SNI 2897.2008 Metode Pengujian Cemaran Mikroba Dlm Daging, Telur,Susu&Olahan

SNI 2897:2008

Standar Nasional Indonesia

Metode pengujian cemaran mikroba dalam daging, telur dan susu, serta hasil olahannya

ICS 67.050

Badan Standardisasi Nasional

SNI 2897:2008

Daftar isi

Daftar isi.....................................................................................................................................i Prakata ..................................................................................................................................... ii 1

Ruang lingkup .................................................................................................................... 1

2

Istilah dan definisi .............................................................................................................. 1

3

Singkatan ........................................................................................................................... 2

4

Metode pengujian .............................................................................................................. 2

Lampiran A (normatif) MPN seri tiga tabung ........................................................................ 31 Bibliografi ............................................................................................................................... 32

i

SNI 2897:2008

Prakata

Standar metode pengujian cemaran mikroba ini meliputi Total Plate Count (TPC), Coliform, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella spp., Campylobacter spp. dan Listeria monocytogenes dalam daging, telur dan susu, serta hasil olahannya, Standar ini merupakan revisi dan penyempurnaan sebagian besar ruang lingkup pengujian dalam SNI 01-2897-1992 Cara uji cemaran mikroba, kecuali pengujian bakteri Enterococci, Clostridium perfringes, dan Vibrio cholerae, serta penambahan pengujian Campylobacter spp. dan Listeria spp. yang disesuaikan dengan perkembangan ilmu pengetahuan dan teknologi (IPTEK) yang berlaku pada saat ini. Standar ini disusun dan dirumuskan setelah melalui validasi pengujian di laboratorium kesehatan masyarakat veteriner. Standar ini disusun dan dirumuskan oleh Panitia Teknis 67-03 Peternakan dan Produk Peternakan. Standar ini telah dibahas dalam rapat teknis pada tanggal 10 September 2007, dan terakhir disepakati dalam rapat konsensus pada tanggal 30 Oktober 2007 di Bogor yang dihadiri oleh anggota Panitia Teknis dan pihak terkait lainnya. Standar ini juga telah melalui tahap jajak pendapat pada tanggal 7 April 2008 sampai dengan 7 Juni 2008, namun untuk mencapai kuorum diperpanjang sampai dengan tanggal 7 Juli 2008 dan langsung disetujui menjadi RASNI. SNI ini disusun untuk mendukung perundangan-undangan Negara Republik Indonesia yang berlaku di bidang keamanan pangan asal hewan.

ii

SNI 2897:2008

Metode pengujian cemaran mikroba dalam daging, telur dan susu, serta hasil olahannya

1

Ruang lingkup

Standar ini menetapkan metode pengujian cemaran mikroba Total Plate Count (TPC), Coliform, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella spp., Campylobacter spp., dan Listeria monocytogenes secara kualitatif dan kuantitatif pada daging, telur dan susu, serta hasil olahannya.

2

Istilah dan definisi

2.1 cemaran mikroba kontaminan jasad renik/mikroba pada daging, telur dan susu, serta hasil olahannya yang dapat merusak produk dan atau membahayakan kesehatan manusia 2.2 daging bagian otot skeletal dari karkas ternak/hewan yang aman, layak dan lazim dikonsumsi oleh manusia, dapat berupa daging segar, daging segar dingin, atau daging beku 2.3 daging olahan daging yang telah mengalami proses pengolahan 2.4 telur telur yang dihasilkan oleh unggas yang belum mengalami proses pengolahan dan pengeraman untuk dikonsumsi manusia 2.5 telur olahan telur yang telah mengalami proses pengolahan 2.6 susu cairan yang berasal dari ambing ternak perah sehat dan bersih, yang diperoleh dengan cara pemerahan yang benar sesuai ketentuan yang berlaku, yang kandungan alaminya tidak dikurangi atau ditambah sesuatu apapun dan belum mendapat perlakuan apapun kecuali proses pendinginan 2.7 susu olahan susu yang telah mengalami proses pengolahan 2.8 Most Probable Number (MPN) perkiraan (estimasi) jumlah mikroba dalam suatu pangan, dengan memupuk pada suatu tingkat pengenceran ke dalam tiga atau lima tabung berisi media cair

1 dari 32

SNI 2897:2008

2.9 Total Plate Count (TPC) cara penghitungan jumlah mikroba yang terdapat dalam suatu produk yang tumbuh pada media agar pada suhu dan waktu inkubasi yang ditetapkan

3

Singkatan

a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) u) v) w) x) y) z) aa) bb) cc) dd) ee) ff) gg) hh)

4

BPW 0,1%:Buffered Pepton Water 0,1%; BGLBB :Brilliant Green Lactose Bile Broth; BHI :Brain Heart Infusion; BHIB: Brain Heart Infusion Broth; BPA :Baird-Parker Agar; BSA :Bismuth Sulfite Agar; CFU : Colony Forming Unit; EDTA :Ethylene Diamine Tetraacetic Acid; ECB :Escherichia Coli Broth; E.coli :Escherichia coli; LEMBA :Levine Eosin Methylene Blue Agar; FBS :Foetal Bovine Serum; HEA :Hektoen Enteric Agar; IMViC: Indole, Methylred, Voges Proskauer dan Citrate; KCN :Kalium Cyanide; KCNB : Kalium Cyanide Broth; LIA :Lysine Iron Agar; LDB :Lysine Decarboxylase Broth; LB :Lactose Broth; LSTB :Lauryl Sulfate Tryptose Broth; MPN :Most Probable Number; MR-VP : Methyl Red-Voges Proskauer; PCA :Plate Count Agar; RV :Rappapport Vassiliadis; S.aureus : Staphylococcus aureus; SCB :Selenite Cystine Broth; TPC :Total Plate Count; TSIA :Triple Sugar Iron Agar; TTB : Tetra Thionate Broth; TSTB :Trypticase Soy Tryptose Broth; TB : Tryptose Broth; XLDA:Xylose Lysine Deoxycholate Agar; KCB : Koser Citrate Broth; SCA : Simmons Citrate Agar.

Metode pengujian

4.1 4.1.1

Pengujian Total Plate Count (TPC) Prinsip

Total Plate Count (TPC) dimaksudkan untuk menunjukkan jumlah mikroba yang terdapat dalam suatu produk dengan cara menghitung koloni bakteri yang ditumbuhkan pada media agar.

2 dari 32

SNI 2897:2008

4.1.2

Media dan reagen

a) PCA; b) BPW 0,1%. 4.1.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) 4.1.4

Peralatan

cawan petri; tabung reaksi; pipet volumetrik; botol media; penghitung koloni (colony counter); gunting; pinset; jarum inokulasi (ose); stomacher; pembakar bunsen; pH meter; timbangan; magnetic stirer; pengocok tabung (vortex); inkubator; penangas air; autoklaf; lemari steril (clean bench); lemari pendingin (refrigerator); freezer. Penyiapan contoh

a) Timbang contoh padat dan semi padat sebanyak 25 g atau ukur contoh cair sebanyak 25 ml secara aseptik, kemudian masukkan dalam wadah steril. b) Untuk contoh daging, telur dan susu Tambahkan 225 ml larutan BPW 0.1 % steril ke dalam kantong steril yang berisi contoh, homogenkan dengan stomacher selama 1 menit sampai dengan 2 menit (kecuali untuk contoh susu cair). Ini merupakan larutan dengan pengenceran 10-1. 4.1.5

Cara uji

a) Pindahkan 1 ml suspensi pengenceran 10-1 tersebut dengan pipet steril larutan 9 ml BPW untuk mendapatkan pengenceran 10-2.

ke dalam

b) Buat pengenceran 10-3, 10-4, 10-5 dan seterusnya dengan cara yang sama seperti pada butir a), sesuai kebutuhan. c) Selanjutnya masukkan sebanyak 1 ml cawan petri secara duplo.

suspensi dari setiap pengenceran ke dalam

d) Tambahkan 15 ml sampai dengan 20 ml PCA yang sudah didinginkan hingga temperatur 45 °C ± 1 °C pada masing-masing cawan yang sudah berisi suspensi. Supaya larutan contoh dan media PCA tercampur seluruhnya, lakukan pemutaran cawan ke depan dan ke belakang atau membentuk angka delapan dan diamkan sampai menjadi padat.

3 dari 32

SNI 2897:2008

e) Inkubasikan pada temperatur 34 °C sampai dengan 36 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam dengan meletakkan cawan pada posisi terbalik. f)

Khusus untuk produk susu, inkubasikan pada temperatur 32 °C ± 1 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam dengan meletakkan cawan pada posisi terbalik.

