METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA VETERINARIA
DIRECTORIO UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO Dr. José Narro Robles Rector
Dr. Eduardo Bárzana García Secretario General
Lic. Enrique del Val Blanco Secretario Administrativo
Mtro. Javier de la Fuente Hernández Secretario de Desarrollo Institucional
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA Dr. Isidro Castro Mendoza Director interino
Dra. María Elena Trujillo Trujillo Ortega Secretaria General
L.C. Alfonso Ayala Rico Secretario Administrativo
MVZ Martha Beatriz Trejo Salas Secretaria de Comunicación
UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA FACULTAD
DE MEDICINA
DE MÉXICO
VETERINARIA Y ZOOTECNIA
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA VETERINARIA
AUTORES Joaquín Aguilar Bobadilla Bobadilla ❏ Norma Leticia Calderón Apodaca ❏ José Pedro Cano Celada ❏ Luis Andres Castro Fuentes ❏ María de la Luz Chavacán Ávila ❏ Adriana Correa Benitez ❏ Carlos Esquivel Lacroix ❏ Ángel García Hernández ❏ Alma Angélica García Lascuráin ❏ Angélica G. Gris Valle ❏ Marco Antonio Herradora Lozano ❏ Samuel Genaro Jardón Herrera ❏ Alejandro Jiménez Yedra ❏ Gabriela López Navarro ❏ Miguel Ángel Martínez Castillo ❏ Alma Rosa Mercado Naranjo ❏ Luis Ramón Nolasco Espinoza ❏ Enrique Núñez Hernández ❏ Lucía Pérez Manrique ❏ Daniel Prieto Merlos ❏ Alejandro Rodríguez Monterde ❏ Félix Sánchez Godoy ❏ Carlos Santoscoy Mejía ❏ Alejandro Sigler Rangel ❏ Alicia Soberón Mobarak ❏ Yukie Tachika Ohara ❏ Carlos Alberto Tena Betancourt ❏ Félix Eduardo Tena Betancourt ❏
EDITORES Samuel Genaro Jardón Herrera ❏ Alejandro Jiménez Yedra Yedra
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PRIMERA EDICIÓN, 11 de abril de 2011 DR© 2011 Universidad Nacional Autónoma de México. Ciudad Universitaria, Delegación Coyoacán, C.P. 04510, México, Distrito Federal. ISBN: XXXXX Impreso y hecho en México El Comité Editorial de la FMVZ agradece a XXXXXXX su valiosa participación como revisor técnico de esta obra. Diseño de portada: portada: Lic. Edgar Emmanuel Herrera López Diseño editorial y Formación electrónica: LDG Berenice Cuevas Díaz Corrección de estilo: XXXXX Queda rigurosamente rigurosamente prohibida, sin autorización escrita de los titulares del copyright, bajo las sanciones establecidas por las leyes, la reproducción total o parcial de esta obra por cualquier medio o procedimiento, comprendidos la reprografía y el tratamiento informático.
PRESENTACIÓN
El libro que presentamos constituye una importante herramienta para la enseñanza de la metodología diagnóstica, debido a que no existe un texto especíco sobre esta materia, en diez especies animales, y que además proponga la metodología para la construcción del diagnóstico, tanto individual como de poblaciones animales. La obra consta de dos partes: la primera aborda la metodología diagnóstica en medicina individual (perros, gatos, equinos, bovinos, ovinos y cabras); la segunda parte incursiona en la medicina en poblaciones de aves, cerdos, abejas, peces, conejos, fauna silvestre y animales de laboratorio. En cuanto a la metodología diagnóstica practicada en medicina individual se propone el uso del expediente clínico orientado a problemas (ECOP), un método que ayuda a denir, registrar y dar seguimiento a los proble mas, que además permite, en poco tiempo, acumular, clasicar y organizar los datos observados en el estudio del paciente y cuyo aprendizaje resulta sencillo para el estudiante. En la práctica con poblaciones animales, es indispensable que el método diagnóstico se sustente en una historia clínica muy detallada, y se acompañe del análisis de los registros de producción, inspección clínica de los animales, inspección física de las instalaciones, así como de la toma y envío de muestras al laboratorio; por medio de la integración de los resultados de estos elementos y de la adecuada interpretación de los resultados de laboratorio, será posible construir un diagnóstico nal. La primera parte del libro consta de tres capítulos. El capítulo 1 aborda la metodología diagnóstica en perros y gatos; las secciones que lo conforman son: métodos de contención; métodos de obtención de información; examen clínico general; examen diagnóstico por aparatos y sistemas, y método diagnóstico orientado a problemas. La metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos es tratada en el capítulo 2, y está organizada en las siguientes secciones: manejo de los bovinos; propedéutica; clínica bovina; expediente; historia clínica; diagnósticos; reseña; anamnesis; examen clínico general; examen físico; constantes siológicas; inspección; palpación; percusión; técnicas de auscultación y percusión; auscultación; metodología diagnóstica del aparato digestivo; metodología diagnóstica del aparato reproductor; metodología diagnóstica de la gestación en cabras y borregas y evaluación del macho, y metodología diagnóstica de la glándula mamaria. En el capítulo 3 se presenta la metodología diagnóstica en equinos, dividida en las siguientes secciones: examen físico general de los equinos; metodología diagnóstica del aparato locomotor; metodología diagnóstica del aparato digestivo; metodología diagnóstica del aparato respiratorio, y metodología diagnóstica de piel y anexos cutáneos. La segunda parte del libro incluye seis capítulos —del 4 al 10— dedicados a la metodología diagnóstica en poblaciones animales. La primera especie que se aborda, es la de las aves, en el capítulo 4, que consta de las secciones de introducción; historia clínica; inspección clínica; técnica de necropsias en aves; diagnóstico clínico presuntivo; selección, obtención y envío de muestras para diagnóstico de laboratorio; condiciones especiales para la obtención y conservación de muestras para diferentes estudios; estudios de laboratorio, e integración del diagnóstico denitivo. El capítulo 5 se reere a los cerdos; en éste se pueden consultar las siguientes partes: introducción; anamneanamne sis; generalidades; historia inmediata; antecedentes; ambiente; registros registros y análisis de la información; inspección clínica; inspección individual; inspección en grupo; inspección física de la granja; obtención y envío de muestras, e integración del diagnóstico.
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En el capítulo 6 se estudia la metodología diagnóstica en peces, que se desarrolla en las siguientes secciones: introducción; historia clínica; aspectos prácticos de la contención del animal; muestreo; examen físico general; muestreo del agua; muestreo de alimento; muestreo de peces; apoyos diagnósticos en medicina de poblaciones; diagnóstico presuntivo; diagnóstico diferencial, y diagnóstico denitivo. El capítulo 7 está dedicado a la metodología diagnóstica en abejas; consta de los siguientes apartados: introducción; aspectos biológicos básicos en una colonia de abejas, relacionados con la metodología diagnóstica; factores que intervienen en la transmisión de enfermedades; entrevista con el apicultor; condiciones ambientales; condiciones climáticas de la zona; tipo de terreno; disponibilidad de agua, polen y néctar; revisión del apiario; revisión de la colonia; enfermedades de la cría y de las abejas; cantidad de provisiones (miel y polen); necesidad de alimentación y curación; falta de espacio en cámara de cría y falta de alzas; peligro de enjambrazón; diagnósticos presuntivos; toma de muestras; forma de identicación, e integración del diagnóstico denitivo. El capítulo 8 trata la metodología diagnóstica de los conejos; está integrado por las siguientes secciones: introducción; características generales de los conejos; el conejo como animal de compañía; el conejo de compañía enfermo; reseña, historia clínica y anamnesis; examen físico; lista de problemas; lista maestra; diagnóstico presuntivo; obtención de muestras y solicitud de pruebas de laboratorio, e integración del diagnóstico. Respecto al conejo como animal de granja, se abordan las secciones: reseña e historia clínica; constatación de la ubicación geográca; ronda de instalaciones y equipo; ronda clínica; necropsias y obtención de muestras; diagnóstico presuntivo; integración de resultados y diagnóstico denitivo, y medicina preventiva. El capítulo 9 aborda la metodología diagnóstica en animales de laboratorio, aquí se disponen las secciones siguientes: introducción; antecedentes; ronda de instalaciones; vericación del ambiente; manejo físico de ani males de laboratorio; métodos de contención físicos; vías de sangrado; vías de administración; vericación de instalaciones; ronda clínica; detección de animales enfermos; toma de muestras; pruebas de laboratorio; integración del diagnóstico, y construcción del diagnóstico denitivo. El capítulo 10 se reere a la metodología diagnóstica en fauna silvestre; consta de los siguientes apartados: introducción; contención y manejo en fauna silvestre, que incluye: principios generales, condicionamiento positivo o entretenimiento, contención física, contención química, complicaciones durante la contención o manejo, metodología diagnóstica en fauna silvestre en cautiverio, metodología diagnóstica en fauna silvestre en vida libre. Con este libro pretendemos participar en el mejoramiento de la calidad en la formación e información de los médicos veterinarios zootecnistas egresados de esta institución, ya que una las competencias que deben adquirir es la construcción del diagnóstico. Los editores agradecemos a los profesores de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, campus Ciudad Universitaria, el haber aportado su experiencia profesional en la especie en la que son reconocidos expertos. Por igual, agradecemos el apoyo de las autoridades y la colaboración de muchas otras personas que brindaron su tiempo, experiencias, fotografías e ideas para poder elaborar este documento.
Samuel Genaro Jardón Herrera
ÍNDICE PARTE 1 Metodología diagnóstica en perros, gatos, equinos, bovinos, ovinos y caprinos CAPITULO 1 Metodología diagnóstica en perros y gatos CAPITULO 1.1 Contención en perros y gatos Alejandro Jiménez Yedra
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CAPITULO 1.2 Métodos de obtención de la información Alejandro Jiménez Yedra
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CAPITULO 1.3 Examen clínico general en perros y gatos Alejandro Jiménez Yedra
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CAPITULO 1.4 Metodología diagnóstica del aparato cardiovascular en perros y gatos Yukie Tachika Ohara
51
CAPITULO 1.5 Metodología diagnóstica del aparato respiratorio en perros y gatos
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Joaquín Aguilar Bobadilla CAPITULO 1.6 Metodología diagnóstica del aparato urinario en perros y gatos
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Joaquín Aguilar Bobadilla CAPITULO 1.7 Metodología diagnóstica y manejo reproductivo en la perra Carlos Esquivel Lacroix
75
CAPITULO 1.8 Metodología diagnóstica en ortopedia de perros y gatos Carlos Santoscoy Mejía
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CAPITULO 1.9 Método diagnóstico orientado a problemas S. Genaro Jardón Herrera, Alejandro Jiménez Yedra, Carlos Santoscoy Mejía
99
CAPITULO 1.10 Metodología diagnóstica en dermatología de perros y gatos Luis Ramón Nolasco Espinosa
109
CAPITULO 2 Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos CAPITULO 2.1 Metodología diagnóstica en bovinos José Pedro Cano Celada
121
CAPITULO 2.2 Metodología diagnóstica del aparato digestivo en rumiantes Alicia Soberón Mobarak
131
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
CAPITULO 2.3 Evaluación diagnóstica del aparato reproductor y glándula mamaria en rumiantes Alicia Soberón Mobarak
143
CAPITULO 3 Metodología diagnóstica de los equinos CAPITULO 3.1 Examen sico general en el equino Gabriela López Navarro
155
CAPITULO 3.2 Metodologia diagnóstica del aparato locomotor de los equinos Alejandro Rodríguez Monterde
163
CAPITULO 3.3 Metodologia diagnóstica del aparato digestivo en los équidos Alejandro Sigler Rangel, Alejandro Rodríguez Monterde
175
CAPITULO 3.4 Examen del aparato respiratorio en equinos Enrique Núñez Hernández, Alma Angélica García Lascuráin
191
CAPITULO 3.5 Evaluación del sistema cardiovascular en el equino Lucía Pérez Manrique
199
CAPITULO 3.6 Examen del aparato urinario en el equino Alma Angélica García Lascuráin
209
CAPITULO 3.7 Metodología diagnóstica de la piel en equinos Enrique Núñez Hernández, Alma Angélica García Lascuráin
215
PARTE 2 Metodología diagnóstica en aves, cerdos, peces, abejas, conejos, animales de laboratorio y fauna silvestre CAPITULO 1 Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves Norma Leticia Calderón Apodaca, Félix Sánchez Godoy
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CAPITULO 2 Metodología diagnóstica en cerdos Marco Antonio Herradora Lozano
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CAPITULO 3 Metodología diagnóstica en peces Ángel García Hernández, María de la Luz Chavacán Ávila, Luis Andres Castro Fuentes, Alma Rosa Mercado Naranjo
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CAPITULO 4 Metodología diagnóstica de la abeja melífera Angélica G. Gris Valle, Adriana Correa Benitez, Daniel Prieto Merlos
309
CAPITULO 5 Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud
en conejos de compañía y de granja
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Carlos Alberto Tena Betancourt, Félix Eduardo Tena Betancourt, Miguel Ángel Martínez Castillo
10
CAPITULO 6 Metodología diagnóstica en animales de laboratorio Carlos Alberto Tena Betancourt, Félix Eduardo Tena Betancourt
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CAPITULO 7 Metodología diagnóstica en fauna silvestre Dulce María Brousset
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Metodología diagnóstica en perros, gatos, equinos, bovinos, ovinos y caprinos
Metodología diagnóstica en perros y gatos
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Contención en perros y gatos Alejandro Jiménez Yedra
INTRODUCCIÓN U importante en el manejo y la contención, física o química, de las diferentes especies domésticas (pequeñas especies, rumiantes, equinos, porcinos y aves para el consumo) es el conocimiento claro y preciso de la especie que se va a tratar. La zootecnia, que es una rama de la medicina veterinaria, es de gran ayuda para ello, ya que está fundamentada en un grupo de disciplinas que aseguran un buen desempeño, entre éstas, la genética, la nutrición, la reproducción, el manejo, la sanidad, la economía y la administración, de las cuales el manejo es de gran relevancia en cuanto a la contención se reere, ya que enseña los modos más adecuados de manejar, sujetar y acercarse a los animales, así como de darles conanza para poder explorarlos. En la Edad Media, los aspectos de cuidado, conocimientos y curación de los animales domésticos se encontraba encomendada a los escuderos, albéitares, hipiatras y mariscales, pero en el siglo XV surgieron los principios de la medicina veterinaria, a los cuales más tarde se sumaron los conocimientos de la zootecnia, para que los médicos veterinarios se especializaran no sólo en la medicina, sino también en el mejoramiento de razas de distintas especies de animales domésticos. En la actualidad el estudio de la zootecnia también se extiende hacia algunos animales salvajes (fauna silvestre y especies no convencionales).
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
GENERALIDADES DE LA CONTENCIÓN MANEJO Para realizar con éxito un examen clínico o una evaluación para las exposiciones, es necesario conocer las formas más adecuadas de acercarse, sujetar, capturar e inmovilizar a los animales, es decir, de manejarlos. Entre todos los animales domésticos el perro presenta una mayor diversidad de temperamentos; algunos pueden ser calmados y amistosos, por lo que pueden manejarse fácilmente; otros son agresivos (bravos) o nerviosos y deberán ser manejados a distancia o colocándoles un bozal.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
perro gruñe, eleva el belfo mostrando los dientes o emite señales de disgusto, deberá suspenderse y será necesario probar otro método, pues un perro enfadado puede morder y con ello producir daños, desde los de poca consideración (por ejemplo, dolor e inamación de la zona dañada) hasta lesiones graves (pérdida de la continuidad de la piel del médico o del auxiliar, que tal vez requieran procedimientos simples de curación o quizá hasta quirúrgicos).
F 2. Iniciando la etapa de reconocimiento en el perro.
F 1. Los animales nerviosos suelen ser de difícil manejo.
Los perros de conformación delgada o esbelta (como el Whippet), deberán manejarse con cierto cuidado para evitar lastimarlos, ya que su estructura ósea es demasiado frágil y está altamente expuesta a fracturarse. Cuando el médico o el auxiliar no conocen al perro, nunca deberán acercarse con movimientos bruscos al intentar tocarlo; lo más recomendable es primero acercar la mano (porción prona) a la nariz del perro (frente al hocico) para que éste la huela y así adquiera conanza; posteriormente se intentará acariciarlo despacio y a la vez con seguridad, sin dejar de observar por ningún motivo la mirada de éste, la cual indicará su desconanza o su amabilidad. La rigidez del cuerpo puede ser otro indicativo del carácter, al igual que la erección del pelo del dorso, la postura de los miembros, que generalmente ponen rígidos, y la posición de la cola, que tienden a levantarla en señal de amenaza. Si al estar aplicando esta técnica de acercamiento el
Por lo común los perros tímidos o fácilmente estresables son los más agresivos, ya sea por miedo o por falta de carácter; cuando es así, se identica en seguida, ya que los animales por lo general presentan una mirada rme, penetrante y esquiva, y en ocasiones se orinan ante la presencia de un extraño. Existen razas que por su naturaleza son de difícil manejo, entre las que se encuentran la Chow-chow, Akita americano y Fila brasileiro (con la cual se debe tener mucho cuidado porque son perros extremadamente agresivos por naturaleza) y algunos perros “viciosos” que pueden ser de cualquier raza. Cuando se trate de perros de talla grande y gigante (Rottweiler, Mastín, San Bernardo, etc.), debe protegerse la cara, evitando acercarla demasiado al hocico de éstos, aun cuando se tenga plena conanza en el animal. También algunas razas pequeñas suelen ser sumamente difíciles de manejar (Pekinés, Chihuahueño, Cocker, etc.) y hay que tener precaución al acercarse. Para el caso de los gatos, el manejo es diferente, ya que su comportamiento y carácter es distinto; “el gato no es un perro pequeño”.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 3. Iniciando la etapa de reconocimiento en el gato.
Cuando un gato es llevado a consulta casi siempre es transportado en una jaula especial para ello o, en raras ocasiones, en los brazos del propietario; en ambos casos será depositado directamente en la mesa de exploración. Si el animal es presentado en la jaula de transporte, es preferible que el propietario lo saque de ahí; generalmente el gato accede a salir sin problema, pero a veces se resiste a ser sacado y puede tornarse agresivo y mostrar signos de inconformidad emitiendo un “budo” (hising), sonido con el cual indica que está dispuesto a atacar si la maniobra continúa.
te, y, una vez retirada esta parte del contenedor, se le puede pedir nuevamente al propietario que intente sujetarlo, o bien, el médico o el auxiliar realizarán esta tarea, y una vez colocado en la mesa, se intentará el acercamiento al paciente. Si la jaula de transporte es de difícil acceso o no hay manera de desarmarla fácilmente, en el caso de que el gato se torne agresivo al intentar sacarlo, lo más conveniente será tomar la jaula o caja entre las manos y girarla de tal forma que la entrada de la jaula se dirija hacia la mesa y así lograr que caiga el animal por gravedad y quede sobre la mesa de exploración para realizar el acercamiento (esta no es una forma muy elegante de manejo, pero resulta efectiva para lograr el objetivo y no compromete la integridad del paciente).
F 4. Gato bufando. Muestra el máximo signo de agresión.
En el momento que el gato bufe deberá suspenderse el intento de sacarlo; en estos casos es preferible desarmar la jaula o retirar el techo para exponer al gato sin la necesidad de introducir la mano en una cavidad donde no es posible maniobrar adecuadamen-
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F 5 6. Voltear la jaula transportadora puede ser un buen método para sacar a un gato sin que el manejador sufra algún tipo de agresión.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
El método de acercamiento nal de reconocimiento para la exploración clínica en esta especie es similar al empleado con el perro: se acerca la mano a la nariz y se le acaricia la cabeza, para después contener al animal.
CONTENCIÓN FÍSICA Una vez concluida la etapa de reconocimiento con el paciente, el siguiente paso es buscar la manera de lograr que éste nos permita realizar el examen clínico correspondiente (que es obligatorio para todos los pacientes que se presentan a consulta).
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
tantes siológicas (temperatura, frecuencia cardiaca, frecuencia respiratoria, reejo deglutorio, reejo tusí geno, mucosas, tiempo de llenado capilar, linfonodos, campos pulmonares, palpación abdominal, hidratación, estado corporal y estado de conciencia); para ello es necesario que el paciente se encuentre lo más tranquilo posible, de manera que estas constantes no se alteren y la información sea conable, para poder constatar que el paciente se encuentre clínicamente sano, o bien, detectar alguna anomalía que será necesario tratar.
CÓMO SUJETAR CON BOZAL En los pacientes de carácter dócil puede no haber ningún problema para la realización del examen clínico general, pero en aquellos pacientes de carácter difícil quizá represente un problema, a partir del cual surge la interrogante: ¿Cómo controlarlos para poder realizar dicho examen? En el caso de los perros que se muestran ariscos y renuentes al primer contacto de reconocimiento, lo más conveniente es la contención primaria, o neutralización de su arma de defensa: el hocico, por medio de un bozal fabricado ex profeso para ese método de neutralización, el cual puede ser colocado por el médico o el auxiliar, cuando en la etapa de reconocimiento el paciente se haya mostrado amigable, o bien, solicitar al propietario que lo haga.
F 7 8. Acariciar al paciente fortalece la relación médicopaciente y facilita la exploración.
Lo primero y más recomendable es comenzar con un breve periodo de establecimiento de la conanza, por medio del contacto, que puede llevarse a cabo con caricias sobre la cabeza o el dorso del paciente, ya que así éste permitirá realizar el examen inicial (examen clínico general) con el cual se valorarán las cons-
F 9. Diferentes tipos de bozales: en la periferia, para perros, y al centro, para gatos. Nótese que la disposición triangular del bozal para gato adopta la forma de la cabeza de éste.
Si no se cuenta en ese momento con un bozal prefabricado, se puede improvisar uno con algún tipo de material resistente, pero que no lastime al animal, como una tira, ya sea una venda de curación o cual-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
quier otra que nos permita hacer una lazada alrededor del hocico, que no se rompa, no sea cortante y sí lo sucientemente larga para colocarla a cierta distancia del hocico del animal y de esta manera evitar lesiones por mordida. Se recomienda un largo mínimo de un metro. Si no se tiene ninguno de los materiales antes mencionados, en última instancia se puede usar el material de las correas con las que los pacientes son traídos al consultorio, entre las cuales, las más convenientes son las fabricadas con nylon, porque son exibles y, por ende, fáciles de manejar; si las correas son de cuero, se prereren las más delgadas, ya que son de más fácil manejo que las gruesas.
colocado, porque para algunos perros es incómodo (según el carácter del perro) e intentarán quitárselo con co n las garras; si no se hiciera este anudado en la cabeza y sólo se dejara el segundo nudo en el hocico, el animal se lo quitaría con facilidad y se tendría que colocar de nuevo, pero en esta ocasión quizá con un poco más de trabajo porque el animal ya sabrá de qué se trata, lo cual implica que tendrá más desconanza. Al pasar los extremos de la cinta en la forma antes explicada se evitará que los extremos queden sobre los ojos y se produzcan daños en estos órganos, los cuales podrían ir desde un simple apretón sobre los párpados hasta lesiones en la córnea por la fricción de la cinta.
F 10. Diferentes tipos de material con los que se puede fabricar un bozal en caso de no contar con uno prefabricado.
Metodología: para fabricar un bozal con tiras, una vez elegido el material, se recomienda: 1) Extender la tira en su totalidad, para quedar lo más alejado posible del hocico del animal; después se coloca por debajo del hocico, se pasa alrededor de éste y se anuda; o bien, se realiza un nudo amplio en la mitad de esta tira y en él se introduce el hocico del animal, para nalmente apretarapretar lo. 2) Una vez realizado el nudo y luego de haber aprisionado el hocico, los extremos de la tira se pasan por debajo del hocico para realizar un segundo nudo que tiene como función principal reforzar el primero. 3) Después de formar el segundo nudo, los extremos de la tira, que en este momento se encontrarán por debajo del hocico, se pasarán a lo largo de la mandíbula para nalmennalmente ser anudados por detrás de las orejas y de la cabeza (nuca) del animal; este tercer paso es muy importante debido a que de él dependerá que el bozal quede bien
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F 11-14. Diferentes pasos para la colocación de un bozal con un cordón. La figura 11 muestra la longitud del cordón y la distancia entre las manos y el hocico del perro. Las figuras 12 y 13 ilustran la formación del primer nudo, que se ha de colocar c olocar sobre el puente nasal, y la figura 14 muestra la formación del segundo nudo, que ha de ser colocado por debajo de la mandíbula. Nótese que las manos siempre están lejos del paciente.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
F 15-17. La figura 15 muestra el nudo ya formado en la mandíbula del paciente, el cual debe ser colocado de manera firme, para que posteriormente los cabos sean pasados por debajo de las orejas y anudados en la nuca, como lo muestra la figura 16. La figura 17 muestra el bozal ya terminado y cómo la mano del médico o manejador inmoviliza la cabeza del animal.
En el caso de que se tenga que utilizar la correa del paciente, la técnica tiene algunas variaciones: ❏ ❏ ❏
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Extender toda la correa sin quitársela al paciente. Dirigir el extremo libre hacia el hocico. Si el extremo es lo sucientemente largo, dar dos vueltas alrededor del hocico tratando de que en la segunda vuelta el extremo libre quede del lado contrario al extremo en donde se inició el procedimiento. Finalmente el extremo libre se dirige hacia la nuca y de esta forma se sujetan los dos extremos (el que se encuentra alrededor de cuello y el extremo libre) y de modo mecánico se controla la cabeza del paciente.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
F 18-22. Modo de elaborar un bozal con la correa del paciente. La figura 18 muestra el primer paso, que consiste en tensar la correa sobre el cuello del animal; después se pasa el extremo libre alrededor del hocico (se pueden dar una o dos pasadas, como lo muestran las figuras 19 y 20; posteriormente se ejerce presión sobre el hocico rodeado por la correa, para neutralizarlo, según la figura 21; para terminar, como lo muestra la figura 22, el extremo libre se sujeta en la nuca del paciente. Nótese que este bozal no es muy seguro, por lo que se recurre a él sólo cuando se trata de manejos rápidos. Estos procedimientos se pueden llevar a cabo sobre la mesa de exploración en pacientes de raza pequeña y mediana (chihuahueño, dachshund, cocker, etc.), o bien, en el piso, en el caso de las razas grandes y gigantes (pastor alemán, rottweiler, akita, san Bernardo, etc.) para posteriormente subirlos a la mesa de exploración.
Cuando sea necesario subir un perro de raza grande o gigante a la mesa de exploración, por cuyo peso se requieran dos personas para ello, si sólo se encuentran en el consultorio dos personas (propietario y médico o auxiliar), será preferible que el propietario se encargue de cargar al animal por la cabeza y que el médico o el auxiliar lo hagan por la porción que comprende el abdomen y la cola. Esta forma de proceder se preere, independientemente de que el paciente tenga o no bozal. En el caso de que se trate de razas sumamente dóciles (Cobrador Dorado, Labrador Dorado, etc.), que el propietario no sea capaz de ayudar, y no se cuente en ese momento con otro integrante del equipo médico o algún auxiliar de intendencia, el traslado hacia la mesa de exploración lo puede realizar una sola persona, siempre conforme a las siguientes condiciones: 1) El 1) El estado de salud del paciente debe permitirlo. 2) Si 2) Si se cumple la primera condición, el manejador se colocará en cuclillas. 3) Éste 3) Éste tomará al paciente del cuello con el brazo, aprisionando el cuello y la cabeza del perro contra su propio pecho, con el n de inmovilizar estas partes del cuerpo y de esa forma evitar que el animal se voltee hacia el manejador. 4) manejador. 4) Con Con la mano libre sujetarlo del abdomen y realizar el traslado hacia la mesa de exploración. Es importante que el traslado sea lo más rápido posible y de una sola intención para evitar molestias al paciente. A menos que el paciente sea muy pesado, será necesaria la ayuda de otra persona.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
En el caso de los felinos, si se trata de un paciente que ya haya aceptado el periodo de reconocimiento (se comporte de manera dócil), basta con acariciarlo constantemente para poder realizar la exploración física; aunque estos animales siempre estarán buscando la forma de bajarse de la mesa. Si durante la exploración el paciente se torna agresivo, será preciso usar bozales, (diferentes de los lo s que se emplean para los perros), lo cual a veces es suciente para controlarlos; estos bozales cubrirán todo el rostro del felino y en el caso de que aun así continúe emitiendo señales de agresividad y no sea posible el manejo, tendrá que emplearse la contención química (que se describirá más adelante), ya que un gato que está demasiado estresado puede entrar en estado de choque.
F 23. Gato con bozal, con el cual se neutralizan la mirada y la boca del animal.
El bozal debe colocarse cuando están comenzando los signos de agresividad, antes de que el paciente sea de más difícil manejo. Para lograrlo es recomendable esperar a que el felino se tranquilice un poco, deternerlo con una mano, y con la otra ponerle el bozal, aunque en ocasiones deberá detenerse al animal fuertemente con las dos manos: una mano en la parte comprendida entre el cuello y el área interescapular (zona de la cruz) y la otra mano en el área lumbosacra (grupa), y al mismo tiempo hacer una ligera presión en éste contra la mesa de exploración, en lo que otra persona coloca el bozal y lo sujeta a la nuca.
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Nota: Hay que tratar de evitar esta segunda maniobra ya que podría ocasionar más molestia sobre el animal y por ende llegaría o tornarse más agresivo.
CÓMO SUJETAR AL PACIENTE SOBRE LA MESA DE EXPLORACIÓN
Cuando el paciente ya está colocado sobre la mesa de exploración y se le tiene controlado, se puede realizar el examen clínico general. Por lo regular se solicita al propietario que ayude sujetándolo de la cabeza o del collar si lo trae mientras le habla para darle conanza, o bien, el paciente puede ser sujetado por el auxiliar. En ocasiones será necesario llevar a cabo algunos procedimientos (rasurado, lavado, o punción de alguna zona en especíco) que exigen determinadas posiposi ciones de los pacientes; una de las más comunes es la posición en decúbito o decúbito lateral (sobre uno de sus costados), que para lograrla, una persona (propietario o auxiliar) deberá sujetar la cabeza del paciente, y otra persona, los miembros, tanto pélvicos como torácicos, y girar al paciente, de forma tal que éste quede recostado sobre uno de sus lados. Metodología: 1) Sujetar 1) Sujetar la cabeza del paciente. 2) Detener los miembros del animal; los perros de raza miniatura y pequeña se pueden tomar de la zona carpiana y tarsiana, y los de raza grande y gigante, del área de las rodillas o los muslos. 3) En 3) En el caso de pacientes de talla pequeña, levantarlos y girarlos hasta recostarlos en la mesa de exploración, dejando expuesto el lado en que se va a trabajar. Si se trata de un paciente de raza mediana (por ejemplo, Cocker, Springer, etc.) lo conveniente es que el manejador sujete al paciente del área carpal y tarsal, lo recueste de cualquiera de los dos lados, y jale los miembros, para quitar el punto de apoyo y pueda girarlo sobre el costado, y así, de forma lenta y cuidadosa, lo acomode sobre la mesa de exploración. En el caso de pacientes de gran tamaño se recomienda sujetarlos de la zona comprendida entre las rodillas y los codos, pegar su cuerpo al tronco del manejador y levantarlos de forma tal que se giren y depositen cuidadosamente en la mesa.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
tar que éste se levante o voltee la cabeza; con la mano sobre ambos miembros torácicos se detiene el miembro que está pegado a la mesa y el miembro opuesto del animal se mantiene cruzado (entre el antebrazo del sujetador y el antebrazo del paciente que se encuentra pegado a la mesa); esto se hace con el n de mantener aprisionados los miembros y evitar que el perro intente incorporarse. Sólo cuando se haya sujetado al animal se podrá llevar a cabo el procedimiento deseado (rasurado, lavado, o punción de alguna zona en particular).
F 24-26. La figura 24 muestra la forma de sujeción del paciente por la región de las rodillas y de los codos, para después pegar al paciente al cuerpo del médico o manejador, mientras que otra persona lo sujeta por la cabeza. Las figuras 25 y 26 muestran cómo el paciente es suspendido en el aire y cómo se separan de la mesa los miembros, para posteriormente depositarlo de manera cuidadosamente sobre su costado.
F 27 28. Ambas figuras muestran las diferentes formas de sujetar al paciente, nótese cómo en la figura 27 la mano del médico sujeta los miembros torácicos colocando el dedo índice entre ambos, de manera independiente, independiente, mientras que en la figura de la derecha.
Nota: Es importante en todos los casos, que la cabeza esté siempre sujeta para evitar que el animal anim al se voltee hacia el manejador y que ésta se golpee contra la mesa de exploración.
Para la toma de muestras sanguíneas es necesario realizar una buena contención física, para preservar la inmovilidad del paciente y evitar el estrés, en la medida de lo posible; es muy importante procurar la integridad física del manejador y de la persona que esté a cargo del muestreo. La muestra sanguínea se puede obtener de las venas cefálicas y las safenas en los perros de talla grande,
Una vez que el paciente esté sobre su costado, se sujetan ambos miembros pélvicos con una mano, colocando el dedo índice entre los miembros, con el n de controlarlos mejor, mientras con el antebrazo se ejerce presión sobre la cadera. Con el antebrazo opuesto se presionará el cuello del animal contra la mesa para evi-
SUJECIÓN DEL PACIENTE PARA TOMA DE MUESTRAS
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
y de las yugulares en los gatos y los perros de tallas pequeña y miniatura. Nota: El uso del bozal dependerá del carácter del paciente. Metodología: Con Metodología: Con el paciente sobre la mesa de exploración, para tomar las muestras de las venas cefálicas: 1) Se 1) Se coloca éste en posición decúbito esternal o de esnge. 2) esnge. 2) Se toma el cuello y la cabeza del animal con un brazo o con la mano (según se acomode el manejador) y se gira hacia el pecho de éste y se aprisiona para inmovilizar esta zona anatómica. 3) Con 3) Con la otra mano se toma la articulación del codo, tratando de extender el antebrazo y evitar que el animal lo encoja, en este paso se puede preparar la asepsia de la zona (rasurado, lavado y embrocado). 4) Se 4) Se hace presión en forma de torniquete sobre esta articulación, para interrumpir el retorno venoso y resaltar la vena en la cual se realizará en seguida la venopunción para obtener la muestra.
miembros torácicos para tener una supercie más amam plia que facilite la venopunción.
F 30 31. Las figuras muestran la posición para realizar venopunción de la yugular, tanto en el perro como en el gato. La posición que guarda el perro es la idónea para los de talla grande y gigante, mientras que la que presenta el gato es la mejor para gatos y perros de talla de enana a mediana.
Nota: En los gatos se emplea la misma posición, pero si el animal se torna muy agresivo, lo mejor será suspender en ese momento el procedimiento y aplicar contención química.
F 29. Colocación para la venopunción de la vena cefálica. Nótese la posición de la cabeza con respecto al cuerpo del médico o manejador, la cual ayuda a controlar la cabeza del animal y evitar percances; con la otra mano se realiza presión sobre la articulación del codo para evitar la flexión del mismo y producir vasocongestión. vasocongestión.
Nota: En algunas ocasiones será necesario que el manejador presione con el torso al animal contra la mesa para evitar que se incorpore o se mueva demasiado, de forma tal que se facilite la obtención de la muestra.
En el caso de las venas yugulares en los animales de gran talla, la posición es la misma que para las cefálicas, sólo que no se extenderá el antebrazo, sino el cuello del paciente, hacia arriba, para que se pueda realizar la asepsia de la zona y después obtener la muestra. Para los animales de talla pequeña el procedimiento es igual, con la variante de que se coloca al paciente en una orilla de la mesa de exploración y se extienden sus
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F 32. Para hacer visible la vena que se va a puncionar, la posición es casi la misma que para la contención en decúbito lateral del paciente sobre la mesa, sólo que la mano que debería sujetar los miembros pélvicos ejerce presión sobre la grupa del paciente y al mismo tiempo presiona la articulación de la rodilla para evitar que la flexión del miembro produzca congestión venosa.
Si por cualquier razón no es posible acceder a las venas cefálicas ni a las yugulares y se tiene que realizar el muestreo en las venas safenas, la posición más cómoda será la de decúbito lateral, y se seguirá el mismo método que en las cefálicas (sujeción sobre la mesa de
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
exploración), pero con la variante de que se tomará un solo miembro, en vez de tomar los dos, y se hará presión por medio de un torniquete en la articulación de la rodilla, con un n similar al que se describió para el codo.
CONTENCIÓN QUÍMICA
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La contención química, como su nombre lo dice, se lleva a cabo mediante la administración de fármacos cuando los pacientes no colaboran con el médico o el auxiliar para su revisión clínica general, o en los casos en los que el paciente sufre de demasiado dolor (por ejemplo en fracturas donde se necesita palpar la zona, o bien, realizar un estudio radiográco de la parte afecafec tada) y hay que aplicar ciertas sustancias o fármacos que ayudarán a controlar el dolor o el estrés. La contención química se puede dividir en dos clases: ❏ ❏
Contención dentro del consultorio Contención ambulatoria o remota
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CONTENCIÓN DENTRO DEL CONSULTORIO Este tipo de manejo, como ya se ha mencionado, es el empleado en situaciones en las que se necesita: 1) 1) Controlar momentáneamente la agresividad del paciente. 2) 2) Disminuir el estrés. 3) 3) Mitigar el dolor. 4) 4) Mantener inmóvil a un paciente para ciertos procedimientos. Nota: Para poder aplicar estos métodos químicos de contención será necesario que el médico conozca perfectamente los fármacos que va a utilizar, ya que de esta manera podrá prever los efectos y, por ende, ac tuar de forma oportuna si el paciente sufriera una depresión considerable a causa de éstos. ❏
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Control de la agresividad: agresividad: los métodos químicos son empleados en los casos en los que los pacientes no aceptan el periodo de reconocimiento; en los perros de talla pequeña, que son sumamente estresables; en los pacientes de raza grande, que per se tienden se tienden a la agresividad; cuando la contención con bozal no sea efectiva, y en los casos en que sea necesario realizar una maniobra importante para el diagnóstico o reconocimiento del problema. Disminuir el estrés: la estrés: la contención química es muy utilizada en el procedimiento preanestésico donde se requiere que el paciente experimente un estado de tranquilidad y pacicidad para mantener sus
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
constantes siológicas lo más estables que sea popo sible y no existan contratiempos durante la aplicación de la anestesia, además de que ayudan a aminorar las dosis de los anestésicos. Mitigar el dolor: dolor: algunas veces hay que administrar fármacos para poder realizar ciertos movimientos sobre el paciente como parte del método de diagnóstico clínico, muchas otras se presentan pacientes en los que se requiere hacer estudios radiográcos (principalmente por fracturas) para los cuales deben mantenerse inmóviles, ya que de lo contrario estarán inquietos por dolor y pueden tornarse agresivos, además de que los estudios radiográcos no serían de calidad y tendrían que estarestar se repitiendo constantemente, cuestión que en la práctica privada no es costeable, pues el médico es responsable del bienestar del paciente y también de la economía de su empresa. Inmovilización: se requiere en aquellos procediInmovilización: mientos en los cuales se necesita quietud extrema del paciente para su adecuada realización, como es el caso de la sangría que se lleva a cabo con el n de obtener una unidad de sangre para una transfusión, pues si el paciente se moviera sería muy probable que el venopunzor saliera de la vena y quedara interrumpida la sangría, sin que se completara la unidad sanguínea prevista.
