PENGARUH PEMBERIAN BERBAGAI DOSIS PROBIOTIK SEDIAAN CAIR TERHADAP PERFORMA UDANG VANAME tope enaeus naeus vannam vanname ei ) DAN KUALITAS AIR (L i top
USULAN PENELITIAN
SUNENDI NPM. 230110140069
UNIVERSITAS PADJADJARAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN PROGRAM STUDI PERIKANAN JATINANGOR 2017
PENGARUH PEMBERIAN BERBAGAI DOSIS PROBIOTIK SEDIAAN CAIR TERHADAP PERFORMA UDANG VANAME tope enaeus naeus vannam vanname ei ) DAN KUALITAS AIR (L i top
USULAN PENELITIAN
Diajukan untuk Menempuh Seminar Usulan Penelitian SUNENDI NPM. 230110140069
UNIVERSITAS PADJADJARAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN PROGRAM STUDI PERIKANAN JATINANGOR 2017
PENGARUH PEMBERIAN BERBAGAI DOSIS PROBIOTIK SEDIAAN CAIR TERHADAP PERFORMA UDANG VANAME tope enaeus naeus vannam vanname ei ) DAN KUALITAS AIR (L i top
USULAN PENELITIAN
Diajukan untuk Menempuh Seminar Usulan Penelitian SUNENDI NPM. 230110140069
UNIVERSITAS PADJADJARAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN PROGRAM STUDI PERIKANAN JATINANGOR 2017
JUDUL
: PENGARUH PEMBERIAN BERBAGAI DOSIS PROBIOTIK SEDIAAN CAIR TERHADAP PERFORMA topenae enaeus us vannamei vannamei ) DAN UDANG VANAME (L i top KUALITAS AIR
PENULIS
: SUNENDI
NPM
: 230110140069 230110140069
Jatinangor, September 2017 Menyetujui :
Komisi Pembimbing : Ketua,
Dr. Ir. Iskandar, M.Si NIP. 19610306 19610306 198601 1 001 001
Anggota,
Ir. Ibnu Dwi Buwono, M.Si. NIP. 19621208 198903 1 002
Anggota,
Dr. Ratu Safitri, MS. NIP. 19620318 19620318 198610 2 001 001
Dekan,
Dr. Ir. Iskandar, M.Si NIP. 19610306 19610306 198601 1 001
KATA PEGANTAR
Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT atas berkat rahmat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan proposal usulan penelitian yang berjudul “Pengaruh Pemberian Berbagai Dosis Probiotik Sediaan Cair
topenae enaeus us vannamei vannamei ) dan Kualitas terhadap Performa Udang Vaname ( L i top Air”
Selama menyusun usulan penelitian, penulis sangat banyak mendapatkan masukan, arahan dan dukungan dari berbagai pihak, oleh karena itu penulis mengucapkan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada semua pihak yang telah banyak membantu. Penulis Penulis mengucapkan terimakasih kepada : 1.
Dr. Ir. Iskandar, M.Si sebagai Ketua Komisi Pembimbing yang telah memberikan banyak saran, dukungan beserta bimbingannya
dalam
penyelesain Usulan Penelitian ini dan selaku Dekan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran 2.
Ir. Ibnu Dwi Buwono, M.Si. sebagai Anggota Komisi Pembimbing sekaligus wali dosen penulis yang telah memberikan saran, dukungan beserta bimbingannya dalam penyelesaian penyelesaian Usulan Penelitian ini
3.
Dr. Ratu Safitri, MS. sebagai Anggota Komisi Pembimbing yang telah memberikan
banyak
saran,
dukungan
beserta
bimbingannya
dalam
penyelesaian Usulan Penelitian ini 4.
Dr. Yuli Andriani, S.Pi, MP. sebagai Ketua Komisi Penelaah yaang telah memberikan koreksi dalam penyusunan Usulan Penelitian ini
5.
Prof. Dr. Ir. Junianto, MP. selaku Ketua Program Studi Perikanan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Padjadjaran
6.
Kedua orang tua, Samsudin (ayah) dan Darkinih (ibu) serta Casyatun (Kakak) yang selalu memberikan do’a, semangat serta dukungan materil mate ril maupun moril kepada penulis
7.
Keluarga Six Sense, Sense, Novi Puspitawati, Imas Siti Nurhalimah, Ristiana Dewi, Indra Adiwiguna dan Rizki Nugraha Saputra yang telah banyak membantu dan mendukung dalam usulan Penelitian ini
iii
8.
Teman-teman anak satu penelitian yang telah banyak membantu dalam penyusunan usulan penelitian penelitian ini
9.
FPIK 2014, yang telah memberikan pengalaman dan kebersamaan sehingga menjadi pelajaran bagi penulis untuk melangkah kedepannya. Penulis telah berusaha sebaik mungkin dalam penyusunan usulan
penelitian ini, oleh karena itu penulis sangat mengharapkan kritik dan saran yang membangun agar menjadi masukkan yang berguna bagi penulis. Akhir kata, penulis berharap semoga usulan penelitian ini dapat memberikan manfaat bagi penulis sendiri sehingga lancar dalam penelitian yang akan dilaksanakan. dilaksanakan.
Jatinangor, September 2017
Sunendi
iv
DAFTAR ISI
Bab
Halaman
v
DAFTAR TABEL
Nomor
Judul
vi
Halaman
DAFTAR GAMBAR
Nomor
Judul
vii
Halaman
BAB I PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Kegitan budidaya perairan merupakan salah satu komoditas ekonomi yang menguntungkan dan sangat penting bagi beberapa negara. Menurut data FishstatJ FAO (2016) Negara Indonesia merupakan salah satu negara yang memiliki produksi perairan terbesar kedua di dunia setelah China. Hal ini didukung oleh data statistik dari Badan Pusat Statistik (BPS) Indonesia tahun 2015, bahwa produksi budidaya akuakultur Indonesia mengalami peningkatan setiap tahunnya. Pada tahun 2011, produksi perairan Indonesia mencapai 13.643 ton, tahun 2012 sebesar 15.505 ton, dan tahun 2013 sebesar 19.406 ton. Untuk rata-rata kontribusi dari perikanan budidaya dari tahun 2010-2014 sebesar 62,35% (KKP 2015). Usaha peningkatan produksi akuakultur juga merupakan salah satu program strategi pemerintah yang menjadikan produksi akuakultur/perairan sebagai alternatif ketahanan pangan nasional dalam pemenuhan protein hewani, mengingat pesatnya peningkatan laju pertumbuhan penduduk Indonesia setiap tahun sehingga diperlukan adanya diversifikasi pangan. Menurut Rizqi (2016) upaya peningkatan kualitas produksi perairan meliputi tiga aspek utama yaitu 1). Kualitas organisme akuatik yang dapat diindikasikan dengan tingginya nilai sintasan ( survival rate), pertumbuhan yang cepat dengan diimbangi pertambahan panjang & berat, dan terhindar dari penyakit ataupun berpenyakit, 2). Kualitas lingkungan perairan, dan 3). Efisiensi pakan organisme akuatik. Salah satu komoditas unggulan yang memiliki profit yang tinggi adalah budidaya udang vaname ( Litopenaeus vannamei). Menurut Asia Pacific Aquaculture (2015) dimana pada tahun 2014 produksi udang vaname Indonesia sudah menempati posisi kedua di pasar udang Amerika Serikat (AS) dengan jumlah 504.000 MT (metrik ton). Produksi udang vaname dari tahun 2010 hingga tahun 2013 mengalami kenaikan sebesar 19,46% sehingga pemerintah melalui Dirjen Perikanan Budidaya (DJPB) menargetkan produksi udang vaname sebesar
1
2
671.400 MT pada tahun 2017 dengan kenaikan sebesar 12,00% setiap tahunnya hingga 2019 (DJPB 2015). Udang vaname memiliki nama atau sebutan yang beragam di masingmasing negara, seperti whiteleg shrimp (Inggris), camaron patiblanco (Spanyol) dan crevette pattes blances (Perancis). Udang yang biasa disebut udang putih pasifik ini merupakan pengganti udang windu ( Penaeus monodon) karena sering mengalami masalah yang dihadapi salah satunya adalah mudah terserang oleh penyakit vibriosis dan penyakit virus bercak putih atau systemic ectodhermal mesodhermal bacculo virus (SEMBV). Peralihan komoditas ini didukung oleh SK Menteri Kelautan dan Perikanan No. 41/2001 tanggal 12 Juli 2001 yang secara resmi melepas udang vaname sebagai varietas unggul (Sukenda et al . 2009) Udang vaname memiliki keunggulan dari udang windu salah satunya lebih resisten terhadap virus. Menurut Fera (2004) udang vaname memiliki keunggulan lebih resisten terhadap kondisi lingkungan dan penyakit, mudah dibudidayakan, pertumbuhan yang cepat dan paling digemari di pasar Amerika Serikat. Hal tersebut menunjukkan udang vaname memiliki potensi yang besar untuk terus dikembangkan. Upaya untuk memenuhi target produksi tidak bisa hanya mengandalkan pemberian pakan. Permasalahan inilah yang perlu diselesaikan untuk menyokong produksi udang vaname setiap tahunnya. Salah satu solusi untuk menyelesaikan permasalahan tersebut yaitu dengan adanya penggunaan probiotik
guna
mempercepat
pertumbuhan
dari
udang
vaname
serta
meminimalisir kematian udang vaname sehingga target produksi dapat tercapai. Probiotik merupakan makanan tambahan berupa sel-sel mikroba hidup yang memiliki pengaruh menguntungkan bagi inang melalui bentuk keterikatan (asosiasi) dengan inang dan komunitas mikroba lingkungannya (Verschuere et al., 2000).
Penggunaan
probiotik
merupakan
pengendalian
biologis
dengan
menggunakan musuh alami untuk mengurangi kerugian yang ditimbulkan oleh organisme pengganggu hingga batas yang bisa diterima. Mekanisme kerja probiotik pada akuakultur yaitu menekan atau mencegah berkembangnya organisme patogen. Efisiensi penerapan probiotik dalam akuakultur akan sangat bergantung dari pengetahuan spesies dan atau strain dari bakteri probiotik. Prinsip
3
mekanisme kerja probiotik yaitu menggunakan konsorsium mikroba untuk mengatasi berbagai masalah yang terjadi pada perairan budidaya. Bakteri probiotik yang digunakan dalam penelitian ini adalah bakteri bakteri yang biasa digunakan dalam penambahan terhadap pakan diantaranya Bacillus sp., Lactobacillus sp., Saccharomyces sp., dan Nitrosomonas. Bakteri probiotik menghasilkan enzim yang mampu mengurai senyawa kompleks menjadi senyawa yang lebih sederhana sehingga lebih mudah digunakan oleh ikan. Salah satu probiotik yang baik untuk pencernaan adalah Bacillus sp. Kurniasih (2011) menyatakan bahwa enzim yang dihasilkan oleh Bacillus sp. adalah enzim protease yang memiliki fungsi untuk memecah protein menjadi asam amino. Holt et al . (1994) menyatakan bahwa Lactobacillus sp., yang digunakan dalam akuakultur berperan dalam menekan pertumbuhan bakteri patogen. Lactobacillus sp. tersebar luas di lingkungan terutama pada hewan dan produk makanan, sayur-sayuran, biasanya mendiami saluran usus burung mamalia, vagina mamalia, dan tidak bersifat patogen. Shin (1966) dalam Haetami dkk. (2008) menyatakan bahwa keuntungan umum yang diperoleh dari kultur Saccharomyces hidup ialah dapat meningkatkan pertumbuhan bobot badan, efisiensi ransum, dan feed intake. Effendi (2003) menyatakan bahwa nitrit merupakan bentuk peralihan antara amonia dan nitrat. Oksidasi amonia menjadi nitrit dilakukan oleh bakteri Nitrosomonas sedangkan oksidasi nitrit menjadi nitrat dilakukan oleh Nitrobacter. Nitrat ini tidak bersifat toksis terhadap organisme akuatik. Sehingga dengan pemberian probiotik mampu mengatasi masalah yang timbul akibat budidaya intensif. Beberapa
penelitian
mengenai
efektivitas
penggunaan
berbagai
konsentrasi probiotik pada udang vaname telah dilakukan pada skala laboratorium dengan menggunakan akuarium atau fiber glass sebagai tempat budidaya udang. Namun hasil dari penelitian tersebut ketika diterapkan pada tambak budidaya memiliki potensi hasil yang berbeda. Hal ini disebabkan karena kondisi lingkungan yang berbeda antara penelitian yang dilakukan di akuarium dan penerapan pada tambak budidaya.
