Guía de propagación de especies vegetales nativas y endémicas CIMM

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Fitoestabilización de Depósitos de Relaves en Chile Guía N° 5: Propagación de Especies Vegetales Nativas y Endémicas

Luz María de La Fuente C  Ivigci Mi  Mlúgic Pedro León-Lobos Ii  Ivigci agpci rosanna GInoCChIo C  Ivigci Mi  Mlúgic

INIA Ministerio de Agricultura

Centro de Investigación Minera y Metalúrgica, CIMM Instituto de Investigaciones Agropecuarias, INIA Fitoestabilización de Depósitos de Relaves en Chile Guía N° 5: Propagación de Especies Vegetales Nativas y Endémicas N° de Inscripción: 171.924 ISBN Obra Completa: 978-956-7226-09-2 ISBN Volumen 5: 978-956-7226-14-6 Enero de 2011 Diseño e impresión: Andros Impresores www.androsimpresores.cl

Centro de Investigación Minera y Metalúrgica, CIMM Instituto de Investigaciones Agropecuarias, INIA Fitoestabilización de Depósitos de Relaves en Chile Guía N° 5: Propagación de Especies Vegetales Nativas y Endémicas N° de Inscripción: 171.924 ISBN Obra Completa: 978-956-7226-09-2 ISBN Volumen 5: 978-956-7226-14-6 Enero de 2011 Diseño e impresión: Andros Impresores www.androsimpresores.cl

Firme en la majestad y en l a armonía de su maravillosa arquitectura, cuya seguridad serena y pura es más fuerte que el tiempo y su porfía.

Francisco Luis Bernández

Equipo profEsional

CIMM Isabel Camus

INIA-Inihai Jaime Cuevas Ismael Jiménez Pedro León-Lobos Sergio Silva

EntidadEs asociadas

SERNAGEOMIN Ministerio de Minería

Prefacio|

stos documentos técnicos fueron generados a partir del proyecto Innova Chile de CORFO 04CR9IXD-01, titulado Uso de recursos fitogenéticos nativos para la fitoesta- bilización de depósitos de relaves en la Región de Coquimbo . El proyecto fue generado y liderado por la Unidad de Fitotoxicidad y Fitorremediación del Centro de Investigación Minera y Metalúrgica (CIMM) y coejecutado por el Centro Regional Intihuasi del Instituto de Investigaciones Agropecuarias (INIA).

E

Los documentos constituyen un aporte pionero y único para el país, entregando directrices prácticas para la aplicación de una tecnología sistematizada y validada para la adecuada y efectiva estabilización física, química y biológica de depósitos de relaves postoperativos y abandonados presentes en la zona norte-centro del país, como es la fitoestabilización. Cada una de las guías contenidas en esta obra es una entidad única que puede ser consultada en forma independiente, pero todas ellas se complementan para entregar la información fundamental y necesaria para la aplicación de la tecnología de fitoestabilización en depósitos de relaves postoperativos y abandonados del país. Es importante destacar que los principios generales de esta tecnología también pueden ser aplicados a otros desechos mineros masivos, como botaderos de estériles y pilas de lixiviación, y a suelos contaminados con metales y metaloides, como los impactados por operaciones históricas de fundición de minerales. Sin embargo, ésta debe ser adaptada a las particularidades de estos sustratos. La adecuada implementación de esta tecnología contribuirá a proteger la salud humana y el medio ambiente, al reducir las vías de exposición a los metales y metaloides contenidos en los desechos mineros masivos, además de permitir a las empresas mineras dar cabal cumplimiento a las nuevas regulaciones relacionadas con el cierre de faenas mineras. A su vez, esta tecnología permitirá la rehabilitación de las áreas perturbadas, revitalizándolas y permitiendo usos posteriores.

Finalmente, los editores de esta obra quieren destacar y agradecer en forma especial el importante apoyo de Anglo American y de sus profesionales, tanto en el proceso de desarrollo y de validación de la tecnología de estabilización a la realidad nacional como en la impresión de estos documentos. El interés de Anglo American por colaborar y apoyar este tipo de iniciativas ratifican el compromiso de esta compañía por desarrollar sus operaciones y la totalidad de las etapas de gestión siguiendo los más altos estándares ambientales, tanto internacionales como nacionales.

Tabla de Contenidos

1. INfrAestruCturA pArA lA propAgACIóN de plANtAs

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1.1. Emplazamiento 1.1.1. Clima 1.1.2. Topograía 1.1.3. Suelo 1.1.4. Agua 1.1.5. Viento 1.1.6. Orientación 1.1.7. Distancia al lugar de plantación 1.1.8. Mano de obra

11 11 11 11 12 12 13 13 13

1.2. Preparación del terreno 1.2.1. Limpieza 1.2.2. Eliminación de malezas 1.2.3. Roturación y nivelación

13 13 14 14

1.3. Instalaciones, inraestructuras y materiales 1.3.1. Sombreadero 1.3.2. Cortina cortaviento 1.3.3. Protección contra animales 1.3.4. Bodega 1.3.5. Criadero 1.3.6. Cama ría 1.3.7. Invernadero 1.3.8. Cama caliente 1.3.9. Sistema de riego 1.3.10. Almacigueras

14 14 15 15 16 16 17 17 22 22 23

2. MetodologíAs pArA lA propAgACIóN de plANtAs 2.1. Propagación por semillas 2.1.1. Cosecha de las semillas 2.1.2. Procesamiento de las semillas 2.1.3. Almacenamiento postcosecha

25 26 27 33 34

2.1.4. 2.1.5 2.1.6 2.1.7

Latencia de semillas Tratamientos pregerminativos Desinección de las semillas Siembra

35 37 41 41

2.2. Propagación vegetativa 2.2.1. Estacas 2.2.2. Acodos o mugrones 2.2.3. División 2.2.4. Órganos subterráneos de reserva

48 49 53 55 56

3. tIpos de produCCIóN de plANtAs

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3.1. Raíz desnuda

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3.2. Raíz cubierta 3.2.1. Contenedores 3.2.2. Sustratos 3.2.3. Inoculación con micorrizas y bacterias

61 61 64 66

3.3. Cultivos alternativos 3.3.1. Hidroponía

67 67

4. rIego

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4.1. Frecuencia y cantidad

71

4.2. Sistemas de riego 4.2.1. Riego tecniicado 4.2.2. Riego manual

72 72 73

5. fertIlIzACIóN

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5.1. Fertilizantes químicos

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5.2. Fertilizantes naturales

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6. CoNtrol fItosANItArIo

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6.1. Plagas y enermedades 6.1.1. Insectos 6.1.2. Hongos 6.1.3. Nematodos 6.1.4. Animales 6.1.5. Malezas

79 79 81 82 82 82

6.2. Tipos de control 6.2.1. Control químico 6.2.2. Control manual 6.2.3. Control orgánico 6.2.4. Control biológico

7. MANejo y ACoNdICIoNAMIeNto

82 82 84 84 84 85

7.1. Poda radicular

85

7.2. Poda aérea

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7.3. Ordenamiento

86

7.4. Acondicionamiento

86

8. CArtA gANtt

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BIBlIogrAfíA

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ANexos

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CIMM - InIa-IntIhuasI

1| Infraestructura para la Propagación de Plantas

P

ara poder propagar masivamente especies vegetales nativas y endémicas de la zona norte-centro del país, para fines de fitoestabilización de relaves mineros u otros ines, se requiere contar con una inraestructura adecuada la que permita asegurar su sustentabilidad, rentabilidad y éxito en función de la demanda de propagación. A continuación se abordan los aspectos más relevantes de ser considerados en relación a la inraestructura requerida para la propagación.

1.1. eMPLazaMIento El emplazamiento se refiere al lugar donde se debería ubicar el vivero para que éste sea rentable y produzca plantas de buena calidad. Para lograr el objetivo se deben considerar algunos factores, tales como como:

1.1.1. Clim El lugar seleccionado para ubicar el vivero debe tener similares condiciones climáticas a las que tendrá el lugar definitivo de plantación; es decir, las condiciones climáticas que posee el depósito de rela ves de interés. De este modo se acilitará el establecimiento y la aclimatación de las plantas en su lugar de desarrollo definitivo. Además, debe considerarse que durante la

viverización las plantas pasan por las etapas más sensibles de su desarrollo, por lo que es prudente evitar condiciones ambientales extremas. Por ejemplo, aquellos sectores donde ocurran constantes heladas pueden ser un riesgo para la producción si no existe una protección adecuada. Para evitar este tipo de riesgos se recomiendan sectores de exposición norte.

1.1.2. tpgf Lo ideal es que el lugar donde se va a ubicar el vivero sea un sitio plano, con un máximo de 2% a 3% de pendiente. En caso contrario, se debe hacer un vivero en terrazas lo que aumenta el costo y acilita la aparición de malezas en los taludes. En viveros de mayor escala, donde se utiliza maquinaria agrícola, se debe escoger un terreno largo o rectangular, para tener vías largas y despejadas de trabajo.

1.1.3. sl El tipo de suelo del vivero tiene mayor importancia cuando la producción es a raíz desnuda y/o el lugar es lluvioso. La producción a raíz desnuda implica que la planta crecerá directamente en el suelo, por lo que las exigencias tanto de fertilidad, como de textura y de drenaje son altas. Cuando la producción es a raíz cubierta, en lugares con escasa precipitación como los de la zona

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5| Fiilici  dpi  rlv  Cil – G n° 5: Ppgci  epci Vgl niv  emic

norte-centro de Chile, la condición del suelo no es tan relevante, pero se debe considerar el drenaje para evitar el anegamiento por inundación, ya sea por efecto de una precipitación intensa o por el riego.

bajo los 2 dS m -1 (1dS m-1 = 1 mS cm-1), sin embargo, existen especies tolerantes a mayores rangos de salinidad. En el rango 2 y 4 dS m-1 se evidencian restricciones para el normal crecimiento de las plantas.

De preferencia, para ambos casos, el suelo debe ser liviano, ranco-arenoso o arenolimoso, lo que favorecerá el desarrollo radicular (producción a raíz desnuda), mejorará el drenaje y controlará la aparición de malezas. Este último punto también puede favorecerse utilizando terrenos que todavía no hayan sido usados para una agricultura intensiva, es decir, suelos jóvenes que ayudan a disminuir el peligro de malezas.

La acidez del agua se determina a través del pH, el cual se mide con un pHmetro. El pH del agua debe estar en el rango 6 a 7. Aguas con pH mayor a 7 pueden ser muy alcalinas (básicas) y aguas con pH menor a 6 pueden ser muy ácidas. En caso de no contar con los equipos de medición, se pueden tomar muestras de agua y enviarlas para su análisis a instituciones especializadas para realizar estas mediciones (facultades de ciencias agrarias de una universidad, Servicio En ambos casos se requerirá un análisis de Agrícola y Ganadero (SAG) o laboratorios suelo. Para realizar análisis de suelos se puede privados de analítica ambiental). acudir a cualquier facultad de ciencias agrarias de una universidad, al Servicio Agrícola y Además de los factores antes mencionados, Ganadero (SAG) o a un laboratorio privado también es importante que el agua esté libre de patógenos, tales como esporas de hongos certiicado de análisis de suelos. o semillas de malezas, y que no contenga productos químicos como los de origen 1.1.4. ag agrícola (ej., pesticidas, herbicidas). Para lugares donde el agua es una limitante, como en la zona norte-centro del país, Algunas instituciones que prestan servicios este punto es uno de los más relevantes al de análisis de suelo y agua son el Instituto momento de decidir el sitio de emplaza- de Investigaciones Agropecuarias (INIA) miento del vivero. No solo será importante y el Servicio Agrícola y Ganadero (SAG). la cantidad de agua sino también la calidad. Para comunicarse con estas instituciones Algunos factores que indican la calidad de ver An al inal del documento. agua son la concentración de sales solubles (salinidad) y la acidez. La salinidad se deter- 1.1.5. Vi mina a través de la conductividad eléctrica (CE), la cual es posible medir a través de Se deben evitar lugares de emplazamienun conductivímetro. Los rangos ideales de to donde el viento sea fuerte, constante CE para la mayoría de las plantas están y llegue en forma directa. Mientras más

Producción a raíz desnuda: la planta crece y se desarrolla directamente en el suelo del vivero. Esta forma de propagación es recomendable para la zona sur del país. Producción a raíz cubierta: la planta crece y se desarrolla en un recipiente o contenedor. Esta forma de propagación es recomendable para la zona central y norte del país.

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expuestas al viento estén las plantas, mayor será la deshidratación que puedan sufrir, debido a un aumento de las tasas de evapotranspiración.

1.1.6. oici La orientación más adecuada para disponer un vivero en nuestro país es de norte a sur, siempre y cuando las condiciones topográficas lo permitan. En terrenos planos, la idea es que la confección de las platabandas (lugar donde se desarrollarán las plantas) esté orientada en sentido norte-sur. De esta orma las plantas tendrán una mayor exposición al sol. En caso que el terreno escogido esté en pendiente, las platabandas deben orientarse en forma perpendicular al sentido de la pendiente.

1.1.7. dici l lg  plci La distancia entre el lugar donde se ubicará el vivero y el depósito de relaves debe ser la menor posible. Distancias grandes encarecen el transporte y afectan el estado en que llegan las plantas al sitio de plantación. En general, se sugiere trasladar siempre a las plantas en camiones cubiertos, de forma de evitar su deshidratación por el viento.

1.1.8. M   El vivero debe ubicarse próximo a lugares donde haya suficiente mano de obra, para cumplir con la cosecha de semillas y con todas las tareas de viverización como siembra, repique, desmalezado, riego, etc. De otra orma, los costos se encarecen.

1.2. PreParaCIón deL terreno Las labores tendientes a la preparación del terreno dependerán básicamente del tipo de producción a realizar en el vivero. La producción de plantas a raíz cubierta requiere una menor preparación ya que las plantas estarán en contenedores. Sin embargo, es muy importante considerar la limpieza, la eliminación de malezas, la roturación y la nivelación del terreno. La roturación consiste en romper la capa supericial del suelo (25 cm aproximadamente) con la ayuda de un arado. Su objetivo es dar al terreno mayor permeabilidad, aireación y ayudar a la descomposición de la capa vegetal superior. En el caso de producir plantas a raíz desnuda, además de las faenas ya mencionadas, se deben agregar varias más debido a que la planta se desarrollará directamente en el suelo y de sus condiciones dependerá el éxito de la germinación y el buen desarrollo de las plántulas. En este caso, las labores a considerar son, la incorporación de enmiendas y fertilizantes y la micorrización. Estas actividades deben ser realizadas antes de la siembra, siendo la mejor época a mediados de invierno.

A continuación se detallan las aenas mínimas a realizar para la preparación del terreno.

1.2.1. Limpi El terreno escogido para la ubicación del vivero debe quedar lo más despejado posible. Por esto se recomienda eliminar árboles,

El organismo estatal que regula la tenencia de un vivero es el Servicio Agrícola y Ganadero (SAG), por lo tanto, cuando se decide establecer un vivero éste debe ser inscrito oficialmente ante el SAG. Para mayor información se puede acceder a la página: www.sag.gob.cl

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matorrales, piedras o cualquier objeto que palas niveladoras para tractor, palas de cola dificulte su laboreo. Los desechos orgánicos de tractor, tablones pesados de tiro animal como plantas, ramas y raíces pueden ser o elementos más sencillos como rastrillos utilizadas a uturo para la abricación de y tablones para emparejar la superficie. En caso que el terreno escogido tenga una compost o sustrato orgánico. pendiente muy fuerte y no sea posible 1.2.2. elimici  ml nivelar el terreno se deberá considerar la posibilidad de construir terrazas, en sentido Uno de los obstáculos más frecuentes y perpendicular a la pendiente. diíciles de controlar en un vivero son las malezas. Lo más recomendable es arar y rastrillar el suelo para eliminarlas en 1.3. InstaLaCIones, InFraestruCtura orma mecánica. Esto debe iniciarse en el y MaterIaLes verano precedente a la primavera en la que se realizará la siembra. Debido a que La infraestructura que debe tener un vivero probablemente éstas vuelvan a aparecer se dependerá del objetivo que se le quiera recomienda hacer un último rastraje antes dar. Así, existen viveros permanentes y de iniciar las actividades de siembra. Muchas temporales. Un vivero permanente es aquel veces esto no es suiciente y se requerirá que debe producir plantas por varios años la eliminación por medio de productos o que requiere producir plantas de mayor químicos llamados herbicidas, los cuales se desarrollo, por lo que su infraestructura es describen en detalle en el Punto 6. Uno de mucho más completa y, por lo tanto, su los más utilizados es Roundup® en dosis costo es mayor. Generalmente éste cuenta con oficina, casa de vigilante y garaje, entre de 3 a 5 L ha -1. otros. Los viveros temporales son transitorios; 1.2.3. rci  ivlci se usan cuando sólo se requieren plantas por una o dos temporadas. En este caso el La roturación del suelo permitirá que éste tamaño de las plantas no es requisito. Estos tenga una buena permeabilidad lo cual ayu- viveros tienen una inraestructura sencilla, dará al buen drenaje e infiltración del agua, por lo que su costo no es muy alto. evitando inundaciones. Además, produce una mejor aireación del suelo y acilita la El tamaño que debe tener un vivero está incorporación de fertilizantes, enmiendas y dado por la cantidad de plantas a producir. micorrizas, aspectos fundamentales cuando La distribución de la infraestructura depense quiere producir a raíz desnuda. Para au- derá de dónde y cómo irán las platabandas, mentar la permeabilidad es necesario roturar ya que estas son la infraestructura de mayor con un arado de disco o utilizando un arado envergadura y en consecuencia las que a tracción animal. La profundidad debe ser ocupan la mayor parte de la supericie. A entre 20 y 30 cm. También es posible utilizar continuación se nombran algunos tipos de un motocultivador. Posterior a esta actividad infraestructuras que facilitarán la producción se puede ejecutar la nivelación, que consiste dentro de un vivero: en dejar el terreno lo más plano posible. Sin embargo, se debe tener la precaución de no 1.3.1. sm remover la parte orgánica del suelo (en el caso de la producción a raíz desnuda). Para Es la estructura que dará la protección nerealizar la nivelación se pueden emplear cesaria a las plantas de la exposición directa

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al sol y a las semillas del ataque de pájaros. También se utiliza en menor medida para dar protección a las plantas de las heladas. El sombreadero puede ser rústico, en caso de un vivero temporal o de pequeñas dimensiones, o más elaborado si va a ser permanente. Un sombreadero rústico se puede construir a modo de ramada, con las ramas disponibles en el lugar, con coligües o con alambres tensados a árboles o polines sobre los cuales se pone un cobertor. Si se desea elaborar un sombreadero un poco más resistente se puede construir una estructura de madera, colocando postes en la periferia del área productiva a los cuales se les pondrán alambres tensados para luego cubrirla con cobertor.

disminuirá la entrada de semillas de malezas transportadas por el viento y acilitará la pulverización de productos químicos y la aplicación del riego. Al instalar una cortina cortaviento se debe tener la precaución de no producir excesiva sombra y humedad en el vivero. Debe ser dispuesta lo más perpendicular posible a la dirección del viento. En caso que éste provenga de varias direcciones, se deberá colocar en forma de “L” o rodeando todo el perímetro de ser necesario.

La cortina cortaviento puede ser natural o artificial. Una natural se obtiene manteniendo la vegetación ya existente en el perímetro exterior del vivero, donde azota el viento. En caso de no existir, se puede Los cobertores comúnmente utilizados crear una plantando 2 a 3 hileras de árboles para producir sombra son mallas plásticas de rápido crecimiento dispuestos en forma y se encuentran ácilmente en el mercado alterna, separados 1,5 a 2,5 m sobre hilera con el nombre de malla Raschell o malla y entre hileras 1,5 y 3 m. Algunas especies “kiwi”. Existen mallas de distintas cober- que cumplen con estos ines son las exóturas o grados de filtración de los rayos ticas, Populus sp. (Álamo), Casuarina sp. solares, lo que permitirá escoger el grado (Casuarina), Acacia melanoxylon (Aromo) de sombra que tendrá el vivero. En climas y Acacia saligna (Aromo). La desventaja más secos y cálidos, como la zona norte y es que deben plantarse lo antes posible, central del país, se usa una cobertura más ya que su protección radica en el tamaño. densa, entre 50% y 80% de disminución de Por otro lado, las cortinas artificiales pueden luminosidad. construirse con una estructura de madera, Las mallas deben colocarse a una altura como polines dispuestos a cierta distancia, mínima de 2 – 3 m sobre el suelo o a 1 m unidos con alambres y recubierto por una sobre los contenedores que se encuen- malla Raschell o malla “kiwi”. Su desventaja tren sobre mesones. Sobre invernadero, radica en el mayor costo. la malla debe ser instalada a unos 70 cm por sobre la cubierta plástica, cubriéndolo 1.3.3. Pcci c iml completamente. Para controlar el ataque de animales contra las plántulas en propagación será necesario 1.3.2. Ci cvi proteger todo el perímetro del vivero con En caso que el vivero esté expuesto a fuer- un cerco. Para evitar la entrada de animales tes vientos, se debe instalar una cortina de gran envergadura se puede hacer un cortavientos para disminuir su velocidad. cerco con polines de madera impregnada, Esto evitará la deshidratación de las plantas separados cada 2,5 o 3 metros y con 4 a 5 debido a una excesiva evapotranspiración, hebras de alambre de púa. Para animales

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más pequeños como conejos o roedores, lo ideal es que el cerco sea de malla de alambre (malla gallinero) enterrado bajo el suelo por lo menos 15 a 20 cm y tenga una altura de 1m, y esté tensado con alambre. También se podría implementar un seto o cerco vivo con cactáceas como el Copao ( Eulychnia acida ); la metodología de propagación por columnas de cactus se detalla en el punto 2.2. Los pájaros también pueden causar daños dentro de un vivero, debido a que atacan las semillas y las plántulas. Su control se basa en espantarlos ya que es costoso ponerles barreras físicas para evitar su entrada. Se pueden utilizar espantapájaros, colgar tiras plásticas como cintas de videocasete o tiras de papel brillante (plateado) que darán reflejos con el sol, también se pueden colgar bolsas plásticas. Otro método es hacer ruido, simulando un escopetazo; para esto se puede realizar una huasca o golpear dos tablillas de madera colgantes con el viento.

1.3.4. bg

1.3.5. Ci Se denomina criadero al lugar donde permanecerán las plantas la mayor parte del tiempo de viverización. En este lugar las plantas alcanzarán su óptimo desarrollo antes de ser establecidas en terreno. El criadero está constituido por platabandas, sobre las cuales irán directamente las plántulas (raíz desnuda) o las bolsas o contenedores con las plantas (raíz cubierta). La orientación que deben tener las platabandas es de norte a sur. Las dimensiones de las platabandas para la producción a raíz desnuda son relativas; pueden tener entre 1 y 1,20 m de ancho por un largo variable. Entre platabandas se deben dejar pasillos, los cuales pueden ser de 40 cm. La preparación de la platabanda a raíz desnuda contempla una mayor preparación del suelo como incorporación de fertilizantes, enmiendas y micorrizas, lo que se detalla en el Punto 3.0 más adelante. Cuando la producción es en bolsas plásticas (raíz cubierta) se puede hacer una platabanda con tablas de madera o coligües de un alto aproximado de 10 cm creando un rectángulo para que las bolsas queden irmes y no haya riesgo que se caigan o inclinen. Dentro de las platabandas en el suelo, y antes de poner las bolsas con las plantas, se puede poner un plástico para evitar que las raíces traspasen la bolsa y se anclen al suelo; sin embargo, se debe tener la precaución de no producir anegamiento al momento del riego.