NOTA: Siempre que se necesite la contención química deNOTA: berá obtenerse la autorización del propietario, cuestión que en la práctica clínica se realiza por por escrito y con la rma de éste.
Los medicamentos más utilizados para la contención química son los siguientes: ❏ ❏ ❏
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Derivados de las ciclohexaminas. Fenotiacínicos. α 2 agonistas. Ciclohexaminas: son las que se preeren en la prácprác tica diaria veterinaria, porque producen excelentes resultados; entre éstas tenemos la ketamina y la tiletamina/zolacepam. Ambas actúan de forma muy similar, con la diferencia de que la tiletamina siempre viene en combinación con el zolacepam y es más potente que la ketamina; son efectivas para la inmovilización, inducción anestésica, y procedimientos diagnósticos y quirúrgicos cortos. La anestesia disociativa que causan estos fármacos permite un profundo
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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estado de amnesia, analgesia y catalepsia. Los reereejos oral, ocular y de deglución permanecen intactos y el tono muscular se incrementa, excepto cuando se emplea la combinación de tiletamina/zolacepam. Tras el suministro de estos fármacos se pueden presentar intensa salivación y lagrimeo, e hiperestesia (excitación) y delirio durante la recuperación. Su vía de administración puede ser intravenoso (IV) o intramuscular (IM). En animales sumamente agresivos, en los que ninguno de los métodos físicos son efectivos, se puede administrar por vía oral, lo cual se logra lanzando el fármaco directamente y a larga distancia desde la jeringa hacia el hocico del animal. Fenotiacínicos: estos Fenotiacínicos: estos medicamentos se consideran tranquilizantes, su n es lograr un estado de sosiesosie go en el paciente para poder aplicar cualquier método de contención física. Las sustancias más empleados en la práctica clínica son la acepromacina y la propiopromacina, que tienen la ventaja de ser antieméticos (en mayor grado la primera); se pueden mezclar con fármacos hidrosolubles; reducen la actividad motora y elevan el umbral de respuesta a estímulos externos. Para que actúen se requiere que el paciente se encuentre en un medio tranquilo, de lo contrario no ocurrirá la tranquilización esperada. No producen analgesia, pero mejoran el efecto analgésico de fármacos con actividad analgésica. Los fenotiacínicos reducen de forma considerable la presión arterial; en consecuencia, causan hipotensión, principalmente en animales muy excitados o inquietos. Dependiendo de la dosis, sobre todo si es elevada, se puede presentar depresión de la frecuencia respiratoria. Se dice que la bóxer es la raza más predispuesta a estos efectos, por lo que hay que tener ciertas consideraciones con ella. Independientemente Independientemente de la dosis, estos fármacos producen hipotermia por depresión del centro termorregulador en el sistema nervioso central. Su vía de administración puede ser IV, IM o subcutánea (SC).
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α 2 agonistas: de estos fármacos, el más empleado
es la xilacina, que tiene propiedades sedantes (induce el sueño), analgésicas y relajantes del aparato musculoesquelético. Poseen un efecto hipotensor más marcado que los fenotiacínicos. Son altamente eméticos, suprimen la salivación y las secreciones gástricas, y disminuyen la motilidad gastrointestinal, así como el reejo de la deglución; suprimen la liberación de insulina promoviendo la glucemia, por lo cual está contraindicado en pacientes diabéticos. Este fármaco es altamente usado en los felinos. Su vía de administración es IV o IM. En la actualidad se han desarrollado nuevos medicamentos de este grupo, entre los que destacan la Romibina y la Dexmedetomidina.
CONTENCIÓN REMOTA Este tipo de contención está poco desarrollada en México para las pequeñas especies (perros y gatos), no así para la fauna silvestre. En otros países, y muy poco en el nuestro, las instancias gubernamentales han implantado este tipo de contención, por medio de campañas de esterilización masiva, en las poblaciones de perros callejeros (en vida feral) para el control de la sobrepoblación. El método consiste en el empleo de cerbatanas de aleaciones especiales, que les coneren la característicaracterísti ca de ser ligeras y con una supercie lisa para un ecaz deslizamiento de los dardos o jeringas, las cuales contienen medicamentos que producen sedación de forma rápida. Están disponibles en longitudes de 1 y 2 metros para distancias cortas y largas, respectivamente. En este tipo de contención se emplean los mismos fármacos que en los otros métodos, y además pueden utilizarse bloqueadores neuromusculares y derivados opiáceos, sobre todo para la contención de la fauna fauna silvestre.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
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Métodos de obtención de la información Alejandro Jiménez Yedra
INTRODUCCIÓN L se enfrentan diariamente a muchos retos en la práctica clínica; en lo que al diagnóstico se reere, la herramienta más importante que posee es su capacidad para obtener la información requerida, por medio de la historia clínica completa y la aplicación de un examen clínico detallado. En la clínica moderna el médico puede hacer gastar mucho dinero al propietario en la realización de pruebas diagnósticas, y aun así pasar por alto el diagnóstico denitivo si se omite información durante la recolección de datos. La obtención exitosa de datos dependerá de la metodología que emplee el médico veterinario, ya que reunir información es una tarea que debe realizarse de manera cuidadosa y sistemática; lamentablemente esto sólo se logra con la práctica diaria, ya que el continuo contacto médico-paciente-propietario es la única forma de desarrollar los sentidos (vista, oído, tacto) de tal manera que se puedan apreciar los datos que orientarán el diagnóstico.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
INTERROGATORIO
INTERROGATORIO DE SEGUIMIENTO
Como ya se mencionó, obtener la información necesaria acerca del paciente no es fácil, puesto que la pesquisa debe servir para construir un probable diagnóstico. Los datos proporcionados por el propietario del animal de compañía son fundamentales para ganar información; a través de la comunicación oral se comentará todo lo referente al paciente. El interrogatorio que se ha de realizar lo podemos dividir en dos etapas: inicial y de seguimiento.
Es el que se realiza en las revisiones siguientes al primer contacto del médico con el paciente; éste dará la pauta para las decisiones sobre el manejo del cuadro clínico que se esté tratando en ese momento. Esta pesquisa se puede ejecutar de manera ambulatoria (cuando el manejo lo hace el propietario en casa), o bien, de manera hospitalaria (cuando el paciente es internado; las revisiones y decisiones tienen lugar al día siguiente y se lleva un registro del progreso). Estos procedimientos serán explicados con mayor detalle en el texto referente al ECOP.
INTERROGATORIO INICIAL Es el que se realiza por primera vez y consta de cuatro partes: ❏
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Reseña: Aquí se recabarán los datos completos del propietario y del paciente. Historia clínica: En ella se obtienen datos del historial médico, hábitat, dieta, etcétera. Motivo de la consulta: Es la causa especíca por la que el paciente es llevado a la unidad médica. Catamnesis: Es una breve reseña de los acontecimientos relacionados con el motivo de la consulta.
F 3. Médico en el hospital hablando del paciente para la formulación del plan diagnóstico.
OBSERVACIÓN
F 1 2. Médico entrevistando. Dentro de la consulta, la realización de la entrevista a los propietarios es una de las herramientas más importantes para empezar a orientar el diagnóstico.
Se dene como lo que percibe el clínico a través de la vista, que es distinto de la interpretación de lo observado; por ejemplo, se observan mucosas azules, que se interpretan como signo de hipoxia. La evaluación de un paciente se inicia desde que llega al consultorio, clínica u hospital (si el paciente es presentado a consulta de forma ambulatoria), ya que el primer contacto (visual) puede dar una idea general al clínico, y es el punto de partida del interrogatorio que se lleva a cabo para obtener la información requerida. La observación continúa mientras se elabora la historia clínica. Durante este tiempo se puede colocar al paciente sobre la mesa de exploración, o bien, se le puede permitir que deambule por el consultorio para facilitar su observación. Pero, ¿qué debe observarse? Primero, el estado mental (conducta, actitud, postura, etc.); una vez ob-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
tenida esta información, tiene que valorarse la ambulación (marcha normal, claudicación, ataxia, etc.), posteriormente se evalúa qué tipo de patrón respiratorio presenta (normal o disnea), y para terminar, el estado corporal (peso normal, bajo de peso, obesidad, etc.). Tanto la ambulación como el estado corporal deben ser considerados con base en el estándar racial, ya que si no se conoce la raza que se está evaluando, se pueden tomar como anormales ciertos patrones normales para la raza en sí. F 6. Médico palpando rectalmente. La palpación rectal es una herramienta muy valiosa en pacientes que sufrieron traumatismo en la zona pélvica por accidente en un vehículo automotor, así es posible descartar la existencia de fracturas de pelvis u obliteraciones del canal pélvico.
PERCUSIÓN
F 4 5. Médico observando al paciente. La observación de paciente tanto en reposo como en movimiento proporciona información valiosa acerca de posibles claudicaciones; la figura muestra al observador variando su ángulo de visión para poder apreciar el apoyo del paciente sobre el piso.
PALPACIÓN Se dene como la técnica para explorar distintas partes del cuerpo por medio del sentido del tacto. Así, podemos tener diferentes tipos de palpación, según el área que se desee escudriñar, como la palpación abdominal, rectal y ósea. La información se obtiene por contacto físico directo del médico con el paciente, a través de la palpación supercial y la palpación profunda. La palpación supercial, como su nombre lo indica, se realiza en la supercie corporal del paciente y debe ser suave y gentil, pero con la presión suciente para poder reconocer las estructuras anatómicas del área inspeccionada y distinguir lo que es normal de lo que no lo es. En la palpación profunda se requiere emplear un poco de fuerza o de presión para acceder a determinada zona anatómica, lo cual quizá implique una ligera molestia o dolor en el paciente, pero que es necesario para identicar las anormalidades.
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Es una técnica incluida en la exploración física, que consiste en dar golpes breves e intensos con los dedos, con el n de determinar tamaño, límites, posición, consistencia y densidad de algún órgano interno, también sirve para descubrir la presencia de líquido y valorar su cantidad en una cavidad especíca. En medicina veterinaria la ecacia de la percusión se puede ver limitada por la presencia de pelo en el animal y su poca disposición a cooperar, así como por la diferencia en la anatomía entre cada una de las especies y razas existentes. El principal sitio de percusión es el tórax, otros sitios comunes de percusión son la cavidad nasal (excepto en las razas braquicefálicas, como el Bóxer) y la cavidad abdominal. Lo importante en esta técnica es que permite reconocer el sonido que emite el área de percusión, entre el mate y el timpánico, que son los dos sonidos posibles. El mate se caracteriza por ser un sonido seco y de corta duración, que aparece principalmente en los órganos parenquimatosos; el timpánico es un sonido hueco y de mayor duración que el anterior, que se origina en los órganos o cavidades huecas; por ejemplo, en el tórax, donde el corazón no resuena y los pulmones sí; cuando los dedos del examinador golpetean el tórax por encima del corazón, en este lugar se escucha un sonido mate, mientras que en el resto de la cavidad torácica, que comprende el área pulmonar, se percibe un sonido timpánico.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
Existe una variante de esta técnica denominada percusión palpatoria o peloteo, resultado de una combinación entre la auscultación y la percusión, con la que se obtienen sensaciones táctiles, más que sonoras; se recurre a esta maniobra para percibir objetos que otan, como en el caso de la gestación en las pequeñas especies, donde los productos se desplazan y rápidamente vuelven hacia el puño o los dedos, o cuando se observa abultamiento de la cavidad abdominal, que se practica para conrmar o descartar la presencia de lí quido libre en esa cavidad (derrame abdominal).
F 7 8. Médico realizando percusión torácica. Manera de realizar la palmopercusión en un paciente, donde la finalidad es detectar semiología de tos. Debe practicarse siempre en ambos hemitórax.
AUSCULTACIÓN Se dene como la acción de escuchar sonidos provenientes del interior del cuerpo, para la evaluación del corazón, pulmones, pleura, intestinos y otros órganos; o bien, para detectar el latido cardiaco fetal. Esta es una técnica exploratoria fundamental para el diagnóstico de las enfermedades cardiacas y respiratorias. Aquí la mejor herramienta, y la más habitual, es el estetoscopio (fonendoscopio), el cual permite
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
determinar la frecuencia, la intensidad, la duración y la calidad de los sonidos. Cuando se aplica esta técnica en el corazón, se deben explorar ambos lados del tórax, ya que el corazón tiene valvas que se encuentran en diferentes posiciones, y cuya relación será necesario conocer para valorarlas desde el exterior. En el caso de los campos pulmonares también se requiere una evaluación bilateral, porque los pulmones cuentan con lóbulos, tanto izquierdos como derechos, además de que la posición y, por ende la relación con el corazón, es distinta en cada lado. Para examinar la cavidad abdominal basta con poner el estetoscopio en cualquier zona de ésta para escuchar los sonidos producidos por los movimientos rítmicos y segmentarios de los intestinos, puesto que las asas intestinales abarcan casi toda esta cavidad; el abdomen medio es la zona más adecuada para la auscultación.
F 9. Médico auscultando tórax. La auscultación de los campos torácicos debe llevarse a cabo en un lugar tranquilo, ya que los ruidos externos interfieren con los sonidos provenientes de la caja torácica.
ESTUDIOS PARA APOYAR LA METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA INDIVIDUAL Hoy en día los estudios de laboratorio se han convertido en una herramienta básica para el arribo al diagnóstico; aunque, como antes se mencionó, no servirán de nada si no se ha realizado un examen clínico adecuado ni recopilado los datos necesarios para orientar el diagnóstico; si el médico no integra toda la información obtenida, no sabrá qué estudios auxiliares necesita y, por lo tanto, puede solicitar pruebas innecesarias, tratando de que éstas guíen su decisión.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
Es muy importante tener en cuenta que los estudios de laboratorio clínico y de gabinete ayudarán a conrmar o a descartar un diagnóstico presuntivo, o bien, a orientarlo. Los apoyos diagnósticos se pueden dividir en dos grandes grupos: ❏ ❏
Pruebas de campo Pruebas de gabinete
PRUEBAS DE CAMPO Se llaman pruebas de campo aquellas que pueden realizarse dentro del consultorio y de manera rápida y sencilla. Son de gran ayuda durante los procesos de urgencia médica en los cuales no es conveniente la espera prolongada de la entrega de los resultados por parte de un laboratorio clínico; basta con tener en el consultorio, clínica u hospital, una microcentrífuga, un microscopio, un refractómetro y tiras reactivas para la evaluación sanguínea y de orina. Estas pruebas son: la determinación del microhematocrito y de proteínas totales; la evaluación urinaria, la determinación de la glucosa y el análisis coproparasitoscópico directo. D
Es la determinación del valor de la fracción de eritrocitos en una muestra de sangre, la cual se obtendrá por centrifugación para separar los elementos que constituyen la sangre. Si se observa un aumento de este valor eritrocitario puede ser por hemoconcentración, o bien, por eritrocitosis; si está disminuido, puede indicar hemodilución, o bien, anemia.
Las proteínas plasmáticas son otros de los componentes que se evalúan al realizar un microhematocrito, y consiste en determinar la cantidad de proteínas totales en el plasma sanguíneo, según la cual puede detectarse hipoproteinemia e hiperproteinemia; comprende las inmunoglobulinas, la albúmina, el complemento, los factores de la coagulación y las enzimas; la determinación se realiza por medio de refractometría. E
Esta sencilla prueba se realiza por medio de tiras reactivas, las cuales proporcionan un panorama sicoquí mico de la orina, mediante la evaluación de los siguientes parámetros: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Leucocitos Nitritos Urobilinógeno Proteínas pH Sangre Densidad especíca (no muy conable) Cetona Bilirrubina Glucosa
Para la evaluación urinaria por medio de tiras reactivas es importante considerar el método de obtención de la muestra, que puede ser por sondeo, micción espontánea, compresión vesical y por cistocentesis (punción de la vejiga urinaria de forma transcutánea). Cuando se desea obtener una muestra estéril se preere este último método, frente al de la sonda urinaria, que contaminaría la muestra ocasionando alteración en alguno de los parámetros mencionados, con lo que habrían resultados falsos positivos.
F 10. Microhematocrito. El hematocrito puede revelar alteraciones que ayuden al diagnóstico . F 11. Refractómetros. El refractómetro permite medir la densidad urinaria para corroborar la funcionalidad renal.
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Por medio de refractometría se determina la densidad urinaria, con el n de evaluar la capacidad de concentración de los riñones (túbulos renales), para estimar la osmolalidad. Una disminución de este valor haría pensar en insuciencia renal, en tanto que un aumento sería un indicativo de deshidratación. Glucosa: Esta es también una prueba sencilla y rápida que se lleva a cabo con unas cuantas gotas de sangre y que aporta abundante información por medio de la medición de la glucemia (concentración de glucosa sanguínea), en la cual una disminución en su concentración indicaría hipoglucemia y un aumento indicaría hiperglucemia.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
F 13. Microscopio. El microscopio es de gran utilidad, ya que con él se pueden analizar distintas muestras.
PRUEBAS DE GABINETE Una vez que se ha estabilizado al paciente, en el caso de urgencias, o bien, cuando se tienen que realizar pruebas programadas, éstas deberán ser remitidas a los gabinetes correspondientes; dentro de las pruebas complementarias o auxiliares se encuentran las de laboratorio clínico: hemograma, bioquímica clínica, urianálisis y evaluación coprológica; las de laboratorios especícos y las áreas de diagnóstico por imagen. H
F 12. Tiras reactivas para determinar glucosa en orina. Las tiras reactivas son muy socorridas como pruebas de campo, principalmente en la medicina de urgencias.
Por medio del hematocrito y el frotis sanguíneo se evalúan los eritrocitos que conforman la sangre; existen también otros medios para ello, como la determinación de hemoglobina y eritrocitos, además de los índices de Wintobe, que dan mayor información acerca de la condición general del paciente y determinan la presencia de anemia y el tipo de ésta, entre otros parámetros.
E
B
Es una prueba que debería ser de rutina en la consulta diaria; está indicada en pacientes de cualquier edad, pero su aplicación es más importante en los animales en desarrollo. Por este medio se detecta la presencia de los parásitos que pudieran estar ocasionando un cuadro diarreico o de pérdida de peso. Para practicarla se necesitan asas coprológicas (fecal loop), que pueden ser sustituidas por hisopos, las cuales se introducen en el recto para obtener una pequeña muestra de excremento que tendrá que ser analizada en el microscopio.
Es otra herramienta para la evaluación sanguínea, que aporta información acerca de la funcionalidad de órganos de vital importancia para la homeostasis corporal, como lo son el hígado y el riñón, y sobre algunos componentes que pueden indicar anomalías sistémicas que requerirían ser atendidas a la brevedad posible, una vez obtenidos los resultados. U
En los laboratorios clínicos se realiza una valoración más completa de la orina que en la evaluación de campo, ya que en éstos se practican los exámenes físico (apariencia, color, olor y densidad), químico (pH, glu-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
cosa, cuerpos cetónicos, bilirrubina, urobilinógeno, ÁREAS DE DIAGNÓSTICO POR IMAGEN sangre y proteínas) y microscópico (detección de céluEl estudio por imagen es otra herramienta de gran ayulas y cristales) de la orina, con lo cual se obtiene mayor da para el médico veterinario, pues por este medio pueinformación de la muestra. de corroborar o descartar sus probables diagnósticos Es muy frecuente recurrir a estudios integrales presuntivos y, con base en éstos, realizar o formular un para elaborar el diagnóstico, lo que signica practicar mejor plan terapéutico y quizá un pronóstico acerca del el hemograma, la bioquímica clínica y el urianálisis de paciente que se está evaluando. Los estudios por imaun mismo paciente. gen más socorridos en la práctica clínica diaria son los estudios radiológicos, ultrasonográcos entre otros. E
F 14. Tubos de ensaye con sangre y orina. El perfil integral consiste en practicar el hemograma, la bioquímica clínica y el urianálisis, con el fin de obtener mayor información del paciente.
En la práctica clínica éste es quizá el estudio más utilizado por los médicos veterinarios para la visualización de estructuras de tejidos blando y óseo; ya que por medio de la radiología se pueden evaluar cavidades como la abdominal y la torácica, así como los aparatos apendicular (miembros torácico y pélvico) y axial (cabeza y columna vertebral).
E
También se pueden enviar al laboratorio muestras de excremento para evaluación coprológica, donde se detectarán parásitos y otros componentes, como proteínas, grasas y carbohidratos. L ABORATORIOS ESPECÍFICOS Otros tipos de pruebas de laboratorio con los que se puede contar son los especializados, como los bacteriológicos, virológicos, parasitológicos y anatomopatológicos, que resultan indispensables para el diagnóstico de enfermedades especícas, entre muchas otras, la prueba de ELISA para diagnosticar enfermedades de origen viral. F 16. Radiografía. La radiografía es uno de los métodos diagnósticos por imagen más utilizados.
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F 15. Prueba de ELISA. Las pruebas de ELISA son de gran ayuda como pruebas específicas para descartar o confirmar una posible enfermedad infectocontagiosa.
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Este tipo de estudio es ideal para observar estructuras de diferentes partes del cuerpo en movimiento, como la cavidad abdominal y la cavidad torácica, y algunas áreas del aparato locomotor, principalmente las cavidades articulares, por ejemplo, de la rodilla. Por medio de la ultrasonografía también es posible corroborar o descartar situaciones que no quedaron del todo esclarecidas con el estudio radiológico, lo cual lo convier-
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
te en un auxiliar muy importante en el diagnóstico; o bien, profundizar en anormalidades observadas a través de las placas radiográcas.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
lugares en México a los que se puede acudir para llevar a cabo dichos estudios.
F 17. Ultrasonido. La ultrasonografía se ha convertido en un diagnóstico por imagen muy valioso, ya que permite observar el movimiento de las estructuras.
O
Para elaborar el diagnóstico pueden ser requeridos otros tipos de estudios como la uoroscopia, la endoscopia, la artroscopia, la imagen por resonancia magnética y la tomografía computarizada. El gran inconveniente de algunos de éstos (resonancia magnética, tomografía computarizada) es el elevado costo y la poca disponibilidad de de los gabinetes de uso humano para uso en animales, ya que en la actualidad son los únicos
F 18 19. Resonancia magnética. La resonancia magnética es un método de diagnóstico por imagen más específico, que en la actualidad va ganando terreno por el alto porcentaje de efectividad en el diagnóstico.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Examen clínico general en perros y gatos Alejandro Jiménez Yedra
INTRODUCCIÓN E general permite detectar si hay alteraciones en los diferentes aparatos y sistemas, y a su vez, en conjunto con los datos obtenidos en la historia clínica, realizar una lista de los posibles diagnósticos presuntivos, que serán conrmados o descartados por medio de las pruebas de laboratorio y de gabinete necesarias para este n. Los métodos diagnósticos de laboratorio o de gabinete no deben sustituir al examen clínico general, más bien deben ser un complemento de éste para llegar al diagnóstico. Este examen debe considerarse como una práctica de rutina en todos los pacientes, aunque se presenten al consultorio sin historia o semiología de alguna enfermedad (incluso en aquellos que sólo se lleven a vacunación o que no presenten un problema evidente), pues en numerosas ocasiones se detectan problemas que aún no se maniestan con signos clínicos. Los modos de realizar el examen clínico general son muy variables (se puede empezar de la cabeza a la cola o viceversa), pero lo más importante es que se lleve a cabo de manera ordenada, completa, lógica y concisa. Para este examen el médico necesita emplear métodos propedéuticos directos —basados en la aplicación de los sentidos de la vista, el oído y, sobre todo, el tacto— los cuales incluyen la observación, palpación, percusión y auscultación; e indirectos, por medio del uso de instrumentos, como el estetoscopio, el oftalmoscopio y otros. El consultorio debe ser amplio para que permita la circulación de médicos, ayudantes y propietarios; estar libre de sonidos externos y de distractores, y tener en su interior una mesa, de preferencia en buenas condiciones (que no se tambalee) para la comodidad del paciente. Para facilitar el aprendizaje del examen clínico general se le describirá en forma ordenada de la parte craneal a la caudal.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
CONSTANTES FISIOLÓGICAS El examen clínico general tiene la nalidad de obtener la mayor información posible del paciente, y consiste en la valoración de los signos vitales de un individuo; sus constantes siológicas, por medio de las técnicas antes descritas, y el peso corporal, que debe tomarse siempre al inicio de la consulta, todas la veces que se presente el paciente al consultorio, clínica u hospital. A continuación se enlistan los elementos que se evalúan en el examen clínico general. ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Mucosas (M). Tiempo de llenado capilar (TLLC). Reejo deglutorio (RD). Reejo tusígeno (RT). Frecuencia cardiaca (FC). Frecuencia respiratoria (FR). Palmo-percusión (PP). Palpación abdominal (PA). Pulso (P). Linfonodos (LN). Temperatura (Tº). Porcentaje de hidratación (% H). Peso corporal. Estado corporal. Estado de conciencia.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
como las cruzas de éstas, en las que es difícil de evaluar la lengua, ya que normalmente es azulosa o morada.
F 1 2. Imágenes de mucosa oral.
F 3 4. Imágenes de mucosa conjuntival.
MUCOSAS Las mucosas que más comúnmente se evalúan son la oral, la conjuntival; en machos, la prepucial y en hembras, la vaginal. Éstas deben percibirse en su estado normal: rosas o rosadas. A veces aparecen muy rojizas (congestionadas) y son normales, pero también puede tratarse de una manifestación secundaria de ciertos factores, por ejemplo, ebre. En otras ocasiones se presentan descoloridas (pálidas), por anemia, o de color amarillo (ictericia) desde tenue, hasta amarillo intenso, lo cual puede deberse a infecciones, alteraciones hepáticas, o bien, al proceso de destrucción eritrocitaria; nalmente, pueden observarse de color azuloso (cianóticas) por alteraciones que involucren hipoxia, en donde las concentraciones de CO 2 se elevan por encima de 50 g/L. Un sitio donde aparece comúnmente este signo y resulta fácil de apreciar es la lengua. Hay dos razas, la Chow-chow y la Sharpei, así
F 5. Imágenes de mucosa prepucial.
TIEMPO DE LLENADO CAPILAR Este parámetro es un poco subjetivo, pero puede servir como indicador del porcentaje de hidratación del paciente. El tiempo de llenado capilar se evalúa ejerciendo una ligera presión sobre las mucosas, o bien, sobre las encías de la cavidad bucal; esto se realiza levantando el belfo y observando su color, después se presionan ligeramente, con lo cual palidecen, y al retirar esta presión se toma el tiempo que tardan en regresar a su color original.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 6. Tiempo de llenado capilar.
REFLEJO DEGLUTORIO La integridad neurológica del IX par craneal que permite el acto de tragar se evalúa con el reejo deglutorio. Para ello se ejerce una ligera presión sobre los cartílagos de la laringe, con lo que se puede apreciar si el paciente deglute con facilidad o presenta disfagia (deglute con dicultad), la cual habitualmente está relacionada con trastornos motores u obstructivos del esófago; odinofagia, que se caracteriza por un dolor fuerte, opresivo, que se produce al deglutir, y que es causado generalmente por irritación de la mucosa esofágica o por una alteración muscular de ese órgano,y por último, afagia (ausencia de este reejo).
F 8. Médico estimulando el reflejo tusígeno .
FRECUENCIA CARDIACA Uno de los parámetros más importantes de las constantes siológicas es la frecuencia cardiaca. Ésta se evalúa por la cantidad de latidos por minuto (lpm); además, se debe apreciar ritmicidad en los latidos, caracterizados por el “dup-lup”, que emite el corazón por el cierre de sus válvas; cualquier alteración en el ritmo amerita una valoración más profunda del sistema cardiovascular. Se recomienda que la auscultación del corazón se realice con el paciente en cuadripedestación para obtener el sonido real de este órgano, ya que en algunas otras posiciones (decúbito) pueden originarse sonidos falsos (soplos). La frecuencia cardiaca normal en el perro varía mucho según el tamaño: Perros chicos Perros medianos Perros grandes Perros gigantes
160-180 lpm 140-160 lpm 100-140 lpm 60-100 lpm
La frecuencia cardiaca normal en el gato puede variar entre 140 y 220 lpm.
F 7. Médico estimulando el reflejo deglutorio.
REFLEJO TUSÍGENO Este reejo se prueba estimulando la tráquea cervical: se presionan suavemente sus paredes deslizando los dedos índice y pulgar a lo largo de la tráquea. En condiciones normales no se obtiene respuesta; la presencia de este reejo, que se maniesta como tos, puede ser in dicativo de una alteración de las vías respiratorias altas. F 9. Médico evaluando la frecuencia cardiaca.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
FRECUENCIA RESPIRATORIA En esta constante se evalúa la cantidad de respiraciones por minuto (rpm), el ritmo y el esfuerzo de la capacidad ventilatoria; también se debe determinar el tipo de respiración que presenta el paciente, entre los siguientes: ❏
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Batipnea: es un estado anormal pero no patológico, caracterizado por una frecuencia excesivamente baja de la respiración. Polipnea o hiperpnea: respiración rápida, profunda o trabajosa que aparece normalmente durante el ejercicio, también se observa en cuadros patológicos, como dolor, ebre y cualquier trastorno en el que el oxígeno sea insuciente, lo cual suele ocurrir en las enfermedades respiratorias y circulatorias. Taquipnea: la frecuencia respiratoria es muy alta y las respiraciones son superciales. Es la reacción característica de los perros ante la pérdida de calor (jadeo). El tipo patrón respiratorio: es otro factor que debe considerarse cuando se presenta el paciente; éste puede ser cualquiera de los siguientes: Patrón obstructivo: se caracteriza por un aumento en la profundidad respiratoria, con frecuencia normal o incrementada. Se aprecia tanto en vías respiratorias altas como bajas. Si la presentación es en vías altas, generalmente se observa un incremento del esfuerzo inspiratorio, mientras que si se produce en vías respiratorias bajas, es común que haya un aumento en el esfuerzo espiratorio. Patrón restrictivo: Este tipo de patrón se presenta cuando está reducida la capacidad de insuación pulmonar, que da como resultado una disminución de la profundidad y un aumento compensatorio en la frecuencia respiratoria. El origen de este tipo de patrón puede encontrarse en la presencia de problemas pulmonares (parénquima), torácicos y abdominales. Existe un tercer patrón denominado misceláneo, que se presenta como forma compensatoria ante un problema sistémico y no como un problema del aparato respiratorio, que a su vez se pueden dividir en subtipo 1 y 2.
F 10. Médico evaluando campos pulmonares.
PALMOPERCUSIÓN Esta técnica se emplea con el n de producir el reejo tusígeno de las vías respiratorias bajas; en las únicas estructuras de las vías respiratorias bajas que puede producirse este reejo son la carina y los bronquios. La palmopercusión consiste en dar ligeras palmadas sobre la caja torácica. De forma normal el reejo tusígeno es negativo y sólo se presenta cuando en esas estructuras existe irritación y las vibraciones del golpeteo sobre la caja torácica estimulan esta irritación y provocan el reejo de la tos.
F 11. Médico realizando palmopercusión.
PALPACIÓN ABDOMINAL Se lleva a cabo la palpación con el n de identicar anormalidades de la cavidad abdominal (dolor, distensión gástrica o abdominal, agrandamiento de órganos como el bazo, hígado, vejiga, etc.). Debe colocarse al animal de preferencia en cuadripedestación y deslizar con delicadeza las manos por la cavidad. Es necesario conocer la relación anatómica de las estructuras alojadas en el abdomen. Se recomienda se-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
guir este orden: de la porción craneal a la caudal, para ir identicando las estructuras según los cuadrantes en los que se divide la cavidad. Para poder ubicar el lugar que ocupan los órganos contenidos en el abdomen se sugiere seccionar imaginariamente esta área:, se trazan líneas imaginarias para dividir la cavidad en cinco regiones, que serán útiles para la ubicación anatómica de las estructuras durante la palpación y la evaluación radiográca, de la siguiente forma: ❏
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Se traza una línea a partir de la tercera vértebra lumbar hacia el cartílago xifoides y otra a partir del mismo punto hacia la región inguinal. Se traza una línea horizontal sobre la región media del abdomen (del trocánter mayor del fémur hacia la articulación del hombro).
Al trazar estas líneas se obtienen cinco regiones: craneodorsal, craneoventral, región media, caudodorsal y nalmente una caudoventral. Dentro de la descripción de la palpación abdominal debe incluirse la localización, el tamaño, la forma y las características, si es desplazable o no y la consistencia de la supercie palpada. En perros de gran tamaño (razas medianas y gigantes) se recomienda la palpación con ambas manos, porque a veces el tamaño diculta el procedimiento. Se requiere cierto esfuerzo para hacer una presión lo sucientemente profunda para poder identicar todas las estructuras. En los animales de tamaño pequeño (perros de talla chica y gatos) basta con la utilización de una mano para ejercer la presión necesaria para la identicación de las estructuras anatómicas ahí alojadas. A veces es posible levantarlos o ponerlos en bipedestación para que por gravedad caigan hacia la parte caudal las estructuras con posición craneal con lo cual será más fácil la identicación de aquellas alojadas en esa zona. De forma normal, tanto en perros como en gatos, el estómago no es palpable, a menos que esté ocupado con alimento; el riñón derecho no es fácilmente palpable (el riñón derecho está más craneal que el izquierdo) excepto en los cachorros, a edad temprana, estos órganos se encuentran nadando libremente en la cavidad. En los gatos también son fácilmente palpables. Hay que tener cuidado con los cachorros y con los gatos, ya que los órganos son fácilmente confundidos con cuerpos extraños.
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F 12, 13 14. Médico realizando palpación abdominal.
PULSO El sitio más común para la medición del pulso es la arteria femoral. Por medio de la palpación arterial es posible darse una idea de la fuerza, regularidad y frecuencia de la presión arterial periférica (presión con la que son irrigados los tejidos) la cual se evalúa junto con la frecuencia cardiaca. El pulso debe ser fuerte, lleno y corresponderse con la frecuencia cardiaca (tener una relación de 1:1); el que la frecuencia del pulso sea menor que la cardiaca (incongruente) es muy sugerente de problemas de origen cardiaco; a este hallazgo se le denomina deciencia de pulso, debido a que la contracción del corazón no tiene la suciente fuerza para que en cada latido se genere una onda pulsátil.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
TEMPERATURA
F 15 16. Médico evaluando el pulso.
LINFONODOS
Se preere que esta constante sea la última en evaluarse, ya que, para la mayoría de los pacientes este procedimiento no es muy grato y, por lo tanto, puede alterar otras constantes, como la FC y FR, puesto que se mide con termómetros de mercurio que se colocan en el ano. Además, la mayoría de las ocasiones los pacientes son llevados a consulta caminando o en vehículos automotores, situaciones que pueden elevar la temperatura; lo recomendado en estos casos es evaluar la temperatura (Tº) al nal, para que en el transcurso del examen clínico los animales se calmen un poco y por ende ésta descienda hasta sus valores de referencia. En la actualidad, para medir este valor se cuenta con termómetros electrónicos, que se colocan en el oído por lo que pueden ser menos molestos para los pacientes. La Tº normal, tanto en el perro como el gato, es de 38.5 a 39.5ºC. Bajo situaciones de urgencia esta constante debe ser uno de los primeros parámetros que se evalúe, y sin duda alguna, el primero en los casos de hipo o hipertermia.
Los linfonodos son estructuras sólidas del sistema linfático; pueden encontrarse agrandados principalmente por procesos infecciosos o neoplásicos. Los linfonodos palpables, tanto en perros como en gatos, son los submandibulares; preescapulares, (también denominados cervicales superciales); inguinales y poplíteos. Algunos autores arman que los linfonodos axilares son palpables, pero lo cierto es que en pocos animales es de veras posible palparlos, entre estos, los animales esbeltos. F 20. Médico evaluando la temperatura rectal.
HIDRATACIÓN
F 17, 18 19. Médico palpando los linfonodos submandibulares, preescapulares y poplíteos.
Como su nombre lo dice, esta constante hace referencia al grado de hidratación en que se encuentra el paciente, aunque de forma subjetiva, ya que se mide por medio de la tracción de la piel (turgencia). Se recomienda que la tracción se realice en el animal en cuadripedestación y de preferencia en zonas como la interescapular (región de la cruz) y la lumbosacra (región de la grupa). Los pacientes gerontes o los demasiado esbeltos (caquécticos) pueden parecer deshidratados cuando únicamente se inspecciona la turgencia, debido a
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
la pérdida de la elasticidad natural de la piel; en contraste, los animales obesos, pueden erróneamente parecer bien hidratados, gracias a la cantidad de grasa subcutánea. El grado o porcentaje de deshidratación debe ser evaluado junto con otros parámetros, para así poder otorgar grados de deshidratación más objetivos y calcular el porcentaje de deshidratación que presenta el paciente, el cual permitirá iniciar una terapia de reposición de líquidos hasta obtener una hidratación normal. Se debe observar si los ojos están hundidos o hay protrusión en los terceros párpados, y si las mucosas están secas o pegajosas.
PESO CORPORAL Es indispensable pesar al paciente siempre que se presente a consulta, ya sea por primera vez, o bien, a sus revisiones siguientes, y también cuando se encuentre hospitalizado, pues de esta forma se puede evaluar si se está hidratando de manera adecuada, en el caso de los que sufren de deshidratación, y será un parámetro esencial para corroborar si la terapia de líquidos es adecuada o no, además de que si se conoce el peso del paciente se puede dosicar correctamente cualquier medicamento. Es necesario volver una rutina el pesar al paciente antes de la consulta para no omitir este procedimiento a causa de su olvido.