4
Berdasarkan latar belakang tersebut maka diperlukan penelitian mengenai sejauh mana pengaruh pemberian probiotik sediaan cair dalam berbagai dosis yang berbeda terhadap performa udang vaname dan kualitas perairan tambak. 1.2
Identifikasi Masalah
Berdasarkan latar belakang yang telah dikemukakan, didapatkan beberapa permasalahan sebagai berikut : 1.
Sejauh mana pengaruh pemberian probiotik sediaan cair terhadap laju pertumbuhan dan kelangsungan hidup udang vaname.
2.
Bagamaina kualitas air media budidaya udang vaname setelah diberikan probiotik sediaan cair ?
1.3
Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian probiotik dalam sediaan cair terhadap performa udang vaname dan kualitas perairannya serta untuk mengetahui konsentrasi terbaik probiotik sediaan cair yang diberikan pada wadah budidaya. 1.4
Kegunaan Penelitian
Penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi mengenai dosis terbaik penggunaan probiotik sediaan cair dalam budidaya udang vaname skala besar terhadap performa udang vaname yang meliputi pertumbuhan dan kelangsungan hidup udang vaname dan kualitas perairannya. 1.5
Kerangka Pemikiran
Pada kegiatan budidaya udang secara intensif dapat menurunkan daya dukung lingkungan budidaya, teknologi ini telah menimbulkan masalah kualitas air yang cukup serius, baik karena ketidaksesuaian lahan maupun karena usaha petambak yang terus menggenjot produksi tanpa memikirkan daya dukung lingkungan. Budidaya udang di banyak tempat telah menimbulkan kerusakan ekosistem mangrove dan pencemaran perairan pesisir yang parah karena penerapan teknologi budidaya intensif tanpa pertimbangan dampak yang ditimbulkan.
5
Timbunan bahan organik dari sisa pakan, dan ekskresi yang mengendap di dasar tambak memicu penurunan daya dukung tambak, khususnya alga bloom yang menyebabkan deplesi oksigen dan keracunan pada udang (Mulyana 2011). Hal ini dapat menimbulkan penyakit pada udang budidaya karena disebabkan meningkatnya BOD (Biological Oxygen Demand) dan protein dari sisa pakan yang akan meningkatkan kadar amoniak yang membuat kualitas perairan buruk. Menurut Ghufran (2009), penyakit didefinisikan sebagai segala sesuatu yang dapat menimbulkan gangguan suatu fungsi atau struktur dari alat-alat tubuh atau sebagian alat tubuh, baik secara langsung maupun tidak langsung. Dalam budidaya udang, faktor hama dan penyakit harus menjadi perhatian utama. Kegagalan usaha budidaya dapat disebabkan oleh hama dan penyakit, karena dapat menginfeksi dan menganggu pertumbuhan udang yang dipelihara. Sebagian besar para petani tambak menggunakan bahan kimia untuk mengatasi timbulnya penyakit pada udang budidaya, seperti penggunaan antibiotik. Salah satu alternatif untuk menghindari penyakit yang menyerang ikan budidaya adalah penggunaan probiotik. Probiotik adalah produk yang tersusun oleh biakan mikroba atau pakan alami mikroskopik yang bersifat menguntungkan dan memberikan dampak bagi peningkatan keseimbangan mikroba saluran usus hewan inang yakni dengan cara memodifikasi komunitas mikroba atau berasosiasi dengan inang, memperbaiki nilai nutrisi dan pemanfaatan pakan, meningkatkan respon inang terhadap penyakit dan memperbaiki kualitas lingkungan ambangnya (Fuller 1987 dalam Verschuere et al . 2000). Wang et al. (2008) menyatakan bahwa bakteri probiotik menghasilkan enzim yang mampu mengurai senyawa kompleks menjadi sederhana sehingga siap digunakan ikan. Berdasarkan pengertian tersebut maka aplikasi probiotik tidak hanya berfungsi sebagai agen biokontrol untuk mengurangi serangan penyakit atau bioremediasi untuk memperbaiki kualitas lingkungan, melainkan dapat pula meningkatkan nilai nutrisi pakan dan laju penyerapan nutrien sehingga memungkinkan udang mencapai pertumbuhan yang maksimum. Penambahan probiotik dalam pakan dapat mempercepat pertumbuhan ikan atau udang. Praditia (2009) melaporkan bahwa pemberian probiotik melal ui pakan
6
menghasilkan laju pertumbuhan bobot udang windu sebesar 7.47-9.03 %. Arief dkk. (2014) menyatakan bahwa pemberian probiotik komersil dengan kandungan bakteri Lactobacillus sp., Acetobacter, Rhodobacter, dan yeast sebanyak 5% pada ikan
lele
sangkuriang
diperoleh
rata-rata
pertumbuhan
harian
sebesar
2,88 gram/hari. Penelitian mengenai probiotik pada pakan juga dilakukan oleh Arief dkk (2008), yang menyatakan bahwa pemberian probiotik komersil dengan kandungan bakteri Lactobacillus sebanyak 5% pada ikan nila diperoleh laju pertumbuhan 3.17 g/hari. Noviana et al. (2014) menyatakan bahwa penambahan probiotik yang mengandung bakteri Lactobacillius, Actinomycetes sp, dan Saccharmyces cerevisiae sebesar (10 g/kg) pada benih ikan nila dapat meningkatkan keberadaan jumlah bakteri yang masuk ke dalam saluran pencernaan dan mendapatkan hasil laju pertumbuhan sebesar 3.2 gram/hari. Selanjutnya Andriani et. al (2016) melaporkan bahwa konsorsium mikroba B. subtilis, B. lichenoformes, L. plantarum dan Nitrosomonas sebesar 5% dalam bahan pembawa susu skim menghasilkan performa terbaik pada uji biologis udang vaname PL12 dengan nilai laju pertumbuhan harian 0,58%, kelangsungan hidup 100% dan konversi pakan 0,942. 1.6
Hipotesis
1.6.1
Hipotesis kerja
Jika probiotik cair yang terdiri dari konsorsium mikroba atau terdiri dari lebih satu jenis mikroba dapat berpengaruh terhadap peningkatan performa udang vaname dan kualitas air pada wadah budidaya , maka variasi dosis dalam perlakuan akan memberikan perbedaan hasil pada performa dan sintasan ( survival rate) udang vaname serta kualitas perairannya. 1.6.2
Hipotesis statistik
H0 : Pemberian probiotik dengan dosis dalam setiap perlakuan yaitu 5% dan 10% tidak memberikan perbedaan performa pada Litopenaeus vannamei.
7
H1 : Pemberian probiotik dengan dosis dalam setiap perlakuan yaitu 5% dan 10% memberikan perbedaan performa pada Litopenaeus vannamei.
BAB II TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Udang Vaname (Litepenaeus vannamei )
2.1.1
Klasifikasi Udang Vaname (Litepenaeus vannamei )
Udang vaname (Gambar 1) merupakan jenis udang yang sudah banyak dikembangkan di negara-negara bagian Amerika Selatan seperti Meksikio, Panama, Kolombia dan Ekuador (Nadhif 2016). Kesuksesan budidaya udang tersebut akhirnya diikuti oleh para pembudidaya di Indonesia sekarang.
Gambar 1. Udang Vaname ( Litepenaeus vannamei) (Sumber : www.afieshsp.com)
Menurut Haliman dan Adijaya (2005) klasifikasi udang yang memiliki nama atau sebutan yang beragam di masing-masing negara, seperti whiteleg shrimp (Inggris), crevette pattes blances (Perancis) dan camaron patiblanco (Spanyol) adalah sebagai berikut: Kingdom Sub kingdom Filum Sub filum Kelas Sub kelas Super ordo Ordo Sub ordo Famili Genus Spesies
: Animalia : Metazoa : Arthropoda : Crustacea : Malacostraca : Eumalacostraca : Eucarida : Decapoda : Dendrobranchiata : Penaeidae : Litopenaeus : Litopenaeus vannamei
8
9
2.1.2
Morfologi Udang Vaname (Litepenaeus vannamei )
Morfologi udang vaname atau yang biasa disebut dengan udang putih memiliki tubuh berbuku-buku dan aktivitas berganti kulit luar (eksoskeleton) secara periodik (moulting ). Bagian tubuh udang putih sudah mengalami modifikasi sehingga dapat digunakan untuk keperluan makan, bergerak, dan membenamkan diri kedalam lumpur (burrowing ), serta memiliki organ sensor, seperti pada antenna dan antenula (Haliman dan Adija ya 2004). Kordi (2007) juga menjelaskan bahwa kepala udang putih terdiri dari antena, antenula dan 3 pasang maxilliped. Kepala udang putih juga dilengkapi dengan 3 pasang maxilliped dan 5 pasang kaki berjalan (periopoda). Maxilliped sudah mengalami modifikasi dan berfungsi sebagai organ untuk makan. Bentuk periopoda beruas-ruas yang berujung di bagian dactylus. Dactylus ada yang berbentuk capit (kaki ke-1, ke-2, dan ke-3) dan tanpa capit (kaki ke-4 dan ke-5). Diantara coxa dan dactylus terdapat ruang berturut-turut disebut basis, ischium, merus, carpus dan cropus. Bagian ischium terdapat duri yang bisa digunakan untuk mengidentifikasi beberapa spesies penaeid dalam taksonomi (Haliman dan Adijaya 2005). Menurut Wayban dan Sweeney (1991) bentuk rostrum udang putih memanjang, langsing dan pangkalnya hamper berbentuk segitiga. Uropoda berwarna merah kecoklatan dengan ujungnya kuning kemerah-merahan atau sedikit kebiruan, kulit tipis transparan. Warna tubuhnya putih kekuningan terdapat bintik-bintik coklat dan hijau pada ekor. Spesies ini dapat tumbuh mencapai panjang tubuh 23 cm. Morfologi udang vaname ( Litopenaeus vannamei) dapat dilihat pada Gambar 2.
10
Gambar 2. Morfologi Udang Vaname ( Litepenaeus vannamei) (Sumber : Warsito 2012)
Ciri khusus yang dimiliki oleh udang vaname adalah adanya pigmen karotenoid yang terdapat pada bagian kulit. Kadar pigmen karotenoid akan berkurang seiring dengan pertumbuhan udang, karena saat mengalami molting sebagian pigmen yang terdapat pada kulit akan ikut terbuang. Keberadaan pigmen karotenoid memberikan
warna
putih
kemerahan
pada
tubuh
udang
(Haliman dan Adijaya 2005). Udang jantan dan betina dapat dibedakan dengan melihat alat kelamin luarnya. Alat kelamin luar jantan disebut petasma, yang terletak di dekat kaki renang pertama, sedangkan lubang saluran kelaminnya terletak di antara pangkal kaki jalan keempat dan kelima (Adiyodi 1970). 2.1.3
Siklus Hidup Udang Vaname (Litepenaeus vannamei )
Wyban dan Sweeney (1991) menyatakan bahwa siklus hidup udang vaname sebelum ditebar di tambak yaitu stadia nauplius, stadia zoea, stadia mysis, dan stadia post larva. Siklus hidup udang vaname dapat dilihat pada Gambar 3.