La bodega será el lugar donde se almacenarán productos fitosanitarios, herramientas y algunos materiales. Lo más recomendable es que los productos itosanitarios se encuentren en una bodega independiente y que cumpla con algunas normas de seguridad. Se recomienda que la bodega tenga estanterías adecuadas para conservar los productos y mantener el orden, y que sea de exclusivo uso de productos químicos. No se debe almacenar nunca en ella alimentos. Se debe colocar a la entrada En caso de producir plantas en contenedoun letrero claro que diga “Bodega de pro- res tipo bandejas, se puede elaborar una ductos fitosanitarios” “Acceso restringido”. platabanda con cierta altura del suelo utiliLa bodega debe ser mantenida con llave zando tablas y creando un marco rectangular y debe ser ubicada lejos de las viviendas sobre el cual se ponen listones atravesados y de los lugares de almacenamiento de y sobre ellos las bandejas (Figura 1.1). Otra alimentos. alternativa económica y eficaz para este tipo

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de contenedores es hacer un mesón de 0,7 o 1 m de alto utilizando polines y tablones (Figura 1.1). El soporte para las bandejas se puede hacer con alambre tensado a lo largo de la estructura. También se podría recubrir con una malla metálica. La ventaja de tener en alto las bandejas es que se facilita la manipulación en las diferentes actividades como riego, repique, desmalezado, etc. Se pueden hacer mesones de 2 m de ancho o de un ancho que sea conveniente según el tamaño de las bandejas y con pasillos que permitan un fácil trabajo, como por ejemplo de 1 m de ancho.

1.3.6. Cm f La cama ría sirve como lugar de enraizamiento del material vegetativo como esquejes y estacas o como lugar de aclimatación de plantas entre la cama caliente y el ambiente exterior. La cama fría consiste en un cajón de madera de 30 cm de profundidad de dimensiones variables y con patas. Si la cama ría es de grandes dimensiones, ésta se debe separar con divisiones cada 80 o 100 cm. Si se requiere una de menor tamaño bastará con utilizar un cajón frutero. La madera debe ser protegida de pudriciones por lo que es recomendable pintarla por dentro con un fungicida. El sustrato que se utiliza comúnmente para la cama fría es

la arena, la cual puede ir sola o mezclada en partes iguales con vermiculita, turba o corteza compostada. La cama fría requiere una cubierta plástica, la cual puede tener un alto de aproximadamente 70 cm. Es importante que esta cubierta sea desmontable o alzable a los costados para permitir la aireación a las horas de mayor calor. Se pone orientado en sentido norte-sur. Lo ideal es que la cama fría reciba el sol de la mañana y evite el de la tarde. Algunas especies que pueden ser propagadas en cama ría son por ejemplo estacas de Buddleja globosa (Matico), esquejes de Escallonia illinita (Siete camisas), Escallonia rubra (Ñipa roja), Fabiana imbricata (Pichiromero), Fuchsia lycioides (Palo de yegua), Podanthus mitiqui (Mitique), Proustia cunei folia (Pucana), Proustia ilicifolia (Huañil) y Pleocarphus revolutus (Cola de ratón).

1.3.7. Iv Es una estructura metálica o de madera, recubierta por plástico o vidrio, que tiene la función de dar protección a las plantas en su primera etapa de desarrollo contra factores ambientales como lluvia, río y viento. El objetivo del invernadero es mantener las plántulas en un ambiente controlado, para lograr alargar su estación de crecimiento y

Figura 1.1. Distintos tipos de platabandas en altura para mantener contenedores como bandejas tipo speedling. A la izquierda, platabanda de madera de 10 cm de altura; al centro, platabanda metálica de 1 m

de altura; a la derecha, platabanda de madera de 1 m de altura.

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¿Cómo elaborar una cama fría casera?

Los materiales que se necesitan para hacer una cama fría son los siguientes: cajón de madera (60 a 80 cm de largo x 40 a 50 cm de ancho x 30 cm de profundidad), pintura antihongos o fungicida cúprico, 2 listones de 70 cm de largo, 1 listón de la misma dimensión del largo del cajón, plástico transparente de 2,5 m largo x 1 m de ancho, clavos pequeños (grapas o chinches) y sustrato. El cajón se debe pintar por dentro y por fuera con el fungicida. Los listones de 70 cm se fijan en el medio de los extremos del cajón en forma vertical, de modo que estos sobresalgan 40 cm del borde del cajón. Para unir los listones verticales se clava otro listón atravesado en forma horizontal. Se cortan dos triángulos del plástico y se coloca cada uno a un extremo, fijándolo al listón vertical y al borde del cajón. Con el resto del plástico se elabora un rectángulo de 1 m x 1,70 m y se fija a la parte media del listón atravesado horizontalmente, de modo que cuelgue en los extremos en forma de carpa. Una vez terminada la cama fría debe rellenarse con el sustrato, el que puede ser sólo arena o una mezcla en partes iguales de arena con vermiculita.

así obtener plantas más grandes en menor tiempo. Los actores determinantes en el éxito de un invernadero son la humedad, la temperatura y la luz. Para regular estos actores es necesario conocer los requerimientos de las plantas y el tipo de material genético a propagar. Por ejemplo, si se quiere lograr el enraizamiento de esquejes, la humedad debe ser alta ya que esto hace que las plantas disminuyan su transpiración, evitando la deshidratación. Cuando el invernadero alcanza ciertos niveles de temperatura y humedad éstos

pueden ser regulados a través de la ventilación. Por ello se hace imprescindible que el invernadero tenga ventanas o algún otro tipo de ventilación como paredes alzables (Figura 1.2). La mayoría de las plantas crecen bien con temperaturas entre los 18° y 21ºC; sin embargo, durante el verano éstas pueden llegar hasta los 25ºC o más, momento en que es fundamental la ventilación. Para aumentar la humedad del ambiente se puede rociar su interior con humificadores, instalar una muralla de agua o mantener una bandeja con agua. Una buena regulación de la temperatura y humedad evitará la proliferación de hongos, la que podría ser neasto para las plantas. Para optimizar la entrada de luz

Fig 1.2. Diferentes sistemas de ventilación en invernaderos. A la izquierda costados alzables y a la derecha

puerta y ventanas.

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al invernadero estos deben estar orientados en dirección norte a sur.

Existe una variada gama de invernaderos según las necesidades de producción; sin embargo, en este caso se dividirán en tres grupos, los tecnificados, los invernáculos y las unidades individuales. A)

Invernaderos tecnificados

Generalmente son estructuras de gran tamaño, que permiten el trabajo dentro de él. La ventaja que tienen estos invernaderos es que es posible lograr un alto grado de regulación ambiental a través de equipos especializados; sin embargo, su costo de construcción y mantención es alto. Como ya se mencionó anteriormente, la ventilación es de suma importancia, por lo que este tipo de invernadero debe contar con ventanas o respiraderos. El equipamiento de utilidad en un invernadero incluye: • Calefactoreseléctricos,a gaso parafi na: sirven para regular la temperatura

dentro del invernadero. Los más eficaces son los calefactores eléctricos ya que generalmente cuentan con un termostato, lo que permite optimizar la energía y el calor. Al utilizar calefactores con combustibles ósiles se debe tener ciertas precauciones ya que éstos podrían producir gases tóxicos para las plantas. Se debe considerar que los calefactores son generalmente necesarios en climas fríos siendo prescindibles en climas más cálidos como la zona norte y centro del país. Otra alternativa factible para la zona norte es la utilización de paneles y calefactores solares que aprovechan la energía proveniente del sol. • Indicadoresdetemperaturayhumedad:

se utilizan para registrar la oscilación de temperatura y humedad dentro del

invernadero, datos que servirán para ajustar los caleactores y la ventilación. Los instrumentos posibles de utilizar para medir la temperatura son los termómetros de máxima y de mínima, que tienen la ventaja de dejar registradas las temperaturas extremas, además de ser de bajo costo. Para medir la humedad se puede utilizar un higrómetro. • Ventilador: ayuda a la circulación del aire dentro del invernadero. Por lo tanto,

ayuda a la regulación de la temperatura y humedad. Además, sirve para renovar el aire si se abren las ventanas o puertas. El ventilador, ya sea industrial o casero, debe ser instalado al ondo, opuesto a la puerta. • Protección externa(cobertor o sombreadero): ayudará en verano a evitar un sobrecalentamiento del invernadero y en invierno a disminuir los costos de calefacción. Para reducir la temperatura, sobre todo en verano, se pueden utilizar mallas Raschell, pinturas de fácil remoción con agua una vez que termine la época de mayor calor, láminas de policarbonato o persianas. En regiones donde el invierno es muy frío, se pueden disminuir los costos de caleacción utilizando un aislante, el cual debe permitir la entrada de luz al invernadero. Una opción es el plástico transparente que es económico y permite una buena entrada de luz, otra alternativa es el plástico con burbujas de aire, que entrega un mayor aislamiento pero su costo es alto. • Luz artificial: sirve para aumentar el tiempo de disponibilidad de luz (fotope-

ríodo) y la intensidad. Es especialmente útil para acelerar el crecimiento inicial de las plántulas, sobre todo en invierno y primavera, lo que permite obtener plantas de mayor crecimiento y desarrollo

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en un tiempo menor. También ayuda al desarrollo de los esquejes, disminuyendo el tiempo que demoran en enraizar. • Sistemaderiego: se debe considerar que en

un invernadero las plantas se encuentran en la etapa de germinación y emergencia, por lo que el riego debe ser suave para evitar la remoción de semillas o el daño ísico de las plántulas. Un medio económico de utilizar es una simple regadera, la que idealmente debe tener orificios pequeños para proporcionar un riego suave. Otro sistema económico es el riego por capilaridad. Para elaborar este tipo de sistema se debe hacer una especie de piscina rellena con arena a la cual se le agregará el agua necesaria para que ésta

suba por capilaridad a las macetas que se encuentran en contacto sobre ella. La ventaja de este método es el ahorro de tiempo y la entrega directa del agua al sistema radicular de la planta; sin embargo, tiene la desventaja que proporciona demasiada humedad en invernadero. Métodos más tecnificados son por goteo o por aspersores. El riego por goteo va a ras del contenedor de propagación y entrega gota a gota el agua necesaria para las plantas; su ventaja radica en que el agua llega directo al sustrato lo que evita el contacto de las plántulas con el agua. El riego con aspersores se eleva sobre las plántulas, entregando el agua en orma de lluvia cayendo directamente sobre las plantas.

Cncción  n invna i INIA (5 x 20 m) - fia 1.3 Materiales: 200 coligües de 5 m - 300 m2 de plástico (0,15 a 0,2 cm) - 20 piezas de madera de 1”x4”x 3,60 m - 48 chocos de 4”x4”x 0,8 m - 16 postes de 3”x3”x 3,60 m – 3 k de clavos de 3” – 160 m de hilado – alambre galvanizado Construcción: – Construir el marco nivelado con las tablas y los chocos. – Construir los marcos de las puertas con una altura de 2,60 a 2,80 m. – Colocar los pies derechos y horizontales cada dos metros dentro del marco. – Unir los pies con largueros. – Colocar los arcos; los coligües se entierran aproximadamente 40 cm. – Unir los coligües pasando por los pies derechos. – Colocar los largueros costados. – Colocar los diagonales de los arcos cada tres arcos. – Colocar largueros arriba. – Poner los plásticos en los frentes, a los dos lados cosidos con el primer arco. – Colocar las bandas del plástico en el sentido contrario al viento. – Fijar las bandas en la tierra.

Figura 1.3.BosquejodeuninvernaderotipoINIA

20


B)

Invernáculos

Son invernaderos más sencillos y económicos ya que no cuentan con sistema de calefacción. Consisten en una pequeña estructura, que generalmente no tiene más de un metro de alto y está recubierta por plástico transparente, el cual si es de polietileno se recomienda que tenga un espesor de 0,1 a 0,15 mm. Según su forma y materiales existen varios tipos de invernáculos: • Tipo túnel: consiste en crear un túnel

con arcos de materiales lexibles como coligües, PVC o alambres. Sobre esta construcción se pone un plástico transparente anclado en los extremos con estacas. Si se desea dar mayor irmeza, se pueden poner dos elásticos paralelos

a cada arco. La ventaja de esta estructura es que el plástico de ambos costados del túnel puede ser alzado para permitir la aireación (Figura 1.4). • TipoA: se pueden utilizar palos o coli-

gües anclados al suelo, los que unidos en la parte superior darán la orma de “A” o triángulo. En la unión y en orma horizontal se coloca otro palo atravesado sobre el cual se pondrá el plástico transparente. Es importante que el plástico de uno de los lados sea alzable para permitir la ventilación. • Tipotúnelrígido: se elabora creando arcos

metálicos, de PVC o coligües; dentro de ellos se pone en orma arqueada una plancha plástica reorzada con ibra de vidrio.

Fig 1.4. Invernáculo tipo túnel. De izquierda a derecha: Construcción de la estructura, se observan las estacas y los arcos de PVC; invernáculo terminado. Cncción  n invnác i ún - fia 1.4 Materiales para un invernáculo que cubra una platabanda de 4 m de largo por 1,3 m de ancho: 4 tubos de PVC de ¾ pulgada (largo variable, depende de la altura del invernáculo), 8 estacas de tubos de PVC de 1¼ pulgada (15 cm aprox. cada uno) cortados en la base en forma oblicua, elásticos de 1 cm de diámetro (mismo largo de los tubos PVC de ¾ pulgadas), polietileno transparente de 3,2 x 7 m, cáñamo o cordel, 2 estacas de madera de 20 cm. Construcción: – Para ambos costados a lo largo de la platabanda poner 4 tubos de PVC separados cada 1,3 m y enterrados firmemente en el suelo (Figura 1.4, foto izquierda). – Insertar los extremos de los 4 tubos de PVC en las estacas de modo que queden cuatro arcos paralelos (Figura 1.4, foto izquierda). – Enterrar las estacas de madera a una distancia de 1 m. aproximadamente de los extremos de la platabanda. – Cubrir la estructura con el plástico y tensar los extremos del plástico a las estacas de madera ayudado del cáñamo (Figura 1.4, foto derecha). – En forma paralela a los arcos y sobre el plástico poner los elásticos (Figura 1.4, foto derecha).

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Unidades individuales

C)

Corresponden a unidades de materiales caseros muy sencillos. Debido al tamaño de estas unidades sólo servirán para cubrir pequeñas superficies o plantas individuales. Algunos materiales que sirven para hacer un mini invernadero son: • Bolsaplásticatransparente: se pone sobre

la planta, la que debe estar protegida por un arco de alambre u otro material flexible que evite el contacto de la bolsa con la planta. • Botellaplásticatransparente: se debe cortar la base de la botella para que quede como una campana, la cual se

coloca sobre la planta. La tapa de la botella se mantiene ya que servirá como vía de ventilación. • Vasoplásticotransparente: al igual que

la botella, se utiliza como campana para cubrir las plantas, es decir, dado vuelta (Figura 1.5).

1.3.8. Cm cli Es de gran utilidad para acelerar la germinación de algunas semillas y el enraizamiento de los esquejes. Consiste en dar calor de ondo al sustrato donde se encuentran las semillas o estacas. Una buena temperatura para la mayoría de las plantas es 18 ºC, aunque ésta puede variar en un rango entre 15 y 21 ºC para la mayoría de las especies. Temperaturas en el sustrato mayores a 25 ºC no son recomendables. Existen varias formas de proporcionar calor al sustrato, tales como mantas de propagación o propagador con temperatura; sin embargo, utilizar desechos orgánicos también es una alternativa. Especies que enraizan bien en cama caliente son Heliotropium spp. (Palito negro) y Oxalis gigantea (Churqui).

1.3.9. sim  ig El sistema de riego que se desee implementar en el vivero dependerá de muchas

Fig 1.5. Vaso plástico transparente utilizado como campana para mantener la humedad y temperatura

del microambiente durante la germinación de semillas (a la izquierda) y de enraizamiento de estacas (a la derecha).

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eabación  na cama cain cn ch ánic: Los materiales necesarios para hacer una cama caliente son paja, guano de caballo fresco, estructura de fierro de 1x1x1 m rodeada en sus costados (paredes) y fondo por malla gallinero fina. Se depositan dentro de la estructura capas de guano de 30 cm alternado con capas de paja de 10 cm y se esperan alrededor de seis días para que se efectúen los procesos de descomposición que producirán calor. Las almacigueras ya sea con semillas o esquejes se ponen sobre la cama. La vida útil de la cama caliente es de un mes; sin embargo, el material descompuesto podrá servir de abono.

variables. Entre las más importantes se y frecuencias de riego se detallan en el encuentra la temporabilidad del vivero y capítulo de riego. el presupuesto destinado para esta actividad. Cualquiera sea la elección, este debe 1.3.10. almcig optimizar y racionalizar al máximo el uso del agua, sobre todo cuando se trata de Se denomina almaciguera a la estructura zonas áridas y semiáridas. Todo sistema o recipiente donde se producirán los alde riego tiene sus ventajas y desventajas; mácigos (Figura 1.6). Los almácigos son por ejemplo, mientras más tecniicado sea plántulas obtenidas a partir de semillas el riego mayor será su costo pero menos que luego de alcanzar cierto tamaño tiempo se perderá en realizar la actividad. serán repicadas al lugar definitivo de Los tipos de sistemas de riego, cantidades desarrollo. Una almaciguera puede ser

Fig 1.6. Distintos tipos de almacigueras. De izquierda a derecha y de arriba hacia abajo: almacigueras plásticas transportables, de plumavit con celdas transportables, de plumavit sin celdas transportable y

almaciguera de madera fija.

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cualquier recipiente que cumpla con las siguientes características, tener un buen drenaje y una profundidad adecuada. Un buen drenaje se logra con una correcta mezcla de sustratos y con peroraciones en la base del recipiente que permitan el escurrimiento vertical del agua. La profundidad del envase dependerá de la especie que se desea cultivar; para árboles se recomienda una profundidad de 15 cm, para arbustos 10 cm y para lores entre 5 cm y 10 cm aproximadamente. Se pueden utilizar cajones, maceteros, cubetas de helado, vasos plásticos, etc., o cualquier recipiente que tenga un peso y

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tamaño adecuado para permitir su traslado. Si se desea coneccionar una almaciguera para el cultivo de árboles por ejemplo, está puede ser de madera con las siguientes dimensiones: 60 cm de largo x 40 cm de ancho x 15 cm de proundidad. Para que estás sean reciclables se debe pintar en su interior con ungicida de orma de evitar la pudrición. Otro tipo de almaciguera son los denominados speedling o bandejas de poliestireno con celdas; hay en diversas dimensiones pero las que tienen 104 celdillas con un volumen de 64 cm 3 son las más recomendables para producir plantas con un buen volumen de raíces.


2| Metodologías para la Propagación de Plantas

L

a propagación consiste en generar un nuevo individuo a partir del germoplasma (ej., semillas, esquejes, bulbos, rizomas, yemas vegetativas y florales) de una planta cualquiera. Se conoce como reproducción o propagación sexual cuando se utilizan semillas y multiplicación o propagación vegetativa cuando se utilizan esquejes, estacas y bulbos, entre otros. El material escogido para la propagación dependerá básicamente de cada especie y del objeti vo que se desee lograr, ya que cada una de éstas tiene sus ventajas y desventajas. En general, según el hábito de la especie, es posible escoger la unidad a propagar; algunas de estás se ejemplifican en la Tabla 2.1.

La obtención del germoplasma (unidad de propagación) desde el mismo lugar o zona del proyecto de itoestabilización permite generar las plantas más adecuadas para crear un ecosistema lo más similar posible al que existe alrededor del depósito de relaves o al que existió alguna vez bajo él en orma natural. Para asegurar la diversidad vegetal, es decir, la variabilidad de especies, hay que observar y estudiar el entorno natural, el cual muchas veces ha sido tan fuertemente alterado que ya poco queda de lo que era originalmente. En este caso, es importante averiguar a través de la bibliograía disponible la flora que habría existido en ese lugar. De esta forma se puede obtener una idea del ecosistema que se desea replicar

taba 2.1 Unidades de propagación usadas según el hábito de crecimiento de las plantas Hábi

unia  aación

Pastos y herbáceas anuales

Semilla

Herbáceas perennes (bulbosas)

Semilla, bulbo, cormo, rizoma, tubérculo

Cactáceas

Semilla, esqueje

Arbustos y hierbas perennes

Semilla, esqueje, estaca

Árboles

Semilla, estaca

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o rehabilitar. Esta información, que se encuentra disponible en el manual “Flora asociada a los depósitos de relaves”, más la de las especies potenciales para cultivar sobre depósitos se debe interpolar, para así escoger las especies más adecuadas para el lugar. Adicionalmente, la guía metodológica de itoestabilización debe ser revisada de forma de obtener las bases fundamentales para un proyecto de itoestabilización.

calidad y a veces tienen cierto grado de mejoramiento, lo cual contribuye a obtener una planta de buena calidad. En algunos casos, estas semillas vienen con análisis de laboratorio que indican porcentaje de germinación y tratamientos que ayudarán a la germinación del lote de semillas adquirido (Figura 2.1). En el país, existen dierentes

2.1. ProPaGaCIón Por seMILLas La semilla es la forma de reproducción sexual de las plantas. Una vez realizado el proceso de fecundación, la planta es capaz de generar un embrión dentro de la semilla, la cual puede ir protegida por el fruto, como en el caso de las plantas con lores o angiospermas, o descubiertas, como en el caso de las plantas del grupo de las gimnospermas o coníeras (ej., pinos y cipreses). La utilización de las semillas como fuente de propagación tiene sus ventajas y desventajas, tal como se indica en la Tabla 2.2. El abastecimiento de semillas se puede obtener a través de la cosecha directa en terreno o, alternativamente, se podrían comprar en el comercio, ya que éstas son de buena

Figura 2.1. Semillas comerciales con toda la información necesaria para obtener una buena

germinación.

taba 2.2 Algunas ventajas y desventajas de la propagación de plantas a partir de semillas Vnaja

dvnaja

– Fácil recolección, transporte y almacenaje. – Aporte de variabilidad genética, es decir, vienen representadas las diferentes características genéticas de una población. – Sistema radicular de mejor calidad. – Permite realizar mejoramiento genético. – Existen menos posibilidades de transmisión de enfermedades.

– Desarrollo y crecimiento más lento. – En muchos casos no tienen la similitud deseada con la planta madre de interés. – La etapa de juventud puede durar mucho tiempo, por lo que la producción de flores y semillas demora más. – Algunas semillas son de difícil germinación o germinan en porcentajes bajos.

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instituciones o empresas que comercializan semillas nativas (ver Anexos). En caso de no contar con semillas comerciales se deberán obtener en terreno, lo cual implica considerar una serie de aspectos como cosecha y almacenamiento.

2.1.1. Cc  l mill La cosecha de las semillas consiste en la recolección de éstas o del fruto donde vienen inmersas, una vez que hayan alcanzado la madurez. Las semillas sanas, o sea de mayor peso y tamaño dentro de una misma especie, son las que producen las plantas más vigorosas, debido a la mayor cantidad de reserva energética y a la buena calidad del embrión.