4.1.6

Penghitungan jumlah koloni

Hitung jumlah koloni pada setiap seri pengenceran kecuali cawan petri yang berisi koloni menyebar (spreader colonies). Pilih cawan yang mempunyai jumlah koloni 25 sampai dengan 250. 4.1.7 4.1.7.1

Interpretasi hasil Cawan dengan jumlah koloni kurang dari 25

Bila cawan duplo dari pengenceran terendah menghasilkan koloni kurang dari 25, hitung jumlah yang ada pada cawan dari setiap pengenceran. Rerata jumlah koloni per cawan dan kalikan dengan faktor pengencerannya untuk menentukan nilai TPC. Tandai nilai TPC dengan tanda bintang (Tabel 1 nomor 3) untuk menandai bahwa penghitungannya diluar 25 koloni sampai dengan 250 koloni per cawan. 4.1.7.2

Cawan dengan jumlah koloni lebih dari 250

Bila jumlah koloni per cawan lebih dari 250, hitung koloni-koloni pada cawan untuk memberikan gambaran penyebaran koloni secara representatif. Tandai penghitungan TPC dengan tanda bintang untuk menandai bahwa penghitungannya diluar 25 koloni sampai dengan 250 koloni per cawan (Tabel 1 nomor 4). 4.1.7.3

Spreaders

Koloni yang menyebar (spreaders) biasanya dibagi dalam 3 bentuk: a) b) c)

Rantai koloni tidak terpisah secara jelas disebabkan oleh disintegrasi rumpun bakteri. Terbentuknya lapisan air antara agar dan dasar cawan. Terbentuknya lapisan air pada sisi atau permukaan agar.

Bila cawan yang disiapkan untuk contoh lebih banyak ditumbuhi oleh spreader seperti (a), dan total area yang melebihi 25 % dan 50 % pertumbuhannya dilaporkan sebagai cawan spreader. Rerata jumlah koloni dari setiap pengenceran, kemudian laporkan jumlahnya sebagai TPC (Tabel 1 nomor 5). Selain 3 (tiga) bentuk spreader, dapat dihitung sebagai satu pertumbuhan koloni. Untuk tipe a) bila hanya terdapat satu rantai, hitunglah sebagai koloni tunggal. Bila ada satu atau lebih rantai yang terlihat dari sumber lain, hitung tiap sumber itu sebagai satu koloni, termasuk untuk tipe b) dan c) juga dihitung sebagai koloni. Gabungkan perhitungan koloni dan perhitungan spreader untuk menghitung TPC. 4.1.7.4

Cawan tanpa koloni

Bila cawan petri dari semua pengenceran tidak menghasilkan koloni, laporkan TPC sebagai kurang dari 1 kali pengenceran terendah yang digunakan. Tandai TPC dengan tanda bintang bahwa penghitungannya diluar 25 koloni sampai dengan 250 koloni (Tabel 1 nomor 6).

4 dari 32

SNI 2897:2008

4.1.7.5 Cawan duplo, cawan yang satu dengan 25 koloni sampai dengan 250 koloni dan cawan yang lain lebih dari 250 koloni Bila cawan yang satu menghasilkan koloni antara 25 sampai dengan 250 dan yang lain lebih dari 250 koloni, hitung kedua cawan dalam penghitungan TPC (Tabel 1 nomor 7). 4.1.7.6 Cawan duplo, satu cawan dari setiap pengenceran dengan 25 koloni sampai dengan 250 koloni Bila 1 cawan dari setiap pengenceran menghasilkan 25 koloni sampai dengan 250 koloni, dan cawan lain kurang dari 25 koloni atau menghasilkan lebih dari 250 koloni, hitung keempat dalam penghitungan TPC (Tabel 1 nomor 8). 4.1.7.7 Cawan duplo, dua cawan dari satu pengenceran dengan 25 koloni sampai dengan 250 koloni, hanya 1 cawan yang lebih dari 25 koloni sampai dengan 250 koloni dan dari cawan yang lain dengan 25 koloni sampai dengan 250 koloni Bila kedua cawan dari satu pengenceran menghasilkan 25 koloni sampai dengan 250 koloni, hitung keempat cawan termasuk cawan yang kurang dari 25 atau yang lebih dari 250 koloni dalam penghitungan TPC (Tabel 1 nomor 9). 4.1.8

Pelaporan hasil

a) Bulatkan angka menjadi 2 angka yang sesuai, bila angka ketiga 6 atau di atasnya, maka angka ketiga menjadi 0 (nol) dan angka kedua naik 1 angka, misalnya 456 menjadi 460 (4,6 x 102). b) Bila angka ketiga 4 atau dibawahnya, maka angka ketiga menjadi 0 (nol) dan angka kedua tetap, misalnya 454 menjadi 450 (4,5 x 102). c) Bila angka ketiga 5, maka angka tersebut dapat dibulatkan menjadi 0 (nol) dan angka kedua adalah angka genap, misalnya 445 menjadi 440 (4,4 x 102). d) Bila angka ketiganya 5, maka angka tersebut dapat dibulatkan menjadi 0 (nol) dan angka kedua naik 1 angka, misalnya 455 menjadi 460 (4,6 x 102).

5 dari 32

SNI 2897:2008

Tabel 1 - Petunjuk penghitungan TPC No

10 -2

10-3

10-4

(1)

(2)

(3)

(4)

TPC per ml atau gram (5)

1

=== ===

175 208

16 17

190.000

=== ===

224 225

25 30

250.000

18 14

2 0

0 0

1.600*

=== ===

==== ====

523 487

5.100.000

=== ===

245 230

35 spreader

290.000

0 0

0 0

0 0

100*

=== ===

245 278

23 20

260.000

=== ===

225 255

21 40

270.000

=== ===

220 240

18 48

260.0000

=== ===

260 230

30 28

2

3

4

5

6 7

8

9

4.2 4.2.1

270.000

Keterangan (6) bila hanya satu pengenceran yang berada dalam batas yang sesuai, hitung jumlah rerata dari pengenceran tersebut. bila ada dua pengenceran yang berada dalam batas yang sesuai, hitung jumlah masingmasing dari pengenceran sebelum merataratakan jumlah yang sebenarnya. Jumlah koloni kurang dari 25 koloni pada pengenceran terendah, hitung jumlahnya dan kalikan dengan faktor pengencerannya dan beri tanda * (diluar jumlah koloni 25 sampai dengan 250). Jumlah koloni lebih dari 250 koloni, hitung koloni yang dapat dihitung atau yang mewakili beri tanda* (diluar jumlah koloni 25 sampai dengan 250). Bila ada dua pengenceran diantara jumlah koloni 25 sampai dengan 250, tetapi ada spreader, hitung jumlahnya dan kalikan dengan faktor pengenceran, namun untuk spreader tidak dihitung. Bila cawan tanpa koloni, jumlah TPC adalah kurang dari 1 kali pengenceran terendah yang digunakan, dan beri tanda* Jumlah koloni 25 sampai dengan 250, dan yang lain lebih dari 250 koloni, hitung kedua cawan petri termasuk yang lebih dari 250 koloni, dan rerata jumlahnya. Bila salah satu cawan dengan jumlah 25 koloni sampai dengan 250 koloni dari tiap pengenceran, hitung jumlah dari tiap pengenceran termasuk yang kurang dari 25 koloni, lalu rerata jumlah yang sebenarnya. Bila hanya satu cawan yang menyimpang dari setiap pengenceran, hitung jumlah dari tiap pengenceran termasuk yang kurang dari 25 koloni atau lebih dari 250 koloni, kemudian rerata jumlah sebenarnya.

Pengujian Most Probable Number (MPN) Coliform Prinsip

Metode Most Probable Number (MPN) terdiri dari uji presumtif (penduga) dan uji konfirmasi (peneguhan), dengan menggunakan media cair di dalam tabung reaksi dan dilakukan berdasarkan jumlah tabung positif. Pengamatan tabung positif dapat dilihat dengan timbulnya gas di dalam tabung Durham.

6 dari 32

SNI 2897:2008

4.2.2 a) b) c)

Media dan reagen larutan BPW 0,1 %; BGLBB; LSTB.

4.2.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s)

Peralatan

tabung Durham; tabung reaksi; pipet ukuran 1 ml,2 ml,5 ml,10 ml; botol media; gunting; pinset; jarum inokulasi (ose); stomacher; pembakar bunsen; pH meter; timbangan; magnetic stirer; pengocok tabung (vortex); inkubator; penangas air; autoklaf; lemari steril (clean bench); lemari pendingin (refrigerator); freezer.