Gambar 3. Siklus Hidup Udang Vaname (Litepenaeus vannamei ) (Sumber : Warsito 2012)
11
1. Nauplius Stadia nauplius terbagi atas enam tahapan yang lamanya berkisar 46-50 jam. Larva berukuran 0,32 – 0,58 mm. Sistem pencernaan belum sempurna dan memiliki cadangan makanan berupa kuning telur sehingga tidak membutuhkan makanan dari luar. 2. Zoea Stadia zoea terbagi atas tiga tahapan, berlangsung selama sekitar 4 hari. Larva zoea berukuran 1,05 – 3,30 mm. Pada stadia ini larva mengalami molting sebanyak 3 kali, yaitu stadia zoea 1, zoea 2 dan zoea 3. Stadia zoea sangat peka terhadap perubahan lingkungan terutama kadar garam dan suhu air. Zoea mulai membutuhkan makanan berupa fitoplankton. 3. Mysis Stadia mysis terbagi atas tiga tahapan, yang lamanya 4-5 hari. Bentuk udang stadia mysis mirip udang dewasa, bersifat planktonis dan bergerak mundur dengan cara membengkokkan badannya. Udang stadia mysis mulai menggemari pakan berupa zooplankton, misalnya Artemia salina. 4. Post larva Pada stadia post larva sudah seperti udang dewasa. Hitungan stadia berdasarkan hari, misalnya PL1 berarti post larva berumur satu hari. Stadia larva ditandai dengan tumbuhnya pleopoda yang berambut ( setae) untuk renang. Stadia larva bersifat bentik atau organisme penghuni dasar perairan, dengan pakan yang disenangi berupa zooplankton. 2.1.4
Tingkah Laku dan Fisiologis Udang Vaname (Litepenaeus vannamei )
Hendrajat (2003) menyatakan bahwa udang semula digolongkan ke dalam hewan pemakan segala bangkai (omnivorusscavenger ) atau pemakan detritus. Usus udang menunjukkan bahwa udang vaname adalah merupakan omnivora, namun cenderung karnivora yang memakan crustacea kecil dan polychaeta. Menurut Haliman dan Adijaya (2005), beberapa tingkah laku udang yang perlu diketahui adalah sebagai berikut :
12
1.
Sifat Nocturnal Secara alami udang merupakan hewan nocturnal yaitu sifat binatang yang
aktif mencari makan pada waktu malam dan siang harinya udang vaname lebih suka beristirahat. Baik membenamkan diri pada lumpur maupun menempel pada suatu benda yang terbenam. 2. Sifat Kanibalisme Udang putih suka memangsa sejenisnya. Sifat kanibalisme sering muncul pada udang sehat yang sedang tidak ganti kulit, kemudian menyerang udang yang lemah terutama pada saat ganti kulit (moulting) atau udang sakit. Sifat kanibal akan muncul terutama bila udang tersebut dalam keadaan kekurangan pakan pada padat tebar tinggi. 3. Ganti Kulit (moulting ) Moulting merupakan suatu proses pergantian kutikula lama digantikan dengan kutikula yang baru. Kutikula adalah kerangka luar udang yang keras (tidak elastis). Oleh karena itu, untuk menjadi lebih besar maka udang vaname perlu melepas kulit lama dan menggantinya dengan kulit baru. Haliman dan Adijaya (2005) mengatakan bahwa moulting pada udang ditandai dengan seringnya udang muncul kepermukaan air sambil meloncatloncat. Gerakan tersebut bertujuan untuk membantu melonggarkan kulit luar udang
dari
tubuhnya.
Gerakan
tersebut
merupakan
salah
satu
cara
mempertahankan diri karena cairan moulting yang dihasilkan dapat merangsang udang lain untuk mendekat dan memangsa (kanibalisme). Saat moulting berlangsung, otot perut melentur, kepala membengkak, dan kulit luar bagian perut melunak. Dengan sekali hentakan, kulit luar udang dapat terlepas. 4. Daya Tahan Udang pada waktu masih berupa benih sangat tahan pada perubahan kadar garam (salinitas). Sifat tersebut dinamakan euryhaline atau memiliki toleransi yang tinggi terhadap perubahan garam. Sifat lain yang menguntungkan adalah ketahanan terhadap perubahan suhu dan sifat ini dikenal dengan eurythermal . 5. Menyukai hidup di dasar (bentik) 6. Tipe pemakan lambat tetapi terus-menerus (continous feeder ).
13
2.1.5
Habitat Udang Vaname (Litepenaeus vannamei )
Haliman dan Adijaya (2005) menyatakan bahwa udang vaname adalah udang asli dari perairan Amerika Latin yang kondisi iklimnya subtropis. Udang vaname pada habitat aslinya hidup pada kedalaman kurang lebih 70 meter. Udang vaname hidup di daerah pasifik Barat, sepanjang Peru bagian utara, melalui Amerika Tengah dan Selatan sampai Meksiko bagian utara, yang mempunyai suhu air normal lebih dari 20ºC sepanjang tahun. Udang vaname ini hidup di habitat laut tropis. Zakaria (2010) menyatakan bahwaa udang dewasa hidup dan memijah di habitat laut lepas dan larva akan bermigrasi dan menghabiskan masa larva sampai post larva di pantai, laguna atau daerah mangrove. Udang vaname sudah menyebar karena diperkenalkan diberbagai belahan dunia karena sifatnya yang relatif mudah dibudidayakan, termasuk di Indonesia. Udang vaname bersifat nokturnal, yaitu aktif mencari makan pada malam hari. Proses perkawinan pada udang vaname ditandai dengan loncatan betina secara tiba-tiba. Saat meloncat inilah, betina mengeluarkan sel-sel telur dan saat yang bersamaan, udang jantan mengeluarkan sperma, sehingga sel telur dan sperma bertemu. Proses perkawinan berlangsung kira-kira satu menit. Sepasang udang vaname berukuran 30-45 gram dapat menghasilkan telur sebanyak 100.000-250.000 butir. 2.1.4
Pakan dan Kebiasaan Makan
Pakan merupakan faktor yang sangat penting dalam budidaya udang vaname karena menyerap biaya yang berkisar antara 60-70% dari total biaya operasional. Pemberian pakan yang sesuai dengan kebutuhan akan memacu pertumbuhan dan perkembangan udang vaname secara optimal, sehingga produktivitasnya bisa ditingkatkan. Prinsipnya adalah semakin padat penebaran benih udang berarti ketersediaan pakan alami semakin sedikit dan ketergantungan pada pakan buatan semakin meningkat (Topan 2007). Seiring dengan usaha intensifikasi budidaya, maka ketergantungan pada sediaan pakan alami semakin berkurang dan sebaliknya suplai energi semakin banyak ditentukan oleh pakan buatan yang diberikan. Dalam hal ini diperlukan pakan dengan kadar nutrisi yang
14
seimbang serta pemberian yang cukup untuk mendukung pertumbuhan yang optimal dan pada akhirnya untuk peningkatan pendapatan hasil usaha budidaya. Udang vaname membutuhkan pakan dengan kandungan protein yang lebih rendah daripada udang windu. Kebutuhannya berkisar antara 18-35 persen dengan rasio konversi pakan 1:1,2 yaitu satu kilogram daging pada ikan dapat dihasilkan dari pemberian 1,2 kilogram pakan. Hal tersebut tentu saja akan membuat biaya produksi untuk pakan udang vaname lebih rendah daripada biaya produksi untuk pakan udang windu (Brown 1991). Salah satu prinsip yang perlu diketahui dalam penerapan pakan untuk kepentingan budidaya adalah program pemberian pakan secara efektif (effective feeding program). Hal ini memerlukan pengetahuan tentang kebutuhan nutrien dari kultivan yang akan dipelihara, kebiasan dan tingkah
laku
makan,
serta
kemampuan
kultivan
dalam
mencerna
dan
menggunakan nutrien esensial yang diberikan. Pakan yang diberikan harus mampu menyediakan nutrien yang dibutuhkan oleh kultivan seperti protein dan asam amino esensial, lemak dan asam lemak, energi, vitamin, dan mineral. Pakan yang diberikan selama periode budidaya berlangsung sangat sulit untuk dikontrol secara tepat baik jumlah maupun waktu. Oleh karena itu pengaturan jumlah pakan senantiasa dilakukan sesuai dengan tingkat nafsu makan, pertumbuhan dan mortalitas udang. Jika pakan diberikan terlalu sedikit dapat berakibat pertumbuhan lambat, bahkan memicu kanibalisme terutama pada pemeliharaan dengan kepadatan tinggi. Demikian pula sebaliknya, pemberian pakan berlebih dapat menimbulkan masalah. Selain sebagai limbah, sisa pakan dapat menyebabkan penurunan mutu air di tambak. Seberapa besar jumlah pakan yang dikonsumsi oleh udang dipengaruhi oleh beberapa faktor, yaitu : jenis pakan, ukuran udang, suhu air, padat tebar, cuaca, kualitas air dan status kesehatan udang itu sendiri. Faktor-faktor tersebut perlu diperhatikan guna memaksimalkan penggunaan pakan bagi kultivan. Suhu misalnya, mempunyai efek nyata terhadap konsumsi pakan dan pertumbuhan. Konsumsi pakan udang vaname mencapai optimal pada suhu 27-31 oC. Suhu di atas atau di bawah kisaran tersebut menyebabkan konsumsi pakan menurun.
15
Frekuensi pakan ditentukan berdasarkan tingkat kestabilan pakan dalam air dan laju konsumsi pakan oleh udang. Pemberian pakan lebih sering dapat memperbaiki rasio konversi pakan, serta mengurangi jumlah nutrien yang hilang (leaching ). Pada stadia benih, frekuensi pakan lebih sering oleh karena laju metabolisme pada saat itu sangat tinggi. Idealnya, udang stadia post larva diberi pakan setiap 2-3 jam sekali (12-8 kali sehari). Seiring dengan pertumbuhan udang di tambak, maka frekuensi pakan dapat dikurangi dan umumnya maksimum 6 kali selama 24 jam. FCR ( food convertion ratio) merupakan salah satu indikator seberapa jauh pakan yang diberikan dapat dimanfaatkan oleh udang untuk mendukung pertumbuhan dan kelulus hidupan. FCR menggambarkan jumlah pakan yang diperlukan untuk menaikkan 1 kg berat udang. Semakin rendah nilai FCR, maka pakan digunakan semakin efisien. Umumnya nilai FCR kurang dari 2 masih dinyatakan baik. FCR yang tinggi kemungkinan disebabkan oleh beberapa faktor, seperti : over feeding , defisiensi nutrien tertentu, kualitas air yang buruk. Faktorfaktor tersebut perlu terus dimonitor, sehingga program pemberian pakan lebih efisien. Udang vaname termasuk golongan omnivora. Beberapa sumber pakan udang vaname, antara lain : udang kecil (rebon), fitoplankton, copepoda, polychaeta, larva kerang dan lumut. Udang vaname juga termasuk dalam pemangsa sejenis (kanibalisme). Udang makan atas dasar penciuman dan bukan penglihatan, sehingga pakan harus mengandung atraktan yang baik sehingga mudah dikenali oleh udang. Pada saat udang mulai mengambil pakan, palatabilitas (cita rasa) menjadi penting dan menentukan apakah pakan yang diberikan ditelan atau tidak. Udang vaname mencari dan mengenali pakan menggunakan sinyal kimiawi berupa getaran dengan bantuan organ sensor yang terdiri dari bulu-bulu halus ( setae) yang terdapat pada ujung anterior antennulae, bagian mulut, capit, antenna dan maxilliped . Udang akan berenang menggunakan kaki jalan yang memiliki capit untuk mendekati sumber pakan. Pakan langsung dijepit menggunakan capit kaki jalan, kemudian pakan dimasukkan ke dalam mulut.
