UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS TECNOLOGIA E INGENIERIA GUÍA COMPONENTE PRÁCTICO 201101– BIOLOGIA BOGOTA 2016

UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS TECNOLOGIA E INGENIERIA

GUÍA COMPONENTE PRÁCTICO

201101– BIOLOGIA

BOGOTA 2016

2. ASPECTOS DE PROPIEDAD INTELECTUAL Y VERSIONAMIENTO La presente guía fue diseñada en el año 2005 por Carmen Eugenia Piña López, Ed.D. Tecnología Instruccional y Educación a Distancia, MSc. Ciencias Biológicas; MSc. Docencia Universitaria; Especialista en Nutrición Animal Sostenible; Especialista en Informática y Multimedia. Docente de la UNAD desde 1986 La presente guía ha tenido seis actualizaciones, con la participación de las tutoras M.Ed.Yurby Salazar, M.Ed.Bibiana Ávila, la Dra. Angélica Yara y la tutora Angela Cárdenas; en las diferentes actualizaciones se han realizado mejoramientos académico-pedagógicos y didácticos con la incorporación de Objetos Virtuales de Aprendizaje. Con el fin de que el estudiante tenga una preparación previa del material a utilizar y de los procedimientos a seguir se incorporaron links a videos demostrativos donde se muestra paso a paso cada uno de los procedimientos que el estudiante debe realizar en la práctica presencial. Se diseñó una simulación de microscopía en donde el estudiante puede manipular el microscopio de manera virtual y de esta manera realizar un entrenamiento previo al desarrollo de los laboratorios. Piña, C (2009). Simulador de microscopia. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de http://canal.unad.edu.co/laboratorio/index/main.html

3. INDICE DE CONTENIDO

Pág. INTRODUCCIÓN

4

CARACTERISTICAS GENERALES

4

PRACTICA No. 01 NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO

6

PRÁCTICA No. 02 MICROSCOPÍA

8

PRACTICA No. 03 LA CÈLULA

14

PRACTICA No. 04 TEJIDOS VEGETALES

21

PRACTICA No. 05 DIVERSIDAD MICROBIANA

24

PRACTICA No. 06 MITOSIS Y MEIOSIS

29

PRACTICA No. 07 FENOMENOS DE TRANSPORTE CELULAR

33

PRACTICA No. 08 RASGOS GENÉTICOS EN EL HOMBRE

37

4. CARACTERÍSTICAS GENERALES

Introducción

Las guías para las prácticas de biología, son un importante dispositivo de ayuda pedagógica y didáctica en el proceso de formación profesional que inician los estudiantes de los programas de pregrado de Ingeniería de Alimentos, Zootecnia, Agronomía, Ingeniería Agroforestal, Psicología, Ingeniería Industrial, ingeniería de sistemas e ingeniería electrónica. Estas guías están descritas de manera clara y sencilla con el fin de que la ejecución práctica pueda hacerse completamente. Antes de realizar la parte práctica y con el fin de hacerse una idea del material a utilizar y el procedimiento a seguir en el desarrollo de la misma, se recomienda ver cada uno de los videos presentados al inicio de cada práctica e interactuar con el simulador de microscopía.

Justificación

Un aspecto importante de la formación profesional en los campos de Ciencias Agrarias, Psicología e Ingenierías, corresponde al saber hacer, evidenciado en competencias psicomotoras que facilitan el ejercicio profesional, por representar un dominio de procesos complejos necesarios para la realización cotidiana de actividades sistémicas y la resolución de problemas, en las cuales se integran la aplicación de procedimientos y estrategias (saber hacer) con la comprensión del contexto (saber conocer) y con el despliegue de iniciativa y creatividad (saber ser). Un ejemplo específico de este tipo de competencia es el aprendizaje procedimental del manejo del microscopio, ya que en todo lo relacionado con la observación de componentes o muestras microbiológicas como base para diagnósticos y toma de decisiones, es fundamental poseer la competencia de manipulación del microscopio en un nivel de automatización o de experticia. Una manera efectiva de alcanzar esta experticia en el manejo del microscopio es el desarrollo de laboratorios para una ejercitación personal. Propósitos Integrar al perfil de formación profesional del estudiante la capacidad de desempeñarse con seguridad y con experticia en los procedimientos propios de un laboratorio de biología. Objetivos

Intencionalidades formativas

Identificar y aplicar las normas de bioseguridad, identificar los componentes del microscopio óptico y los procedimientos correctos de manipulación del microscopio para observación de muestras biológicas, así como la identificación de componentes celulares y microorganismos.

Metas Que cada estudiante al terminar la práctica pueda desarrollar el cuestionario evaluativo y presentar un informe correcto de los procedimientos aplicados.

Competencias 

Comportamiento bioseguro en el laboratorio



Manipulación correcta del microscopio óptico



Identificación correcta de componentes celulares y de microrganismos



Comprensión de la importancia y funciones de los dos tipos de división celular, mitosis y meiosis, como parte del ciclo vital de un organismo



Reconocimiento de la herencia de rasgos humanos



Reconocimiento de los diferentes fenómenos de transporte celular

Práctica 1: Normas de seguridad en el laboratorio Practica 2: Microscopía Practica 3: La célula Denominación de prácticas

Práctica 4 : Diversidad Microbiana Práctica 5: Mitosis y Meiosis Práctica 6. Fenómenos de transporte celular Práctica 7. Rasgos genéticos en el hombre

Número de horas Valor

Bioseguridad y Manejo de Residuos

12 120 Puntos La primera práctica hace referencia a las Normas de seguridad en el laboratorio y al manejo de los residuos generados en las prácticas. La bioseguridad debe ser transversal para el desarrollo de todas las prácticas y se exige en todos los informes, como requisito antes de iniciar el laboratorio. Igualmente se evaluará el comportamiento de aplicación de las normas de bioseguridad y manejo de residuos.

5. DESCRIPCIÓN DE PRÁCTICAS PRACTICA No. 01 Normas de seguridad en el laboratorio

Tipo de practica

Temáticas de la práctica

Presencial

Autodirigida

X

Remota

Bioseguridad e higiene en el laboratorio, manejo de residuos Propósito(s) Desarrollar en el estudiante la competencia de comportamiento bioseguro en el laboratorio de biología. Objetivo(s) Conocer y cumplir las principales normas de seguridad e higiene que se deben seguir en el laboratorio, con el fin de evitar posibles riesgos, tanto para las personas como para el medio ambiente.


Competencia(s) Se basan en el dominio la relación cognitivo-procedimental orientada a: 1. Argumentar el concepto de bioseguridad aplicado al uso del laboratorio de biología. 2 .Transferir a situaciones concretas las normas básicas de bioseguridad en el laboratorio de biología 3. Aplicar la capacidad de evitar en el laboratorio daños a su salud

Descripción de la práctica La práctica Normas de Seguridad en el laboratorio, se basa en la observación del video sobre este tema, y el análisis del folleto de bioseguridad y de manejo de residuos. Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos) Observación del video Salazar, Y & Piña, C. (2005). Normas de bioseguridad en el laboratorio. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de https://youtu.be/g9cmQXjpRAI Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la práctica.