En esta etapa también es importante considerar cierta inormación como: • Procedencia delas semillas: se refiere

al lugar geográfico de colecta de las semillas. Este punto es muy importante ya que las semillas que se originan en un lugar geográico determinado tienen las características para adaptarse a ese lugar especíico, sobre todo en especies de amplio rango de distribución. Por lo tanto, puede ser que estas especies tengan adaptaciones específicas a cierto tipo de clima o suelo. Bajo esta consideración sería beneicioso priorizar la cosecha de semillas de plantas que hayan colonizado el depósito de relaves que se desea restaurar, o bien de lugares aledaños a él. Si no es posible colectar semillas desde estas áreas ya sea por que no hay plantas colonizadoras, el material es de mala calidad, el número de semillas es insuficiente, no se encuentran las especies que se desean

establecer o se quiere utilizar alguna especie mejorada genéticamente, entonces será necesario obtenerlas de terceros. • Seleccióndelosindividuosacosechar:

se deberán elegir plantas que estén en buenas condiciones fitosanitarias (libres de inecciones producidas por hongos o insectos) y se observen vigorosas ya que éstas producirán semillas de mejor calidad. Esta consideración será relevante al colectar semillas de especies arbóreas y arbustivas para la producción de plántulas. En caso de colectar herbáceas para la etapa de siembra directa sobre el depósito de relaves, entonces será mejor priorizar la cantidad que la calidad, ya que en esta etapa se requieren grandes volúmenes de semillas. Otro factor a considerar en la elección de los individuos a cosechar es el uso potencial que se desea dar a las especies, ya que si son para fines de restauración/rehabilitación será bueno escoger plantas que representen toda la diversidad genética, escogiendo plantas de distintos sectores geográicos donde se encuentra la población de interés. En cambio, si se desean establecer algunas especies para fines productivos, será mejor escoger individuos que destaquen del resto en cuanto a la característica que se desea potenciar. Por ejemplo, escoger plantas con altas tasas de loración y posterior fructificación si lo que se desea es la comercialización de sus frutos o semillas, o árboles de buen tamaño y forma si se desea producir madera. • Fecha adecuadade colecta: permitirá

conocer el período óptimo de cosecha y asegurará la madurez de la semilla. Se debe considerar que este período es diferente para cada especie; sin embargo, es posible estimar el rango de fructificación según el hábito de vida (Tabla 2.3).

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Dentro de los períodos mencionados anteriormente es importante hacer visitas a los sitios escogidos para la recolección de las especies seleccionadas, ya que a veces el proceso de maduración y dispersión de las semillas puede ser muy rápido. Existen ciertos indicadores morfológicos en el fruto que permiten reconocer cuándo es el momento óptimo para la recolección, antes de que se produzca la dispersión masiva. Aunque

no siempre serán totalmente clarificadores, algunos de estos indicadores se indican en la Tabla 2.4. • Cantidaddesemillasacolectar: depen-

derá de la inalidad que se quiera dar a las semillas. Para el caso de la itoestabilización se requerirá semillas para cumplir dos objetivos, primero para la incorporación de una cubierta herbácea

taba 2.3 Época de colecta de las semillas en la zona árida y semiárida de Chile, según el hábito de crecimiento de las plantas Hábi

famiia

Éca  cca

Pastos

Gramíneas

Finales de invierno hasta fines de primavera.

Cactáceas

Cactáceas

Mediados de primavera hasta fines de verano.

Arbustos y hierbas perennes

Compuestas, Solanáceas, Chenopodiáceas

Finales de primavera hasta fines del verano.

Árboles

Leguminosas, Anarcadiáceas

Mediados de verano hasta mediados de otoño.

taba 2.4 Indicadores morfológicos generales que indican el grado de maduración del fruto de las plantas ti  

Inica móic  maación  

Frutos carnosos como bayas y drupas

El pericarpio o cubierta carnosa cambia de color, del verde a los tonos rojizos, morado, negro, café oscuro o amarillo; la pulpa se vuelve suave, dulce y aromática.

Frutos secos tipo vainas y cápsulas

Se vuelven gradualmente más secos. Al agitar el fruto en el caso de algunas especies como las leguminosas las semillas se escuchan sueltas dentro de él.

Frutos secos dehiscentes (que se abren)

Comienzan a abrirse y se encuentran algunas semillas en el suelo ya dispersadas. En algunas especies pasan del color verde al amarillo o al gris.

Frutos secos indehiscentes (que no se abren) como cariopse (frutos de gramíneas)

Pasan del color verde a tonos amarillentos o cafés.

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directa al depósito y segundo para la obtención de plántulas de leñosas. Para cumplir la etapa de siembra directa se deberá contar con un gran número de semillas, sobre todo en casos donde el depósito sea de grandes dimensiones. En este caso es mejor adquirirlas en el mercado o programar la actividad con anticipación para contar con mano de obra suiciente y con varias estaciones de cosecha. El segundo objetivo requiere menor cantidad de semillas, pero siempre es mejor colectar un poco más de semillas ya que se deben considerar las pérdidas de plantas durante la etapa de viverización. Para estimar el número de semillas a colectar es necesario conocer el número de plantas que se requerirán para la fitoestabilización. Se debe considerar que no todas las semillas tienen la capacidad de germinar, sólo lo hará un porcentaje de ellas, lo cual es conocido como porcentaje de germinación. Para determinar el número de semillas se puede utilizar la siguiente órmula:

eci

Nº de semillas = nº de individuos x 100 % de germinación Donde: Nº de semillas: número de semillas requeridas Nº de individuos: número de plántulas a producir % de germinación: porcentaje de germinación En general, los porcentajes de germinación se clasifican en: Alta : 80-100% Medianamente alta : 60-80% Media : 40-60% Medianamente baja : 20-40% Baja : 1-20%

Algunos ejemplos de capacidad de germinación de semillas de plantas leñosas nativas se muestran en el cuadro de más abajo.

Si se va a colectar el ruto directamente, se debe tomar en cuenta que existen frutos con una o más semillas dentro de él; por lo tanto, se debe conocer el tipo de fruto que posee la especie a ser colectada. Una vez determinada la cantidad de semillas por ruto se deberá hacer el siguiente cálculo para determinar la cantidad de rutos a extraer:

Nmb Cmún

%  minación

Acacia caven

Espino

Alta

Con tratamiento

Atriplex repanda

Pasto sereno

Medianamente baja

Con tratamiento

Caesalpinia spinosa

Tara

Alta

Con tratamiento

Geoffroea decorticans

Chañar

Media

Con tratamiento

Lithreacaustica

Litre

Medianamente baja

Con tratamiento

Muehlenbeckia hastulata

Mollaca o Quilo

Media

Con tratamiento

Prosopis chilensis

Algarrobo

Alta

obvación

Con tratamiento

Prosopis tamarugo

Tamarugo

Alta

Con tratamiento

Schinuslatifolia

Molle

Baja

Sin tratamiento

Schinusmolle

Pimiento

Alta

Con tratamiento

Sennacandolleana

Quebracho

Alta

Con tratamiento

Sennacumingii

Alcaparra

Alta

Con tratamiento

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Nº de frutos =

nº de semillas semillas / fruto

Nº de frutos: número de frutos a extraer Nº se semillas: número de semillas requeridas Semillas / fruto: número de semillas que vienen en un solo fruto

Los tipos de rutos más comunes que se pueden encontrar en las especies leñosas de la zona Mediterránea semiárida de Chile norte-central son:

ruto son Porlieria chilensis (Guayacán) y Quillaja saponaria (Quillay). Varias especies de herbáceas perennes tienen este tipo de fruto como Pasithaea coerulea (Azulillo) y las del género Alstroemeria, Leucocoryne (Huilli), Rhodophiala (Añañuca; Figura 2.3), además de otras herbáceas perenne como las del género Puya (Chagual).

Legumbre: es un ruto seco dehiscente, es

decir, que se abre por si sólo para liberar las semillas al ambiente. Es de orma alargada y en su interior vienen varias semillas (Figura 2.2). Son característicos de la familia de las leguminosas, representada en Chile por géneros como, Caesalpinia spp. (Tara), Senna spp. (Quebracho) y Adesmia spp. Algunas especies poseen legumbres inde- Figura 2.3. Cápsula abierta de Rhodophiala sp. hiscente (que no se abren por sí solos al (Añañuca). madurar) como por ejemplo, Acacia caven (Espino), Prosopis chilensis (Algarrobo) y Prosopis tamarugo (Tamarugo). Aquenio: fruto seco e indehiscente (no se abre por sí solo) con una sola semilla Cápsula: es un fruto seco dehiscente, (Figura 2.4). La familia de las asteráceas con varias semillas en su interior. Algunas (compuestas) posee un aquenio con especies leñosas que tienen este tipo de vilano (pelos); es el caso de los Baccharis spp. (Romerillos), Haplopappus spp., entre muchos otros géneros.

Fig 2.2. Semillas de la familia de las leguminosas como Acacia caven (Espino) , Prosopis spp. (Algarrobo, Tamarugo) , Caesalpinia spinosa (Tara) y Senna spp. (Quebracho).

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Fig 2.4. Aquenios con vilano de algunas especies

de Asteráceas.


Cariopse: es un fruto seco indehiscente

propio de la familia de las poáceas (gramíneas; Figura 2.5).

Fig 2.5. Cariopse de algunas especies de poáceas

(gramíneas).

Baya: es un fruto carnoso dehiscente, que

incluye en su interior una o varias semillas. Dentro de las especies que poseen baya con varias semillas en su interior están las cactáceas como Eulychnia acida (Copao) y Echinopsis chiloensis (Quisco). Drupa: ruto carnoso dehiscente con una

semilla en su interior, la cual está protegida por una envoltura leñosa. Algunas especies que poseen este tipo de ruto son Lithrea caustica (Litre), Cryptocarya alba (Peumo), Jubaea chilensis (Palma chilena) y Geoffroea decorticans (Chañar). • Técnicasdeextracción: Los frutos o se-

millas se pueden obtener directamente

Importante: La cosecha de semillas no debe poner en riesgo la regeneración natural de la población a cosechar. Por ello no se debe tomar más del 20% de las semillas sanas disponibles en el momento de la recolección, sobre todo cuando se trate de especies con problemas de conservación.

desde la planta ya que la maduración del ruto ocurre semanas antes de que empiece la dispersión. Si no es posible recolectar directamente desde la planta se pueden colectar desde el suelo. Sin embargo, esta última alternativa no es conveniente ya que pueden estar dañadas por insectos u hongos, se pueden confundir con semillas de similares características de otra especie, pueden provenir de alguna planta no deseada (malezas) o ser semillas de años anteriores y por ende con menor germinación. La técnica de extracción dependerá de la unidad de dispersión (tipo de fruto), del tipo de dispersión (por viento, animales, agua o gravedad) y de la altura de la planta. La altura de la planta será una limitante que no permitirá la colecta directa, por lo cual será necesario golpear con varas o sacudir las ramas para que los frutos caigan. Se puede poner plástico, lona o malla bajo ellos para que sea más fácil la colecta. La ventaja que tiene este método es que sólo caerán los frutos que ya estén maduros. Esta técnica se recomienda para especies como Espino, Belloto del Norte, Chañar, Quillay, Peumo y Algarrobo. En otros casos, se pueden cortar las ramas que contengan los rutos con tijeras extensoras, aunque esto puede causar algún daño al árbol, por lo que es actible de realizar en especies resistentes y sin problemas de conservación.

Cuando la altura no es una limitante, las semillas se tomarán en forma manual directamente de la planta (Figura 2.6). Si los rutos son grandes, ya sean de árboles o arbustos, se puede utilizar un balde amarrado a la cintura y así tener las dos manos libres para acilitar la actividad. Si son semillas más bien pequeñas, de arbustos y hierbas perennes, se pueden sacudir las ramas dentro de una bolsa grande de papel o de una caja. Cuando las plantas

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sean muy pequeñas, como las hierbas anuales, éstas se pueden cortar enteras, considerando que se trata de una población extensa y abundante, para luego depositarlas en bolsas de papel. Para el caso de las gramíneas (pastos) la mejor técnica es deslizar la mano con guante suavemente por la espiga (desde la base al ápice) y depositarlas también en bolsas de papel; de esta orma, se desprenderán sólo las semillas maduras.

Importante: Una vez colectadas las semillas en terreno se deben mantener a la sombra en un lugar fresco, seco y aireado; nunca a pleno sol o en un ambiente caluroso. Si están en bolsa plástica, ésta debe mantenerse abierta, para evitar la sofocación de las semillas y la pudrición de los frutos.

Para cada tipo de fruto se deben tener algunas consideraciones específicas al momento de la colecta: Legumbresycápsulasdehiscentes: se recomienda tomar los frutos directamente

desde la planta antes que estos se abran y dejen caer sus semillas, sobre todo si sus semillas son aladas como es el caso del Quillay y del Bollén ( Kageneckia oblonga). Esta recomendación es también válida para las geófitas ( Rhodophiala spp., Alstroemeria spp.). Una vez que se ha abierto la cápsula ésta se puede sacudir dentro de una bolsa de papel. Aquenios: en el caso de la amilia de las compuestas ( Baccharis spp., Haplopappus spp.) cuyos frutos son generalmente disper-

sados por viento, será importante colectar las semillas antes de que éstas entren en ase de dispersión. Se puede tomar la inrutescencia con la mano o bien cosechar las ramillas con los frutos y depositarlos en una bolsa de papel. Bayas y drupas: debido a que estos frutos

son generalmente dispersados por animales se deben extraer antes que sean consumidos por ellos. Los frutos carnosos que estén muy maduros se recomienda depositarlos en bolsa plástica; para mantener la humedad se puede agregar aserrín húmedo.

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Fig 2.6. Colecta de semillas mediante extracción

manual sobre un depósito de relaves.

• Identificaciónyetiquetado: se debe iden-

tiicar en terreno la especie que se está cosechando con la ayuda de manuales de identificación, de un especialista o de algún lugareño que conozca bien la vegetación del lugar. Si no es posible, se puede elaborar un herbario para posteriormente identificar la especie con la ayuda de expertos botánicos en las universidades, institutos de investigación o en la sección botánica del Museo de Historia Natural. La mejor época para colectar el material para el herbario es antes de la cosecha de las semillas, cuando la planta está en floración; así podemos tener además de tallos y hojas, las flores y rutos que serán undamentales para reconocer la especie. La planta seleccionada para la identificación se puede dejar marcada ya sea con una cinta plástica o


un letrero plastificado, para que cuando llegue la época de fructificación se colecten semillas para la propagación y para completar el herbario. Es importante al momento de hacer el herbario no dañar la planta seleccionada para este in.

• Limpiezadesemillas: lo primero que se

debe hacer después de la colecta es eliminar las impurezas (hojas, ramas, etc.) y eliminar las semillas que no se vean sanas. Para eliminar las impurezas de forma rápida se puede utilizar un harnero de un diámetro adecuado para cada tamaño de semilla. Como segundo paso será importante disminuir el contenido de humedad de las semillas mediante secado ya que de esto dependerá un buen almacenaje.

El etiquetado de la muestra de semilla deberá llevar, con letra clara, a lo menos la siguiente información: especie, procedencia, fecha de colecta, colector y código. El código asignado a cada lote de semilla debe ser un número único (irrepetible) y debe ser el mismo para el herbario. Para Dependiendo del tipo de ruto, el procetener mayor inormación de la población samiento de la semilla será distinto. Por muestreada lo ideal es llenar una ficha ejemplo, para frutos secos indehiscente completa, como la elaborada por INIA en como los aquenios, no será necesario aplicar el “Manual de Recolección de Semillas de procesamiento. Cuando se trate de rutos Plantas Silvestres”. Para acceder a ella se dehiscentes, como legumbres y cápsulas, se puede ingresar al sitio web que se indica deberán poner a secar para que se abran más adelante en este mismo manual. y expulsen las semillas. Si son legumbres indehiscentes como es el caso del Espino 2.1.2. Pcmi  l mill y Algarrobo, se deberán triturar o romper para extraer las semillas. El procesamiento apropiado permitirá tener semillas viables, es decir, que conserven su Un fruto carnoso requerirá mayores cuidacapacidad germinativa por el mayor tiempo dos como por ejemplo la extracción de la posible. pulpa ya que si ésta no se extrae podría

¿Cóm hac n hbai? Los materiales necesarios para hacer un herbario son: una prensa (consta de dos planchas de madera con perforaciones para permitir la aireación, de 30x45 cm, apretadas por un cordel), gran cantidad de papel periódico, papel secante, cartón corrugado, tijera podadora, lápiz y etiquetas. La planta se corta entera, cuando se trata de plantas pequeñas, o partes de ella, cuando son de mayor tamaño. Lo importante es que tengan la mayor cantidad de elementos que faciliten su identificación como, hojas, flores (indispensable), frutos, corteza, raíces, etc. La muestra colectada se coloca prolijamente entre dos hojas de papel periódico, cuidando de estirar hojas, pétalos y conservar la posición natural de la planta. Se debe colocar junto a la muestra colectada el código correspondiente, de preferencia escrito en el papel. Entre cada muestra se pone un papel secante y cada cierto número de muestras un cartón corrugado, luego se prensa. Lo ideal es mantenerlo en un lugar seco y cálido. Cada 2 o 3 días el papel secante se cambia. Una vez seco las muestras se pueden poner en cartulinas sujetas con cinta adhesiva, con su nombre y código correspondiente.

33


ermentar. Una orma de extraer la pulpa es mediante la maceración, que consiste en dejar remojar en agua los rutos para descomponer la pulpa y luego extraerla. Durante este proceso será necesario cambiar periódicamente el agua (por lo menos cada dos días). Este proceso se recomienda para especies como el Chañar, la Palma chilena y el Peumo. Existen frutos carnosos grandes como por ejemplo los que poseen las cactáceas a los cuales se les pueden extraer las semillas manualmente después de haber cortado el ruto con un cuchillo. La baya, que corresponde a un ruto carnoso de menor tamaño, se puede procesar con la ayuda de un colador donde se colocan y se deja escurrir el agua. Todas las semillas carnosas a las cuales se les extrae la pulpa se deben lavar cuidadosamente y dejar secar en un lugar ventilado y fresco, a la sombra y sobre papel absorbente o papel periódico.

Hay algunas especies que poseen frutos carnosos y no requieren tanto procesamiento como es el caso del Pimiento, Huingán y Molle (Schinusspp .), basta con extraer el exocarpio (cubierta supericial del ruto). • Desinfección: en esta etapa también será

importante velar por las condiciones itosanitarias de las semillas como es el

caso de las leguminosas como el Espino y el aAlgarrobo, donde sus frutos vienen generalmente infectados con insectos (Figura 2.7) llamados brucos los cuales deben se eliminados con algún insecticida antes de su almacenamiento. Para proteger las semillas del ataque de hongos se pueden utilizar fungicidas como Pomarsol Forte® 80% WP en dosis de 2 g/kg de semilla. Sin embargo, la mayoría de las semillas no lo requieren cuando el lugar de almacenamiento se encuentra en una zona seca y resca.

2.1.3. almcmi pcc Un almacenamiento apropiado permitirá tener semillas viables, es decir, que conserven su capacidad germinativa por un determinado tiempo. El tipo de almacenamiento, no obstante dependerá de la capacidad de las semillas de mantenerse viables al momento de ser desecadas.

Las condiciones de almacenamiento dependerán de si las semillas son ortodoxas o recalcitrantes. Las semillas ortodoxas (a la cual corresponde la mayoría de las especies de la zona centro-norte del país) son capaces de permanecer vivas cuando son almacenadas a baja temperatura (4-5 ˚C) y baja humedad, condiciones que se pueden encontrar en un refrigerador normal. En este caso, las semillas deben ser almacenadas en envases herméticos para que no se humedezcan dentro del

Fig 2.7. Semillas de Acacia caven atacadas por insectos.

34


rerigerador. Este tipo de almacenaje tiene El rótulo que se le asigne a los lotes de la ventaja de mantener las semillas guarda- semillas debe coincidir con el que se les das por largos períodos de tiempo sin que asignó en terreno, y deberá colocarse tanto pierdan su viabilidad. Sin embargo, existen en el interior como en el exterior del recisemillas duras de la amilia de las legumi- piente (Figura 2.8). nosas y de algunas otras especies que son mucho más tolerantes a temperaturas más Si se desea obtener mayor información elevadas y no es indispensable almacenarlas sobre la recolección de semillas silvestres refrigeradas, siempre y cuando sean usadas se puede revisar el manual de recolección dentro de un corto periodo de tiempo (no preparado por INIA en el siguiente sitio más de 2 a 3 años luego de la cosecha). Para web: http://www.inia.cl/recursosgeneticos/ periodos mayores deben ser almacenadas descargas/manual_de_semillas.pd secas y en río.

2.1.4. Lci  mill

Por otro lado, las semillas recalcitrantes no toleran bajos contenidos de humedad en su interior, por lo que deberán ser almacenadas aireadas en un sustrato húmedo a no muy bajas temperaturas (5 a 17 °C) y ser sembradas apenas se den las condiciones adecuadas. Para este tipo de semillas lo mejor es cosecharlas, limpiarlas y sembrarlas inmediatamente. Algunas especies que tienen este comportamiento son generalmente especies con semillas grandes y de frutos carnosos, como el Belloto del norte, el Peumo y el Lingue ( Persea lingue ). • Recipientey rótulodealmacenamiento: una vez secas, lo ideal es dejar las

semillas ortodoxas en un lugar lo más frío posible y seco, dentro de bolsas de papel, género, rasco de vidrio o tarros de cartón, teniendo la precaución que tanto la bolsa de papel como el resto de los recipientes se mantengan secos; de lo contrario se deberá cambiar la bolsa de papel por una nueva o secar el recipiente. En el caso de utilizar bolsas de papel o género se debe tener la precaución de no guardarlas amontonadas ya que esto impedirá una buena circulación de aire. Para su almacenamiento refrigeradas, lo adecuado es guardar las semillas secas en rascos de vidrios conserveros bien secos y tapados herméticamente.

La metodología a emplear para propagar a través de semillas dependerá de cada especie y de las condiciones que ellas posean en su medio natural. Muchas especies necesitan condiciones especiales para iniciar la germinación que generalmente están determinadas por factores como aireación, humedad y temperatura. El éxito de la germinación en un vivero está dado por como se replican y proporcionan esta serie de condiciones a la semilla. Sin embargo, existe un gran número de especies que a pesar de tener todas las condiciones para germinar no lo hacen. Esto se debe a que las semillas tienen un mecanismo de control de su germinación llamado latencia.

Fig 2.8. Semillas de Prosopis chilensis (Algarrobo) almacenadas en bolsa de papel con el rótulo de

identificación en su interior.