4.2.4

Penyiapan contoh

a) Timbang contoh padat dan semi padat sebanyak 25 g atau ukur contoh cair sebanyak 25 ml secara aseptik kemudian masukkan dalam wadah steril. b) Untuk contoh daging, telur dan susu Tambahkan 225 ml larutan BPW 0,1 % steril ke dalam kantong steril yang berisi contoh, homogenkan dengan stomacher selama 1 menit sampai dengan 2 menit (kecuali untuk contoh susu cair). Ini merupakan larutan dengan pengenceran 10-1. 4.2.5

Cara uji

Pengujian menggunakan seri 3 tabung. 4.2.5.1

Uji pendugaan

a) Pindahkan 1 ml larutan pengenceran 10-1 tersebut dengan pipet steril ke dalam larutan 9 ml BPW 0,1 % untuk mendapatkan pengenceran 10-2. Dengan cara yang sama seperti di atas dibuat pengenceran 10-3. b) Pipet masing-masing 1 ml dari setiap pengenceran ke dalam 3 seri tabung LSTB yang berisi tabung Durham. c) Inkubasi pada temperatur 35 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam. d) Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas. 7 dari 32

SNI 2897:2008

4.2.5.2

Uji konfirmasi (peneguhan)

a) Pengujian selalu disertai dengan kontrol positif. b) Pindahkan biakan positif dari 4.2.5.1 d) dengan menggunakan jarum inokulasi dari setiap tabung LSTB ke dalam tabung BGLBB yang berisi tabung Durham. c) Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam. d) Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas. e) Selanjutnya gunakan tabel Most Probable Number (MPN) untuk menentukan nilai MPN berdasarkan jumlah tabung BGLBB yang positif sebagai jumlah koliform per mililiter atau per gram. 4.2.6

Interpretasi hasil

Banyaknya koliform yang terdapat dalam contoh uji diinterpretasikan dengan mencocokkan kombinasi jumlah tabung yang memperlihatkan hasil positif, berdasarkan tabel nilai MPN (Lampiran A). Kombinasi yang diambil, dimulai dari pengenceran tertinggi yang masih menghasilkan semua tabung positif, sedangkan pada pengenceran berikutnya terdapat tabung yang negatif. Kombinasi yang diambil terdiri dari tiga pengenceran. Nilai MPN contoh dihitung sebagai berikut:

MPN contoh ( MPN/ml atau MPN/g) =

4.3 4.3.1

nilai MPN tabel x faktor pengenceran yang di tengah 100

Pengujian MPN Escherichia coli Prinsip

Pengujian dilakukan dengan uji pendugaan, uji peneguhan dan isolasi-identifikasi melalui uji biokimia Indole, Methyl red, Voges-Proskauer dan Citrate (IMViC). 4.3.2 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k)

Media dan reagensia BPW 0,1 %; BGLBB; LSTB; ECB; L-EMBA; MR-VP; PCA; KCB; SCA; Reagen Kovas; Reagen Voges-Proskauer (VP).

8 dari 32

SNI 2897:2008

4.3.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t)

Peralatan

tabung Durham; cawan Petri; tabung reaksi; pipet ukuran 1 ml,2 ml,5 ml,10 ml; botol media; gunting; pinset; jarum inokulasi (ose); stomacher; pembakar bunsen; pH meter; timbangan; magnetic stirer; pengocok tabung (vortex); inkubator; penangas air; autoklaf; lemari steril (clean bench); lemari pendingin (refrigerator); freezer.

4.3.4

Penyiapan contoh

a)

Timbang contoh padat dan semi padat sebanyak 25 g atau ukur contoh cair sebanyak 25 ml secara aseptik kemudian masukkan dalam wadah steril.

b)

Untuk contoh daging, telur dan susu Tambahkan 225 ml larutan BPW 0,1 % ke dalam kantong steril yang berisi contoh, homogenkan dengan stomacher selama 1 menit sampai dengan 2 menit (kecuali untuk contoh susu cair). Ini merupakan larutan dengan pengenceran 10-1.

4.3.5

Cara uji

Pengujian menggunakan seri 3 tabung, uji isolasi-identifikasi, dan uji biokima. 4.3.5.1 4.3.5.1.1

Seri 3 tabung Uji pendugaan

a)

Pindahkan 1 ml larutan pengenceran 10-1 tersebut dengan pipet steril ke dalam larutan 9 ml BPW 0,1 % untuk mendapatkan pengenceran 10-2. Dengan cara yang sama seperti di atas dibuat pengenceran 10-3.

b)

Pipet masing-masing 1 ml dari setiap pengenceran ke dalam 3 seri tabung LSTB yang berisi tabung Durham.

c)

Inkubasi pada temperatur 35 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam.

d)

Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas.

9 dari 32

SNI 2897:2008

4.3.5.1.2

Uji konfirmasi (peneguhan)

a) Pengujian harus selalu disertai dengan menggunakan kontrol positif. b) Pindahkan biakan positif dari 4.3.5.1.1 d) dengan menggunakan jarum inokulasi dari setiap tabung LSTB ke dalam tabung ECB yang berisi tabung Durham. c) Inkubasikan ECB pada temperatur 45,5 °C selama 24 jam ± 2 jam, jika hasilnya negatif inkubasikan kembali selama 48 jam ± 2 jam. d) Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas. e) Selanjutnya gunakan tabel Most Probable Number (MPN) untuk menentukan nilai MPN berdasarkan jumlah tabung ECB yang positif mengandung gas di dalam tabung Durham sebagai jumlah E.coli per mililiter atau per gram. 4.3.5.1.3

Interpretasi hasil

Banyaknya koliform yang terdapat dalam contoh uji diinterpretasikan dengan mencocokkan kombinasi jumlah tabung yang memperlihatkan hasil positif, berdasarkan tabel nilai MPN (Lampiran A). Kombinasi yang diambil, dimulai dari pengenceran tertinggi yang masih menghasilkan semua tabung positif, sedangkan pada pengenceran berikutnya terdapat tabung yang negatif. Kombinasi yang diambil terdiri dari tiga pengenceran. Nilai MPN contoh dihitung sebagai berikut :

MPN contoh ( MPN/ml atau MPN/g) =

4.3.5.2

nilai MPN tabel x faktor pengenceran yang di tengah 100

Isolasi-identifikasi

a) Buat goresan pada media L-EMBA atau VRBA dari tabung ECB yang positif, inkubasi pada temperatur 35 °C selama 18 jam sampai dengan 24 jam. b) Koloni yang diduga E. coli berdiameter 2 mm sampai dengan 3 mm, warna hitam atau gelap pada bagian pusat koloni, dengan atau tanpa metalik kehijauan yang mengkilat pada media L-EMBA. c) Ambil koloni yang diduga dari masing-masing media L-EMBA dengan menggunakan ose, dan pindahkan ke PCA miring. Inkubasikan PCA miring pada temperatur 35 °C selama 18 jam sampai dengan 24 jam untuk uji biokimia. 4.3.5.3 4.3.5.3.1

Uji biokimia dengan uji IMViC. Uji produksi indole

a) Inokulasikan koloni dari tabung PCA pada TB dan inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam. b) Tambahkan 0,2 ml sampai dengan 0,3 ml reagen Kovac. c) Hasil reaksi positif ditandai dengan adanya bentuk cincin merah pada lapisan atas media, sedangkan hasil reaksi negatif ditandai dengan terbentuknya cincin kuning.

10 dari 32

SNI 2897:2008

4.3.5.3.2

Uji Voges-Proskauer (VP)

a) Ambil biakan dari media PCA lalu inokulasikan ke tabung yang berisi 10 ml media MRVP dan inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam. b) Pindahkan 5 ml MR-VP ke tabung reaksi dan tambahkan 0.6 ml larutan α-naphthol dan 0.2 ml KOH 40 %, kemudian digoyang-goyang. c) Hasil reaksi positif ditandai adanya warna merah muda eosin dalam waktu 2 jam. 4.3.5.3.3

Uji Methyl Red (MR)

a) Ambil biakan dari media PCA lalu inokulasikan ke tabung yang berisi 10 ml media MRVP dan inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam. b) Tambahkan 2 tetes sampai dengan 5 tetes indikator MR pada tabung. c) Hasil uji positif ditandai adanya warna merah dan hasil reaksi negatif ditandai adanya warna kuning. 4.3.5.3.4

Uji citrate

a) Inokulasikan koloni dari media Agar miring PCA ke dalam media KCB, dan inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 96 jam. b) Hasil uji positif ditandai dengan terbentuknya kekeruhan pada media. 4.3.5.3.5

Interpretasi hasil uji biokimia

Klasifikasi E. coli adalah Reaksi IMViC dengan pola + + - - atau - + - - (Tabel 2),

Tabel 2 - Hasil reaksi Indole, Methyl Red, Voges- Proskauer, Citrate (IMViC) terhadap E. coli Tipe Organisme E. coli spesifik E. coli non spesifik Typical intermediate Atypical intermediate Typical Enterobacter aerogenes Atypical Enterobacter aerogenes 4.3.6

Indol + N/A +

MR + + + + -

VP + +

Citrate + + + +

Interpretasi hasil akhir

Jumlah E. coli dinyatakan berdasarkan hasil MPN, Isolasi - identifikasi, dan uji biokimia.