Computador y observación del video. Metodología Conocimiento previo para el desarrollo de la práctica de la fundamentación teórica sobre normas de bioseguridad. Forma de trabajo: El estudiante puede observar sólo o en grupo el video desde su computador personal o desde un computador institucional bajo la guía de tutores regionales si tiene esa facilidad. Procedimiento: Para el desarrollo de esta práctica el estudiante debe observar el video normas de seguridad en el laboratorio y responder las preguntas del cuestionario del informe para la práctica 1: Normas de seguridad en el laboratorio. Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 2 .Asistencia, participación acorde con las normas de bioseguridad y manejo de residuos durante todas las prácticas y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio.

Informe o productos a entregar INFORME Debe contener los siguientes puntos:   

Respuesta a cuestionario del informe Conclusiones Referencias bibliográficas

Cuestionario del informe 1. Defina: a. Riesgo biológico b. Barrera protectora c. Agente infeccioso d. Nivel de bioseguridad 1,2 y 3 2. Qué procedimiento debe seguir si se produce un derrame de material biológico contaminado. Describa paso a paso.

PRACTICA No. 02 Microscopía

Presencial

Tipo de práctica


x

Autodirigida

Remota

Identificación de componentes y manipulación del microscopio para observación de muestras previamente preparadas. Propósito: Comprender el funcionamiento del microscopio y el procedimiento para su manipulación correcta. Objetivos  Señalar los componentes mecánicos y ópticos que constituyen el microscopio.  Realizar montajes húmedos  Comprobar las propiedades que posee el microscopio.  Realizar correctamente el manejo del microscopio óptico  Calcular el diámetro del campo de visión  Comprobar los principios en que se basa la microscopía óptica.  Desarrollar en trabajo colaborativo el informe de laboratorio Metas

Intencionalidades formativas El estudiante debe identificar los diferentes tipos de microscopio, los componentes del microscopio óptico, sus poderes y los principios generales de la microscopía.

Competencias Son competencias con énfasis procedimental, referidas a:    

Capacidad de identificar y manipular los componentes del microscopio. Realizar montajes húmedos Preparar y observar muestras biológicas Comprobar las propiedades que posee el microscopio

Fundamentación Teórica

Sánchez, G. D. J., & Trejo, B. N. I. (2006). Capítulo 9. Microscopia. Editorial Alfil, S. A. de C. V. Biología celular y molecular(193 – 204). México, D.F., MX. Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=223&docID=10638495&tm=14 71233436407 Descripción de la práctica En esta práctica el estudiante realizará ejercicios que le permitirán identificar las partes del microscopio, manipulará el microscopio óptico y comprenderá finalmente los principios de microscopía. Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)

MATERIALES QUE DEBE LLEVAR EL ESTUDIANTE Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente Jabón Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes Agua estancada Papel milimetrado Hilos de colores Tela de cuadros 2 centímetros Recorte de periódico con la letra asimétrica: Pude ser la letra e o la letra a Láminas portaobjetos, Laminillas MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO Lamina con extendido coloreada, Microscopio, Aceite de inmersión, Papel de Arroz o de óptica, Alcohol isopropílico. Software a utilizar en la práctica

Simulador de Microscopía para preparación previa. Piña, C (2009). Simulador de microscopia. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de http://canal.unad.edu.co/laboratorio/index/main.html Observación del videos sobre microscopía Salazar, Y & Piña, C. (2005). El microscopio. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de https://youtu.be/URF70E9t-e8 Metodología

Procedimiento Antes de la práctica, cada estudiante debe: 

Haber leído la información relacionada y que se encuentra en el syllabus del curso:

Sánchez, G. D. J., & Trejo, B. N. I. (2006). Capítulo 9. Microscopia. Editorial Alfil, S. A. de C. V. Biología celular y molecular(193 – 204). México, D.F., MX. Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=223&docID=10638495&tm=14712 33436407 Uso del microscopio Organización del proceso paso a paso

Tome una gota de la muestra de agua estancada

Colóquela sobre una lámina portaobjetos, y cúbrala con una laminilla

Dibuje o tome fotos de sus observaciones anotando el aumento utilizado

1. Realización de Montaje húmedo 1.1. Tome con un gotero una muestra de agua estancada. 1.2. Coloque la gota de agua estancada sobre una lámina porta-objeto

Retire el exceso de agua por los bordes, usando papel absorbente.

Observe el montaje realizado al microscopio en 4x, 10x y 40x

1.3. Tome una laminilla cubreobjetos, en posición oblicua, (45 grados) y apoyando una arista sobre la lámina al lado de la gota, déjela caer suavemente. 1.4. Retire el exceso de agua por los bordes usando papel absorbente 2. Manejo del microscopio 2.1. Encienda el microscopio 2.2. Coloque el objetivo de menor aumento 4X 2.3. Baje la platina completamente girando el tornillo macrométrico. 2.4. Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior 2.5. Coloque la lámina con la preparación de agua estancada sobre la platina sujetándola con las pinzas. 2.6. Procure que la preparación quede centrada, girando el tornillo para desplazamiento del carro móvil 2.7. Gire el tornillo macrométrico en sentido contrario a las agujas del reloj para subir la platina hasta el tope. 2.8. Debe hacerlo mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación. 2.9. Cierre o abra el diafragma hasta una posición intermedia, accionando su perilla en sentido contrario a las agujas del reloj para que la luz no sea ni muy brillante ni demasiado tenue. 2.10. Inicie la observación con el objetivo de 4X. 2.11. Mirando a través de los oculares, separe lentamente el objetivo de la preparación con el tornillo macrométrico en sentido de las agujas del reloj hasta lograr observar la imagen 2.12. Cuando se observe algo nítida la muestra, gire el tornillo micrométrico hasta obtener un enfoque fino 2.13. Gire el revolver 2.14. Coloque el objetivo de 10X 2.15. Visualice con el objetivo de 10X y detalle las estructuras 2.16. Gire el revólver y visualice con el objetivo de 40X enfoque con el tornillo micrométrico y detalle las estructuras 2.17. Detalle como el campo se reduce y el alga y el protozoo se observan mejor. 3. Observación con el objetivo de inmersión 100X – Frotis sanguíneo 3.1. Se utiliza para la observación de muestras fijadas, no para muestras frescas 3.2. Coloque el objetivo de inmersión de manera que el orificio de la platina quede entre el objetivo de 100X y el de 40X 3.3. Suba totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona que se va a visualizar y donde habrá que aplicar el aceite 3.4. Coloque una gota de aceite de inmersión sobre la preparación en el círculo de luz 3.5. Coloque una lámina coloreada sobre la platina 3.6. Ubique el objetivo de 100x 3.7. Suba la platina lentamente hasta que la lente toque la gota de aceite 3.8. Observe la imagen con aumento de 100X 3.9. En esta preparación se muestran los glóbulos blancos, glóbulos rojos y plaquetas coloreados con colorante de Wright 3.10. Limpie el objetivo de inmersión con un papel especial para óptica y alcohol isopropílico 3.11. Deje el objetivo de menor aumento en posición de trabajo 4. Comprobación de los poderes o capacidades del microscopio óptico 4.1 Realice un montaje húmedo con la letra asimétrica y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos anteriores. 4.2 Calcule el aumento del tamaño del objeto observado para cada objetivo del microscopio con el cual le correspondió trabajar. 4.3 Realice un montaje húmedo con una hebra de hilo y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos anteriores.

