LAPORAN PRAKTIKUM BIOKIMIA
ANALISA KUANTITATIF TERHADAP PROTEIN DAN ASAM AMINO
Oleh: Nama
: Ai Rikani
NIM
: 1147020004
Kelompok : II (Dua) Kelas
: Biologi 3 - A
Tanggal praktikum
: 26 Oktober 2015
Tanggal Pengumpulan : 09 Oktober 2015
JURUSAN BIOLOGI FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SUNAN GUNUNG DJATI BANDUNG 2015
III. HASIL DAN PEMBAHASAN 3.1. Tabel Standarisasi NaOH Perlakuan
Hasil Pengamatan
10 ml asa oksalat + 2 tetes indicator Larutan tidak berwarna PP. Dititrasi dengan NaOH
Volume akhir titrasi 15,1 ml Warna larutan merah muda sekilas.
3.2. Hasil Titrasi Formol untuk Sampel Perlakuan
Hasil pengamatan
19 ml susu.
Warna susu putih kental
Ditambahkan 20 ml aquades.
Susu menjadi encer dan warnanya masih tetap putih.
Ditambahkan 1 ml PP.
Warna larutan masih tetap putih susu.
Ditambahkan 0,4 ml oksalat jenuh.
Tidak ada perubahan warna
Dikocok homogen.
Tidak ada perubahan warna.
Di diamkan 2 menit.
Tidak ada perubahan warna.
Dititrasi NaOH 0,1 N.
Merah muda seulas.
Ditambah 2 ml formalin.
Merah muda lebih lembut.
Dihomogenkan.
Merah muda lebih lembut lagi dari ketika ditambahkan formalin.
Dititrasi NaOH 0,1 N.
Warna larutan merah muda.
3.3. Hasil Titrasi Formol untuk Blanko Perlakuan
Hasil pengamatan
39 ml aquades.
Tidak berwarna
Ditambahkan 1 ml PP.
Tidak berwarna
Ditambah 0,4 ml oksalat jenuh.
Tidak ada perubahan warna
Dikocok homogen.
Tidak ada perubahan warna.
Di diamkan 2 menit.
Tidak ada perubahan warna
Dititrasi NaOH 0,1 N.
Merah muda
Ditambah 2 ml formalin.
Merah muda.
Dihomogenkan.
Merah muda.
Dititrasi NaOH 0,1 N.
Warna larutan merah muda.
3.4. Tabel Volume Titrasi Sampel Titrasi ke
Volume NaOH 0,1 N
Keterangan
1
34,5 ml
Larutan hasil titrasi merah muda
2
16,2 ml
Larutan hasil titrasi merah muda ∑ = 50,7 ml Vakhir = 25,35 ml
3.5. Tabel Volume Titrasi Blanko Titrasi ke
Volume NaOH 0,1 N
Keterangan
1
5,6 ml
Larutan hasil titrasi merah muda
2
3,6 ml
Larutan hasil titrasi merah muda ∑ = 9,2 ml Vakhir = 4,6 ml
3.6. Perhitungan Standarisasi NaOH V1 . N1 = V2 . N2 10 x 0,1 = 15,1 x N2 N2 = 0,33 %Protein terpisah Vformol = Vsampel – Vblanko = 50,7 – 9,2 = 41,5 %kadar protein Vtitrasi formol x 1,83 = 75,9 %
3.7. Pembahasan Praktikum kali ini adalah menganalisa secara kuantitatif kandungan protein dan asam amino. Sampel yang digunakan adalah susu Anlene dengan kadar protein yang tertera pada kemasan adalah 4 gram/110 ml atau sekitar 6% dari keseluruhan bahan yang terkandung di dalamnya. Tuuan dari praktikum kali ini adalah untuk mengetahui kadar protein dan asam amino yang terkandung dalam susu ini apakah sesuai dengan yang tertera pada kemasan atau tidak. Metode yang digunakan adalah metode titrasi formol. Prinsip dari metode ini adalah apabila suatu larutan protein dinetrakan dengan basa (NaOH) lalu ditambahkan formalin maka akan membentuk dimethilol. Dengan terbentuknya dimethilol ini berarti gugus aminonya sudah terikat dan tidak akan mempengaruhi reaksi antara asam dan basa NaOH sehingga akhir titrasi dapat diakhiri dengan tepat. Indicator yang digunakan adalah PP, akhir titrasi bila tepat terjadi perubahan wara menjadi merah muda yang tidak hilang dalam 30 detik. Langkah pertama adalah melakukan standarisasi NaOH dengan asam oksalat jenuh. Dimana ketika asam oksalat jenuh ditambahkan 2 tetes indicator PP tidak membentuk warna baru, larutan tetap tidak berwarna. Namun, ketika dititrasi dengan NaOH sebanyak 15,1 ml maka larutan berubah menjadi merah muda seulas. Tujuan dari standarisasi ini adalah untuk mengetahui konsentrasi sebenarnya dari larutan yang dihasilkan. Selanjutnya larutan