16
Selanjutnya pakan yang berukuran kecil masuk ke dalam kerongkongan dan esofagus. Bila pakan yang dikonsumsi berukuran lebih besar, akan dicerna secara kimiawi
terlebih
dahulu
oleh
maxilliped
di
dalam
mulut
(Haliman dan Adijaya 2005). Manajemen pemberian pakan pada udang vaname dapat dilihat dalam Tabel 1. Tabel 1. Manajemen Pakan pada Udang Vaname Umur udang (hari) 1-15 16-30 31-45 45-60 61-75 76-90 91-105 96-120
Ukuran (gr)
Bentuk pakan
Nomor pakan
Dosis pakan (%)
PL 10 -01 1,1-2,5 2,6-3,0 5,1-8,0 8,1-14,0 14,1-18,0 18,1-20,1 20,1-22,5
Crumble Crumble Pelet Pelet Pelet Pelet Pelet Pelet
0 1+2 2 2+3 3 3+4 4 4
25-75% 15-25% 10-15% 7-10% 5-7% 3-5% 3-5% 2-4%
Frekuensi pakan / hari 3 4 5 5 5 5 5 5
Sumber: DJPB, Jumlah presentase pakan yang diberikan dibandingkan berat tubuh dalam WWF Perikanan (2014)
2.2
Probiotik
Matthews (1988) mendefinisikan probiotik sebagai mikroorganisme hidup dalam bentuk cair yang mengandung media tempat tumbuh dan produksi metabolisme. Fuller (1989) menambahkan probiotik adalah suatu mikrobial hidup yang diberikan sebagai biosuplemen pakan, memberikan keuntungan bagi induk semang dengan cara memperbaiki keseimbangan populasi mikroba usus. Haddadin et al . (1996) menyatakan bahwa probiotik adalah organisme beserta substansinya yang dapat mendukung keseimbangan mikroflora dalam saluran pencernaan. Mikroba bisa dikatakan mempunyai status probiotik bila memenuhi sejumlah kriteria seperti bisa diisolasi dari hewan inang dengan spesies yang sama, mampu menunjukkan pengaruh yang menguntungkan pada hewan inang, tidak bersifat patogen, bisa transit dan bertahan hidup dalam saluran pencernaan hewan inang. Sejumlah mikroba harus mampu bertahan hidup pada periode yang lama selama masa penyimpanan (Budiansyah 2004).
17
Penggunaan probiotik ada dua macam yaitu melalui lingkungan (air dan dasar tambak) dan melalui oral (dicampurkan ke dalam pakan). Aplikasi melalui oral dapat meningkatkan kualitas pakan dengan menambahkan bahan aditif dalam bentuk probiotik yang berisi mikroba pengurai ke dalam pakan dan juga berfungsi untuk memperbaiki kualitas pakan dengan cara melalui proses penguraian sehingga dapat meningkatkan nilai nutrisi pakan (Mansyur dan Malik 2008). Menurut Soeharsono et al. (2010), mekanisme kerja probiotik pada akuakultur adalah: 1.
Kompetisi eksklusif (competitive exclusion) terhadap bakteri patogen misalnya Pseudomonas terhadap beberapa Vibrio sebagai patogen pada udang
2.
Pengaktifan respon imun atau menstimulasi imunitas
3.
Kompetisi untuk reseptor perlekatan pada epitel sal uran pencernaan
4.
Kompetisi untuk mendapatkan nutrient
5.
Mengeluarkan substansi antibakteri
6.
Dekomposisi zat organik yang tidak diharapkan, sehingga lingkungan akuakultur menjadi lebih baik Wang et al. (2008) dalam Ahmadi (2012) menyatakan bakteri probiotik
menghasilkan enzim yang mampu mengurai senyawa kompleks menjadi sederhana sehingga siap digunakan ikan. Dalam meningkatkan nutrisi pakan, bakteri yang terdapat dalam probiotik memiliki mekanisme dalam menghasilkan beberapa enzim untuk pencernaan pakan seperti amilase, protease, lipase dan selulose. Enzim tersebut yang akan membantu menghidrolisis nutrien pakan (molekul kompleks), seperti memecah karbohidrat, protein dan lemak menjadi molekul yang lebih sederhana akan mempermudah proses pencernaan dan penyerapan dalam saluran pencernaan ikan (Putra 2010). 2.2.1
Mikroba Probiotik
1. Bacillus subtilis Bacillus subtilis memiliki bentuk batang dengan ukuran 0,3- 3,2 μm x1,27 7,0μm (Gambar 4). Bacillus subtilis sebagian motil, flagellumnya khas lateral, membentuk endospora dimana endosporanya tidak lebih dari satu sel sporangium,
18
merupakan bakteri Gram positif dan bersifat aerobik sejati atau anaerobik fakultatif (Pelczar dan Chan 2012). Ciri pembeda yang menonjol dari bakteri ini adalah kemampuannya dalam membentuk endospora. Endosporanya memiliki resistensi tinggi terhadap panas dan dapat bertahan hidup lama (Pelczar dan Chan, 2012).
Gambar 4. Sel Bacillus subtilis dengan SEM. (Sumber : Morikawa et al . 2006)
Menurut Garrity et al. (2004) secara taksonomi Bacillus subtilis dapat diklasifikasikan sebagai berikut: Filum Kelas Ordo Famili Genus Spesies
: Firmicutes : Bacilli : Bacillales : Bacillaceae : Bacillus : Bacillus subtilis
Bacillus subtilis berperan dalam dekomposisi awal terhadap bahan organic (Voset et al. 2009). Bacillus subtilis membutuhkan kondisi tertentu untuk mencapai pertumbuhan yang optimal. Suhu yang diperlukan untuk pertumbuhan optimal sebesar 28 – 30 oC, sedangkan suhu minimal pada pertumbuhannya sebesar 5 – 20 oC dan suhu maksimal sebesar 45 – 55 oC. Selain itu, faktor pertumbuhan yang penting bagi Bacillus subtilis adalah pH, yaitu sebesar 5,5 – 8,5. Batas pH untuk pertumbuhan Bacillus subtilis belum ditentukan (Voset et al. 2009). Bacillus subtilis yang diberikan pada hewan akuatik mampu meningkatkan
19
pertumbuhan dan resisten terhadap infeksi bakteri patogen Vibrio. Hal ini mungkin dipengaruhi oleh keberadaan bakteri probiotik yang meningkatkan sistem imunitas tubuh inang tersebut. Menurut Rengpipat et al . (2000) aplikasi probiotik di air pemeliharaan telah dilaporkan mampu memperbaiki kualitas air. 2. Lactobacillus plantarum Lactobacillus plantarum (Gambar 5) merupakan bakteri Gram positif dengan sel tidak menghasilkan spora, non-motil, aerob fakultatif, kadang-kadang mikroaerofilik, tumbuh lebih baik dengan adanya oksigen tereduksi sebagian anaerob, dan tumbuh optimum pada suhu 30 - 40ºC yang ditemukan dalam berbagai relung. Relung ini termasuk susu, daging, sayur fermentasi, dan saluran pencernaan manusia.
Gambar 5. Sel Lactobacilus plantarum dengan SEM. (Sumber : Bronze 2008)
Klasifikasi Lactobacillus plantarum menurut Garrity et al. (2004) adalah
sebagai berikut: Filum Kelas Ordo Famili Genus Spesies
: Firmicutes : Bacilli : Lactobacillales : Lactobacillaceae : Lactobacillus : Lactobacillus plantarum
Koloni Lactobacillus plantarum pada media agar biasanya 2-5 mm, konveks, penuh opak dan tidak berpigmen, sel berbentuk batang regular dengan ukuran 0,5-1,2 x 1,0-10,0 µm; kemoorganotrofik, dan tumbuh hanya pada media kompleks; metabolisme fermentatif dan sakaroklastik, sebagian dari produk
20
akhirnya adalah laktat; tidak mereduksi nitrit, gelatin tidak mencair, katalase dan sitokrom negatif. Bakteri Lactobacillus plantarum akan mengubah karbohidrat menjadi asam laktat, kemudian asam laktat dapat menciptakan suasana pH yang asam. Dalam keadaan asam, Lactobacillus plantarum memiliki kemampuan untuk menghambat bakteri patogen dan bakteri pembusuk yang ada (Del gado et al. 2001 dalam Rostini 2007). Suasana asam pada usus akan meningkatkan sekresi dari enzim proteolitik dalam saluran pencernaan yaitu merombak protein menjadi asam amino yang kemudian diserap oleh usus. Gatesoupe (1999) dalam Mulyadi (2011) juga menyatakan bahwa aktivitas bakteri dalam pencernaan organisme budidaya akan berubah dengan cepat apabila ada suatu mikroba yang masuk melalui pakan atau air yang dapat menyebabkan terjadinya perubahan keseimbangan bakteri yang sudah ada dengan bakteri yang masuk dalam saluran pencernaan. 3. Nitrosomonas sp. Bakteri Nitrosomonas sp. (Gambar 6) merupakan bakteri yang berperan dalam proses oksidasi amonia menjadi nitrit dalam siklus nitrogen. Secara morfologis bakteri ini berbentuk batang pendek, motil dan non motil, terdapat dalam bentuk konsorsium, berpasangan sebagai rantai pendek maupun sendiri. Bakteri ini adalah bakteri Gram negatif dan memiliki sitomembran. Sel tumbuh bebas pada medium dan membentuk matriks tipis. Bakteri ini dapat tumbuh optimum pada suhu 5 - 30 °C dan pH optimum 5,8 - 8,5 serta hidup pada habitat air laut, air tawar dan tanah (Holt et al. 1994).
Gambar 6. Sel Nitrosomonas sp. dengan SEM (Sumber : Zavarzin et al. 2004)
21
Klasifikasi Nitrosomonas sp. menurut Garrity et al. (2004) adalah sebagai berikut : Filum Kelas Ordo Famili Genus Spesies
: Proteobacteria : β-Proteobacteria : Nitrosomonadales : Nitrosomonadaceae : Nitrosomonas : Nitrosomonas sp.
Nitrosomonas sp. adalah bakteri yang mengoksidasi amoniak menjadi nitrit sebagai proses metabolisme. Nitrosomonas sp. ditemukan di tanah, air tawar dan pada permukaan bangunan, terutama di daerah yang mengandung tingkat tinggi senyawa nitrogen. Nitrosomonas sp. lebih menyukai pH optimum 7,5 - 8,5 dan kisaran suhu 20-30 °C (Boyd 1990). Nitrosomonas sp. memiliki kemampuan mengubah amoniak yang melibatkan bakteri dengan persamaan reaksi (Effendi 2003) sebagai berikut: 2NH3 + 3O2
Nitrosomonas sp.
2NO2- + 2H+ + 2H2O
4. Nitrobacter sp. Bakteri Nitrobacter sp. (Gambar 7) berperan dalam siklus nitrogen dengan mengoksidasi nitrit yang merupakan hasil dari oksidasi bakteri Nitrosomonas sp. menjadi nitrat. Nitrobacter sp. menggunakan energi oksidasi dari ion nitrit menjadi nitrat.
Gambar 7. Sel Nitrobacter sp.dengan SEM (Sumber : Zavarzin et al. 2004)
Klasifikasi Bakteri Nitrobacter sp. menurut Garrity et al. (2004) adalah sebagai berikut :
22
Filum Kelas Ordo Famili Genus Spesies
: Proteobacteria : α-Proteobacteria : Rhizobiales : Bradyrhizobiaceae : Nitrobacter : Nitrobacter sp.
Habitat Nitrobacter sp.berada dalam tanah, air tawar, laut, payau, lumpur dan batuan berpori-pori. Berbentuk batang, elipsoidal dan spiral, Gram negatif, sel motil dan non motil serta kemoautotrof. Sel motil memiliki falgel polar atau lateral. Nitrobacter sp. membutuhkan pH yang optimum untuk pertumbuhannya antara 5,8 - 8,5 dan 7,3 - 7,5 (Holt et al. 1994). Pada proses tahap kedua reaksi diperankan oleh bakteri Nitrobacter sp. yang melakukan oksidasi dari nitrit ke nitrat dengan persamaan reaksi (Effendi 2003) sebagai berikut : 2NO2- + O2
Nitrobacter sp.