35


La latencia es un estado de dormancia de la semilla que le permite germinar en la época adecuada para su establecimiento exitoso. Para romper este estado es necesario que la semilla reciba ciertos cambios ya sean ísicos, químicos o isiológicos. Estos cambios se pueden lograr artificialmente a través de tratamientos pregerminativos que simulan las condiciones del medio natural de la semilla. Por lo tanto, para propagar la mayoría de las especies, además de entregar los requerimientos medioambientales adecuados, se deberá entregar una serie de factores que permitan generar cambios para romper la latencia. En el caso de la siembra directa en terreno, se debe esperar la época adecuada, de acuerdo a la estacionalidad. En las zonas semiáridas del país, las semillas deben ser sembradas con las primeras lluvias de otoño. La latencia en cada tipo de especie será diferente ya que ésta es el resultado de ciertas interacciones ambientales y de propiedades genéticas de cada planta. El tipo de latencia que tenga cada especie ayudará a determinar el tratamiento más efectivo para romperla. La mayoría de las especies leñosas chilenas tienen alguno de los tipos de latencias que se mencionan a continuación: • Latenciafisiológica(internaoendógena):

está relacionada con las condiciones isiológicas de la semilla, es decir, con lo que ocurre dentro de ella. Para poder germinar deben ocurrir cambios fisiológicos en el embrión, cotiledones o en el endosperma. Este tipo de latencia es común en las especies chilenas del sur, sin embargo, en la zona central también existen especies con este tipo de latencia, como Colletia spinosa (Crucero) y Rhaphithamnus spinosus (Arrayán macho). En la naturaleza este tipo de latencia se rompe con el paso del in vierno. Artificialmente se puede simular

36

esta condición ambiental aplicando a las semillas bajas temperaturas. Existen semillas que pueden requerir lo contrario, es decir, un periodo de altas temperaturas. Esto ocurre por ejemplo con Jubaea chilensis (Palma chilena) y varios tipos de Alstroemeria, lo cual provoca que la germinación ocurra al inicio del otoño. • LatenciaMorfológica: se caracteriza porque las semillas ya dispersadas presentan un embrión pequeño e inmaduro. Por ello, el embrión sólo necesita las condiciones y el tiempo necesario para crecer y terminar su desarrollo previo a su germinación. Ejemplos de semillas con latencia morológica son las del Canelo ( Drimys winteri ). • Latenciafísica: ocurre en aquellas espe-

cies que tienen la testa (cubierta seminal) dura e impermeable y en las que poseen un pericarpio que impide su germinación. La mayoría de las especies leñosas que habitan la zona Mediterránea semiárida de Chile central poseen este tipo de latencia, y corresponden a aquellas que diseminan sus semillas al inicio o durante la estación de verano. Por ejemplo, especies de leguminosas como Acacia caven (Espino), Caesalpinia spinosa (Tara), Prosopis spp . (Algarrobo, Tamarugo) y Sennaspp . (Quebracho) poseen una cubierta seminal dura e impermeable lo que impide una adecuada absorción de agua por la semilla. Otras familias típicas de la zona semiárida que podrían presentar este tipo de latencia son Nolanáceas y Malváceas. Para romper este tipo de latencia se puede aplicar un método abrasivo, que simulan el desgaste natural de la semilla, llamado escarificación. La latencia física también puede ser inducida por inhibidores químicos que se encuentran en el pericarpio de la semilla. Un ejemplo de este tipo de latencia ocurre en Geoffroea


decorticans (Chañar), la que se puede

romper eliminando el pericarpio en forma manual. Otras especies que tienen inhibidores en sus cubiertas son Schinus molle (Pimiento) y Porlieria chilensis (Guayacán) los cuales se pueden romper mediante escarificación; en la naturaleza esto ocurre a través de la ingestión de las semillas por animales.

se obtienen en el comercio estas indican en su envase el mejor tratamiento a aplicar. A continuación se describen los tratamientos más comunes para las especies leñosas de la zona central y en la Tabla 2.5 se indican tratamientos sugeridos para diversas especies de la zona mediterránea semiárida de Chile norte-central. • Estratificación: la estratiicación puede

Existen algunas especies que poseen doble latencia, como es el caso de Lithreacaus tica por lo que es necesario aplicar doble tratamiento para romper su latencia. Otra especie que posee una latencia combinada es Alstroemeria pulchra. Otras especies pueden presentar una latencia doble del tipo Morfofisiológica. Es decir, requieren de un estímulo externo (ej., frío) y desarrollo del embrión para poder germinar. Este tipo de latencia se observa en semillas de Llareta ( Laretiaacaulis ).

2.1.5. tmi pgmiiv Los tratamientos pregerminativos son aquellos tratamientos que deben efectuarse a la semilla antes de la siembra para romper la latencia y así facilitar su germinación. El tratamiento que se debe aplicar a cada especie está directamente relacionado con el tipo de latencia que ésta tenga. Debido a que cada especie ha desarrollado sus propios mecanismos de latencia según las condiciones ambientales donde habita es común que semillas de una misma especie pero de distinta procedencia tengan variaciones en el tratamiento a aplicar. Otro factor que puede hacer variar los tiempos de aplicación de los tratamientos es el tiempo de almacenaje. Esto nos indica que será conveniente hacer ensayos de germinación antes de la siembra con el in de obtener el tratamiento que permita optimizar al máximo las semillas colectadas sobre todo cuando estas son escasas. Generalmente cuando las semillas

ser fría o cálida y se aplica a especies que tienen latencia fisiológica. La estratificación ría consiste en poner las semillas en arena húmeda a bajas temperaturas, entre 1 y 4ºC por un tiempo determinado que puede variar entre 30 y 120 días. Se puede realizar de varias ormas, una consiste en mezclar la arena húmeda con las semillas y ponerlas en una cámara de frío o dentro de un refrigerador. Cuando la producción es a mayor escala conviene hacer almácigos estratiicados. • Escarificación: se utiliza para romper

la latencia física provocada por una testa dura e impermeable. Consiste en permeabilizar la testa de la semilla en forma mecánica, química o aplicando agua caliente. La escarificación mecánica consiste en utilizar algún material abrasivo como una lija de madera y raspar la cubierta hasta desgastarla (Figura 2.9 y 2.10), teniendo la precaución de no dañar el embrión. Esta técnica es más segura que la química, sin embargo, es más lento. Para optimizar este método se puede orrar el interior de un tarro con la lija y agitarlo con las semillas dentro hasta que la cubierta se vea gastada u opaca. En la escarificación ácida o química se utiliza ácido sulfúrico comercial concentrado aplicado directamente a la semilla. El tiempo que debe permanecer la semilla sumergida es variable. Por ejemplo, la especie

37


taba 2.5 Tratamientos posibles a aplicar para estimular la germinación de algunas especies de la zona Mediterránea semiárida del norte-centro de Chile

espci

Nombr común

traamino

Acacia caven

Espino

Escarificación mecánica Escarificación ácida Remojo en agua caliente

Adesmia sp.

Espinillo

Remojo en agua

Alstroemeria spp.

Alstromerias

Estratificación fría o sin tratamiento Remojo en agua

Atriplex repanda

Pasto sereno

Escarificación ácida Remojo en agua

Beilschmiedia miersii

Belloto del norte

Estratificación fría

Caesalpinia spinosa

Tara

Escarificación mecánica, Escarificación ácida Estratificación

Calandrinia spp.

Pata de guanaco


Calceolaria spp.

Capachito

Estratificación fríao sin tratamiento

Chenopodium album

Quinhuilla


timpo

traamino complmnario

120 min. 30 a 120 min

Un par de días 2 a 7 horas

20 min


Cistanthe spp. Colletia spinosa

Crucero


Colliguaja odorifera

Colliguay


Cryptocarya alba

Peumo

Extracción de la pulpa

Cumulopuntia sp.

Gatito


Eulychnia spp.

Copao


Echinopsis spp.

Quisco



Chañar

Extracción de la pulpa

Gymnophyton robustum

Monte de burro

Escarificación ácida

Heliotropium spp.

Palito negro


Jubaea chilensis

Palma chilena

Remojo en agua

72 horas

Leucocorynesp.

Huille

Remojo agua fría (4 ºC)

96 horas

Más estratificación fría

Leucocorynecoquimbensis

Huille de Coquimbo Remojo en agua fría

24 horas

Estratificación a 7 ºC por 3 o 4 semanas

Leucocorynepurpurea

Cebollín

24 horas

Estratificación a 7 ºC por 3 o 4 semanas

var. coquimbensis

Remojo en agua fría

30 días

3 a 10 min

Continúa en página siguiente

38


Continuación tabla 2.5

espci

traamino

timpo


4 a 8 horas

Malesherbia paniculata


30 a 60 min

Montiopsis trifida


15 a 30 días

Escarificación ácida Estratificación fría Alta temperatura

60 min


60 min

Lithreacaustica


Nombr común

Litre

Mollaca o Quilo

Nolanaalbescens

traamino complmnario

Más estratificación fría 7 a 30 días

Nolanaspp.

Suspiros

Remojo en agua

48 horas


Pasithea coerulea

Azulillo

Remojo agua fría (4 ºC)

96 horas

Más estratificación fría

Porlieria chilensis

Guayacán

Escarificación Remojo en agua caliente

Prosopis chilensis

Algarrobo

Escarificación mecánica Escarificación ácida Remojo en agua caliente

10 a 30 min 12 a 24 horas

Prosopis tamarugo

Tamarugo

Escarificación mecánica Escarificación ácida

7 min

Puya spp.

Chagual


Quillaja saponaria

Quillay


Rhodophiala sp.

Añañuca


Ricinus communis

Ricino

Escarificación mecánica

Schinusmolle

Pimiento

Escarificación ácida Escarificación mecánica

Schinuspoligama

Huingán

Escarificación ácida Remojo en agua

Sennacandolleana

Quebracho

Escarificación ácida Estratificación fría

10 a 20 min

Sennacumingii

Alcaparra

Escarificación ácida Estratificación fría

45 min

Solanumspp.

Tomatillos

Remojo en agua de los frutos

Trevoatrinervis

Tevo


15 min

Verbascumvirgatum

Mitrún


30 días

Zephyra elegans

Celestina

Estratificación fría o sin tratamiento

Extraer carúncula (protuberancia) 60 min

Más remojo en agua por 48 horas Estratificación fría


39


La escarificación en agua caliente se realiza colocando las semillas en agua a punto de hervir, por 12 a 24 horas, mientras el agua se enría gradualmente. El tiempo que la semilla debe estar sumergida en el agua dependerá de su tamaño; a mayor tamaño mayor tiempo de inmersión. Una vez que las semillas se han humedecido estas deben ser sembradas inmediatamente; si se vuelven a secar, morirán. Figura 2.9. Semillas de Acacia caven (Espino) escarificadas mecánicamente con lija antes de la

siembra.

Fig 2.10. Semillas con cubiertas duras de la familia de las leguminosas como Acacia caven (Espino), Prosopis spp. (Algarrobo, Tamarugo) y Senna spp. (Quebracho)

generalmente necesitan escarificación.

Gymnophyton robustum (Monte de Burro) sólo requiere 5 minutos en cambio Acacia caven (Espino) requiere 120 minutos. Sin

embargo, la mayoría de las especies requieren 15-60 minutos de inmersión. Una vez trascurrido el tiempo de inmersión en ácido éstas deben ser lavadas con abundante agua.

• Extraccióndelapulpa: este tratamiento

se aplica a la mayoría de las especies que tienen frutos carnosos y su finalidad es extraer la pulpa que puede contener sustancias químicas inhibidoras de la germinación. Una orma ácil de eliminarla es remojando las semillas en agua a temperatura ambiente por un tiempo variable dependiendo del tamaño de la semilla. El tiempo puede ser entre 24 a 48 horas, sin embargo, se debe tener la precaución de cambiar el agua cada cierto tiempo. Transcurrido este tiempo se enjuagan bien para remover toda la pulpa y se siembran inmediatamente. • Tratamientos alternativos: a pesar que

los tratamientos antes descrito son los más comunes para las especies del país existen otros que también podrían mejorar la germinación. Uno de ellos es aplicar río en orma alternante, es decir, temperatura moderada durante el día y fría durante la noche. La aplicación de ácido giberélico o el lavado con hipoclorito de sodio también podría estimular la

Importante: El ácido sulfúrico (H2SO4) es un ácido fuerte, altamente tóxico para los seres vivos y muy corrosivo para los tejidos orgánicos, como la piel, por lo que debe ser manipulado por personal calificado y en condiciones adecuadas de laboratorio. Durante la etapa de lavado de las semillas es cuando se debe tener mayor precaución ya que el ácido reacciona fuertemente con el agua. Lo ideal es sacar las semillas del ácido con la ayuda de un colador y posteriormente lavar con agua, lentamente. Debido al mayor riesgo que implica la escarificación ácida este método es recomendable a nivel de laboratorio cuando se tiene una campana para trabajar.

40


germinación. El ácido giberélico (GA3) se utiliza generalmente en dosis de 250 ppm por un período de 24 horas. La exposición a la luz u oscuridad también podría romper la latencia. Otro método es aplicar temperaturas de 100ºC por 5 minutos, lo que estimula por ejemplo la germinación de Muehlenbeckia hastulata (Mollaca) y Colliguaja odorifera (Colliguay), en condiciones de laboratorio.

fungicida efectivo para el ataque de hongos es Captan 80% WP ® el cual se puede aplicar colocando las semillas junto a una pequeña cantidad del polvo en un frasco y agitarlo hasta que las semillas queden con una capa del ungicida. • Etanol: se utiliza en una concentración

del 50 al 70% por tiempos que varían entre uno y dos minutos.

También existe un gran número de especies que no requieren tratamientos pregerminativos, sólo basta con entregarles las condiciones ambientales necesarias. Este es el caso de la mayoría de las plantas que pertenecen a la amilia de las Asteráceas (Compuestas). Ejemplo de estas especies son Baccharis spp. (Romerillos), Haplopappus spp. (Cachicabra), Seneciospp . (Senecios), Flourensia thurifera (Incienso), Ophryosporus paradoxus (Rabo de zorro), Pleocarphus revolutus (Cola de ratón), Schkuhriapinnata (Canchanlagua) y Tessariaabsinthioides (Brea).

• Hipoclorito desodio: corresponde al

2.1.6. difcci  l mill

Después de realizados los tratamientos pregerminativos y desinfectadas las semillas se está en condiciones de sembrar. Para obtener plantas vigorosas y homogéneas se deben escoger las semillas de mayor y similar tamaño, respectivamente. Semillas de igual tamaño, además de lograr una germinación y crecimiento más uniorme, permiten aminorar el período en que las plántulas son más susceptibles al ataque de dumping-off. El tiempo que demore el proceso de siembra también ayudará a tener una homogeneidad en la emergencia, por lo tanto, este debe ser lo más breve posible. De esta etapa depende gran parte de la calidad de plantas a obtener. Algunos puntos a considerar se mencionan a continuación:

La inalidad de desinectar las semillas es evitar pérdidas antes de la germinación por dierentes patógenos. Lo más común es aplicar algún producto fitosanitario comercial, aunque también existen otros desinfectantes. En cuanto al tiempo de remojo en el desinectante, generalmente semillas más grandes se dejan más tiempo que las semillas más pequeñas. • Productosquímicoscomerciales: para pre-

venir el ataque de pájaros y roedores se puede aplicar el repelente Mesurol® que se mezcla con la semilla antes de la siembra en una dosis de 1 kg/100 kg semillas. Para evitar el ataque de hongos (como caída de plantas o dumping off ) se puede aplicar Pomarsol® 0,3-0,4 /100 kg semillas. Otro

cloro comercial (concentración máxima disponible en el mercado 10%) diluido a concentraciones entre 2 y un 8% por 3 a 20 minutos. • Aguaoxígenada: ayuda a evitar con-

taminación por bacterias. Se utiliza cuando se quiere propagar a nivel de laboratorio sobre todo en cultivo in vitro. Comúnmente se utiliza entre 50 a 75 volúmenes, por 6 a 10 minutos.

2.1.7. sim

• Época: la época más adecuada para sembrar dependerá del tipo de especie.

41


En nuestro país los períodos de siem- Siembraenalmácigos: la mayor ventaja que bra abarcan generalmente desde el posee este tipo de siembra es que permite inicio del otoño hasta el inicio de la optimizar el tamaño de las plantas, selecprimavera. La ventaja de sembrar en cionando solamente las de mayor tamaño. estas épocas es aprovechar el período Además, la almaciguera se puede transportar de mayor desarrollo vegetativo que colocándola en lugares con temperaturas ocurre durante la primavera y el verano, controladas como dentro de un invernaobteniéndose a fines de la tempora- dero. La siembra en almácigos se realiza da plantas más grandes. Por lo tanto, generalmente con especies que poseen mientras más temprana es la siembra, semillas pequeñas y/o de diícil germinaplantas más desarrolladas obtendremos. ción. Por ejemplo Azaraspp. (Corcolén), Cuando se quieren propagar especies Baccharis spp. (Romerillo), Maytenus boaria que requieran de estratificación fría, la (Maitén), Quillaja saponaria (Quillay) y siembra debe realizarse en otoño para Trevoatrinervis (Tevo). También se puede que reciban el río necesario durante utilizar cuando la germinación ocurre por el invierno. Con esto se evita tener pulsos o en forma escalonada, así se puede que estratiicar las semillas en orma extraer plantas de igual tamaño y obtener artiicial en una cámara ría. Por otro inalmente plantas homogéneas. lado, la mayoría de las especies que no requieren tratamiento se deben sem- Esta técnica consiste en sembrar en una albrar a fines de invierno o principio de maciguera (descrita en el Punto 1.3) donde primavera. En la Tabla 2.6, se entrega las plántulas alcanzarán cierto desarrollo para un listado de especies con su época posteriormente ser trasladadas al recipiente adecuada de siembra. deinitivo. La siembra se puede realizar al voleo en toda la almaciguera o en hileras. • Tipos: la siembra puede realizarse de La ventaja que tiene esta última es que el distintas formas, como se describe a control de maleza es más fácil. La mezcla de continuación. sustrato a utilizar dependerá de la especie pero básicamente se utiliza arena, tierra de Siembraenplatabandas: este tipo de hoja y tierra del lugar. Las proporciones siembra se realiza directamente en el de la mezcla puede ser 1 parte de arena, suelo del vivero y es la producción que 2 partes de tierra de hoja y 2 partes de se denomina a raíz desnuda. No es reco- tierra del lugar. Para ambientar las plantas mendable para la zona semiárida del país a las condiciones de suelo que tendrán en debido a que las condiciones climáticas el relave se podría reemplazar una parte son extremas y pueden causar un shock de la mezcla por una parte de relave. Se en las plantas. Sí es recomendable para la debe evitar reemplazar la parte de arena ya zona sur del país donde comúnmente se que esta le proporciona mayor drenaje a la utiliza. La siembra se realiza en plataban- mezcla a diferencia del relave que provoca das construidas directamente en el suelo. el eecto contrario. Las dimensiones de una platabanda son variables, aunque generalmente tienen Es ideal que todos los sustratos a utilizar 1 m de ancho por un largo variable. En en la mezcla estén desinfectados para ellas se hacen surcos en hileras a lo largo evitar pérdida de plantas por el ataque de de la platabanda donde se depositarán patógenos. Se puede desinfectar regando la las semillas. almaciguera antes de la siembra con agua

42


taba 2.6 Época adecuada de siembra para algunas especies presentes en la zona Mediterránea semiárida de Chile norte-central eci

Nmb cmún

Éca  imba

Acacia caven

Espino

Octubre

Adesmia sp.

Espinillo

Fines de invierno

Atriplex repanda

Pasto sereno

Primavera

Baccharis linearis

Romerillo

Primavera

Beilschmiedia miersii

Belloto del norte

Inicio de otoño

Caesalpinia spinosa

Tara

Fines de invierno

Calandrinia spp.

Pata de guanaco

Otoño

Calceolaria spp.

Capachitos

Otoño a primavera

Cestrum parqui

Palqui

Invierno Otoño

Cistanthe spp. Colletia spinosa

Crucero

Fines de invierno

Colliguaja odorifera

Colliguay

Fines de invierno

Cordia decandra

Carbonillo

Otoño

Cryptocarya alba

Peumo

Otoño

Cumulopuntia sp.

Gatitos

Otoño

Eulychnia spp.

Copao

Otoño

Echinopsis spp.

Quisco

Otoño

Flourensia thurifera

Incienso

Fines de invierno


Chañar

Invierno a comienzo de primavera

Gymnophyton robustum

Monte de burro

Fines de invierno

Haplopappus foliosus

Cuerno de cabra

Primavera

Heliotropium spp.

Palito negro

Otoño

Jubaea chilensis

Palma chilena

Fines de verano continúa en página siguiente

43


Continuación tabla 2.6

eci

44

Nmb cmún

Éca  imba

Leucocorynespp.

Huilles

Otoño

Lithreacaustica

Litre

Fines de invierno

Malesherbia paniculata

———

Primavera

Maytenus boaria

Maitén

Otoño


Mollaca o Quilo

Invierno

Nolanaspp.

Suspiros

Fines de otoño

Ophryosporus paradoxus

Rabo de zorro

Fines de invierno

Pasithea coerulea

Azulillo

Otoño

Pleocarphus revolutus

Cola de ratón

Fines de invierno a principio de primavera

Porlieria chilensis

Guayacán

Fines de invierno a primavera

Prosopis chilensis

Algarrobo

Primavera

Prosopis tamarugo

Tamarugo

Fines de primavera

Puya spp.

Cagual

Otoño

Quillaja saponaria

Quillay

Invierno

Rhodophiala sp.

Añañuca

Otoño

Schinuslatifolia

Molle

Invierno

Schinusmolle

Pimiento

Primavera

Schinuspoligama

Huingán

Invierno

Sennacandolleana

Quebracho

Fines de primavera

Sennacumingii

Alcaparra

Fines de invierno

Solanumsp.

Tomatillo

Otoño

Tessariaabsinthioides

Brea

Fines de invierno

Trevoatrinervis

Tevo

Fines de invierno


hirviendo y dejándola enriar. También se pueden aplicar productos químicos especíicos. Otra alternativa es reemplazar los últimos 5 mm de sustrato por arena para prevenir la ormación de una costra en la superficie y para evitar el desarrollo de musgos y líquenes. Una vez sembradas las semillas es conveniente apisonar el sustrato con una tabla para lograr un buen contacto sustrato semilla. Para facilitar el riego se recomienda dejar 1 o 2 cm de la almaciguera sin llenar con sustrato. El primer riego debe ser a saturación; es decir, hasta que el agua escurra de la almaciguera. Los riegos posteriores, deben ser seguidos al inicio y poco abundante procurando mantener la superficie húmeda, una vez que las plántulas han emergido. Posteriormente los riegos se van distanciando y aumentado en cantidad, idealmente realizados con regadera fina o un pulverizador. La temperatura que deben tener los almácigos cuando las plántulas han comenzado a aparecer deben ser lo más parejas posible por lo que la almaciguera puede colocarse en alto en un mesón. A medida que comienzan a aparecer las plántulas también pueden comenzar a aparecer malezas las cuales se pueden conundir ácilmente, sin embargo, si se ha sembrado en hilera se sabrá que todo lo que crezca uera de ella será maleza, las cuales se extraen en orma manual.

El desarrollo de las plantas se puede comenzar a manejar desde que ellas están en las almacigueras. Las plantas más pequeñas pueden ser raleadas con lo que se estimulará el crecimiento de las más grandes, de otro modo crecerán muy débiles por la falta de espacio. Cuando se utiliza un speedling como almaciguera, el llenado de ellos se realiza agregando la mezcla de sustrato en toda la bandeja hasta que las celdas queden

cubiertas, luego se les da suaves golpecitos a la bandeja contra el mesón para que se compacte, posteriormente se colocan las semillas en cada celdilla. La ventaja de utilizar este tipo de contenedor como almaciguera es que las plantas no suren daño en las raíces durante el repique, ya que van protegidas por el sustrato. Lo ideal es poner el almácigo sobre un mesón y bajo sombreadero, ojalá bajo techo plástico para evitar la remoción de las semillas producto de lluvias. Dependiendo de la fecha en que se realice la siembra en almácigo éste puede ser normal o estratiicado. Almácigo estratificado: la siembra se realiza

en otoño y consiste en emplear la almaciguera rellena con la mezcla de sustrato pero adicionando una capa supericial de 1 cm de arena. Esta capa debe humedecerse y compactarse para hacer los surcos, que no deben llegar a la mezcla de sustrato, donde se depositan las semillas y luego se cubren con arena. La almaciguera debe permanecer húmeda, sobre todo en la superficie, y expuesta al exterior donde recibirá el río necesario durante el invierno. La germinación ocurrirá aproximadamente tres meses después, a fines de invierno o a comienzos de primavera. Las especies que se siembran en este tipo de almácigo son aquellas que necesitan una estratiicación ría. Almácigo normal: se realiza de la misma

manera que el anterior sólo que la capa de arena es de 0,5 cm y los surcos quedan a nivel de la mezcla. La función de la capa de arena es evitar el daño en el cuello de las plántulas provocado por hongos conocido como dumping off . La época de siembra es a fines de invierno y tardan entre dos a cuatro semanas en germinar. El almácigo normal se recomienda para especies que no requieren estratiicación ría.