5. Cálculo del diámetro del campo de visión 5. Realice un montaje húmedo con un centímetro cuadrado de papel milimetrado y obsérvelo al microscopio 5.1 Calcule el diámetro del campo de visión para un aumento de 4x en un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado. Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 3. Presentación de informe de la práctica realizada durante el laboratorio.

Informe o productos a entregar INFORME Debe contener los siguientes puntos:   

Respuesta a cuestionario del informe final Conclusiones Referencias bibliográficas

En el informe debe incluirse el siguiente cuadro y las respuestas a las preguntas del informe final. OBJETO OBSERVADO Agua estancada

AUMENTO

DIBUJO

ANÁLISIS Y CONCLUSIONES

DIBUJO


4X

10X

40X

OBJETO OBSERVADO Hebra de hilo

AUMENTO 4X

10X

40X

OBJETO OBSERVADO Lamina coloreada de Gota de sangre

AUMENTO

DIBUJO


100X

La tabla anterior debe diligenciarla para cada una de las muestras observadas en la práctica.

Preguntas para el informe final 1. ¿Qué organismos pueden observarse en la gota de agua estancada? 2. ¿Son todos de igual tamaño y forma? 3. ¿Se observan organismos móviles o estáticos? 4. Para las muestras de la letra, la hebra de hilo observadas determine: a. ¿Cómo se manifiesta el poder de resolución? b. ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento? c. ¿Cómo se manifiesta el poder de definición? d. ¿Cómo se manifiesta el poder de penetración o profundidad? 5. ¿Cuál es la utilidad del microscopio? 6. Calcule el diámetro del campo de visión para aumentos de 4X, 10X, 40X del mismo cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado. 7. ¿Con cuál objetivo el campo de visión es mayor, con el de mayor o menor aumento? 8. ¿Al observar la letra asimétrica: ¿Se ve invertida, o en la misma posición en que estaría si se viera a simple vista? 9. Al mover la preparación hacia la derecha. ¿Hacia dónde se mueve la imagen? 10. ¿Al alejar el portaobjeto o la muestra de usted hacia donde se nueve la imagen? 11. Observe e indique cuál es el valor de los oculares_________________ 12. Observe e indique cuál es el valor de cada uno de los objetivos_____,______,________,______ 13. Calcule el aumento logrado para cada objeto observado en su práctica de Laboratorio.

PRACTICA No. 03 – LA CÉLULA

Tipo de practica

Presencial Otra ¿Cuál


X

Autodirigida

Remota

Célula vegetal y animal. Propósitos Al terminar el laboratorio sobre la célula, el estudiante estará capacitado para:      

Elaborar montajes de células Diferenciar células vegetales de células animales a través del microscopio Identificar orgánulos celulares con base en la capacidad de ampliación del microscopio. Describir las diferentes formas y tamaños de las células Determinar la relación que existe entre estructura y función Observar la ciclosis o movimiento del citoplasma

Objetivos   Intencionalidades formativas    

Describir las diferentes formas y tamaños de las células Identificar las diferentes estructuras y organelos que posee una célula, con base en la capacidad de ampliación del microscopio óptico. Describir las diferentes formas y tamaños de una célula Señalar las diferencias fundamentales entre una célula animal y una vegetal Reconocer que una célula puede constituir un organismo. Describir la ciclosis o movimiento del citoplasma

Metas Dominio del procedimiento para observación celular al microscopio e identificación precisa de organelos celulares. Competencias  Capacidad de manejo procedimental del microscopio para la observación celular  Capacidad de identificar, dibujar y explicar el rol de los organelos celulares observados al microscopio


Observar los siguientes videos: Salazar, Y & Piña, C. (2005). La Célula parte I. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de http://hdl.handle.net/10596/7221 Salazar, Y & Piña, C. (2005). La Célula parte II. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de http://hdl.handle.net/10596/7812 Leer

Granillo, V. M. D. P. (2014). Unidad 1. Diversidad Biológica y Taxonomía. Larousse - Grupo Editorial Patria. Biología general: los sistemas vivientes. (pp. 85-132) México, D.F., Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=92&docID=11046867&tm=14679 87855988 Granillo, V. M. D. P. (2014). Capítulo 5.3. Los Reinos del mundo vivo. Larousse - Grupo Editorial Patria. Biología general: los sistemas vivientes. (pp. 318-367). México, D.F. Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=325&docID=11046867&tm=1466 033661112

Descripción de la práctica En ésta práctica el estudiante aprenderá las similitudes y diferencias entre las células animales y vegetales. Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos) MATERIALES QUE DEBE LLEVAR EL ESTUDIANTE Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Jabón, Láminas y laminillas Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes Bulbo de cebolla Allium cepa, Papa, Tomate, Hojas de Elodea, Laminas portaobjetos y Laminillas, Cuchilla o bisturí, Pinza, Tijeras pequeñas, hisopos MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO: 1 Caja de Petri, Aguja o asa recta, Algodón, Alcohol, Lancetas, Lugol, Solución salina, Acetocarmín, Azul de metileno, Fucsina, Colorante de Wright. Microscopio

Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la práctica. Observación de los videos sobre Célula parte 1 y 2. Metodología

PROCEDIMIENTO

Observación de tejido epidermal de cebolla 1. Separar con el bisturí una de las capas internas de la cebolla y desprender la tenue membrana que está adherida por su cara interior cóncava. 2. Deposite el fragmento de membrana en un portaobjetos con unas gotas de agua. 3. Si es necesario, estire el trozo de epidermis. 4. Realice otro montaje pero coloque el tejido en unas gotas de lugol 5. Colocar sobre la preparación un cubreobjetos evitando que se formen burbujas y llevarla al microscopio. 6. Observa la preparación a 4x, 10X y 40X. 7. Escriba sus observaciones.