2NO3-
5. Saccharomyces Saccharomyces adalah fungi uniseluler yang juga disebut ragi, berbentuk bulat atau oval, berukuran 5-12µ, berfluktuasi membentuk bud , dan setelah dewasa akan pecah menjadi sel induk. Strukturnya mempunyai dinding polisakarida tebal yang menutup protoplasma. Shin (1966) dalam Haetami, dkk., (2008) mengemukakan bahwa keuntungan umum yang diperoleh dari kultur Saccharomyces hidup ialah dapat meningkatkan pertumbuhan bobot badan, efisiensi ransum, dan feed intake. Keuntungan tersebut diperoleh berdasarkan mekanisme kerja kultur Saccharomyces sebagai berikut (Haetami, dkk. 2008): 1.
Menstimulasi appetite (nafsu makan), karena ragi ini memiliki flavor natural yang menarik (asam glutamat) yang dapat memperbaiki palatabilitas.
2.
Mengandung vitamin B komplek
3.
Mengasimilasi protein dan mensekresi asam amino
4.
Menyediakan mineral dalam bentuk chelat setelah sel ragi mengalami otolisis dan sejumlah mineral siap diabsorpsi oleh ternak.
5.
Memproduksi sejumlah enzim amylase, lipase, protease dan lai-lain
23
6.
Sel aktif mempunyai materi absorbative yang kuat dalam dinding selnya dan dapat berperan sebagai nutrient reservoir dan pH buffer .
7.
Meningkatkan
homeostatis
usus,
karena
mempunyai
kemampuan
memindahkan oksigen untuk menciptakan kondisi anaerob sebagai fasilitas pertumbuhan bakteri anaerob. Salah satu mikroba Saccharomyces yang digunakan adalah S. cerevisiae yang memiliki keuntungan tidak membunuh mikroba bahkan menambah jumlah mikroba yang menguntungkan, berbeda dengan antibiotik dapat membunuh mikroba yang merugikan maupun menguntungkan tubuh, dan mempunyai efek resistensi. Demikian pula dengan penggunaan S. cerevisiae
sebagai bahan
imunostimulan. Imunostimulan berfungsi untuk meningkatkan kesehatan tubuh dengan cara meningkatkan sistem pertahanan terhadap penyakit-penyakit yang disebabkan bakteri, cendawan, virus dan yang lainnya, sedangkan penggunaan antibiotika hanya membunuh bakteri. Meskipun demikian kita harus berhati-hati dalam menentukan dosis probiotik yang dianjurkan dalam penggunaannya, dimana bila berlebihan dapat menimbulkan penyakit Saccharomikosis. Hal tersebut terjadi karena terganggunya keseimbangan mikroflora di dalam tubuh, akibat
populasi
khamir
meningkat
melebihi
populasi
mikroba
lainnya
(Ahmad 2005). Di perairan alami, nitrit (NO2) biasanya ditemukan dalam jumlah yang sangat sedikit. Lebih sedikit daripada nitrat, karena bersifat tidak stabil dengan keberadaan oksigen. Nitrit merupakan bentuk peralihan (intermediate) antara amonia dan nitrat (nitrifikasi), dan antara nitrat dan gas nitrogen (denitrifikasi). Denitrifikasi berlangsung pada kondisi anaerob. Nitrifikasi yang merupakan proses oksidasi amonia menjadi nitrat dan nitrit adalah proses yang penting dalam siklus nitrogen dan berlangsung pada kondisi aerob.
2.3
Parameter Kualitas Air
Kualitas air secara umum menunjukkan mutu atau kondisi air yang dikaitkan dengan suatu kegiatan atau keperluan tertentu. Parameter kualitas air yang akan
diamati terdiri dari salinitas, suhu, derajat keasaman, oksigen terlarut dan amonia.
24
2.3.1
Salinitas
Salinitas adalah kadar garam terlarut dalam air. Salinitas juga dapat mengacu pada kandungan garam dalam tanah. Kandungan garam pada sebagian besar danau, sungai dan saluran air alami sangat kecil sehingga air di tempat ini dikategorikan sebagai air tawar. Kandungan garam sebenarnya pada air ini secara definisi kurang dari 0,05 ppt. Jika lebih dari itu, air dikategorikan sebagai air payau atau menjadi saline bila konsentrasinya 3 sampai 5 ppt. Lebih dari 5 ppt, disebut brine. Salinitas dinyatakan dalam satuan g/kg, ppt atau promil (‰). Faktor-faktor yang mempengaruhi salinitas: 1.
Penguapan, makin besar tingkat penguapan air laut di suatu wilayah, maka salinitasnya tinggi dan sebaliknya pada daerh yang rendah tingkt penguapan air lautnya, maka daerah itu rendah kadar garamnya.
2.
Curah hujan, makin besar/ banyak curah hujan di suatu wilayah laut maka salinitas air laut akan rendah dan sebaliknya makin sedikit/ kecil curah hujan maka salinitas akan tinggi. Menurut Haliman dan Adijaya (2005) salinitas yang baik untuk
pertumbuhan udang vaname berkisar antara 10-35 ppt, sedangkan menurut Subyaakto et. al (2009) salinitas 15-20 ppt masih dalam batas yang layak untuk pemeliharaan udang vaname. Menurut SNI 7246:2006 kisaran salinitas optimal untuk pemeliharaan udang vaname adalah 15-25 ppt. Perubahan salinitas secara mendadak dapat menyebabkan kematian pada udang. 2.3.2
Suhu
Suhu adalah besaran yang menyatakan derajat panas dingin suatu benda dan alat yang digunakan untuk mengukur suhu adalah thermometer . Pengukuran suhu cenderung menggunakan indera peraba, tetapi dengan adanya perkembangan teknologi maka diciptakan thermometer untuk mengukur suhu dengan valid. Suhu suatu badan perairan dipengaruhi oleh musim, lintang, ketinggian dari permukaan laut, waktu dalam hari, sirkulasi udara,penutupan awan, dan aliran serta kedalaman badan air.
25
Peningkatan suhu mengakibatkan penurunan kelarutan gas dalam air, misalnya gas O2, CO2, N2, CH4, dan sebagainya (Haslam 1995 dalam Effendi 2003). Peningkatan suhu perairan sebesar 10ºC menyebabkan terjadinya konsumsi oksigen 2-3 kali lipat. Namun, peningkatan suhu juga disertai dengan penurunan kadar oksigen terlarut sehingga keberadaan oksigen sering kali tidak mampu memenuhi kebutuhan oksigen bagi organisme akuatik untuk melakukan proses metabolisme
dan
respirasi
serta
menyebabkan
terjadinya
peningkatan
dekomposisi bahan organik oleh mikroba (Effendi 2003). Menurut Haliman dan Adijaya (2005) suhu optimum pertumbuhan udang vaname berada pada kisaran 26º-32ºC, sedangkan kisaran yang optimal untuk pemeliharaan udang vaname menurut SNI7246:2006 yaitu 28,5º-31,5ºC.
2.3.3
Derajat Keasaman (pH)
Derajar Keasaman (pH) adalah salah satu pengukuran yang sangat penting dalam berbagai bidang (industri, farmasi, manufaktur, produksi makanan dan sebagainya) yaitu pengukuran ion hidrogen dalam suatu larutan. Merupakan suatu ekspresi dari konsentrasi ion Hidrogen (H) di dalam air, besarannya dinyatakan dalam minus logaritma dari konsentrasi ion H. Larutan dengan harga pH rendah dinamakan asam sedangkan yang harga pH-nya tinggi dinamakan basa. Skala pH terentang dari 0 (asam kuat) sampai 14 (basa kuat) dengan 7 adalah harga dengan mewakili air netral. Derajat keasaman mempengaruhi tingkat kesuburan perairan karena mempengaruhi kehidupan jasad renik. Perairan asam akan kurang produktif, malah akan membunuh hewan budidaya. Jika pH rendah akan menyebabkan konsentrasi DO berkurang, menurunnya konsumsi oksigen, aktivitas pernapasan naik dan selera makan menjadi berkurang (Kordi dan Tancung 2007). Derajat keasaman mempengaruhi toksisitas suatu senyawa kimia. Senyawa amonium yang dapat terionisasi banyak ditemukan pada perairan yang memiliki pH rendah. Amonium bersifat tidak toksik (innocuous). Namun pada suasana alkalis (pH tinggi) lebih banyak ditemukan amonia yang terionisasi ( unionized )
26
dan bersifat toksik. Amonia tak terionisasi ini lebih mudah terserap ke dalam tubuh organisme akuatik dibandingkan dengan amonium (Tebbut 1992 dalam Effendi 2003). Sebagian besar biota akuatik sensitif terhadap perubahan pH dan menyukai pH sekita 7-8,5. Nilai pH sangat mempengaruhi proses kimiawi perairan, misalnya proses nitrifikasi akan berakhir jika pH rendah (Effendi 2003). Menurut Wardoyo dan Setiyanto 1998 dalam Solihin 2010 nilai pH air yang ideal untuk budidaya udang windu adalah 6,8-9,0, sedangkan pH antara 4,5-6,0 dan 9,8-11,0 dapat mengganggu metabolisme udang. Pada pH< 4,0 dan >10 udang akan mati. Menurut Patang (2012) pH 7,35- 7,44 masih layak untuk pemeliharaan larva udang, sedangkan menurut SNI 7246:2006 kisaran pH optimal untuk pemeliharaan optimal untuk pemeliharaan udang vaname adalah 7,5-8,5. Tabel 2. menyajikan hubungan antara pH air dan kehidupan udang budidaya. Tabel 2. Hubungan Antara pH Air dan Kehidupan Udang Windu pH air Pengaruhnya terhadap udang <4,0 4,0-4,5 4,6-6,0 6,1-7,5 7,6-8,0 8,1-8,7 8,8-9,5 9,0-11 >11,0
Bersifat racun terhadap udang Tidak berproduksi, titik mati asam Produksi rendah Produksi sedang Cukup Baik bagi budidaya udang Baik bagi pemeliharaan udang Produksi mulai menurun Titik mati alkalis Bersifat racun terhadap udang
(Sumber : Kordi dan Tancung 2007)
2.3.4
Oksigen Terlarut (DO)
Oksigen merupakan salah satu gas yang terlarut dalam perairan. Kadar oksigen yang terlarut di perairan alami bervariasi, tergantung pada suhu, salinitas, turbulensi air dan tekanan atmosfer. Semakin besar suhu dan ketinggian ( altitude) serta semakin kecil tekanan atmosfer, kadar oksigen terlarut semakin kecil (Jeffries dan Mills 1996 dalam Effendi 2003). Semakin tinggi suatu tempat dari permukaan laut, tekanan atmosfer akan semakin rendah. Setiap peningkatan ketinggian suatu tempat sebesar 100m diikuti dengan penurunan tekanan hingga 8-9 mm Hg. Setiap peningkatan kedalaman
27
sebesar 10m pada kolom air disertai dengan peningkatan tekanan sekitar 1 atmosfer (Cole 1988 dalam Effendi 2003). Kadar oksigen terlarut juga berfluktuasi secara harian (diurnal ) dan musiman, tergantung pada pencampuran (mixing ) dan pergerakan (turbulence) massa air, aktivitas fotosintesis, respirasi, dan limbah (effluent ) yang masuk ke badan air. Peningkatan suhu sebesar 1ºC akan meningkatkan konsumsi oksigen sekitar 10% (Brown 1987 dalam Effendi 2003). Dekomposisi bahan organik dan oksidasi bahan anorganik dapat mengurangi kadar oksigen terlarut hingga mencapai nol (anaerob). Hubungan antara kadar oksigen terlarut jenuh dan suhu yaitu semakin tinggi suhu, kelarutan oksigen semakin berkurang. Kelarutan oksigen dan gas-gas lain juga berkurang dengan meningkatnya salinitas sehingga kadar oksigen di laut cenderung lebih rendah daripada kadar oksigen di perairan air tawar. Menurut Raharjo dkk,. (2003), konsentrasi oksigen terlarut pada tambak yang baik untuk budidaya udang vaname adalah 3,5 – 7,5 mg/l. Level oksigen terlarut (DO) minimum yang dapat ditolerir ikan dengan aman bergantung pada suhu hingga batas – batas tertentu untuk tiap spesies. Kelarutan oksigen dalam air naik sejalan dengan penurunan suhu. Pada kolam, DO dapat berubah secara dramatis selama periode 24 jam. 2.3.5