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Repique: consiste en el trasplante de las

plántulas desde la almaciguera a contenedores individuales de mayor tamaño. Esta actividad es una de las más críticas dentro de un vivero. El tamaño que deben tener las plántulas depende de la especie. Generalmente Generalmente se realiza cuando las plántulas tienen uno o dos pares de hojas verdaderas. Las plantas deben estar en buenas condiciones por lo que antes del repique se debe regar; con esto, la planta estará turgente. En caso de estar muy tupidas, se deben ralear repicando las plantas grandes primero. Al realizar el repique se deben escoger las mejores plantas, es decir, las que tengan mayor altura y grosor de diámetro, ya que estos parámetros indican que es una planta vigorosa con mayor posibilidad de sobrevi vencia. El color de la planta también es un indicador de la calidad; plantas amarillentas indican falta de nutrientes, y por ende mala calidad. En caso de aparecer estos síntomas la planta debe ser repicada inmediatamente, lo ideal es evitar llegar a la etapa de repique con una deficiencia nutricional o a un estancamiento estancamiento en el crecimiento.

La extracción se puede hacer alojando el sustrato con una pala, teniendo especial cuidado de no dañar las raíces. En el caso de plantas con germinación hipógea, o sea que dejan sus cotiledones bajo tierra, se debe tener además cuidado de no dañar ni separar los cotiledones de la planta ya que ellos aportan vigor gracias a los nutrientes que poseen. Una vez que se ha soltado el sustrato, las plantas se sacan con cuidado de no apretar mucho el tallo; lo ideal es tomarlas de las hojas. También se pueden extraer con la ayuda de pinzas metálicas o plásticas. Mientras se realiza la extracción y hasta el trasplante, las plantas deben mantenerse en agua en un lugar resco. Una vez extraídas las plántulas se trasladan al lugar

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de trasplante, donde deben estar los contenedores ya rellenos con el sustrato. A éstos se les hace un hoyo central donde se deposita la planta. Se debe evitar que las raíces queden torcidas; por lo tanto, si son muy largas deben ser podadas con una tijera bien afilada. También pueden ser sumergidas en agua con arcilla para darles más peso y evitar el retorcimiento al ser puestas en las bolsas. Luego se rellena el hoyo con el mismo sustrato y se presiona cuidadosamente con las manos evitando que queden bolsas de aire, las que pudiesen secar las raíces. Cuando el repique es desde una bandeja speedling es mucho más ácil ya que sólo basta que la plántula sea capaz de sostener el volumen de sustrato de su casilla, lo cual ocurre luego de 5 o 6 semanas. Para que la planta se suelte más fácilmente de su celda se puede empujar desde abajo con la ayuda de un palito de madera, muy suavemente para evitar dañar las raíces. El repique, al ser una actividad delicada, se debe realizar en un lugar protegido de condiciones extremas como altas temperatura o vientos. Son ideales para hacer esta actividad los días nublados y frescos. Las plantas recién repicadas deben ser puestas en un lugar sombreado y regadas inmediatamente. inmediatamente. Siembraencontenedores: la siembra directa

en contenedores o recipientes se recomienda para la propagación de especies que poseen semillas grandes o son de rápida germinación. Por ejemplo Acacia caven (Espino), Prosopis chilensis (Algarrobo), Sennacandolleana (Quebracho) y Jubaea chilensis (Palma chilena). También se pueden sembrar en forma directa en otoño o invierno semillas grandes de vida corta como Beilschmiedia miersii (Belloto del norte) y Cryptocarya alba (Peumo).

La ventaja de la siembra directa en contenedores es que se evita el repique, el cual

CIMM - InIa-IntIhuasI InIa-IntIhuasI

no es resistido por todas las plantas. Antes de sembrar, se debe humedecer el sustrato. Para hacer los orificios donde irán las semillas se puede utilizar un lápiz, un palito o el dedo; luego de poner la semilla ésta se cubre con el mismo sustrato. El rendimiento de siembra manual en contenedores puede alcanzar un promedio de 2.000 a 2.500 plantas/jornada/hombre.

más de una. La idea es que al inal quede una planta por casillero. En la siembra directa en platabanda se hacen hileras que están separadas entre sí por una distancia de 12,5 cm del pasillo y de 15 cm entre hileras. La distancia de siembra dentro de una hilera es de 7 a 10 cm.

Al sembrar directo en contenedores como bolsas se deben depositar al menos dos • Profundid Profundidady adydensid densidad: ad: la profundidad de siembra depende del tamaño de la semillas por contenedor. Con esto se asesemilla. Como regla general se utiliza una gura que alguna de ellas germinará. Si la proundidad de siembra de 2 a 3 veces capacidad germinativa es baja, se recomienel tamaño de la semilla. Es importante da poner tres e incluso cuatro. Si en algún que la semilla no quede muy enterrada contenedor emerge más de una planta, ésta ya que requiere de cierta cantidad de debe ser repicada a un contenedor donde oxígeno para una adecuada respiración. no haya habido emergencia. Por el contrario, si queda muy superficial estará expuesta a la remoción por algún • Man Manejo ejo depos depostsi tsiemb embra: ra: una vez rota la latencia, se producirá la germinación de la agente. Existen algunos casos donde la semilla. Esta consiste en la aparición de las luz estimula la germinación como es el caso de Puya spp. (Chagual), por lo que primeras partes de la planta que generalla siembra debe ser superficial. Cuando mente corresponde a la radícula. Después las semillas son muy pequeñas se pueden de esta etapa la germinación continúa en dispersar en la almaciguera mezclándolas forma epígea (cotiledones aparecen sobre con arena para asegurar una distribución el suelo) o hipógea (cotiledones quedan bajo el suelo). Las condiciones ambientales pareja. que deben existir para que ocurra este La densidad de siembra en almácigo no proceso está determinado por tres factores, 2 agua, temperatura y oxígeno y en algunos debe superar las 5.000 plantas por m , por lo que si se utiliza una almaciguera de 40 casos por la luz. Tales condiciones se dan x 60 cm no debería haber más de 1.200 a principios de la primavera. plantas, lo cual se puede controlar raleando las plántulas más débiles. Con densidades La humedad será fundamental para iniciar los más altas se corre el riesgo que las plantas primeros procesos de crecimiento del emcontraigan enermedades ungosas y sean brión, por lo tanto, la semilla debe estar muy más pequeñas y débiles. En caso de utilizar bien hidratada. La imbibición o hidratación como almacigueras una bandeja speedling de la semilla se logra remojándola en agua o se recomienda poner tres a cuatro semillas aportando una adecuada humedad al suelo. por celda con el fin de asegurar que alguna Lo ideal es que el riego antes y durante la de ellas germine; si emerge más de una se emergencia sea con alta recuencia y baja debe eliminar la que se encuentre en peor cantidad de agua. Después de la emergenestado. En caso de quedar algunas cavidades cia, el riego debe disminuir en recuencia sin plántulas se deben plantar las que se para lograr un rápido endurecimiento del han extraído de los casilleros donde había tallo, pero se debe aumentar la cantidad

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de agua para que ésta llegue hasta donde se encuentran las raíces. El riego debe ser aplicado finamente por lo que se puede utilizar una regadera con perforaciones finas o utilizar un aspersor; otra alternativa es el riego por capilaridad, el cual se logra colocando la almaciguera en una bandeja con agua hasta que ésta se sature. El control de la humedad relativa en valores altos puede ayudar a mejorar los porcentajes de germinación. Humedades relativas menores al 50% hacen que las semillas no germinen en orma adecuada. Lo ideal una vez que han emergido las plántulas es mantenerlas entre 60 y 80%. Luego se deben ir adecuando lentamente a las condiciones reales de humedad. La temperatura ideal durante el período de germinación depende de cada especie, aunque las temperaturas ideales para la ma yoría de las plantas van desde los 18 hasta los 21 ºC. Los 21 ºC son ideales para plantas de zonas templadas cálidas. Aunque temperaturas entre 20 y 30 ºC también son óptimas para plantas de zonas áridas y semiáridas. Temperatura por sobre los 30 ºC afectan el crecimiento, deteniéndolo totalmente a los 35 ºC para la mayoría de las plantas.

Tanto la humedad como la temperatura se pueden regular colocando las almacigueras en un invernadero, donde además se evitan actores abióticos como lluvia o viento. La manera como se regula un invernadero está dada por la temperatura. Durante la mañana se mantiene cerrado para que la temperatura suba rápido. Si a lo largo del día sube sobre los 35 ºC se debe ventilar abriendo puertas y ventanas hasta bajar la temperatura bajo los 30 ºC. Si no se contase con un invernadero, las almacigueras se pueden elevar del suelo colocándolas en un mesón donde las temperaturas son más altas. Además se pueden cubrir con un plástico.

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Por otro lado, el oxígeno será de suma importancia ya que en esta etapa la semilla tiene una alta tasa respiratoria, necesita oxígeno y elimina anhídrido carbónico. Por eso semillas que estén muy enterradas o en un suelo sobresaturado de agua no germinarán. La luz, si bien no es indispensable para la mayoría de las plantas en la etapa de germinación, sí lo será una vez que la planta emerge a la superficie; mientras más grandes sean las plántulas más luz requieren. Paralelo a la emergencia de las plántulas y debido a las condiciones ambientales ideales que se presentan en esta etapa, comienzan a aparecer las plagas y enfermedades. Una de las enermedades causada por hongos más común es la denominada como “caída de almácigos” o dumping off, que ocasionan la muerte de la planta. Puede prevenirse utilizando algún producto como Captan 80% WP ® en dosis de 25 gr más Pomarsol Forte® en dosis de 10gr en 10 L de agua. Cabe destacar que las condiciones ambientales anteriormente mencionadas son las ideales durante las primeras etapas de desarrollo. Sin embargo, muchas veces no son posibles de llevar a cabo en su totalidad. En estos casos se debe tratar de acercarse lo más posible a ellas ya que inalmente de ellas dependerá la buena calidad de las plantas. Cuando Cuando la planta no se encuentra protegida bajo un invernadero, será importante evitar influencias atmosféricas extremas como insolación, heladas y lluvias que pudiesen dañar los aún delicados tejidos de las plántulas.

2.2. ProPaGaCIón VeGeta VeGetatIVa tIVa La reproducción vegetativa es la forma asexual de reproducción de una planta y


consiste en la obtención de un individuo a partir de un tejido o estructura vegetal de la planta madre. La estructura seleccionada debe ser capaz de emitir raíces una vez separada. Este método de propagación tiene ventajas y desventajas, tal como se indica en la Tabla 2.7.

• Estacasde maderasuave: las estacas de madera suave son conocidas también con el nombre de esqueje. Consisten en un trozo de rama del último crecimiento primaveral, de consistencia herbácea a semileñosa. Especies que enraizan con facilidad por este medio son Berberis glomerata (Michay del norte), Fabiana imbricata (Pichi romero), Glandularia spp. (Verbenas), Heliotropium spp. (Heliotropos o palito negro), Ophryosporus paradoxus (Rabo de zorro), Pleocarphus revolutus (Cola de ratón), Schkuhriapinnata (Canchanlagua), Tessariaabsinthioides (Brea), Carpobrotus aequilaterus (Doca) y Baccharis linearis (Romerillo).

Existen diversas partes de la planta que pueden servir como material vegetativo de propagación. Por ejemplo, una planta se puede multiplicar utilizando desde una simple hoja hasta una estructura más compleja como lo son los bulbos. Se deben elegir plantas madres que se encuentren en buenas condiciones, priorizando las especies y los individuos que ya han colonizado depósitos de relaves; así, se obtendrán plantas idénticas a la madre, probablemente capaces Arbustos de madera blanda que enraizan de tolerar exitosamente el establecimiento bien por esquejes de punta (última yema), en relaves. A continuación se describen son Fucsias, Calceolarias y Heliotropos. algunas de las estructuras vegetales más comúnmente utilizadas y cómo se realiza su Colecta: la época adecuada para realizar la colecta. Es importante que todo el material colecta del material es entre noviembre y colectado esté debidamente identificado y enero. Idealmente la colecta debe hacerse con la echa de colecta. durante la mañana cuando la temperatura del aire no es demasiado elevada y el ma2.2.1. Estacas terial está aún turgente.

Las estacas son partes de la planta capaces de enraizar para generar un nuevo individuo. Existen estacas de tallo, hoja o raíz. Las más comunes son las estacas de tallo y pueden ser de madera suave o madera dura.

Las plantas escogidas para sacar el material deben ser individuos sanos, libres de organismos patógenos, por lo que es conveniente revisar detalladamente las partes a extraer. En caso de tener sólo plantas infectadas se

taba 2.7 Algunas ventajas y desventajas de la propagación vegetativa de plantas

Vnaa

dvnaja

– Obtención de plantas de idénticas características a las de la planta madre. – Rápido crecimiento. – Características de un vegetal adulto, o sea orece y ructifca con rapidez.

– No hay aporte de diversidad genética. – Pérdida de vigorosidad. – Mayor cuidado en la etapa de colecta para evitar deshidratación. – Mayores posibilidades de transmisión de enfermedades.

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deberá aplicar algún producto fitosanitario. Para aumentar las posibilidades de prendimiento del esqueje se deben escoger plantas que estén en pleno crecimiento vegetativo. Las ramas a colectar no deben tener yemas florales ya que esto podría disminuir la capacidad de enraizamiento. En la medida de lo posible se debe colectar ya sea antes o después del período de loración.

enterrando un tercio de su longitud, separados en hileras de 4 cm y distanciados a medio centímetro sobre hilera. Para acelerar el enraizamiento de los esquejes se puede utilizar una cama caliente, la cual si es posible debe estar bajo invernadero. En caso de utilizar cama caliente esta no debe sobrepasar los 18 a 20 ºC.

El medio de enraizamiento a utilizar para Para evitar infecciones, las herramientas con propagar mediante esquejes puede ser dilas cuales se obtienen los esquejes deben verso; sin embargo, los más utilizados son estar limpias y afiladas. Una vez colectado turba y arena en iguales proporciones. En el material se debe mantener húmedo por caso de no contar con turba se puede utilo que se recomienda poner las estacas en lizar corteza compostada (5 mm). También un balde con agua o envolverlas en papel se puede agregar un poco de perlita, la que periódico mojado y mantenerlas en un lugar ayudará a la aireación. resco a la sombra. El agua también se puede utilizar como medio enraizador ya que muchas especies Preparación: se deben cortar ramas de entre 5 a 8 cm de longitud, dejando la como Baccharis linearis (Romerillo) enraizan base con un corte recto a medio centíme- con acilidad (Figura 2.14). La desventaja tro bajo el nudo (Figura 2.11). Las hojas que tiene utilizar el agua es que el sistema basales se eliminan y se dejan dos pares radicular tiene mayor dificultad de adaptade hojas apicales (Figura 2.12). Si las hojas ción al ser trasladado al sustrato suelo. son demasiado grandes éstas se pueden cortar por la mitad para disminuir el área Otra alternativa es la utilización de gel de transpiración (Figura 2.13). Pero no se hidratante, el cual es un medio inerte pueden eliminar totalmente las hojas ya de crecimiento donde algunos esquejes que estimulan el proceso de enraizamien- pueden enraizar. Su mayor particularidad to. En caso de sacar de una rama más de es mantener hidratada la base del esqueje. un esqueje, el corte apical del esqueje que La utilización del gel más hormonas de salgan del medio y de la base se deberá enraizamiento sería una buena alternativa a hacer en forma oblicua en sentido contrario investigar para trasplantar directamente las a la última yema u hoja. Se debe tener la estacas y esquejes en depósitos de relaves, precaución de mantener la orientación de la una vez que han enraizado. rama, ya que las raíces siempre se orman en la parte basal del esqueje. Cuidadospreenraizamiento: tanto el sustrato como el follaje de los esquejes Plantación: el material colectado se mandeben mantenerse siempre húmedos, tiene bien hidratado y se traslada al vivero por lo cual se le debe aplicar agua varias donde se pueden plantar los esquejes. Si veces al día. Ésta debe ser aplicada al ose quiere aumentar las posibilidades de llaje con aspersor manual o microjet que enraizamiento se puede aplicar hormonas es un sistema de riego tecnificado. En enraizantes disponibles comercialmente. caso de estar bajo invernadero, se debe Los esquejes se plantan en una cama ría, procurar ventilar a las horas de más calor.

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Fig 2.11. Rama dividida para obtener tres esquejes.

Fig 2.12. Extracción de las hojas basales de cada estaca.

Fig 2.13. Corte de las láminas foliares para la obtención de tres esquejes listos para plantar.

Fig 2.14. A la derecha de la Figura se observa una estaca enraizada en agua.

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Esto ayudará a que la temperatura no se Repique: una vez que los esquejes han enmantenga muy alta ya que podría inducir raizado, a los 15 o 30 días, se deben repicar la brotación cuando aún no han enraizado a bolsas. Los esquejes deben levantarse los esquejes, provocando la deshidratación individualmente para evitar dañar las raíces y posterior muerte. Gradualmente se debe y evitar que los demás queden expuestos al ir bajando la humedad a medida que va aire. Luego deben ponerse bajo sombreadeaumentando el enraizamiento. En caso ro para que se vayan aclimatando antes de de no contar con invernadero, las plantas trasladarlos a terreno. Deben estar en esta deben ser mantenidas a la sombra, lejos condición a lo menos durante un mes. del sol directo. • Estacasde cactáceas: las cactáceas Para evitar infecciones, se deben eliminar las tienen una metodología muy dierente hojas muertas. En caso de observar algún de propagación vegetativa que el resto daño causado por hongos se puede aplicar de las plantas ya que corresponden a algún ungicida. plantas de tallo suculento (Figura 2.15). La mejor época para hacer el esqueje Cuidadosduranteelenraizamiento: en la es durante la primavera cuando hayan Tabla 2.8 se enumeran los posibles probleinalizado las lluvias o a comienzos de mas que pueden ocurrir durante el proceso verano, similar a la época de cosecha de de enraizamiento de estacas y las posibles los esquejes comunes. La planta madre soluciones. debe estar bien desarrollada y tener un

taba 2.8 Problemas que pueden ocurrir durante el enraizamiento de estacas y sus posibles soluciones pbma

sínma

Caa

scin

Base de la estaca muerta, sin síntomas de pudrición

Tallo se torna gradualmente plomizo desde la base. La base parece estar seca.

Sustrato demasiado seco.

Utilizar un sustrato menos aireado, reduciendo la cantidad de material de drenaje.

Pudrición de la base de la estaca

El follaje se observa plomizo a negruzco y está infectado por hongos.

Sustrato muy húmedo.

Utilizar sustrato más aireado.

Pudrición de hojas

La hoja se pudre antes que La atmósfera está dela base de la estaca. masiado temperada o la frecuencia de riego nebulizado es demasiado frecuente.

Reducir la cantidad de luz que llega a las instalaciones de propagación o disminuir la frecuencia de riego nebulizado.

Caída de hojas verdes

Las hojas caen inmediata- La estaca sufrió estrés por mente después de haber sido falta de agua en la etapa colectadas las estacas. de preparación.

Puede ser de ayuda asperjar agua.

(Fuente: Hechenleitner et al. 2005).

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número suficiente de brazos. Lo ideal es que los esquejes sean jóvenes. El corte del esqueje debe ser limpio y en un ángulo de 45º por lo que idealmente se debe hacer con un cuchillo bien afilado y de preferencia desinfectado, para evitar desgarros y una posterior inección. El tamaño del esqueje es variable, pero el tamaño mínimo debe ser de 20 cm o más. Es conveniente espolvorear la herida con un fungicida como Captan. Es importante que la base del esqueje esté completamente seca antes de plantarlo, así se evitará pudrición por hongos. Los esquejes deben dejarse en un lugar seco y ventilado en forma horizontal; el tiempo que demora en cicatrizar la base es relativa, sin embargo, debe ser de por lo menos 7 días o cuando la base haya ormado una película seca, lo ideal es que no sobrepase los 15 días. Especies de cactáceas que se pueden propagar por esquejes son Echinopsis spp. (Quiscos) y Eulychnia acida (Copao). La herida también puede ser cauterizada con calor, con lo que se asegura y evita la pudrición.

y la base se debe dejar recta y el ápice se corta en forma oblicua en sentido opuesto a la última yema; con esto se evita que el agua escurra hacia la yema. Las estacas deben tener a lo menos dos nudos, procurando hacer el corte basal debajo de un nudo y el apical por sobre 1,5 a 2 cm de otro nudo. No tienen hojas cuando se trata de especies caducas, de lo contrario, se eliminan. Existen estacas simples las cuales tienen un largo entre 15 a 20 cm y existen los estacones los cuales tienen un largo entre 1 a 1,5 m. Las estacas se agrupan en manojos en un lugar fresco y húmedo, formando atados los cuales se entierran en forma horizontal en tierra arenosa, aserrín o turba a varios centímetros de profundidad. Se mantienen en este lugar, con buen drenaje, hasta que formen una callosidad (generalmente en septiembre), momento en el cual se plantan en orma vertical. Se les puede aplicar hormonas enraizantes, ya que con frecuencia enraizan con lentitud; demorán varios meses.

Especies que se pueden multiplicar por este sistema son Dinemagonum sp. (Té • Estacasdemaderadura: es un trozo de madera leñosa de los dos últimos años de de burro o Papaducha), Fuchsia lycioides crecimiento, de 15 a más cm de longitud. (Palo de yegua) y Proustia spp. (Huañil). Se colectan en invierno mediante poda Una buena alternativa para conseguir estos materiales es durante las operaciones mineras de limpieza como talado de árboles. Algunas especies no nativas que se pueden propagar mediante estacones son Populus spp. (Álamos) y Salixspp. (Sauces).

2.2.2. ac  mg

Fig 2.15. Estacas de Eulychnia acida (Copao) listas

para ser plantadas.

Consiste en generar un individuo a partir de la planta madre sin separarla, hasta que haya generado las raíces. Uno de los métodos más sencillos es doblar una rama, enterrarla en el suelo en orma de “U” y hacer una herida para disminuir la llegada de savia y de este modo estimular la generación

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Las hormonas enraizantes están compuestas por una o más sustancias químicas que promueven el desarrollo radicular. Estas sustancias son principalmente tres: ácido indolácetico, ácido indolbutírico (AIB) y ácido naftalinacético (ANA). En forma comercial se pueden encontrar como polvo con las marcas Keri-Root® y Rootone®. La ventaja de utilizar estos compuestos es que se induce la aparición de raíces, lo que trae por consecuencia homogeneidad y mayor número de plantas. Su aplicación consiste en untar la base de la estaca en el polvo dando suaves golpecitos para eliminar el exceso (Figura 2.16). Si se desea aumentar el contacto del material vegetal con el enraizante se puede herir un lado para exponer el tejido leñoso. También es posible utilizarlas para propagar acodos o mugrones.

Fig 2.16. Aplicación de hormonas enraizantes comerciales a esquejes.

de sus propias raíces. Para ayudar el enraizamiento puede aplicarse hormonas en el lugar donde se hace la herida. Lo ideal es que la rama sea lexible, no tenga más de dos años de crecimiento y esté cercana al suelo (Figura 2.17). Si no se encuentra material disponible se puede hacer una poda a la planta madre para avorecer el nacimiento de brotes vigorosos. Esta técnica es adecuada para especies con ramas elásticas como por ejemplo Muehlenbeckia hastulata (Mollaca o Quilo) o especies trepadoras. La rama a enraizar se puede mantener enterrada al suelo afirmándola con un alambre, una estaca de madera o una piedra (Figura 2.17).

para comprobar durante el otoño si han enraizado. Estos se deben separar de la planta madre a principios de primavera, para terminar desarrollándose en vivero. Si se desea mantener la nueva planta recta se puede amarrar a un tutor.