Hz
Porcentaje de Signos clínicos deshidratación < 5% No detectable 5 - 6% Pérdida sutil de elasticidad cutánea. 6 - 8% Retraso denitivo en el retorno de la piel a su posición normal. Prolongación leve Ojos ligeramente hundidos en la órbita. Mucosas ligeramente secas. 8 - 10% Tiras tensas de piel en el sitio (lienzo húmedo). Prolongación denitiva del tiempo de llenado capilar (>2 seg). Ojos hundidos en las órbitas. Mucosas secas. Posibles signos de choque (taquicardia, miembros fríos, pulso débil, vacío y rápido). 12 - 15% Signos francos de choque. Muerte del paciente.
F 21. Médico comprobando la turgencia de la piel.
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F 22 23. Médico pesando a un paciente.
F 24. Pesando a un gato.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
ESTADO CORPORAL
ESTADO DE CONCIENCIA
Como su nombre lo indica, este parámetro da un indicio del estado de carnes del paciente que se va a evaluar. Cabe mencionar que estos valores se toman con base en el estándar racial. Valores que indican el estado corporal:
Este parámetro se valora por medio de la observación y la integración de las respuestas del paciente en relación con lo siguiente:
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Peso ideal: el peso según el estándar racial. Bajo de peso: pérdida de 10% de masa corporal. Emaciación: pérdida de peso hasta 20% de masa corporal. Caquexia: pérdida de más de 20% de masa corporal asociado en su mayoría con debilidad severa, anorexia y depresión. Sobrepeso: incremento de 10 a 15% de grasa corporal Obesidad: 15% más de grasa corporal
Existen otros parámetros que algunas empresas que fabrican alimento comercial brindan para poder otorgar un valor al estado corporal, pero estos valores son subjetivos, ya que se basan en mediciones por observación visual y táctil; por lo tanto, no es conveniente utilizarlos.
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Estado de vigilia: en donde el paciente se encuentra alerta y responsivo a todos los estímulos externos. Depresión: se caracteriza por el mantenimiento de la conciencia pero en un estado de inactividad, ya que el animal responde poco a los estímulos externos y tiende a dormir si no se le molesta. Estupor: estado en el que el paciente duerme si no es molestado; los estímulos de baja intención o inofensivos como los táctiles y sonoros no suelen desencadenar respuesta, pero reacciona bajo estímulos dolorosos. Coma: estado de inconciencia profunda. El paciente no reacciona ante estímulos dolorosos, pero los reejos simples permanecen intactos. El estado de conciencia es un parámetro que siempre debe quedar asentado en el expediente.
F 27. Perro alerta y responsivo. F 25 . Perro con perdida de peso.
F 26. Perro con sobrepeso.
F 28. Perro deprimido.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
EXAMEN DIAGNÓSTICO POR APARATOS Y SISTEMAS EN PERROS Y GATOS Inmediatamente después de la evaluación general del paciente debe realizarse un examen más especializado en ciertas regiones del cuerpo, ya que el objetivo es identicar las alteraciones en los diferentes aparatos y sistemas. Como ya se ha mencionado, tiene que aplicarse el examen clínico general para evitar caer en la denominada “visión de túnel”. Es muy común que al presentarse un paciente con un problema evidente, la atención del médico se enfoque en ese problema; sin embargo, algo que un clínico nunca debe olvidar es la revisión completa del individuo que tiene enfrente y si detecta cualquier anomalía, proceder a la ob-
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servación minuciosa y detallada del aparato, sistema, constante siológica o signo vital alterado, con el n de determinar el grado de la lesión, además de practicar las pruebas necesarias para corroborar o descartar la presencia de enfermedad. A partir de los resultados obtenidos se dará a conocer al propietario la gravedad del problema y las alternativas que existen al respecto, en benecio del paciente y de él mismo. En los siguientes apartados se describen algunos de los exámenes especializados que, como parte de la metodología diagnóstica, orientan una evaluación detallada de los diferentes aparatos y sistemas, así como las pruebas complementarias que se sugieren para la elaboración de un mejor y quizá más rápido diagnóstico.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
> Literatura consultada
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Aguilar BJ. Diplomado a distancia en medicina, cirugía y zootecnia en perros y gatos. Métodos y técnicas de diagnóstico. Módulo I. México (D.F.): UNAM, 2005.
❚
Birchard, Sherding. Manual clínico de procedimientos en pequeñas especies. 2ª ed. Madrid: McGraw HillInteramericana, 2002.
❚
Dibartola Stephen P. Terapéutica de líquidos en pequeñas especies. 2a ed. México: McGraw Hill-Interamericana, 2002.
❚
Duna J. Textbook of small animal medicine. Londres: Saunders, 1999.
❚
Leib SM, Monroe EW. Practical small animal internal medicine. EUA: Saunders, 1997.
❚
Morgan. Clínica de pequeños animales. 3ª ed. Madrid: Harcourt-Brace, 1999.
❚
Willard T. Small animal clinical diagnosis by laboratory methods. 4a ed. St. Louis Missouri, EUA: Saunders, 2004.
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Metodología diagnóstica del aparato cardiovascular en perros y gatos Yukie Tachika Ohara
INTRODUCCIÓN E es uno de los sistemas más importantes del organismo, ya que mantiene una relación estrecha con los demás aparatos y sistemas, por lo cual su correcto funcionamiento es esencial. La insuciencia cardiaca es un problema médico muy común de los perros y gatos mayores de 8 años de edad, y una de las causas de muerte más frecuentes en los animales de compañía. El origen de esta insuciencia es muy variado, siendo principalmente las enfermedades dege nerativas de las válvulas del corazón y las enfermedades del miocardio. En estas alteraciones es muy importante realizar una buena aproximación diagnóstica para establecer las estrategias terapéuticas adecuadas a cada tipo de problema. El primer paso para atacar la enfermedad es identicarla, por lo cual, ante todo, se debe denir lo siguiente: Insuciencia cardiaca: se reere a un síndrome clínico causado por algún trastorno en el corazón, que da por resultado un mal funcionamiento cardiaco, ya sea sistólico o diastólico, lo sucientemente severo para sobrepasar los mecanismos compensatorios del sistema cardiovascular. Esta insuciencia produce signos de edema (congestión) o signos clínicos de perfusión periférica disminuida (disminución del gasto cardiaco), tanto en reposo como en actividad.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
RECOLECCIÓN DE LA INFORMACIÓN El diagnóstico de las anormalidades cardiacas en perros y gatos se realiza integrando la información que se obtiene por los siguientes medios: ❏ ❏ ❏ ❏
Reseña Anamnesis o historia clínica Examen físico general Pruebas de laboratorio y gabinete: ❏ Electrocardiografía ❏ Radiología y angiocardiografía ❏ Ecocardiografía ❏ Hemograma, bioquímica sérica y otros estudios.
El examen físico del aparato cardiovascular es especialmente importante en el diagnóstico, ya que proporciona datos clave para la sospecha clínica de alguna enfermedad en particular.
F 2. Corazón con cardiomiopatía dilatada. Nótese la distensión marcada del atrio y del ventrículo izquierdos, así como la disminución severa del grosor de la pared del ventrículo izquierdo.
RESEÑA La información resultante de un interrogatorio completo y lo más exhaustivo posible ayudan a la sospecha inicial de una alteración cardiaca; por esto, el clínico debe preguntar lo que necesite saber, de una manera congruente y ordenada, tratando de no orientar las respuestas que se desean obtener. Los datos que se requieren en la reseña de cualquier paciente enfermo del corazón son los siguientes: ❏
Especie: sabemos que existen enfermedades cardiovasculares que se presentan más en perros que en gatos y viceversa; por ejemplo, la cardiomiopatía dilatada es más frecuente en perros que en gatos, mientras que la cardiomiopatía hipertróca es más común en gatos que en perros.
F 3. Felino doméstico con cardiomiopatía hipertrófica. Nótese la paraparesis de ambos miembros pelvianos, debida a enfermedad tromboembólica en aorta caudal secundaria a la cardiomiopatía hipertrófica. ❏
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F 1. Perro Pastor Alemán con cardiomiopatía dilatada. Nótese el abdomen distendido por ascitis.
Edad: este es otro dato importante que ayuda a discriminar clínicamente la presencia de una anormalidad cardiaca congénita de una adquirida; es más fácil sospechar de una enfermedad congénita en un cachorro que en un paciente adulto o viejo. Del mismo modo, es más fácil encontrar procesos degenerativos de las estructuras cardiacas en animales adultos y viejos, que en animales jóvenes. Raza: existen algunas razas de perros y gatos que tienen predisposición a la presentación clínica de algunas enfermedades cardiacas, sobre todo las
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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congénitas. Así, se puede mencionar la persistencia del conducto arterioso en el Poodle, estenosis subaórtica en el Terranova, tetralogía de Fallot en el Keeshond, etcétera. Entre las enfermedades del miocardio, se observa cardiomiopatía dilatada principalmente en razas grandes y gigantes de perros como el San Bernardo, el Terranova, el Mastín y otros, mientras que en los gatos es más común que este problema aparezca en la raza Persa, que en otras. Sexo: se ha encontrado que la persistencia del conducto arterioso se presenta en un número mayor de hembras que de machos, mientras que la enfermedad degenerativa valvular crónica y la cardiomiopatía dilatada afectan con mayor frecuencia a los machos que a las hembras.
HISTORIA CLÍNICA Y ANAMNESIS Dentro de la anamnesis, el motivo principal de consulta de un paciente cardiópata es la tos, intolerancia al ejercicio, presencia de mucosas cianóticas o pálidas, abdomen distendido a causa de ascitis, etcétera. La tos se detecta sobre todo en la noche, y no porque la siopatología marque una hora determinada para la aparición de este signo clínico, sino porque es la hora en que los propietarios están más tiempo en casa y advierten este problema; además de que cuando existe menos ruido la tos es más notoria. También puede haber tos después de jugar, realizar ejercicio (desde esfuerzos mínimos hasta ejercicio fuerte) o de cualquier actividad que implique excitación.
F 4. Airedale Terrier con tos y dificultad respiratoria. Nótese la posición arqueada de su cuerpo que denota el esfuerzo respiratorio de la perra. Presenta derrame pleural secundario a insuficiencia cardiaca congestiva derecha por cardiomiopatía dilatada.
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En cuanto a la intolerancia al ejercicio, el propietario nota que el perro o gato rehusa caminar o correr las distancias acostumbradas unas cuantas semanas antes. Los propietarios muy observadores se dan cuenta de que el perro jadea mucho, se cansa rápido e incluso el color de la lengua le cambia o se torna azulado (cianosis). A veces, lo único que advierten es que el perro permanece mucho tiempo echado, no responde a los llamados a jugar, o sencillamente no hace nada por seguir el juego que antes le fascinaba, como ir por una pelota. El propietario en ocasiones externa la preocupación de que el perro “se está volviendo sordo, porque no acude a mi llamado a jugar”, o que “a lo mejor tiene una pata lastimada y por eso no quiere jugar”. También sucede que los propietarios notan que el perro o el gato se vuelve más activo durante la noche, que se la pasa caminando todo el tiempo, que no se “acuesta” para dormir. Esto puede deberse a que el perro con insuciencia cardiaca que ha desarrollado edema pulmonar busca posiciones de ortopnea, es decir, mantener el cuerpo en una posición en la cual no le cueste trabajo respirar. Por eso y para no sentir que se asxia procura estar activo y evita acostarse. Algunos perros con insuciencia cardiaca logran una perfusión sanguínea periférica muy pobre, y si esto afecta el encéfalo ocasiona hipoxia cerebral, que el propietario suele referir como “desmayos” o “desvanecimientos”. Algunas veces estos colapsos pueden presentarse acompañados de ciertas conductas parecidas a los movimientos “de carrera”, que a veces espantan a los propietarios porque creen que su perro ha sufrido convulsiones. Es deber de los médicos realizar el interrogatorio pertinente para determinar si el evento referido fue efectivamente una convulsión o si sólo se trató de un desvanecimiento. Los perros con insuciencia cardiaca congestiva del lado derecho desarrollan ascitis con cierta frecuencia. Esto puede malinterpretarlo el propietario creyendo que el perro ha “engordado” sin causa aparente, ya que no ha habido modicación de la dieta, ni la cantidad de la misma. Otros elementos importantes dentro de la obtención de la historia clínica que conviene investigar son: En caso de sospechar de alguna cardiopatía congénita, averiguar, hasta donde sea posible, el estado físico de los hermanos de camada; si éstos sufren o sufrieron de los mismos signos clínicos, o si en cruzas de los padres ha habido otro tipo de defectos con-
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génitos, pues este conocimiento ayuda a orientar el diagnóstico. ❏
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Es importante investigar si el perro ha tenido problemas que puedan ser compatibles con insuciencia hepática o renal, o si se le han realizado pruebas de laboratorio, como hemograma, bioquímica sérica, u otras, porque la mayoría de los medicamentos que se utilizan para el control de insuciencia cardiaca afectan el metabolismo hepático y la excreción renal, y si se tiene un mal funcionamiento de los órganos involucrados en estos procesos, el peligro de toxicidad con los fármacos aumenta. Además, la ascitis en un paciente puede ser causada por insuciencia hepática, pero interpretarse como orignada por una insuciencia cardiaca derecha, y un perro con insuciencia renal puede cursar con hipertensión sistémica, y afectar de manera secundaria el gasto cardiaco, al aumentar la poscarga para el ventrículo izquierdo, generando signos clínicos compatibles con los de insuciencia cardiaca izquierda. También es importante averiguar si el paciente tiene historia de problemas respiratorios crónicos (brosis pulmonar, neoplasias pulmonares o metastásicas, etc.), ya que éstos pueden explicar la presencia de hipoxemia y cianosis, y en casos extremos, la hipertensión pulmonar severa, que a veces ocasiona cor pulmonale. Por último, es necesario conocer la medicación que se ha administrado al paciente, por cuánto tiempo y a qué dosis, pues al menos con el uso de diuréticos se ha observado el desarrollo de cierta tolerancia que ocasiona resistencia y por lo tanto hace inecaz el tratamiento.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
Frecuencia cardiaca: al disminuir el gasto cardiaco por cualquier razón, la primera reacción reeja del organismo es activar la respuesta del sistema nervioso simpático, que consiste en liberar catecolaminas, como la adrenalina y noradrenalina. Esto lleva a una taquicardia transitoria, la cual trata de compensar el bajo gasto cardiaco con que cursa el paciente. Por eso es importante recalcar que si se encuentra taquicardia en un paciente que NO esté sometido a una situación de estrés, o que esté en reposo, se debe tener cuidado, ya que ese puede ser el primer signo clínico de insuciencia cardiaca. La taquicardia asociada con un pulso débil puede indicar la presencia de taquiarritmias, como brilación atrial. La bradicardia, por otro lado, junto con un pulso fuerte, puede ser indicativa de bradiarritmias, como bloqueos atrioventriculares. Deciencia de pulso: la frecuencia del pulso sanguíneo se debe tomar al mismo tiempo que la frecuencia cardiaca, y deben coincidir en una ritmicidad de 1:1 (una pulsación por un latido cardiaco). Cuando se detecta una frecuencia cardiaca mayor que la del pulso se le llama deciencia de pulso, y si la frecuencia cardiaca corresponde además a una taquicardia, entonces, es altamente probable la existencia de una arritmia cardiaca.
EXAMEN FÍSICO GENERAL El examen físico es la fuente de información más valiosa con que cuenta el médico veterinario para el diagnóstico de una enfermedad cardiaca, pues no depende de la apreciación subjetiva del propietario, sino que se basa en la observación objetiva de los signos clínicos que presentan los pacientes. Debe realizarse un examen físico general completo. A continuación se mencionan algunas particularidades que se deben buscar en el examen físico de un paciente cardiópata.
F 5. Forma correcta de auscultar a un perro, palpando el pulso femoral y verificando que correspondan en una frecuencia 1:1 la frecuencia cardiaca y la frecuencia del pulso.
La calidad del pulso es importante, ya que si es débil y vacío en un cachorro con signos de insuciencia cardiaca izquierda podría sugerir la presencia de
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estenosis aórtica, o si se trata de un paciente adulto, signica que la insuciencia cardiaca está provocando una disminución importante de la perfusión periférica. En gatos con cardiomiopatía dilatada o hipertróca, es común que se desarrollen tromboembolismos que ocluyan las arterias ilíacas externas, lo cual se maniesta por la presencia de miembros pelvianos fríos y sin pulso. Por el contrario, encontrar distensión de las venas yugulares o pulso en estas estructuras anatómicas sugiere una congestión venosa por insuciencia cardiaca derecha; sin embargo, esto es un poco difícil de evaluar en pacientes obesos o que hayan recibido tratamiento previo con diuréticos.
F 7. Revisión de mucosas craneales. En este caso, la mucosa oral se encuentra de color rosa (normal).
F 6. Gato con cardiomiopatía hipertrófica. Nótese la cianosis que se aprecia en el lecho ungual. Presenta paraparesis por enfermedad tromboembólica en aorta caudal por cardiomiopatía hipertrófica. ❏
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Color de las mucosas y tiempo de llenado capilar: las mucosas normales de color rosado pueden volverse cianóticas cuando hay hipoxemia, lo cual es secundario al pobre intercambio gaseoso por edema pulmonar en casos de insuciencia cardiaca. De las cardiopatías congénitas, la más cianosante de todas es la Tetralogía de Fallot. Se pueden encontrar mucosas hiperémicas en pacientes con eritrocitosis secundaria a hipoxia en casos de persistencia del conducto arterioso reverso o Tetralogía de Fallot. Se deben revisar tanto mucosas craneales (conjuntival, nasal, oral) como caudales (vaginal o prepucial, anal); esto es por lo que se le llama “cianosis diferencial” al hallazgo de mucosas craneales normales con mucosas caudales cianóticas, lo cual es característico de persistencia de conducto arterioso reverso
F 8. Revisión de mucosas caudales. Aquí la mucosa vaginal es de color rosa (normal). ❏
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Auscultación de los campos pulmonares: se debe realizar de manera sistemática en busca de sonidos anormales como crepitaciones o roces, lo que indicaría presencia de líquido, lo cual apoya el diagnóstico de insuciencia cardiaca izquierda con edema pulmonar. Sin embargo, es importante tener en cuenta que el paciente en ese momento puede estar padeciendo alguna enfermedad respiratoria primaria que produzca los mismos signos clínicos y alteraciones a la auscultación. Si por el contrario, se diculta escuchar los sonidos respiratorios y cardiacos, se debe sospechar de un derrame pleural o pericárdico, o de ambos, lo que apoya el diagnóstico de ascitis, junto con insuciencia cardiaca congestiva derecha o bilateral. Auscultación de los sonidos cardiacos: en los ruidos cardiacos se observan dos cualidades:
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
Fonéticas los ruidos cardiacos normales se representan con las onomatopeyas “lub” para el sonido sistólico, y “dup” para el sonido diastólico. Cuando uno o ambos sonidos no se escuchan así, como sonidos cortos, secos y claros, se trata de un sonido anormal. Los soplos cardiacos se detectan por el sonido que se genera al pasar la sangre a través de las válvulas, porque éstas tienen un mal cierre. Para describir el sonido que se escucha, se dice que es como agregar una terminación “f” a los sonidos antes mencionados, por lo que un soplo sistólico se representaría como un “lub-dup”, lo cual indica un mal cierre de las válvulas atrioventriculares, y un soplo diastólico, como un “lub-dup”, que indica un mal cierre de las válvulas semilunares. Los soplos continuos, que se escucharían como “lubf-dupf”, también son llamados “de maquinaria”, y son indicativos tanto de un soplo sistólico como de uno diastólico. Este tipo de soplo cardiaco es característico de la persistencia de conducto arterioso. Los soplos cardiacos se clasican según su in tensidad en las categorías que se presentan en el siguiente cuadro.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
F 9. Zona de auscultación de la válvula pulmonar.
CLASIFICACIÓN DE LOS SOPLOS SEGÚN SU INTENSIDAD Y CARACTERÍSTICAS Grado
Características
1
Muy suave, localizado, detectable con dicultad.
2
Suave, pero fácilmente audible.
3
De intensidad suave a moderada, no siempre se acompaña de temblor precordial.
4
De moderado a intenso, puede acompañarse de temblor precordial, presenta radiación ligera.
5
Fuerte, con temblor precordial prominente y con radiación amplia.
6
Muy fuerte, con temblor precordial prominente, radiación amplia, se ausculta aún retirando el contacto del estetoscopio con el tórax.
El último parámetro importante que se debe considerar al categorizar un soplo cardiaco es el sitio que presenta el sonido de mayor intensidad. Esto se hace considerando el área de auscultación de las válvulas del corazón, que se describen a continuación.
F 10. Zona de auscultación de la válvula aórtica.
F 11. Zona de auscultación de la válvula mitral.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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F 12. Zona de auscultación de la válvula tricúspide.
el ujo sanguíneo. Esto sucede sobre todo en las anormalidades de las válvulas del corazón, ya sean estenosis o insuciencias, y se considera que a mayor temblor precordial, mayor será la intensidad del soplo cardiaco que se ausculta. Palpación abdominal: se realiza con cuidado, de manera suave, en busca de hepatomegalia, esplenomegalia, ascitis y signos que puedan pertenecer a la semiología de insuciencia cardiaca congestiva derecha. Temperatura corporal: en la mayoría de los pacientes cardiópatas no existen alteraciones importantes en la temperatura corporal, a excepción de la ebre, cuando presenta otra enfermedad, por ejemplo, endocarditis bacteriana.
UBICACIÓN DE LAS DIFERENTES VÁLVULAS CARDIACAS SEGÚN SU POSICIÓN ANATÓMICA
L z : Válvula
Localización
Pulmonar
3er-4º espacio intercostal, a la altura de la unión costal-esternal.
Aórtica
4º-5º espacio intercostal, ligeramente dorsal a la unión costal-esternal.
Mitral
5º-6º espacio intercostal, a la altura de la unión costal-esternal.
L : Válvula
Tricúspide
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Localización
4º-5º espacio intercostal, ligeramente dorsal a la unión costal-esternal.
❏
Ritmo: los sonidos cardiacos normales son rítmicos, se presentan en intervalos regulares, sin embargo, la arritmia sinusal es un hallazgo normal en perros. Este tipo de arritmia se debe a la estimulación vagal asociada a la respiración, en la cual se encuentra ligera taquicardia durante la inspiración y ligera bradicardia durante la espiración (siempre dentro de rangos normales de frecuencia cardiaca). Existen un tercero y cuarto sonidos cardiacos siológicos; sin embargo, NO son audibles normalmente; su detección puede deberse a la presencia de arritmias o agrandamientos de las cámaras cardiacas.
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Palpación del tórax: es importante realizarla, sobre todo si se encontró un soplo cardiaco. El temblor precordial es la vibración que se detecta en la pared del tórax cuando existe una gran turbulencia en
PRUEBAS DE LABORATORIO Y GABINETE Las pruebas de laboratorio y gabinete son métodos diagnósticos complementarios que ayudan a descartar o corroborar el diagnóstico clínico presuntivo elaborado a partir de la información que se recabó en la reseña, la anamnesis y el examen físico. Entre los principales métodos diagnósticos utilizados en cardiología de pequeñas especies, se encuentran los siguientes:
ELECTROCARDIOGRAFÍA Se trata de una técnica que sirve para evaluar la actividad eléctrica del corazón, por lo que es 99% efectiva para detectar arritmias cardiacas, pero sólo de 60 a 70% efectiva para detectar cardiomegalias. Se realizan mediciones de las diferentes ondas, segmentos e intervalos del trazo electrocardiográco, así como del eje eléctrico promedio, cuya interpretación en conjunto permite corroborar o descartar la posibilidad de un agrandamiento de las cámaras del corazón. Las anormalidades de la conducción eléctrica del corazón se detectan por la presencia y conguración de las diferentes ondas y segmentos del trazo electrocardiográco, de acuerdo con lo cual las arritmias cardiacas se clasican en taquiarritmias o bradiarritmias supraventriculares o ventriculares. El tratamiento especíco de cada arritmia depende totalmente de la conguración gráca de la misma, por lo que sin ex cepción alguna, es imprescindible contar con un trazo electrocardiográco antes de intentar el tratamiento médico.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
F 13. Electrocardiograma de un Bóxer con cardiomiopatía dilatada. Compárense los complejos eléctricos normales (pequeños) con los complejos ventriculares prematuros (flecha); ambos se encuentran de manera alternada.
RADIOLOGÍA Las proyecciones radiográcas de rutina para el diagnóstico de anormalidades en el corazón son lateral izquierda izquierda- lateral derecha (LI-LD) y dorsoventral (DV), pero a veces es necesario realizar proyecciones complementarias, como lateral derecho-lateral izquierdo (LD-LI), ventrodorsal (VD) y proyecciones laterales o ventrodorsales con rayo horizontal, ya sea en bipedestación o cuadripedestación. En los gatos se preere la proyección VD a la DV, porque el esternón del gato se aplana en la DV. Se debe determinar si las radiografías tienen calidad diagnóstica o no, evaluando: la técnica radiográca, la posición y el momento respiratorio a la hora del disparo. Para visualizar la silueta cardiaca y los campos pulmonares se necesitan tiempos cortos de exposición: 1/60 de segundo es lo correcto y 1/120 de segundo es lo ideal, esto requiere que el aparato de rayos X tenga una capacidad mínima de 100 mA; a mayor amperaje, menor tiempo. El aparato de rayos X para el tórax también deberá tener una capacidad mínima de 100 kV. En una proyección LI-LD debe lograrse un grado de exposición en el cual los procesos espinosos de las vértebras torácicas sean percibidos como “fantasmas”. En una radiografía subexpuesta no se aprecian los procesos espinosos, y en una radiografía sobreexpuesta el pulmón se ve negro, no aparecen los grandes vasos sanguíneos y los procesos espinosos son perfectamente claros. En la DV se considera la visualización de los espacios intervertebrales sobre la silueta cardiaca. Si el grado de exposición es correcto, apenas deben verse estos espacios. Si se ven bien, signica que la radiografía está sobreexpuesta, y si no se ven, subexpuesta.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
El paciente se coloca en una posición tal que se evite su rotación, y esto se asegura vericando que las costillas se encuentren sobrepuestas, una sobre la otra, en una proyección LI-LD; que los arcos costales a nivel dorsal no sobrepasen los cuerpos de las vértebras torácicas, y que no haya sombras en los cuerpos vertebrales. Las uniones costocondrales también deben sobreponerse: las de un lado del tórax sobre las del otro lado. Se mantiene la cabeza en posición “de alerta” y los miembros torácicos extendidos en dirección craneal, para que las masas musculares del tríceps no se sobrepongan a los lóbulos craneales de los pulmones. En la DV o VD, el esternón debe estar sobre la columna vertebral; la distancia de la pared costal a la columna tiene que ser igual en ambos lados del tórax. Los procesos espinosos de las vértebras torácicas se percibirán como una “bolita”, y no de forma alargada, y la cúpula diafragmática se encontrará al centro del paciente y no cargada hacia un lado. En la evaluación radiográca del tórax es importante explorar el tiempo respiratorio. La placa se toma durante la inspiración. Los parámetros que se consideran al valorar el momento respiratorio en una proyección LI-LD son los siguientes: un mínimo contacto cardiodiafragmático; la posición caudal de la vena cava, que en la inspiración debe estar horizontal, y el ángulo lumbodiafragmático, abierto y a nivel de T12. En una proyección DV se observa un mínimo contacto cardiodiafragmático, el ángulo costodiafragmático abierto y la cúpula diafragmática, a nivel de T8-T10. En la silueta cardiaca se evalúa la forma y el tamaño. Para esto se pueden utilizar técnicas directas o indirectas. Dentro de las técnicas directas, el método de Buchanan es el más objetivo y el que se emplea con mayor frecuencia; consiste en trazar dos líneas imaginarias sobre la silueta cardiaca en la proyección LI-LD. La primera línea es longitudinal a la silueta cardiaca; va desde la Carina hasta el ápice del corazón. La segunda línea es transversal a la primera, tomando como referencia la parte ventral de la vena cava caudal. Después se colocan estas dos líneas sobre la columna vertebral torácica, y se suman los cuerpos vertebrales que abarcan, a partir del comienzo de la cuarta vértebra torácica. El corazón normal de los perros no debe medir más de 10.5 cuerpos vertebrales. Si sobrepasa esta medida, entonces se habla de la presencia de cardiomegalia.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 14. Técnica de Buchanan para estimar el agrandamiento del corazón. En esta imagen se muestra la medición de la silueta cardiaca en su longitud desde la Carina hasta el ápice cardiaco.
F 15. Técnica de Buchanan para estimar el agrandamiento del corazón. En esta imagen se ilustra la medición de la silueta cardiaca en su eje transversal, tomando como referencia la cintura craneal y la vena cava caudal.
F 16. Técnica de Buchanan para estimar el agrandamiento del corazón. Se realiza una sumatoria tomando en cuenta los cuerpos vertebrales a partir de la cuarta vértebra torácica.
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Existen otros parámetros que ayudan a determinar si existe cardiomegalia o no: la posición de la tráquea y los bronquios caudales en la proyección LI-LD; el espacio entre la silueta cardiaca y la pared torácica en la proyección DV, y otros. Cada alteración cardiaca tiene hallazgos radiográcos especícos que ayudan al diagnóstico: el agrandamiento de una cámara cardiaca; el desplazamiento de otras estructuras intratorácicas, por este mismo agrandamiento; cambios en el patrón pulmonar normal (por la presencia de edema pulmonar cardiogénico, por ejemplo); un patrón pulmonar hipervascular, por ejemplo en los casos de dirolariasis, etcétera. Para detectar agrandamientos en las cámaras del corazón, las estructuras cardiacas se ubican imaginariamente en la carátula de un reloj y se determina su posición de acuerdo con la de las manecillas. De esta forma, en una proyección LI-LD, de 11 a 1 se ve el tronco aórtico; de 1 a 3 se aprecia el atrio izquierdo; de 3 a 5, el ventrículo izquierdo; de 5 a 9, el ventrículo derecho, y de 9 a 11, el atrio derecho. En la proyección DV o VD en el caso de los gatos, se aprecia: de 11 a 1 el tronco aórtico, de 1 a 2 la arteria pulmonar principal, de 2 a 3 la aurícula izquierda (no el atrio), de 3 a 5 el ventrículo izquierdo, de 5 a 9 el ventrículo derecho y de 9 a 11 el atrio derecho.
ECOCARDIOGRAFÍA La ecocardiografía es la aplicación del ultrasonido en el corazón y la salida de los grandes vasos sanguíneos de éste. Es un método de diagnóstico no invasivo y actualmente es el más objetivo para evaluar la función mecánica del corazón. En pequeñas especies se utilizan transductores sectoriales de 5 y 7.5 MHz, los cuales nos permiten obtener imágenes de buena calidad. En el ecocardiograma se obtienen imágenes en modo B o bidimensional, que son imágenes en movimiento, lo que permite evaluar, aunque sea de manera subjetiva, el movimiento y la forma de las válvulas del corazón, y la contractilidad del miocardio ventricular, así como determinar si hay derrame pericárdico o no, o la presencia de masas intra o extracardiacas.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
ANGIOCARDIOGRAFÍA
F 17. Modo B, proyección longitudinal de las cuatro cámaras. Se aprecia la válvula mitral engrosada (5.9 mm) por la presencia de vegetaciones
El modo M representa un corte que se hace cuando las ondas de sonido atraviesan las estructuras cardiacas, las cuales se gracan como líneas horizontales de diferente ecogenicidad. El modo M sirve para determinar el grosor de estas estructuras (septo ventricular, diámetro del ventrículo izquierdo, pared del ventrículo izquierdo) tanto en sístole como en diástole, así como para medir el atrio izquierdo y comparar su tamaño con el de la aorta.
Es la aplicación de medios de contraste yodados iónicos, que sirven para visualizar las cámaras cardiacas y los grandes vasos sanguíneos; existen dos modalidades: la angiocardiografía directa, en la cual se introduce el medio de contraste hasta la cámara del corazón que se quiere evaluar, y la angiocardiografía indirecta, que consiste en introducir el medio de contraste en una vena periférica, la yugular, por ejemplo, y tomar la radiografía en el momento justo en que el medio pasa por la región del corazón que se desea evaluar, aunque esto es difícil de conseguir. La técnica de angiocardiografía es de gran ayuda para el diagnóstico denitivo de las anormalidades cardiovasculares, pero su aplicación requiere experiencia.
HEMOGRAMA No es una técnica de laboratorio especíca para el diagnóstico de anormalidades cardiovasculares, pero ayuda cuando se sospecha de un proceso inamatorio como endocarditis bacteriana o miocarditis parasitaria por Trypanosoma cruzi, por ejemplo. La persistencia de conducto arterioso reverso o la tetralogía de Fallot conduce a hipoxemia e hipoxia tisular, por lo que a veces se puede encontrar eritrocitosis secundaria a hipoxia, la cual provoca síndrome de hiperviscosidad sanguínea.
BIOQUÍMICA CLÍNICA (PERFILES HEPÁTICO Y RENAL)
F 18. Modo M, proyección longitudinal de las cuatro cámaras, realizando un corte sobre la válvula mitral;el trazo marcado con las flechas adquiere una apariencia “engrosada”.
El ecocardiógrafo tiene otra función muy útil, el doppler, que sirve para detectar ujos de la sangre a través de las cámaras del corazón, y también para medir la fuerza o velocidad del ujo de sangre a través de las válvulas o en los vasos sanguíneos, con lo cual, de manera indirecta, puede inferirse la presión sanguínea.
Las insuciencias cardiacas congestivas del lado derecho (insuciencia tricuspídea, por ejemplo) clínicamente cursan con ascitis, hepatomegalia y esplenomegalia, por lo que es común encontrar alteraciones en las enzimas hepáticas por el proceso congestivo en este órgano. Las insuciencias cardiacas congestivas del lado izquierdo (por insuciencia de la válvula mitral, por ejemplo), o las insuciencias miocárdicas (por cardiomiopatía dilatada, por ejemplo), pueden causar hipoperfusión tisular periférica, y si ésta afecta al riñón, en ocasiones produce se genera insuciencia renal aguda, lo que se demostraría con hallazgos de azoemia prerrenal o renal.
URIANÁLISIS Sirve principalmente para complementar el estudio de bioquímica sérica, en caso de sospechar de insuciencia renal aguda por hipoperfusión renal.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
OTROS En ciertos casos deben incluirse pruebas serológicas especiales para el diagnóstico de enfermedades, como dirolariasis, tripanosomiasis, borreliasis, etcétera;, también hemocultivos, en caso de sospechar de endocarditis bacteriana; determinación de hormonas tiroideas, en caso de gatos con signos de hipertiroidismo con cardiomiopatía hipertróca; detección de niveles séricos de taurina o L-carnitina, y otras.
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Los estudios citológicos y bioquímicos son necesarios si se detectan derrames peritoneales, pleurales y pericárdicos, en casos de insuciencia cardiaca derecha. Estos estudios son útiles para clasicar el tipo de líquido que se obtiene, así como para establecer diagnósticos diferenciales o etiológicos, incluso cuando se trata de un linfoma que ha invadido la cavidad torácica.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
> Literatura consultada
❚
Darke PG, Bonagura JD. Color atlas of veterinary cardiology. EUA: Mosby-Wolfe, 1996.
❚
Goodwin J, Lombard CW. The electrocardiographic features of common congenital heart defects. Veterinary Medicine, 1990.
❚
Angio- and echocardiography: Viewing heart defects in more detail. Veterinary Medicine, 1990.
❚
Kittleson MD, Kienle RD. Small animal cardiovascular medicine. EUA: Mosby, 1998.
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Metodología diagnóstica del aparato respiratorio en perros y gatos Joaquín Aguilar Bobadilla
INTRODUCCIÓN L se clasican en anteriores, ubicadas cranealmente a la entrada del tórax, como la nariz y los huesos de la cavidad nasal, y posteriores, ubicadas caudalmente a la entrada del tórax.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
INSPECCIÓN Y PALPACIÓN Se debe realizar la inspección y palpación de las estructuras externas que conforman las vías respiratorias anteriores para, detectar la presencia de secreciones, de tejidos anormales o de asimetrías en estas regiones. Para ello se estimula el reejo tusígeno, presionando las paredes de la tráquea cervical con los dedos pulgar e índice o pulgar y medio, el cual resulta negativo si las condiciones son normales. Es importante tener en cuenta la predisposición de algunas razas a ciertos problemas, como es el caso de las razas braquicefálicas con elongación del paladar blando; el Siberian Husky y el Bull Terrier son propensos a la parálisis laríngea, y las razas pequeñas, al colapso traqueal. La evaluación de los problemas en la faringe y laringe en perros y gatos requiere el uso de anestesia. Para el examen de las vías respiratorias posteriores se practican la inspección y la palpación de la pared torácica, con el n de determinar si existen alteraciones en su conformación, así como la auscultación de los campos pulmonares para vericar los sonidos y establecer el tipo de patrón respiratorio.
La longitud de las mangueras debe ser de 15 a 20 centímetros. La auscultación se inicia en la región laríngea y en la tráquea cervical, ubicando el estetoscopio en la región cervical ventral y media del cuello. Posteriormente se auscultan los campos pulmonares en ambos hemitórax, tomando como base los siguientes límites:
F 2. Auscultación ❏ ❏
AUSCULTACIÓN Para la auscultación del aparato respiratorio es necesario contar con un estetoscopio de buena calidad y que, de ser posible, reúna estas características: ❏
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La pared de las mangueras de hule debe ser gruesa, con un diámetro interno pequeño para prevenir la difusión del sonido o la intromisión de sonidos externos.
Metodología diagnóstica en perros y gatos
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F 1. Estetoscopio
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Cranealmente, el borde caudal de la escápula. Dorsalmente, la columna vertebral torácica y las masas musculares. Caudalmente, se traza una línea imaginaria en dirección craneoventral, la cual empieza en el onceavo espacio intercostal al nivel costovertebral, que pase por la mitad de la novena costilla y desemboque en la sexta costilla a la altura de la unión costoesternal. Ventralmente, el esternón.
Durante la auscultación puede haber interferencias, como el jadeo de los perros o el ronroneo de los gatos. Para detener el jadeo se recomienda sujetar al paciente manteniendo su hocico cerrado; el ronroneo puede evitarse colocando un dedo sobre uno o ambos oricios nasales o golpeando con la palma de la mano la mesa de exploración para producir un estrés ligero. Otros ruidos que pueden interferir en la auscultación son el roce del pelo con el estetoscopio, los sonidos gastrointestinales y los ruidos externos del consultorio.