Amonia
Amonia (NH3) dan garam-garamnya bersifat mudah larut dalam air. Ion amonium adalah bentuk transisi dari amonia. Amonia banyak digunakan dalam proses produksi urea, industri bahan kimia (asam nitrat, amonium fosfat, amonium nitrat dan amonium sulfat), serta industri bubur kertas dan kertas ( pulp dan paper ). Sumber amonia di perairan adalah pemecahan nitrogen organik (protein dan urea) dan nitrogen anorganik yang terdapat di dalam tanah dan air, yang berasal dari dekomposisi bahan organik (tumbuhan dan biota akuatik yang telah mati) oleh mikroba dan jamur. Proses ini dikenal dengan istilah amonifikasi, ditunjukkan dalam persamaan reaksi N organik + O2 → NH3 – N + O2 → NO2 – N+ O2 → NO3 – N
28
Amonifikasi
nitrifikasi
Reduksi nitrat (denitrifikasi) oleh aktivitas mikroba pada kondisi anaerob, yang merupakan proses yang biasa terjadi pada pengolahan limbah, juga menghasilkan gas amonia dan gas-gas lain, misalnya N 2O, NO2, NO dan N2 (Novontny dan Olem, 1994). Feses dari biota akuatik yang merupakan limbah aktivitas metabolisme juga mengeluarkan amonia. Sumber amonia yang lain adalah reduksi gas nitroge yang berasal dari proses difusi udara atmosfer, limbah industri, dan domestik. Amonia yang terdapat dalam mineral masuk ke badan air melalui erosi tanah. Di perairan alami, pada suhu dan tekanan normal amonia berada dalam bentuk gas dan membentuk kesetimbangaan dengan gas amonium. Kesetimbangan antara gas amonia dan gas amonium ditunjukkan dalam reaksi ini. NH3 + H2O ↔ NH4+ + OHSelain terdapat dalam bentuk gas, amonia membentuk kompleks dengan beberapa ion logam. Amonia juga dapat terserap ke dala bahan-bahan tersuspensi dan koloid sehingga mengendap di dasar perairan. Amonia yang terukur di perairan berupa amonia total (NH3 dan NH4+). Amonia bebas tidak dapat terionisasi, sedangkan amonium (NH4+) dapat terionisasi. Presentase amonia bebas meningkat dengan meningkatnya nilai pH dan suhu perairan. Pada pH 7 atau kurang, sebagian besar amonia akan mengalami ionisasi. Sebaliknya, pada pH lebih besar dari 7, amonia tak terionisasi yang bersifat toksik terdapat dalam jumlah yang lebih banyak (Novontny dan Olem, 1994). Amonia bebas (NH 3) yang tidak terionisasi (unionized ) bersifat toksik terhadap organisme akuatik. Toksisitas amonia terhadap organisme akuatik akan meningkat jika terjadi penurunan kadar oksigen terlarut, pH, dan suhu. Amonia juga jarang ditemukan pada perairan yang mendapat cukup pasokan oksigen. Sebaliknya, pada wilayah anoksik (tanpa oksigen) yang biasanya terdapat di dasar perairan, kadar amonia relatif tinggi (Effendi 2003). Kualitas air udang vaname dapat dilihat dalam Tabel 3. Parameter
DO
Tabel 3. Kualitas Air Udang Vaname Optimal Toleransi >4ppm >3 ppm
29
Temperatur Salinitas pH NH3 NO2 HS2 Alkalinitas Kecerahan
28-32◦C 15-25 ppt 7.5-8 0 ppm 0 ppm 0 ppm 100-120ppm 25-40 cm
20-35◦C 0-35 < 35 ppt 7-8.5 0.1-0.5 ppm 0.1-1 ppm 0.001 ppm 100ppm
Sumber : WWF Perikanan, Kualitas Air Udang Vaname (2014)
2.3.6
Kelangsungan hidup dan Pertumbuhan
Perbandingan antara jumlah individu yang hidup pada akhir percobaan dengan jumlah individu pada awal percobaan atau peluang hidup dalam suatu faktor biotik maupun abiotik mempengaruhi kelangsungan hidup ikan. Parasit, kompetitor, umur, kemampuan adaptasi, penanganan manusia dan kepadatan populasi dipengaruhi oleh faktor biotik, sedangkan sifat kimia dan fisika dari suatu lingkungan air dipengaruhi oleh faktor abiotik (Rika 2008). Kelangsungan hidup ikan sangat dipengaruhi oleh kualitas air. Karena air sebagai media tumbuh sehingga harus memenuhi syarat dan harus diperhatikan kualitas airnya, seperti: suhu, kandungan oksigen terlarut (DO) dan keasaman (pH). Air yang digunakan dapat membuat ikan melangsungkan hidupnya (Effendi 2003). Menurut Zonneveld et al. (1991) dalam Solihin (2010) kualitas air yang tidak stabil akan mempengaruhi kelangsungan hidup organisme perairan. Selain itu kelangsungan hidup udang juga dipengaruhi oleh pemangsaan (kanibalisme) pada udang itu sendiri. Pertumbuhan dalm istilah yang dapat dirumuskan sebagai pertambahan atau berat dalam suatu waktu, sedangkan pertumbuhan bagi populasi sebagai pertambahan jumlah Pertumbuhan merupakan proses biologis yang kompleks dimana banyak faktor yang mempengaruhinya. Faktor yang mempengaruhi pertumbuhan digolongkan menjadi dua bagian besar yaitu faktor internal dan eksternal. Faktor-faktor yang mempengaruhi ada yang dapat dikontrol dan ada juga yang tidak. Faktor internal adalah faktor yang sukar di kontrol, diantaranya ialah keturunan, sex, umur. Faktor eksternal meliputi faktor kimia, fisika dan
30
biologi perairan dan yang paling utama mempengaruhi pertumbuhan ialah makanan dan suhu perairan (Effendie 1997). Pertumbuhan ikan pada lingkungan optimal sangat dipengaruhi oleh pakan yang diberikana. Pakan yang mengandung nutrisi lengkap dan seimbang akan memacu pertumbuhan ikan. Pertumbuhan ikan akan terjadi jika pakan yang dikonsumsi memiliki kadar protein dan imbangan-energi yang tepat sehingga protein digunakan sebagai bahan penyusun tubuh untuk pertumbuhan, sedangkan energi non protein dari lemak dan karbohidrat digunakan sebagai sumber energi (Adelina et. al. 2000). Pertumbuhan terjadi apabila energi yang dikonsumsi lebih besar dari energi yang digunakan untuk berbagai aktivitas tubuh. Sari (1999) dalam Patang (2012) menyatakan bahwa pertumbuhan udang dapat diduga berdasarkan peningkatan ukuran pada waktu dan frekuensi pergantian kulit. Namun cara tersebut memiliki kelemahan karena pada crustacea meskipun pertumbuhan berhubungan langsung dengan pergantian kulit, dapat saja terjadi tanpa adanya pertumbuhan (Wickins 1976 dalam Patang 2012). Ramadhana et al. (2012) dalam penelitiannya menunjukkan hasil bahwa penambahan probiotik yang mengandung Lactobacillus sp. ke dalam pakan dengan dosis 3%, 5% dan 7% mampu meningkatkan kandungan gizi pakan tersebut dan menurunkan serat kasar dibandingkan tanpa pemberian probiotik, serta dapat meningkatkan jumlah bakteri dalam mukosa usus dan kecernaan ikan nila sehingga dapat meningkatkan pertumbuhan berat dan panjang ikan nila. Pemberian probiotik melalui pakan berpengaruh nyata terhadap laju pertumbuhan baik bobot maupun panjang serta konversi pakan, namun tidak mempengaruhi kelangsungan hidup (Praditia 2009). 2.3.7
Efisiensi Pemberian Pakan
Efisiensi pemberian pakan merupakan perbandingan antara pertambahan bobot tubuh yang dihasilkan dengan jumlah total pakan yang diberikan selama pemeliharaan. Semakin besar nilai efisiensi pakan, maka semakin baik ikan memanfaatkan pakan yang diberikan sehingga semakin besar bobot daging yang dihasilkan (Djadjasewaka 1985).
31
Perhitungan efisiensi pakan sangat penting dalam proses budidaya ikan karena dapat menentukan apakah sejumlah pakan yang diberikan telah digunakan secara efisien. Pakan dapat dikatakan memberikan pertumbuhan yang baik bila nilai efisiensi pemberian pakan lebih dari 50% atau bahkan mendekati 100% (Craig dan Helfrich 2002). Pengukuran efisiensi pertumbuhan, baik dilakukan untuk menganalisa kualitas pakan dalam hubungannya dengan jenis ikan tertentu. Setiap jenis ikan mungkin memiliki respon yang berbeda terhadap jenis pakan yang sama (Bey 2007). 2.3.8
Pencernaan Ikan
Pencernaan merupakan suatu proses perubahan molekul dari ukuran besar menjadi lebih kecil atau senyawa yang tidak dapat diserap oleh usus. Pencernaan makanan adalah hidrolisis protein menjadi asam amino atau polipeptida sederhana, dari karbohidrat menjadi gula sederhana, dan lipid menjadi gliserol dan asam lemak (Almatsier 2005). Alat pencernaan ikan terdiri atas saluran pencernaan dan kelenjar pencernaan, pada umumnya saluran pencernaan ikan berturut-turut dimulai dai segmen rongga mulut, faring, eshopagus, lambung, pylorus, usus, rectum dan anus. Kemampuan cerna ikan terhadap suatu jenis makanan tergantung kepada faktor fisik dan faktor kimia makanan, jenis makanan, umur ikan, sifat sisik dan kimia air serta sejumlah enzim pencernaan (National Research Council 1983). Enzim pencernaan yang disekresikan ke dalam saluran pencernaan berasal dari mukosa lambung, pankreas dan mukosa usus. Enzim-enzim tersebut berperan sebagai katalisator dalam hidrolisis protein, lemak dan karbohidrat menjadi bahan-bahan yang sederhana (Western dan Jenning 1997 dalam Nurjaman 2011). Proses kerja enzim dalam pencernaan ikan hampir semuanya sama yaitu menghidrolisis protein, lemak dan karbohidrat. Enzim amilase dan lipase tidak hanya terdapat pada ikan herbivor saja tetapi juga terdapat pada ikan karnivor (Mudjiman 2009). Tingkat ketercernaan pakan dibentuk oleh kualitas dan kuantitas protein yang terkandung dalam pakan terutama asam amino esensial (Agung et al. 2007).
32
Menurut Handajani (2010) tersedianya asam amino essensial yang seimbang dan lengkap dalam pakan akan mempengaruhi kecepatan proses sintesis protein yang akan menyebabkan laju pertumbuhan meningkat. Sintesis protein di dalam sel kadarnya berubah-ubah tergantung tersedianya asam amino yang berasal dari pakan. Semakin banyak pakan yang dicerna berarti semakin baik pula zat pakan yang dapat diserat oleh tubuh ikan, dan semakin banyak yang diserap makan sintesis protein di dalam sel akan semakin meningkat, hal tersebut mengakibatkan volume sel membesar dan pembelahan sel semakin cepat, makan pertumbuhan meningkat.
BAB III METODOLOGI
3.1
Tempat dan Waktu Penelitian
Pemeliharaan
udang
dilakukan
di
hatchery Laboratorium
Kolam
Percobaan Ciparanje Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran sedangkan pengujian amonia dilakukan di Laboratorium Manajemen Sumberdaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran. Waktu penelitian dimulai pada bulan Maret-April 2017. Waktu yang digunakan adalah 35 hari, 7 hari untuk persiapan dan 28 hari untuk penelitian. 3.2
Alat dan Bahan
3.2.1
Alat
Alat yang digunakan selama penelitian adalah sebagai berikut : 1.
Akuarium kaca berukuran 55 cm x 30 cm x 40 cm sebanyak 15 buah, digunakan sebagai wadah pemeliharaan hewan uji dengan volume 30 L/ akuarium
2.