11 dari 32

SNI 2897:2008

4.4 4.4.1

Pengujian jumlah Staphylococcus aureus Prinsip

Metode yang digunakan adalah dengan hitung cawan secara sebar pada permukaan media. 4.4.2 a) b) c) d) e) f) 4.4.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) 4.4.4

Media dan reagensia BPA; Egg yolk tellurite emultion; BHIB; TSA; koagulase plasma kelinci (coagulate rabbit plasma) dengan EDTA 0,1 %; BPW 0,1 %. Peralatan cawan petri; tabung reaksi; pipet ukuran 1 ml,2 ml,5 ml,10 ml; botol media; batang gelas bengkok (hockey stick); gunting; pinset; jarum inokulasi (ose); stomacher; pembakar bunsen; pH meter; timbangan; magnetic stirer; pengocok tabung (vortex); inkubator; penangas air; autoklaf; lemari steril (clean bench); lemari pendingin (refrigerator); freezer. Penyiapan contoh

a) Untuk contoh susu (cair) Contoh yang diuji dimulai dari pengenceran 100 (contoh tanpa pengenceran), kemudian dibuat seri pengenceran 10-1, 10-2, 10-3, dan seterusnya. b) Untuk contoh daging, telur dan susu (padat dan semi padat) Timbang contoh padat dan semi padat sebanyak 25 g atau ukur contoh cair sebanyak 25 ml, secara aseptik kemudian masukkan dalam wadah steril. c) Tambahkan 225 ml larutan BPW steril ke dalam kantong steril yang berisi contoh, lalu homogenkan dengan stomacher selama 1 menit sampai dengan 2 menit. Ini merupakan larutan dengan pengenceran 10-1, kemudian dibuat pengenceran 10-1, 10-2 , 10-3, dan seterusnya.

12 dari 32

SNI 2897:2008

4.4.5 a) b)

Cara uji

Pengujian selalu disertai dengan menggunakan kontrol positif. Pindahkan 1 ml contoh dari 100 ke dalam larutan 9 ml BPW untuk mendapatkan pengenceran 10-1. Dengan cara yang sama dibuat pengenceran 10-2, 10-3, dan seterusnya. Untuk contoh susu cair dimulai dari pengenceran 10-0 ,sedangkan untuk contoh daging, telur, dan susu (padat dan semi padat) mulai pengenceran 10-1.

c) Tuang 15 ml sampai dengan 20 ml media BPA yang sudah ditambah dengan egg yolk tellurite emulsion (5 ml ke dalam 95 ml media BPA) pada masing-masing cawan yang akan digunakan dan biarkan sampai memadat. d) Pipet 1 ml suspensi dari setiap pengenceran, dan diinokulasikan masing-masing 0,4 ml, 0,3 ml, dan 0,3 ml pada 3 cawan petri yang berisi media pada huruf c di atas. e) Ratakan suspensi contoh di atas permukaan media agar dengan menggunakan batang gelas (hockey stick), dan biarkan sampai suspensi terserap. f)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 45 jam sampai dengan 48 jam pada posisi terbalik.

g) Pilih cawan petri yang mengandung jumlah koloni 20 sampai dengan 200. Apabila cawan petri pada pengenceran terendah berisi < 20 koloni dan atau > 200 koloni, maka lanjutkan penghitungan koloni pada cawan petri dengan pengenceran yang lebih tinggi. h) Koloni S. aureus mempunyai ciri khas bundar, licin dan halus, cembung, diameter 2 mm sampai dengan 3 mm, berwarna abu-abu sampai hitam pekat, dikelilingi zona opak, dengan atau tanpa zona luar yang terang (clear zone). Tepi koloni putih dan dikelilingi daerah yang terang. Konsistensi koloni seperti mentega atau lemak jika disentuh oleh ose. Galur non-lipolitik memiliki sifat koloni sama seperti di atas, tetapi tidak dikelilingi zona opak dan zona luar yang terang. i) j)

Catat jumlah masing-masing koloni yang mempunyai ciri seperti pada h). Ambil satu atau lebih koloni dari masing-masing bentuk yang tumbuh dan lakukan uji identifikasi.

4.4.6 4.4.6.1

Uji identifikasi Pengecatan Gram

Ambil satu atau lebih koloni dari masing-masing bentuk koloni yang tumbuh dan lakukan Pengecatan Gram. Hasil Pengecatan gram akan terlihat bakteri berbentuk kokus berwarna ungu (Gram positif), bergerombol seperti anggur atau terlihat hanya satu bakteri. 4.4.6.2

Uji koagulase

a) Ambil satu atau lebih koloni yang diduga Staphylococcus aureus dan masukkan ke dalam 0,2 ml sampai 0,3 ml BHIB dan homogenkan. b) Ambil satu ose penuh (diameter 3,0 mm) suspensi dari BHIB dan goreskan pada Agar miring TSA.

13 dari 32

SNI 2897:2008

c) Inkubasikan BHIB dan Agar miring TSA pada temperatur 35 °C selama 18 jam sampai dengan 24 jam. d) Tambahkan 0,5 ml koagulase plasma kelinci (coagulase rabbit plasma) yang mengandung EDTA ke dalam suspensi BHIB yang telah diinkubasi kemudian homogenkan. e) Inkubasikan tabung pada temperatur 35 °C selama 6 jam dan amati setiap jam terhadap pembentukan gumpalan. f)

Hasil uji koagulase penggumpalan.

4.4.7

positif

Staphylococcus

aureus

ditandai

dengan

adanya

Perhitungan

a)

Hitung koloni-koloni dari cawan petri yang menunjukkan koloni khas Staphylococcus aureus dan menunjukkan hasil uji koagulase positif, kemudian dikalikan dengan faktor pengencerannya.

b)

Hasil dilaporkan sebagai jumlah Staphylococcus aureus per mililiter atau per gram.

4.5 4.5.1

Pengujian Salmonella spp. Prinsip

Pertumbuhan Salmonella pada media selektif dengan pra pengayaan (pre-enrichment), dan pengayaan (enrichment) yang dilanjutkan dengan uji biokimia dan uji serologi. 4.5.2 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) u) v) w)

Media dan reagen LB; SCB; TTB; RV; XLDA; HEA; BSA, TSIA; LIA; LDB; KCNB; MR-VP; SCB; TB; TSTB; SIM; Reagen Kovac; BHI; Urea Broth; Malonate Broth; Phenol Red Lactose Broth; Phenol Red Sucrose Broth; kristal keratin; 14 dari 32

SNI 2897:2008

x) y) z) aa) bb) cc)

Larutan Bromcresol Purple Dye 0,2 %; Larutan Physiological Saline O,85 %; Larutan Formalinized Physiological Saline; Salmonella Polyvalent Somatic (O) Antiserum A-S; Salmonella Polyvalent Flagellar (H) Antiserum Fase 1 Dan 2; Salmonella Somatic Grup (O) Monovalent Antisera : Vi.

4.5.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t)

Peralatan cawan petri; tabung reaksi; tabung serologi ukuran 10 x 75 mm; pipet ukuran 1 ml, 2 ml, 5 ml,10 ml; botol media; gunting; pinset; jarum inokulasi (ose); stomacher; pembakar bunsen; pH meter; timbangan; magnetic stirer; pengocok tabung (vortex); inkubator; penangas air; autoklaf; lemari steril (clean bench); lemari pendingin (refrigerator); freezer.

4.5.4

Cara uji

Setiap proses pengujian selalu disertai dengan menggunakan kontrol positif. 4.5.4.1

Pra-pengayaan

a) Timbang contoh padat dan semi padat sebanyak 25 g atau ukur sebanyak 25 ml contoh cair secara aseptik kemudian masukkan dalam wadah steril. b) Untuk contoh daging, telur , dan susu Tambahkan 225 ml larutan LB ke dalam kantong steril yang berisi contoh, homogenkan dengan stomacher selama 1 menit sampai dengan 2 menit (kecuali untuk contoh susu cair). c) Pindahkan suspensi ke dalam Erlenmeyer atau wadah steril. d) Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam. 4.5.4.2

Pengayaan

a) Aduk perlahan biakan pra-pengayaan kemudian ambil dan pindahkan masing-masing 1 ml ke dalam media 10 ml TTB, sedangkan untuk media RV pindahkan 0,1 ml ke dalam 10 ml RV.