SONIDOS RESPIRATORIOS NORMALES Los sonidos respiratorios provienen de las oscilaciones del tejido respiratorio causadas por las uctuaciones
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
de aire; su terminología en medicina veterinaria ha sufrido numerosos cambios en los últimos 15 años. Los sonidos respiratorios normales son: ❏
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Sonido bronquial: también conocido como soplo glótico o sonido laríngeo, que se localiza sobre las regiones centrales del campo de auscultación y es causado por el paso de aire a través de la glotis. Es de larga duración e intensidad y aparece durante la inspiración y la espiración. Sonido vesicular o murmullo vesicular: se escucha sobre las regiones periféricas del campo de auscultación; se origina por el paso de aire al espacio alveolar. Es un sonido de corta duración que se percibe durante la inspiración. Sonido broncovesicular: producido por la sobreposición del sonido bronquial con el vesicular; se escucha mejor sobre las regiones periféricas de los campos pulmonares.
El conocimiento de los sonidos respiratorios normales es muy importante para la detección de sonidos respiratorios anormales; hay que recordar que estos últimos no necesariamente se presentan en toda el área de auscultación, ya que pueden percibirse sólo en un hemitórax o un punto especíco del campo de auscultación pulmonar.
SONIDOS RESPIRATORIOS ANORMALES SONIDO VESICULAR AUMENTADO ❏
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Parietal: por disminución de la masa muscular y la grasa, como sucede en los estados de caquexia y en las atroas musculares. Pulmonar: debido a un mecanismo compensatorio funcional de las partes sanas del pulmón. Por compensación metabólica u originado en otros aparatos y sistemas: como en casos de anemia severa, de acidosis metabólica, hipertermia y excitación.
SONIDO VESICULAR DISMINUIDO O AUSENTE ❏
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Por disminución en la ventilación pulmonar, como en los casos de ensema pulmonar o los de consolidación pulmonar (espacio alveolar lleno de líquido, inltrado celular o sustituido por otro tejido). A causa de un decremento en la conducción del sonido, por problemas de tipo obstructivo.
❏
Por alteraciones pleurales, como en casos de derrame o de efusión pleural, de neumotórax o de hernia diafragmática.
SOPLOS PRIMARIOS O SIBILANCIAS Modicaciones patológicas del sonido bronquial originadas por el estrechamiento de los bronquios; pueden ser localizadas o generalizadas. Estos sonidos se perciben durante la espiración, por el paso del aire, a través de un oricio inerte o jo, lo cual le da características sibilantes. ❏
❏
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Estridores: se originan por un estrechamiento de las vías respiratorias anteriores, lo cual aumenta la dicultad respiratoria del paciente; es un sonido de alta intensidad durante la inspiración. Soplos secundarios: la consolidación del tejido pulmonar produce una mejor transmisión de los sonidos; éstos son de larga duración, de alta intensidad y se detectan durante la inspiración y espiración en las partes periféricas del campo de auscultación pulmonar, donde en condiciones normales se esperaría escuchar el sonido vesicular. Crepitaciones: también conocidos como estertores, son sonidos discontinuos que generalmente se escuchan mejor durante la fase de inspiración; pueden ser nas, medianas o gruesas, dependiendo del diámetro de las vías respiratorias afectadas; se generan por el paso de burbujas de aire a través del líquido en las vías respiratorias; son similares al sonido que se produce al soplar en un popote dentro de un vaso de agua. Las crepitaciones nas se escuchan como cuando uno mismo se frota el pelo junto al oído. Este signo se detecta principalmente en casos de bronconeumonía, neumonía por aspiración, contusión pulmonar y edema pulmonar.
Cuando existen alteraciones en la respiración, es importante establecer, mediante la inspección y la auscultación, el tipo de patrón respiratorio que presenta el paciente, y conrmarlo con estudios radiográcos de tórax, pruebas de laboratorio o ambos procedimientos.
PATRONES RESPIRATORIOS Existen tres patrones respiratorios anormales: el obstructivo, el restrictivo y el misceláneo. Los dos prime-
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
ros se presentan cuando el origen del problema se ubica en el aparato respiratorio; el tercero ocurre cuando la alteración se debe a un mecanismo compensatorio de termorregulación, de oxigenación o a trastornos metabólicos del equilibrio acidobásico. Patrón respiratorio obstructivo: se caracteriza por un aumento en la profundidad respiratoria (hiperpnea) con una frecuencia respiratoria normal (batipnea) o incrementada (polipnea). Los pacientes presentan una obstrucción en uno o más sitios de las vías respiratorias superiores o inferiores. Cuando la obstrucción está en las vías respiratorias superiores generalmente se produce un incremento en el esfuerzo inspiratorio, mientras que si se localizan en las vías inferiores por lo común hay un incremento en el esfuerzo espiratorio. Pueden existir combinaciones obstructivas en las vías respiratorias altas y en las bajas. En este patrón, las alteraciones que con mayor frecuencia se encuentran mediante la auscultación son las sibilancias, los estridores o una disminución o ausencia del sonido vesicular en las áreas afectadas. ❏ Patrón respiratorio restrictivo: aparece cuando se reduce la capacidad de los pulmones para insuarse, lo que provoca disminución en la profundidad respiratoria e incremento compensatorio en su frecuencia (taquipnea). El patrón restrictivo puede tener tres orígenes diferentes:
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Pulmonar: por consolidación pulmonar causada por neumonía, edema, neoplasias primarias o metastásicas, abscesos, micosis, brosis o por contusión pulmonar.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
Torácico: por condiciones que ocupen espacio en el tórax, como derrames o efusiones pleurales (quilotórax, hemotórax, piotórax, neoplasias, falla cardiaca congestiva derecha, hipoproteinemias severas); por presencia de aire libre en la cavidad pleural, como neumotórax; por órganos abdominales en el tórax, como hernia diafragmática; por tórax inestable debido a fracturas múltiples de costillas. También el dolor torácico es causa de insuación inadecuada. Abdominal: por tumores, derrame o efusión peritoneal, dilatación, vólvulo gástrico o peritonitis.
Las alteraciones que mediante la auscultación se encuentran con mayor frecuencia en este patrón son la disminución o ausencia del sonido vesicular, y la presencia de soplos secundarios y crepitaciones. ❏
Patrón respiratorio misceláneo: aparece cuando existen trastornos debidos a un mecanismo compensatorio, y no como un problema que se origina en el aparato respiratorio. Este patrón a su vez se divide en dos subtipos: ❏
Subtipo 1: se maniesta cuando hay un incre-
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mento en la frecuencia y en la profundidad respiratoria como respuesta al dolor o al ejercicio; por acidosis metabólica como resultado de insuciencia renal o intoxicación por etilenglicol; por choque calórico, o una anemia severa. Subtipo 2: se identica en los casos de disminución de la frecuencia y profundidad respiratorias, como muchas veces sucede durante la anestesia; en algunos pacientes con traumatismo craneoencefálico, y en pacientes con alcalosis metabólica.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
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❚
Birchard S. Manual clínico de procedimientos en pequeñas especies. 2a ed. Madrid: Mc Graw-Hill, 2002.
❚
Monroe. Practical small animal internal medicine. Filadela: Saunders, 1997.
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Richard WN, Couto CG. Medicina interna en pequeños animales. 2a ed. Buenos Aires: Inter-Médica, 2000.
❚
Stephen JE, Feldman EC. Text book of veterinary internal medicine 6 a ed. Filadela: Elsevier-Saunders, 2005.
Metodología diagnóstica del aparato urinario en perros y gatos Joaquín Aguilar Bobadilla
INTRODUCCIÓN L aparato urinario pueden tener manifestaciones sistémicas; por ello es importante considerar ciertas alteraciones en otros aparatos o sistemas, que en ocasiones se relacionan con estos padecimientos, como úlceras en la cavidad oral, a consecuencia de uremia; mucosas pálidas, que son signos secundarios a anemia por insuciencia renal crónica; asimetría facial (mandíbula de caucho), por hiperparatiroidismo renal secundario.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
PALPACIÓN DEL APARATO URINARIO En los gatos, ambos riñones se palpan con facilidad, pero debe tenerse en cuenta que son desplazables y que a veces se confunden con cuerpos extraños. En los perros el riñón izquierdo se localiza fácilmente, pero detectar el derecho es más difícil, excepto si se trata de pacientes delgados o caquécticos. En condiciones normales los uréteres no son palpables. La vejiga es fácil de palpar cuando está ocupada por orina y también en casos de problemas obstructivos, como la urolitiasis o un daño neurológico en su inervación.
PRUEBAS INVASIVAS Y NO INVASIVAS Cuando se sospeche de un problema obstructivo uretral, se recomienda introducir una sonda urinaria a través del meato urinario externo, la cual no pasará más allá del sitio de la obstrucción. La presencia de uroperitoneo secundario a la ruptura de la vejiga, la cual puede ser de origen traumático o yatrogénico, generalmente va acompañada de dolor abdominal y anuria. Para conrmar este diagnóstico se recurre a la abdominocentesis y a los estudios radiográcos.
SIGNOS ASOCIADOS Los signos que se asocian con mayor frecuencia a problemas urinarios obstructivos son: poliaquiuria, disu-
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
ria, estranguria y hematuria. Cuando existen daños neurológicos se puede llegar a presentar atonía vesical, sobredistensión, incontinencia urinaria y hematuria secundaria a una infección de las vías urinarias. Cuando la orina del paciente es de color rojo, los dueños suelen interpretar este hecho como presencia de sangre; sin embargo, el clínico debe diferenciar si se trata de hematuria o de hemoglobinuria, mediante un análisis de orina y una evaluación del hematocrito, con el n de orientar mejor su diagnóstico. Una vez que se conrma la hematuria, se sabe que el problema está en las vías urinarias, y los principales diagnósticos diferenciales se enfocan hacia una infección, urolitiasis, neoplasias, traumatismos o desórdenes en la coagulación; en cambio, si se conrma hemoglobinuria, se asocia con anemia hemolítica, de la cual deberá buscarse la etiología. Uno de los signos señalados con mayor frecuencia por los propietarios es la poliuria, que debe conrmarse por medio de la observación de la densidad urinaria, donde los pacientes poliúricos generalmente tendrán resultados menores que 1.020, que se recomienda corroborarlos con la medición de la producción de orina. Una de las causas de poliuria es la insuciencia renal; sin embargo, se sabe que en pacientes que cursan con este signo existe gran cantidad de posibles diagnósticos diferenciales, la cual se puede reducir, inicialmente clasicando la densidad urinaria en hipostenúrica, isostenúrica o en rangos altos de concentración.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
74
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Stephen JE, Feldman EC. Text book of veterinary internal medicine. 6 a ed. Filadela: Elsevier-Saunders, 2005.
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Birchard S. Manual clínico de procedimientos en pequeñas especies. 2da ed. Madrid: Mc Graw-Hill, 2002.
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Richard W, Couto CG. Medicina interna en pequeños animales. 2da ed. EUA: Mosby, 2000.
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Monroe WE. Practical small animal internal medicine. Filadela: Saunders, 1997.
Metodología diagnóstica y manejo reproductivo en la perra Carlos Esquivel Lacroix
INTRODUCCIÓN U áreas de la medicina veterinaria que requiere la atención constante del médico veterinario es la reproducción, sobre todo cuando se trata de pequeñas especies y particularmente la canina, ya que la perra presenta una gran variación en su propio ciclo reproductivo, de tal forma que cuando existe una alteración en el aparato reproductor, es difícil detectarla porque en ocasiones se confunde con un fenómeno normal, por ejemplo, un estro de larga duración y una poliquistosis ovárica pueden manifestarse de manera idéntica. El manejo clínico de los problemas reproductivos en el perro implica la aplicación de un método adecuado para detectar su causa, lo cual es importante para lograr una reproducción exitosa sin efectos colaterales indeseables. La infertilidad tiene una gran variedad de causas, por ello es necesario convencer al propietario de que sea paciente, ya que probablemente se requieran varias visitas al consultorio y se realicen diversos estudios de laboratorio antes de encontrar la etiología del problema. El primer paso, previo a la revisión del perro o la perra, es la obtención de una historia clínica lo más completa posible, para establecer de manera clara los antecedentes médicos del caso, a partir de los cuales pueda diseñarse la estrategia que se seguirá. En el expediente deben incluirse datos sobre los resultados obtenidos en intentos de reproducciones anteriores de los pacientes, así como de los parientes, como padres o hermanos, para descartar la posibilidad de que la causa tenga un origen genético. También es necesario revisar la información genealógica (si se tiene) para determinar si existe consanguinidad. Resulta indispensable obtener datos sobre la periodicidad del celo, las camadas producidas, la facilidad para realizar la cópula, la alimentación, los programas de medicina preventiva en los que participó el paciente, las enfermedades anteriores, el tipo de alojamiento, etcétera. El médico veterinario se enfrenta frecuentemente con que alguna persona involucrada en la crianza del perro piensa que la experiencia obtenida a través del tiempo, es suciente razón para tener un alto nivel de conocimientos que le permitirán adoptar criterios de manejo en la reproducción de sus animales; sin embargo, si bien es cierto que el conocimiento empírico es de mucha ayuda, no es suciente y, por lo tanto, se requiere la asesoría de un profesional, sobre
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
todo si se considera que el modelo reproductivo de los cánidos es, por muchas razones, biológicamente diferente del de otras especies. En relación con la reproducción se han generado numerosos mitos a través del tiempo, que se han convertido en prácticas de manejo muchas veces erróneas, por ejemplo, es común que el apareamiento se recomiende de acuerdo con la manifestación de algunos signos clínicos como el sangrado y la receptividad
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sexual, no obstante que son altamente variables en cada perra y no debe utilizarse como criterio grupal; sin embargo, esto ocurre con frecuencia porque se cree equivocadamente que la actividad reproductiva es igual en todas las perras; lo correcto en esta especie es estudiarla siempre en forma individual, lo cual en muchas otras no se aplica, como la bovina, donde se evalúa la actividad reproductiva tomando el hato como objeto de estudio.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
EXAMEN FÍSICO GENITAL Para hacer una lista de las causas probables de la falla reproductiva es necesario revisar cuidadosamente a la paciente. Se aconseja examinar primero al macho (examen andrológico), ya que es más fácil estudiarlo debido a que la producción de espermatozoides es constante, en cambio, la perra presenta uno, dos o tres periodos de actividad sexual (estro) en un año, lo que diculta un seguimiento adecuado. La evaluación ginecológica se hace con el objetivo de detectar anormalidades del aparato reproductor (genitales externos), la presencia de secreciones anormales (pus), neoplasias, y si existe inamación. Es necesario practicar el tacto vaginal o utilizar técnicas como la vaginoscopia para saber si existe algo que obstruya la cópula o el parto. En la exploración se debe tener en cuenta que en el aparato reproductor femenino existe una estructura conocida como cingulum, localizada en la unión del vestíbulo y la vagina, que constituye un obstáculo, pues la vagina es muy estrecha cuando la perra no está en estro (anestro).
CICLO ESTRAL DE LA PERRA La perra tiene un modelo reproductivo biológicamente diferente del de las demás especies domésticas por varias razones: está clasicada como un animal monoéstrico que presenta de uno a tres ciclos estrales en el año, con un intervalo de 3 a 9 meses; la ovulación ocurre de 24 a 48 horas después del inicio de la etapa del estro, liberando el o los óvulos en fase de ovocito primario, el cual alcanza su madurez aproximadamente 108 horas después de la ovulación; nalmente, la fase lútea del ciclo estral de la perra no gestante (diestro) es muy similar a la fase lútea de la perra gestante, la diferencia se observa en la duración, de 63 y 100 días, respectivamente. El proestro y el estro de la perra son muy prolongados; por lo tanto, la aparición del pico de hormona luteinizante (LH) es el suceso central del ciclo. Los aspectos endocrinos y clínicos del ciclo estral en la perra han sido objeto de numerosos estudios desde hace mucho tiempo, por ejemplo, la primera referencia que se obtiene de la literatura data de 1845, cuando Bischo informó que la ovulación era espontánea en la perra y que la luteinización folicular comenzaba antes de la ovulación; asimismo, Heape, en 1900,
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logra clasicar los ciclos estrales en las diferentes especies, sobre todo la fase de metaestro, que se presenta inmediatamente después del estro; sin embargo, este término sólo se utilizó en especies no caninas para denir el periodo de formación del cuerpo lúteo, que en el caso de la hembra canina ocurre antes de la ovulación; por lo tanto, es más correcto hablar de diestro, etapa que fue denida por Heape como el periodo de actividad plena del cuerpo lúteo. Más tarde, Evans y Cole, en 1931, coinciden con él cuando arman que el periodo después del estro es de total actividad lútea. Muchos autores han cambiado el término metaestro por el de diestro, basados en que los niveles de progesterona en la sangre permanecen altos por muchas semanas. Cuando los términos metaestro y diestro han sido utilizados para referirse a la fase lútea del ciclo desde el punto de vista clínico, ha quedado claro que el metaestro se reere al periodo de luteinización temprana de los folículos, que en el caso de la perra se presenta durante la fase nal del proestro; y el diestro, al periodo de funcionamiento del cuerpo lúteo. Aunque el diestro termina cuando empieza el anestro, los fenómenos endocrinos de este proceso no han quedado claros, ya que en la perra gestante el parto marca el nal del diestro, pero en la no gestante es difícil detectar qué ocurre, por ejemplo, las concentraciones de progesterona en suero, la involución de tejidos estimulados por la progesterona, como el útero, y la morfología de las células lúteas cambian gradualmente en cada perra, y por lo cual no es posible establecer parámetros generales de las características de las etapas del ciclo estral, sobre todo cuando se pretende establecer procedimientos para regular la fertilidad en esta especie.
ETAPAS DEL CICLO ESTRAL ❏
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Anestro: su duración es de 3 a 9 meses, sin evidencia clínica de actividad ovárica. Proestro: su duración es de 3 a 20 días; se caracteriza por el incremento de las concentraciones sanguíneas de estrógenos, lo que provoca signos clínicos como la atracción de los machos, aumento en el tamaño de la vulva y región perineal, y un sangrado originado en el útero por diapédesis. Estro: su duración es de 3 a 20 días; se caracteriza por un comportamiento de receptividad sexual
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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provocado por el decremento del nivel de estrógenos y un aumento en los niveles de progesterona. En este periodo la perra puede seguir presentando descarga sanguinolenta por la vulva. Diestro: su duración es de 63 días, en la perra gestante, y hasta 100 días, en la no gestante.
PICO PREOVULATORIO DE LH El cambio de comportamiento de la perra hacia la receptividad sexual no siempre coincide con el pico preovulatorio de LH, por lo cual, tampoco coincide con el inicio del periodo fértil (estro), de tal manera que el periodo de fertilidad se dene cuando los estrógenos disminuyen, la progesterona aumenta y el pico de LH aparece; como estos procesos endocrinos son difíciles de detectar, comúnmente se cree que la fertilidad empieza cuando la perra acepta la monta, pero, como ya se dijo, no siempre es así, por lo tanto, para detectar el momento óptimo para la cruza o la inseminación articial se deben practicar pruebas adicionales, como la citología vaginal exfoliativa o la vaginoscopia. El incremento de LH estimula el crecimiento, maduración y luteinización de los folículos, lo que provoca la ovulación, de 36 a 50 horas después, además de una transformación de las células productoras de estrógenos (folículos de 3 a 4 mm) en células productoras de progesterona (cuerpo lúteo de 8 a 9 mm). Este fenómeno marca la transición de la fase folicular a la fase lútea, que tiene una duración de uno a tres días. En la mayoría de los ciclos, el pico de LH se presenta el día de transición de proestro a estro; sin embargo, a veces el principio del estro y la primera cópula ocurren de dos a tres días antes de la elevación de LH, incluso cuatro o cinco días antes, situación que no garantiza la gestación de la perra cuando sólo ha recibido una monta, por esto es muy importante programar el número de cruzas suciente para asegurar el éxito.
MADURACIÓN DE OVOCITOS Y FERTILIZACIÓN La perra libera el óvulo cuando éste presenta un estado de inmadurez conocido como ovocito primario, de tal manera que la segunda meiosis concluye después de la ovulación, en el segmento distal del oviducto. En estudios in vitro se ha visto que el espermatozoide del perro es capaz de penetrar los ovocitos inmaduros y formar el pronúcleo masculino; sin embargo, el tér-
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mino fertilización se reere a la fusión del pronúcleo femenino con el masculino, lo cual no ocurre hasta que el ovocito ha madurado. El tiempo exacto del proceso no ha sido determinado aún; sin embargo, algunos estudios arman que este fenómeno puede tener lugar de dos a seis días después de la ovulación. Las montas forzadas que se llevan a cabo dos días antes del pico de LH rara vez son fértiles; sin embargo, cuando la perra queda gestante, la duración de esta gestación generalmente es más larga (68 días), lo cual puede crear una confusión en el propietario del animal, que se puede evitar detectando oportunamente el periodo fértil, programar el número adecuado de montas y empezar a contar la gestación a partir de la última monta, 63 ± 5 días. El espermatozoide permanece fértil en el aparato reproductor femenino de seis a siete días.
FORMACIÓN DEL CUERPO LÚTEO La formación del cuerpo lúteo se inicia con cambios morfológicos y bioquímicos de las células de la teca interna y las de la granulosa del folículo preovulatorio. En la perra, estos cambios se presentan al nal del proestro y fueron descritos por primera vez por Bischo, en 1845. Básicamente, el cuerpo lúteo se deriva de estos dos tipos de células productoras de esteroides foliculares (teca y granulosa), las cuales se transforman en chicas y grandes, respectivamente. Las células chicas corresponden a la teca interna luteinizada, y se les conoce como células tipo I, o células I; por otro lado, las células grandes son las células de la granulosa luteinizada y se les conoce como células tipo II o células II. Ultraestructuralmente las células grandes contienen una gran cantidad de mitocondrias, abundante retículo endoplásmico liso y un alto número de gránulos de secreción. La apariencia de las células chicas es distinta, ya que presentan menos mitocondrias, escaso retículo endoplásmico liso y carecen de gránulos de secreción; sin embargo, en éstas abundan las gotas de lípidos, que no han sido observadas en las células grandes. La producción de progesterona (80%) está a cargo de las células grandes del cuerpo lúteo, en las cuales aparecen pocos receptores de LH, en comparación con las células chicas, donde está la mayoría de los receptores de LH. Asimismo, las células grandes contienen la mayor parte de los receptores de PGF2 α. En
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diversos estudios realizados en ovejas se ha comprobado que la relación entre las células grandes y chicas es el factor más importante para entender la regulación en la secreción de progesterona y la destrucción del cuerpo lúteo; lamentablemente, no se han llevado
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
a cabo estudios del cuerpo lúteo de la perra que permitan comprender estos fenómenos, aunque se sabe que en los carnívoros éste presenta diferencias en el tamaño celular.
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Metodología diagnóstica en ortopedia en perros y gatos Carlos Santoscoy Mejía
INTRODUCCIÓN L médico veterinario, una vez que ha aceptado atender a un paciente, es la de establecer un diagnóstico, un pronóstico y una terapia acertada. El diagnóstico comprende la colección y el análisis de la información del paciente; se deben incluir la historia clínica, el examen físico, los estudios de laboratorio clínico, la imagenología y otros procedimientos. Una sola fuente de información no es suciente para lograr un diagnóstico adecuado. Hay que recordar que los datos obtenidos con la historia clínica y el examen físico no se pueden sustituir con las pruebas de laboratorio. Un examen diagnóstico ortopédico se inicia con la historia clínica (anamnesis) y se continúa con un examen físico, que para no pasar por alto múltiples problemas debe ser metódico, completo y sistemático (igual en todos los casos). Es necesario que el veterinario establezca un vínculo de conanza con el propietario y, por lo tanto, un canal eciente de comunicación; esto se logra permitiéndole que describa con sus propias palabras los trastornos que él cree detectar en su animal. Todos los datos pertinentes que se obtengan en el interrogatorio, la identicación y el examen físico tienen que registrarse de una manera lógica y concisa.
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IDENTIFICACIÓN DEL PACIENTE
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muy claro, pues de lo contrario, la mayoría de las respuestas serán negativas.
DATOS BÁSICOS
El médico veterinario zootecnista debe tener en cuenta la especie, la raza, la edad y el género del paciente. Esta información es vital, ya que incrementa la capacidad del clínico de hacer un buen diagnóstico, pues existen enfermedades propias de una especie; por la edad identica grupos de población con predisposición a cierto tipo de afecciones: los animales jóvenes presentan enfermedades propias del desarrollo (osteocondrosis, falta de unión del proceso ancóneo, etc.), mientras que los animales adultos o viejos sufren enfermedades de tipo degenerativo o neoplásico; la raza determina la presencia de afecciones de origen hereditario, como la luxación patelar medial en razas miniatura, la osteocondrosis en el Pastor Alemán, la displasia de cadera en el Bernés de la montaña, etcétera, o secundarias a la conformación, por ejemplo, la ruptura de ligamento cruzado craneal en el Rottweiler y en el Chow-chow. En relación con el género, se encuentran diferencias en la prevalencia de las enfermedades, por ejemplo, los machos se ven más afectados que las hembras en los procesos neoplásicos, en panosteítis, en osteocondrosis, y otros.
ANAMNESIS Antes de iniciar el interrogatorio, y con el deseo de establecer la comunicación con el propietario, es necesario presentarse personalmente, dirigirse a él por su título (señor, señora, doctor, etc.) y llamar al paciente por su nombre. Hay que recordar que una de las principales habilidades que el médico debe desarrollar es la de escuchar. Es muy útil permitir que el propietario describa el problema con sus propias palabras, e interrumpirlo únicamente para redirigir el tema o ampliar lo señalado. Hay que investigar las características inmediatas de la evolución clínica del animal, sin perder de vista que el propietario puede emplear términos médicos en forma inadecuada y con ello crear confusión. Cuando esto suceda, se le pide que describa el evento. Algunos propietarios mienten deliberadamente si se sienten culpables del problema que aqueja al animal. Las preguntas deben elaborarse una a la vez, para dar tiempo a una contestación completa antes de elaborar una nueva pregunta, y en un lenguaje que sea
EXAMEN CLÍNICO GENERAL Debe evitarse el centrar la atención en un problema obvio antes de revisar al paciente en su totalidad. Esto es frecuente, sobre todo en la práctica de la traumatología, donde las fracturas son muy aparentes, por lo que en ocasiones se pasan por alto padecimientos que ponen en peligro la vida o comprometen el pronóstico. El orden y la forma en que se realice un examen diagnóstico no son de gran importancia, siempre y cuando se haga completo. Existen tantas maneras de llevarlo a cabo, como médicos veterinarios; lo más importante es desarrollar una técnica sistemática de exploración que se aplique a todos los pacientes y que siempre sea exhaustiva. Cuando se considera que el interrogatorio ha sido suciente, se continúa con los siguientes pasos del examen.
EXAMEN ORTOPÉDICO Para su mejor entendimiento y desarrollo, el examen ortopédico se divide en tres fases: la estática, la dinámica y la de manipulación, que tienen por objeto identicar y caracterizar el problema. Por medio de las dos primeras se modicará la biomecánica del paciente, y la última fase permitirá la palpación y la observación de diferentes movimientos.
EXAMEN EN ESTÁTICA Se considera de mayor provecho iniciar el examen físico por la observación del paciente en estática, colocado en el piso, para determinar la conformación y el posicionamiento, tomando en cuenta las características raciales e individuales, como puede ser la presencia de obesidad, atroa muscular, etcétera. Se debe observar la simetría y armonía, en lo referente a la posición, masas musculares y articulaciones de los miembros. En estos casos se apreciarán desviaciones, malformaciones, edema, inamación y anormalidades en la forma de colocar de los miembros, entre otras.
EXAMEN EN DINÁMICA Cuando el clínico haya quedado satisfecho de sus observaciones en el paciente en estática, pedirá al propietario que se desplace con su animal de tal manera que pueda observar las características de sus movi-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
mientos. El examen en dinámica se efectúa durante la caminata, el trote o incluso la carrera, inicialmente en una supercie plana no resbaladiza, y sólo en casos de difícil diagnóstico se cambia a una supercie irregular, con obstáculos o en la escalera. El clínico debe apreciar al paciente alejándose, acercándose y por ambos ancos. En este examen se evalúan tres parámetros: la locomoción, o sea la capacidad para desplazarse de un lugar a otro, donde se determina la integridad del sistema musculoesquelético, se observa si el animal distribuye en forma simétrica el peso en los cuatro miembros y si existe claudicación, caso en el cual se identica el miembro afectado. En muchas ocasiones el movimiento de la cabeza nos indica en qué miembro está el problema. Si la claudicación se presenta en alguno de los miembros torácicos, se notará un acortamiento del paso, y al intentar apoyarlo, la cabeza se desplazará dorsalmente en forma brusca. Cuando los miembros pélvicos están afectados, el animal camina con la cabeza por debajo de la línea dorsal, intentando desplazar el centro de equilibrio hacia la parte craneal de su cuerpo. Se considera que el centro del equilibrio en el perro se localiza a la altura de la vértebra T10. La claudicación se gradúa de acuerdo con la siguiente tabla: ❏ ❏ ❏
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Grado I: Apenas perceptible. Grado II: Notable pero apoya el miembro afectado. Grado III: Apoya el miembro afectado sólo para equilibrarse. Grado IV: No apoya el miembro y lo mantiene en exión.
El siguiente parámetro evalúa la integración del aparato locomotor con los nervios periféricos, por medio de la capacidad del paciente para adaptarse a las irregularidades del terreno, sin tropezar. Finalmente se valora la integración completa del sistema musculoesquelético con el sistema nervioso, por medio de la capacidad para mantener el equilibrio. En este caso se pide que el animal se desplace y cambie de dirección en forma brusca, y se registra si lo logra sin perder el equilibrio. En todas las pruebas anteriores se solicita al propietario que camine con el perro; si surgen dudas acerca de los hallazgos, se observa el desplazamiento al trote, lo cual acentuará los problemas encontrados. En resumen, además de observar si el animal claudica, se debe apreciar si no existe otra anormalidad,
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como arrastrar los pies, apoyarlos con los nudillos, circonducción, hipermetría, ataxia, cruzamiento de los miembros, etcétera. Todo esto indicaría afección de origen nervioso. Cuando el clínico considera que el examen en dinámica ha aportado el máximo de datos, se procede a realizar la exploración en estática (palpación y manipulación).
PALPACIÓN Y MANIPULACIÓN La palpación se dene como la aplicación de presión con los dedos sobre una supercie del cuerpo, con el propósito de determinar su consistencia. Como ya se mencionó, el orden de la exploración no es de gran importancia, pero el clínico debe desarrollar y perfeccionar una técnica que le permita disminuir al máximo las omisiones. Lo ideal, para que el examinador se forje una idea de lo normal en un paciente, es empezar por el miembro contralateral sano, desde la parte más distal hasta la más proximal, y repetir el examen en el miembro afectado. Es necesario que se focalice la zona que se está explorando, ya que si se generaliza la palpación o manipulación, existe el riesgo de obtener resultados confusos o equivocados. Para examinar completamente los miembros y corroborar los hallazgos del examen en estática y en dinámica, se coloca al paciente en decúbito lateral; se le mantiene quieto por medio de contención manual y sólo en casos muy especiales se practica la contención química. La mayoría de los procedimientos para detectar anormalidades en las articulaciones y estructuras musculoesqueléticas, así como aquellos para determinar alteraciones neurológicas, no son dolorosos en los animales normales. Al principio se debe palpar de manera gentil, para que el animal pierda el miedo de ser lastimado; si no se obtiene respuesta al dolor, se incrementa la fuerza de la palpación.
EVALUACIÓN DEL MIEMBRO TORÁCICO UÑAS Y FALANGES Al evaluar las uñas y falanges, primero se separan los dedos del animal y se examina la piel interdigital, para saber si hay áreas enrojecidas o inamadas, masas, laceraciones, pododermatitis, deformaciones congénitas, ulceraciones o cuerpos extraños. Se aprecia el
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rango de movimiento de las articulaciones interfalangeanas y metacarpofalangeanas, primero exionadas (ya que es lo menos molesto) y después extendidas completamente, y se determina si existen signos de dolor, inamación y crepitación. Se coloca, entonces, cada articulación en tensión lateral y medial para probar la integridad de los ligamentos colaterales. Las articulaciones metacarpofalangeanas se revisan de manera cuidadosa, ya que puede haber respuesta en una claudicación crónica que ha eludido el diagnóstico. Un problema común en estas articulaciones es la fragmentación de los sesamoideos palmares, que se presenta con mayor frecuencia en el Rottweiler y está asociada a inamación, dolor y disminución del rango de movimiento.
METACARPO Y CARPO El carpo y el metacarpo se palpan para buscar signos de inamación y de dolor; las fracturas del metacarpo son más comunes que las del metatarso. Los signos clínicos dependen de la gravedad de la fractura y de su grado de desplazamiento. La inamación de los tejidos blandos puede ser mínima si la fractura no está desplazada o afecta a no más de un solo hueso. En fracturas crónicas del carpo, la brosis periarticular se aprecia como si fuera un engrosamiento de la cápsula y es fácilmente detectable cuando se presenta en conjunto con la sinovitis. En casos crónicos de luxación podemos observar que el paciente apoya el miembro torácico acusando la deformidad secundaria al daño ligamentos, por ejemplo: si existió daño en el ligamento colateral medial, se observará una desviación en valgus, cuando el perro la apoye; si el daño está en la concha palmar, el apoyo se llevará a cabo con el miembro hiperextendido. Si los fragmentos de la fractura son grandes y desplazados, el dolor y la crepitación se hacen evidentes al momento de la manipulación de la articulación. La efusión articular se detecta fácilmente por palpación en la supercie dorsal; es indicativa de osteoartritis, fracturas y ruptura o elongación de ligamentos. Si hay efusión articular no se podrá palpar la parte distal del radio con el carpo a 90º. La pérdida o incremento en el rango de movimiento del carpo indica enfermedad en esta estructura. El rango de exión y extensión se aprecia por los signos de dolor al mantener ja la parte distal del antebrazo y mover el carpo. La extensión del carpo está limita-
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
da a 10º, la hiperextensión se asocia a la ruptura del ligamento del brocartílago palmar. Esta es una de las lesiones del carpo más frecuentes y está relacionada con los saltos o las caídas. Los animales enfermos presentan claudicación de grado IV en los primeros días; posteriormente la claudicación disminuye. Si forzamos el apoyo con el miembro afectado, se apreciará hiperextensión del carpo; en casos severos el cojinete del accesorio del carpo toca el suelo. La pronación y la supinación del carpo son normales cuando la articulación se mantiene en exión, pero si se extiende, ambos movimientos disminuyen. Para determinar si los ligamentos colaterales están sanos, se aplica tensión medial y lateral. El ligamento colateral medial (radial) se daña con más frecuencia que el lateral (ulnar), debido a que está en constante estrés por las características de la posición del perro, donde la mano se mantiene en una ligera posición valga. El área de inestabilidad se localiza fácilmente por palpación, y la integridad de los ligamentos colaterales se determina forzando las posiciones valga o vara del carpo. Si el desplazamiento es evidente en la primera posición, existe un daño en el ligamento colateral medial; si lo es en la segunda, estará afectado el ligamento colateral lateral. La palpación del carpo contralateral es necesaria para determinar los desplazamientos anormales.
RADIO La atroa muscular, la inamación y el dolor se determinan por palpación. En muchos casos de panosteítis, la respuesta de los perros jóvenes a la palpación ósea es de dolor. Las neoplasias óseas que afectan el radio se localizan en el tercio distal.
CODO La fragmentación del proceso coronoides se maniesta como claudicación y andar rígido. La mayoría de los pacientes que presentan este problema tienen entre cuatro y siete meses de edad. Si la afección es unilateral, el propietario suele referir periodos variables de claudicación; cuando es bilateral, la observación en dinámica permite detectar un acortamiento de los pasos y aducción de los miembros torácicos. Muchos perros no son llevados con el médico veterinario sino hasta que tienen más de 9 meses de edad; en estos casos, y sobre todo en los que padecen afectación bilateral, la fragmentación es difícil de reconocer. Con frecuencia se observa rotación interna del codo y rotación exter-
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na (supinación) del carpo. A la manipulación se debe tener cuidado de aislar los movimientos articulares; en la exión y la extensión se detecta dolor. La efusión articular es variable y ocurre en los casos crónicos, como por ejemplo, la inamación localizada entre el epicóndilo lateral del húmero y el olécranon. Los pacientes que sufren falta de unión del proceso ancóneo regularmente son presentados a consulta entre los 5 y los 12 meses de edad. El signo más frecuente es la claudicación de grado II o III, que se incrementa con el ejercicio; también se observa que el rango de movimiento del codo disminuye, mientras que el carpo se mantiene en rotación externa. En los animales afectados en forma bilateral, puede no ser evidente la claudicación. A la palpación se aprecia atroa muscular, dolor, engrosamiento de la cápsula y derrame articular. En casos crónicos se observa rigidez de la articulación, debida a la enfermedad articular degenerativa. Los hallazgos en animales con luxación de codo incluyen claudicación de grado IV e inamación de la región. El miembro torácico se mantiene con el codo en aducción y ligeramente exionado, pero con el antebrazo en abducción y rotado externamente. Esta posición se encuentra también en la contractura del músculo infraespinoso, aunque ambas condiciones se diferencian en que en la luxación disminuye el rango de movimiento del codo y hay dolor, mientras que en la contractura del infraespinoso están ausentes estos signos. El desplazamiento lateral del radio y de la ulna dan la apariencia de que el codo está alargado, y el olécranon se observa lateralizado. La función neurológica se determina por la sensibilidad supercial y el reejo exor. Los pacientes con luxación crónica demuestran menos dolor y la crepitación sugiere artrosis degenerativa secundaria. Después de una reducción de la luxación, se evalúa la integridad de los ligamentos colaterales de la articulación, por medio de la técnica de Campbell: el codo se exiona a 90º, al igual que el carpo; entonces, por aducción y abducción del metacarpo, se rotan el radio y la ulna, lateral y medialmente, manteniendo jo el húmero. Si los ligamentos están intactos, la rotación lateral máxima es de 45º y la medial, de 70º. Si el ligamento colateral medial está afectado, el movimiento lateral del metacarpo se puede llevar hasta 90º; si el ligamento lateral está dañado, la rotación medial será de hasta 140 grados.