Observación de tejido parenquimatoso en un corte transversal de papa Elabore un montaje para observación del tejido parenquimatoso en un corte transversal de papa: 1. Tome el bisturí y realice un corte transversal de la papa , obtenga una porción pequeña y delgada casi transparente, 2. Colóquelo en un portaobjetos limpio con unas gotas de agua 3. Colocar sobre la preparación un cubreobjetos evitando que se formen burbujas y llevarla al microscopio. 4. Observe esta preparación en el microscopio con el objetivo de 4 X, 10X y 40X. 5. Localice las células algo hexagonales y en su interior los amiloplastos. 6. Realice un montaje de la forma descrita anteriormente pero coloque lugol en el portaobjetos 7. Examine ahora y compare lo observado antes y después de haber teñido con lugol. 8. Escriba sus observaciones. Observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico en hoja de Elodea Para observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico utilice una hoja de Elodea , planta acuática común en lagos y acuarios 1. Con la ayuda de las pinzas tome de una ramita de Elodea una de sus hojas jóvenes y colóquela sobre un portaobjetos. 2. Adicione una gota de agua encima y coloque un cubreobjetos (dejándolo caer de forma inclinada para evitar la formación de burbujas). 3. Observe la preparación con los objetivos de 4X, 10X y 40X. 4. Identifique la pared celular y los cloroplastos ovalados o esféricos de color verde por la presencia de la clorofila. 5. Al cabo de 10 minutos de exposición a la luz del microscopio observar la ciclosis, movimiento circular del citoplasma y sus componentes. 6. Escriba sus observaciones Observación de cromoplastos en pulpa de tomate Para continuar realice un montaje con pulpa de tomate e identifique los cromoplastos: 1. Con el bisturí corte una porción de la pulpa el tomate. 2. Con ayuda de unas pinzas tome el corte de pulpa de tomate de unos 2mm de grosor. 3. Deposite el corte en el centro de un portaobjetos sin poner agua. 4. Coloque encima un cubreobjetos y comprima suavemente con los dedos hasta obtener un completo aplastamiento del fragmento de pulpa de tomate. 5. Lleva la preparación a la platina del microscopio y realiza una observación con los objetivos de 4X, 10X y 40X.

6. Identifique los cromoplastos. 7. Escriba sus observaciones. Observación de células escamosas epiteliales 1. Con un palillo de dientes frote con suavidad la cara interna de la mejilla. 2. Deposite la sustancia extraída en el centro de un portaobjetos. Adicione una gota de solución salina y una gota de azul de metileno, mezcle cuidadosamente. 3. Coloque el cubreobjetos procurando que no queden burbujas de aire. 4. Observe la preparación al microscopio moviéndola para visualizarla correctamente utilizando los aumentos de 4X, 10X y 40X. 5. Escriba sus observaciones. Observación de células sanguíneas A continuación realice un extendido para observación de células sanguíneas: 1. Desinfecte con un algodón humedecido en alcohol la punta del dedo anular o índice, deje secar el alcohol; y con la lanceta realice una punción en la yema del dedo. 2. Coloque una pequeña gota en una lámina portaobjetos. 3. Coloque otra lámina en ángulo de 45 grados sobre la primera, acérquela a la sangre luego deslice suavemente en forma continua hasta formar una capa o frotis delgado. 4. Deje secar la preparación en posición horizontal al medio ambiente. 5. Una vez seca la lámina aplique sobre el frotis el colorante de Wright y déjelo actuar durante tres minutos. 6. Luego adicione sobre la lámina sin retirar el colorante tres gotas de Buffer Giordano durante tres minutos. Con este procedimiento el colorante fijará la preparación. 7. Luego lave la lámina con agua y deje secar la lámina verticalmente. 8. Observe al microscopio con el objetivo de pequeño y mediano aumento e identifique los glóbulos rojos, leucocitos y plaquetas. 9. Posteriormente observe la preparación con el objetivo de 100X y describa la forma de los glóbulos rojos o eritrocitos; de los glóbulos blancos o leucocitos y sus clases: neutrófilos, eosinófilos, basófilos, monocitos y linfocitos; y de las plaquetas. 10. Escriba sus observaciones. Sistema de Evaluación

La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 2. Asistencia, participación y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio.

Informe o productos a entregar INFORME Debe contener los siguientes puntos:

 

Formato de observaciones y datos importantes y Respuesta a cuestionario del informe Conclusiones



Referencias bibliográficas

Formato de observaciones y datos importantes. Para cada una de las muestras observadas utilice el siguiente formato donde indique objeto o muestra observada, realice el dibujo de las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células y registre el análisis y conclusiones.

OBJETO OBSERVADO

AUMENTO

Cebolla con lugol

10X

Cebolla sin lugol

10 X

DIBUJO


Reconozca las partes de las células del tejido epidermal de cebolla y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas: a. ¿Qué forma tiene las células de este tejido? b. ¿Qué conclusiones puede sacar de la utilización de diferentes aumentos? c. ¿Al hacer el montaje con tinción (lugol), qué sucede? d. ¿Qué función cumple el tejido epidermal? Parénquima de papa. Dibuje las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células

OBJETO OBSERVADO

AUMENTO

Papa con lugol

10X

Papa sin lugol

10 X

DIBUJO


Reconozca las partes del tejido parenquimatoso de la papa y conteste las siguientes preguntas a. ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) con el objetivo de 10x? b. ¿Al aplicar el colorante lugol qué sucede? c. ¿Qué forma tienen las células de este tejido? d. ¿Qué función cumplen? Epidermis y parénquima de Elodea. Dibuje las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células

OBJETO OBSERVADO

AUMENTO

Elodea

10X

Elodea

40 X

DIBUJO


Reconozca las partes de las células que forman el tejido epidermal de la elodea, conteste las siguientes preguntas a. ¿Qué forma tienen las células? b. ¿Qué estructuras celulares se observan? c. ¿Qué función cumplen los cloroplastos? d. ¿Qué es ciclosis? ¿Por qué se realiza? Cromoplastos en pulpa de tomate. Dibuje las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células

OBJETO OBSERVADO

AUMENTO

Pulpa de tomate

4X

Pulpa de tomate

10 X

DIBUJO


Células escamosas epiteliales. Dibuje las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células

OBJETO OBSERVADO

AUMENTO

Pulpa de tomate

4X

Pulpa de tomate

10 X

DIBUJO


Reconozca las partes que tienen las células que forman el tejido escamoso epitelial humano y conteste las siguientes preguntas a. ¿Qué forma tienen las células que forman el tejido escamoso epitelial humano? b. ¿Qué organelos se observan a mayor aumento 40X en el montaje húmedo (solución salina)? c. ¿Al aplicar el colorante qué sucede? d. ¿Cuál es la función del tejido epitelial? Células sanguíneas

Dibuje las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células

OBJETO OBSERVADO Células sanguíneas

AUMENTO

DIBUJO


100X

Reconozca las células que forman el tejido sanguíneo y conteste las siguientes preguntas a. Identifique las células sanguíneas teniendo en cuenta la forma, ausencia o presencia de gránulos en el citoplasma, coloración que toman los gránulos y forma del núcleo: b. ¿Qué tipos diferentes de células aparecen? Esquematice dichas formas c. ¿En cuáles de estas formas celulares no encuentra núcleo? d. ¿Cuáles observa en mayor cantidad? e. ¿Qué función cumplen estas células? Conclusiones: Deben estar relacionadas con la diferencia entre las células vegetales y animales y vegetales, (forma tamaño, distribución, entre otros).