La época adecuada para realizar los acodos es a principio de primavera para especies perenniolias. Es importante mantener los acodos bien regados durante el verano

Si la planta madre escogida está sobre un depósito de relaves, los individuos generados a partir de ella se pueden dejar en el mismo lugar de enraizamiento para que

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Cuando las ramas son poco lexibles y no llegan al suelo, este sistema se debe modificar. Se puede poner el sustrato en un tarro o maceta y levantarlo con la ayuda de una estaca, polín o algo que permita llegar hasta la rama. Muchas veces también ocurre que las ramas no se pueden doblar por lo que es necesario recurrir al mismo sistema, el que se conoce como acodo o mugrón aéreo.


Fig 2.17. Planta madre de Muehlenbeckia hastulata (Quilo) junto a un acodo o mugrón que está siendo extraído (fotos superiores). El círculo indica el acodo que está siendo extraído del sustrato. Se pueden lograr

un número importante de acodos (inferior izquierda). En el esquema inferior derecha se esquematiza el proceso y se indica con un círculo la zona donde se pueden aplicar las hormonas enraizantes para que el nuevo individuo pueda generar sus propias raíces, cuando es necesario.

sigan colonizando el tranque, que es el objetivo inal de la propagación.

2.2.3. divii Se refiere a la separación de hijuelos laterales de la planta madre. Esto sucede en especies que son capaces de ormar una masa de vástagos muy unidos. Ocurre generalmente en algunas especies de pastos y gramíneas como por ejemplo en el género Festuca, Stipa,Polypogono en especies del género Cortaderia (Colas de zorro). Los hijuelos que se pueden separar deben tener un vástago y raíces independiente de la planta madre. Esta actividad se puede hacer levantando la planta madre con una horqueta y separar los hijuelos con un cuchillo o una pala afilada. La mejor época para realizar la separación

es cuando la planta aún no ha iniciado el crecimiento activo, es decir, a principios de primavera. Otra especie que se puede multiplicar por este método son las Tillandsiaspp. (Calachuncas) pertenecientes a la familia Bromeliáceas; sin embargo, éstas se encuentran clasificadas como vulnerables por lo que se recomienda sólo multiplicarlas a partir de rosetas desprendidas. Luego deben ser puestas en un lugar donde reciban luz natural y se pueda mantener húmedo su ollaje. Las Puya spp. (Chaguales) también pueden multiplicarse por rosetas como es el caso de Puya venusta. Se remueve una roseta individual con el vástago basal, se eliminan las hojas ineriores, se deja secar por 36 horas y se le aplica enraizante. Debe

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ponerse en un sustrato arenoso y aplicar muy poco riego.

2.2.4. óg á  v Los órganos subterráneos son estructuras vegetativas especializadas en el almacenamiento de carbohidratos, agua y minerales. Las plantas que poseen estos órganos son conocidas como bulbosas o geóitas y corresponden a plantas herbáceas perennes. La función de estos órganos que se encuentran bajo tierra es permitir a la planta sobrevivir en estado de receso durante condiciones desfavorables como las sequías y temperaturas extremas del verano. Algunos órganos de reserva subterráneo que pueden poseer especies chilenas son los rizomas, bulbos, cormos, tubérculos y raíces tuberosas. En muchos casos una especie puede poseer dos órganos subterráneos como es el caso

de Alstroemeria spp. que posee rizoma y raíces tuberosas; lo mismo ocurre con Pasithea coerulea. La cosecha de los órganos de reserva de las plantas geófitas se hacen durante la época de receso, es decir, cuando la planta ha marchitado su parte superior. Por este motivo se debe ir a terreno antes de la cosecha para identificar el lugar exacto donde excavar y extraer dichos órganos subterráneos. • Rizomas: Es un tallo subterráneo de creci-

miento horizontal capaz de crear nuevos individuos (Figura 2.19). Estos pueden ser divididos mediante corte durante el otoño. Algunas plantas que poseen rizomas son Pasithea coerulea (Azulillo), Alstroemeria spp. y Sisyrinchiumspp . (Huilmo amarillo).

Fig 2.18. Raíces de Pasithea coerulea (Azulillo) con sus órganos de reserva (raíces tuberosas)

Fig 2.19. Rizomas de Alstroemeria pulchra (Mariposa del campo).

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• Bulbosycormos: son tallos subterráneos

cruz, descabezado, vaciado o estaca de bulbo.

modiicados que la planta utiliza como órgano de reserva cuando la parte aérea se ha marchitado (Figura 2.20). Los bulbos Algunas plantas que tienen bulbos son y cormos se multiplican por división de Leucocorynespp. (Huilli), Rhodophiala spp. sus bulbillos y cormillos respectivamente (Añañucas) y Phycella spp. (Azucenas), y en orma natural. La separación de los algunas que poseen cormos son Zephyra bulbillos y cormillos debe realizarse elegans (Celestina) y Conanthera spp . durante la época de latencia que ocurre (Viuditas). justo después que su ollaje se ha marchitado. Al extraer los bulbos y cormos • Tubérculo: corresponde a un tallo modificado engrosado que posee yemas en su de la tierra se debe tener cuidado de no dañarlos ya que son frágiles y se dañan supericie, son conocidos comúnmente como “papas”. Una planta que posee con acilidad. tubérculo es Tropaeolumpolyphyllum También es posible multiplicar los bulbos (Soldadito cordillerano). y cormos en orma artiicial, con técnicas más complicadas llamadas corte en • Raícestuberosas: a diferencia de los órganos antes mencionados, las raíces tuberosas como su nombre lo dice, corresponden a raíces modificadas y no a un tallo. Son raíces engrosadas con yemas aéreas en un extremo y radicales en el otro. Algunas especies que poseen raíces tuberosas son Pasithea coerulea (Azulillo), Alstroemeria spp. y Bomarea salsilla (Salcilla).

Fig 2.20. Bulbos de una temporada de Rhodophiala

sp. (Añañuca).

El sitio web donde es posible averiguar el estado de conservación de la lora nativa para la II, III y IV Región del país es http:// www.biouls.cl/lrojo/

Se debe tener en cuenta que cuando se extraen los bulbos, cormos y rizomas enteros de terreno se está extrayendo un individuo completo, por lo que es mejor conseguir estos materiales en el comercio. En caso de no ser posible, se podría realizar acompañado por un experto. Muy importante también es verificar el estado de conservación de la especie ya que si está catalogada como vulnerable, o peor aún en peligro de extinción debe evitarse su cosecha.

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3| Tipos de Producción de Plantas

E

n general existen dos tipos de producción de plantas, producción a raíz desnuda y producción a raíz cubierta. Como ya se ha explicado en puntos anteriores el primero consiste en el desarrollo de la planta directamente en el suelo y en el segundo el desarrollo ocurre en contenedores.

vitro” . Consiste en multiplicar una especie

Si bien cada uno de ellos tiene sus ventajas y desventajas, se podría decir que la mayor limitante para la producción a raíz desnuda es el actor ambiental. Esta técnica es recomendada y ampliamente utilizada por su bajo costo en la zona templada sur del país donde las condiciones de temperatura y humedad son mayores. La utilización de este método no se recomienda para la zona centro-norte del país debido a que las plantas suren un shock intenso al ser sacadas del suelo para ser transportadas.

3.1. raíz desnuda

La producción de plantas a raíz cubierta puede ser utilizada en cualquier ambiente, sin embargo, su costo es mayor. Si bien es la recomendada para la zona centro-norte también existen otros métodos de producción no convencionales que podrían ser usados. Uno de ellos es la producción hidropónica, ampliamente diundida en la agricultura, sobre todo en países donde el agua es una limitante. Otra técnica de producción es la micropropagación, también conocida como cultivo “in

a partir de tejidos vegetales en condiciones ambientales controladas y asépticas. Debido a la complejidad y alto costo de este método es utilizado a nivel de laboratorio para hacer mejoramientos genéticos.

En este caso, por ser una técnica prácticamente inutilizada en zonas donde existe actividad minera en el país sólo se entregará una breve explicación de la metodología que se debe aplicar. Uno de los requerimientos más importante es la calidad del suelo, ya que será aquí donde la planta alcanzará el desarrollo deseado antes de ir a terreno. El suelo debe ser debidamente preparado antes de confeccionar las platabandas. Luego de su preparación (descrito en el Punto 1.2) y realizado los análisis de suelo, se deberá aplicar enmiendas, fertilizantes y micorrizas de ser necesario. Las enmiendas cumplen la unción de corregir el pH del suelo y mejorar otras propiedades ísicas y nutricionales. Los rangos de pH en el cual la mayoría de las especies crecen van desde 5.0 a 6.5. Cuando se desea elevar el pH se puede agregar cal como carbonato y cuando se desea disminuir el pH se puede acidiicar agregando azure.

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Los fertilizantes se aplican al suelo cuando el nivel nutricional que éste pueda aportar a la planta es bajo. Pueden aplicarse sustratos orgánicos como compost o guano totalmente descompuesto o fertilizantes químicos. En un suelo con características promedio es posible incorporar cualquiera de los siguientes ertilizantes: • 200-300 kg/ha de Superosato triple • 60-100 kg/ha de Sulato de potasio • 30-50 kg/ha de Salitre sódico

La micorrización se realiza para incorporar micorrizas al suelo. Las micorrizas son hongos microscópicos que viven en simbiosis con las plantas, es decir, tanto el hongo como la planta se beneician de esta asociación. Para inocular o agregar las esporas de estos hongos lo más ácil es recolectar hojarasca en descomposición a una proundidad de aproximadamente 15 cm de algún bosque o zona donde exista la especie que se desea inocular. Mayor detalle de las micorrizas y sus asociaciones con especies a cultivar se entrega en el Punto 3.2.3. Una vez realizadas todas estas actividades se pueden construir las platabandas, lugar donde crecerán las plantas. Generalmente son de 1 a 1,2 m de ancho y de largo variable. Estás pueden ir sobre el nivel del suelo a 10 o 15 cm para zonas lluviosas y terrenos húmedos, a nivel del suelo para zonas donde no existe problema de exceso o alta de agua o bajo nivel del suelo en zonas secas o de escasa precipitación.

acondicionamiento de las plantas antes que estas vayan a terreno. El acondicionamiento se logra con poda aérea, radicular y descalce. La poda radicular se realiza en la época de mayor crecimiento de la planta (ebrero); sin embargo, se debe tener la precaución de no podar si la planta no ha alcanzado la altura ideal. Por otro lado, si se espera mucho tiempo ésta no mostrará una respuesta oportuna. La poda de raíces se realiza con una pala ailada, la cual se introduce en forma inclinada (45º-50º) a unos 10 o 12 cm de profundidad. Así el filo corta la raíz principal y las secundarias. Posteriormente debe regarse abundantemente. Después de la poda radicular se realiza el descalce que tiene como propósito incentivar el desarrollo radicular y controlar o disminuir el desarrollo de la parte aérea. Se realiza con una pala, la cual se introduce en forma oblicua bajo la planta y luego se levanta. Con esto se logra la aireación del suelo y la poda de algunas raicillas. Puede repetirse cada tres semanas. Si el descalce no ha sido suficiente para controlar el crecimiento del vástago se debe realizar la poda aérea. Se realiza cuando el crecimiento apical es excesivo. Una buena relación diámetro/altura es 1/60. Se realiza durante abril o mayo y se puede ejecutar cortando el vástago con una tijera bien afilada a una altura que respete la relación antes mencionada.

La siembra puede realizarse directamente en las Después que la planta ha alcanzado el platabandas. Lo más recomendable es hacerlo tamaño adecuado se está en condición de en hileras de 5 a 6 a lo largo de la platabanda. extraer la planta para ser transportada. Es También puede sembrarse en almacigueras y en esta etapa donde la planta sufre un gran luego repicar las plantas a las platabanda. shock. La mejor época para la extracción es a ines de otoño o principios de invierno Una de las etapas más importantes y se deben dañar lo menos posible, sobre de la producción a raíz desnuda es el todo las raíces y ápices. Lo ideal es hacerlo

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en días donde la temperatura sea muy baja y haya una alta humedad. Para evitar daños durante el transporte, las raíces pueden ser sometidas a un baño con gel hidratante y luego almacenadas en cajas; con esto se disminuirá la posible deshidratación que pudieran sufrir hasta llegar a terreno.

3.2. raíz CubIerta

los contenedores deben ser especializados; por ejemplo, se pueden reciclar envases de uso casero como cajas de cartón recubiertas de aluminio de leche o jugo, cortando la parte superior; envases de yogurt o cajas de helado. Lo importante es que estén limpios y perorados en la base para permitir un buen drenaje. Existen otros contenedores que son específicos para producir plantas, como bandejas con celdas conocidas con el nombre de speedling , tubetes desmontables y bolsas plásticas.

El cultivo de plantas en contenedores o a raíz La tendencia es utilizar recipientes pequecubierta permite obtener plantas de mejor ños a medianos, de materiales livianos y calidad, en menor tiempo y bajo cualquier de orma cuadrada cónica, lo que permite condición climática. Su mayor desventaja mayor producción, transporte y evita el radica en el alto costo de producción en espiralamiento de las raíces. relación a una producción a raíz desnuda. El éxito de la producción con este método Algunos contenedores que se pueden endepende mucho de los contenedores y contrar en el comercio son: sustratos que se escojan. • Bandejasconceldas: existen plásticas o de poliestireno expandido (plumavit) las 3.2.1. C cuales tienen la ventaja de estar divididas en casillas permitiendo el crecimiento de Los contenedores son los envases o recipientes que sostienen el sustrato donde cada plántula en una celda (Figura 3.1). crecen las plantas hasta el momento de Las de tamaño más pequeño se pueden ser llevadas a terreno. Las plantas que se utilizar como almacigueras, teniendo desarrollarán en estos recipientes pueden mayor vida útil que las de madera. Las mayores ventajas radican en que son provenir de semillas, almácigos o estacas. Para una correcta elección se debe condurables, reutilizables, fáciles de limpiar, siderar la etapa de crecimiento en que se firmes, livianas y por ende fácil de trasportar. Además, la plántula es trasplantada encuentra la planta y sus requerimientos. con todo su pan de sustrato que incluye En la actualidad se encuentran disponibles todas sus raíces, existiendo muy poca una gran gama de recipientes que van pérdida de plantas. Es importante no desde macetas tradicionales hasta bandejas mantener por mucho tiempo las plántulas almacigueras. en estos contenedores ya que las raíces Al elegir un contenedor se debe considerar suren deormaciones. Otra ventaja que tienen los contenedores de poliestireno al menos que estos sean livianos y áciles de transportar. En caso de ser reciclables es su capacidad de aislar las raíces de deben además ser fáciles de lavar y almacelas bajas temperaturas. nar. Su capacidad de drenaje también será importante al momento de elegirlos, sobre Los volúmenes de las bandejas de poliestodo para especies de zonas áridas. No todos tireno van desde los 40 a 492 cm3 y los de

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las bandejas de plástico van desde los 57 a 120 cm3. Los volúmenes más comunes son lo que van entre 50 y 75 cm 3 ya que son áciles de transportar, llenar y limpiar. Generalmente, este tipo de contenedores van sobre un mesón de 1 m de altura para facilitar las labores de riego, fertilización y control de malezas. Con el objetivo de producir una poda radicular química y evitar que las raíces atraviesen las paredes del poliestireno expandido se puede realizar una impregnación. Los contenedores pueden ser lavados con una mezcla de 100 L de látex y 60 kg de oxicloruro de cobre en 700 litros de agua (Figura 3.2). En cuanto al compuesto cúprico este puede ser oxicloruro de cobre o sulfato de cobre. Si la bandeja es reciclada esta deberá ser

lavada con agua, ojalá a presión, para sacar los restos del sustrato anterior. • Tubetesinsertadosenbandejas: Son tubos

de polietileno desmontables que van insertos en una bandeja (Figura 3.3). Su mayor ventaja radica justamente en esta movilidad ya que cada tubete puede ser removido a otra bandeja para homogeneizar la producción. Cuando las plantas alcanzan cierto tamaño se pueden remo ver tubetes para dejar espacios vacíos y así evitar que las plantas se vayan suprimiendo. Además, al igual que las bandejas de poliestireno, son reciclables durando incluso hasta 10 temporadas. Los volúmenes más comunes van entre 80 y 300 cm3. Cada bandeja puede alojar entre 40 y 90 tubetes y por el espacio

Fig 3.1. Bandejas con celdas, a la izquierda de plumavit y a la derecha de plástico.

Fig 3.2. Lavado de bandejas speedling antes de ser nuevamente utilizadas.

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Fig 3.3. Bandejas con tubetes plásticos desmontables.

que queda entre el fondo de la bandeja y el fondo del tubete sirve para una poda radicular por efecto del aire. En caso que los tubetes sean llenados con sustrato fino, se puede poner un algodón sintético para evitar que éste se pierda; lo mismo se puede hacer en el caso de las bandejas con celdas.

secamiento en terreno. Para evitar deformaciones de las raíces se debe poner mucha atención en el llenado y en la manipulación de las bolsas.

Un buen llenado de la bolsa influirá directamente en el desarrollo óptimo de la planta. La bolsa debe ser completamente llenada pero sin compactarla demasiado, • Bolsasplásticas: son bolsas de polietileno lo que se logra con algunas sacudidas ránegro de diversos volúmenes; las más pidas sobre el suelo. Se deben mantener comunes se encuentran entre los 300 en posición vertical y no aplastarlas entre y 600 cc. No son rígidas, por lo que su ellas. Al ponerlas en las platabandas no se manipulación es un poco más complica- deben poner muchas por cada hilera. En da. Su mayor ventaja podría radicar en el las platabandas se puede poner un plástico bajo costo de las bolsas; sin embargo, el bajo las bolsas para evitar que especies de gran volumen de sustrato utilizado para rápido desarrollo radicular traspasen la bolsa su llenado y lento reordenamiento en y se anclen al suelo de la platabanda. Se vivero hace que su costo al largo plazo debe considerar que esto podría reducir el sea alto. Además, son desechables por drenaje, formando anegamiento. Durante lo que no se pueden volver a utilizar. el llenado, el sustrato debe estar húmedo pero no saturado; así se trabaja mejor. Antes En cuanto a sus características técnicas, de realizar el repique, las bolsas deben ser se puede decir que las plantas producidas regadas idealmente el día anterior y llenadas en bolsas tienen la ventaja de poseer una antes de la aena de repique. mayor cantidad de sustrato que acompaña a las raíces; por lo tanto, mayor probabilidad Las bolsas se recomiendan para realizar de sobrevivencia en sitios donde las con- siembra directa de semillas grandes como diciones hídricas y edáicas son limitadas, Beilschmiedia spp. (Bellotos), Jubaea chicomo lo son los depósitos de relaves. Su lensis (Palma chilena). También sirven para mayor desventaja es que las raíces tienden completar el desarrollo de las plántulas a espiralarse, lo que podría producir un provenientes de almacigueras.

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3.2.2. s Un buen sustrato está determinado por sus características. Lo ideal es que tenga una buena aireación, adecuada retención de agua y nutrientes y la habilidad de conducir el calor. Generalmente, un sustrato adecuado se logra con una mezcla de dierentes suelos o materiales, los cuales proporcionarán distintos tamaños de partículas. La mezcla ideal para cada especie dependerá del tipo se suelo donde ella se desarrolla naturalmente; por lo tanto, será importante al momento de recolectar material vegetal observar el sitio de crecimiento de la planta. La mezcla más común consta de tres partes, una que entregue aireación como la arena, otra orgánica que entregue nutrientes como la turba y una parte de suelo del lugar. Cuando el objetivo es la plantación sobre depósitos de relaves también se puede aplicar una parte de relave con el in de ambientar desde las primeras etapas de crecimiento a la planta a estas condiciones. A continuación se describen las principales características de cada sustrato: • Sustratosinorgánicos: existen distintos

tipos de sustratos inorgánicos que pueden ser usados para la propagación de plantas en programas de fitoestabilización de depósitos de relaves mineros. Los más comunes son: Arena: es un conjunto de partículas

homogéneas de rocas disgregadas que favorece el drenaje y la aireación; sin embargo, este material tiene la desventaja de secarse ácilmente. Perlita: son gránulos expandidos de roca

volcánica, estéril, inerte, retiene humedad pero a la vez proporciona un buen drenaje debido a que no se compacta, ayudando también a la aireación.

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Vermiculita: es mica expandida e hin-

chada que actúa similar a la perlita pero retiene más agua y menos aire. Tiene pH neutro. Relave: es el desecho generado por la

industria minera después de la extracción de minerales por flotación. Es de textura fina y homogénea, con altos contenidos de metales. Debido a la ausencia de macronutrientes y a la baja fertilidad biológica, se le puede considerar como un sustrato inorgánico. Su ventaja se basa en permitir la ambientación de la planta a las condiciones de este sustrato antes de ser llevada al depósito de relaves. Lo más conveniente es utilizar el mismo relave del depósito que se va a itoestabilizar. • Sustratosorgánicos: existen distintos tipos

de sustratos orgánicos que pueden ser usados para la propagación de plantas en programas de fitoestabilización de depósitos de relaves mineros. Los más comunes son: Turba: es altamente ácida por lo que es

casi estéril. Tiene la propiedad de retener agua por lo que se mantiene húmeda por mucho tiempo. Antes de utilizarla para el llenado de los contenedores conviene agregarle agua. Una buena hidratación se logra mezclando con las manos. Compost: es sustituto de la turba. Consiste

en material orgánico descompuesto, también conocido como abono orgánico. Para su elaboración es necesario el material orgánico, microorganismos (bacterias y hongos principalmente), humedad y oxígeno. Su mayor ventaja es que es capaz de proporcionar todos los nutrientes que una planta necesita, con lo que se evita aplicar fertilizantes químicos. Además, el compost se puede producir dentro del mismo vivero. El compost más utilizado


es el de corteza de pino de tamaño entre para la producción de plantas con fines de 5 y 8 mm. Este tiene la característica de fitoestabilización puede estar constituida ser inerte, aséptico, de bajo peso, alta por 50% relave, 33% suelo del lugar y 17% porosidad y buena retención de hume- de compost. dad. Es muy importante que el material orgánico, sobre todo de origen animal, Uno de los mejores medios para enraizar esté muy bien descompuesto; de otra esquejes es 1 parte de turba por 3 de arena, forma será demasiado fuerte para las ya que se forman raíces compactas y fuerplantas recién germinadas. tes. También se puede utilizar 2 partes de perlita, 2 de arena y 1 de turba para enraizar • Suelodellugar: corresponde al suelo que bajo invernadero. existe en el vivero o en los alrededores. Se utiliza para abaratar el costo de llena- Para el cultivo de cactáceas, lo ideal es agredo de contenedores, disminuyendo así garle al sustrato la parte de compost como la cantidad de sustratos comprados en guano totalmente descompuesto. el mercado. Proporciona propiedades físicas a la mezcla similar a la que posee En general, las bulbosas necesitan un la planta en terreno. Además, puede apor- suelo con buen drenaje, debido a que tar micorrizas y bacterias beneiciosas. son estructuras carnosas que se pudren Cuando una planta tenga asociaciones fácilmente en presencia de humedad, por simbióticas con estos organismos será lo que es bueno priorizar la utilización de undamental extraer cierta cantidad del arena y perlita. suelo donde ellas crecen. Lo ideal para evitar enermedades es que Si bien los sustratos más utilizados son turba el sustrato sea umigado ya sea con proo compost y arena en iguales proporciones, ductos químicos o calor. Para desinectar esta mezcla no es la más recomendada para cinco sacos grandes se puede utilizar 2 ml plantas que van a ser plantadas en depósitos de Karate® más 4 ml de Previcur®, diluidos de relaves. La mezcla de sustrato adecuada en 2,5 L de agua. ¿Cóm cma? Para compostar se necesita buscar un sitio al cual le llegue sol, esté nivelado y que tenga un buen drenaje. La abonera se puede construir con casi cualquier material como tablas de madera, malla de alambre, ladrillos, etc. Si no se tienen estos materiales se puede hacer un hoyo en el suelo. Lo importante es que la dimensión de la abonera sea de a lo menos 1 metro cúbico para que se produzcan las reacciones biológicas que darán como resultado el abono o compost . La altura no debe sobrepasar el metro. La primera capa de materiales orgánicos debe ser gruesa; es decir, ramas, astillas, tallos, los cuales pueden obtenerse de la faena de limpieza inicial del vivero; si son muy grandes deben cortarse. Luego se agregan los materiales más finos como hojas, restos de verduras, guano, algas, conchitas molidas, cáscaras de huevo, etc. Si se van a echar restos de plantas se debe evitar que vayan con semillas ya que podrían convertirse en malezas. La última capa se hace con tierra del vivero. Después se riega y se van poniendo otras capas en el mismo orden hasta llenar la abonera. Después de tres semanas se debe revolver el material al menos una vez por semana, para ventilar ya que los microorganismos requieren de oxígeno para degradar la materia orgánica. Después de ventilar se debe volver a mojar. El compost estará listo para ser usados en aproximadamente dos o tres meses, resultando un sustrato esponjoso oscuro y de buen olor.