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La luxación congénita de codo se presenta en perros de raza pequeña, como Fox Terrier, Pomerania y Pequinés. La forma clásica de la enfermedad afecta a cachorros de 4 a 22 semanas edad, la cual se detecta porque éstos mantienen la articulación del codo en completa exión, con rotación externa de la ulna, e interna del antebrazo (pronación). Con afección bilateral los miembros torácicos casi se cruzan y el perro se apoya con la cara caudomedial de los codos y antebrazos. La palpación revela desplazamiento lateral del olécranon y del tendón del tríceps, así como atroa muscular, de severa a moderada. El dolor y la crepitación generalmente están ausentes; en ocasiones se observa ulceración de la piel debido al apoyo anormal con los codos. La luxación caudolateral de la cabeza radial es otra forma de la luxación congénita, en donde los cachorros afectados muestran una ligera supinación del antebrazo; en el carpo hay deformación en valgus; la claudicación no es constante y es menos severa que en los perros afectados por una moderada luxación lateral de la ulna. La cabeza del radio se palpa en la cara lateral del codo, y no existe dolor ni crepitación articular.
HÚMERO La palpación del húmero tiene por objeto determinar la presencia de dolor, inamación, crepitación, u otros signos; la inamación del tercio proximal puede indicar fractura o neoplasia ósea. En la axila se buscan masas o dolor. En los animales con neoplasia del plexo braquial se encuentra claudicación progresiva crónica, atroa muscular y décit neurológico. La avulsión del plexo braquial ocasiona claudicación severa con atroa aguda de la masa muscular, además de las deciencias neurológicas concomitantes.
HOMBRO Los perros afectados por osteocondritis de la cabeza del húmero presentan diferentes grados de claudicación, ésta tiende a empeorar con la actividad física y a mejorar con el reposo. Durante el desplazamiento se observa un acortamiento en los pasos con el miembro torácico afectado, debido a la resistencia del perro a exionar la articulación, lo cual da la impresión de que el animal se desplaza sobre la punta de los dedos. También se aprecia un súbito movimiento dorsal de la cabeza, cuando apoya el miembro afectado, y hacia abajo cuando el peso está sobre el miembro contrala-
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teral. Si el problema es bilateral, el balanceo de la cabeza puede no ser evidente. El paciente revela dolor ante los movimientos de exión. La mayoría de los perros normales toleran la exión y la extensión completa de la articulación; sin embargo, los perros afectados por osteocondrosis de la cabeza humeral típicamente se resisten, retirando el miembro o vocalizando, cuando la articulación del hombro se exiona. La manipulación del hombro puede exacerbar la claudicación. A veces se observa atroa de los músculos supraespinoso, infraespinoso y deltoideo, la cual se reconoce por la prominencia de la espina de la escápula. La efusión articular y la inamación son difíciles de apreciar, debido a la masa muscular que circunda la articulación. La presión directa sobre el tendón del bíceps braquial puede ocasionar una incomodidad que se extiende hasta la vaina del tendón bicipital, en los casos de sinovitis, ruptura del tendón y tendinopatía calcicante; si el problema es ruptura del tendón, el rango de extensión del codo es mayor. Se aplica tensión medial y lateral para determinar el estado de los ligamentos colaterales. En pacientes con luxación lateral del hombro, el miembro presenta claudicación de IV grado y el carpo se mantiene en rotación interna. A la manipulación se aprecia dolor y crepitación y el tubérculo mayor, a un lado de su posición normal; si se le intenta reducir, regresará a la estación primaria. Es necesario realizar un examen neurológico completo para detectar problemas en el plexo braquial. Cuando la luxación es inestable se requiere un estudio radiográco en estrés para demostrarla. En ocasiones la rotación interna y la extensión están disminuidas debido a una contractura del infraespinoso. La luxación medial normalmente afecta a los perros de razas pequeñas, en los que se considera un problema congénito; pero también se puede presentar en perros de razas grandes, donde es secundaria a eventos traumáticos. Los pacientes con luxación medial secundaria a un traumatismo agudo mantienen el miembro torácico en exión y el carpo en rotación lateral. A la manipulación se aprecia dolor en la extensión, el tubérculo mayor se desplaza constantemente a una posición medial, con respecto a lo normal. Los perros con luxación congénita crónica pueden no manifestar dolor.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
ESCÁPULA Debido a la protección del tórax y a la musculatura lateral, las fracturas de la escápula difícilmente se desplazan, por lo que las deformaciones de esta zona son poco frecuentes. Las anormalidades en el apoyo son variables, los diferentes grados de claudicación dependen de la severidad de la fractura y de su localización. La atroa muscular por un problema crónico se detecta porque la espina de la escápula y el acromion se hacen evidentes. En la palpación se observa la espina, el acromion y la tuberosidad supraglenoidea para determinar sus relaciones anatómicas. Es común provocar dolor y hallar crepitaciones, así como desplazamiento de la espina, si se presentan fracturas en esa zona. En las fracturas del cuello de la escápula, de la tuberosidad supraglenoidea y del glenoide puede producirse crepitación al realizar exión y extensión del hombro.
EVALUACIÓN DEL MIEMBRO PÉLVICO UÑAS Y FALANGES La exploración de la parte más distal del miembro es similar a la que se efectúa en el miembro torácico. La fragmentación de los huesos sesamoideos ocurre con menor frecuencia que en el miembro torácico.
METATARSO Y TARSO La palpación del metatarso tiene por objeto detectar dolor, inamación y crepitación. La efusión de la articulación talocrural se encuentra más fácilmente en las zonas caudolateral y caudomedial. La efusión distal en el tarso se evalúa mejor en la parte dorsal. La articulación del tarso se compone de varias articulaciones a cuyo conjunto se le llama tarso. El diagnóstico de claudicación en esta área normalmente no representa un gran problema en casos severos, pero en casos leves puede ser muy elusivo. Si el dolor es agudo, la claudicación será de grado IV, manteniendo en exión la articulación coxofemoral y la de la rodilla. Con claudicación de grado I o II la cadera y la rodilla se mueven de manera normal en el avance, pero en reposo se observa resistencia al apoyo. Todos los perros afectados por osteocondrosis de la articulación tibiotarsiana presentan anormalidades al caminar; 50% con claudicación intermitente y 42% con claudicación persistente. La claudicación se hace más pronunciada con el ejercicio, aunque en ocasiones
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
es más pronunciada después de un periodo de descanso. En los pacientes afectados en forma bilateral, suele haber claudicación unilateral. El tarso enfermo se mantiene en hiperextensión, lo que da al perro una apariencia de tener una conformación recta de la rodilla hacia abajo. La palpación se efectúa cuidadosamente en cada uno de los huesos, las articulaciones se estresan mediolateralmente, dorsoplantarmente y en planos de rotación. La evaluación de los ligamentos colaterales se realiza en exión y en extensión, ya que el daño en el componente corto del ligamento puede no detectarse si la articulación se explora sólo en extensión. La palpación es más dolorosa y la inestabilidad se aprecia mejor con la articulación en extensión; la compresión es patológicamente dolorosa cuando se realiza a 90º de exión. El rango de exión y de extensión se evalúa tomando rmemente el metatarso y la tibia distal; éste puede aparecer disminuido en procesos crónicos. La supercie plantar se inspecciona cuidadosamente durante la exión para saber si hay inestabilidad. La sub luxación de la articulación calcaneocuartal es la inestabilidad más común en esta zona. La inamación sobre la tuberosidad calcánea puede indicar daño en el mecanismo del tendón del gastrocnemio o alteración en la inserción del tendón del músculo digital supercial. La normalidad del mecanismo del gastrocnemio se determina observando el rango de exión de la articulación. Los perros con daño en esta estructura tienen un rango de exión mayor.
TIBIA Durante la palpación de la tibia se busca la evidencia de atroa muscular, dolor óseo o deformidades en el área. El dolor a la palpación puede ser indicativo de panosteítis, en perros jóvenes, o de fractura, en general. La sola inamación en el tercio proximal o distal puede señalar la posibilidad de neoplasia en perros gerontes.
RODILLA Inicialmente el paciente se evalúa en estática para detectar cambios en la sustentación o anormalidades en la conformación. Si se observan las rodillas o articulaciones tarsotibiales rectas, así como rodilla valga o vara, se pueden predecir anormalidades en el paciente. Si el animal es capaz de desplazarse, habrá que atender a la distribución del peso en los cuatro miembros, y a los desplazamientos y angulaciones de
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las articulaciones, para determinar las anormalidades ambulatorias. Cuando un perro presenta ruptura del ligamento cruzado craneal, en estática, se percibe exión de la rodilla y ligera rotación interna de la tibia. Al caminar se maniestan diferentes grados de claudicación: grado I o II, si el problema es crónico, y III o IV, si es agudo. En algunas rupturas crónicas de ligamento es posible escuchar un "click" cuando el paciente se desplaza; esto indica daño en el menisco, principalmente el medial. La palpación puede iniciarse aun cuando el paciente se encuentre de pie. Los miembros pélvicos se palpan simultáneamente para identicar atroa muscular, dolor, inamación u otras anormalidades en la anatomía. El perro con ruptura crónica puede presentar atroa del cuádriceps, aumento palpable de la cápsula articular, sobre todo en la cara medial, y posible desplazamiento craneal de la cresta tibial. La posición y delineamiento de la patela y del ligamento patelar también se identican con el paciente de pie. El signo más frecuente en perros que sufren de osteocondrosis de la rodilla es la claudicación persistente que se exacerba con el ejercicio. Se puede encontrar dolor en la articulación, efusión, reducción del rango de movimiento, crepitación y atroa muscular. La claudicación puede ser unilateral o bilateral, y ligera e inaparente en los casos donde el peso se distribuye hacia el miembro contralateral sano o cuando la lesión no está ubicada en la zona articular de contacto ni en la zona crítica para el apoyo. Para manipular la articulación se coloca al paciente sobre la mesa, en decúbito lateral, con el miembro afectado hacia la parte superior. La rodilla se palpa para determinar si se trata de un incremento brótico en la cápsula articular, lo cual es indicativo de problemas crónicos, o de efusión articular, lo cual es típico de trastornos agudos. La brosis puede ser difícil de diferenciar de la efusión; sin embargo, al aplicar presión digital a un lado de la articulación, se puede detectar el movimiento del líquido sinovial en el lado contrario. La rodilla se manipula en todo su rango de movimiento, observando los incrementos o decrementos en la exión, extensión, rotación interna y externa, al igual que la presencia de dolor o crepitación. La ruptura del ligamento cruzado craneal permite un mayor movimiento de rotación interna durante la exión y ocasiona inestabilidad de la rodilla, que se aprecia a través de su rango de movimiento; la crepita-
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ción se presenta cuando hay daño meniscal o enfermedad articular degenerativa concomitante. La ruptura del ligamento cruzado caudal representa menos de 3% de los problemas donde están involucrados los ligamentos cruzados. Los pacientes que sufren de este trastorno se pueden agrupar en tres categorías, dependiendo del tipo de daño y de la presentación clínica: ❏
Aquellos con lesiones aisladas que afectan únicamente al ligamento; son por lo general perros maduros en los que se observa claudicación asociada a un traumatismo ocurrido durante el ejercicio físico y que se exacerba durante o después de esa actividad. En la anamnesis es frecuente encontrar que el animal se cayó en un hoyo o se atoró en una cerca, y que presentó un desplazamiento caudal de la tibia durante el accidente. En ocasiones se observa efusión articular en casos agudos, a la palpación se aprecia inestabilidad articular; sin embargo, hay que tener en cuenta que en ocasiones se puede juzgar erróneamente el movimiento de la rodilla y sospechar de un daño ligamentoso, sin que exista realmente. Al manipular la rodilla, el movimiento de cajón es evidente; no obstante, la diferenciación del desplazamiento caudal con respecto al craneal puede ser difícil. Para lograr un diagnóstico acertado se requiere, en primer lugar, que se sospeche de esta lesión, y en segundo término, que se reconozca la posición neutral desde la cual se va a desplazar la tibia. Al manipular la articulación puede parecer que el desplazamiento de la tibia es craneal, cuando simplemente está regresando a su posición normal. Para determinarlo es útil observar la posición de los dedos mientras se hace la prueba de cajón. Si el pulgar colocado sobre la cabeza bular está en posición caudal con respecto al que está sobre el sesamoideo lateral, es posible que la tibia efectivamente esté en posición caudal y, por lo tanto, que el movimiento craneal de la tibia sea de reducción a su posición normal. En estas circunstancias siempre se aprecia una terminación abrupta del movimiento, lo cual sugiere que el ligamento cruzado craneal está íntegro y soporta el diagnóstico de ruptura del ligamento cruzado caudal. Otros signos para sospechar de una ruptura de ligamento cruzado caudal son la depresión de la tuberosidad tibial con relación a la patela (comba caudal) e incremento de la
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inestabilidad caudal de la rodilla en exión, en contraste con la extensión. Animales con avulsión del origen femoral o de la inserción tibial del ligamento cruzado caudal, que generalmente son jóvenes y presentan claudicación persistente. El examen físico revela dolor a la manipulación, inamación e inestabilidad craneocaudal. Pacientes en los que el daño del ligamento caudal está asociado a otras afecciones, el daño articular es severo y se observan signos de inestabilidad que involucran a otras estructuras.
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D AÑO EN LOS MENISCOS Se puede sospechar de daño en los meniscos cuando la claudicación debida a una ruptura de ligamento persista por más de 15 días o cuando la recuperación tome semanas o meses después del daño inicial. Ocasionalmente, el propietario informa que escucha un "click" cuando el perro está caminando, se incorpora o da vuelta. Mediante el examen físico, además de la inamación articular típica, podemos encontrar una inamación rme en la zona medial entre el cóndilo femoral y el tibial. En ocasiones el movimiento de cajón es mínimo debido a una cronicidad, a rupturas parciales del ligamento o a una posición inicial desplazada. En ciertos casos el médico tiene que acomodar la tibia antes de lograr desplazarla craneal o caudalmente; durante la prueba de cajón es posible escuchar un click o ruido abrupto. El ruido no siempre es muy claro, pero puede rotarse la rodilla mientras se exiona y se extiende la articulación tratando de reproducir el ruido meniscal. No todos los clicks escuchados corresponden a un daño meniscal y no deben confundirse con crepitaciones por degeneración articular, suturas quirúrgicas, osteotos, u otros problemas. D AÑO EN LOS LIGAMENTOS COLATERALES El examen físico es la parte más importante en el diagnóstico de las lesiones en los ligamentos colaterales. En el daño agudo se observa claudicación de grado IV, dolor e inamación severa. En los casos crónicos estos síntomas no siempre son evidentes; en cambio, se puede detectar engrosamiento broso difuso de la cápsula articular adyacente al ligamento dañado, similar al observado en la inestabilidad crónica por ruptura
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de los ligamentos cruzados. La palpación simultánea de ambas rodillas con el paciente en cuadripedestación nos permite detectar anormalidades al comparar la conformación e inamación que presenta cada una. La palpación de la rodilla con el paciente en posición lateral y relajada, frecuentemente revela inestabilidad articular. Si el traumatismo es agudo o la exploración es dolorosa, se necesitará sedación. Es indispensable determinar el rango de movimiento articular, tanto en exión, como en extensión y rotación, observando las anormalidades que se presenten, así como las angulaciones provocadas por las posiciones forzadas. Las angulaciones se aprecian mejor colocando la articulación de la rodilla en extensión y evitando el movimiento de cajón. El fémur y la tibia se toman de una manera similar a la empleada para determinar anormalidades en los ligamentos cruzados: el fémur se mantiene en posición, mientras que la tibia se fuerza medial y lateralmente, observando si existe un mayor desplazamiento del normal. El daño en el ligamento colateral medial es mucho más común que el daño en el colateral lateral. Si el ligamento colateral medial está afectado se observa inestabilidad en estado valgo (el aspecto medial de la articulación se abre y el lateral se colapsa). La rotación tibial externa se ve ligeramente incrementada con la rodilla en exión y la rotación interna se incrementa con la rodilla en extensión. En cambio, en el daño al ligamento colateral lateral se aprecia inestabilidad en estado varo ( el aspecto lateral de la articulación se abre, mientras que el medial se colapsa). Se puede detectar un incremento de la rotación interna y externa cuando la rodilla está en extensión, pero una disminución cuando está en exión. El grado de inestabilidad depende de la extensión del daño a otras estructuras articulares. Debido a la función estabilizadora de los ligamentos cruzados y de la cápsula articular, el daño aislado de los ligamentos colaterales provoca sólo un ligero incremento en la angulación valga o vara. Si la angulación es muy marcada, debe sospecharse un daño en las estructuras de soporte antes mencionadas. M OVIMIENTO DE CAJÓN El movimiento de cajón es un signo diagnóstico de la ruptura del ligamento cruzado craneal. La rodilla se toma manteniendo rmemente el fémur distal, con el dedo índice de una mano sobre la patela y el pulgar por detrás del sesamoide lateral; la otra mano se co-
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loca con el dedo índice sobre la tuberosidad tibial y el pulgar en la parte caudal de la cabeza bular. El ángulo de exión-extensión y el ángulo de rotación no deben alterarse durante la manipulación. Mientras una mano mantiene el fémur estacionario, la otra intenta desplazar la tibia cranealmente o caudalmente con respecto al fémur. El desplazamiento craneal de la tibia indica la ruptura del ligamento cruzado craneal, en tanto que el desplazamiento caudal resulta de la ruptura del ligamento cruzado caudal. Los animales jóvenes presentan cierta laxitud articular de forma normal; de cualquier manera, siempre se debe comparar el miembro afectado con el contralateral, para saber si la laxitud está alterada. En una ruptura completa se aprecia una terminación suave; esto es, cuando nalmente los tejidos periarticulares restringen el movimiento de cajón, de una manera poco abrupta. Con rupturas parciales, al principio se aprecia una ligera inestabilidad craneal seguida de una terminación abrupta del movimiento, debido a que los remanentes del ligamento se tensan. Asimismo, con rupturas parciales, el movimiento de cajón se produce más fácilmente al incrementar la exión, debido a que las bras de la banda craneolateral están relajadas, mientras que en posición normal permanecen tensas, impidiendo el desplazamiento craneal de la tibia. En casos crónicos, donde la tibia queda ja en una posición craneal con respecto al fémur, la laxitud puede estar ausente porque el tejido broso periarticular haya creado cierta estabilidad. P RUEBA DE COMPRESIÓN TIBIAL La prueba de compresión tibial se efectúa colocando el dedo índice de una mano sobre la tuberosidad tibial, el pulgar sobre el sesamoideo y tomando con los dedos remanentes la parte distal del fémur. Con el dedo índice de una mano se ejerce presión sobre la tuberosidad tibial en dirección caudal, mientras que con la otra mano se exiona y extiende el tarso. Si el ligamento cruzado craneal está roto, la contracción del gastrocnemio producida por la exión del tarso inicia el mecanismo de la compresión tibial, ocasionando el desplazamiento craneal de la tibia con respecto al fémur; pueden ocurrir falsos negativos si existe brosis periarticular. La compresión tibial debe usarse cuando la prueba del movimiento de cajón es dudosa debido a una técnica inadecuada o al gran tamaño del paciente; esta prueba es fácil de aplicar en perros de raza grande o gigante, donde el miembro es sucientemente largo
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para permitir la colocación adecuada de las manos del examinador. Si los músculos del muslo se toman rodeándolos con las manos en forma de circunferencia, se incrementa la estabilidad de la rodilla, con lo cual puede obtenerse un falso negativo en el movimiento de cajón. En cambio, la prueba de la compresión tibial concede al médico cierta ventaja mecánica, sobre todo cuando examina razas grandes o gigantes. Las pruebas del movimiento de cajón y la compresión tibial determinan la laxitud de la articulación de la rodilla. Sin embargo, a veces existirá disparidad entre la laxitud observada y la funcionalidad de la articulación. Un perro puede tener una rodilla estable a la manipulación, pero claudicar a causa de una ruptura total o parcial del ligamento cruzado craneal. Este fenómeno también ocurre en el hombre y se conoce como estabilidad funcional, la cual consiste en la presencia de componentes estáticos y dinámicos. Estabilidad estática signica que las fuerzas y la posición de la articulación son constantes, como cuando el animal está de pie, y requiere de contracción muscular activa. La estabilidad dinámica es aquella donde las fuerzas y la posición de la articulación cambian constantemente, por ejemplo, durante el movimiento. La estabilidad funcional se mantiene por restricciones pasivas y activas. Las pasivas involucran los ligamentos y la geometría articular, mientras que las pasivas están representadas por los músculos. Durante el movimiento de cajón se aplica una fuerza relativamente pequeña, sobre todo en relación con pacientes de razas grandes o gigantes; esta fuerza es mucho menor que aquellas que actúan sobre la articulación en actividad. Con un desgarre o una ruptura del ligamento cruzado craneal, parte de las restricciones pasivas se anulan, pero las activas se mantienen y, dependiendo de la condición física y del tamaño del paciente, el movimiento de cajón puede ser negativo, en tanto el paciente continúa sufriendo de laxitud articular durante la locomoción. DETERMINACIÓN DE LA LUXACIÓN PATELAR El paciente se coloca en posición de decúbito lateral con el miembro afectado libre, se toma la patela con los dedos pulgar, índice y medio de una mano y con la otra se toma la tibia colocando la articulación femorotibiopatelar, al inicio en posición neutra y posteriormente en todo su rango de exión y extensión, evaluando la presencia de dolor y crepitación durante
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
estos movimientos. La luxación espontánea se detecta con facilidad, ya que se aprecia un chasquido o brinco. Con la articulación en extensión se toma la patela como antes se señaló y se presiona, tratando de desplazarla medial o lateralmente; se valora su posición y se determina si está luxada, si hay posibilidad de reducción y su estabilidad. En la articulación normal, la patela puede desplazarse ligeramente pero no se luxa. ❏ ❏
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Luxación patelar secundaria a traumatismo La luxación traumática aguda puede ser medial o lateral, se asocia con claudicación de grado IV y dolor a la manipulación de la articulación. Estos signos paulatinamente desaparecen y son muy ligeros en pacientes con luxación crónica. Luxación patelar congénita o del desarrollo
Los signos clínicos asociados a la luxación congénita varían de acuerdo con el grado de luxación. La luxación patelar de grado 1 normalmente es un hallazgo incidental durante un examen físico de rutina, pero puede causar claudicación después de un ejercicio vigoroso. La luxación de grado 2 ocasiona claudicación intermitente, asociada con la luxación momentánea de la patela. La claudicación se resuelve de manera espontánea al reducirse la luxación. El propietario comenta que a veces el perro claudica y exiona el miembro sin aparentar dolor; después lo exiona y extiende para continuar caminando normalmente. En la luxación de grado 3 la claudicación puede ser ligera o no estar presente. Es común hacer el diagnóstico de la luxación durante un examen físico de rutina en un perro geronte, aunque no haya presentado claudicación. Algunos perros con este grado de luxación presentan claudicación severa, lo cual puede estar asociado con artrosis degenerativa secundaria. La claudicación aguda en los pacientes que sufren de luxación patelar crónica puede ser secundaria a la ruptura del ligamento cruzado craneal. La luxación patelar de grado 4 es una condición severa caracterizada por una marcada rotación interna y curvamiento externo de la tibia; los perros afectados toman una posición de "cangrejo", son incapaces de desplazarse y sólo lo logran con mucha dicultad. Algunos están completamente inválidos y tienen que ser cargados por sus propietarios. La luxación patelar lateral raramente ocurre en perros de razas pequeñas y puede causar claudicación
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
y dolor agudo. Con mayor frecuencia es el resultado de deformidades óseas en perros de razas grandes o gigantes. Los animales afectados adoptan una postura como de estar agachados y tener un torpe desplazamiento. A la palpación se aprecia una coxa valga, excesiva anteroversión del cuello femoral, hipoplasia del vasto medial, curvatura medial del fémur y de la tibia (rodilla valga) y rotación externa del miembro. SISTEMA
DE GRADUACIÓN PARA DETERMINAR
EL GRADO DE LUXACIÓN PATELAR
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Grado 1: la patela se logra luxar medialmente cuan-
do la rodilla se mantiene en completa extensión, pero regresa a su posición de reducción en cuanto se retira la fuerza que ocasionó la luxación. No se aprecia crepitación o deformidad ósea. No hay signos clínicos u ocurren con poca frecuencia. Grado 2: existe luxación espontánea, la patela puede encontrarse fuera de la corredera troclear y se reduce a la extensión aparentemente sin dolor; sin embargo, se aprecia paso “de cojito" y signos de ligera deformación consistentes en rotación interna de la tibia y abducción de la articulación tarsotibial. Esta condición puede progresar a luxación de grado 3 y presentar erosión cartilaginosa en las supercies patelar y troclear. Grado 3: se aprecia una luxación permanente de la patela, la cual puede reducirse en forma manual; sin embargo, cuando se retira la fuerza que la redujo, tiende a luxarse otra vez. Hay deformidades óseas más severas que incluyen: marcada rotación medial de la tibia, la sigmoide del fémur distal y la tibia proximal; la corredera troclear se ve plana. Grado 4: la patela se mantiene en posición luxada no reducible. La tibia está rotada de 60º a 90º en el plano sagital. Se presentan otras deformidades óseas, como las ya mencionadas en el grado 3.
CADERA D
Debido a que la claudicación en los miembros pélvicos no siempre es ocasionada por la presencia de displasia de la cadera, es importante que el clínico efectúe un examen ortopédico y neurológico completo. En los casos de displasia de la cadera con frecuencia se observa que están involucradas otras articulaciones, como por ejemplo, el codo.
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Es posible que el clínico se confunda al elaborar el diagnóstico de las anomalías de los miembros pélvicos, pues muchas de estas condiciones tienen una semiología común, por ejemplo, la displasia de la cadera, la ruptura del ligamento cruzado craneal, la luxación de la patela, el daño en los meniscos y las artropatías degenerativas idiopáticas e inmunomediadas. En animales jóvenes se presenta la osteocondritis, la panosteítis y la osteodistroa hipertróca, entre otras. Entre los trastornos neurológicos están las discopatías, la inestabilidad lumbosacra, la mielopatía degenerativa, etcétera. Incluso afecciones en otros órganos, como la próstata, repercuten en los miembros pélvicos. Se debe tener en cuenta que la existencia de un problema ortopédico único no explica la presencia de signos neurológicos; por lo tanto, si éstos se detectan, es necesario llegar al diagnóstico antes de atribuirlos a una afección ortopédica. L
Un animal con luxación coxofemoral usualmente tiene antecedentes de algún traumatismo. Al realizar el examen ortopédico se encuentra claudicación de grado IV y dolor. En las luxaciones craneodorsales el miembro pélvico se mantiene en aducción y con rotación externa (rodilla hacia fuera y articulación tibiotarsiana hacia adentro). En las luxaciones ventrales este miembro se mantiene en abducción y con rotación interna. Si el paciente es observado desde la parte caudal, se advierte una asimetría de la cadera debido al desplazamiento del trocánter mayor del miembro afectado. Asimismo, el miembro se aprecia más corto cuando existen luxaciones craneodorsales y más largo en las centrales. La palpación de la articulación coxofemoral revela crepitación y disminución del rango de movimiento. En muchos casos el trocánter mayor está desplazado con relación a la tuberosidad isquiática y el ala del ilion. Ocasionalmente la laxitud severa de la articulación coxofemoral permite luxar la cabeza del fémur en diferentes direcciones. Los métodos para detectar la luxación coxofemoral se describen en la sección de técnicas especícas. E L-C-P
La enfermedad de Legg-Calvé-Perthes, también conocida como necrosis avascular de la cabeza femoral, aparece generalmente durante el primer año de vida, entre los 5 y 8 meses, en perros de razas pequeñas. La
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claudicación varía en grados, pero por lo común afecta a un solo miembro y presenta una evolución gradual y sutil en varias semanas; en algunos perros es aguda, y entre las seis y las ocho semanas la claudicación puede pasar de intermitente a continua. Se aprecia atroa muscular y el dolor es fácilmente detectable cuando se abduce la articulación coxofemoral. Puede observarse el miembro acortado con disminución de su rango de movimiento, principalmente en abducción, así como crepitación articular. El diagnóstico debe conrmarse por medio de un estudio radiográco.
mento caudal acorta la distancia entre la cresta ilíaca y el trocánter mayor. La fractura isquiática aislada acorta la distancia entre la tuberosidad isquiática y el trocánter mayor. La incapacidad de palpar la pared ventral del abdomen ocurre con la ruptura del tendón prepúbico o fracturas por avulsión del pubis. Finalmente se realiza la palpación rectal; si este procedimiento es inusualmente doloroso se sospecha de fractura del sacro o del acetábulo; la presencia de sangre en el dedo del examinador constituye una evidencia del daño rectal.
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TÉCNICAS EMPLEADAS EN EL EXAMEN DE LA CADERA
Las fracturas de la pelvis no siempre causan deformación evidente o pérdida total del miembro ipsilateral al problema. Cuando existe una fractura en cualquier parte de la pelvis, puede observarse deformación en algún otro lugar de ésta, debido a su forma de caja. La palpación y manipulación extensiva de la pelvis no son necesarias para detectar una fractura, porque con los estudios radiográcos se obtendrá su imagen; sin embargo, puede determinarse la presencia de asimetría pelviana comparando, por palpación, la relación entre la cresta ilíaca, la tuberosidad isquiática y el trocánter mayor. La posición de estas tres prominencias óseas nos da información diagnóstica, ya que forman un triángulo isósceles, con el lado largo entre la cresta ilíaca y el trocánter mayor, y el lado corto entre el trocánter mayor y la tuberosidad isquiática. Cuando el trocánter mayor es difícil de palpar, aparece desplazado medialmente, y con la manipulación de la articulación coxofemoral hay dolor, crepitación y disminución de la rotación, puede suponerse que se trata de una fractura acetabular impactada. El desplazamiento dorsal y craneal del trocánter mayor sugiere que hay luxación coxofemoral concomitante, mientras que el desplazamiento dorsal único determina el diagnóstico de fractura del cuello femoral, una separación seal de la cabeza femoral o una combinación de fractura de cuello y cabeza femoral, así como de avulsión del trocánter mayor. El desplazamiento craneal de la cresta ilíaca es secundario a una luxación sacroilíaca o a fracturas del sacro. La inestabilidad de la articulación sacroilíaca se detecta aplicando presión medial y caudal, y observando el desplazamiento en dicha estructura. La fractura del cuerpo ilíaco con desplazamiento craneal del frag-
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La displasia de cadera es bilateral en 93% de los casos; por lo tanto, las anormalidades en el paso no son un indicador sensible para el diagnóstico de esta enfermedad, sobre todo en etapas iniciales. En los perros afectados se observa el "paso de conejo" (desplazamiento de los miembros pélvicos en forma simultánea) al correr, aunque no siempre es así. Si hay claudicación, uno de los miembros se verá más afectado y consecuentemente se ocultarán los signos del miembro contralateral. Un hallazgo característico de la displasia de cadera y de otras anomalías de las articulaciones coxofemorales es el acortamiento en la longitud del paso a causa de la renuencia del animal a extender la cadera. Esto se debe al dolor que produce la enfermedad articular degenerativa y a la brosis de la cápsula articular, que además limita el rango de movimiento. R
El rango normal de movimiento de la articulación coxofemoral en perros anestesiados es de 110º. Con enfermedad articular degenerativa severa y brosis articular el rango de movimiento se puede reducir tanto como 45º. El médico veterinario zootecnista puede determinar fácilmente cuándo un rango de movimiento está reducido. Para medir la pérdida progresiva del rango de movimiento en los casos crónicos, puede emplearse un goniómetro, que además es útil para denir el pronóstico, así como para la toma de decisiones cuando se está considerando un tratamiento quirúrgico. E z
Muchos perros con displasia de la cadera muestran dolor ante la extensión forzada de una o ambas arti-
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culaciones coxofemorales. En perros y gatos normales la extensión se efectúa fácilmente, mientras que los pacientes afectados muestran dolor, resistencia a la manipulación, movimiento rápido hacia una posición de exión y en algunos casos vocalización o comportamiento agresivo en respuesta al dolor. P
La presión digital sobre el dorso de la pelvis en el paciente de pie puede auxiliar en la detección de dolor en las articulaciones coxofemorales o lumbosacra. Con la fuerza que se ejerce sobre el dorso de la pelvis, los perros afectados clínicamente se sientan rápidamente sin oponer mucha resistencia. Los perros normales se resisten a la presión y en la mayoría de los casos se mantienen de pie. P O
La prueba de Ortolani se emplea con frecuencia para determinar la inestabilidad articular coxofemoral. Ortolani describió inicialmente esta técnica, en 1930, para diagnosticar la laxitud articular coxofemoral en seres humanos recién nacidos. No se describió completamente para su uso en veterinaria hasta 1985. En la mayoría de los casos se requiere de la anestesia general para demostrar el signo de Ortolani. Se puede colocar al paciente en dos posiciones: en decúbito lateral o en decúbito dorsal. La decúbito dorsal es preferible para razas grandes o gigantes, debido a que esta posición hace más fácil obtener la ventaja mecánica necesaria para efectuar la prueba. Con el animal en decúbito lateral, se coloca el miembro en posición perpendicular a la columna vertebral, se toma rmemente la rodilla y se exiona a 90º. En la decúbito dorsal es necesario que un asistente mantenga al paciente balanceado, o bien, se realice la prueba en una mesa de cirugía en forma de "V", y de esta manera se aplica una presión rme y constante a través del axis del fémur hacia las articulaciones coxofemorales. Esta acción deberá luxar o subluxar la cabeza femoral en animales con laxitud articular. La rodilla se abduce sujetada rmemente; en perros con laxitud se siente un click al reducir la luxación y en ocasiones hasta se escucha. Este fenómeno indica un signo de Ortolani positivo y se crea cuando la luxación provocada por la presión axial se reduce repentinamente y la cabeza del fémur cae otra vez dentro del acetábulo. Si el signo no se obtiene, se hacen intentos repeti-
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dos hasta que el clínico esté seguro de sus hallazgos. Durante la maniobra, con frecuencia se detecta crepitación, lo cual es una evidencia del daño en las supercies articulares, así como de que han ocurrido cambios degenerativos. Algunos perros con displasia de cadera pueden mostrar un signo de Ortolani negativo; esto se explica de muchas maneras: primero, puede no existir laxitud articular debido a la brosis articular y periar ticular, por lo tanto, la cabeza del fémur no se logra luxar. Segundo, en algunos animales afectados severamente hay una luxación previa de la cabeza femoral imposible de reducir. Otras explicaciones se reeren a la aplicación inapropiada de una técnica (sin la fuerza suciente para luxar la cabeza femoral o poca profundidad anestésica). Por ejemplo, la anestesia por medio de ketamina no provee la suciente relajación muscular para efectuar una prueba de Ortolani conable. Un signo de Ortolani negativo no necesariamente elimina la displasia de cadera como probable diagnóstico, pero muchos de los casos de perros afectados por laxitud de la articulación coxofemoral pueden detectarse por este método. S Bw
El signo de Barlow fue descrito inicialmente en la literatura médica humana y es una prueba adicional en el examen ortopédico, que puede dar al médico veterinario un indicio de la laxitud coxofemoral. Esencialmente se efectúa igual que la primera parte de la prueba de Ortolani: se aplica presión axial al fémur en dirección a las articulaciones coxofemorales para producir su luxación. Poniendo atención se puede detectar la laxitud coxofemoral con esta prueba, pero la mayoría de los autores recomienda completarla hasta efectuar la prueba de Ortolani para incrementar la conabilidad en los hallazgos. P B
La tercera manipulación empleada en el diagnóstico de la laxitud coxofemoral es la prueba de Barden. Como en la de Ortolani, en ocasiones se requiere de la anestesia general. El paciente debe estar en decúbito lateral, y el clínico, ubicarse en la parte posterior. Se coloca el dedo pulgar o índice, o incluso la palma de la mano, sobre el trocánter mayor, mientras que la mano libre toma rmemente el muslo y lo desplaza lateralmente sin abducción. Con la práctica, el clínico desarrollará la sensibilidad para determinar la laxitud
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
articular. En algunos informes se menciona la existencia de un instrumento de medición de Barden para la laxitud de la articulación coxofemoral. Si el pulgar o el índice colocado sobre el trocánter mayor se desplaza más de medio centímetro, entonces el diagnóstico de laxitud se justica, lo cual indica un signo de Barden positivo. Esta prueba se emplea en forma preliminar en cachorros, para identicar a los animales potencialmente displásicos. Sin embargo, es necesario tener en cuenta los hallazgos en las otras pruebas antes de determinar la potencialidad de displasia en un cachorro. Es posible lograr un signo de Barden positivo aun en perros sanos, debido a que después de repetidos intentos, invariablemente se logra cierto desplazamiento, a causa de que la supercie de la tensión que provoca el líquido sinovial se ha roto. Todas las pruebas empleadas para diagnosticar laxitud articular son efectivas, pero es necesario considerar que la laxitud por sí misma no es indicativa de displasia de cadera. Cuando se pretende interpretar estas pruebas se deben tener en mente muchas preguntas, las más importantes son: (1) ¿existe claudicación? y (2) ¿los diagnósticos diferenciales han sido sucientemente explorados? Además hay variaciones relacionadas con la raza y la edad, en lo que se reere al grado de laxitud articular, la cual puede ser considerada como clínicamente normal si no se tiene evidencia clínica de lo contrario. La demostración de la laxitud articular sólo es un criterio para determinar el diagnóstico de la displasia de cadera. En pediatría humana, las investigaciones sugieren que el someter a los niños en forma repetida a la prueba de Barlow puede hacer la cápsula articular lo sucientemente laxa como para dar un diagnóstico falso positivo. Es posible encontrar laxitud articular en un cachorro, la cual desaparezca después de algunos meses y el examen radiográco no muestre evidencias de displasia de cadera. El estudio radiográco es el único método conable para dar un diagnóstico denitivo, emitir un pro nóstico y establecer las opciones de tratamiento.
quiática. Esta prueba no debe confundirse con la de Barden, en la cual el pulgar se coloca en la depresión entre el trocánter mayor y la tuberosidad isquiática. El miembro se toma rmemente por la articulación tarsotibial y se rota externamente. En el perro normal el dedo situado en la depresión se ve forzado a salir por la rotación caudal del trocánter, que disminuye el tamaño de la depresión; en cambio, cuando existe luxación el dedo puede permanecer en la depresión sin ser afectado por el movimiento caudal del trocánter. El hecho de no observar un desplazamiento del dedo se interpreta como signo positivo de luxación coxofemoral. Aunque el clínico encuentre con esta prueba la luxación coxofemoral, es indispensable la realización de un estudio radiográco para determinar la luxación y las alteraciones asociadas a ésta, como por ejemplo, fractura en la cabeza del fémur.