Aerator, batu aerasi, selang aerasi, digunakan untuk menyuplai oksigen ke dalam wadah pemeliharaan masing-masing sebanyak 15 buah
3.
Blower merk Aquila Q6 dengan kekuatan 4,5 watt digunakan untuk mengatur tekanan udara yang akan dialirkan ke wadah pemeliharaan
4.
Pipa paralon ukuran 1 inchi, digunakan sebagai media penyalur udara menuju selang aerator
5.
Heater merk Rising Heat9000-100W dengan kekuatan 100 watt digunakan untuk mengatur dan menstabilkan suhu
6.
Refraktometer digunakan untuk mengukur salinitas
7.
pH meter merk Lutron dengan tipe PH-201 digunakan untuk mengukur pH air dalam media pemeliharaan
8.
DO meter merk Hanna tipe HI 9146 digunakan untuk mengukur Oksigen Terlarut (DO)
9.
Termometer, digunakan untuk mengukur suhu media pemeliharaan
33
34
10.
Spektrofotometer, digunakan untuk mengukur kadar amonia dalam media pemeliharaan
11.
Bak fiber sebanyak 2 buah, digunakan sebagai wadah stok air laut dan udang vaname
12.
Timbangan analitik ketelitian 0,001 gram, digunakan untuk menimbang probiotik
13.
Timbangan digital merk scout pro dengan ketelitian 0,01 gram, digunakan untuk menimbang pakan dan hewan uji
14.
Sendok teh, digunakan untuk mengambil pakan probiotik dan pakan udang vaname
15.
Kertas
label
digunakan
untuk
memberi
keterangan
pada
wadah
pemeliharaa 16.
Penggaris dengan ketelitian 1mm digunakan untuk mengukur panjang udang vaname
17.
Scoop Net digunakan untuk mengambil udang vaname
18.
Trashbag
digunakan
untuk
menutup
akuarium
dan
membantu
menstabilkan suhu 19.
Kamera digital, digunakan sebagai alat untuk mendokumentasikan setiap kegiatas hasil penelitian
3.2.2
Bahan
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah sebagai berikut : 1.
Hewan uji yang digunakan dalam penelitian adalah udang vaname PL-25
2.
Air laut yang digunakan adalah 30 L X 15 unit percobaan yaitu 450 L, untuk mengantisipasi adanya penguapan air laut, maka air yang disiapkan yaitu sebanyak 600L. Air laut di ambil dari pantai Batu Hiu, Kabupaten Pangandaran.
3.
EDTA digunakan untuk membersihkan akuarium
4.
Pakan yang digunakan adalah pakan udang merk Feng Li Ukuran FL 2A yang memiliki kadar protein 41%, kadar lemak 5%, kadar serat 2%, kadar abu 13% dan kadar air sebesar 11% (PT. Matahari Sakti 2017)
35
5.
Konsorsium probiotik Bacillus sp., Lactobacillus sp., Saccharomyces sp., dan Nitrosomonas yang digunakan berasal dari Mikrobiologi Universitas Padjadjaran.
3.3
Prosedur penelitian
Tahapan yang dilakukan dalam penelitian ini adalah tahap persiapan dan tahap penelitian. 3.3.1
Tahap persiapan
Tahapan pengambilan air laut dan udang vaname PL-25 dilakukan dari Batu Hiu, Pangandaran menuju ke Jatinangor, Sumedang menggunakan kolbak. Lama pengangkutan, kepadatan, ratio air dan oksigen serta suhu dalam pengemasan udang disesuaikan dengan SNI 7586:2010.
Tahapan persiapan penambahan probiotik pada pakan diawali dengan menghitung biomassa udang vaname pada setiap akuarium. Hasil perhitungan biomassnya akan menghasilkan berapa jumlah pakan yang akan diberikan kepada udang vaname. Setelah itu, jumlah probiotik dihitung sesuai dengan perlakuan. Pakan kemudian dicampurkan dengan probiotik menggunakan putih telur Tahapan persiapan akuarium diawali dengan pencucian akuarium, selang aerasi serta baru aerasi menggunakan deterjen dan EDTA. Selang dan batu aerasi di rendam terlebih dahulu menggunakan EDTA lalu dibilas dengan air dan dikeringkan. Penempataan perlakuan akuarium dilakukan secara acak dengan bantuan random pada microsoft excel. Setelah akuarium, selang aerasi dan batu aerasi kering, pasang semua set aerator pada setiap akuarium. Isi akuarium sebanyak 30L per akuarium kemudian pasang heater . Kode perlakuan diletakkan diatas batas air. Hewan uji terlebih dahulu diaklimatisasi selama 1 hari agar dapat beradaptasi dengan kondisi akuarium.
36
3.3.2
Tahap penelitian
Pemeliharaan hewan uji dilakukan selama 28 hari menggunakan akuarium dengan masing-masing akuarium diisi 30 ekor udang vaname. Penambahan probiotik dilakukan pada udang sesuai dengan biomassa dan konsentrasi pada setiap perlakuan. Pemberian pakan dilakukan selama tiga kali sehari yaitu pukul 07.00, 12.00 dan 19.00 WIB. Jumlah pakan yang diberikan disesuaikan dengan feeding rate (FR) yaitu sebesar 15% disesuaikan dengan pertumbuhannya. Dosis pakan yang diberikan mengikuti pertumbuhan udang dan dihitung setiap tujuh hari sekali. Pengukuran kualitas air berupa suhu, salinitas, oksigen terlarut dan pH serta survival rate dilakukan setiap hari sedangkan pengukuran pertumbuhan dan perhitungan kadar amonia dilakukan setiap tujuh hari sekali. Penyiponan dilakukan untuk mengurangi sisa pakan yang tidak termakan dan kotoran dari udang vaname agar kualitas air lebih terjaga, penambahan air dilakukan sesuai jumlah air yang terbuang. 3.4
Metode Penelitian
Metode penelitian dilakukan secara eksperimental dengan menggunakan metode Rancangan Acak Lengkap (RAL). Penelitian ini terdiri atas lima perlakuan dengan tiga ulangan, yaitu penambahan probiotik sediaan kering pada pakan sebesar : Perlakuan A : kontrol / tanpa pemberian probiotik Perlakuan B : Penambahan konsentrasi probiotik 4% Perlakuan C : Penambahan konsentrasi probiotik 6 % Perlakuan D : Penambahan konsentrasi probiotik 8 % Perlakuan E : Penambahan konsentrasi probiotik 10% Model linear dari rancangan ini adalah sebagai berikut ( Gasperz, 1991) : Xij = µ + τij + εij Keterangan : Xij = Hasil pengamatan pada perlakuan ke-i ulangan ke-j µ = Rata-rata umum τij = Pengaruh perlakuan ke-i εij = Pengaruh faktor random perlakuan ke-i ulangan ke-j
37
3.5
Parameter Pengamatan
3.5.1
Kelangsungan Hidup
Tingkat
kelangsungan
hidup
hewan
uji
dapat
diketahui
dengan
menggunakan rumus Effendie (1997): SR =
X 100%
Keterangan : SR = Kelangsungan hidup (%) Nt = Jumlah udang pada akhir penelitian (ekor) No = Jumlah udang pada awal penelitian (ekor) 3.5.2
Laju Pertumbuhan Harian
Pengukuran laju pertumbuhan harian digunakan menggunakan rumus Effendie (1997) : G=
(ln − ln)
X 100%
Keterangan : G = Laju pertumbuhan (%) Wt =Rata-rata bobot harian ikan di akhir penelitian (g) Wo = Rata- rata bobot harian ikan di awal penelitian (g) t = Lama pengamatan (hari) 3.5.3
Pertumbuhan Panjang
Perhitungan pertambahan panjang mutlak dilakukan dengan menggunakan rumus sebagai berikut Effendie (1979) : L = Lt- Lo Keterangan : L = Pertumbuhan panjang mutlak Lt = Panjang rata-rata individu pada waktu t (mm) Lo = Panjang rata-rata individu pada awal penelitian (mm) 3.5.4
Pertumbuhan Biomassa Mutlak (W)
Perhitungan Pertumbuhan biomassa mutlak menggunakan rumus Effendie (1979): W = Wt – Wo Keterangan : W = Pertumbuhan mutlak (gram) Wt = Bobot biomassa pada akhir penelitian (gram) Wo = Bobot biomassa pada awal penelitian (gram)
38
3.5.5
Efisiensi Pakan
Penghitungan Efisiensi pakan dengan rumus Zonneveld et al.(1991): FE=
(+)−0
X 100%
Keterangan : FE Wt Wo D F
= Efisiensi pakan (%) = Bobot ikan uji pada akhir penelitian (g) = Bobot ikan uji pada awal penelitian (g) = Bobot total ikan yang mati selama pemeliharaan (g) = Jumlah total pakan yang diberikan (g)
3.5.6
Parameter Kualitas Air
Tabel. 4 Parameter Kualitas Air yang diamati selama penelitian Waktu Parameter Satuan Alat Pengamatan Kimia - NH3 mg/L Spektrofotometer Setiap 7 hari - pH pH meter Setiap hari - DO mg/L DO meter Setiap hari - Salinitas ppt Refraktometer Setiap hari Fisik - Suhu ºC Thermometer Setiap hari 3.6
Analisis Data
Data penelitian dianalisis berdasarkan parameter yang diukur dalam penelitian. Parameter kualitas air dianalisis secara deskristif
dengan cara
membandingkan dengan standar kualitas air. Pengaruh perlakuan dianalisis menggunakan analisis sidik ragam dengan uji F dan perbedaan antar perlakuan diuji dengan uji Duncan dengan taraf kepercayaan 95% (Gasperz 1991).
DAFTAR PUSTAKA
Adelina, I. Mokoginta, R. Affandi d. Jusadi. 2000. Pengaruh Kadar Protein dan Rasio Energi Protein Pakan Berbeda terhadap Kinerja Pertumbuhan Benih Ikan Bawal Air Tawar (Colossoma macropomum). Jurnal J.11. Pert. Indo 9 (2): 31-36. Agung, M. U. K., K, Haetami dan Y, Mulyani. 2007. Penggunaan Limbah Kiambang Jenis Duckweed dan Azola dalam Pakan dan Implikasinya pada Ikan Nilem. Laporan Penelitian Dasar UNPAD. Bandung. 32 hlm. Ahmadi, H., N Iskandar dan Kurniawati. 2012. Pemberian Probiotik dalam Pakan terhadap Pertumbuhan Lele Sangkuriang (Clarias sp.) Pada Pendederan II. UNPAD. 3 (4) : 99-107. Almatsier, S. 2005. Prinsip Dasar Ilmu Gizi. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. 37 hlm. Andriani, Y., R. Safitri., E. Rochima. 2016. Laporan Akhir Penelitian Hibah Stranas. Universitas Padjadjaran. Anwar, S., M. Arief dan Agustono. 2014. Pengaruh Pemberian Probiotik Komersial Pada Pakan Terhadap Laju Pertumbuhan dan Efisiensi Pakan Udang Vaname (Litopenaeus Vaname). Journal of Aquaculture and Fish Health Vol 5 No.2 Arief, M., Mufidah dan Kusriningrum. 2008. Pengaruh Penambahan Probiotik pada Pakan Buatan terhadap Pertumbuhan dan Rasio Konversi Pakan Ikan Nila Gift (Oreochromis niloticus). Berkala Ilmiah Perikanan 3(2): 53-58. Arief, M. N., Fitriani., dan S.Subekti. 2014. Pengaruh Pemberian Probiotik Berbeda Pada Pakan Komersial Terhadap Pertumbuhan Dan Efisiensi Pakan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias sp.). Jurnal Ilmiah Perikanan Dan Kelautan. 6 (1) : 4 hlm. Badan Pusat Statistik. 2015. Produksi Perikanan Menurut Subsektor. Dilansir di http://www.bps.go.id/linkTabelStatis/view/id/1711. Pada tanggal 16 Mei 2017. Badan Standarisasi Nasional. 2006. Standar Nasional Indonesia (SNI). SNI-017252-2006. Benih Udang Vaname ( Litopenaeus vannamei) Kelas Benih Sebar. Dewan Standarisasi Indonesia. Jakarta Badan Standarisasi Nasional. 2009. Standar Nasional Indonesia (SNI). SNI-017311-2009. Produksi Benih Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) Kelas Benih Sebar. Dewan Standarisasi Indonesia. Jakarta Badan Standarisasi Nasional. 2010. Standar Nasional Indonesia (SNI). SNI-017586-2010. Pengemasan Benih Udang Vanamero Vaname (Litopenaeus
39
40
vannamei) pada Sarana Angkutan Udara. Dewan Standarisasi Indonesia. Jakarta Decamp ,O, Moriarty D. 2007. Aquaculture species profit from probiotics. Feed Mix. 15: 20-23.