15 dari 32

SNI 2897:2008

b) Contoh dengan dugaan cemaran Salmonella spp. tinggi (high microbial load). Inkubasikan media RV pada temperatur 42 °C ± 0,2 °C selama 24 jam ± 2 jam. Sedangkan untuk media TTB inkubasi pada temperatur 43 °C ± 0,2 °C selama 24 jam ± 2 jam. c) Contoh dengan dugaan cemaran Salmonella spp. rendah (low microbial load). Inkubasikan media RV pada temperatur 42 °C ± 0,2 °C selama 24 jam ± 2 jam. Sedangkan untuk media TTB inkubasi pada temperatur 35 °C ± 2 °C selama 24 jam ± 2 jam. 4.5.4.3

Isolasi dan identifikasi

a) Ambil dua atau lebih koloni dengan jarum ose dari masing-masing media pengayaan yang telah diinkubasikan, dan inokulasikan pada media HE, XLD dan BSA. Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam. Untuk BSA apabila belum jelas dapat dinkubasikan lagi selama 24 jam ± 2 jam. b) Amati koloni Salmonella pada media HE terlihat berwarna hijau kebiruan dengan atau tanpa titik hitam (H2S). c) Pada media XLD koloni terlihat merah muda dengan atau tanpa titik mengkilat atau terlihat hampir seluruh koloni hitam. d) Pada media BSA koloni terlihat keabu-abuan atau kehitaman, kadang metalik, media di sekitar koloni berwarna coklat dan semakin lama waktu inkubasi akan berubah menjadi hitam. e) Lakukan identifikasi dengan mengambil koloni yang diduga dari ketiga media tersebut. Inokulasikan ke TSIA dan LIA dengan cara menusuk ke dasar media agar, selanjutnya digores pada media agar miring. f)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam. Amati koloni spesifik Salmonella dengan hasil reaksi seperti tercantum pada Tabel 3. Tabel 3 - Hasil uji Samonella sp pada TSIA dan LIA

Media

Agar miring (Slant)

dasar Agar (Buttom)

H2S

Gas

TSIA

Alkalin / K (merah) Alkalin / K (ungu)

Asam / A (kuning) Alkalin / K (ungu)

Positif (hitam) Positif (hitam)

Negatif/ positif Negatif/ Positif

LIA

4.5.4.4 4.5.4.4.1

Uji biokimia Uji urease

a)

Inokulasikan koloni dari positif TSIA dengan ose ke Urea Broth.

b)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam.

c)

Hasil uji spesifik Salmonella adalah negatif uji urease. 16 dari 32

SNI 2897:2008

4.5.4.4.2

Uji indole

a) Inokulasikan koloni dari media TSIA pada TB dan inkubasi pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam. b) Tambahkan 0,2 ml sampai dengan 0,3 ml Reagen Kovacs. c) Hasil uji positif ditandai dengan adanya cincin merah dipermukaan media. d) Hasil uji negatif ditandai dengan terbentuknya cincin kuning. e)

Hasil uji spesifik Salmonella adalah negatif uji indole.

4.5.4.4.3

Uji Voges-Proskauer (VP)

a) Ambil biakan dari media TSIA dengan ose lalu inokulasikan ke tabung yang berisi 10 ml media MR-VP dan inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam. b) Pindahkan 5 ml MR-VP ke dalam tabung reaksi dan tambahkan 0.6 ml larutan α-naphthol dan 0,2 ml KOH 40 %, kemudian digoyang-goyang sampai tercampur dan didiamkan. c) Untuk mempercepat reaksi tambahkan kristal kreatin. Baca hasil setelah 4 jam. d) Hasil uji positif apabila terjadi perubahan warna pink sampai merah delima. e) Umumnya Salmonella memberikan hasil negatif untuk uji VP (tidak terjadi perubahan warna pada media). 4.5.4.4.4

Uji Methyl Red (MR)

a) Ambil biakan dari media TSIA dengan ose inokulasikan ke dalam tabung yang berisi 10 ml media MR-VP dan inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam. b) Tambah 5 tetes sampai dengan 6 tetes indikator Methyl Red pada tabung. c) Hasil uji positif ditandai dengan adanya difusi warna merah ke dalam media. d) Hasil uji negatif ditandai dengan terjadinya warna kuning pada media. e) Umumnya Salmonella memberikan hasil positif untuk uji MR. 4.5.4.4.5

Uji citrate

a)

Inokulasikan koloni dari TSIA ke dalam SCA dengan ose.

b)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 96 jam ± 2 jam.

c)

Hasil uji positif ditandai adanya pertumbuhan koloni yang diikuti perubahan warna dari hijau menjadi biru.

d)

Hasil uji negatif ditandai dengan tidak adanya pertumbuhan koloni atau tumbuh sangat sedikit dan tidak terjadi perubahan warna.

e)

Umumnya Salmonella memberikan hasil positif pada uji citrate.

17 dari 32

SNI 2897:2008

4.5.4.4.6

Uji Lysine Decarboxylase Broth (LDB)

a) Ambil satu ose koloni dari TSIA dan inokulasikan ke dalam LDB. b) Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam dan diamati setiap 24 jam. c) Salmonella memberikan reaksi positif ditandai dengan terbentuknya warna ungu pada seluruh media dan hasil reaksi negatif memberikan warna kuning. d) Jika hasil reaksi meragukan (bukan ungu atau bukan kuning) tambahkan beberapa tetes 0,2 % bromcresol purple dye dan amati perubahan warnanya. 4.5.4.4.7

Uji Kalium Cyanida (KCN)

a)

Inokulasikan satu ose biakan dari TSIA ke media TB.

b)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam.

c)

Ambil satu ose koloni dari TB dan inokulasikan ke dalam KCNB.

d)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam.

e)

Hasil uji positif ditunjukkan dengan adanya pertumbuhan yang ditandai dengan kekeruhan.

f)

Hasil uji negatif ditunjukkan dengan tidak adanya pertumbuhan pada media.

g)

Salmonella memberikan hasil negatif pada uji KCN.

4.5.4.4.8 a)

Uji gula-gula

Phenol red dulcitol broth atau purple broth base dengan 0,5 % dulcitol

-

Ambil koloni dari TSIA dan inokulasikan pada medium dulcitol broth.

-

Inkubasikan pada temperatur 35 °C dan diamati setiap 24 jam selama 48 jam ± 2 jam.

-

Kebanyakan Salmonella memberikan reaksi positif ditandai dengan pembentukan gas dalam tabung Durham dan warna kuning (pH asam) pada media.

-

Hasil reaksi negatif ditandai dengan tidak terbentuknya gas pada tabung Durham dan pada media terbentuk warna merah (pH basa) untuk indikator phenol red atau ungu untuk indikator bromcresol purple.

b)

Uji malonate broth

-

Pindahkan satu ose dari TB ke dalam malonate broth.

-

Inkubasikan pada temperatur 35 °C dan diamati setiap 24 jam selama 48 jam ± 2 jam.

-

Hasil uji positif ditunjukkan dengan adanya perubahan warna menjadi biru.

-

Salmonella memberikan reaksi negatif yang ditandai dengan adanya warna hijau atau tidak ada perubahan warna.

18 dari 32

SNI 2897:2008

c)

Uji phenol red lactose broth

-

Inokulasikan koloni dari TSIA miring ke dalam Phenol red lactose broth.

-

Inkubasikan pada temperatur 35 °C dan diamati setiap 24 jam selama 48 jam ± 2 jam.

-

Hasil reaksi positif ditandai dengan produksi asam (warna kuning) dengan atau tanpa gas

-

Salmonella memberikan hasil reaksi negatif ditandai dengan tidak ada perubahan warna dan pembentukan gas.

d)

Uji phenol red sucrose broth

-

Inokulasikan koloni dari TSIA miring ke dalam Phenol red sucrose broth.

-

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 48 jam ± 2 jam dan diamati setiap 24 jam.

-

Hasil uji positif ditandai dengan adanya perubahan warna (kuning) dan dengan atau tanpa pembentukan gas.

-

Salmonella memberikan hasil uji negatif ditandai dengan tidak ada perubahan warna dan pembentukan gas.

4.5.4.5 4.5.4.5.1

Uji serologis Uji polyvalent somatic (O)

a)

Letakkan satu ose koloni dari TSIA atau LIA pada gelas preparat dan tambahkan satu tetes larutan garam fisiologis (NaCl 0,85 %) steril dan ratakan dengan kultur.

b)

Berikan satu tetes Salmonella polyvalent somatic (O) antiserum disamping suspensi koloni.

c)

Campur suspensi koloni ke antiserum sampai tercampur sempurna.

d)

Miringkan campuran tersebut ke kiri dan ke kanan dengan latar belakang gelap sambil diamati adanya reaksi aglutinasi.

e)

Siapkan kontrol dengan mencampur larutan garam fisiologis dan antiserum.

f)

Lakukan uji somatik (O) grup monovalent antisera Vi seperti uji polyvalent di atas.

