Epidermophyton spp. Link ex Steudel, 1824
Klasifikasi taksonomi Kerajaan: Fungi Filum: Ascomycota Kelas: Euascomycetes Order: Onygenales Keluarga: Arthrodermataceae Genus: Epidermophyton Deskripsi dan Habitat Alam Epidermophyton adalah jamur berfilamen dan salah satu dari tiga genera amur diklasifikasikan sebagai dermatofit. Hal ini didistribusikan di seluruh dunia. Manusia adalah host utama Epidermophyton floccosum, satu -satunya spesies yang patogen. Habitat alami dari terkait tetapi spesies nonpathogenic Epidermophyton stockdaleae adalah tanah [1,6,7]. enis The Epidermophyton genus memiliki dua spesies, Epidermophyton floccosum dan Epidermophyton stockdaleae. E. stockdaleae dikenal nonpathogenic, meninggalkan E. floccosum sebagai satu-satunya spesies yang menyebabkan infeksi pada manusia. E. floccosum adalah salah satu penyebab umum dari dermatofitosis pada individu sehat. Hal ini menginfeksi kulit (tinea corporis, tinea crur is, tinea pedis) dan kuku (onikomikosis). Infeksi ini terbatas terbatas pada lapisan epidermis cornified tak hidup karena jamur tidak memiliki kemampuan untuk menembus aringan layak dari host imunokompeten [2, 8, 9]. Infeksi diseminata karena salah satu dermatofit sangat tidak mungkin karena keterbatasan dari infeksi ke aringan keratin. Namun, invasif E. floccosum infeksi infeks i telah dilaporkan pada pasien immunocompromised dengan sindrom Behcet. Seperti dengan segala bentuk dermatofitosis, Epidermophyton Epidermophyton floccosum infeksi yang menular dan biasanya ditularkan melalui kontak, terutama di kamar mandi umum dan fasilitas olahraga.
makroskopik Para koloni E. floccosum tumbuh cukup pesat dan matang dalam waktu 10 hari. Inkubasi berikut pada 25 ° C pada media agar dekstrosa kentang, koloni berwarna kuning kecoklatan dengan zaitun abu-abu atau dril dari depan. Dari sebaliknya, mereka oranye sampai coklat dengan perbatasan kuning sesekali. Tekstur datar dan kasar pada awalnya dan menjadi radial beralur dan beludru dengan penuaan. Koloni cepat menjadi berbulu halus dan steril [3, 7, 10, 11]. mikroskopis Septate, hialin hifa, macroconidia, dan kadang-kadang, chlamydoconidiumseperti sel-sel yang divisualisasikan. Microconidia biasanya tidak a da. Macroconidia (10-40 x 6-12 pM) yang berdinding tipis, 3 - untuk 5 - bersel, halus, dan clavate berbentuk bulat dengan ujung. Mereka ditemukan secara tunggal atau dalam kelompok. Chlamydoconidium-seperti sel-sel, serta arthroconidia, yang umum dalam budaya tua [3, 7, 10, 11]. histopatologi Lihat halaman histopatologi kami. Bandingkan dengan Microsporum dan Trichophyton Epidermophyton floccosum dibedakan dari Microsporum dan Trichophyton oleh adanya microconidia. Hal ini dibedakan dari E. stockdaleae dengan bantuan beberapa fitur mikroskopis dan fisiologis. Berbeda dengan E. stockdaleae, E. floccosum sering dapat melubangi rambut. Macroconidia E. stockdaleae lebih panjang daripada E. floccosum. Berbeda dengan E. floccosum, E. stockdaleae adalah toleran terhadap NaCl 7%. laboratorium Tindakan pencegahan Tidak ada tindakan pencegahan khusus selain tindakan pencegahan laboratorium umum diperlukan. kerentanan Seperti dengan dermatofit lainnya, kepekaan terhadap vitro metode pengujian antijamur belum standar untuk E. floccosum. Namun, ada beberapa laporan tentang aktivitas in vitro obat antijamur beragam. Sebagian besar penelitian telah menggunakan modifikasi dari metodologi M NCCLS 38P