standar ini digunakan dalam proses analisis protein dengan metode titrasi formol atau asam-basa. Proses standarisasi perlu dilakukan karena berfungsi untuk mengetahui apakah larutan merupakan larutan standar primer atau sekunder. Larutan standar sekunder biasanya bersifat tidak stabil sementara larutan standar primer cenderung lebih stabil. Dalam standarisasi ini juga digunakan indicator PP yang berfungsi untuk memberikan perubahan warna yang terang pada saat titik akhir titrasi, karena PP merupakan asam yang snagat lemah dalam keadaan tidak terionisasi tetapi jika dalam lingkungan basa PP akan terionisasi lebih banyak dan akan memberikan perubahan warna. Langkah kedua adalah melakukan titrasi formol untuk sampel. 19 ml susu disiapkan kemudian ditambahkan aquades sebnayak 20 ml sehingga volume akhirnya adalah 39 ml. fungsi dari penambahan aquades adalah untuk menghidrolisis protein dalam sampel menjadi asam amino. Kemudian ditambahkan 1 ml indicator PP yang berfungsi untuk memberikan perubahan warna pada sampel saat dititrasi dengan NaOH. Pada saat penambahan aquades dan indicator PP ini tidak terjadi perubahan warna apa-apa pada
warna larutan, larutan tetap berwarna putih susu., hanya saja pada saat penambahan aquades larutan menjadi lebih encer. Langkah selanjutnya adalah larutan sampel yang telah ditambah indicator PP kemudian ditambahkan 0,4 ml oksalat jenuh, fungsi dari penambahan oksalat jenuh ini adalah untuk memblokade gugus amino (-NH2) Pada asam amino sehingga hanya terdapat gugus karbonil (-COOH) pada ujung rantai yang akan bereaksi dengan NaOH. Penambahan oksalat juga berfungsi untuk mempermudah hidrolisis protein. Pada penambahan oksalat jenuh ini tidak terjadi perubahan warna. Kemudian dialakukan penggojokan secara homogen yang bertujun untuk homogenesis sehingga semua larutan dalam sampel dapat tercempur sempurna. Kemudian didiamkan selama 2 menit yang bertujuan agar larutan yang mengandung protein benar-benar terhidrolisis. Selama pendiaman ini tidak terjadi perubahan warna karena memang penambahan ini buka bertujuan untuk membuat peruabahan warna. Sampel kemudian dititrasi dengan NaOH sampai warnanya berubah menjadi merah muda seulas, titrasi ini bertujuan untuk menetralkan gugus-gugus karboksilat yang terdapat pada asam amino yang setara dengan banyaknya protein dalam sampel. Kemudian ditambahkan 2 ml formalin yang berfungsi untuk memblokade gugus amino (NH2) dari asam-asam amino dan menguatkan sifat asam dari asam amino. Selain itu juga untuk membentuk dimethilo yang menandakan asam aminonya sudah terikat dan tidak akan mempengaruhi reaksi antara asam dan basa NaOH sehingga akhir titrasi dapat diakhiri dengan tepat. Penambahan ini merubah warna larutan menjadi merah muda seulas yang berubah menjadi merah muda lebih lembut. Larutan kemudian dihomogenkan untuk menghomogenesis agar larutan tercampur sempurna. Pada proses ini tidak terjadi perubahan warna. Larutan sampel kemudian dititrasi kembali dengan NaOH sampai laruta berwarna merah muda kembali. Percobaan selanjutnya melakukan titrasi formol untuk blanko. Larutan yang digunakan adalah aquades yang ditambahkan dengan oksalat jenuh dan indicator PP dan ketika dititrasi dengan NaOH larutan menjadi berwarna pink lebih tajam. Ketika ditambahkan formalin larutan tetap berwarna merah muda, hal ini menandakan bahwa larutan blanko tidak mengandung protein. Adapun tujuan dari pembuatan blanko ini adalah hanya untuk mengetahui jumlah ml NaOH yang bereaksi dengan zat-zat kimia yang digunakan dalam analisis ini yaitu aquades, oksalat jenuh dan formalin.
