Mechero. -
Caldo m- Endo Broth Ampules.
-
Caldo m-FC Broth Ampules.
-
Caldo m-TGE. 39
- Almuadillas. - Membrana -
Equipo filtrado al vacío.
-
Agua destilada.
- Incubadora. - Esterilizador. - Guantes. - Barbijo. - Gorros. - Mandil.
40
METODOLOGIA: Para la toma de muestras en las Redes y Planta se toma en frascos de vidrio debidamente esterilizados, se prepara el área de trabajo en el laboratorio de microbiología limpia y desinfectada y con los implementos necesarios para el análisis, se preparan las placas Petri rotuladas, una para cada tipo de análisis (coliformes fecales, totales y bacterias heterotróficas). Método de conteo en placas de filtración de membrana -
Colocar una almohadilla absorbente esterilizada en una placa Petri rotulada, utilizar las pinzas esterilizadas (no tocar la almohadilla, ni el interior de la placa Petri), para la esterilización de las pinzas sumergirlas en alcohol y quemarlas en un mechero.
-
Abrir una ampolla de caldo m- Endo Broth Ampules verter las ampollas de Coliformes Totales, el caldo m-FC Broth Ampules para Coliformes Fecales y Caldo m-TGE, ampollas plásticas para Bacterias Heterotróficas, verter los contenidos en forma uniforme sobre la almohadilla absorbente. Y tapar la placa Petri.
-
Armar el aparato de filtro de membrana, con las pinzas esterilizadas colocar un filtro de membrana.
-
Agitar la muestra para mezclar, verter 100 ml de la muestra, aplicar al equipo filtrado al vacío y filtrar la muestra.
-
Apagar el vacío y levantar la parte superior del embudo. Con las pinzas esterilizadas transferir el filtro a la placa Petri previamente preparada.
-
Verificar que el filtro este bien colocado y asegurarse de que el filtro este en contacto con toda la almohadilla y tapar la placa Petri.
-
Colocar la placa Petri en la incubadora a 35°C durante 24 horas.
-
Retirar la placa Petri de la incubadora y realizar el recuento de colonias si es que las tuviera.
41
RESULTADOS: Los resultados obtenidos para el control microbiológico de aguas de captación y conexiones domiciliarias cumplen con las normas para el control de colonias en coliformes fecales, totales y bacterias heterotróficas. Los resultados que se muestran a continuación, son los promedios de cada mes.
42
N°
COMPONENTES
MES
N° L.M.P. MUES. UNI. TOTAL HIDR.
Tipo PLANTA DE TRATAMIENTO
NOV. DIC.
ENER FEB.
MAR.
ABR. MAYO
1
Coliformes totales (') coliformes termotolerantes (') Bacterias heterotróficas (')
Fuente Superficial
0
10
0
0
0
0
0
0
0
0
10
0
0
0
0
0
0
0
10
1.66
0.25
0.25
0.25
0.7
0.25
0.25
3000
5
188
1300
235
130.25
2040
1350
1175
2000
5
121
800
56.25
110.75
1340
600
500
-
5
151
875
305
100
952
525
1200
0
48
0
0
0
0
0
0
0
0
48
0
0
0
0
0
0
0
12
0.3
0.33
0
0.417
0.3
0.3
0.25
1
Coliformes totales (*) Coliformes termotolerantes(*) Bacterias heterotróficas (') Red de Distribución Coliformes totales
12
Coliformes termotolerantes Bacterias heterotróficas
Los resultados para estos tipos de bacterias son satisfactorios a pesar de la turbidez, ya que dentro de las redes y conexiones domiciliarias no se encontró ninguna colonia de bacterias. A deferencia de captación ya que ahí si se encuentran de 10 colonias a más en coliformes fecales, totales y heterotróficas. Lo que nos demuestra nuevamente que el tratamiento de agua para consumo humano es de buena calidad. Ver tabla N° 4.
43
44
TABLA N° 4 LIMITES MAXIMOS PERMISIBLES DE PARAMETROS MICROBIOLOGICOS Y PARASITOLOGICOS.