P
Una historia de traumatismo siempre acompaña a toda herida que penetra en las articulaciones. El incidente causante puede suceder cuando el animal no está siendo supervisado. Las heridas penetrantes en las articulaciones usualmente ocasionan claudicación aguda de grado IV. Si el diagnóstico y el tratamiento
En la prueba para determinar la luxación coxofemoral se pone al paciente en decúbito lateral con la articulación afectada libre. El clínico coloca el pulgar o el índice en la depresión que se forma entre la parte posterior del trocánter mayor y la anterior de la tuberosidad is-
D
El paciente se coloca en decúbito lateral y se identica el ala ilíaca, el trocánter mayor y la tuberosidad isquiática. Al trazar unas líneas imaginarias para unir estas estructuras se forma un triángulo escaleno (lados y ángulos diferentes) donde el lado más grande corresponde a la línea trazada entre el ala ilíaca y la tuberosidad isquiática, seguida por la línea entre el trocánter mayor y el ala ilíaca; al existir luxación craneodorsal la extensión de la línea y la angulación entre el trocánter y el ala ilíaca y entre el trocánter y la tuberosidad isquiática se verían disminuidas (ángulos más agudos) y en algunos casos incluso se apreciarían las estructuras del ala ilíaca alineadas con la tuberosidad isquiática. En caso de luxación coxofemoral ventral la línea y la angulación entre el ala ilíaca y el trocánter mayor se verían aumentadas, al igual que el lado comprendido entre el trocánter mayor y la tuberosidad isquiática. En todos los casos es necesario comparar los resultados obtenidos, con el lado contralateral.
FRACTURAS EXPUESTAS H
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
no se inició en forma precoz, la claudicación puede disminuir y resolverse, particularmente en las heridas de grado I, o empeorar si se presenta una infección. La articulación en la que se sospecha un daño debe palparse buscando efusión y dolor, que son indicativos de derrame articular. La efusión sinovial es un hallazgo invariable en heridas articulares penetrantes en el hombre. Las heridas articulares de grado I con pequeños oricios pueden no ser obvias, por lo que se requiere rasurar el pelo de la zona y determinar la presencia de una herida expuesta. Toda laceración y herida abierta deben ser examinadas a fondo para saber si se afectó la articulación. Las heridas que llegan a las articulaciones pueden exudar líquido sinovial. Si existe duda de la presencia de una comunicación entre la herida y la articulación, se puede inyectar asépticamente solución salina estéril o lactato de Ringer en la articulación; el uido se extravasará a través de la herida que se comunica. Este procedimiento sólo debe realizarse después de haber obtenido muestras de líquido sinovial para su diagnóstico. Debe examinarse el rango de movimiento de las articulaciones afectadas para determinar la presencia de inestabilidad o crepitaciones que sugieran un daño en los ligamentos o una fractura. Cuando los pacientes se presentan en etapas crónicas en las que se ha establecido una sepsis, puede haber inamación de los tejidos periarticulares y un incremento localizado de la temperatura. La manipulación de una articulación séptica provoca generalmente una reacción de dolor. El edema del miembro y la linfadenopatía se harán más evidentes conforme la infección se establece. Los signos sistémicos de infección como la pirexia, la anorexia y el letargo son menos frecuentes.
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O
La osteomielitis aguda generalmente es secundaria a la reparación abierta de una fractura, y los signos clínicos aparecen después de 5 a 7 días. El paciente se presenta febril y con las heridas quirúrgicas edematosas, enrojecidas y calientes; hay claudicación de grado IV y el sitio de la cirugía se percibe como doloroso a la palpación. O
Los animales afectados presentan atroa del miembro enfermo y usualmente se observan fístulas, que disminuyen su drenaje durante la aplicación de antibióticos, pero al ser éstos discontinuados, el propietario invariablemente regresa con el paciente a consulta. El grado de claudicación y el dolor en el sitio de fractura son variables; si el proceso de reparación se ha llevado a cabo, el dolor será menor y no se apreciará la presencia de crepitaciones. U
Clínicamente, la unión demorada y la falta de unión se maniestan en forma similar. Existe movimiento en el sitio de fractura. Con la unión demorada este movimiento generalmente es doloroso. Con la falta de unión la palpación provoca mucho menos dolor e incluso algunos pacientes presentan cierto apoyo debido a la pseudoartrosis desarrollada. Cuando el miembro es apoyado se puede observar una deformidad con angulación en el lugar afectado. En ambas condiciones la funcionalidad del miembro es discontinua, por lo que hay una atroa de las masas musculares del miembro afectado.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
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Método diagnóstico orientado a problemas Samuel Genaro Jardón Herrera Alejandro Jiménez Yedra Carlos Santoscoy Mejía
INTRODUCCIÓN T debe contar con un sistema para el manejo de la información sobre los pacientes y sus propietarios, organizado de tal manera que permita que los datos siempre puedan ser consultados por las personas que lo requieran y que estén autorizadas para ello. Dejar plasmado por escrito lo visto y realizado en cada revisión es de gran ayuda dentro del consultorio y en los centros de salud animal donde hay un ujo constante de médicos o de pacientes, como en el caso de las clínicas y hospitales, en los que a pesar de que exista buena comunicación entre los integrantes del cuerpo médico, no es posible que se tenga un recuerdo pleno de todos los pacientes. Actualmente se han incrementado las posibilidades diagnósticas y terapéuticas, así como el número de diagnósticos especícos y, con ello, la esperanza de vida de los enfermos; por lo tanto, resulta casi imposible una atención adecuada si no se dispone de un correcto registro de los individuos vistos en consulta ni de una planicación de los procedimientos pertinentes. Un expediente clínico incompleto, impreciso y desordenado es un documento inútil que puede causar confusión, pérdida de tiempo y de recursos; además, impide el seguimiento del cuadro clínico y, como apoyo para la investigación, no permite comprobar los resultados de un tratamiento o la ecacia de un método diagnóstico. En la práctica, el médico trata una gran variedad de problemas; esta actividad es la característica diferencial de su quehacer, frente al de otros profesionales. La falta de sistema conduce a una carencia de uniformidad, lo cual puede entorpecer la comunicación, sobre todo si el tratamiento ha de llevarse a cabo entre varios médicos. Todo lo anterior es de vital importancia, más aún en los sistemas de enseñanza de la medicina, donde la manera de atender a los pacientes es parte integral del aprendizaje.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
La instrucción clínica de los médicos debe basarse en un sistema o método que los ayude a denir y seguir los problemas de los pacientes (uno por uno) mientras los registra y resuelve en forma ordenada. Para tal propósito, se sugiere el método diagnóstico orientado a problemas (MDOP), el cual tiene tres objetivos principales: ❏
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diagnóstico y después de ello decidir cuál será el tratamiento adecuado; un problema puede ser el motivo del propietario para llevar a su animal a consulta. Un signo es cualquier evidencia de enfermedad o de disfunción percibida por el explorador, o una anormalidad encontrada en las pruebas de laboratorio. Un diagnóstico es la identicación, mediante el nombre, de un trastorno, Poder identicar los problemas clínicos de cada pa- a partir de la evaluación cientíca de los signos clínicos ciente para determinar la enfermedad por la que del paciente, su historia clínica, los resultados de las cursa (llagar al diagnóstico) y nalmente buscar pruebas de gabinete y otros procedimientos. Con este método el médico se ve obligado desde soluciones. Evitar la tendencia a considerar únicamente el pro- un principio a formular los problemas tan claramente como sea posible y a denirlos considerando que deblema más obvio (visión de túnel), olvidándose de ben enlistarse signos y no diagnósticos (por ejemplo, otros que pudiera presentar el paciente; esto suele ocurrir cuando el médico se apresura a dar un diag- vómito en lugar de gastritis), lo cual disminuye la tendencia a establecer diagnósticos precoces. Además, el nóstico con base en un solo signo clínico, o bien, con un solo dato de la anamnesis o de la historia clí- sistema permite que el médico veterinario determine si posee los conocimientos necesarios para resolver el nica, sin tener en cuenta que hay una gran variedad caso, o si deberá recurrir a la consulta de revistas espede enfermedades que se maniestan con la misma cializadas o libros, o bien, a la interconsulta o ayuda de semiología, errando con esto el diagnóstico. Elaborar un registro de todos los datos del pacien- un especialista. te, la anamnesis, la historia clínica, el examen clíniPASOS Y ACCIONES DEL MDOP co, el diagnóstico y el plan terapéutico, así como de Plan del sistema Acciones médicas las fechas en las que el paciente ha recibido atención médico-quirúrgica o zootécnica. Reseña Recopilar información
El MDOP es un modelo útil para clasicar y organizar en forma racional y secuencial las observaciones iniciales y continuas, necesarias para el estudio del paciente, ya que, denitivamente, la mejor forma de re cordar todos los eventos patológicos por los que cursa un paciente a lo largo de su vida es registrándolos en un expediente. Este plan resulta de gran interés por su ecacia real como modelo de aprendizaje para el estudiante, y aunque parece que se incurre en demasiados detalles, permite acumular datos clínicos en poco tiempo y dar una mejor atención a los pacientes. El método está diseñado de tal manera que siempre se dispondrá de información ja acerca de uno o varios problemas denidos. El núcleo del MDOP lo constituye la lista de problemas. En medicina, “problema” se dene como una anormalidad presente en un individuo, misma que requiere una evaluación exhaustiva para establecer el
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Lista de problemas
Registrar los problemas del paciente
Lista maestra
Encontrar qué se debe hacer
Diagnósticos presuntivos Diagnósticos denitivos
Dar seguimiento a cada decisión tomada
Plan inicial Notas de progreso
A continuación se describe en qué consiste cada uno de los pasos que conforman este sistema y después se proporciona un ejemplo de su uso.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
DATOS BÁSICOS Los datos básicos incluyen los datos del propietario, la información obtenida en la reseña, la historia clínica y el examen físico, y en el caso de que el paciente venga remitido por algún otro colega, las pruebas de laboratorio que se hayan realizado con anterioridad, como: hemograma, urianálisis, bioquímica clínica, estudios coproparasitoscópicos.
DATOS DEL PROPIETARIO Los datos del propietario o responsable del animal de compañía son de suma importancia; éstos constan de su nombre, su dirección completa y los números de los teléfonos del domicilio, el lugar de trabajo y el celular; estos números, en la opinión de los autores, son quizá lo más importante para poder establecer una comunicación constante con el propietario sobre cualquier asunto relacionado con el paciente.
RESEÑA DEL PACIENTE La reseña recaba datos como el nombre, especie, raza, sexo y edad del paciente. Conocer el nombre del animal ayuda al médico a familiarizarse más con él; asimismo, tener en cuenta la especie que se está tratando es de suma importancia para iniciar la formulación del diagnóstico, ya que existen enfermedades características de cada una; al respecto, cabe mencionar que los gatos no son perros pequeños. La raza juega un papel preponderante en la recolección de datos, puesto que en la especie canina hay una gran diversidad de razas, y entre éstas se presentan diferencias anatómicas, siológicas, biomecánicas e inclusive metabólicas, lo cual complica el abordaje del diagnóstico. En los gatos también se encuentran diferencias entre las razas. El puro conocimiento de esta característica puede traer a la mente las posibles causas del problema del animal afectado, como por ejemplo, la predisposición, de una raza determinada, a manifestar ciertas enfermedades hereditarias. La edad del paciente es relevante debido a que la prevalencia de las enfermedades diere de acuerdo con la edad. Los animales jóvenes son más propensos a las alteraciones causadas por agentes infecciosos, por el desarrollo, por intoxicaciones o cuerpos extraños, mientras que los más viejos con mayor frecuencia
❏
Metodología diagnóstica en perros y gatos
se ven afectados por enfermedades degenerativas o neoplásicas. Por ejemplo, la inestabilidad cervical es muy común en el Gran Danés con paraparesia, pero en un perro de la raza Cocker con la misma semiología, lo más probable es que se trate de una extrusión toracolumbar del núcleo pulposo. Conocer el género puede auxiliar en la orientación de las posibilidades del diagnóstico, por ejemplo, la piómetra será un diagnóstico diferencial ante la poliuria/polidipsia en una hembra intacta; sin embargo, éste no se incluiría en los diagnósticos diferenciales de un macho que presente la misma semiología.
HISTORIA CLÍNICA La importancia de la historia médica anterior no debe ser subestimada, se necesita contar con datos relativos al lugar donde vive el paciente, el tipo de actividad física, la función zootécnica que desarrolla, su dieta habitual y si convive con otros animales (sean o no de la misma especie). También se obtiene información sobre acciones preventivas de salud (vacunaciones, desparasitaciones, limpieza dental, etc.), enfermedades previas, tratamientos y enfermedades familiares. Además, es necesario saber si el animal se encuentra orquiectomizado u ovariohisterectomizado, según el sexo. Cualquier dato puede alterar la aproximación diagnóstica y terapéutica sobre el individuo; por ejemplo, un perro con semiología neurológica sin vacunaciones previas contra distemper, muy probablemente esté cursando con esta enfermedad. La historia de viajes o cambios de domicilio también puede dar pautas para establecer diagnósticos diferenciales, pues por la prevalencia de ciertas enfermedades en diferentes áreas geográcas puede inferirse la exposición a las mismas, si se conoce cuál fue el desplazamiento del paciente; por ejemplo, blastomicosis y coccidiodomicosis, en zonas semidesérticas; dirolariasis y erlichiosis, en zonas tropicales.
MOTIVO DE LA CONSULTA Es el comentario o explicación en síntesis de por qué el propietario lleva al paciente en ese momento a consulta. Hay que tener cuidado en este punto, ya que es muy común que el clínico se enfoque de manera directa en el problema más evidente, cayendo de esta forma en la visión de túnel antes descrita, y en ocasiones se olvida de realizar el examen clínico general, el cual, como se describirá más adelante, podría revelar la pre-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
sencia de enfermedades concomitantes al del motivo de la consulta.
ANAMNESIS La anamnesis, del griego amnos, que signica memoria, es el relato detallado por parte del propietario acerca de la molestia que aqueja en ese momento a su mascota. Aquí es necesario que el dueño proporcione la mayor cantidad de información sobre el problema, y de ser posible de manera cronológica (cómo, cuándo y dónde), ya que de eso dependerá la determinación de la cronicidad y la posibilidad de entender la siopatología y el curso de la enfermedad.
EXAMEN FÍSICO GENERAL El examen físico general forma parte integral del MDOP, partiendo del cual se sabrá dónde se localiza físicamente el problema o si se trata de una enfermedad sistémica. Con experiencia se puede ubicar incluso el órgano que está afectado, por lo que es recomendable realizar el examen físico de manera muy detallada y precisa.
LISTA DE PROBLEMAS (forma 1) La lista de problemas consiste en una relación numérica (caracteres arábigos) de cada uno de los problemas que el paciente presente o haya presentado, por ejemplo: 1. 2. 3. 4. 5. 6.
Tos frecuente y productiva. Piodermas recurrentes. Otitis ceruminosa. Impactación de glándulas anales. Diarrea crónica. Opacidad del cristalino.
Los problemas identicados se enlistan sin un orden de importancia aparente. Los autores recomiendan organizar los problemas desde la reseña del paciente hasta la nalización del examen físico general, y de preferencia por aparatos y sistemas (si existieran varios problemas relacionados entre sí), esto quiere decir que si el paciente presenta varios trastornos en el aparato respiratorio y en el aparato digestivo, lo conveniente será incluir en una misma lista, primero todos los problemas respiratorios y posteriormente los digestivos, para obtener información escrita uniforme y no dispersa; esto facilitará la realización de la
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lista maestra o depurada. Se debe recordar que la lista es un documento dinámico que se puede modicar en el transcurso de la obtención de información, o cuando los eventos clínicos cambian. La lista de problemas cumple una doble función: proporciona una visión de conjunto sobre todos de los problemas, y gracias a que están numerados se sabe en qué parte del expediente hay datos relacionados con lo que se está buscando.
LISTA MAESTRA O DEPURADA Una vez estructurada la lista de problemas, se elabora la lista maestra o depurada, la cual consiste en una relación numérica (caracteres romanos) que tiene por objetivo hacer más simple el listado y facilitar el ordenamiento de los datos para evitar repeticiones. Para la depuración del problema se requiere identicar aquellos de mayor trascendencia y cuáles de los de la lista completa se relacionan con éstos, que se indicarán con el número correspondiente, en seguida del principal; por ejemplo, en un paciente que al presentarse en el consultorio se sospecha de sangrado gastrointestinal, caracterizado por hematemesis (vómito con sangre), dolor abdominal, melena y anorexia. En este caso clínico, la lista de problemas y la depuración de la misma arrojaría el siguiente orden: LISTA MAESTRA O DEPURADA Lista de problemas
Lista depurada
Hematemesis
I Hematemesis Relacionada con los problemas 2, 3 y 4
Melena Dolor abdominal Anorexia
DIAGNÓSTICOS DIFERENCIALES Una vez obtenida la lista depurada, cada uno de los problemas maestros identicados tiene que clasicarse en las posibles causas (diferenciales), que a su vez estén originando el resto de los problemas; asimismo, se analizará desde un punto de vista diagnóstico y terapéutico. No se trata de inventar las posibles causas de los problemas enlistados, sino de ceñirse al sistema. Para establecer un plan diagnóstico (P. Dx) en cada problema maestro identicado, deben enlistarse,
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
en orden de mayor a menor importancia, sus diferentes causas posibles, las cuales, a su vez, pueden considerarse como diagnósticos diferenciales. Para recordar mejor las posibles causas de un problema, se utiliza la guía DAMNITV como clave: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
D: Degenerativas A: Autoinmunes o inmunomediadas M: Metabólicas N: Neoplásicas o nutricionales I: Inamatorias (infecciosas y no infecciosas) T: Traumáticas V: Vasculares
Por ejemplo, para el problema anterior, donde la hematemesis es el problema maestro, una úlcera sería una de sus posibles causas; ahora, habrá que ponerle apellido a esta causa probable, el cual se reere a las distintas posibilidades del origen de esa causa elegida, que serían péptica y gástrica; por último, resta identicar el factor que puede haber ocasionado este último problema (secundario), quedando de la siguiente forma:
LISTA DE PROBLEMAS: 1. 2. 3. 4.
Hematemesis Melena Dolor abdominal Anorexia
LISTA MAESTRA I Hematemesis (2,3,4)
DIAGNÓSTICOS DIFERENCIALES : ❏ ❏
Ulcera péptica secundaria a Helicobater pilori Ulcera gástrica secundaria a intoxicación por antiinamatorios no esteroidales (AINES).
Para cada posible causa del problema se deben seleccionar las pruebas de laboratorio especícas que ayuden a comprobarla o rechazarla. Hay que recordar que es necesario conocer las enfermedades para poder sugerir las causas e interpretar la información obtenida de los datos básicos. Este es el momento de consultar libros, revistas, artículos, etcétera. Hoy en día existen diversos sistemas computarizados que ayudan en el planteamiento de las posibles causas.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO Una vez obtenida la lista de diagnósticos diferenciales, es recomendable realizar la lista de los presuntivos, que son los diagnósticos que el médico considera de mayor importancia y que más concuerdan con los datos obtenidos en la reseña del paciente, la historia clínica y el examen físico general, y por lo tanto, son los primeros en ser conrmados o descartados por medio de las pruebas de laboratorio o de gabinete correspondientes. Para el caso anterior, el diagnóstico presuntivo sería: úlcera péptica secundaria a Helicobacter pilori.
PRUEBAS DE LABORATORIO La información que complementa el diagnóstico para conrmarlo o descartarlo se obtiene de las pruebas de laboratorio. Luego de haber realizado la historia clínica y el examen físico general, es necesario recurrir a las pruebas de laboratorio. Se recomienda solicitar una base mínima de pruebas, constituida por hemograma, bioquímica clínica, urianálisis y, dependiendo del caso (aunque hay autores que arman que son obligatorios en todo paciente), estudios coproparasitoscópicos. El objetivo de estos estudios es complementar la información obtenida para con ello establecer los posibles diagnósticos. Algo importante de mencionar es que no se marcan todas las pruebas que pueden realizarse, sino únicamente las que ya se aplicaron; esto se hace con el n de llevar un orden de las pruebas solicitadas y con base en eso poder decidir si las primeras fueron sucientes para establecer el diagnóstico o si es necesario practicar las que faltan, para llegar al objetivo nal. El paso siguiente consiste en solicitar estudios complementarios o especiales; por ejemplo, cuando se sospecha que un perro puede estar padeciendo diabetes mellitus o hiperadrenocorticismo, el diagnóstico denitivo se establece mediante la prueba de supre sión a la dexametasona; en el caso descrito anteriormente se procedería de la siguiente forma: DIAGNÓSTICOS DIFERENCIALES Hg Qs Urian Copr Biopsia Úlcera péptica secundaria a Helicobater pilori Úlcera gástrica secundaria a intoxicación por AINES
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
PLAN TERAPÉUTICO
EJEMPLO PRÁCTICO DEL MEDOP
Para establecer el plan terapéutico (P. Rx), debe evaluarse cada problema de acuerdo con la necesidad de tratamiento. El plan ideal consiste en evitar la terapia hasta conocer la causa especíca del problema, pues ésta puede producir variables, tanto en el cuadro clínico como en las pruebas de laboratorio, así como dicultar la valoración de los resultados de estas pruebas. En los pacientes que requieren un tratamiento de emergencia o en los que el diagnóstico se establece con base en la respuesta al tratamiento, el plan terapéutico es prioritario.
Después de elaborar las notas de progreso, se llenan los formatos correspondientes a cada expediente clínico, con base en el siguiente ejemplo: ❏
Datos básicos ❏
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NOTA DE PROGRESO Los problemas identicados deben reevaluarse con intervalos apropiados, los cuales pueden ir de minutos a horas o días, dependiendo de la gravedad. Para hacer el seguimiento adecuado de cada problema, se debe llegar a conclusiones y proponer los planes de diagnóstico (P. Dx) y terapéuticos (P. Rx). Es necesario hacer notas de progreso ordenadas, de manera que se facilite su análisis. A continuación se muestra el esquema correcto para ordenar, interpretar e incrementar las observaciones subjetivas y objetivas del estado clínico que guarda cada problema identicado en un paciente. Con esta información, se establecen los planes adicionales de diagnóstico o los planes terapéuticos correspondientes. El esquema de seguimiento de las notas de progreso se basa en los siguientes puntos: ❏
❏
❏
❏
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S = Datos subjetivos. Incluyen los signos clínicos,
la historia clínica y las observaciones del dueño del paciente. O = Datos objetivos. Es la lista de los resultados relevantes del examen físico y de las pruebas de laboratorio. I = Interpretación de los datos. Consiste en la valoración de los datos subjetivos y objetivos del problema. P = Plan. Se elabora para cada problema, de acuerdo con las observaciones de los puntos anteriores de este formato. El plan de diagnóstico (P. Dx) y el plan terapéutico (P. Rx) deben revisarse y actualizarse constantemente.
Reseña: perro doméstico, raza Poodle Estándar, color negro, hembra, ovariohisterectomizada, de seis años de edad. Historia: depresión, poliuria y polidipsia de más de sesenta días de evolución, vómito esporádico (por lo menos una vez cada tres días). Examen físico:
Temperatura:
39 ºC
Pulso:
normal
Frecuencia cardiaca:
120/min
Frecuencia respiratoria:
20/min
Deshidratación:
moderada (6% a 8%)
Peso:
20 kg
Mucosas:
pálidas
Tiempo de llenado capilar:
Palpación abdominal:
❏
estructura rme y redondeada en abdomen craneal, de 5 a 7 cm de diámetro
Lista de problemas 1. 2. 3. 4. 5. 6.
❏
mayor de 2 segundos
Poliuria Polidipsia Vómito Deshidratación Masa abdominal Depresión
Lista Maestra I Poliuria (2, 4) II Masa abdominal (2, 3, 4, 6)
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
Plan diagnóstico inicial (proponer posibles causas) PROBLEMA
POSIBLES CAUSAS DE DIAGNÓSTICO Insuciencia renal
Diabetes mellitus I. Poliuria y polidipsia Enfermedad hepática
Hiperadrenocorticismo
PROBLEMA
II. Masa abdominal
❏
❏
POSIBLES CAUSAS
PLANES TERAPÉUTICOS
PLANES
Hemograma Bioquímica clínica (urea, creatinina, calcio, fósforo) Urianálisis Glucosa sérica Urianálisis Bioquímica clínica Hemograma Fructosamina Investigar en caso de descartar enfermedad renal y diabetes mellitus Glucosa sérica Fosfatasa alcalina de origen esteroide Hemograma (leucograma de estrés) Densidad urinaria Prueba de supresión a la dexametasona Cortisol plasmático
PLANES DIAGNÓSTICOS
Estudio radiográco simple Neoplasia en alguna estructura del abdomen y de campos pulmonares u órgano regional, como riñones, hígado, bazo, etcétera. Ultrasonografía abdominal
Dependiendo de los resultados
Dependiendo de los resultados Dependiendo de los resultados
Dependiendo de los resultados
PLANES TERAPÉUTICOS Dependiendo de los resultados
Notas de progreso del primer día. PROBLEMA
NOTAS DE PROGRESO
I. Poliuria y polidipsia
Subjetivo: no hubo mejoría de los signos clínicos durante las pasadas 24 horas. Objetivo: el urianálisis señaló densidad urinaria de 1.014, en el hemograma se detectó leucocitosis por neutrolia, anemia normocítica normocrómica, valores de creatinina de 2.5 mg/dl y de urea de 150 mg/dl. Interpretación: los resultados anteriores sugieren que el paciente presenta insuciencia renal crónica. Plan diagnóstico: ver planes problema II. Plan terapéutico: tratamiento sintomático y de mantenimiento para insuciencia renal (líquidos y electrolitos parenterales, vitaminas, anabólicos, terapia alcalinizante y dieta especial). (Aquí deben describirse con detalle los nombres de los fármacos y las dosis.)
PROBLEMA
NOTAS DE PROGRESO
II. Masa abdominal
Subjetivo: no hubo mejoría en las pasadas 24 horas. Objetivo: en la radiografía simple del abdomen se observa un incremento del tamaño y de la silueta de ambos riñones. Las radiografías de los campos pulmonares muestran zonas de densidad incrementada (patrón intersticial nodular estructurado) sugerentes de neoplasia. Interpretación: los hallazgos radiográcos sugieren presencia de una neoplasia renal primaria con posible metástasis pulmonar. Plan diagnóstico: ultrasonido, urografía excretora y biopsia renal. Plan terapéutico: esperar resultados de los estudios especiales.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Notas de progreso del segundo día PROBLEMA
NOTAS DE PROGRESO
I. Poliuria y polidipsia
Subjetivo: No hay mejoría clínica y la paciente está muy deprimida. Objetivo: Mejor estado de hidratación; sin embargo, la paciente continúa orinando y bebiendo agua en gran cantidad. La urografía excretora revela una excreción anormal del medio de contraste y una deformación de la pelvicilla renal. El tracto urinario bajo se observa normal. Interpretación: La masa abdominal involucra al riñón izquierdo, aunque el derecho también se observa aumentado de tamaño. Es muy probable que la masa sea una neoplasia. Es poco probable la hidronefrosis, ya que no hay obstrucción en el ujo de la orina. Plan diagnóstico: Biopsia renal para determinar el tipo de neoplasia. Plan terapéutico: Continuar con el tratamiento de mantenimiento.
PROBLEMA
NOTAS DE PROGRESO
II. Masa abdominal
Las notas de progreso son las mismas que las del problema.
CONSIDERACIONES GENERALES ❏
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La polidipsia se presenta como mecanismo compensatorio a la poliuria causada por la insuciencia renal, por esta razón fueron agrupadas en la lista depurada como un solo problema. El vómito se presenta como respuesta a la insuciencia renal y está relacionado con ese problema. La deshidratación se presenta como respuesta a la poliuria y a la incapacidad del organismo para compensarla mediante la polidipsia y también debida al vómito. La depresión es causada por la insuciencia renal y el síndrome urémico.
Nota: no se proporcionan más notas de progreso porque el dueño decidió que la paciente fuera eutanasiada.
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RECOMENDACIONES Debe tenerse mucha paciencia con el propietario, escuchar con atención lo que relata, guardarle respeto y tratar de captar su atención y entendimiento. Es preferible no utilizar terminología médica complicada, sino términos comunes y sencillos y expresar las ideas con claridad hasta tener la seguridad de que ha entendido. Nunca hay que decir mentiras, inventar enfermedades ni pretender impresionar a los propietarios. Una vez que se establecen diagnósticos para cada problema, es conveniente colocar al frente del expediente un formato denominado resumen de la historia clínica, el cual proporciona información médica rápida y concisa del paciente. Este documento debe permanecer siempre al frente del expediente, a manera de índice.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
> Literatura consultada
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Aguilar BJ. Diplomado a distancia en medicina, cirugía y zootecnia en perros y gatos. Métodos y técnicas de diagnóstico. Módulo I. México (D.F.): UNAM, 2005.
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Álvez de ML. Compendio de didáctica general. 2ª ed. Buenos Aires: Kapeluz, 1974.
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Birchard, Sherding. Manual clínico de procedimientos en pequeñas especies. 2ª ed. Madrid: McGraw HillInteramericana, 2002.
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Duna J. Textbook of small animal medicine. Londres: Saunders, 1999.
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Jiménez YA. Diplomado a distancia en traumatología y ortopedia en perros y gatos. Examen clínico ortopédico. Módulo I. México (D.F.): JAISER editores, 2004.
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Leib SM, Monroe EW. Practical small animal internal medicine. EUA: Saunders, 1997.
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Lifshitz A. Educación médica, enseñanza y aprendizaje de la clínica. México: Auroch, 1997.
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Morgan. Clínica de pequeños animales. 3ª ed. Madrid: Harcourt-Brace, 1999.
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Willard, T. Small animal clinical diagnosis by laboratory methods. 4 a ed. St Louis Missouri: Saunders, 2004.
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Metodología diagnóstica en dermatología de perros y gatos Luis Ramón Nolasco Espinosa
INTRODUCCIÓN E clínica diaria, los problemas dermatológicos representan de 40 a 60 por ciento de los motivos de la consulta. A pesar de la casuística elevada, el diagnóstico de las diferentes dermatopatías en las pequeñas especies resulta todo un reto para el médico veterinario. El éxito en el manejo de estos pacientes radica en contar con un protocolo diagnóstico eciente, el cual permita descubrir la enfermedad que los está afectando, así como las compli caciones asociadas a ésta. En el presente capítulo se describe la metodología diagnóstica para los trastornos dermatológicos de los perros y los gatos. Este protocolo incluye la historia clínica, el examen físico general, el examen dermatológico y las pruebas complementarias de primera y segunda intención, entre las cuales se pondrá especial atención a las primeras, que se realizan en la clínica, su costo es bajo, son relativamente fáciles de interpretar y si se emplean en forma rutinaria el médico será capaz de identicar tanto las enfermedades primarias como las complicaciones relacionadas con éstas.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 1
APROXIMACIÓN DIAGNÓSTICA La aproximación diagnóstica debe iniciarse con la historia clínica, el examen físico general y el examen dermatológico. En algunos casos, con estos datos se podrá emitir un diagnóstico denitivo e implantar una terapia, o bien, establecer un diagnóstico presuntivo y seleccionar las pruebas complementarias que ayudarán a conrmar o descartar la enfermedad que se sospecha. La elección de las pruebas complementarias se lleva a cabo de acuerdo con la jerarquía de los diagnósticos presuntivos, la facilidad de su ejecución y el tiempo en que se obtienen los resultados. Éstas se clasican en pruebas de primera y de segunda intención. Las pruebas de primera intención son de lectura rápida y pueden ser aplicadas fácilmente por el clínico; entre ellas se encuentran el raspado cutáneo, las impresiones con cinta adhesiva transparente, el cepillado, la evaluación con lámpara de Wood, la tricografía y la citología. Cuando el diagnóstico denitivo no puede establecerse por medio de las pruebas complementarias de primera intención, se aplican las pruebas de segunda intención, las cuales son de ejecución más complicada y de lectura tardía. Entre éstas se cuentan las pruebas en sangre (perles hematológicos, bioquímicos, serológicos y endocrinos), los cultivos bacteriológicos y micológicos, las pruebas intradérmicas, la instauración de dietas hipoalergénicas, las biopsias de piel y las técnicas de diagnóstico por imagen (radiografía, ecografía, tomografía axial computarizada, resonancia magnética).
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
Las lesiones secundarias están asociadas al autotraumatismo y los tratamientos utilizados para resolver este problema. Algunas lesiones pueden ser tanto primarias como secundarias; en estos casos el clínico tendrá que establecer si éstas son resultado directo de la enfermedad o si se han desarrollado como consecuencia del autotraumatismo.
LESIONES PRIMARIAS ❏
Eritema: enrojecimiento congestivo de la piel, difuso o localizado, que reeja la vasodilatación de los vasos de la dermis supercial y desaparece bajo la presión digital o la vitropresión.
F 1. Eritema ❏
Mácula: cambio de coloración de la piel circunscrito, de no más de 1 cm de diámetro, y no elevado; puede ser eritematosa, hiperpigmentada o hipopigmentada.
EXAMEN DERMATOLÓGICO El examen dermatológico se debe efectuar una vez que se ha realizado la historia clínica y el examen físico general; comprende la detección de lesiones y el patrón de distribución.
LESIONES CUTÁNEAS Las lesiones no son especícas de alguna dermato patía en particular; se han clasicado en primarias y secundarias. Las lesiones primarias aparecen como consecuencia directa de algún padecimiento. F 2. Mácula
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Parche: igual que la mácula pero mayor de 1 cm de diámetro. Pápula: elevación sólida de la piel, no mayor de 1 cm de diámetro, puede ser de un color rosa o rojo e involucrar o no a los folículos pilosos.
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Nódulo: elevación sólida y circunscrita de la piel, mayor de 1 cm de diámetro, que se extiende hacia la dermis o hipodermis.
F 5. Nódulo F 3. Pápula ❏
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Tumor: elevación sólida que involucra cualquier estructura de la piel o tejido subcutáneo.
Placa: elevación sólida de la piel, mayor de 1 cm de diámetro, se produce por la coalición de pápulas. Pústula: elevación pequeña y circunscrita de la piel, con contenido purulento.
F 4. Pústula ❏
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Vesícula: elevación circunscrita de la piel, de no más de 1 cm de diámetro; a diferencia de la pústula, contiene líquido claro. Bulla: igual que la vesícula pero mayor de 1 cm de diámetro. Roncha: elevación sólida de la piel, que por lo general desaparece en minutos u horas.
F 6. Tumor
LESIONES SECUNDARIAS ❏
Liquenicación: engrosamiento y endurecimiento
de la piel. Clínicamente se aprecian suras cutáneas con apariencia de piel de elefante. Las zonas liquenicadas pueden tener una coloración normal, pero por lo general están hiperpigmentadas.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
LESIONES QUE PUEDEN SER PRIMARIAS O SECUNDARIAS ❏
Alopecia: pérdida de pelo.
F 7. Liquenificación ❏
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Callo: engrosamiento de la piel, comúnmente liquenicado y alopécico. Por lo general se observa en las prominencias óseas. Collarete epidérmico: zona de descamación periférica con eritema o hiperpigmentación central, se forma por la ruptura de una pústula, vesícula o bulla.
F 9. Alopecia ❏
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Descamación: acumulación excesiva de células exfoliadas del estrato córneo. Clínicamente se aprecia como caspa o escamas blanquecinas. Hiperqueratosis: aumento en la producción del estrato córneo. Úlcera: pérdida de continuidad de la piel que se extiende a la dermis; los bordes son bróticos o necróticos.
F 8. Collarete epidérmico ❏
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Fisura: pérdida de la continuidad de la piel, en forma lineal. Se puede extender hasta las capas profundas de la dermis o hipodermis. Excoriación: pérdida de continuidad de la piel, que involucra únicamente al estrato córneo. Erosión: pérdida de continuidad de la piel, que involucra a todas las capas de la epidermis pero no afecta la membrana basal, por lo que se repara sin dejar cicatriz. Cicatriz: reemplazo de tejido normal por tejido broso. Las áreas de cicatriz se encuentran alopécicas, atrócas y despigmentadas.
F 10. Úlcera
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Costra: acumulación, sobre la supercie cutánea, de exudado, pus, sangre, células, escamas o medicamentos. Cilindro folicular: acumulación de queratina y material folicular en el pelo. Comedón: dilatación del folículo piloso por células cornicadas o material sebáceo. Se aprecia como un punto oscuro en la piel, y al presionarlo emerge contenido sebáceo y, en ocasiones, pelo. Melanoderma, hiperpigmentación o hipermelano sis: exceso de pigmento en la piel. Melanotriquia: exceso de pigmento en el pelo. Leucoderma, hipopigmentación o hipomelanosis: disminución del pigmento en la piel. Leucotriquia o acromotriquia: disminución del pigmento en el pelo.
RASPADO CUTÁNEO El raspado cutáneo se realiza con la nalidad de detectar la presencia de ácaros. El material necesario para llevarlo a cabo es: una hoja de bisturí, aceite mineral, portaobjetos, cubreobjetos y microscopio. Existen dos formas de hacer el raspado: super cial y profunda.
PATRÓN DE DISTRIBUCIÓN Después de identicar las lesiones, es necesario ver cómo se distribuyen en la supercie cutánea. El patrón de distribución establece la localización de las lesiones, la extensión y la simetría que guardan entre ellas. Al igual que las lesiones cutáneas, los patrones de distribución no son especícos de alguna enfermedad en particular, pero ayudan al médico a establecer sus diagnósticos diferenciales. En cuanto a la simetría, los patrones de distribución se han clasicado en simétrico bilateral y asimétrico. Las dermatopatías asociadas a alteraciones hormonales pueden presentar una distribución simétrica bilateral, por ejemplo, el hipotiroidismo y el hiperadrenocorticismo, que producen alopecia simétrica bilateral del tronco; los desequilibrios ováricos de la región caudomedial de los muslos, y en machos, el hiperestrogenismo de la región ventral de tórax, abdomen y cuello. Existen también otros problemas que pueden presentar un patrón simétrico bilateral, como los procesos alérgicos, las alteraciones autoinmunes y las alopecias congénitas, entre otros. Por otro lado, las sarnas, las dermatotosis y las neoplasias, por lo general presentan un patrón de distribución asimétrico.