PRACTICA No. 04 – TEJIDOS VEGETALES


Tipo de practica


x

Autodirigida

Remota

Tejidos vegetales: protector, parenquimático, conductor y de sostén. Propósitos Esta práctica permite a los estudiantes comprobar la diversidad y especialización de los tejidos vegetales , además de adquirir la habilidad para realizar cortes a mano alzada Objetivos 




Comprobar la diversidad y especialización de las células vegetales y sus agrupaciones en tejidos. Agudizar el sentido de la observación de las estructuras vegetales, aspecto importante para comprender la morfología vegetal.

Meta Diferenciar los tipos de tejido vegetal Competencias Adquirir habilidad en la elaboración de cortes a mano alzada y en coloración Fundamentación Teórica Revisar el siguiente video: Salazar, Y & Piña, C. (2005). Tejidos vegetales. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de https://youtu.be/OM-LamKEu6s Descripción de la practica En la presente práctica los estudiantes distinguirán las diferentes clases de tejidos vegetales y sus respectivas funciones. Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR LOS ESTUDIANTES Hojas de Lirio, Pera, Hojas de olivo . Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Bisturí o cuchilla, Pinza. MATERIALES QUE SERÁN SUMINITRADOS EN EL LABORATORO

Microscopio. Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la práctica. Computador para la observación de los videos de Tejidos vegetales Metodología En esta práctica observe a través del microscopio la morfología de los distintos tejidos vegetales. TEJIDO PROTECTOR Observación hojas de Lirio

Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio; 1. Tome una hoja de lirio y con un bisturí haga una pequeña incisión en el limbo 2. Con ayuda de una pinza levante la capa externa para obtener una lámina fina. 3. Coloque la lámina fina obtenida en el portaobjetos y agregue una gota agua. 4. Enfoque al microscopio con objetivo de 10x y 40x. Identifique las células oclusivas, los ostiolos y los cloroplastos. 5. Escriba sus observaciones. Observación hojas de Olivo Otro ejemplo de tejido protector puede observarlo en la hoja de olivo. 1. Raspe el envés de una hoja de olivo. 2. Coloque el raspado en una lámina portaobjetos y adicione unas gotas de agua. 3. Observe los pelos escamiformes. 4. Escriba sus observaciones TEJIDOS MECÁNICOS O DE SOSTÉN Observación de células de Pera Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio 1. Raspe con un cuchillo o bisturí una parte pequeña de mesocarpio de pera y colóquela en un portaobjetos. 2. Coloque el corte en una lámina portaobjetos y adicione unas gotas de agua. 3. Cubra con una laminilla cubreobjetos evitando que se formen burbujas. 4. Elimine el exceso de agua con papel absorbente 5. Observe el microscopio con objetivo de 10 X y 40x. Identifique las esclereidas. 6. Escriba sus observaciones. Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades

1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 2. Asistencia , participación y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio Informe o productos a entregar INFORME Debe contener los siguientes puntos:   


El informe debe incluir el siguiente formato donde se registra MATERIAL BIOLÓGICO

TIPO DE TEJIDO Y ESTRUCTURAS OBSERVADAS

DIBUJO

ANÁLISIS Y CONCLUSIONES (adicionalmente incluya forma de las células y función del tejido)

LIRIO OLIVO PERA

Además en el informe se deben responder las siguientes preguntas: 1. ¿Qué forma tiene las células observadas? 2. Señale las partes de cada una de las células observadas e identifíquelas su nombre. 3. ¿Defina claramente la función de cada tejido?

PRACTICA No. 05 – DIVERSIDAD MICROBIANA


Tipo de practica


X

Autodirigida

Remota

Observación de bacterias, mohos, levaduras. Propósito Aprender a identificar microorganismos de las diversas clases taxonómicas. Objetivo   


Diferenciar bacterias, hongos y sus estructuras microscópicas. Identificar bacterias Gram positivas y Gram negativas Observar microscópicamente mohos y levaduras.

Meta Identificación correcta de los microorganismos observados al seguir las instruciones de la guía de laboratorio. Competencias   

Elaborar montajes de microorganismos para observarlas al microscopio Reconocer en diferentes habitats y sustratos la diversidad biológia de microorganismos Realizar frotis fijo con tinción de Gram

Fundamentación Teórica Observar los videos: Salazar, Y & Piña, C. (2005). Diversidad de Microorganismos. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de http://hdl.handle.net/10596/7232 Salazar, Y & Piña, C. (2005). Diversidad de Microorganismos II. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de http://hdl.handle.net/10596/7810 Leer

Granillo, V. M. D. P. (2014). Capítulo 5.3. Los Reinos del mundo vivo. Larousse - Grupo Editorial Patria. Biología general: los sistemas vivientes. (pp. 318-367). México, D.F.

Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=325&docID=11046867&tm=1466033 661112 Descripción de la practica A través de esta práctica el estudiante podrá reconocer las estructuras microscópicas de los diferentes grupos de microorganismos, además de adquirir destrezas en técnicas de tinción. Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)

MATERIALES QUE DEBE LLEVAR EL ESTUDIANTE Yogur casero o probiótico, Agua estancada, Tajada de pan y/o fruta con moho (dejarlo en un sitio húmedo y oscuro mínimo 2 semanas antes de la práctica). Levadura de Panadería. Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Hisopos. Asas microbiológicas: recta y de argolla. Fósforos. Guantes, tapabocas y gorro. Cinta adhesiva transparente. Lápices de colores. MATERIALES QUE SERÁN SUMINITRADOS EN EL LABORATORO Solución salina, Agua destilada, Coloración de Gram (cristal violeta, lugol, alcohol acetona y fucsina) Lactofenol, Azul de Metileno, Alcohol, Aceite de inmersión, Mechero, Asa recta y de argolla. Microscopio. Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la práctica. Computador para la observación de los videos Metodología Procedimiento

OBSERVACIÓN DE BACTERIAS Procedimiento: BACTERIAS DE LA CAVIDAD BUCAL desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio 1. Prepare una lámina portaobjetos limpia y sin grasa. 2. Tome un escobillón desechable, páselo por el borde de la encía en la parte que hace contacto con los dientes. 3. La muestra extraída con el escobillón colóquela sobre una lámina portaobjetos. 4. Deje secar por sí sola la lámina durante unos minutos con el fin de definir el frotis. 5. Pase lentamente el portaobjetos a través de la llama del mechero, con esto se fija el frotis. 6. Deje enfriar y coloree con la tinción de Gram como se indicó a cotninuación. 7. Deje secar la lámina y ubique las células con el objetivo de menor aumento y luego observe con el objetivo de inmersión.