4.5.4.5.2

Uji polyvalent flagelar (H)

a)

Koloni dari TSIA yang hasil uji urease negatif diinokulasi ke dalam BHIB dan diinkubasi pada temperatur 35 °C selama 4 jam sampai dengan 6 jam atau ke dalam TSTB dan inkubasi pada temperatur 35 °C selama 24 jam ± 2 jam.

b)

Tambahkan 2,5 ml larutan garam fisiologis berformalin (formalinized physiological saline) ke dalam 5 ml dari salah satu kultur di atas.

c)

Pipet 0,5 ml larutan Salmonella Polyvalent flagellar (H) antisera dan masukkan ke dalam tabung serologi ukuran 10 x 75 mm.

d)

Tambah 0,5 ml antigen yang akan diuji. 19 dari 32

SNI 2897:2008

e)

Siapkan larutan garam fisiologis kontrol dengan mencampurkan 0,5 ml larutan garam fisiologis berformalin dengan 0,5 ml antigen berformalin (formalinized antigen).

f)

Inkubasikan kedua campuran tersebut dalam penangas air pada temperatur 48 °C sampai dengan 50 °C.

g)

Amati adanya penggumpalan setiap 15 menit selama 1 jam.

h)

Hasil uji positif ditandai dengan adanya penggumpalan, sedangkan pada kontrol tidak terjadi penggumpalan.

4.5.5

Interpretasi hasil Salmonella spp.

Interpretasi hasil uji biokimia Salmonella spp. dapat dilihat pada Tabel 4, sedangkan untuk kriteria penentuan non Salmonella spp dapat dilihat pada Tabel 5. Tabel 4 - Reaksi biokimia Salmonella Hasil reaksi No 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14

Uji substrat

Positif

Negatif

Glukosa (TSI) Lysine Dekarboksilase(LIA) H2S (TSI dan LIA)

Tusukan kuning Tusukan ungu

Tusukan merah Tusukan kuning

Hitam

Tidak hitam

Urease Lysine Dekarboksilase Broth Phenol Red Dulcitol Broth

Pink sampai merah Warna ungu

Tetap kuning Warna kuning

Warna kuning dan atau dengan gas

Tanpa berubah warna dan tanpa terbentuk gas KCN Broth Ada pertumbuhan Tidak ada pertumbuhan Malonat Broth Warna biru Tidak berubah warna Uji indol Permukaan warna Permukaan merah warna kuning Uji Polyvalent flagelar Aglutinasi Tidak aglutinasi Uji Polyvalent Somatic Aglutinasi Tidak aglutinasi Tidak terbentuk Phenol Red Lactose Warna kuning dengan/tanpa gas gas dan tidak Broth berubah warna Phenol Red Sukrosa Warna kuning Tidak terbentuk dengan/tanpa gas gas dan tidak Broth berubah warna Uji Voges-Proskauer pink sampai merah Tidak berubah warna

20 dari 32

Salmonella + + + + a)

b)

+ + -

SNI 2897:2008

Tabel 4 – Lanjutan Hasil reaksi No

Uji substrat

Positif

15

Uji Methyl Red

Merah menyebar

16

Simmon’s sitrat

Pertumbuhan warna biru

Negatif Warna kuning menyebar Tidak ada pertumbuhan dan tidak ada perubahan

Salmonella + V

KETERANGAN : a ) Mayoritas dari kultur S.arizonae adalah negatif b) Mayoritas dari kultur S.arizonae adalah positif V Variable

Tabel 5 - Kriteria penentuan non Samonella spp

Uji substrat

No 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11

Urease Lysine Dekarboksilase(LIA) Lysine Dekarboksilase Broth KCN Broth Uji indol Uji Polyvalent flagelar Uji Polyvalent Somatic Phenol Red Lactose Broth Phenol Red Sukrosa Broth Uji Voges-Proskauer Uji Methyl Red

Hasil Positif (pink – merah) Negatif (Jernih) Negatif (Jernih) Positif (ada pertumbuhan keruh) Positif (warna merah pada permukaan) Negatif (tidak ada penggumpalan) Negatif (tidak ada penggumpalan) Posisitif (warna kuning ada/tidak ada gas) Posisitif (warna kuning ada/tidak ada gas) Positif (warna pink sampai merah) Negatif (warna kuning menyebar)

KETERANGAN: a. Test Malonate broth positif lebih lanjut untuk mengamati jika biakan tersebut Salmonella Arizona. b. Jangan dibuang biakan positif jika pada LIA menunjukkan reaksi bercirikan Salmonella, test lebih lanjut untuk mengamati jika spesies Salmonella

4.6 4.6.1

Pengujian Campylobacter spp. Prinsip

Pertumbuhan Campylobacter pada media selektif melalui tahapan pra-pengayaan, pengayaan, isolasi dan identifikasi serta konfirmasi. 4.6.2 a) b)

Media dan reagen Campylobacter enrichment broth Bolton broth base 1000 ml ditambah 50 ml lysed horse blood ditambah 2 vial Bolton antibiotik; agar isolasi Campylobacter 21 dari 32

SNI 2897:2008

Abeyta-Hunt-Bark (AHB) dan modified Campy blood-free Agar (mCCDA); media konfirmasi Campylobacter broth (broth enrichment, bebas antibiotika), dengan atau tanpa Foetal Bovine Serum (FBS); heart infusion agar ; pepton 0,1 %; brucella agar, semi–solid; TSIA; oxidative fermentasi test media; Mac Conkey Agar; glycine; natrium dan cystein chlorida; kalium nitrat; reagen deteksi nitrit; reagen natrium hipurat; reagen Ninhydrin ; kertas strip Pb asetat; kertas saring strip yang dibasahi larutan Pb asetat jenuh dan kering; larutan Netral Red; kertas cakram yang mengandung Nalidixic acid dan Cephalothin; hidrogen peroksida 3 %; reagen Oksidase; reagen pengecatan Gram (S6) dengan 5 % carbol fuchsin (S4) sebagai pewarna. isolat Campylobacter spp untuk kontrol positif.

c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) u) v) w) 4.6.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q)

Peralatan

tabung 10 x 75 mm; Erlenmeyer 250, 500 ml dan 50 ml; gelas obyek dan penutup ; botol sentrifus 250 ml dan tabung sentrifus 50 ml steril atau yang sejenis; sistem pengocok gas dari gelas ( Erlenmeyer vacuum system ); stomacher; mikroskop perbesaran 100 x dan minyak emersi; blender mekanik/blender jar; timbangan; sentrifus berpendingin; steril tounge depressor dan swab; anaerobic jars dengan gas generating envelopes; shaking gas flask system/gas tank system (5 % O2, 10 % CO2, 85 % N2); inkubator: 25 °C; 30 °C; 35 °C sampai dengan 37 °C dan 42 °C; kertas saring 0,65 μm, 47 mm (millipore/genex); kertas cakram; forcep tangkai panjang;

4.6.4

Penyiapan contoh

a)

Timbang dan haluskan contoh daging, sebanyak 25 g dan ditambah 100 ml pepton 0,1 %, kemudian disentrifus dingin 16.000 rpm selama 15 menit, kemudian buang supernatannya.

b)

Ukur contoh susu sebanyak 25 ml kemudian disentrifus dingin 20.000 rpm selama 40 menit, kemudian disaring dan dibuang supernatannya.

c)

Timbang contoh kuning telur sebanyak 25 g dan tambahkan 100 ml enrichment broth (Bolton broth base 1.000 ml ditambah 50 ml lysed horse blood ditambah 2 vial Bolton 22 dari 32

SNI 2897:2008

antibiotik) kemudian dihomogenkan. d)

Pindahkan 3 ml endapan a) atau b) ke dalam botol sentrifus steril yang berisi 100 ml enrichment broth (Bolton broth base 1.000 ml ditambah 50 ml lysed horse blood ditambah 2 vial Bolton antibiotik)

4.6.5

Cara uji

4.6.5.1

Pra pengayaan (metode modifikasi Park dan Humphrey)

Inkubasikan suspensi 4.6.4 c) atau d) pada temperatur 37 °C selama 4 jam dalam kondisi mikroaerobik dengan Gas Tank System. 4.6.5.2

Pengayaan

Naikkan temperatur inkubasi suspensi 4.6.5.1 menjadi 42 °C selama 23 jam sampai dengan 24 jam, dan 48 jam untuk contoh susu. 4.6.5.3

Isolasi

a)

Suspensi 4.6.5.2 dibuat pengenceran 1 : 100 (0,1 ml masukkan ke dalam 9,9 ml pepton 0,1 %).

b)

Goreskan masing-masing 2 ose dari suspensi 4.6.5.2 dan 4.6.5.3 a) pada media agar AHB atau mCCDA.

c)

Inkubasikan pada temperatur 42 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam dalam Gas Tank System. Amati pertumbuhan pada inkubasi 24 jam.

