UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES ZARAGOZA QUÍMICA FARMACÉUTICO BIOLOGÍA Microbiología General II Práctica 4. Hemoparásitos Integrantes Colarte Vergara Hortelia Espinosa Moya Viridiana Guadalupe González Zamora Dulce Gemma Grupo: 2752 Equipo: 11 Fecha de entrega: 08 de marzo de 2018
Objetivos:
El alumno aprenderá a realizar técnicas; hematológicas para determinar los parásitos presentes en sangre. Que el alumno tenga el conocimiento de las técnicas que se utilizan en la actualidad para determinar parásitos presentes en sangre. Familiarizar al alumno con el manejo de muestras sanguíneas para su posterior análisis.
Resultados.
Epimastigote
Trofozoito
Tripomastigote
Merozoito Amastigote Merozoito
Plasmodium vivax
Tripanosoma cruzi
PROTOZOOS Imagen
Agente etiológico
Trypanosoma cruzi
Leishmania tropica* Leishmania major* Leishmania mexicana
Leishmania aethiopica
Enfermedad
Enfermedad de Chagas
Leishmaniasis cutanea
Ubicación en el cuerpo humano
Artrópodo que lo transmite
"chagoma de inoculación", en el sitio de la picadura; en casos de inoculación ocular, es posible identificar el "signo de Romaña", edema bipalpebral unilateral, con adenitis retroauricular.
Vector: Chinche (Triatoma barberi,
En México predominan las úlceras únicas en áreas corporales expuestas (cara, tronco, extremidades).
Mosca de la arena (hembra)
T. dimidiata, T. longipennis , T. infestans, T. mazzotti, T. mexicana, Rhodnius prolixu)
Técnica de Dx:
Estudio de sangre periférica por frotis y/o gota gruesa, hemocultivos para tripanosoma, inoculación en animales de laboratorio, xenodiagnóstico, biopsia de ganglio, bazo, PCR
Inmunologico
Determinación IgG a por ELISA, IFI.
Dípteros del genero Lutzumyia para América y Phleboromus en Europa
Examen directo
Biopsias
Prueba de PCR
Leishmania mexicana
Clínico – parasitológico:
Intradermorreacción de Montenegro Métodos serológicos
Leishmania braziliensis
Leishmaniasis mucocutanea
Leishmania infantum* Leishmania donovani
Leishmania donovani Leishmania chagasi
Leishmaniasis visceral
Mosco
Plasmodium s
Anopheles
p:
Hembra
P. vivax
P. ovale
P falciparu m P. malarie
(Hospedero Definitivo) Malaria/Paludis mo
En hígado y después pasa a sangre
Humano
(Hospedero Intermediario)
Él diagnóstico de paludismo se establece al encontrar parásitos en el frotis de sangre grueso y delgado teñido con Giemsa. La película delgada se utiliza principalmente para la diferenciación de especies después de descubrir la infección en una película gruesa.
HELMINTOS (microfilarias) Imagen
Agente etiológico
Ubicación en el cuerpo humano
Artrópodo que lo transmite
Técnica de Dx:
Loa loa
Piel y tejido celular subcutáneo
Mosca (genero Chrysops)
El diagnóstico definitivo de loiasis se realiza mediante el hallazgo de microfilarias circulantes durante el día (es entonces cuando más circulan en sangre) Se realizan técnicas de concentración pasando una cantidad de sangre extraída por filtros, con muy poca mejoría en el rendimiento. En ocasiones, se puede visualizar y extraer la forma adulta bajo la conjuntiva del ojo, con unas gotas de anestesia tópica.
La serología
El diagnóstico mediante PCR
Onchocerca volvulus
Piel y tejido celular subcutáneo
Mosca hembra principalmente
Se utilizan diversos procedimientos para detectar IgG4 en pruebas inmunoenzimáticas, entre ellos ELISA, DIG-ELISA, Western blot. PCR se utiliza en estudios epidemiológicos.
genero Simulium ochraceum
Wuchereria bancrofti
Localización Linfática
Varios géneros de mosquitos (Anopheles sp, Aedes sp, Culex sp,
Mansonia sp)
Gota gruesa Filaria por filtración (cuantificar filarias) Filaria por centrifugación (clasificar especie) Técnica de concentración de Knott:
Biopsias de tejido
Xenodiagnóstico
Pruebas serológicas
Brugia malayi
Localización Linfática
Varios géneros de mosquitos
Pruebas serológicas
Gota gruesa
(Anopheles sp, Aedes sp, Mansonia sp
Mansonella ozzardi
En cavidades serosas y viven libres en las cavidades abdominal y torácica.
mosca jejenes (género Culicoides)
Filaria por filtración (cuantificar filarias) Filaria por centrifugación (clasificar especie) Técnica de concentración de Knott:
Biopsias de tejido
Xenodiagnóstico
Pruebas serológicas
Gota gruesa
y moscas negras (género Simulium)
Filaria por filtración (cuantificar filarias) Filaria por centrifugación (clasificar especie) Técnica de concentración de Knott: Biopsias de tejido
Xenodiagnóstico
Discusión:
En las tinciones que se realizaron de Giemsa y Wright no se observaron estructurasen el microscopio, por lo que no se reportaron, en las laminillas proporcionadas por los asesores se observó Plasmodium vivax y se identificaron algunos estadios principalmente trofozoitos y merozoitos. También se observó Tripanosoma cruzi y se identificaron todos sus estadios como Tripomastigotes. Conclusiones:
A través de la práctica se pudo conocer algunos de los protozoarios y nematodos más comunes en muestras sanguíneas humanas y otros huéspedes como animales (gallina y paloma), también la importancia de realizar una buena tinción para un análisis adecuado de muestras. El análisis requiere además de las técnicas una buena observación y experiencia en la diferenciación de un mismo géneros y distinta especies-
Referencias 1. Cabello, R.R. (2007) Microbiología y parasitología humana/Microbiology and human parasitology Bases etiológicas de las enfermedades infeccionas y parasitarias/Etiological Basis of infectious and parasitic diseases 3era edición Editorial. Medica panamericana. 2. Tay Z.J, Velasco C.O, Guti errez Q.M. Parasitologi á Me dica. 7a ed. Me xico: Me ndez editores; 2002. ́ ́ ́ ́ 3. Romero R. Microbiologi á y parasitología humana: bases etiológicas de las enfermedades infecciosas y parasitarias. 3a ed. Me xico: Editorial Panamericana; 2007. ́ 4. Gállego J. Manual de Parasitología: morfología y biología de los parásitos de interés sanitario.1a ed. Barcelona. Editorial Publicacions I Edicions De La Universitat De Barcelona: 2006. 5. Capuccino J, Sherman N. Microbiology: Laboratory manul. 5ª ed. USA: Benjamín/Cuminngs Pub Co edition;