45
3.5.
PRUEBA DE JARRAS. En la Planta de tratamiento de agua de Seda Juliaca, se realizaron ensayos de tratabilidad con el coagulante Policloruro de Aluminio con el fin de determinar las dosis óptimas requeridas para la remoción de turbiedad y color en diferentes muestras de agua recogidas. Cada muestra recogida presentaba valores significativos en cuanto a turbiedad y color con el fin de obtener un rango amplio para analizar. Las pruebas de jarras se utilizan para determinar la dosis más efectiva de coagulante para el agua para la remoción de turbidez y otros. Durante el control de la coagulación y la floculación las pruebas de jarras con coagulantes requieren un equipo que nos permite trabajar simultáneamente 06 vasos, y que consiste en 6 paletas interconectadas a un regulador de velocidad, con el cual se puede dar la misma agitación, durante el mismo tiempo a los 6 vasos.
MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS: -
Vasos precipitados
-
Equipo de prueba de jarras.
-
Policloruro de aluminio.
-
Agua destilada.
- Cronometro. - Vasos. - Jeringas. - Fiolas. - Pipetas. 46
- Tubidimetro. -
PH metro.
-
Filtro hach.
- Conductivimetro. - Guantes. -
Ficha de notas.
METODOLOGIA: -
Tomar la muestra del rio Coata.
-
Colocar un vaso de 2 litros de cada una de las paletas de agitación.
-
Colocar en cada vaso exactamente 2 litros de la muestra de agua
-
Anotar en la hoja de datos la cantidad de coagulante que se debe añadir a cada vaso esta cantidad variara de vaso a vaso.
-
Con cada pipeta, añadir el coagulante en cantidades crecientes en vasos sucesivos.
-
Colocar las paletas de agitación dentro de los vasos, arrancar el agitador y operarlo se vierte la dosis del coagulante (poli cloruró de aluminio) en cada vaso durante 15 segundos a una velocidad de 240 RPM.
-
Reducir la velocidad después de los 15 segundos a 40 RPM durante 10 minutos mientras se forman los floculos.
-
Anotar cuanto tiempo transcurre cuando se empiece a formar los floculos en cada jarra.
-
Una vez que transcurre el periodo de agitación, detener el agitador, el tiempo para que el floculo se sedimente es de 15 minutos.
-
Después de permitir que el floculo se asiente durante 15 segundos determinar el PH y la turbiedad de cada jarra.
-
En las hojas de registro se deben anotar las dosis, tiempo y velocidad del mezclado, pH, turbiedad características de crecimiento de los floculos.
-
Después de permitir que el floculo se asiente filtrar el agua en papel filtro tipo HACH de la jarra optima de dosificación. 47
-
Filtrar 100 ml a 150 ml de muestra para el análisis de aluminio.
-
Determinar el pH, turbiedad, conductividad, salinidad, solidos totales suspendidos, temperatura del agua cruda.
RESULTADOS: Los resultados de estos análisis que se realizan al mes dos veces, demuestra la efectividad del poli cloruro de aluminio en la coagulación de solidos suspendidos para la remoción de la turbiedad y otros. Lo que garantiza un mejor tratamiento para el agua potable.
48
3.6.
PURGAS EN RESDES DE AGUA POTABLE. Las purgas en redes o limpieza de las tuberías de distribución de agua potable se realizan cada 6 meses o trimestralmente. Con la finalidad de limpiar las aguas estancadas dentro de las tuberías, porque estas generan turbidez e impiden que el agua tratada sea recibida de la misma calidad que fue enviada a los grifos de las viviendas. En cada uno de los grifos ubicados por toda la ciudad realizamos las siguientes actividades:
MATERIALES Y METODOLOGIA: MATERIALES Y REACTIVOS: -
Botella de plástico
- Colorímetro. -
DPD (libre y total).
-
Ficha de notas.
- Lapiceros.