8. Tenga en cuenta que las bacterias Gram positivas toman coloración violeta y las Gram negativas color rosado. 9. Escriba todas sus observaciones. COLORACION DE GRAM desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio 1. Cubra la preparación con cristal violeta durante 1 minuto. Lave con agua corriente. 2. Cubra la preparación con lugol y déjelo actuar por 1 minuto. Lave con agua corriente. 3. Agregue alcohol acetona y déjelo actuar por 15 segundos. Lave con agua corriente. 4. Adicione fucsina y déjela actuar por 30 segundos. Lave con agua corriente y ponga a secar la lámina. 5. Ubique la lámina en el microscopio, localice las bacterias con el objetivo de menor aumento y observe en con el objetivo de 100 X, no olvide colocar una pequeña gota de aceite de inmersión. 6. Según sus observaciones clasifique las bacterias observadas según su forma, agrupación y tinción. 7. Escriba sus observaciones. BACTERIAS DEL YOGUR desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio 1. Tome una lámina portaobjetos y en ella coloque una gota de agua destilada. 2. Con un asa de argolla, obtenga una gota de yogur y mézclela con la gota de agua colocada en el portaobjetos. 3. Deje secar completamente la lámina. Pásela 3 veces por la llama del mechero. Tenga cuidado de no sobre calentar la muestra. 4. Cubra la preparación con alcohol o metanol por unos segundos para eliminar la parte grasa. 5. Escurra el alcohol y deje secar al aire. Luego cubra el extendido con azul de metileno durante 2 minutos. Lave el exceso de colorante y deje secar. 6. Enfoque el microscopio con el objetivo de mayor aumento e identifique los estreptococos y los lactobacilos. Anote sus observaciones.

OBSERVACIÓN DE HONGOS Observación de mohos: Desarrolle el siguiente procedimiento en casa 8 días antes del laboratorio 1. Prepare una solución de agua azucarada y agregue 20 gotas de esta a una tajada de pan, déjela por espacio de media hora al aire libre. 2. Almacénela en una bolsa plástica y ciérrela. Guárdela en un lugar oscuro a 30°C y obsérvela diariamente. 3. Cuando el pan esté enmohecido, coloque en un portaobjetos una pequeña gota de solución de Azul de lactofenol. 4. Luego con un trozo de cinta adhesiva transparente de aproximadamente 2 cm toque la superficie del pan enmohecido. 5. Pegue la cinta adhesiva sobre la gota del portaobjetos. Elimine el colorante sobrante con un papel de filtro. 6. Observe al microscopio con objetivo de 10X y 40X e identifique el micelio y las hifas. El procedimiento anterior también puede hacerlo con frutas u hortalizas dañadas que presenten en su superficie mohos. Escriba sus observaciones.

Prepare una solución de agua azucarada y agregue 20 gotas de esta a una tajada de pan, déjela por espacio de media hora al aire libre.

Almacene en una bolsa plástica cerrada. Guárdela en un lugar oscuro a 25°C y obsérvela diariamente.

Selle herméticamente y transporte al laboratorio el día de la práctica.

Observación de levaduras: desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio 1. Tome un poco de levadura de panadería y colóquela en un tubo de ensayo que contenga agua con azúcar. 2. Incube a 37°C durante 15 minutos esto producirá el desarrollo de las levaduras. 3. Con un gotero tome una gota del cultivo anterior y colóquela en el portaobjetos. 4. Adicione dos gotas de Azul de Lactofenol 5. Coloque una laminilla y elimine el exceso de colorante con papel absorbente. 6. Observe al microscopio en los aumentos de 10X y 40X identifique las levaduras por su forma ovalada. 7. Observe que algunas presentan gemaciones. Escriba sus observaciones Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 2 .Asistencia, participación y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio. Informe o productos a entregar Cuestionario INFORME

1. Defina los principales linajes los organismos. 2. Investigue el fundamento de la Coloración de Gram INFORME Debe contener los siguientes puntos:

  


En el informe debe incluirse el siguiente cuadro que debe registrar todas las observaciones realizadas.

Microorganismo Tinción

Dibujo

Observaciones

Observado Bacterias – yogur Bacterias cavidad bucal Levaduras Mohos

OBSERVACIÓN DE BACTERIAS DEL YOGURT (COLORACIÓN DE GRAM) 1. Dibuje en el formato anterior las células observadas y complemente con la siguiente información a. b. c. d.

¿Qué tipo de microrganismos se observan? ¿Cómo se denominan las bacterias según su forma? ¿Cómo se clasifican las bacterias según la manera de agruparse? ¿Qué color toman las bacterias de acuerdo a la coloración de Gram?

OBSERVACIÓN DE MOHOS Y LEVADURAS 2. Dibuje en el formato anterior las células observadas y complemente con la siguiente información. a. b. c. d.

¿Qué tipo de microrganismos se observan? ¿Cómo se denominan los tejidos de los hongos? Establezca diferencias puntuales entre hongos y levaduras Establezca diferencias puntuales entre bacterias y hongos

PRACTICA No. 06 – MITOSIS Y MEIOSIS


Tipo de practica


X

Autodirigida

Remota

Ciclo celular, Mitosis y Meiosis Propósito Aprender a diferenciar los periodos del ciclo celular Objetivos   


Identificar cada uno de los periodos que comprende el ciclo celular Relacionar cada cambio presente en las células meristemáticas, con las diferentes fases de la mitosis. Reconocer los procesos de la meiosis con base en el material suministrado.

Meta Poder explicar el ciclo celular con ilustraciones de observaciones reales al microscopio Competencia Dominio de la observación celular en sus diferentes ciclos de mitosis y meiosis.


Observar los siguiente videos: Salazar, Y & Piña, C. (2005). Mitosis y Meiosis I parte. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de https://youtu.be/BhxFoL_e5Us Salazar, Y & Piña, C. (2005). Mitosis y Meiosis II parte. Bogotá: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Recuperado de https://youtu.be/tAOOVMZMzP0

Leer : Curtis, H., Barnes, N., Schnek, A., & Massarini, A. (2008). Capítulo 7. La Reproducción celular. (7ª ed.). Editorial Médica Panamericana. Curtis Biología. (127-146). Madrid. Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2055/VisorEbookV2/Ebook/9789500605502#{"Pagi na":"127","Vista":"Indice","Busqueda":""} Descripción de la practica El estudiante observará las fases la división celular en montajes al microscopio. Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)

LABORATORIOS QUE POSEEN MICROPREPARADOS Materiales que debe llevar el estudiante: Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Jabón, Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Papel y lápiz para tomar apuntes Materiales que le serán suministrados en el laboratorio: Micropreparados de raíces de cebolla y de Corte transversal de Testículo de ratón. Aceite de inmersión. Microscopio LABORATORIOS QUE NO POSEEN MICROPREPARADOS Materiales que debe llevar el estudiante: Bulbo de cebolla Allium cepa, Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Jabón, Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Bisturí, Papel y lápiz para tomar apuntes. Materiales que le serán suministrados en el laboratorio: Microscopio , aceite de inmersión, Acetocarmín Metanol, Bisturí, micropreparados que ilustran los procesos de mitosis y meiosis Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la práctica. Computador para la observación de los Videos de Mitosis y Meiosis parte 1 y 2. Metodología LABORATORIOS QUE POSEEN MICROPREPARADOS Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio;