Volume akhir titrasi dari titrasi formol untuk sampel adalah 25,35 ml sementara pada titrasi blanko hanya 4,6 ml. Sementara itu kadar protein yang diperoleh berdasarkan hasil perhitungan menunjukkan bahwa susu Anlene mengandung protein sebanyak 75,9%, sementara pada kemasan tertera 6%. Faktor yang menyebabkan perbedaan yang signifikan ini adalah kesalahan pada titrasi blanko. Pada titrasi blanko ini tidak mencapai titik akhir titrasi sehingga tidak terjadi peruabahan warna larutan menjadi lebih pudar.
IV. KESIMPULAN Berdasarkan hasil pengamatan dapat diketahui bahwa kadar protein yang terkandung dalam susu Anlene dengan metode titrasi formol sebesar 75,9%. Sementara pada kemasan teretera 6%, perbedaan yang signifikan ini adalah disebabkan adanya kesalahan pada perlakuan titrasi blanko.
DAFTAR PUSTAKA Achmad, Nurdin. 2011. Reaksi Analisa Protein. Jakarta: UI Press. Budimawaranti. 2011. Komposisi dan Nutrisi Pada Susu. Yogyakarta: FMIPA UNY. Colby, D. S. 1985. Ringkasan Biokimia. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC. Harjadi, W. 1994. Ilmu Kimia Analitik Dasar. Jakarta: Grameedia. Herawati, Rina. 2011. Analisa Makanan. Yogyakarta: UNY. Lehninger, A. L. 1979. Dasar-dasar Biokimia Jilid 1 dan II. Surabaya: Erlangga. Mathews, CK, Van Holde, KE, Ahern, KG. 2000. Biochemistry 3rd Ed. San Fransisco: Addison-Wesley Publ-Co. Poedjiadji, A. 1994. Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta: UI-Press. Sudarmadji, Slamet. 1996. Analisa Bahan Makanan dan Pertanian. Yogyakarta: Liberty Press. Winarno, FG. 1997. Kimia Pangan dan Gizi. Jakarta: Gramedia.
LAMPIRAN TUGAS Soal: 1. Jelaskan prinsip dari analisa kuantitatif protein dan asam amino dibawah ini: a. Metode Lowry b. Metode Folin Ciocalteu 2. Bagaiman cara mengidentifikasi keberadaan asam nukleat dalam protein. Jawaban: 1. a). larutan Lowry ada dua macam yaitu A yang terdiri dari Fosfotungsat (1:1) dan larutan Lowry B yang terdiri dari –Na Carbonat 2% dalam NaOH 0,1 N, kupri sulfat dan Na-K-tartat 2%. Dalam metode ini terlibat dua reaksi, awalnya kompleks Cu (II) akan tereduksi menjadi Cu (I). Ion Cu+ kemudian akan mereduksi reagen FolineCiocalteu,
kompleks
phospomolibda-phosphotugstat
(phosphomolbdotungstat),
mengahsilkan heteropoly molybdenum blue akibat reaksi oksidasi gugus aromatik (rantai samping asam amino terkatalis Cu yang memberikan warna biru intensif yang dapat dideteksi secara kalorimetri. b). prinsip metode Folin-ciocalteu adalah oksidasi gugus fenolik hidroksil. Pereaksi ini mengoksidasi fenolat (garam alkali), mereduksi asam heteropili menjadi suatu kompleks molybdenum-tngsten (MoW). Fenolat hanya terdapat pada larutan basa tetapi reaksi folin-ciocalteu dan produknya tidak stabil pada kondisi basa. Selama proses berlangsung,gugus
fenolik-hidroksil
bereaksi
dengan
pereaksi
folin-ciocalteu
membentuk kompleks fosfotungstat-fosfomolibdat berwarna biru dengan struktur yang belum diketahui dan dapat dideteksi dengan spetrofotometer. Semakin besar konsentrasi fenolik maka semakin besar ion fenolat yang akan mereduksi asam heteropili sehingga warna biru yang dihasilkan akan semakin pekat. 2. Untuk memperoleh asam nukleat dari protein dapat dilakukan ekstraksi protein menggunakan garam IM untuk melarutkan nucleoprotein. Untuk memecah menjadi asamasam nukleat dapat ditambahkan asam-asam lemah atau alkali secara hati-hati atau ditambahkan NaCl untuk mengendapkan protein. Ekstraksi terhadap jaringan-jaringan dengan asam-asam trikloroasetat dapat pula memisahkan asam nukleat. Denaturasi protein dalam campuran dengan asam nukleat itu dapat pula menyebabkan denaturasi asam nukleat itu sendiri.