METODOLOGIA: -
Limpieza exterior, retirando las piedras y malezas de la zona aledaña.
-
Abrir las tapas y verificar el estado de los grifos.
-
Abrir el grifo con la llave estilsón o si el grifo se abre con válvula abrir con y una llave tipo te.
-
Anotar en la hoja de datos la hora en que se abre el grifo y la hora en que se cierra el grifo, también anotar las condiciones en las que se encuentra el grifo.
-
En una botella rotulada recibir la primera muestra inicial unos segundos después de abrir el grifo.
-
Una vez que agua haya corrido y sea más limpia medir el cloro total y el cloro residual del agua.
-
Tomar una muestra final del agua en una botella rotulada.
-
Medir la presión y el caudal del grifo. 49
RESULTADOS: Las labores realizadas durante las purgas o limpieza de tuberías fue satisfactoriamente ya que realizaron por toda la ciudad, para brindar una mejor calidad de agua a la población y con las respectivas capacitaciones a los pobladores a tener conciencia ambiental en cuanto al cuidado de los grifos y a tener un mejor uso del agua para una mejor calidad de vida.
50
IV.
CONCLUSIONES.
CONCLUSION GENERAL. Se aplicó los conocimientos teóricos y prácticos otorgados en la formación universitaria, y se aprendió la manera adecuada del funcionamiento de todos los procesos de producción y tratamiento de la planta de tratamiento.
CONCLUSIONES ESPECÍFICAS. -
En el tiempo que duro las prácticas pre profesionales en la empresa tuve la oportunidad de aprender a dar educación sanitaria a la población en los monitoreos frecuentes que tuve y a aplicar los planes de control de calidad de los proveedores de agua para consumo humano.
-
Se realizó el análisis fisicoquímico satisfactoriamente, y se logró dominar la forma correcta del análisis fisicoquímico.
-
Se logró conocer los diferentes procesos productivos así como el manipular los instrumentos y materiales de laboratorio de acuerdo a los requerimientos de los procesos.
-
Por ser la primera experiencia en una planta de tratamiento de agua potable se logró obtener mayor responsabilidad en el campo laborar como así ampliar el conocimiento práctico en base al tiempo otorgado por la empresa durante las prácticas pre profesionales y ampliar los conocimientos ya obtenidos en mi formación universitaria.
51
V.
-
RECOMENDACIONES.
Realizar una capacitación constante a la población sobre el uso adecuado del agua potable.
-
Implantar el uso de obligatorio de los equipos de seguridad del personal de laboratorio para el uso de algunos reactivos peligrosos.
-
Realizar un plan de ampliación de la planta ya que este por ser de menor tamaño no abastece a toda la población.
-
Incorporar estrategias para abordar la gestión cotidiana de la calidad del agua y hacer frente a las alteraciones y averías.
-
Implementar acciones para el cambio de las tuberías de fierro fundido por las tuberías de PVC para garantizar una mejor calidad del agua.
52
VI.
REFERENCIAS.
-
HACH COMPANY (970) 669-3050 LOVELAND, COLORADO, EE.UU. 2000, Manual de Análisis de Agua Segunda Edición en español.
-
DR. ING. GUILLERMO ETIENNE 1ra EDICIÓN ELECTRÓNICA, ENERO DE 2009, Potabilización y Tratamiento de Agua.
-
ING. YOLANDA ANDÍA CÁRDENAS. LIMA, ABRIL DEL 2000, Tratamiento de Agua Coagulación y Floculación.
-
E.P.S. SEDA JULIACA S.A. Plan Maestro Optimizado.
-
-
DIRECCIÓN GENERAL DE SALUD AMBIENTAL MINISTERIO DE SALUD LIMA – PERÚ 2011, Reglamento de la Calidad del Agua para Consumo Humano DS N° 031-2010-SA. MEMORIA DESCRIPTIVA DE GERENCIA DE OPERACIONES DE LA EPS SEDA JULIACA S.A., 2010.
- WWW.SEDAJULIACA.COM
53