1. Coloque el micropreparado al microscopio e inicie la observación con el objetivo de 10x e identifique las células, 2. Cambie al objetivo de 40X para detallar las células. Observe los núcleos y cromosomas en color azulado. 3. Ubique el objetivo de 100 x y escriba sus observaciones diferenciando cada uno de los aumentos mencionados. 4. Detenidamente y distinga células en interfase, en división celular, las diferentes etapas de la mitosis y meiosis, no olvide hacer dibujos de lo observado. LABORATORIOS QUE NO POSEEN MICROPREPARADOS Para el desarrollo de esta práctica utilice bulbos de cebolla, Allium cepa y realice preparaciones con la raíz de material fijado y teñido, una vez obtenidos los extendidos de células obsérvelos al microscopio óptico. 1. Con ayuda de una pinza retire la capa externa marronacea o rosácea y lave con abundante agua, esto se realiza para eliminar restos de sustancias con las que frecuentemente han sido tratadas para inhibir o retardar la germinación de las raicillas. 2. Llene un vaso de precipitados con agua y coloque un bulbo de cebolla sujeto con dos o tres palillos de manera que la parte inferior quede inmersa en el agua. 3. Póngalo a germinar a 25°C o a temperatura ambiente durante 3 días, al cabo de estos aparecerán numerosas raicillas en crecimiento de unos 3 o 4 cm. de longitud. 4. Revise diariamente y procure que la corona no se deseque para lo cual es necesario rellenar con agua cada 24 horas. 5. Cuando las raíces tengan entre 0.5 y 1 cm de longitud, realice cortes de raíz de aproximadamente 2 – 3 mm a partir del ápice. 6. Colóquelas en una lámina portaobjetos. Adiciona una gota del colorante acetocarmín. 7. Coloque el cubreobjetos con mucho cuidado sobre la raíz. Con ayuda de la punta de una lanceta, de unos golpecitos sobre el cubre objetos sin romperlo, de modo que la raíz quede extendida. 8. Use papel absorbente para retirar el exceso de colorante realice una suave presión, evitando que él cubre objetos resbale. Si la preparación está bien asentada no hay peligro de rotura por mucha presión que se realice. 9. Selle todos los bordes del cubre objetos con esmalte transparente, para evitar que se seque y de esta manera conservar la preparación durante varios días. 10. Coloque la preparación al microscopio e inicie la observación con el objetivo de 10x e identifique las células. 11. Cambie al objetivo de 40X para detallar las células. Observe los núcleos y cromosomas en color rosáceo – morado. 12. Ubique el objetivo de 100 x y escriba sus observaciones anotando las diferencias en cada uno de los aumentos mencionados. 13. Trate de observar detenidamente las preparaciones y distinga células en interfase y células en división y dentro de estas, las diferentes etapas de la mitosis Realice dibujos de todas las fases observadas. Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades

1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 2. Asistencia, participación y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio. Informe o productos a entregar INFORME Debe contener los siguientes puntos:   


El informe debe incluir el siguiente formato donde se registra cada una de las fases de la división celular observadas MITOSIS: Células de Cebolla FASE

DIBUJO

DESCRIPCIÓN Y CARACTERÍSTICAS

INTERFASE PROFASE METAFASE ANAFASE TELOFASE

Además se deben resolver las siguientes preguntas: a. b. c. d. e.

¿Qué etapas de la meiosis y mitosis observo? ¿Qué proceso se está desarrollando en las etapas observadas? ¿Qué tipo de células se están observando? ¿Cuántos cromosomas poseen las células en mitosis? ¿Cuántos cromosomas poseen las células en meiosis?

PRACTICA No 7 . FENOMENOS DE TRANSPORTE CELULAR

Tipo de práctica


Presencial

x

Autodirigida

Remota

Fenómenos de transporté celular, transporte pasivo, difusión simple, difusión facilitada, diálisis, y osmosis Propósito Afianzar y aplicar los conocimientos teoricos de los fenomenos de transporte a traves de la memebrana celular. Objetivo


Analizar y aplicar los modelos experimentales para observar los fenómenos de transporte celular, osmosis, plasmólisis y difusión Competencias Se basan en el dominio la relación cognitivo-procedimental orientada a: 1. Capacidad para reconocer los diferentes fenómenos de transporte celular 2. Fortalecer los conocimientos teóricos de la célula 3. Aplicar las diferentes técnicas experimentales

Fundamentación Teórica En todos los sistemas vivos, desde los procariotas hasta los eucariotas multicelulares más complejos, la regulación del intercambio de sustancias con el mundo inanimado ocurre a nivel de la célula individual y se realiza a través de la membrana celular. El transporte a través de la membrana ocurre por dos mecanismos transporte activo y transporte pasivo.

Granillo, V. M. D. P. (2014). Unidad 1. Diversidad Biológica y Taxonomía. Larousse - Grupo Editorial Patria. Biología general: los sistemas vivientes. (pp. 85-132) México, D.F., Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=92&docID=11046867&tm=14679878 55988 Descripción de la práctica Mediante la práctica se comprenderá que el transporte de moléculas a través de membranas biológicas es de vital importancia para que se cumplan la mayor parte de los procesos celulares

Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos) MATERIALES QUE DEBE LLEVAR EL ESTUDIANTE Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente Jabón Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes Cebolla Elodea Reloj Lancetas Láminas portaobjetos, Laminillas MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO Microscopio, Papel de Arroz o de óptica, Pipeta de 1 ml Lugol Solución de sacarosa al 10% Cloruro de sodio al 10%, 2%, 0.9% 0.4% Alcohol antiséptico Metodología Experimental Procedimiento 1. Osmosis en células de Elodea 1.1. Tome con pinzas una hoja de Elodea y adicione una gota de agua de acuario, teniendo en cuenta que el haz este dirigido hacia arriba. 1.2. Enfoque el borde del ápice de la hoja con objetivos de menor y mayor aumento; observe el arreglo general de las estructuras celulares y observe detalladamente la relación existente entre la membrana plasmática y la pared celular. Como la célula está en su medio ambiente natural, la cantidad de agua que entra y sale a la célula es aproximadamente igual, el volumen celular permanece constante. 1.3. Tome la placa anterior como control para las futuras observaciones 1.4. Prepare un nuevo montaje reemplazando el agua de acuario por una solución de sacarosa al 10%. Inmediatamente después de haber agregado la sacarosa, anote el tiempo en el que se inicia la observación. A partir de este momento haga observaciones permanentes sobre una misma célula, hasta que note la aparición de espacios entre la pared celular y la membrana plasmática. 1.5. Que fenómenos ocurren?, ¿Cuánto tiempo demoro en presentarse el fenómeno?