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F 11. Raspado cutáneo
RASPADO SUPERFICIAL El raspado supercial se debe realizar en todos los perros y gatos que presenten prurito, con el n de detectar Sarcoptes, Notoedres y Otodectes. El raspado no debe incluir pelo en exceso, ya que éste sólo dicultará la búsqueda del parásito; por lo tanto, es necesario rasurar el área que se vaya a raspar, utilizando un peine del número 40. Antes de realizar el raspado se aplica un poco de aceite mineral, tanto en el área correspondiente, como en el portaobjetos; el material obtenido en el raspado se pone sobre el portaobjetos, encima del cual se coloca después el cubreobjetos.
RASPADO PROFUNDO El raspado profundo se realizará en todos los pacientes que presenten alopecia, descamación, seborrea oleosa, pioderma y pododermatitis. Esta técnica se utiliza para detectar la presencia de Demodex. La preparación de la zona es similar a la descrita en el raspado supercial, pero se recomienda presionar la piel con el dedo índice y pulgar mientras se realiza el raspado. Para conrmar que el raspado fue lo sucientemente profundo, el área debe sangrar ligeramente.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
IMPRESIONES CON CINTA ADHESIVA TRANSPARENTE Las impresiones con cinta adhesiva transparente se realizarán en los pacientes con descamación en el dorso y en aquellos con costras y escamas en la cabeza, cara y orejas. La nalidad de esta técnica es detectar Cheyletiella, Otodectes y piojos. La cinta adhesiva se pega varias veces sobre la piel del paciente con el n de obtener escamas y detritos. Una vez que se ha colectado la muestra, la cinta se pega en un portaobjetos y se observa al microscopio.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
Este metabolito sólo se encuentra cuando los hongos están creciendo en el pelo, por lo que las escamas, costras, uñas y los dermatotos presentes en los medios de cultivo no uorescen. Se coloca al paciente en un cuarto oscuro y el pelo de las zonas afectadas se examina con la lámpara. Algunos hongos tardan más en uorescer, por lo que es conveniente mantener la exposición a la luz ultravioleta durante 3 o 5 minutos. Con este método sólo es posible identicar a la mitad de los pacientes que padecen Microsporum canis. Otras especies de dermatotos no uorescen. Asimismo, el paciente puede presentar uorescencia no relacionada con los hongos, si padece de seborrea o se le han aplicado algunos tratamientos tópicos; no obstante, en estos casos la uorescencia es de color azul o violeta.
F 12. Impresión con cinta adhesiva
CEPILLADO Con la técnica del cepillado se demuestra la presencia de Cheyletiella, piojos y pulgas. Se coloca al paciente sobre una hoja de papel y se le cepilla enérgicamente a contrapelo. Las escamas y detritos obtenidos se depositan en un portaobjetos con aceite mineral, se pone el cubre objetos y se observa al microscopio.
LÁMPARA DE WOOD (LUZ ULTRAVIOLETA, LUZ NEGRA) El examen del pelo con la lámpara de Wood se recomienda en todos los pacientes con alopecia, descamación y costras con o sin prurito. La lámpara de Wood tiene como objetivo detectar la presencia de dermatotos. La técnica se basa en que algunos dermatotos producen triptófano, el cual uoresce de un color verde manzana al estar en contacto con la luz ultravioleta.
F 13. Lámpara de Wood
TRICOGRAFÍA La evaluación microscópica del pelo se debe realizar en todos los pacientes con alopecia o alteraciones en el crecimiento del pelo. La tricografía es útil para el diagnóstico de alopecia autoinigida, alopecia de origen endocrino, alopecia congénita, alopecia posrasurado, alteraciones nutricionales, displasias foliculares, tricorrexis nodosa, tricoptilosis, tricomalacia, pili torti y deujo anagénico o telogénico. Con las puntas de los dedos se depilan de 10 a 20 pelos, siguiendo la dirección que tienen en la piel, con el n de evitar artefactos por traumatismo. En un portaobjetos se pone aceite mineral, se colocan los pelos en una misma orientación, para facilitar su observación, y se jan con un cubreobjetos.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
La evaluación del pelo debe incluir la integridad, la fase del ciclo de crecimiento en la que se encuentra y la pigmentación. El cuerpo del pelo normal tiene un diámetro uniforme y termina en punta. En todos los pelos se deben apreciar la cutícula, la corteza y la médula. Los pelos que se encuentran enrollados y malformados sugieren desórdenes nutricionales, enfermedades metabólicas o enfermedades congénitas o hereditarias. Los pelos con cortezas normales, pero fracturados en forma transversal o longitudinal, son indicativos de traumatismo externo, como el rascado continuo o el cepillado vigoroso. Los pelos fracturados con cortezas anormales se pueden encontrar en las displasias foliculares, la tricorrexis nodosa, tricomalacia, alopecia areata y deujo anagénico. Por otro lado, es importante determinar si el pelo se encuentra en anágeno, catágeno o telógeno. Los bulbos de los pelos en la fase anagénica se observan redondeados o en forma de gancho, con una supercie lisa; en la fase telogénica, como una punta de echa con supercie rugosa. Rara vez se encuentran pelos en la catagénica; sus bulbos tienen una apariencia intermedia entre el anágeno y el telógeno. En los animales adultos normales, de 80 a 90% de los pelos están en la fase telogénica y de 10 a 20%, en la anagénica. Cuando únicamente se observan los primeros y hay ausencia de los segundos, se sospecha de problemas endocrinos, de ujo telogénico, arresto folicular y deciencias nutricionales. La pigmentación del pelo depende de la raza del animal, sin embargo, no debe variar en las áreas donde el pelo es del mismo color. En las displasias foliculares se aprecian cúmulos de melanina y pérdida de la integridad del pelo.
La muestra para la citología se puede obtener por impronta, hisopo, raspado, cinta adhesiva transparente o punción con aguja delgada. Se recurre a las improntas cuando existen lesiones húmedas u oleosas; el portaobjetos se presiona directamente sobre éstas. Los hisopos se emplean en tractos stulosos, abscesos, otitis y pododermatitis; se desplazan rodándolos suavemente sobre el portaobjetos. Los raspados se pueden llevar a cabo cuando existen excoriaciones y úlceras. La muestra se obtiene raspando la supercie con una navaja de bisturí y se aplica de manera uniforme sobre un portaobjetos. Las impresiones con cinta adhesiva transparente son convenientes en casos de seborrea oleosa y pododermatitis; la cinta se pega y se despega varias veces en el área que se va a muestrear. La punción con aguja delgada se recomienda para obtener muestras de nódulos, tumores, pústulas, vesículas y bullas. Los nódulos y tumores se aspirarán con agujas de calibre 18 o 20 G y jeringas de 10 o 20 mL; las pústulas y vesículas, con agujas de calibre 26 o 27 G y jeringas de insulina; las bullas, con una aguja de calibre 20 o 22 G y una jeringa de 3 mL. Una vez obtenida la muestra, se realiza el frotis sobre un portaobjetos.
CITOLOGÍA Los estudios citológicos se deben realizar en todos los pacientes que presenten pústulas, tractos stulosos, abscesos, vesículas, bullas, úlceras, nódulos, tumores, seborrea oleosa, pododermatitis y otitis. La citología es una herramienta diagnóstica de gran importancia para la identicación de neoplasias, enfermedades autoinmunes e infecciones por bacterias, Malassezia y hongos.
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F 14. Punción con aguja delgada.
Las muestras se tienen que jar al aire antes de teñirlas; las oleosas obtenidas por impronta o hisopos se jan con calor, para lo cual se pasa un encendedor varias veces por debajo del portaobjetos, evitando la ebullición de la muestra. Las impresiones de lesiones oleosas en cinta adhesiva transparente no deben calentarse.
PARTE 1 - CAPÍTULO 1
Existen varias tinciones; sin embargo, la más utilizada en la práctica diaria es el Di-Quik. Una vez teñi da, la muestra se coloca en un cubreobjetos y se revisa al microscopio.
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Metodología diagnóstica en perros y gatos
Las impresiones en cinta adhesiva transparente se tiñen, se enjuagan y se secan, posteriormente se pegan en un portaobjetos y se observan al microscopio.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
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Guaguére E, Prélaud P. Guía práctica de dermatología felina. Zaragoza, (España): Merial, 2000.
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Locke PH, Harvey RG, Mason IS. Manual de dermatología en pequeños animales. Madrid: Harcourt, 1999.
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Nesbit GH, Ackerman LJ. Canine and feline dermatology: Diagnosis and treatment. Trenton, New Jersey: Veterinary Learning System, 1998.
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Scott DW, Miller WH, Grin GE. Small animal dermatology. 6a ed. Filadela: WB Saunders, 2001.
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Willemse T. Dermatología clínica de perros y gatos: Guías de diagnóstico y terapéutica. Barcelona: Masson Salvat, 1992.
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
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Metodología diagnóstica en bovinos José Pedro Cano Celada
INTRODUCCIÓN E la intención de informar a los estudiantes sobre la metodología diagnóstica en los bovinos; se describen las técnicas y métodos que deben llevarse a cabo para examinar esta especie. Metodología diagnóstica es la integración y sistematización del procedimiento clínico para elaborar una historia clínica completa, objetiva y ordenada, mediante el interrogatorio, la exploración física y procedimientos instrumentales o pruebas de laboratorio clínico, con el n de conocer los agentes etiológicos involucrados y la susceptibilidad o resistencia a los medicamentos; con todo lo anterior se elaborará una terapéutica para curar a los animales, en conjunto con un buen manejo, excelentes instalaciones, bioseguridad y alimentación adecuada, así como la aplicación de la medicina preventiva mediante el establecimiento de calendarios de vacunación y desparasitación, con lo cual se logrará el bienestar animal y el control de las enfermedades para, erradicarlas después de varios años, y de esta manera producir animales sanos y alimentos inocuos para el consumo del ser humano.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 2
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Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
MANEJO DE LOS BOVINOS
PROPEDÉUTICA
El médico veterinario debe utilizar ropa apropiada, como overol limpio, botas de hule, delantal de plástico para poder lavarlo y desinfectarlo fácilmente; guantes de cirujano desechables; además, es indispensable un estetoscopio, un termómetro y un plexímetro. A los bovinos se les debe manejar de forma tranquila, rme y conada, sin causarles estrés ni dolor, ya que su peso o su enojo y agresividad, en caso de lastimarlos, pueden ser factores muy peligrosos para el ser humano, pues un accidente puede causarle lesiones graves o incluso la muerte; por esto, al manejar esta especie es necesario tener sumo cuidado y mucha experiencia. Hay que hacer todo lo posible para no lesionar al animal, porque los procedimientos inadecuados en el manejo ponen en peligro su salud y dicultan la maniobra en futuras revisiones. Cuando se examina a los bovinos se debe considerar la forma de acercarse a ellos, capturarlos, sujetarlos, derribarlos e inmovilizarlos, lo cual requiere el conocimiento de métodos y técnicas seguras para el animal y para el médico. La sujeción consiste en jar al animal por alguno de sus miembros o la cabeza, para facilitar cualquier intervención del operador sin peligro para él o para el animal. En caso de que sea necesario derribar al animal, el personal debe estar capacitado para ello y emplear métodos seguros, así como el equipo apropiado y, realizarlo en un área libre de obstáculos, sobre arena, paja o colchones. Equipo para el manejo de los bovinos
La propedéutica bovina es la rama de la medicina que estudia las técnicas y los procedimientos médicos, quirúrgicos, físicos, químicos y biológicos necesarios para explorar a los bovinos.
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Cuerdas para sujetar a los animales, en las que puedan hacerse los nudos necesarios. Narigón para sujetarlos de la mucosa nasal. Bozal fabricado con una cuerda, para sujetar la cabeza y el hocico. ❏ Mangas para dirigirlos a las prensas ❏ Prensas para contenerlos cuando se requiera.
Los métodos químicos de contención consisten en el uso de tranquilizantes; los bovinos son particularmente susceptibles a la xilazina, la cual se debe de aplicar en una dosis de 0.2 a 0.8 mg/kg p/v, por vía intramuscular o intravenosa. Para llegar a un diagnóstico rápido y certero se requiere conocer la metodología para aplicar las técnicas y los procedimientos propios de la propedéutica y la clínica en bovinos.
CLÍNICA BOVINA La clínica bovina es la rama de la medicina que se encarga del estudio de las enfermedades del bovino, apoyándose en pruebas de laboratorio para conrmar los diagnósticos, y de seleccionar entre los métodos y técnicas medicoquirúrgicas un tratamiento para la terapia. En la clínica se recurre a la medicina preventiva para elaborar programas de vacunación y desparasitación, con el n de controlar y erradicar las enfermedades de los bovinos.
EXPEDIENTE Para la atención de un paciente es necesario formar un expediente clínico, que es el acopio de la información del animal contenida en la historia clínica, la reseña, las pruebas de laboratorio, las radiografías, y otros estudios. Puede usarse un fólder, el cual se identica con un número de expediente, por ejemplo: (1-8-5-99), donde el primer dígito es el número progresivo de pacientes por año, seguido del día, mes y año. Se anota la especie (bovino), la raza (holstein f.), la identicación del animal (arete 846), etcétera. Se inicia con el día de nacimiento o ingreso del animal, y se cierra con la salida, el recibo de venta o el protocolo de necropsia. Una vez que se cuenta con el expediente, se pasa a la elaboración de la historia clínica.
HISTORIA CLÍNICA La historia clínica es una aplicación del método cientíco con nes médicos; consiste en un documento con información sobre hechos pasados y presentes, objetivos y subjetivos, para evaluar el estado de salud o enfermedad de un individuo y proponer medidas de prevención y curación; debe de contener la reseña, la anamnesis, las constantes siológicas, el examen físico, el diagnóstico, tratamientos, cirugías, medidas preventivas y examen general por aparatos y sistemas. A partir de la historia clínica se elaboran una o varias hipótesis acerca
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
de las alteraciones de las funciones corporales normales, para llegar al diagnóstico presuntivo, es decir, lo que el médico presume que tiene el paciente, a partir de un diagnóstico diferencial sobre las enfermedades o síndromes que pueden parecerse, y conrmar la en fermedad que presenta el animal, para lo cual se vale de los resultados de las pruebas de laboratorio serológicas, de cultivos, la histopatología, radiografías, etcétera, que le van a permitir conocer el agente etiológico y establecer la terapia, y los métodos de prevención, control y erradicación de la enfermedad.
DIAGNÓSTICO Es la parte de la medicina que tiene por objeto la identicación de una enfermedad, fundándose en los signos que maniesta el enfermo. ❏
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Diagnóstico diferencial: es la determinación de la enfermedad que sufre un paciente después del estudio comparativo de los signos y lesiones de las diferentes dolencias que presenta. Diagnóstico presuntivo: es el diagnóstico que se realiza tomando en cuenta el cuadro clínico del animal, basado en los signos que maniesta, es decir, lo que el médico presume que tiene el paciente. Diagnóstico conrmativo de laboratorio: es el diagnóstico que elabora el médico, después de obtener los resultados de las pruebas de laboratorio, donde se identica el agente etiológico de la enfermedad.
RESEÑA Es la recopilación de los datos de identicación del enfermo. Existen varios tipos de reseña: ❏
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Reseña simple: que debe llevar el número de expediente, la especie, raza, sexo, edad, nombre o número del animal en el arete, hierro o muesca; alzada, color, señas particulares, trabajo que desempeña, fecha y lugar de la reseña; nombre del propietario, dirección y teléfono, entre otros datos. Si se trata de una enfermedad grave o una zoonosis como la rabia, se deben tomar medidas urgentes. Reseña completa: cuando incluye los datos de los ascendientes. Reseña media: cuando se mencionan las enfermedades y cirugías.
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Reseña complicada: cuando por el temperamento del animal o su función zootécnica, no es posible utilizar las técnicas y procedimientos normales, como en el caso de los toros de lidia, cuya agresividad puede ser peligrosa para el médico, por lo que se requieren procedimientos especiales
Todos los documentos del expediente por lo general llevan una reseña simple.
ANAMNESIS La anamnesis es la serie de preguntas que se le hacen al dueño o encargado del animal, sobre el conjunto de los antecedentes de los factores patológicos del enfermo. Esta herramienta debe incluir información sobre las condiciones del individuo y del ambiente, los antecedentes de enfermedad y hereditarios, además de los signos subjetivos del estado actual del animal. Para obtener datos dedignos habrá que eliminar los datos erróneos que proporcione el propietario por mala observación u otras causas, así como invitar a éste y animarlo a que reera lo que haya percibido en el animal y de esto sólo tomar en cuenta lo útil; las preguntas deben adecuarse a la especie de que se trate, la capacidad de la persona a la que se interroga y su nivel educativo, evitando el uso de términos médicos o poco comunes y un planteamiento confuso o excesivamente largo para esa persona; es conveniente formularlas de manera cordial, para establecer conanza, y dirigir el interrogatorio siguiendo un orden determinado y, de acuerdo con la semiología de las enfermedades, tratar de localizar el sitio anatómico, órgano, aparato o sistema afectado.
ANAMNESIS O INTERROGATORIO Registrar la especie, raza, n zootécnico del sistema de producción o del animal —carne, leche, doble propósito—, ubicación de la zona a la que pertenece, para tomar en cuenta las enfermedades más comunes en ese ecosistema: desértico, semidesértico, templado, trópico húmedo, trópico seco, montañoso; la estación del año; el microclima; las áreas del rancho o el corral ocupadas por el o los animales enfermos; dieta y horarios de alimentación; inventario de animales; manejo rutinario como ordeño, pesaje, pastoreo; instalaciones
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
y equipo de recría, gestación, ordeño, mangas, peso, secado, prensas, corrales comunales. En el interrogatorio deben investigarse los siguientes puntos: ¿Cuando comenzó el problema? —la respuesta a esta pregunta nos permite establecer si estamos ante un proceso agudo, subagudo o crónico—; las causas aparentes del problema; los signos de enfermedad; calendarios de vacunación y desparasitación; evolución, progresión, temporalidad y severidad de la afección; tratamientos u otras medidas aplicadas; si hay otros animales con el mismo problema; si se presentó en vacas, toros o becerros; si se han introducido animales nuevos en el hato; cuánto come, bebe, elimina por micción y evacuación; presencia de sangre, consistencia, color, olor, etc. de las heces. Salivación excesiva (sialorrea); rumia; disminución de la producción láctea o de la ganancia de peso; qué enfermedades se han registrado en el hato; si se vio afectado sólo este corral u otros también; corroborar los factores ambientales que pudieran haber inuido; fechas de parto y gestación; número de partos, abortos, lactancias, calores. Condición corporal; historia de salud anterior, descripción cronológica de la enfermedad, debilidad, fechas de la postración y la anorexia, grados de incapacidad, revisiones en estática y dinámica, presencia de secreciones por nariz, boca, vagina y ojos, y tipo: mucoso, purulento, etcétera. Estornudo, tos, problemas en el desplazamiento, problemas nerviosos, ceguera, sordera, dolor, severidad del padecimiento al caminar, correr, mantenerse en pie, echarse. Vómito, regurgitación, prurito, convulsiones, enfermedades anteriores, operaciones quirúrgicas anteriores, cojera, última fecha de parto, traumatismos, hemorragias, alergias, cambios en el manejo, apatía, respiración forzada, agresividad, miedo; fobias: como fotofobias e hidrofobias; depresión, nerviosismo, estrés de cualquier tipo: físico, siológico, psicológico, ambiental, etcétera; caquexia, emaciación; si existen animales de otras especies dentro del rancho o en explotaciones cercanas. Exámenes de laboratorio anteriores y sus resultados, tratamientos que se han aplicado, entre otros. De todo esto, se debe realizar el interrogatorio tomando en cuenta el sistema o aparato afectado.
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Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
re identicar el aparato o sistema afectado, es necesario realizar una exploración ordenada, empezando por el examen físico general, donde se evaluarán las constantes siológicas, seguido de la inspección, palpación, percusión y auscultación. La exploración es la determinación, por medios físicos y químicos, del estado actual del paciente; detecta las alteraciones objetivas presentes.
EXAMEN FÍSICO Para iniciar el examen físico se evalúan las constantes siológicas, antes de que se vean alteradas por el estrés del animal. En un animal sano, es importante mantener la homeostasis del organismo, en otras palabras, conservar el equilibrio y la estabilidad orgánica, así como las constantes siológicas normales. T
En el adulto Mínima
Media
Máxima
37.7 °C
38.5 °C
39.0 °C
En una becerra joven Mínima
Media
38.5 °C
39.0 °C
38.5 °C
39.0 °C
Máxima
39.2 °C en el altiplano 39.5 °C en clima tropical y desértico
F
En el adulto por minuto Mínima
Media
Máxima
40
60
80
En una becerra joven por minuto Mínima
Media
Máxima
40
60
80
F
En el adulto por minuto Mínima
Media
Máxima
10
23
30
En una becerra joven por minuto Mínima
Media
Máxima
15
30
40
M
2 a 3 mr/ 2 minutos.
EXAMEN CLÍNICO GENERAL El examen clínico general del paciente será una guía para un diagnóstico del padecimiento. Cuando se quie-
Cualquier anormalidad en las constantes siológicas normales se debe tomar en cuenta, ya que puede ser un indicio de enfermedad.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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FRECUENCIA RESPIRATORIA
FRECUENCIA CARDIACA
La zona de auscultación pulmonar se delimita trazando una línea que parte del borde superior posterior caudal de la escápula, por debajo de los procesos transversos de las vértebras torácicas y lumbares, hasta el penúltimo espacio intercostal, donde se encuentra la inserción superior del músculo diafragmático que separa la cavidad torácica de la abdominal; esta línea se continúa bajando hasta el codo y de aquí se sube uniéndola con el inicio de la línea superior de la escápula para formar un triángulo. Dentro de este triángulo delimitado se auscultan, con la ayuda del estetoscopio, siete lóbulos pulmonares: del lado derecho, de craneal a caudal, los lóbulos apical, accesorios, cardiaco y diafragmático; del lado izquierdo, los lóbulos apical, cardiaco y diafragmático. Si aumenta la frecuencia respiratoria se denomina polipnea y si disminuye, bradipnea. Los ruidos intrapulmonares normales son la inspiración y la espiración, los anormales son los estertores húmedos, secos y mixtos. Los estertores húmedos son sonidos que se escuchan en los bronquios como un gorgorismo silbante, causado por la entrada y salida de aire a través del moco viscoso y nos indican un proceso infeccioso que se inicia, por ejemplo, una neumonía aguda. Los estertores secos son indicativos de neumonía crónica; se escuchan como zumbidos al ingresar aire con fuerza en los bronquios inamados y constreñidos; en la inspiración y espiración se asemejan al ruido que se produce al serruchar una madera. Existen otros ruidos como el murmullo vesicular, el cual se percibe como un remolino que forma el aire al pasar de los bronquios a los alveolos. Los roces pleurales son sonidos que se originan por la inamación de la pleura, los cuales se parecen al que se produce cuando se frota fuertemente un papel. El estornudo y la tos son mecanismos de defensa. El estornudo es una espiración violenta espasmódica y sonora a través de las fosas nasales y la boca, con arrastre de moco; este mecanismo sirve para desalojar los senos nasales, otras causas que lo desencadenan son: sinusitis, infección e irritación de la mucosa nasal, provocadas por toxinas y otros agentes. La tos es una expulsión súbita, ruidosa, repetida y violenta del aire con moco de los pulmones, para tratar de expulsar esta secreción de dichos órganos.
La zona de auscultación cardiaca se delimita trazando un ángulo de 90 grados a la altura del codo del lado izquierdo, que abarca del tercero al sexto espacio intercostal, ya que el primero y segundo están cubiertos por la escápula; en el sexto espacio intercostal se hallan el golpe de punta del corazón, la inserción inferior del músculo diafragmático y el fondo del saco ciego del retículo. Del lado izquierdo ❏
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Del tercero al cuarto espacio intercostal se ausculta la válvula pulmonar Del cuarto al quinto espacio intercostal se ausculta la válvula aórtica Del quinto al sexto espacio intercostal se ausculta la válvula mitral. Del lado derecho
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Del cuarto al quinto espacio intercostal se ausculta la válvula tricúspide.
Si aumenta la frecuencia cardiaca se denomina taquicardia y si disminuye, bradicardia.
PULSO El pulso es una onda de expansión, elevación y descenso de las paredes arteriales, producido por el latido cardiaco; se examina por palpación, aplicando la yema de los dedos sobre las arterias. En los bovinos se toma el pulso en la arteria mandibular externa, que se localiza en la cara interna del borde inferior de la mandíbula, o bien, en la arteria coccígea media, que se puede palpar por debajo de la región caudal introduciendo la yema de los dedos en el canal inferior de las vértebras coccígeas, aplicando una moderada presión por donde pasa la arteria.
MOVIMIENTOS RUMINALES La actividad del aparato digestivo se evalúa parcialmente por medio de la detección de los movimientos ruminales. La palpación directa se realiza con el puño de la mano, presionando rmemente sobre el hueco del ijar izquierdo durante 2 minutos; se producirá una elevación del anco. De manera indirecta se ausculta con el estetoscopio, colocando la cápsula de Bowman rmemente sobre el hueco del ijar izquierdo, durante 2 minutos; a la vez se producirá elevación del anco y
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
se escuchará por el estetoscopio una caída de agua en forma de catarata con gorgorismos y silbidos timpánicos; se evalúa su intensidad, ritmo y duración. Cualquier aumento en la cantidad de movimientos ruminales se denomina hipermotilidad ruminal, y la disminución, atonía.
TEMPERATURA La exploración de la temperatura interna del paciente, o termometría clínica, es relevante porque determina si el animal está sano, empieza con la enfermedad o está enfermo; por lo general, en los bovinos se practica la termometría rectal para medir la temperatura siológica y así saber si es normal o si hay hipertermia, o ebre, o hipotermia. La valoración se realiza con un termómetro clínico. La técnica para tomar la temperatura rectal empieza con la conrmación de que la columna de mercurio del termómetro se encuentra en la parte baja, la más cercana al bulbo, antes de la escala; si no es así, se sacude el termómetro por medio de movimientos de la muñeca, hasta lograr que baje el mercurio. Para introducir el termómetro en el recto, primero se debe abatir el reejo anal, ladeando la cola del animal o dirigiéndola hacia arriba; posteriormente se lubrica el termómetro con vaselina, agua jabonosa o estiércol del propio animal. Se introduce poco a poco con movimientos rotatorios a través del esfínter anal, teniendo cuidado de no producir heridas y de colocar el bulbo en contacto con la mucosa del intestino y no dentro de las masas fecales; se debe permanecer en este sitio por 2 minutos, con el propósito de registrar una temperatura lo más exacta posible. Es conveniente hacer una segunda toma de la temperatura para recticarla y estar seguros de los resultados; al terminar, se lava y desinfecta el termómetro. Al aumento de la temperatura se le denomina ebre y a la disminución, hipotermia. La temperatura local es la temperatura en determinadas regiones, como por ejemplo, los cuernos, las orejas, o la glándula mamaria; se puede evaluar por medio de la palpación. El centro regulador de la temperatura del organismo está localizado en el hipotálamo posterior del cerebro; el balance entre la producción de calor, o termogénesis, y la pérdida de calor, o termólisis, determina la temperatura corporal. Las funciones normales del organismo dependen de una temperatura constante (homeotermos), los invertebrados, reptiles, anbios y
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Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
peces son poiquilotérmicos, o de sangre fría; no pueden regular su temperatura corporal, están a merced de la temperatura del ambiente. La termogénesis es la producción o generación del calor dentro del organismo, por la actividad muscular, la asimilación de alimentos y por todos los procesos vitales que contribuyen a la tasa metabólica basal, como el balance energético basado en el metabolismo energético de glucósidos, lípidos y proteínas. Termólisis es la pérdida de calor orgánico por radiación, conducción y secreción de sudor, orina y heces. Hipertermia es la elevación de la temperatura corporal y puede ser siológica o patológica; la siológica está relacionada tanto con factores ambientales: estación del año, hora del día, alimentación, ordeño, trabajo físico, función zootécnica, como con factores internos: edad, la raza, estadio reproductivo como el estro, la gestación o el parto, pero la temperatura será compensatoria en un estado siológico determinado y posteriormente ésta regresará a la normalidad. Los estados patológicos al inicio de la enfermedad o en su fase aguda o prodrómica pueden comenzar con hipertermia y seguir con ebre, que es considerada una defensa del organismo. Hipotermia es la disminución o descenso de la temperatura del cuerpo por debajo de los límites de la normalidad. Puede ser siológica, en un ambiente frío o húmedo, o por un estado patológico, como en una enfermedad crónica o que rompa el estado siológico normal del aparato termorregulador, en fases terminales graves de pacientes o antes de la muerte. Fiebre es el aumento de la temperatura del cuerpo por arriba de los límites normales; es un síndrome complejo integrado por hipertermia, taquicardia, polipnea, invariablemente asociado a enfermedad. Puede ser de varios tipos: aguda, de menos de tres días, y crónica, de más de cinco días, casi siempre relacionada con infecciones. Pirógeno productor de ebre. Los pirógenos exógenos, como las endotoxinas bacterianas, actúan sobre los fagocitos originados en la medula ósea, leucocitos polimorfonucleares, monolitos y macrófagos, para producir pirógenos endógenos que penetran al encéfalo y actúan sobre la zona preóptica del hipotálamo; tal vez la ebre resulta de la liberación local de prostaglandinas. La ebre mayor de 43°C puede provocar daño permanente del encéfalo, choque y muerte.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
Al realizar el examen clínico se debe seguir cierta metodología, utilizando nuestros sentidos: primeramente el de la vista o inspección, para observar lo normal o anormal; el tacto o palpación para tocar; la audición para oír los ruidos que producen los órganos, y para evaluar la percusión al golpearlos; así como el olfato o el gusto, aunque la aplicación de estos dos sentidos en la clínica pueden ser peligrosos por las enfermedades potencialmente zoonóticas. Cada uno de los métodos tiene una forma directa y otra indirecta.
INSPECCIÓN La inspección se reere a lo que se observa a simple vista, de manera directa en el entorno, el ambiente, el microclima, las instalaciones, el animal, e indirectamente, por medios que ayudan a la vista, como el otoscopio, el vaginoscopio, laringoscopio, los rayos X, el microscopio y el ultrasonido.
PALPACIÓN Con el sentido del tacto en forma directa se palpan y tocan con la mano extendida las supercies normales o anormales del cuerpo, aplicando la fuerza necesaria, se aprecia la temperatura de la región palpada, aumentos de volumen, sensibilidad, dolor, situación, formas, deslizamiento, extensión, resistencia, movilidad, calor, rubor, consistencias como, duro, blando, rme, pastoso, crepitante y uctuante. Un ejemplo es palpar el pulso en bovinos introduciendo la yema de los dedos, con moderada presión, en el canal inferior de las vértebras coccígeas, sitio anatómico por donde pasan la arteria, la vena y los nervios coccígeos. Se utilizan guantes o instrumentos en la palpación rectal para determinar el aspecto reproductivo de la vaca, o al palpar el cérvix, el útero, los cuernos y los ovarios o al introducir una zonda esofágica para diagnosticar una obstrucción esofágica.
PERCUSIÓN La percusión consiste en golpear para hacer vibrar órganos, cavidades o áreas del cuerpo, para evaluarlos de acuerdo con los tonos que se obtienen, los cuales pueden variar según las características de la parte en que se está aplicando. Directamente se percute en forma digital oyendo al mismo tiempo; no se emplean instru-
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mentos. Indirectamente, se percute con el plexímetro o martillo percutor y se ausculta con el estetoscopio.
SONIDOS A LA PERCUSIÓN El sonido mate es el más opaco, de corta o escasa duración, intensidad, resonancia y sonoridad; se presenta, por ejemplo, en la percusión de masas musculares o del tercio inferior del sector gástrico superior. El submate es un sonido intermedio entre el mate y el claro, por ejemplo, el percibido en el tercio medio del sector gástrico anterior, ya que entre el líquido ruminal y el gas está la zona de fermentación donde existen burbujas, que al percutirlas producen este sonido. El sonido claro es de mediana duración, intensidad, resonancia y sonoridad; se produce al percutir la región nasal, ya que es un órgano hueco, con aire sin presión y con paredes óseas, por lo que el sonido es más hueco. El sonido timpánico se percibe como un sonido de alta duración, intensidad, resonancia y sonoridad; se produce al percutir el tercio superior del rumen, por la presión de los gases sobre las paredes distendidas, lo cual origina un sonido como de tambor. El sonido hipersonoro, metálico o ping tiene una exagerada duración de resonancia, intensidad y sonoridad, el eco es exagerado, siempre es patológico, asemeja el sonido de un golpe con un metal a un tanque de gas con una moneda o el rebote de un balón de basket ball. También pueden generarse sonidos intermedios o mezclados, como el submate.
TÉCNICAS DE AUSCULTACIÓN Y PERCUSIÓN DE CUADRANTES Se traza un cuadrante imaginario en la zona que va a valorarse, de craneal a caudal y de dorsal a ventral, y se ausculta y percute en cada uno de los cuadrantes.
AUSCULTACIÓN Es la evaluación de los sonidos producidos por la actividad funcional de los órganos, si se escucha con el oído será un método directo; si se escucha con el estetoscopio o el fonendoscopio será indirecto, que es el más utilizado por la nitidez con que se escuchan los sonidos amplicados.
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
MUCOSAS EXPLORABLES Las mucosas explorables en bovinos son la bucal, nasal, conjuntival, anal, vulvar, prepucial en machos, de los pezones y la del espacio interdigital. Se debe tomar en cuenta su color, humedad e integridad, el color normal de las mucosas en los bovinos es rosa pálido. Los cambios en el color pueden indicar enfermedades; así, las mucosas muy blancas indican anemia; las enrojecidas, hiperemia; azules, cianosis; amarillas, ictericia; verdes, intoxicaciones y negras, necrosis. Otras alteraciones que se pueden encontrar son vesículas, pápulas, úlceras, neoplasias, exudados, erupciones, traumatismos, parásitos.
LINFONODOS EXPLORABLES Los linfonodos palpables en bovinos son los mandibulares, preescapulares, precrurales, supramamarios e inguinales; se pueden examinar por palpación o inspección, son alargados, elásticos, móviles y sin lobulaciones. Las alteraciones pueden ser aumentos de tamaño, de sensibilidad, de consistencia, adherencias sin movimiento, dolor, elevación de la temperatura, cambio de forma e inclusive fístulas con salida de exudado purulento.
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Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
Los linfonodos mandibulares que se localizan en la cara interna de las mandíbulas, entre el músculo esternocefálico y la parte ventral de la glándula salival, tienen el tamaño y la forma de una nuez aplanada. Los linfonodos preescapulares localizados en el borde anterior del supraespinoso, aproximadamente 10 cm por delante de la articulación del hombro, son alargados; miden 7 cm de largo por 3 cm de ancho, se pueden palpar haciendo presión con la mano y deslizándola por delante del borde anterior de la escápula. Los linfonodos precrurales se localizan sobre el músculo oblicuo abdominal externo, a 12 cm de la patela, son aplanados y miden 15 cm de largo por 3 cm de ancho. Los linfonodos supramamarios se encuentran en la parte dorsocaudal de la glándula mamaria, son del tamaño y la forma de una nuez aplanada. Los linfonodos inguinales localizados debajo del tendón prepúbico en el espacio interfemoral, detrás del cordón espermático, tienen el tamaño de una avellana. Los aumentos de tamaño y engrosamientos sugieren inamación o tumores. Se pueden realizar punciones, tomar biopsias o retirarse quirúrgicamente para enviarlos al laboratorio.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
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Metodología diagnóstica del aparato digestivo en rumiantes Alicia Soberón Mobarak
INTRODUCCIÓN L las especies domésticas son criadas bajo sistemas de producción intensivos, como es el caso de las vacas lecheras, los bovinos de engorda y los borregos; y en los últimos años esta tendencia ha ido involucrando cada vez más a los caprinos. En los sistemas intensivos se establecen programas de alimentación, cuya nalidad es acelerar el crecimiento y los niveles de producción de los animales, pero que no son del todo lo más natural para cada especie e incluso modican sus hábitos alimentarios, trayendo como consecuencia un aumento en la frecuencia de los trastornos digestivos y metabólicos. Aquí radica la importancia de llevar a cabo una adecuada y completa evaluación diagnóstica del sistema digestivo en los rumiantes domésticos.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 2
EXAMEN GENERAL DEL APARATO DIGESTIVO Antes de iniciar la valoración de los órganos digestivos es muy importante realizar el examen físico general, a n de conocer el estado corporal del paciente, así como tener en cuenta las condiciones ambientales, la información obtenida durante la anamnesis y la historia clínica. En el examen general del aparato digestivo se deben incluir los aspectos que se describen a continuación. ❏
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Apetito ❏ Ingestión de alimentos ❏ Prensión ❏ Masticación Deglución Sed e ingestión de agua Rumia y eructación Defecación y características de las heces
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Los cambios en el apetito es un signo muy valioso para determinar el estado de salud de los animales; éste puede aumentar, disminuir o deformarse. Son múltiples las causas de la reducción del apetito; de éstas dependerán los tipos y el grado de inapetencia que se originen. T
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❏
Inapetencia aparente: se presenta por la mala calidad del alimento (descomposición, contaminación, congelamiento, mal sabor). Inapetencia verdadera o idiopática: es causada por enfermedades del aparato digestivo que inhiben el consumo de alimento. Inapetencia secundaria o sintomática: es consecuencia de trastornos en otros órganos, ebre o circunstancias tales como cambio de alimento, estro en hembras, cambios en el ambiente y otros.
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G ❏
❏
Apetito disminuido: generalmente acompaña a enfermedades leves. Apetito variable o caprichoso: aparece en algunas enfermedades de curso irregular, como el desplazamiento de abomaso, en donde el animal afecta-
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
do muestra preferencia por un solo tipo de alimento y rehúsa consumir otros. Inapetencia total o anorexia: por lo general se asocia con enfermedades de curso más grave. Apetito pervertido o alotriofagia, pica o malacia: cuando el animal ingiere productos u objetos no alimenticios, o que no forman parte de su dieta habitual. Es frecuente en enfermedades carenciales (deciencia de fósforo, calcio, cobalto, proteína); en enfermedades que afectan el sistema nervioso central, como rabia y cetosis, entre otras. Los animales consumen objetos de todo tipo, como excremento (coprofagia), huesos (osteofagia), tierra (geofagia), cadáveres (necrofagia).