Direktur Jendral Perikanan Budidaya. 2015. Rencana Strategis Direktorat Jendral Perikanan Budidaya 2015-2019. DJPB: 38 hlm. Djajasewaka, H.Y. 1985. Makanan Ikan. Penebar Swadaya. Jakarta. 45 hal. FishstatJ FAO. 2016. Fishary for Statistical Time Series. Dilansir di http://www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/en. pada tanggal 16 Mei 2017. Efendi, E. 2005. Fungsi Probiotik dalam Budidaya Perikanan. www.unila.ac.id Effendie, I. 1997. Biologi Perikanan. Yayasan Pustaka Nustama. Jakarta. 159 hal. Effendie, I., N.J. Bugri, dan Widanarni. 2006. Pengaruh padat penebaran terhadap kelangsungan hidup dan pertumbuhan benih ikan gurami Osphronemus gouramy. ukuran 2 cm. Jurnal Akuakultur Indonesia, 5(2): 127-135. Effendi, H. 2003. Telaah Kualitas Air . Kanisius. Yogyakarta. 258 hal. Fera, V. V. 2004. Pembenihan udang vaname di PT. Birulaut Khatulistiwa Kalianda Lampung Selatan. [Laporan Magang]. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB. Bogor.
Fuller, R. 1987. A Review, Probiotics in Man and Animals. J Appl Bacteriol, 66:355-37. Fuller, R. 1992. Probiotics, The Scientific Basis. Chapman and Hall, London
Gaspersz, V. 1991. Metode Perancangan Percobaan . Bandung : Armico Ghufran, M. 2009. Sukses Memproduksi Bandeng Super untuk Umpan, Ekspor, dan Indukan. Yogyakarta: Lily Publisher. Handajani. 2010. Manajemen Pemberian Pakan Ikan. STIE. 292 hlm. Hariyadi, B. A. Haryono dan U. Susilo. 2005. Evaluasi efisiensi pakan dan efisiensi protein pakan ikan karper (Ctenopharyngodon idella) yang diberi pakan dengan kadar karbohidrat dan energy yang berbeda . Fakultas Biologi. Universitas Soedirman. Purwokerto Banyumas. Jawa Tengah.
Haliman, R.W. dan S.D Adijaya. 2005. Udang Vaname (Pembudidayaan dan Prospek Pasar Udang Putih yang Tahan Penyakit) . Penebar Swadaya, Jakarta. Haliman, R.W. dan S.D Adijaya. 2006. Udang Vaname. Penebar Swadaya. Depok. 76 halaman.
41
Haetami, K., Abun dan Y. Mulyani. 2008. Studi Pembuatan Probiotik BASsebagai Feed Suplement serta Aplikasinya terhadap Pertumbuhan Ikan Nila Merah. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. UNPAD. Hidayani, A.A., Asmi C.M, Bunga R.T, dan Achmad F.F. 2015. Deteksi Distribusi White Spot Syndrome Virus Pada Berbagai Organ Udang Vaname ( Litopenaeus Vaname). Torani (Jurnal Ilmu Kelautan dan Perikanan) Vol.25 (1) Holt. G., Kreig, N.R., Sneath, P.H.A., Stanley, J.T. and Williams, S.T. 1994. Bergeys Manual Determinative Bacteriology. Baltimore: Williamn and Wilkins Baltimore.
Irianto A. 2003. Probiotik Akuakultur . Gajah Mada University Press, Yogyakarta. Kementrian Kelautan dan Perikanan. 2015. Kelautan dan Perikanan dalam Angka Tahun 2015. Pusat Data,Statistik dan Informasi 2015: 340 hlm. Kementrian Kelautan dan Perikanan. 2013. Laporan Tahunan Direktorat Produksi Tahun 2013. Jakarta. hal 5. Kordi, G. Dan A. Tancung. 2007. Pengelolaan Kualitas Air dalam Budidaya Perairan. Jakarta : Rineka Cipta. Krasaekoopt. W, Bhandari B and Hilton CD. 2006. Survival of Probiotic Encapsulated in Chitosan-coated Alginate beads in Yoghurt from UHTand conventionally treated milk during stroge. International Dairy Journal . 13:3-13. Krasaekoopt, W., H. Bhandari and H. Deeth. 2003. Evaluation of encapsulation techniques of probiotics for yoghurt. Int. Dairy J . 13:3-13. Kumar SM, Swarnakumar, Silvakumar, Thangaradjou and Kannan. 2008. Probiotics in Aquaculture : Importance and Future Perspectives. Indian J. Microbial: review springer Kurniasih, T. 2011. Seleksi Bakteri Proteolitik dan Aplikasi Enzim Protease untuk Meningkatkan Kualitas Pakan dan Kinerja Pertumbuhan Ikan Nila . Thesis. Sekolah Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor. 61 hlm. Mansyur, A. dan Abdul Malik Tangko. 2008. Probiotik: Pemanfaatannya untuk Pakan Berkualitas Rendah. Media Akuakultur Volume 3 Nomor 2 Tahun 2008. Balai Riset Perikanan Budidaya Air payau, Maros. Merican, Zuridah (Ed.) 2015. Marine Shrimp in Asia in 2014: Production Trends. Volume 11, Number 1, Page 18, January/February 2015 Mosilhey SH. 2003. Influence of different capsule materials on the physiological properties of microencapsulated lactobacillus acidophilus. Institute of Food Technology, Faculty of Agriculture University of Bonn. 153 pages. Mudjiman, A. 2009. Makanan Ikan. Penebar Swadaya. Jakarta. 191 hlm.
42
Mudjiman, A. 2000. Makanan Ikan. Penebar Swadaya. Jakarta. Mulyadi, A. E. 2011. Pengaruh Pemberian Probiotik Pada Pakan Komersil Terhadap Laju Pertumbuhan Benih Ikan Patin Siam . Skripsi. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Universitas Padjajaran. Bandung. Mulyana, D. Y. 2011. Kaya Raya dari Budidaya Ikan dengan Probiotik. Jakarta: Berlin Media. National Research Council (NRC). 1983. Nutrient Requirement of Warm Water Fishes and Shellfish. Nurotional Academy of Science. Washington DC. 102p. Noviana, P., Subandiyono dan Pinandoyo. 2014. Pengaruh Pemberian Probiotik dalam Pakan Buatan Terhadap tingkat Konsumsi Pakan dan Pertumbuhan Benih Ikan Nila (Oreochromis niloticus). Jurnal of Aquaculture Management and Technology Volume 3, Nomer 4, Tahun 2014, Halaman 183-190. Nurgana, R. 2005. Pengaruh Pemberian Mikroba Probiotik Aquasimba-D pada Media Pemeliharaan terhadap Kelangsungan Hidup Ikan Gurami (Osphronemus goramy). Skripsi. Jurusan Perikanan Fakultas Pertanian Universitas Padjadjaran, Bandung. 46 hlm. Praditia, F. 2009. Pengaruh Pemberian Probiotik Melalui Pakan terhadap Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Udang Windu (Penaeus monodon). Skripsi Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. IPB. 52 hlm. Pasifico, C.J., W. Wu and M. Fraley. 2001. Sensitivesubstance encapsulation. US Patent 6 281 478. Patang. 2012. Pengaruh Penggunaan Berbagai Antibiotic dan Probiotik dengan Dosis Berbeda terhadap Pertumbuhan dan Kualitas Air pada Larva Udang Windu (Penaeus monodon Fabricius) . Jurnal Agrisistem, Politelnik Pertanian Negeri Pangkep. Putra, A. N. 2010. Kajian Probiotik, Prebiotik dan Sinbiotik untuk Meningkatkan Kinerja Pertumbuhan Ikan Nila (Oreochromis niloticus). Tesis. IPB: Bogor. 109 hlm. (Tidak diterbitkan). Ramadhana, S., N.A. Fauzana, dan P. Ansyari. 2012. Pemberian Pakan Komersil dengan Penambahan Probiotik yang Mengandung Lactobacillus sp. terhadap Kecernaan dan Pertumbuhan Ikan Nila (Oreochromis nilocus) . Program Magister Ilmu Perikanan Program Pasca Sarjana UNLAM. Rengpipat S, Rukpratanporn S, Piyatiratitivorakul S, Menasveta P. 1998. Probiotics in Aquaculture: A case study of probitics for larvae of black tiger shrimp ( Penaeus monodon). Di dalam: Flegel TW (ed). Advances in shrimp biotechnology. Bangkok: National Center for Genetic Engineering and Biotechnology. hlm 177-181.
43
Rika. 2008. Pengaruh Salinitas terhadap Pertumbuhan dan kelulushidupan Ikan Hasil Strain GIFT dengan Strain Singapura. Skripsi, Universitas Diponegoro. Semarang Rizqi, F. 2016. Pemanfaatan Probiotik Cair pada Akuakultur Sebagai Usaha Peningkatan Produktivitas dan Efisiensi Pakan Clarias gariepinus (Ikan Lele Dumbo). Skripsi. Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga. Surabaya Rostini, I. 2007. Peranan Bakteri Asam Laktat (Lactibacillus plantarum) Terhadap Masa Simpan Filet Nila Merah pada Suhu Rendah. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Universitas Padjadjaran. Jatinangor. 13 hal
Subyakto, D., Sutende., M. Afandi., dan Sofiati. 2009. Budidaya Udang Vaname (Litopenaeus vaname) Semiintensif dengan Metode Sirkulasi Tertutup untuk Menghindari Serangan Virus. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan BBAP Situbondo. Sukenda, S., H. Dwinanti., dan M. Yuhana. 2009. Keberadaan White Spot Syndrome Virus (WSSV), Taura Syndrome Virus (TSV) dan Infectious Hypodermal Haematopoitic Necrosis Virus (IHHNV) di Tambak Intensif Udang Vaname Litopenaeus vannamei di Bakauheni, Lampung Selatan. Jurnal Akuakultur Indonesia, 8(2): 1-8 (2009). Utami, D.A.S. 2015. Aplikasi Kultur Kering Probiotik untuk Pengendalian Streptococcosis pada Ikan Nila (Oreochromis sp.). Tesis. Sekolah Pasca Sarjana. IPB Bogor. Verschuere, L., Rombaut, G., Sorgeloos, P. and Verstraete, W. 2000. Probiotic Bacteria as Biological Control Agents in Aquaculture. Microbiology And Molecular Biology Reviews, 64(4): 655-671. Wang, YB., Li, J.R., and Lin, J. 2008. Probiotics in aquaculture : Challenges and outlook . Journal Aquaculture 281 : 1-4 WWF-Indonesia. 2014. Budidaya Udang Vaname Tambak Semi Intensif dengan Instalasi Pengelolaan Air Limbah (IPAL) . Jakarta. Widanarni, D. Yuniasari, Sukenda, dan J. Ekasari. 2010. Nursery Culture Performance of Litopenaeus vaname with Probiotics Addition and Different C/N Ratio under Laboratory Condition. Journal of Biosciences Vol. 17 No. 3 p. 115-119. Widiyanti, N. R. 2015. Penggunaan Probiotik Komersil Epicin Ponds dalam Media Pemeliharaan Udang Vaname (Litopenaeus vaname) PL 12. Skripsi. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Unpad. Jatinangor. 60 hlm.