2. Osmosis en células de cebolla 2.1. Prepare una placa con una muestra de epidermis de cebolla 2.2. Agregue una gota de cloruro de sodio (NaCl) al 10% y deje actuar por unos segundos 2.3. Adicione una gota de Lugol. 2.4. Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior 2.5. Inicie la observación con el objetivo de 4X seguido del 10X y 40X 2.6. Observe los cambios que ocurren en las células. 2.7. Que fenómenos se presentan? La solución salina al 10% es, con respecto al citoplasma de las células, hipotónica, hipertónica o isotónica? 3. Osmosis y diálisis en Células Sanguíneas 3.1. Limpie con un algodón empapado en alcohol la yema del dedo, pinche utilizando una lanceta estéril. 3.2. Sobre tres portaobjetos limpios y marcados con los números 1, 2 y 3 coloque una gota de sangre. 3.3. Sobre la lámina número 1, agregue 1 gota de NaCl al 0.9%, cubra con laminillas y observe con aumentó de 40X. Haga un esquema de los eritrocitos y describa la forma de las células, Conserve esta lámina como control.(en condiciones normales, el suero salino normal 0.9% de NaCl es isotónico para los glóbulos rojos) 3.4. Al portaobjeto número 2, agregue 1 gota de NaCl al 0.4%, cubra con una laminilla, observe y haga el esquema de los eritrocitos y describa la forma de las células. 3.5. A la lámina número 3, agregue 1 gota de NaCl al 2% cubra con una laminilla, observe y haga el esquema de los eritrocitos y describa la forma de las células. 3.6. Explique la razón del cambio morfológico en las células con cada una de las soluciones y cuál es la dirección del flujo del agua en la célula con cada una de las soluciones Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 3. Presentación de informe de la práctica realizada durante el laboratorio. Informe o productos a entregar

INFORME Debe contener los siguientes puntos:     

Respuesta a las preguntas planteadas al final de las experiencias realizadas Explique las diferencias entre transporte activo y transporte pasivo Explique los mecanismos moleculares del transporte activo a través de la membranas biológicas Conclusiones Referencias bibliográficas

En el informe debe incluirse el siguiente cuadro y las respuestas a las preguntas del informe final. OBJETO OBSERVADO Osmosis en la célula de la 40X Elodea Osmosis en la célula de la 40X cebolla

Osmosis y diálisis en 40X células sanguíneas 0.9% 0.4% 2%

AUMENTO

DIBUJO


PRACTICA No. 8 RASGOS GENETICOS EN EL HOMBRE

Tipo de práctica


Presencial

x

Autodirigida

Remota

Conceptos básicos de genética, genética Mendeliana. Propósito En el laboratorio se estudiarán algunas caracteristicas humanas conocidas, para demostrar la herencia Mendelina simple. Objetivo Determinar caracteres heredables en una población.

Intencionalidades formativas Competencia Se basan en el dominio la relación cognitivo-procedimental orientada a: 1. Investigar la herencia de características humanas. 2. Fortalecer los conocimientos teóricos de la Unidad 2


Cienfuegos, R. E. G., López, S. J. A., & Castro, N. S. (2011). Conceptos básicos en genética. Plaza y Valdés, S.A. de C.V. Genética General. (pp. 43-50). México: Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=46&docID=10844411&tm=14671667 47367 Cienfuegos, R. E. G., López, S. J. A., & Castro, N. S. (2011). Genética Mendeliana. Plaza y Valdés, S.A. de C.V. Genética General. (pp. 131-155). México: Recuperado de http://bibliotecavirtual.unad.edu.co:2077/lib/unadsp/reader.action?ppg=131&docID=10844411&tm=1467167 987600 Descripción de la práctica Con la práctica se pretende interpretar las Leyes de Mendel y cómo las características de un organismo proceden de la herencia y de la interacción de los genes Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR EL ESTUDIANTE Bata Blanca, Guantes. Papel y lápiz para tomar apuntes Espejo MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO

Lupa

Metodología Experimental Procedimiento Paso 1

Algunas personas tienen la capacidad de enrollar la lengua en forma de U, cuando la sacan de la boca. Esta capacidad conocida como enrollamiento de la lengua, es causada por un gen dominante U. La persona que no posee este gen solo puede curvar la lengua. Con la ayuda de su compañero de laboratorio o de un espejo, determine cuál es su característica y anótela. Paso 2

Un gen dominante L determina que los lóbulos de las orejas estén separados, es decir que no estén adheridas completamente a la cabeza. En algunas personas los lóbulos, están adheridos totalmente a la cabeza. El que estén los lóbulos de las orejas adheridas, es una condición homocigótica determinada por un gen recesivo. Observe los rasgos de los lóbulos de sus orejas y los de sus compañeros y escriba sus resultados Paso 3

Algunas personas pueden separar el dedo pulgar hasta formar un ángulo de 90°. Esto se llama “pulgar en escuadra”. Un gen recesivo p determina esta cualidad. Un gene dominante P, que se encuentra en la mayoría de las personas, evita que esta separación sea mayor de 45° Determine si tiene esta cualidad y anote estas observaciones. Paso 4

Algunas personas muestran la característica de que su línea del pelo baja hasta un punto definido en la mitad de la frente. Esta se conoce como “pico de viuda”. Este rasgo resulta de la acción de un gen dominante V. El gen recesivo v determina la característica de una línea continua en el pelo. Con un espejo determine su fenotipo y anote sus observaciones

Paso 5

Note la presencia o ausencia de vello sobre las falanges de los dedos. La presencia de vello se debe a un gen dominante D. La ausencia se debe a un gen recesivo d. Otros alelos determinan se crecerá vello sobre las falanges de los dedos, así como la cantidad del mismo. Para observar el vello, utilice una lupa y examine sus dedos con mucho cuidado. Algunos individuos tienen muy fino sobre los dedos. Anote sus observaciones para este alelo Paso 6

Extienda su mano hacia delante, con los dedos juntos. Su dedo anular ¿es más largo o más corto que el índice? En caso de duda coloque su mano sobre un pedazo de papel blanco al tope del papel. Asegúrese de que es la punta del dedo y no la uña la que se encuentra en el tope del papel. Algunos genetistas creen que si el dedo anular es más cortó, se debe a un gen influido por el sexo del individuo. De acuerdo con esta teoría, los varones poseen un gen dominante A y las mujeres uno recesivo a. Compare el tamaño del dedo anular con el tamaño del dedo índice y anote sus observaciones.

Sistema de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica 3. Presentación de informe de la práctica realizada durante el laboratorio.

Informe o productos a entregar INFORME Debe contener los siguientes puntos:  Respuestas a las siguiente preguntas: Explique el tipo de anormalidades cromosómicas existentes. Como influye el ambiente en la expresión de los genes?  Conclusiones  Referencias bibliográficas En el informe debe incluirse el siguiente cuadro y las respuestas a las preguntas del informe final. CARACTERISTICAS Lengua enrollada Lengua no enrollada Lóbulos separados Lóbulos adheridos Pulgar separados 90° Pulgar separado 45° Pico de viuda Línea continua del pelo Dedos con vello Dedos sin vello Anular más corto Hombre que el índice Mujer Anular más largo que el índice

Hombre Mujer

MI FENOTIPO

GENOTIPO POSIBLE

UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS TECNOLOGIA E INGENIERIA GUÍA COMPONENTE PRÁCTICO 201101– BIOLOGIA BOGOTA 2016

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