4.6.5.4

Identifikasi

a) Koloni berbentuk bulat atau tidak beraturan dengan tepi halus dan berwarna putih translusen dengan pertumbuhan menyebar. b) Pilih minimal 1 koloni dari tiap cawan Petri dan siapkan pada gelas obyek. Lihat bentuk sel bakteri dibawah mikroskop dengan minyak emersi. Sel Campylobacter terlihat berbentuk koma atau melengkung, panjang 1,5 – 5 μm dan dengan formasi zigzag. Campylobacter umumya motil dan 20 % C. jejuni adalah tidak motil. Sel yang sudah tua dan cedera (injured) akan mengalami penurunan motilitas dan terjadi perubahan bentuk menjadi bulat. c) Pengujian selalu disertai dengan kontrol positif. 4.6.5.5

Konfirmasi dan uji biokimia

Setiap pengujian selalu disertai dengan kontrol positif. 4.6.5.5.1

Uji katalase

a) Ambil koloni positif Campylobacter kemudian teteskan hydrogen peroxide 3 % dan apabila timbul gelembung maka koloni positif Campylobacter. b) Jika koloni positif pada uji katalase, dipindahkan ke dalam dua media Campylobacter confirmation broth (Formulasi 1 dan Formulasi 2). Satu menggunakan FBS dan satu tanpa FBS. Inokulasikan koloni ke dalam kedua media di atas, dan inkubasikan pada 23 dari 32

SNI 2897:2008

temperatur 42 °C ± 1 °C selama 24 jam pada kondisi mikroaerobik (Gas Tank System) hingga keduanya kelihatan keruh. c) Jika pertumbuhannya sudah cukup, gunakan kultur broth tanpa FBS untuk uji biokimiawi selanjutnya. 4.6.5.5.2

Uji sensitifitas antibiotik

a) Inokulasikan kultur secara merata pada permukaan media Heart Infusion Agar yang mengandung 5 % darah dan 0,35 % FBS dengan menggunakan swab steril. b) Letakkan kertas cakram Cephalothin dan Nalidixic acid di atas media. c) Inkubasikan media pada temperatur 42 °C ± 1 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam dengan kondisi mikroaerobik. d) Lihat adanya zona inhibisi yang mengelilingi kertas cakram. Adanya zona mengindikasikan sensitifitas bakteri terhadap antibiotik tersebut. Campylobacter jejuni sangat sensitif terhadap Nalidixic acid dan resisten terhadap Cephalothin. 4.6.5.5.3

Pengecatan Gram

Pada pengecatan Gram Campylobacter spp berbentuk koma dan termasuk Gram negatif. 4.6.5.5.4

Uji hippurate hydrolysis

a)

Buat emulsi dengan ose diameter 2 mm antara koloni yang tumbuh dari media Heart Infusion Agar yang digunakan pada uji sensitifitas antibiotik dengan menambahkan 0,4 ml hippurate solution dalam tabung 10 x 75 mm.

b)

Inkubasikan pada temperatur 37 °C dalam selama 2 jam dalam penangas air. Tambahkan 0,5 ml reagen Ninhydrin sambil diaduk. Inkubasikan kembali selama 10 menit. Lihat segera perubahan pada tabung.

c)

Reaksi positif bila terjadi perubahan media menjadi violet dengan jelas. Campylobacter jejuni menunjukkan reaksi positif pada uji hippurate hydrolysis.

4.6.5.5.5

Uji dengan TSIA

a)

Inokulasikan pada media TSIA dari kultur broth dengan cara menusuk kebagian tegak dan menggoreskan pada bagian miring.

b)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C sampai dengan 37 °C selama 5 hari dengan kondisi mikroaerobik dalam Gas Tank System. Campylobacter jejuni pada media TSIA bagian tegak dan miring berwarna merah (basa) dengan tidak memproduksi H2S.

4.6.5.5.6

Uji glucose utilization

a) Inokulasikan 2 tabung media uji oxidative-fermentative yang sudah diinokulasi dengan kultur. Satu tabung berisi glukosa, dan yang satu tanpa glukosa. b) Inkubasikan pada temperatur 35 °C sampai dengan 37 °C selama 4 hari dengan kondisi mikroaerobik dalam Gas Tank System. Campylobacter spp tidak menggunakan glukosa atau gula lainnya, ditandai dengan tidak adanya perubahan media pada tabung.

24 dari 32

SNI 2897:2008

4.6.5.5.7

Uji katalase-oxidase

a) Inokulasikan kultur dari media broth ke dalam media Heart Infusion Agar miring, dan inkubasikan pada temperatur 35 °C sampai dengan 37 °C selama 48 jam. b) Ambil koloni yang tumbuh pada agar miring dan teteskan hydrogen peroxide 3 %. c) Tambahkan reagen oxidasi ke dalam kultur media Heart Infusion Agar miring. Jika media berubah menjadi ungu, maka kultur positif uji oxidasi. Campylobacter jejuni positif pada uji katalase dan oxidase. 4.6.5.5.8

Uji growth temperature tolerance

a) Campur 2 ml kultur broth dengan Peptone 0,1 % dengan tingkat kekeruhan mengunakan standar McFarland Nomor 1. Goreskan media ke dalam 3 cawan Petri media Heart Infusion–Blood–FBP Agar. b) Inokulasikan pada masing-masing cawan Petri. Inkubasikan satu cawan pada temperatur 25 °C, satu cawan pada temperatur 35 °C sampai dengan 37 °C dan yang satu lagi pada temperatur 42 °C selama 3 hari dengan kondisi mikroaerobik dalam Gas Tank System. c) Uji positif ditandai adanya kekeruhan pada inokulum Campylobacter jejuni tidak tumbuh pada temperatur 25 °C, tetapi tumbuh baik pada temperatur 35 °C sampai dengan 37 °C dan 42 °C. 4.6.5.5.9

Uji pertumbuhan pada MacConkey Agar

Goreskan satu koloni pada MacConkey Agar, inkubasikan pada temperatur 37 °C selama 3 hari dengan kondisi mikroaerobik dalam Gas Tank System. Campylobacter jejuni tumbuh baik pada MacConkey Agar. 4.6.5.5.10

Uji pertumbuhan

Uji ini menggunakan Brucella broth dengan 0,18 % agar. Pipet media tersebut sebanyak 7 ml per tabung, teteskan 0,1 ml kultur, dan ratakan di atas permukaan media semi-solid. Inkubasikan pada temperatur 35 °C sampai dengan 37 °C selama 5 hari. a)

Uji pertumbuhan pada glycine 1 %

Inokulasikan kultur pada media 1 % glycine, Campylobacter jejuni tumbuh (positif). b)

Uji pertumbuhan pada NaCl 3,5 %

Inokulasikan kultur pada media NaCl 3,5 %, Campylobacter jejuni tidak tumbuh (negatif). c)

Uji H2S dari cysteine

Inokulasikan kultur pada media cysteine. Koloni Campylobacter jejuni berwarna kehitaman dan mengkilat.

d) Reduksi nitrat Inokulasikan kultur pada media nitrat. Setelah 5 hari tambahkan nitrit reagen A dan B. 25 dari 32

SNI 2897:2008

Campylobacter jejuni menunjukkan reaksi positif dengan terbentuknya warna merah. Reaksi biokimia Campylobacter jejuni dan Campylobacter spp dapat dilihat pada Tabel 6. Tabel 6 - Perbandingan karakteristik spesies Campylobacter C. upsalien sis

C. jejuni

C. coli

C. laridis

C. fetus fetus

C. cinaedi

C. fennelliae

C. cyraerophila

C. hyointestinalis

+

+

+

+

+

+

+

+

R

R

R

S

S

S

S

S

S

S

S

R

R

S

S

S

R

S

+

+

-

-

-

-

-

-

-

H2S dari TSIA

-

d

-

-

-

-

-

+

-

Glucose

-

-

-

-

-

-

-

-

-

KatalaseOksidase

+

+

+

+

+

+

+

+

+

25 ºC

-

-

-

+

-

-

+

d

-

35 ºC-37 ºC

+

+

+

+

+

+

+

+

+

42 ºC

+

+

+

d

d

d

-

+

+

+

+

+

-

-

-

+

-

Karakteristik Katalase Resistensi terhadap Cephalothin Resistensi terhadap Nalidixic acid Hippurate hydrolysis

Tumbuh pada

MacConkey Motility

+

+

+

+

+

+

+

+

+

Tumbuh pada glycine 1 %

+

+

+

+

+

+

-

+

+

NaCl 3,5 %

-

-

-

-

-

-

-

-

-

H2S dari cystein

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

-

+

+

+

Reduksi nitrat

KETERANGAN (+) adalah positif; (-) adalah negatif; (d) adalah positif atau negatif; R adalah resisten; S adalah sensitif.

4.7 4.7.1

Pengujian Listeria monocytogenes Prinsip

Metode pengujian ini didasarkan pada isolasi dan identifikasi bakteri Listeria monocytogenes dengan cara pembiakan pada media selektif. 26 dari 32

SNI 2897:2008

4.7.2 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) u)

BPW 0,1 %; Buffered Listeria Enrichment Broth (BLEB); Listeria Enrichment Broth Base (LEBB); Selective Enrichment Supplement (SES); Listeria Selective Agar (LSA); Listeria Selective Supplement LSS); Oxford Agar (OXA); PALCAM Agar (PALCAM); Modified Oxford Agar (MOX); Lithium chloride-Phenylethanol-Moxalactam (LPM) agar; Trypticase Soy agar dengan Yeast extract (TSAy); antibiotik Cycloheximide atau Natamycine; agar darah domba/kuda; media semisolid; pereaksi H2O2 3 %; Manitol; Xylosa; Rhamnosa; Pengecatan Gram; Staphylococcus aureus ATCC 25923; Rhodococcus equi ATCC 6939.