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3.2.3.Inoculación con micorrizas y

ci

micorrización inducida mediante el uso de inoculantes micorrícicos.

La inoculación consiste en agregar a las raíces de una planta los microorganismos para que realicen una simbiosis, la cual le permitirá mejorar el desarrollo a la planta. La simbiosis es la asociación entre dos individuos de distintas especies donde ambos se benefician. Las plantas realizan simbiosis en sus raíces con diversos organismos como hongos y bacterias.

La inoculación puede realizarse a través del micelio o de las esporas (“semillas” microscópicas). La incorporación con micelio se aplica en distintas cantidades según el tipo de sustrato y de contenedor, además de la especie. La incorporación a través de esporas se realiza con soluciones acuosas, posibles de aplicar junto con el riego. También se puede mezclar el producto con las semillas antes de la siembra.

Cuando los hongos se asocian a las raíces de las plantas, estos se denominan micorriza y tanto la planta como el hongo se beneician de la asociación. El hongo le facilita a la planta la incorporación de algunos nutrientes, la absorción de agua y la protege de algunos patógenos, como los causantes del dumping off. Por otro lado, la planta le proporciona azúcares, sustancias que el hongo es incapaz de sintetizar por sí mismo. La mayoría de las plantas vasculares conviven con micorrizas, sólo algunas familias son las excepciones como las crucíferas, ciperáceas y quenopodiáceas.

Una vez realizada la inoculación se debe considerar que la proliferación de micorrizas en el sustrato de los contenedores podría fracasar, por ejemplo debido a la incorporación de nitrógeno como fertilizante ya que normalmente las inhibe. Según algunos autores, se establece que el crecimiento del hospedero es mayor cuando la planta crece en suelos con bajos contenidos nutricionales. También es importante considerar que la aplicación de fungicidas puede eliminarlas, por lo tanto, se recomienda no aplicar ungicidas al menos dos semanas antes y después de la micorrización.

La aplicación de micorrizas se realiza durante la etapa de viverización. Las micorrizas se encuentran en forma natural en el suelo donde crece la planta. Por lo tanto, una forma de agregar estos organismos es colectando suelo a unos 10 o 15 cm de profundidad para luego ser incorporado a la mezcla del sustrato. Con esto se asegura que la micorrización de las plantas sea con sus micorrizas naturales y así se logre el mejor desarrollo; además, se evita incompatibilidad. En algunos suelos degradados o alterados por la aplicación de sustancias químicas no es posible encontrar estos hongos, por lo que se deben aplicar técnicas como la

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En el caso de los depósitos de relaves, lo ideal es usar micorrizas tolerantes a metales, ya que de otra orma puede inducirse el traspaso de metales desde el sustrato a los tejidos vegetales, una vez que las plantas han sido trasplantadas sobre el depósito de relaves. Las bacterias también son capaces de realizar una simbiosis con las raíces de las plantas (Figura 3.4). El mayor beneficio que le aportan las bacterias a las plantas es nitrógeno captado de la atmósera. Por otro lado, la planta les aporta carbohidratos. La amilia de las leguminosas realiza esta asociación (nódulos con bacterias fijadoras de nitrógeno), por lo tanto, en el caso de producirlas


Fig 3.4. Raíces de Acacia caven (Espino) formando nódulos con bacterias.

se deben inocular. Una orma de hacerlo, al igual que en el caso de las micorrizas, es aplicando a la mezcla del sustrato suelo del lugar donde crece la planta. Las orquídeas también hacen simbiosis en sus raíces con bacterias llamadas Rhizobium.

3.3. CuLtIVos aLternatIVos

Si bien su inversión inicial es elevada este tipo de cultivo tiene grandes ventajas. Los mayores beneicios que se obtienen de él son una optimización del agua y de los nutrientes, mayor densidad de plantación y mayor crecimiento de las plantas.

3.3.1. hip

El cultivo hidropónico consiste en usar un Existen otros medios de cultivos de plantas medio inerte, como arena, turba, perlita, uera de los descritos anteriormente, raíz vermiculita, piedra pómez o aserrín a los cubierta y raíz desnuda. Lo que caracteriza a cuales se les añade una solución de nutrienlos cultivos alternativos es que no se utiliza tes o solución nutritiva, que contiene todos el suelo como sustrato de crecimiento. Entre los elementos esenciales para el adecuado los más conocidos están el cultivo in vitro desarrollo de las plantas. Este medio puede y el hidropónico. suministrar el oxígeno, agua, nutrientes y soporte físico para las raíces de las plantas, El cultivo in vitro es una técnica de mul- en una orma tan adecuada como lo hace tiplicación a través del cultivo de células, el suelo, permitiendo a la planta un normal tejidos u órganos vegetales. Tiene la ventaja crecimiento y desarrollo. de crear individuos con las mismas características de sus progenitores. Sin embargo, La solución de nutrientes se hace con sales es una técnica muy costosa y difícil de fertilizantes, las que aportarán los elementos realizar si no se tienen los conocimientos esenciales para el crecimiento de las plansuicientes. tas. Estas sales deben encontrarse disueltas en agua, de forma de permitir la absorción Por otro lado, se tiene el cultivo hidro- por las raíces. Las sales fertilizantes más pónico, técnica que consiste en producir utilizadas en la hidroponía, por su alta soplantas en ausencia de suelo. Esta técnica lubilidad son: es ampliamente utilizada para la producción de hortalizas; sin embargo, permite cultivar • Nitrato de calcio todo tipo de plantas entre ellas flores y • Nitrato de potasio • Nitrato de magnesio árboles rutales.

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• • • • • • • •

Fosato monopotásico Sulato de magnesio Sulato de potasio Sulato de manganeso Ácido bórico Sulato de cobre Sulato de zinc Molibdato de amonio

así aportar una concentración determinada de elementos minerales.

La formulación de la solución nutritiva constituye una de las bases para el éxito del cultivo hidropónico. La formulación se refiere a la concentración de los elementos esenciales que la componen, expresados generalmente en partes por millón (ppm) o miligramo por litro (mg/L).

Cada cierto tiempo la solución nutritiva debe monitorearse, ya que debido a la absorción de nutrientes por parte de la planta existen cambios continuos en la concentración de sales. El chequeo de la solución puede realizarse a través de análisis químicos en laboratorio. Debido a que este método es costoso se puede medir la conductividad eléctrica a través de un conductivímetro el cual indicará la cantidad de sales disueltas en la solución. Si no se cuenta con ninguno de estos medios lo más conveniente es renovar totalmente la solución cada un mes.

A lo largo de variados procesos de investi- Otro factor importante en esta clase de cultivo gación se han descrito un gran número de es la aireación, ya que el oxígeno es requerido formulaciones para las soluciones nutritivas, por las plantas para su normal desarrollo. La las que diieren en los ertilizantes usados oxigenación debe hacerse en forma periódica, pero no mayormente en los rangos de con- ya sea con una bomba de aire o en orma centración óptimos de cada elemento. Entre manual. Esta última se puede realizar agitanlas más utilizadas se encuentra la formula- do la solución con la mano o con una varilla ción de Hoagland y Arnon (1938), la cual hasta producir burbujas de aire. se describe en la tabla de más abajo. Existen diversos tipos de cultivos hidropóSin embargo, las proporciones entre los nicos, desde unidades de alta tecnología distintos elementos varían de acuerdo con hasta unidades caseras. Estas últimas tienen las especies de plantas, el ciclo de cultivo, la ventaja de no requerir una gran inversión el desarrollo de la planta y las condiciones inicial, además permiten utilizar cualquier espacio y material. Se pueden utilizar como climáticas. recipientes diversos contenedores como Alternativamente existen soluciones co- rascos, envases plásticos, etc. Para hacer merciales concentradas que presentan la unidades mayores de cultivo se pueden formulación de sales fertilizantes requeridas utilizar acuarios, tuberías plásticas o cajas por la planta. Estas sales vienen preparadas, de madera que esté en su interior cubierta es decir, dosificado cada elemento para ser por polietileno (cubierta plástica). El polietidiluido en un volumen conocido de agua y leno debe ser de color oscuro para evitar la Elementos Concentración (ppm)

Fuente: Resh (1992).

68

Ca++ Mg++ 160

48

K+ 234

NH4+ NO3- PO4--- SO4--14

196

31

64

Fe

Mn

Cu

Zn

B

Mo

0,63

0,5

0,02

0,05

0,5

0,01


formación de algas y dar mayor oscuridad a las raíces. Como soporte se usa una bandeja de siembra que va dentro del recipiente que contiene

la solución. La bandeja va con un sustrato ino como vermiculita, perlita o turba, de esta forma la siembra puede efectuarse en forma directa o repicar plántulas desde las almacigueras.

Cóm aba na nia  civ hiónic – fia 3.5 Materiales: arena para nivelar el terreno; marco de madera de 4 m de largo x 1,3 m de ancho y 20 cm de alto unidos es sus aristas con escuadras; 20 bandejas de poliestireno expandido tipo “speedling” (64 x 39 x 9,5 cm); polietileno negro grueso de 1,7 m de ancho por 4,5 m de largo; sustrato (puede ser turba mezclada con perlita o turba con arena); algodón sintético. • •

• •

•

Despejar y nivelar el terreno (ubicado en una parte del vivero que esté protegido con sombreadero). Poner al marco de madera sobre la arena y cubrirlo con el plástico negro de modo que quede como una “piscina”. Llenar la “piscina” con agua y la solución de nutrientes. Colocar algodón sintético en la base de cada alvéolo de la bandeja, luego rellenar con el sustrato y sembrar las semillas o repicar las plántulas. Colocar a flotar las bandejas.

Figura 3.5. A la izquierda arriba: nivelación del terreno con arena, a la derecha arriba: marco

de madera cubierto de plástico negro (en forma optativa se pueden poner arcos para hacer un invernáculo tipo túnel). Abajo: llenado de bandejas con una mezcla de turba con perlita.

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4| Riego

E

l agua es el mayor componente de las plantas y el medio de transporte de los nutrientes. Por tanto, el riego es de vital importancia si se desea obtener plantas de buena calidad, especialmente si el vivero se encuentra en zonas con veranos secos y largos. Durante el riego se deben tener presentes algunas precauciones para asegurar un aporte homogéneo de agua a todos los individuos en propagación, sobre todo cuando las plantas han alcanzado una cobertura tal que las mismas hojas producen un efecto paraguas. Para asegurar un riego adecuado es importante observar la condición en que se encuentra la planta ya que ella nos dará un indicio de cómo está hidratada. Plantas turgentes indican buena cantidad de agua en el sustrato, plantas lacias indican lo contrario. En el caso de producción en tubetes o bandejas speedling , las plantas pueden ser remo vidas momentáneamente para verificar si el agua está penetrando en el sustrato. En plantas producidas en bolsas plásticas también ocurre una mala penetración en el sustrato cuando las bolsas han sido mal llenadas. Por otro lado, también es importante no sobresaturar el suelo ya que se podría acilitar el ataque de hongos. Los riegos de preferencia deben eectuarse en las primeras horas de la mañana o durante las últimas horas de la tarde.

4.1. FreCuenCIa y CantIdad La cantidad y la recuencia del riego dependen del nivel de desarrollo que tenga la planta. Por ejemplo, antes que ocurra la germinación es importante considerar la profundidad a que se encuentran las semillas para así determinar la cantidad que permita mantenerlas húmedas. Es importante mantener la supericie del suelo húmedo ya que ayudará a evitar un posible encostramiento que impida la emergencia de las plántulas, sobre todo si el sustrato es arcilloso. Por lo tanto, riegos seguidos y poco abundante es lo más recomendable para esta etapa. Una vez que las plantas han germinado, se recomienda regar dos veces al día, una en la mañana y la otra en la tarde, pero con poca cantidad de agua ya que las raíces aún no se han desarrollado. Después de un tiempo, alrededor del mes, cuando han comenzado a desarrollar sus raíces, la frecuencia puede disminuirse a una vez al día pero su intensidad se debe aumentar de modo que el agua penetre hasta donde se encuentren las raíces. En caso de regar esquejes, la humedad debe ser constante sobre el ollaje y el sustrato hasta que la planta logre enraizar. Una vez que el esqueje ha enraizado, la humedad aplicada al follaje no será necesaria ya que la pérdida de agua por transpiración podrá

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ser regulada mediante la propia absorción de agua a través de sus raíces.

radiación solar. Mientras mayor sea la temperatura mayor será la pérdida de agua por evapotranspiración, lo mismo pasa con una alta radiación o con vientos excesivos.

Cuando la planta ha alcanzado un tamaño adecuado y ha terminado el período vegetativo, entre ebrero y marzo, se debe Se debe considerar que a mayor frecuencia comenzar con la etapa de acondiciona- de riego se aumentan los costos debido al miento, lo cual se logra disminuyendo disminuyendo la excesivo uso de equipos de aspersión y frecuencia de riego al máximo sin que se lixiviación de nutrientes. Además se observa recientan las plantas. Para determinar la una tendencia a que los tallos presenten cantidad de agua requerida por la planta y una menor ligniicación y una mayor proevitar un deshidratamiento se puede obser- babilidad de inección por hongos. Por el var la turgencia de las hojas. El manejo del contrario espaciar mucho los riegos proagua es esencial para el endurecimiento de vocará una disminución del crecimiento la planta antes de ser llevada a terreno. de las plantas.

Las recomendaciones dadas anteriormente son sólo una pauta, ya que la cantidad de agua a aplicar está determinada por varios actores como las características del suelo o sustrato de propagación, de las plantas (especies) y del clima. Una de las características más importante del sustrato es su textura; si es arcillosa retendrá más agua que si es arenosa y por tanto el riego debe ser mayor en el segundo caso y menor en el primero. Las características de las plantas a considerar para determinar el riego son el sistema radicular y la transpiración. A mayor volumen de biomasa aérea mayor transpiración y por ende se necesitará una mayor cantidad de agua. Por otro lado, el sistema radicular es el que determina las tasas de absorción del agua y nutrientes de la solución del suelo, por lo tanto, el tamaño de los contenedores nos indicará la cantidad de agua a aplicar. Tamaños pequeños requieren una mayor frecuencia de riego que contenedores de mayor tamaño, los cuales pueden mantener la humedad por un período más prolongado.

Los factores abióticos también influyen en el riego, sobre todo el clima, el viento y la

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4.2. sIsteMas de rIeGo El sistema de riego que se implemente en un vivero dependerá básicamente del presupuesto disponible. Un riego tecniicado será más caro pero requerirá de menor mano de obra; en cambio, uno manual será más barato pero requiere mayor mano de obra.

4.2.1. rig cific El riego tecnificado generalmente es utilizado en viveros permanentes y de gran producción. Sus mayores ventajas radican en la alta eficiencia ya que pueden realizar riegos programados regulando frecuencia y volumen. Además ahorran tiempo, debido a que prácticamente no se necesita mano de obra. Sin embargo, la inversión inicial es alta y su uso es limitado en lugares con mucho viento. En el caso de producción a raíz cubierta, lo más utilizado es la aspersión y nebulización con microjet (Figura 4.1). El riego por aspersión es utilizado generalmente en invernaderos donde un carro se desplaza en orma automática sobre rieles con dos brazos extendidos donde están ubicados los microjet cubriendo el ancho


de los mesones. El riego por nebulización es utilizado cuando los contenedores se encuentran al aire libre sobre mesones. En este caso, los microjet están fijos a soportes verticales ubicados de forma tal que cubran la totalidad de los contenedores. El riego nebulizado en forma intermitente es beneficioso para regar esquejes ya que permite mantener las hojas húmedas, produce una alta humedad relativa y hace bajar la temperatura del aire, disminuyendo el grado de transpiración. Otra opción es el riego por goteo el cual consiste en una red de tuberías por las que pasa el agua liberándose a través de boquillas que entrega el agua gota a gota (Figura 4.2); la cantidad es regulable.

4.2.2. rig ml El riego manual no requiere una gran in versión pero su demanda de mano de obra es alta. Generalmente se utiliza en viveros más pequeños y de menor producción. Se pueden utilizar bombas de espalda, regaderas o mangueras. Las bombas de espalda entregan un riego por aspersión ideal para regar almácigos. Las regaderas con roseta ina también sirven para regar almácigos o plantas de menor tamaño. Para plantas más desarrolladas se puede utilizar una roseta más gruesa para acelerar el proceso de riego. La manguera con pistón no muy fina sirve para regar plantas ya desarrolladas; no obstante, se debe considerar un adecuado metraje para llegar a todos los rincones del

Fig 4.1. Riego tecnificado con aspersores.

Fig 4.2. Riego tecnificado por goteo, individual por maceta.

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vivero, teniendo la precaución de no pasar sobre las plantas ya que podría causar un daño mecánico. Además, se debe contar con suiciente presión. Otra alternativa es el riego por capilaridad el cual se consigue a través de la

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construcción de un lecho proundo tipo piscina, relleno con arena, que se mantiene constantemente húmedo, el agua se iltra a través de la arena y pasa por capilaridad a los contenedores que se colocan en la supericie; es importante que estos estén en contacto.


5| Fertilización

L

os fertilizantes permiten entregar nu- La importancia que tienen los nutrientes trientes adicionales a los que posee el es la de fortalecer ciertas características sustrato donde está creciendo la planta. de la planta. Por ejemplo, altos niveles de Los nutrientes que ellas necesitan para un nitrógeno en el follaje indican un mayor óptimo desarrollo están divididos en macro y crecimiento inicial. Cantidades adecuadas micro nutrientes. Los primeros son aquellos de ósoro estimulan el crecimiento inicial que la planta requiere en mayor cantidad de la parte aérea y radical. Altos niveles como nitrógeno (N), fósforo (P), potasio de potasio también estimulan el desarro(K), calcio (Ca), magnesio (Mg) y azufre llo radicular y son un indicador de mayor (S). Los micronutrientes, que son requeridos resistencia al frío y a las enfermedades. en concentraciones más bajas, son el cobre Además, altos contenidos de calcio (Ca) (Cu), zinc (Zn), manganeso (Mn), boro (B), indican una mayor resistencia a la lexión molibdeno (Mo), cloro (Cl) y ierro (Fe). por el viento.

taba 5.1 Algunos síntomas visuales de deficiencia de nutrientes emn

dicincia

Nitrógeno

Clorosis (color amarillo) general de la planta especialmente en las hojas más viejas.

Fósforo

Aspecto raquítico. Frecuentemente presenta hojas color verde oscuro. Las hojas viejas se vuelven color café oscuro y mueren.

Potasio

Hojas adultas se ponen ligeramente cloróticas. Aparece necrosis (tejido de color negro).

Azufre

Clorosis generalizada. Generalmente los síntomas aparecen primero en las hojas nuevas.

Magnesio

Clorosis en hojas adultas, generalmente entre las venas de las hojas.

Calcio

Los síntomas se evidencian en los tejidos nuevos. Los tejidos se retuercen y deforman.

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Para determinar la cantidad de nutrientes que pequeños, menor resistencia a condiciodebe agregarse se deben hacer idealmente nes atmosféricas, plagas y enfermedades tanto análisis de suelo como foliar. Este y tasas más bajas de sobrevivencia en la último entrega mejores resultados ya que nos plantación. indica lo que la planta absorbe, es decir, lo que está realmente disponible. Bajos niveles Si se aplican altas dosis de fertilizantes, de nutrientes foliares pueden indicar niveles superiores a las que la planta requiere, bajos de nutrientes en el suelo, siempre y habrá pérdida por lixiviación y volatilizacuando no hayan limitantes de agua y pH. ción, además de contribuir al desarrollo de Cuando no se pueden realizar estos análisis enfermedades y malezas. Además se puede es posible detectar la condición nutricional provocar una intoxicación por exceso. de la planta a través de algún cambio visual Con respecto a los micronutrientes se debe o síntomas visibles (Tabla 5.1). tener especial cuidado cuando se utiliza el Los requerimientos nutricionales están di- relave como sustrato. Esto debido a su alto rectamente relacionados con el estado de contenido de micronutrientes como cobre, desarrollo de la planta. En la etapa de ger- zinc, fierro y molibdeno, los cuales en minación, cuando la plántula aún posee sus exceso pueden ser tóxicos para las plantas. cotiledones, la fertilización no es necesaria En estos casos, se debe evaluar y considerar ya que la planta se abastece de sus propias muy bien el plan de ertilización. reservas alimenticias que vienen incorporadas dentro de la semilla. Posterior a esta Los fertilizantes se encuentran en el mercado etapa viene la de mayor desarrollo. Aquí es como compuestos químicos con diversos importante que la planta crezca rápido ya nombres comerciales. Sin embargo, también que luego se debe frenar el crecimiento para existen fertilizantes naturales conocidos con que la planta se endurezca y pueda resistir el nombre de abono, los cuales son posibles el establecimiento en terreno. En la etapa de de elaborar en el mismo vivero. máximo crecimiento la fertilización debe ser rica en nitrógeno y ósoro y complementada con el resto de los macronutrientes. 5.1. FertILIzantes quíMICos Si la planta es repicada, se necesita que asiente sus raíces y por lo tanto, necesita Dependiendo del tipo de ertilizante, éste cantidades suicientes de ertilizantes para se puede aplicar al sustrato o directamensatisacer su demanda. te sobre el ollaje (ertilización oliar). En viveros a gran escala se utiliza Osmocote Una vez que las plantas tienen el tamaño (18-6-12)® en dosis de 5 g por litro de adecuado al final de la producción, la ferti- sustrato pero su costo es elevado. Otra alternativa es utilizar el fertilizante foliar lización debe ser alta en potasio y calcio. En la fase de establecimiento la planta ne- Bayolan® durante la primavera en dosis cesita ortalecer su sistema radicular para de 2 ml/L. aumentar su eiciencia de absorción. Para ello su fertilización debe ser rica principal- Los fertilizantes normalmente se aplican disueltos en agua por fertirrigación (utilizando mente en ósoro. los mismos sistemas de riego), mediante Tasas de fertilización menores a las reque- mezclas granulares con el sustrato o en ridas por las plantas provocan tamaños más forma directa sobre éste. En caso de no

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contar con un sistema de riego automatizado se pueden aplicar los fertilizantes con bombas de espalda o con un aspersor.