didokumentasikan untuk conidium membentuk jamur berfilamen [12]. Hasil dari studi ini menunjukkan bahwa, terbinafine, itraconazole, vorikonazol, dan ketoconazole menghasilkan MIC rendah dan terlihat aktif in vitro terhadap E. floccosum. Griseofulvin kurang aktif daripada senyawa ini. Di antara semua, flukonazol menghasilkan MIC tertinggi dan tampaknya memiliki aktivitas terendah [13, 14, 15, 16]. Amorolfine [17] dan naftifine [14, 15, 18] juga menunjukkan aktivitas in vitro terhadap E. floccosum .. Terbinafine, itraconazole, ketoconazole dan umum digunakan untuk pengobatan saat infeksi E. floccosum [, 4 5]. Cari PubMed nukleotida GenBank De Hoog, G. S., B. Bowman, Y. Graser, G. Haase, M. El Fari, A. Van den Ende, B. Melzer-Krick, and W. A. Untereiner. 1998. Molecular phylogeny and taxonomy of medically important fungi. Med Mycol. 36:52-56. Aman, S., T. S. Haroon, I. Hussain, M. A. Bokhari, and K. Khurshid. 2001. Tinea unguium in Lahore, Pakistan. Med Mycol. 39:177-180. de Hoog, G. S., J. Guarro, J. Gene, and M. J. Figueras. 2000. Atlas of Clinical Fungi, 2nd ed, vol. 1. Centraalbureau voor Schimmelcultures, Utrecht, The Netherlands. Boonk, W., D. de Geer, E. de Kreek, J. Remme, and B. van Huystee. 1998. Itraconazole in the treatment of tinea corporis and tinea cruris: comparison of two treatment schedules. Mycoses. 41:509-514. Degreef, J. H., and P. R. G. DeDoncker. 1994. Current therapy of dermatophytosis. J Am Acad Dermatol. 31:S25-S30. Larone, D. H. 1995. Medically Important Fungi - A Guide to Identification, 3rd ed. ASM Press, Washington, D.C. Sutton, D. A., A. W. Fothergill, and M. G. Rinaldi (ed.). 1998. Guide to Clinically Significant Fungi, 1st ed. Williams & Wilkins, Baltimore. Ogawa, H., R. C. Summerbell, K. V. Clemons, T. Koga, Y. P. Ran, A. Rashid, P. G. Sohnle, D. A. Stevens, and R. Tsuboi. 1998. Dermatophytes and host defence in cutaneous mycoses. Med Mycol. 36:166-173. Weitzman, I., and R. C. Summerbell. 1995. The dermatophytes. Clin Microbiol Rev. 8:240-59. Larone, D. H. 1995. Medically Important Fungi - A Guide to Identification, 3rd ed. ASM Press, Washington, D.C.
St-Germain, G., and R. Summerbell. 1996. Identifying Filamentous Fungi - A Clinical Laboratory Handbook, 1st ed. Star Publishing Company, Belmont, California. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 1998. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of conidium-for ming filamentous fungi; proposed standard. NCCLS document M38 -P. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, Pa. essup, C. J., N. S. Ryder, and M. A. Ghannoum. 2000. An evaluation of the in vitro activity of terbinafine. Med Mycol. 38:155-159. Venugopal, P. V., and T. V. Venugopal. 1994. Antidermatophytic activity of allylamine derivatives. Indian J Pathol Microbiol. 37:381-8. Venugopal, P. V., and T. V. Venugopal. 1994. Disk diffusion susceptibility testing of dermatophytes with allylamines. Int. J. Dermatol. 33:730-2. Wildfeuer, A., H. P. Seidl, I. Paule, and A. Haberreiter. 1998. In vitro evaluation of voriconazole against clinical isolates of yeasts, moulds and dermatophytes in comparison with itraconazole, ketoconazole, amphotericin B and griseofulvin. Mycoses. 41:309-319. Regli, P., and H. Ferrari. 1989. In vitro action spectrum of a new antifungal agent derived from morpholine: amorolfin. Pathol Biol (Paris). Macura, A. B. 1993. In vitro susceptibility of dermatophytes to antifungal drugs: a comparison of two methods. Int. J. Dermatol. 32:533-6.