4.7.3 a) b) c) d) e) f) g) h) i) j) k) l) m) n) o) p) q) r) s) t) u) v) w)

Media dan reagen

Peralatan

cawan petri; tabung Craigie; tabung reaksi; pipet volumetrik; Erlenmeyer; botol media; gunting; pinset; jarum inokulasi (ose); stomacher; mikroskop; pembakar bunsen; pH meter; timbangan; magnetic stirer; pengocok tabung (vortex); inkubator temperatur 30 °C ± 1 °C; inkubator temperatur 37 °C ± 1 °C; penangas air; autoklaf; lemari steril (clean bench); lemari pendingin (refrigerator); freezer.

4.7.4

Penyiapan contoh

a) Timbang contoh padat dan semi padat sebanyak 25 gram atau ukur contoh cair sebanyak 25 ml secara aseptik, kemudian masukkan dalam wadah steril. 27 dari 32

SNI 2897:2008

b) Untuk contoh daging dan telur (padat dan semi padat) Tambahkan 225 ml Buffered Listeria Enrichment Broth ke dalam kantong steril yang berisi contoh, homogenkan dengan stomacher selama 1 menit sampai dengan 2 menit. c)

Untuk contoh susu (cair) Tambahkan 225 ml Buffered Listeria Enrichment Broth ke dalam kantong atau wadah steril yang berisi contoh, homogenkan.

4.7.5

Cara uji

Pengujian selalu disertai dengan kontrol positif. 4.7.5.1

Pra pengayaan

Inkubasikan suspensi 4.7.4 b) atau c) pada temperatur 30 °C selama 4 jam. 4.7.5.2

Pengayaan

Lanjutkan inkubasi suspensi 4.7.5.1 sampai dengan 48 jam dengan menambahkan antibiotik Cycloheximide atau Natamycine dengan konsentrasi 25 mg/liter. 4.7.5.3

Isolasi

a) Setelah diinkubasikan 24 jam dan 48 jam, masing-masing goreskan 1 ose suspensi 4.7.5.2 pada OXA atau PALCAM atau MOX atau LPM. b) Inkubasikan media OXA, PALCAM, dan MOX pada temperatur 35 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam, sedangkan media LPM diinkubasikan pada temperatur 30 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam. c) Pada media LPM koloni Listeria terlihat berwarna abu-abu kebiruan atau putih. d) Pada OXA dan PALCAM koloni berwarna hitam dikelilingi zona jernih. e) Pada agar darah domba/kuda bakteri Listeria monocytogenes, tampak cekung dibagian tengahnya, berwarna abu-abu kebiruan, dikelilingi zona jernih (karena adanya sifat hemolisa dari Listeria monocytogenes). 4.7.5.4

Identifikasi

Tumbuhkan koloni Listeria pada media TSAy, kemudian inkubasikan pada temperatur 30 °C selama 24 jam sampai dengan 48 jam. 4.7.5.4.1

Uji pengecatan Gram

Bakteri Listeria monocytogenes merupakan bakteri Gram positif sehingga menunjukkan sel berwarna violet pada pemeriksaan mikroskopik. 4.7.5.4.2

Uji motilitas

a) Menggunakan media semi-solid dalam tabung yang didalamnya terdapat tabung Craigie. Isolat yang diuji dan diinokulasi dalam tabung Craigie. b) Inkubasikan pada temperatur 37 °C selama 24 jam. 28 dari 32

SNI 2897:2008

c) Uji motilitas positif, bila terdapat bakteri Listeria monocytogenes di permukaan agar semisolid di luar tabung Craigie. 4.7.5.4.3

Uji gula-gula

a) Ambil koloni dari media agar darah domba/kuda yang diduga Listeria monocytogenes, dan inokulasikan pada media yang mengandung karbohidrat yang sudah disiapkan (glukosa, maltosa, manitol, rhamnosa, dan xylosa). b) Inkubasikan pada temperatur 37 °C selama 24 jam. c) Hasil uji positif apabila media gula-gula di atas berubah warna dari merah menjadi kuning. d)

Hasil uji negatif apabila media gula-gula tetap berwarna merah.

4.7.5.4.4

Uji katalase

a)

Campurkan koloni yang diduga Listeria monocytogenes dengan satu tetes pereaksi H2O2 3 % pada kaca preparat hingga rata.

b)

Reaksi katalase positif apabila terbentuk gelembung pada campuran sel tersebut.

c)

Reaksi katalase negatif apabila tidak terbentuk gelembung pada campuran sel tersebut.

4.7.5.5

Uji konfirmasi

a)

Untuk konfirmasi aktivitas hemolitik Listeria moncytogenes (ß-hemolise), dilakukan dengan CAMP test.

b)

Inokulasikan koloni yang diduga Listeria monocytogenes pada media agar darah domba/kuda yang memakai biakan Staphylococcus aureus dan Rhodococcus equi seperti terlihat pada Gambar 1.

c)

Inkubasikan pada temperatur 35 °C selama 24 jam dan 48 jam.

d)

CAMP test dinyatakan positif Listeria monocytogenes, apabila zona hemolisis berada di sekitar goresan Staphylococcus aureus.

KETERANGAN

S = Staphylococcus aureus, R = Rhodococcus equi = β hemolisa

////

Gambar 1 - CAMP test Listeria monocytogenes

29 dari 32

SNI 2897:2008

Interpretasi hasil uji Listeria monocytogenes dapat dilihat pada Tabel 7. Tabel 7 - Interpretasi hasil uji Listeria monocytogenes

No.

Jenis Uji

Hasil Uji

Keterangan Batang pendek Terdapat bakteri L. monocytogenes di permukaan agar semi-solid di luar tabung Craigie Berwarna kuning Berwarna kuning Berwarna kuning Berwarna kuning Berwarna kuning Terbentuk gelembung Zona hemolisa disekitar goresan Staphylococcus aureus

a b

Pengecatan Gram Motilitas

Positif Positif

c d e f g h i

Glukosa Maltosa Manitol Rhamnosa Xylosa Uji kalatase CAMP test

Positif Positif Negatif Positif Negatif Positif positif

30 dari 32

SNI 2897:2008

Lampiran A (normatif) MPN seri tiga tabung

Penghitungan tabel MPN seri tiga tabung dengan selang kepercayaan 95 % untuk kombinasi hasil positif dan tabung pengenceran yang digunakan (0,1 ml; 0,01 ml dan 0,001 ml) (BAM 2001 atau 2006) sesuai Tabel A.1.

Tabel A.1 - MPN seri tiga tabung Jumlah tabung positif (3 tabung ) 0,1 g 0,01 g 0,001 g 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 1 1 0 2 0 0 3 0 1 0 0 1 0 1 1 0 2 1 1 0 1 1 1 1 2 0 1 2 1 1 3 0 2 0 0 2 0 1 2 0 2 2 1 0 2 1 1 2 1 2 2 2 0 2 2 1 2 2 2 2 3 0 2 3 1 3 0 0 3 0 1 3 0 2 3 1 0 3 1 1 3 1 2 3 1 3 3 2 0 3 2 1 3 2 2 3 2 3 3 3 0 3 3 1 3 3 2 3 3 3

MPN / g < 3,6 3 3 6,1 6,2 9,4 3,6 7,2 11 7,4 11 11 15 16 9,2 14 20 15 20 27 21 28 35 29 36 23 38 64 43 75 120 160 93 150 210 290 240 460 1.100 > 1.100

31 dari 32

Batas kepercayaan 95 % Bawah Atas 9,5 0,15 9,6 0,15 11 1,2 18 1,2 18 3,6 38 0,17 18 1,3 18 3,6 38 1,3 20 3,6 38 3,6 42 4,5 42 4,5 42 1,4 38 3,6 42 4,5 42 3,7 42 4,5 42 8,7 94 4,5 42 8,7 94 8,7 94 8,7 94 8,7 94 4,6 94 8,7 110 17 180 9 180 17 200 37 420 40 420 18 420 37 420 40 430 90 1.000 42 1.000 90 2.000 180 4.100 420 --

SNI 2897:2008

Bibliografi

[BAM] Bacteriological Analytical Manual.2006. Division of Microbiology. U.S. Food and Drug Administration. Gaithersburg, USA : AOAC Internasional. [BAM] Bacteriological Analytical Manual.2001. Division of Microbiology. U.S. Food and Drug Administration. Gaithersburg, USA : AOAC Internasional. [FAO] Food and Agriculture Organization. 1992. Manual of Food Quality Control. Microbiological Analysis. Ed-4. Roma: FAO United Nations.

32 dari 32