5.2. FertILIzantes naturaLes Una de sus mayores ventajas, además de ser un producto natural, es que se puede preparar en el vivero y de forma muy fácil. Se puede hacer una solución rica en nutrientes con agua y guano descompuesto. En un tambor limpio se puede agregar agua, aproximadamente 150 L, y luego se le agrega el guano dentro de una pantimedia o de alguna bolsa porosa. Se deja reposar alrededor de tres semanas, quedando una solución que puede ser agregada a las plantas. Otro ertilizante natural rico en nutrientes es el humus de lombriz. Este humus se

obtiene de los excrementos de lombrices llamadas “rojas de California”. Para obtener este abono o “lombriabono” es necesario tener un sustrato orgánico como tierra de hoja, guano descompuesto o compost semi descompuesto. La mezcla del sustrato con las lombrices debe mantenerse siempre húmedo cuidando de no sobresaturarlo de agua. Las lombrices no deben quedar expuestas al sol directo por lo que es conveniente tapar la mezcla con un plástico negro para mantener la oscuridad y además ayudar a mantener la humedad. El humus de lombriz tarda aproximadamente 6 meses en estar listo. Antes de ser aplicado se deben extraer las lombrices. Esto se logra no regando el humus por 3 a 4 días, luego se riega un sector del humus donde se mudarán las lombrices, el resto queda libre de ellas y listo para extraer.

eabación  hm  mbi: – Formar un marco de madera de 30 cm de alto por largo y ancho variable, puede ser de 3 m x 1 m respectivamente. – Cubrir el fondo con algún material permeable como sacos de yute o sacos harineros. – Agregar el sustrato orgánico y las lombrices (3.000 lombrices/m2). – Regar para humedecer el sustrato. – Cubrirlo con un plástico negro.

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6| Control Fitosanitario

E

l control fitosanitario consiste en el con- veces las plagas se encuentran en lugares trol de diversos organismos que pueden no visibles como por ejemplo la mosquita causar daño a las plantas. Generalmente blanca que se esconde en el envés (cara de se les denomina enfermedades cuando el abajo) de las hojas. Existen varias ormas daño es producido por hongos, bacterias o de controlar los agentes patógenos. virus, y plagas cuando son producidos por animales o insectos. Las plantas también pueden verse afectadas por individuos de 6.1. PLaGas y enFerMedades su misma naturaleza denominadas comúnmente como malezas. Debido a que las 6.1.1. Ic plagas provocan el mayor daño durante las primeras etapas de desarrollo (germinación • Larvassubterráneas: habitan en el suelo, y etapa de crecimiento) se debe realizar cerca de las raíces y tallos de las plantas. la siembra en forma temprana, antes de la Corresponden a larvas de diferentes inaparición de las plagas (descalce temporal). sectos. El daño que causan a las plantas depende del tipo de larva. Pueden destruir Además, se debe tener presente que las plantas en buenas condiciones, uertes y las raíces o cortar el tejido de la zona del vigorosas son capaces de enfrentar mejor cuello. Las larvas atacan preerentemente a las plantas jóvenes y tiernas en su primer cualquier ataque. Aquí juega un rol undamental la ejecución de las tareas de las desarrollo, por lo tanto, su protección etapas anteriores, como la selección de debe hacerse desde la siembra hasta que semillas, elección de sustrato y elección el tallo se ligniique. Se pueden eliminar de especies adecuadas a la zona de viveaplicando un plaguicida y asegurándose rización, entre otros. que el producto llegue hasta la raíz de la planta, por lo que todas las aplicaciones Efectuando todas las labores adecuadamente deben ser seguidas de un riego. Además, se pueden controlar eliminando las malezas no se evita que en algún momento de la producción puedan aparecer problemas; ya que éstas les sirven como alimento. por lo tanto, debe existir una revisión periódica de las plantas. Es muy importante • Trips: corresponden a insectos que ocupan la detección a tiempo, ya que mientras más su aparato bucal para raspar la epidermis avanzada la plaga o enfermedad más difícil y así provocar la exudación de savia que será su control. Se debe observar en detalle les sirve de alimento. Estos insectos genetodas las partes de la planta, ya que muchas ran una deformación de los ápices de las

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plantas. El mayor grado de ataque ocurre durante noviembre y marzo, cuando las poblaciones son más abundantes. • Cuncunillas: son de hábito nocturno

por lo que se detectan en la noche. Se encuentran generalmente en el envés de la hoja y es relativamente ácil sacarlas. • Pulgones: son organismos de cuerpo globoso de color verde, café o negro. Se encuentran preferentemente en los

tejidos nuevos de las plantas como brotes. Provocan un debilitamiento de la planta, deformación y decoloración de las hojas. • Conchuelas: su morología depende del

género; las hembras poseen un caparazón duro, color café (Figura 6.1). Se adhieren a tallos y hojas especialmente nervaduras de

la parte inferior de la planta. Los machos son pequeños y poseen alas. Provocan un debilitamiento de la planta, secreción de savia y aparición de fumagina (hongo que cubre la hoja de color negro). También pueden atacar a las cactáceas si éstas no reciben suiciente luz. • Escamas: estos insectos forman una capa

color gris y ocasionan clorosis, debilitamiento general y caída de hojas. • Mosquitablanca: son insectos pequeños

que succionan la savia. Son similares a una polilla, pero muy pequeña y de color blanco, se posan en el envés (cara de abajo) de las hojas (Figura 6.1). Provocan debilitamiento de la planta y avorecen la aparición de umagina. • Chanchitoblanco:tienen forma de chan-

chito de tierra pero de menor tamaño y

Fig 6.1. Conchuela adherida a las hojas (superior izquierda); mosquita blanca (superior derecha); chanchito

blanco (inferior).

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de color blanco (Figura 6.1). Secretan un algodoncillo blanco para cubrir sus huevos, lo cual indica una alta reproducción. Habitan preferentemente en los nódulos y axilas de los tallos. También es común que ataquen a las cactáceas si éstas no reciben suiciente luz. • Arañitaroja:es una araña de dimensiones

muy pequeña que en estricto rigor no se clasifica en el grupo de los insectos, ya que es un arácnido. Son de color variable aunque generalmente son rojas. Se desarrollan bajo las hojas y cuando existe una mediana a alta inestación se pueden observar las telarañas. El daño lo provoca con el aparato bucal, con el cual raspa las hojas dándole un aspecto moteado y plateado.

6.1.2. hg

manejar adecuadamente los riegos, fertilizar y controlar las malezas y por supuesto desinectar las semillas y sustratos antes de la siembra. Si los cuidados no han sido los suicientes, entonces se realiza un control químico que consiste en aplicar un fungicida específico. Cualquier ungicida debe ser aplicado cuando las plantas emerjen o cuando aparecen los primeros síntomas, ya que una vez que la enermedad se propaga es muy diícil de controlar. El dumping-off es una de las enfermedades que más problemas causa en la producción de plantas de algunas especies como Quillaja saponaria (Quillay), Azaraspp. (Corcolén), Schinusspp. (Pimiento, Molle y Huingán) y Trevoasp. (Tevo) entre otras. • MohogrisoBotrytiscinerea: también es

• Caídadeplantasodumpingoff: es una de

las enfermedades más comunes producidas por hongos en los viveros de todo el país. Tiene un ataque fulminante, en pocos días puede causar la mortalidad de casi toda la producción. Los hongos causantes de la caída de plantas son del géneros Rhizoctoniasp., Pythium sp. y Fusarium sp. Otros que también podrían participar de esta enermedad son Phytophtora sp. y Macrophomina sp., entre otros. Estos hongos atacan a las plántulas cuando se encuentran en sus primeros estados de desarrollo; sin embargo, también pueden atacar antes de la emergencia, lo cual es conocido con el nombre de dumping off de preemergencia. Este último muchas veces no es detectado ya que se le atribuye a la mala calidad de la semilla. El ataque más típico ocurre en el cuello de la planta una vez que ésta ha emergido, lo que provoca un estrangulamiento y posterior caída de la planta. Para evitar la aparición de esta enfermedad es necesario sembrar a tiempo y a buena profundidad,

una enfermedad común en viveros pero se ha descrito de la Quinta Región al sur. Ataca principalmente a coníferas y a algunas latifoliadas. Produce la pérdida de los ápices de las plantas y generalmente se hace importante en otoño e invierno. La falta de ventilación y luminosidad, la excesiva humedad y bajas temperaturas avorecen su aparición. Esta enermedad se maniiesta con necrosamiento y encurvamiento del ápice hasta que éste cuelga presentando un color gris intenso y un aspecto de total secamiento. Sus síntomas pueden confundirse con daños causados por heladas; sin embargo, este último es generalizado en cambio el moho gris ataca en orma aislada. Para prevenir su aparición se debe realizar un buen control de malezas y evitar daños tanto mecánicos como por insectos ya que normalmente penetra a través de las heridas. Una vez que ha aparecido, se debe eliminar todo el material infectado ya que podría ser fuente

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de infección para otras plantas, se debe aplicar además un ungicida especíico. • Pudrición radicular: causada por el hongo Phytophtora sp., se asocia a suelos con mal drenaje y con elevada humedad.

Provoca una marchitez general de la planta con pudrición radicular y posterior muerte. Se puede evitar manteniendo un riego adecuado y las plantas vigorosas. Se controla con ungicida.

las plantas. La presencia de ellos se puede identificar ya que dejan las hojas con agujeros irregulares y los tallos se ven dañados a nivel del suelo, además el mucílago viscoso deja un depósito plateado. Son de hábito nocturno y aparecen generalmente después de una lluvia o un riego. Se pueden combatir esparciendo cebo en dierentes lugares del vivero; se recomienda aplicarlo después del riego para evitar el lavado del producto.

6.1.3. nm

6.1.5. Ml

Los nemátodos son animales microscópicos con forma de gusano que se alimentan de la savia de las plantas. Estos viven en el suelo por lo que también pueden matar las raíces.

Las malezas son una amenaza directa para las plantas ya que éstas compiten por luz, agua y nutrientes. Además, son portadoras de hongos e insectos y algunas de ellas pueden liberar sustancias tóxicas.

El SAG controla la presencia de estos organismos en el suelo, por lo que es necesario un análisis de suelo para determinar si existen nematodos dañinos para las plantas. Los nematodos se pueden controlar con la aplicación de plaguicidas.

6.1.4. aiml En el punto 1.3 se dan algunos consejos de protecciones que evitan la entrada de animales al vivero, sin embargo, muchas veces esto no es suiciente.

Las malezas son bastante difíciles de controlar ya que pueden propagarse fácilmente a través de semillas o raíces. Su rápido crecimiento les da una ventaja en la competencia. Las semillas de las malezas pueden ser transportadas por animales, el agua o por el viento. Una forma de disminuir la aparición de malezas es eliminar todo tipo de plantas indeseables en el terreno antes de ser emplazado el vivero. Idealmente esta labor podría ser complementada con la aplicación de productos químicos.

Los ataques de roedores, que generalmente preieren alimentarse de semillas grandes, pueden ser controlados mediante cebos puestos en cajas. Las liebres también pueden causar problemas ya que atacan cortando almácigos especialmente de leguminosas. Para proteger los almácigos de estos animales se puede cubrir la almaciguera con una malla gallinera.

Una vez que las malezas han aparecido pueden controlarse en forma manual a través de continuas extracciones, teniendo la precaución de no dañar las plántulas que se están produciendo.

Las babosas y caracoles también pueden causar daño ya que comen el ollaje de

El control químico se basa en la utilización de productos químicos específicos para

82

6.2. tIPos de ControL 6.2.1 Cl mic


cada plaga o enfermedad llamados en general plaguicidas. Los ungicidas sirven para controlar hongos, los insecticidas para controlar insectos, los herbicidas para controlar malezas, etc. Antes de elegir un producto se debe determinar con exactitud la enermedad o plaga que se desea controlar. Si no se tiene claridad de la plaga lo mejor es acercarse a un especialista. Existen instituciones como SAG e INIA que también prestan estos servicios. El uso de estos productos debe ser racional ya que son muy tóxicos para las personas y para el resto de los organismos; además, un abuso en su utilización puede elevar el desarrollo de resistencia en los organismos que se desean eliminar.

También es importante inormarse de los productos que van a ser utilizados ya que muchos de los que aún se venden en el comercio ya están prohibidos. Iman: lea cuidadosamente las etiquetas de los plaguicidas, ya que en ellas viene toda la información necesaria para una adecuada aplicación y almacenamiento. Tome todas las medidas de seguridad para evitar una intoxicación o daño al medio ambiente.

IV Productos que normalmente no ofrecen peligro. paa y nma Larvas subterráneas

Ia Sumamente peligroso. Ib Muy peligroso. II Moderadamente peligroso. III Poco peligroso.

faan 4f®

Trips

taman 600 sl® lanna 90 Wp® Kaa zn® Naai l®

Cuncunillas

taman 600 sl lanna 90 Wp Kaa zn lban 4e®

Pulgones

taman 600 sl lanna 90 Wp Kaa zn lban 4e lban 75 Wg®

Conchuelas y escamas tya 4 eC® Mosquita blanca

lanna 90 Wp Naai l

Chanchito blanco

lanna 90 Wp lban 75 Wg Naai l

Arañita roja

Naai l

Dumping off

Caan 80% Wp® Bayn 25% Wp®

Botrytis cinerea

A continuación se entrega una tabla con las plagas y las enfermedades más comunes y los productos más adecuados para su control. Además, se entrega la toxicidad y la peligrosidad para las personas a través de una codiicación de colores, la que normalmente se incluye en las etiquetas:

pc

Phythosphora sp.

Caan 80% Wp pma f 80% Wg® fan 50 Wp® ean M 50 Wg® rimi g Mz 68®

Nematodos

tmik 15% g® Nmac 240 Cs® Ca 10% gr® enn sl®

Caracoles y babosas

txim®

Roedores

raa a® s p®

Malezas

rn sl® Hach n 2000 175 eC®

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Recomendaciones durante la aplicación: • Evitar el contacto directo con el producto

mediante guantes, traje y mascarillas. • Preparar sólo la cantidad que se va a utilizar. • Evitar aplicar el plaguicida cuando corra viento, de lo contrario aplicarlo a avor de él. • Antes de la aplicación regar abundantemente para que las plantas estén turgentes. Para obtener mayor información de productos itosanitarios se puede ingresar al sitio web del Servicio Agrícola y Ganadero (SAG) ww.sag.gob.cl a la pestaña Insumos y Productos, sección Plaguicidas.

6.2.2. Cl ml Consiste en eliminar las plagas en orma manual. En el caso de eliminar insectos sólo será eectivo si se realiza en los primeros estados de desarrollo de la plaga. Se deben eliminar insectos e idealmente la planta completa ya que en ella pueden quedar huevos y larvas. Estos restos deben eliminarse del vivero, idealmente quemarlos. Otra orma de eliminar insectos es aplicar agua a presión con manguera directamente sobre las plantas con la precaución de no dañarlas. El control manual de malezas a dierencia del químico es una buena alternativa ya que es una erradicación selectiva y no se corre el riesgo de dañar al resto de las plantas. El desmalezado se puede hacer después del riego ya que el suelo está más blando y la planta saldrá con las raíces. El control debe realizarse de lo posible cuando la maleza recién emerge ya que será más fácil y completa su extracción. Muy importante es evitar que la maleza semille.

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6.2.3. Cl gáic El control orgánico consiste en la eliminación de plagas y enfermedades a través de plaguicidas formulados a base de productos naturales. Para eliminar insectos se puede hacer un macerado de Piretro o Clavelón ( Pyrethrum spp.) el cual debe ser aplicado sólo donde se encuentre la plaga ya que es dañino para todos los insectos, incluso los que podrían ser beneiciosos para las plantas. El tabaco también es eicaz para el control de insectos, se debe hacer una solución de agua con tabaco la cual se hace hervir por algunos minutos. Se deja enfriar y se cuela antes de ser aplicado. Para combatir los pulgones se puede hacer una lavasa de agua con jabón Popeye® y aplicarla cuando aparece la plaga. Las cenizas ayudan a eliminar caracoles, babosas y chanchitos. No pueden ser cenizas provenientes de la combustión de plásticos o papeles coloreados ya que son tóxicos para las plantas. Las cáscaras de huevo molido esparcidas alrededor de las plantas ayudan también a prevenir el ataque de caracoles y babosas, además ayudan a eliminar algunos hongos. También existen en el mercado productos orgánicos como es el caso del nematicida QL AGRI 35® elaborado a partir de extractos de Quillay.

6.2.4. Cl ilgic Se basa en utilizar organismos vivos para combatir plagas, los cuales se alimentan de ciertos insectos que son perjudiciales para las plantas. Su mayor ventaja es que no dañan el medio ambiente. Algunos organismos controladores de plagas son las chinitas, que controlan conchuela algodonosa y el pulgón. Otros controladores también efectivos son matapiojos, algunas avispas y escarabajos. También hay ácaros que controlan la arañita roja y la arañita bimaculada.


7| Manejo y Acondicionamiento

E

l manejo consiste en las actividades que se eectúan con el objetivo de lograr una planta de buena calidad, capaz de sobrevivir y desarrollarse satisfactoriamente en terreno. La calidad de la planta generalmente se relaciona con la morfología, por lo que mientras más grande sea la planta mayor es su potencial de supervivencia. Las características morfológicas más representativas son, diámetro del cuello, altura, desarrollo radicular y las relaciones que existen entre ellos. • Diámetro alaaltura del cuello(DAC):

indica la capacidad de transporte de agua y nutrientes hacia la parte aérea, la resistencia mecánica y la capacidad de tolerar altas temperaturas. Se mide en la base del cuello de la planta con un pie de metro.

• Razóntallo/raíz: es la relación entre el

peso (en gramos) de la biomasa seca aérea (hojas y tallo) con la biomasa seca radicular. Indica la relación entre la parte transpirante con la parte absorbente de la planta. Idealmente el peso de la parte aérea no debe doblar el peso de la parte radicular (en base seca). Generalmente, mientras más cercana es la relación a 1 mayor es la posibilidad de supervivencia en sitios secos. Se determina separando la biomasa aérea con la radicular; ambas partes se lavan por separado, se secan y se pesan. Para lograr estas características se puede realizar a lo largo de la producción diferentes manejos como es el caso de la poda tanto aérea como radicular, reordenamiento de plantas en el contenedor y acondicionamiento inal.

• Altura: indica la capacidad fotosintetizadora

y superficie de transpiración. Si se obtienen plantas más altas, éstas podrán competir mejor con la vegetación competidora en terreno, aunque esto implica buena salud isiológica y un buen sistema radicular. • Razónaltura/DAC: es la relación entre la

altura y el DAC en la misma unidad, por ejemplo en mm. Los rangos de la relación varían entre 25 y 90, asociándose a una mejor calidad valores más bajos. Una relación adecuada altura/diámetro es 60.

7.1. Poda radICuLar Consiste en cortar las raíces en la época de mayor crecimiento de la planta. Su finalidad es promover el desarrollo de raíces secundarias y raicillas y disminuir el desarrollo de la parte aérea. La época en que se realiza la tarea de poda es muy importante ya que si se hace tempranamente la planta no alcanzará el tamaño deseado y si se realiza tardíamente la planta no alcanza a mostrar

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una respuesta oportuna. Una buena época para realizar esta actividad es durante el mes de febrero. Esta actividad se realiza en producción a raíz desnuda ya que las plantas producidas a raíz cubierta en contenedores sobre mesones tienen una poda “natural” al entrar las raíces en contacto con el aire de la cavidad del recipiente. En el caso de producir en bolsas sobre el suelo se debe tener precaución ya que muchas veces las raíces traspasan la bolsa y se anclan al suelo. En este caso se recomienda pasar un cuchillo en forma paralela al suelo para cortar las raíces.

7.2. Poda aérea Consiste en cortar la parte del vástago de la planta con la finalidad de mantener una buena relación entre la parte aérea y radicular, y diámetro cuello. La poda aérea debe realizarse sólo si el desarrollo del vástago es excesivo. Se eectúa entre los meses de abril y mayo con una tijera de cortar bien ailada.

7.3. ordenaMIento Durante toda la producción en contenedores las plantas deben ser agrupadas por tamaño para evitar que las más pequeñas

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sean suprimidas por las más grandes. Con esto se evitará que exista una competencia por luz y que las plantas suprimidas queden expuestas al ataque de hongos. En el caso de las bandejas con tubetes insertados, está actividad es muy ácil, ya que sólo basta con reorganizar los tubetes en las bandejas. En las bandejas speedling se debe extraer la planta con su sustrato, por lo tanto, se debe realizar el ordenamiento con mucho cuidado. Finalmente quedarán tres sectores, con bandejas con plantas pequeñas, bandejas con plantas medianas y bandejas con plantas grandes.

7.4. aCondICIonaMIento Esta actividad se realiza con el objetivo de acondicionar la planta para soportar el establecimiento en terreno. Se debe efectuar cuando las plantas han alcanzado las condiciones adecuadas de tamaño. Se realiza trasladando gradualmente las plantas desde su lugar de producción a un lugar con menor protección como, por ejemplo a un área intermedia cubierta por malla Raschel de 50% de cobertura por cuatro semanas. Luego se deben dejar por un tiempo sin protección, directamente a la intemperie.


8| Carta Gantt

L

as actividades relacionadas con la propagación de plantas que deberían ser realizadas con anticipación al establecimiento de un programa de fitoestabilización sobre un depósito de relaves determinado se resumen en la Tabla Gantt de más abajo. A partir de esta Tabla es claro que el proceso de propagación (colecta de semillas y producción de plántulas de especies leñosas) Año 1 Acividads

toma un determinado tiempo, el que debe ser considerado al momento de la planiicación de un programa de fitoestabilización para un depósito de relaves cualquiera. Estas actividades deben ser coordinadas con las etapas generales de un programa de itoestabilización, descritas en la Guía Técnica de Fitoestabilización de Depósitos de Relaves, complementaria a esta guía. Año 2

Año 3

nov dic n fb mar abril may jun jul ago sp oc nov dic n fb mar abr may jun

Colecta semillas Colecta esquejes Colecta estacas madera dura Siembra almácigo estratificado Siembra Fertilización Control Fitosanitario Poda aérea Ordenamiento de plantas Acondicionamiento

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Anexos

1.

obtenCIón de seMILLas:

2.

InstItuCIones de Interés Para eL VIVerIsta

Centro de Semillas y Árboles Forestales (CESAF). Universidad de Chile. Dirección: Santa Rosa Nº 11315. La Pintana, Santiago, Chile. Teléono: 2-9785965 Web: www.cesa.uchile.cl

INIA – Intihuasi (III, IV región). Dirección: Colina San Joaquín s/n, La Serena. Teléfono: (51) 223290. http://www.inia.cl/cri/intihuasi.cm

Centro de Semillas Forestales. Corporación Nacional Forestal (CONAF), Chillán. Fono: 42-273687

INIA - La Platina (RM). Dirección: Santa Rosa 11610 - La Pintana - Santiago - Chile. Teléfono: (2) 757-5100. Fax: (562) 541-7667. http://www.inia.cl/cri/laplatina.cm

Empresa Chile Flora. Dirección: Hijuela Nº 2. Lihueno, Talca, Chile. Teléono: 71-1971218 Web: www.chilelora.com Programa de Conservación y Mejora del Huille. Teléono: 34-429127 Web: www.leucocoryne.cl

SAG: MESA CENTRAL: Comunica con todas las oficinas del SAG Central. Fono 2 - 3451111 www.sag.gob.cl Dirección Regional de Coquimbo SAG. Dirección: Pedro Pablo Muñoz Nº 200, La Serena. Fono: 51-212921 Dirección Regional Atacama SAG. Dirección: Chacabuco Nº 546, depto.23, Edifico Copayapu, Copiapó. Fono: 52-212681 52-212858

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Guía de propagación de especies vegetales nativas y endémicas CIMM

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