INGESTIÓN DE ALIMENTOS
APETITO
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❏
❏
Prensión. La forma de prensión de los alimentos
varía con la especie. Las cabras y borregos toman su alimento con los labios y los incisivos. Los vacunos utilizan su lengua fuerte, larga, móvil y rugosa, como órgano prensil. Esta función puede verse alterada en casos de dolor en la cavidad oral y las estructuras adyacentes, como la lengua, los dientes, la mucosa oral, el paladar, la faringe y el esófago; en casos de infecciones (estomatitis viral, bacteriana) y cuerpos extraños; en casos de afecciones del sistema nervioso, como parálisis de los labios y los músculos masticatorios, rabia, tétanos, botulismo e intoxicación por plomo, entre otras. Masticación. Es la actividad trituradora o moledora del alimento, que se lleva a cabo con las piezas dentarias, la lengua y los músculos maseteros. En los herbívoros existe un marcado movimiento lateral de las quijadas (a diferencia de los omnívoros y carnívoros, cuyo movimiento masticatorio es vertical). Esta función puede verse alterada en procesos dolorosos de la mucosa oral (estomatitis, glositis); afecciones de las piezas dentarias (caries, abscesos); trastornos neurológicos (rabia, tétanos); traumatismos y fracturas en la región. Deglución. Es el acto de transportar el alimento desde la boca, hacia la faringe y el esófago, hasta los compartimientos gástricos. Después de masticarlo y lubricarlo con saliva, el alimento es impulsado a la parte posterior de la faringe, en donde el
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
velo del paladar se eleva cerrando la zona posterior de los oricios nasales, y la epiglotis ocluye la laringe. Los músculos faríngeos se contraen y el alimento es enviado hacia el esófago. A la dicultad para deglutir se le llama disfagia; puede manifestarse en alteraciones dolorosas, inamatorias y funcionales de las estructuras que intervienen en esta función, como faringitis, dilatación esofágica, paladar hendido, obstrucciones de la faringe y el esófago por objetos extraños, tumores, abscesos, linfonodos regionales aumentados de tamaño, así como parálisis por afecciones del sistema nervioso central, como la rabia.
❏
do de nuevo es sustituido por el siguiente. La observación de la rumia debe hacerse en un ambiente tranquilo para el animal. Los desórdenes en esta función pueden deberse a cambios patológicos en la boca, esófago y compartimientos gástricos, o a trastornos del estado general por alteraciones en otros órganos. ❏
Eructación. La descarga de los gases producidos
❏
en los procesos fermentativos dentro del rumen es vital para estos animales. Una cuarta parte del gas producido se elimina por la sangre y los pulmones, y las tres cuartas partes restantes se liberan por medio del eructo. Los animales alimentados con forrajes verdes eructan con mayor frecuencia que aquellos que consumen forrajes más secos y brosos. El eructo puede inhibirse parcial o totalmente en casos de estenosis u obstrucciones del esófago o alteraciones en la motilidad gástrica, donde el gas, producto de la fermentación ruminal, se acumula en forma libre (timpanismo gaseoso) o en forma de burbujas (timpanismo espumoso), todo lo cual pone en riesgo la vida del animal. Vómito. El vómito, o emesis, es la expulsión forzada del contenido gastrointestinal a través del esófago y fosas nasales. El vómito es de origen central, o bien, reejo. En el primer caso se presenta por el estímulo directo al centro del vómito, como sucede en alteraciones cerebrales por encefalitis de diversa naturaleza (bacterianas, virales, intoxicaciones, uremia). El segundo caso ocurre a causa de respuestas reejas del centro del vómito, por irritación de ciertos órganos, como en los casos de faringitis, obstrucción esofágica, gastritis y obstrucción intestinal, entre otros. En los rumiantes el vómito es un evento poco frecuente, y cuando llega a presentarse constituye un indicio de problemas sumamente graves.
SED E INGESTIÓN DE AGUA ❏
Polidipsia. Se reere al consumo excesivo de agua
y generalmente se presenta en las enfermedades que cursan con elevadas pérdidas de líquidos corporales, como estados febriles, diarrea, hemorragias, afecciones renales. ❏
Adipsia. Es la ausencia de sed o la aversión a los lí-
quidos. Con frecuencia indica trastornos en la deglución o intenso dolor de las vías digestivas altas.
RUMIA, ERUCTACIÓN Y VÓMITO ❏
Rumia. La frecuencia e intensidad de la rumia cons-
tituyen valiosos parámetros para determinar la salud de los rumiantes y aportan información sobre la actividad motora de los compartimientos gástricos. Se considera que la frecuencia normal de los movimientos ruminales en bovinos, ovinos y caprinos es de 2 a 3 cada dos minutos. Por lo general, cualquier interrupción prolongada de la rumia es un indicio de enfermedad local o generalizada. La rumia es el proceso de remasticar los alimentos y comprende los siguientes pasos: ❏
Reyección o regurgitación. Los movimientos de re-
gurgitación son el preludio de la rumia en sí misma. El animal lleva a cabo un movimiento inspiratorio con la glotis cerrada, lo cual aumenta la presión intratorácica, y después, por movimientos antiperistálticos, la materia sólida, o bolo, es regresado a la boca donde comienza la segunda fase. ❏
Remasticación
y
reinsalivación
del
bolo.
Generalmente los animales suelen echarse durante esta fase.
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Redeglución. El bolo rumiado antes de ser degluti-
DEFECACIÓN Y CARACTERÍSTICAS DE LAS HECES ❏
Defecación. Las heces están formadas por agua,
restos de alimento digerido y no digerido, pigmentos biliares, células de la mucosa intestinal, sales inorgánicas y un gran número de bacterias. Para la valoración del estado funcional del sistema digestivo se debe tomar nota de la frecuencia de la
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
defecación, postura adoptada y características del excremento. ❏ Postura y frecuencia. Durante la defecación los animales adoptan posturas características de su propia especie. El ganado vacuno normalmente abre los miembros pélvicos para defecar; el caprino y el ovino pueden defecar aun caminando. Las tres especies elevan la cola y arquean ligeramente el dorso antes de defecar. La frecuencia de la defecación está relacionada con la naturaleza del alimento. Los rumiantes defecan de 10 a 12 veces al día o más, cuando están en régimen de pastoreo. Cualquier anomalía en cuanto a la postura y frecuencia en la defecación puede sugerir alguna alteración. La disminución o ausencia de esta función por lo común se debe a estados patológicos que reducen la motilidad o a parálisis omasal u obstrucciones intestinales, mientras que la frecuencia se eleva ante situaciones que aumentan la motilidad, como puede ser la ingestión de sustancias irritantes, las enteritis infecciosas y parasitarias, y errores o cambios bruscos en la alimentación. En inamaciones rectales o procesos dolorosos en la cavidad pélvica, el animal permanece en posición de defecar, con signos de molestia o dolor, como mugidos, balidos y quejidos; a esta condición se le denomina tenesmo. La defecación involuntaria puede ocurrir por lesiones de la médula sacra o parálisis del esfínter anal; en estos casos, el animal no adopta la posición adecuada. También se observan posturas anormales en caso de dolor en las extremidades posteriores o en la columna vertebral. ❏
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
La presencia de granos y forrajes no digeridos en el excremento puede indicar una deciente masticación de los alimentos. La consistencia se puede ver afectada por enfermedades del sistema digestivo que ocasionan heces muy duras y secas (escaso consumo de agua), blandas, semilíquidas y acuosas. Las heces pastosas se presentan en casos de estasis ruminal y desplazamiento de abomaso. Dentro de las sustancias extrañas que pueden aparecer en las heces se incluyen: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
❏
Sangre Moco Grasa Larvas o huevos de parásitos Objetos no alimenticios como arena, tierra, madera, pelo. Melena. Es la presencia de sangre visible en las he-
ces. Cuando la sangre está semidigerida el excremento adquiere color oscuro y alquitranado, lo cual indica que la sangre proviene de la parte alta del aparato digestivo. El hecho de observar heces teñidas de rojo sugiere que la sangre proviene del intestino grueso. Si la hemorragia se produce en la porción nal del colon o recto la sangre aparece en forma de coágulos o líquida. ❏
❏
Características de las heces. Las heces se clasican
de acuerdo con su consistencia, color, olor y presencia de sustancias extrañas. Las alteraciones de las características físicas de las heces pueden tener múltiples causas, como el estreñimiento persistente, en las heces que adquieren un color negruzco y consistencia seca; o los casos de disminución de bilis, en los que las heces toman un color muy pálido. El olor de las heces depende mucho de la naturaleza del alimento ingerido. Por lo general, en los herbívoros no suele ser desagradable, a diferencia de los carnívoros y omnívoros. En casos de enfermedad intestinal o por una fermentación anormal, las heces de los rumiantes adquieren un olor fétido.
❏
Mixorrea. Se encuentran cantidades excesivas de
moco o fragmentos de mucosa en las heces. Indica, entre otras cosas, procesos inamatorios y traumáticos de la mucosa intestinal. Esteatorrea. El excremento contiene gran cantidad de grasa, la cual le da el aspecto de cera. Su presencia sugiere deciencias pancreáticas y hepáticas.
EXAMEN ESPECIAL DEL APARATO DIGESTIVO Este examen incluye lo siguiente: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Cavidad oral, faringe y esófago Sondeo esofágico Compartimientos gástricos Intestinos Recto (bovinos) Materia fecal Hígado
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
CAVIDAD ORAL, FARINGE Y ESÓFAGO
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La evaluación clínica de la cavidad oral se realiza principalmente por inspección y palpación directa e indirecta. ❏
❏
❏
Bovinos. Para abrir la boca del animal, primero se
le inmoviliza sujetándolo por los ollares y luego se introduce la mano lateralmente en el espacio interdental, esto es, entre los incisivos y los molares, para evitar una mordida, a la vez que se sujeta la lengua sacándola por un lado de la boca y procurando que quede entre los molares superiores e inferiores. Esto es suciente cuando se pretende hacer una revisión rápida. En los reconocimientos más largos y profundos se utilizan abrebocas y tlacualejos. Caprinos y ovinos. Con ellos no se requiere tanta fuerza para abrir la cavidad oral y mantenerla abierta. Una persona se monta sobre el animal y le abre la boca mientras el clínico realiza la exploración. Inspección externa: por medio de este método se atenderá a los aumentos de volumen; asimetría entre ambos lados de la cabeza y el cuello; traumatismos; cambios de coloración e integridad de la piel; presencia de vesículas; así como úlceras y grado de humedad en el morro. También permite observar actitudes y posturas anormales, por ejemplo, la extensión de la cabeza y el cuello por dolor en la región cervical, o la cabeza inclinada hacia un lado cuando el trastorno es unilateral.
Otro factor que debe vericarse es la presencia de salivación excesiva, o ptialismo, por estados inamatorios de la mucosa oral, o de sialorrea, que es la incapacidad del animal para deglutir la saliva en casos de obstrucción esofágica y parálisis. ❏
Inspección interna. Para la inspección de la cavi-
dad oral se requiere una fuente de luz y para de la faringe y estructuras más internas, un endoscopio o espéculo tubular. Se buscarán alteraciones en el tamaño de los órganos y estructuras, y en la integridad del epitelio; procesos inamatorios, contenidos anormales (pus, sangre, objetos extraños), caries, piezas dentarias rotas, abscesos. Durante la exploración se podrán detectar olores alterados, por ejemplo, el de fruta fermentada o acetona en algunos casos de cetosis; u olores desagradables por necrosis de tejidos o descomposición del alimento.
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❏
Palpación externa. Se lleva a cabo con ambas ma-
nos, una a cada lado de la estructura que se va a examinar; al principio se palpa con suavidad para evitar que el animal se retire, y poco a poco se va aumentando la presión. La palpación revelará el aumento de la temperatura local, hinchazón y dolor por problemas inamatorios, tumores, así como el volumen, la textura y la sensibilidad de los linfonodos regionales (parotídeos, submandibulares y faríngeos). El esófago sólo es factible de palparse en su porción cervical, lo cual se realiza del lado izquierdo del cuello, de arriba abajo, para determinar la presencia de abscesos, edema, brosis, tumores, objetos extraños y dolor. Palpación interna. Únicamente puede practicarse en bovinos y su alcance es muy limitado, ya que se lleva a cabo con las manos. Para evitar accidentes es muy importante lograr una buena sujeción del animal y emplear el abrebocas. Este método sirve para identicar cuerpos extraños, sensibilidad dolorosa, linfonodos aumentados de tamaño, neoplasias, así como la característica textura lobulada de las glándulas salivales. Aquí es necesario subrayar que NUNCA deberá realizarse esta práctica en animales con semiología neurológica ni cuando exista la más mínima sospecha de rabia.
S
El sondeo esofágico en los rumiantes es un método muy valioso, tanto para nes diagnósticos como terapéuticos. La exploración del esófago en toda su longitud, exige la comprobación del paso a través del mismo, por medio de una sonda esofágica, la cual aportará datos sobre obstrucciones por cuerpos extraños, estrechamiento de su luz, o estenosis, así como la presencia de sangre, pus, restos de tejido y olores extraños o desagradables. ❏
Técnica. El sondeo en rumiantes se realiza por vía
oral; en los bovinos es necesario utilizar un abrebocas o un tubo de metal con bordes redondeados; en el caso de ovinos y caprinos se puede adaptar una jeringa de 100 mL, cortando el extremo donde se conecta la aguja y redondeando muy bien los bordes, para no provocar lesiones en la mucosa. Hay que evitar que el animal mastique la sonda.
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
Se usa una sonda o manguera de plástico transparente y lisa, con la longitud y el diámetro adecuados a la especie y edad del animal. Se introduce por el centro de la cavidad oral, manteniendo la cabeza estirada, y al llegar a la faringe se hacen cuidadosos movimientos de avance y retroceso, para provocar el reejo de la deglución. Una vez deglutida la manguera, se verica su paso por el esófago palpando y observando externamente el lado izquierdo del cuello. Para comprobar que la sonda llegó al rumen, se sopla con fuerza por el extremo libre de ésta, y el olor que regrese deberá ser el característico del líquido ruminal. En caso de no detectar el olor, puede vericarse colocando el este toscopio en la fosa del ijar izquierdo para escuchar el gorgoteo producido al momento de soplar. Antes de extraer la sonda es necesario soplar en ella con fuerza, tapar el extremo libre de la misma y sacarla en un solo movimiento para evitar broncoaspiración.
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C ❏
Rumen. Es el más grande de los compartimientos
gástricos. Ocupa la mayor parte de la pared abdominal del lado izquierdo. Su examen clínico se realiza por: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
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Inspección Palpación Endopalpación rectal (en bovinos) Auscultación Percusión Valoración del líquido ruminal
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Inspección. La observación del hueco del ijar iz-
quierdo aporta información sobre el grado de llenado del rumen y la intensidad de los movimientos ruminales en animales con pared abdominal delgada. Palpación. Se realiza de manera externa, interna o endopalpación (en bovinos) y por laparotomía exploratoria. Palpación externa: con el puño se comprime profundamente el hueco del ijar izquierdo. De esta manera se pueden palpar alteraciones según el grado de repleción, la consistencia del contenido, la acumulación de gas, así como la frecuencia de los movimientos ruminales, que en un animal sano es de 2 o 3 en 2 minutos. Endopalpación rectal. Solamente se puede realizar en bovinos. Por esta vía se palpan los sacos dorsal
❏
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Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
y ventral del rumen, para valorar la consistencia de su contenido, el grado de repleción y la sensibilidad al dolor. Auscultación. Se coloca el estetoscopio en el hueco del ijar del lado izquierdo. Debe prestarse atención a la naturaleza, fuerza y frecuencia de los sonidos ruminales que se escuchan como susurros o crujidos periódicos. Percusión. Pueden emplearse los dedos, o bien, un pequeño martillo percutor. La percusión y auscultación simultáneas mejoran en gran medida la percepción del grado de repleción y contenido gaseoso del rumen. Valoración del líquido ruminal. Su examen es esencial para realizar el diagnóstico diferencial de los problemas ruminales. La extracción de la muestra se lleva a cabo por sondeo esofágico. Las muestras mantenidas a temperatura ambiente (de 20 a 22 °C) deberán examinarse dentro de las primeras 8 horas, y las refrigeradas, en un lapso no mayor de 24 horas. Las características que deben evaluarse son: ❏
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Color Olor Consistencia pH Sedimentación y otación Reducción del azul de metileno Infusorios Tinción de Gram
Color: varía de acuerdo con el tipo de alimento, por ejemplo, en los animales que consumen forraje verde o pastos tiernos, el líquido se observa de color verde olivo; si consumen elevadas cantidades de ensilado, será pardo-amarillento; cuando en su dieta se incluyen concentrados en alta proporción, el color es café verdoso. Olor: es muy peculiar, y similar al alimento que está consumiendo el animal. Puede volverse muy desagradable en casos de putrefacción del contenido ruminal o muy ácido cuando hay exceso de formación de ácido láctico. Consistencia: es ligeramente viscosa. Cuando es muy líquida indica, bien un exceso de saliva en la muestra, o bien, que el animal acaba de ingerir agua. Si es muy espumoso, sugiere una excesiva fermentación.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
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pH: para medirlo se utiliza una tira reactiva. El rango normal de pH del líquido ruminal varía de 5.9 a 7, el cual está inuido por el tipo de alimentación. Valores superiores a 7 son sugerentes de alcalosis ruminal, ya sea de origen alimentario o por exceso de saliva en la muestra. Valores menores de 5 pueden indicar un problema de acidosis ruminal. Sedimentación y otación: con esta prueba se determina la actividad de la microbiota ruminal. En una muestra sana primero hay sedimentación (partículas más pequeñas y pesadas) y si el líquido ruminal está activo, aparece la otación (partículas más ligeras); en el líquido se observan tres capas, del fondo hacia arriba: ❏ ❏ ❏
❏
sedimento fase líquida intermedia capa de partículas otantes.
La totalidad de la prueba debe llevarse a cabo en un lapso de 4 a 8 minutos; en caso contrario, aparecerá una alteración ruminal. En el cuadro 1 se incluyen los parámetros normales del líquido ruminal, así como sus alteraciones y el signicado diagnóstico de éstos. Después de recolectar la muestra del líquido ruminal en un recipiente de vidrio transparente, se evalúan sus características físicas (color, olor, consistencia), se mide el pH con una tira reactiva y se deja la muestra reposando para contar el tiempo que tarda en ocurrir el fenómeno de otación-sedimentación.
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Reducción del azul de metileno: con esta prueba de campo se evalúa la actividad reductiva y, por tanto, la viabilidad de la microbiota del líquido ruminal.
❏
Técnica: en un frasco de vidrio se deposita líquido ruminal y se agrega solución de azul de metileno al 0.03% en una proporción de 1 mL de azul de metileno por cada 20 mL de muestra. Se agita suavemente y se toma el tiempo que tarda en retornar al color original de la muestra antes de agregarle el colorante. Para esto se recomienda tener un tubo testigo con líquido ruminal sin colorante, para comparar. El tiempo normal de degradación del colorante es de 3 a 6 minutos. Los valores mínimos se presentan en animales con dietas altas en granos o acidosis ruminal temprana. Valores mayores de 8 minutos son indicativos de acidosis ruminal avanzada, y valores más allá de 10 minutos señalan una ora inactiva.
Infusorios: la evaluación de la presencia y actividad de los protozoarios en el líquido ruminal se lleva a cabo en forma indirecta, depositando unas gotas de líquido fresco en un portaobjetos previamente templado (38 °C), las cuales se observan al microscopio, con aumento de 40x. En un animal sano aparece todo el campo visual lleno de infusorios dotados de vivaz movimiento. También puede hacerse en forma directa en muestras recién obtenidas, colocando el frasco a contraluz y observando el movimiento en masa, sobre todo en la zona central de la muestra. Tinción de Gram: permite valorar la proporción entre bacterias Gram negativas y Gram positivas, que en estado normal debe ser de 60:40. Las bacterias Gram positivas aumentan su proporción cuando el pH ruminal disminuye, como en el caso de acidosis láctica ruminal.
Otra prueba que puede realizarse en el líquido ruminal es la concentración de cloro, cuyos valores normales en bovinos es de 10 a 20 mEq/L y en ovinos y caprinos, de < 15 mEq/L. El aumento en los niveles sugiere la presencia de reujo abomasal, atonía de los compartimientos, úlceras abomasales, enteritis y elevado consumo de sal, entre otros. ❏
❏
Retículo: se localiza a la izquierda de la línea media, adelante del rumen, entre el sexto y el octavo espacios intercostales. Su situación anatómica hace poco accesible su exploración directa, por lo que hay que realizar un reconocimiento indirecto a través de pruebas cuya nalidad sea provocar respuestas de dolor que sugieran alguna alteración en ese órgano o en las estructuras cercanas. Pruebas de dolor: aunque no son muy especícas, son de gran utilidad cuando se sospecha la presencia de cuerpos extraños en el retículo, que estén ocasionando reticulitis, retículo-peritonitis o retículo-pericarditis traumática, que son problemas frecuentes en los bovinos y muy rara vez aparecen en los caprinos y ovinos. La respuesta dolorosa también puede presentarse en casos de úlceras abomasales, hepatitis y pleuritis. Las distintas variedades de esta prueba son: ❏ ❏ ❏ ❏
Prueba del tubo Pellizcamiento del lomo Percusión dolorosa Caminata sobre un plano inclinado
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
Otros exámenes complementarios para el diagnóstico de alteraciones del retículo incluyen la laparotomía, o rumenotomía exploratoria, y la radiología (poco utilizada en la práctica). ❏
❏
Omaso. Al igual que el retículo, su posición anató-
mica lo hace inaccesible a los métodos usuales de exploración. Se localiza entre el séptimo y noveno espacios intercostales del lado derecho, en forma ventrolateral. Abomaso. Tiene relación con la pared abdominal derecha, ligeramente a un lado de la línea media, entre la séptima y décima costillas. Su exploración se lleva a cabo por medio de las siguientes técnicas: ❏ ❏ ❏
❏
Inspección externa Palpación externa Percusión y auscultación simultáneas
Inspección externa. Aunque existan alteraciones
en el abomaso, no siempre se observan cambios de forma. Ocasionalmente, detrás de la región del hipocondrio, se detecta un abultamiento más o menos aparente del abdomen, causado por impactaciones, dilataciones o desplazamientos hacia la derecha o izquierda de este órgano. ❏
Palpación externa. En bovinos, sólo es útil en bece-
rros o adultos muy delgados. En caprinos y ovinos es muy ecaz para el diagnóstico y se emplea para obtener reacciones dolorosas que se maniestan con gemidos o balidos. ❏
Percusión y auscultación simultáneas. La aplicación
de ambos métodos a la vez aporta información muy valiosa relativa al estado y presencia de alteraciones del abomaso. El sonido normal escuchado a la percusión del abomaso se clasica como subtimpánico; puede volverse mate, en casos de impactaciones o sobrecarga, y muy metálico (“ping”) cuando hay dilatación por gas. La percusión y auscultación simultáneas es útil para el diagnóstico de dilatación y desplazamiento de abomaso en los bovinos. Esta alteración es sumamente rara en los caprinos y ovinos.
INTESTINOS ❏
Inspección y palpación externas. Estos métodos
aportan poca información en los bovinos, por su tamaño y el grosor de la pared abdominal. En
❏
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Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
ocasiones puede observarse distensión de la pared abdominal derecha por dilatación de ciego y palparse tensión abdominal exagerada por dolor. Comparativamente, en el caso de ovinos y caprinos, se obtiene mayor cantidad de información con relación al estado funcional de los intestinos. La palpación se aplica para detectar sensibilidad dolorosa y presencia de gas en las asas intestinales. Percusión y auscultación simultáneas. Para percibir respuestas dolorosas y detectar acumulación de gas, por ejemplo, en el caso de dilatación de ciego en rumiantes (sonido metálico o “ping”), y de líquido en cavidad abdominal.
La auscultación por sí sola es poco exitosa en rumiantes, ya que los sonidos intestinales son débiles y se enmascaran con los ruidos ruminales. Se describen como crepitantes; aumentan en casos de diarrea y disminuyen en casos de estreñimiento.
RECTO (BOVINOS) El examen del recto solamente se realiza en bovinos; con él se obtienen datos valiosos y una clara indicación del estado funcional de los intestinos. Incluye el recto y otros órganos que pueden sentirse a través de la pared rectal. Debe ponerse atención a la consistencia de la pared, tipo y cantidad de contenido, dolor y adherencias. Algunos de los trastornos que se detectan por esta vía son enteritis aguda y crónica, intususcepción, vólvulo y estrangulación del intestino delgado, obstrucciones, y otros.
MATERIA FECAL El examen de las heces aporta información importante sobre el estado del tracto digestivo, la naturaleza de la dieta y la presencia de parásitos gastrointestinales.
HÍGADO La evaluación diagnóstica del hígado se considera complicada, ya que es un órgano con múltiples funciones, tiene un amplio poder de regeneración y su posición anatómica lo hace poco accesible para la exploración por métodos físicos. Se localiza completamente a la derecha del plano mediano, y el borde derecho suele proyectarse un poco adelante del arco costal en su zona más baja. Esta pequeña área constituye la zona de matidez hepática, ya que el sonido que se obtiene a la percusión es totalmente mate; en casos de hepa-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
tomegalia, el tamaño sobrepasa los límites normales. También se generan respuestas dolorosas a la palpación y percusión, que sugieren alguna alteración. La exploración del hígado debe complementarse con otros estudios clínicos, como niveles de enzimas
séricas (FA, GGT), bilirrubina sérica, bilirrubina en orina y urobilinógeno, entre otros; se incluyen además la radiología, el ultrasonido, la laparoscopia (aunque estos métodos no se utilizan en forma rutinaria) y la biopsia hepática.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL DE LOS TRASTORNOS DEL RUMEN A TRAVÉS DE LA EVALUACIÓN DEL LÍQUIDO RUMINAL Normal
Indigestión simple
Crónica
Alcalosis ruminal
Putrefacción ruminal
Aguda
pH
6.0-7.0
6.8-7.2
3.4-4.8
5.0-5.8
7.3-8.5
7.5-8.5
Color
Verde olivo
Verde oscuro
Gris verdoso
Verde pardo
Negro verdoso
Ácido
Amoniacal
Pútrido
Acuosa
Lechoso grisáceo Ácido picante Acuosa
Olor
Típico
Mohoso
Viscosidad
Ligera
Ligera
Variable
Pastosa espumosa
Sedimentación
4-8 min
Rápida poco sedimento
Rápida sin sedimento
Rápida
Variable
Sin separación
Flotación
4-8 min
Ausente
Ausente
Ausente
Variable
Ausente
Actividad Reductiva
3-6 min
> 8 min
Ausente
Normal (prolongada)
> 8 min
> 8 min
200-400
40-100
Ausentes
0-150 (prolongada)
50-150
Escasos
Protozoarios (1 000/mL)
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Acidosis ruminal
Parámetro
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
❏
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
> Literatura consultada
❚
Blood DC, Henderson JA, Radostits OM. Veterinary medicine. 6a ed. Chelmsford: Baillére Tindall, 1983.
❚
Kelly WR. Diagnóstico clínico veterinario. 6ª ed. México: CECSA, 1987.
❚
Pugh DG. Sheep and goat medicine. Filadela: Saunders, 2002.
❚
Smith MC, Sherman DM. Goat medicine. Baltimore: Lea & Febiger, 1994.
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Evaluación diagnóstica del aparato reproductor y glándula mamaria en rumiantes Alicia Soberón Mobarak
INTRODUCCIÓN L del aparato reproductor en los rumiantes domésticos, como bovinos, ovinos y caprinos, reviste una gran importancia, ya que de su salud reproductiva depende en gran medida la producción de alimentos básicos para el hombre, tales como la carne y la leche y sus derivados. El continuo perfeccionamiento de la genética, la reproducción, la alimentación, la sanidad y las instalaciones tiene como objetivo principal elevar los niveles de producción, lo cual somete a los animales a un mayor desgaste físico y siológico y a mayor estrés, que en muchos casos se traduce en aumento de la incidencia en alteraciones y enfermedades de los órganos de la reproducción, entre los que se considera a la glándula mamaria, dada la estrecha relación siológica que existe entre ellos.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 2
❏
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
CONSIDERACIONES ANATÓMICAS
CONSIDERACIONES ANATÓMICAS EN MACHOS
Y FISIOLÓGICAS EN HEMBRAS El aparato reproductor de las hembras está formado por los órganos genitales externos: la vulva y la vagina, y los internos: el cérvix, el útero, los oviductos y los ovarios. Los labios vulvares son gruesos y forman dos comisuras: dorsal y ventral. La comisura ventral está ocupada por un cuerpo redondeado que yace en una cavidad (fosa del clítoris). El oricio uretral externo está situado en el piso de la vulva, cerca de su unión con la vagina. La vagina de la vaca no gestante mide de 25 a 40 cm de largo; la de las cabras y las borregas, de 7 a 10 cm. El cérvix se localiza en la parte más craneal de la vagina y se comunica con el cuerpo del útero. El útero está formado por un cuerpo corto y dos cuernos; en las hembras no gestantes está parcialmente situado en la zona pélvica. El cuerpo del útero se conecta a las paredes pélvicas por el ligamento ancho. Los ovarios de las vacas miden alrededor de 3 cm de largo y 2 cm de ancho; los de las cabras y borregas, aproximadamente 2 cm de longitud por 1.5 cm de ancho. Se debe recordar que por los tiempos de presentación de su ciclo reproductor, las vacas se consideran poliéstricas continuas, a diferencia de las borregas y cabras, que son poliéstricas estacionales, esto es, que tienen actividad sexual cíclica en determinada época del año. Este ciclo está regulado por la cantidad de horas-luz al día y a ambas especies se les dene como reproductoras de días cortos; inician su actividad ovárica durante el otoño (en el hemisferio norte), y la mayoría de ellas se vuelven anéstricas entre marzo y agosto. La estacionalidad es más marcada en razas de origen europeo y tiende a ser menor en el ganado criollo. La disminución de las horas-luz también estimula la actividad reproductora de los machos. En el cuadro 1 se resumen las características del ciclo estral y la duración de la gestación de cada especie.
El aparato reproductor del macho está compuesto por el escroto, los testículos, el epidídimo (cabeza, cuerpo y cola), los conductos deferentes, el prepucio, el pene y la uretra, así como por las glándulas accesorias (vesículas seminales, próstata y glándulas de Cowper o bulbouretrales). Desde el punto de vista anatómico, la próstata del carnero y del macho cabrío es diseminada y la del toro es circunscrita. El escroto del toro es largo y colgante, los testículos tienen forma oval y alargada. El epidídimo está jo a lo largo del borde posterior de cada testículo y su cabeza cubre el extremo dorsal. El pene es cilíndrico; inmediatamente después del escroto forma una curva en forma de “S”, llamada exura sigmoidea, que desaparece durante la erección. El glande es largo y termina en forma aguzada y retorcida; el oricio uretral externo está situado al nal de un surco formado por la espiral del glande. El prepucio es largo y estrecho, y está rodeado de pelos largos y duros. Los genitales del carnero y del macho cabrío son muy similares a los del toro, salvo algunas diferencias: los testículos son proporcionalmente más grandes que los del toro y la parte nal de la uretra, que se conoce como proceso uretral, sobrepasa el glande unos 3 o 4 centímetros
ALGUNOS PARÁMETROS REPRODUCTIVOS DE VACAS, CABRAS Y BORREGAS Parámetro Vaca Cabra Borrega 18 a 21 18 a 22 14 a 19 Duración ciclo estral días días* días* 6-36 12 a 24 15 a 45 Duración del estro horas horas horas 270 a 275 147-155 145-150 Duración de la gestación días días días * La estación reproductiva inicia en otoño y naliza a principios de la primavera, siendo los meses de mayor actividad de octubre a diciembre.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA DEL APARATO REPRODUCTOR Antes de iniciar la evaluación del sistema reproductor, tanto de machos como de hembras, el clínico tiene que examinar al animal como un todo; observar con detalle el ambiente que lo rodea, el sistema de producción, la higiene, y considerar la época del año y todos aquellos factores que puedan inuir en su salud general y reproductora. Asimismo, es de vital importancia realizar el examen físico general, pues diversas alteraciones en otros órganos o sistemas repercuten en la reproducción. También debe incluirse la valoración de la condición corporal y la conformación de los animales.
EVALUACIÓN DIAGNÓSTICA DE LA HEMBRA La historia clínica deberá incluir: ❏
Problema individual o de rebaño.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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❏ ❏
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Alimentación y suplementación. Prácticas de manejo general y reproductor (monta natural, inseminación articial, uso de productos hormonales para la sincronización de estros, programas de vacunación, desparasitación). Enfermedades anteriores y actuales. Datos sobre el último parto: la fecha, si hubo dicultades, como retención de placenta o metritis; datos sobre gestaciones anteriores, como abortos, reabsorciones embrionarias, partos prematuros. Etapa de lactación, producción de leche, mastitis. Presencia o ausencia de signos de estro, duración del ciclo estral, fecha de la última monta o inseminación. Otros.
EVALUACIÓN EXTERNA La evaluación externa se lleva a cabo por inspección y palpación. La inspección de la parte posterior de la vulva puede realizarse a simple vista, separando los labios vulvares con las manos. Para observar las zonas más profundas de la vulva, vagina y cérvix será necesario emplear un vaginoscopio o espéculo vaginal de tamaño adecuado a cada especie, que también serán muy útiles para obtener muestras para estudios microbiológicos y citológicos. Por medio de la observación se podrán valorar el color de la mucosa, la presencia de secreciones, exudados, lesiones y alteraciones anatómicas de estas estructuras. En el caso de cabras y borregas, por su menor tamaño, la dicultad de su manejo y la imposibilidad de aplicar ciertos métodos diagnósticos (como la palpación rectal, viable en vacas y yeguas) es más factible la observación indirecta mediante el ultrasonido en tiempo real, que cada vez se usa más, sobre todo para el diagnóstico de gestación o de algunas anormalidades. La palpación rectal es el método que más se aplica en los bovinos para diagnosticar la actividad ovárica, la gestación, el puerperio, el ciclo estral y las anormalidades morfológicas y siológicas, ya que pueden obtenerse datos sobre forma, volumen, simetría, localización, estado de la supercie, grosor de las paredes, contenido y consistencia de los órganos. El diagnóstico temprano de la gestación en los rumiantes domésticos es de suma importancia, ya que la identicación de problemas de fertilidad permite eliminar del hato o rebaño a los animales improductivos,
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administrar dietas adecuadas para evitar o reducir la incidencia de enfermedades y dicultades en el peri parto, secar a las hembras en lactación en el momento adecuado, así como facilitar el establecimiento y evaluación de programas de reproducción.
DIAGNÓSTICO DE GESTACIÓN POR PALPACIÓN RECTAL EN VACAS Por medio de la palpación rectal se detectan los cambios anatómicos y siológicos del tracto genital durante la preñez.
SIGNOS POSITIVOS QUE CONFIRMAN LA GESTACIÓN: Deslizamiento de membranas
A partir del día 30 al 35
Palpación de vesícula amniótica
Del día 30 al 65
Presencia del feto
A partir de los 65 días hasta el nal de la gestación
Presencia de placentomas
Del día 65 o 70, al término de la gestación
SIGNOS SUGERENTES ADICIONALES: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
No retorno al estro después de 21 días. Persistencia del cuerpo lúteo. Aumento de volumen y tono uterinos. Asimetría de los cuernos uterinos. Localización del útero. Presencia de líquidos. Hipertroa de la arteria uterina media. Presencia de frémito en la arteria uterina media.
MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO DE GESTACIÓN EN CABRAS Y BORREGAS ❏
❏
Desarrollo mamario: en las hembras gestantes se observará el aumento de la glándula mamaria, entre 4 y 10 semanas antes del parto. Aunque es sencillo y económico, es un método tardío y sólo puede aplicarse en hembras primerizas. No retorno al estro: es un método tradicional aplicado por los productores, pero tiene amplio margen de error debido a las muertes embrionarias posteriores, abortos tempranos, o hembras que ya no vuelven a mostrar signos de estro por estar al nal de la estación reproductora. La ventaja del método,
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
❏
❏
además de la económica, es que detecta la posible preñez en forma temprana (de 18 a 24 días después de la monta). Palpación abdominal externa (“peloteo”): es un método económico y sencillo, cuya desventaja es que sólo puede aplicarse a partir de los 100 días de gestación. Consiste en empujar con el puño, colocado en la parte baja de la pared abdominal, y apoyar la otra mano en la pared abdominal del lado opuesto, a n de sentir el rebote del feto (s), o también rodeando con los brazos el abdomen del animal. Niveles de progesterona: estas pruebas pueden realizarse en plasma, suero o leche, entre los 18 y 24 días después de la monta o inseminación. Los niveles de progesterona mayores de 1 ng/mL son característicos de la gestación, y los niveles menores indican que la hembra está vacía. La seguridad para identicar a las hembras no gestantes es casi de 100%; sin embargo, en las gestantes varía de 71 a 98%, pues pueden obtenerse falsos positivos por pseudogestación, metritis, quistes ováricos, y otros.
ULTRASONIDO ❏
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Doppler. Ya es poco utilizada en la actualidad; con
esta modalidad se detectan cambios de frecuencia por la reexión del sonido proveniente de un tejido o estructura en movimiento, como por ejemplo, la arteria uterina con frémito y el corazón fetal por medio de un transductor intrarrectal o transabdominal. El método intrarrectal se aplica a partir de los 35 días de gestación; después de los 45 días la detección del latido cardiaco fetal puede complementarse con la técnica transabdominal. Su ecacia es de 95% para hembras gestantes, y de 25 a 75% para no gestantes. La mayor frecuencia de error se presenta en casos de pseudogestación. Ultrasonido a tiempo real. A diferencia del anterior, este método exhibe la información en un tubo de rayos catódicos y permite la visualización de grandes secciones transversales de tejido. El diagnóstico es concluyente cuando se observa, tanto el feto como las carúnculas. Se puede aplicar por vía rectal o transabdominal. Por la vía rectal el embrión se percibe entre los 25 y 30 días, y por la transabdominal, a partir de los 35. Para proporcionar el diagnóstico denitivo, lo más seguro es revisar entre los 45 y 50 días. El porcentaje de seguridad es cercano a 100%
❏
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
para gestantes y de 87% en no gestantes. Otras características que pueden evaluarse son el número de crías y la edad fetal.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA DE LA GLÁNDULA MAMARIA La historia clínica deberá incluir: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
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Problema individual o de rebaño. Alimentación. Prácticas de manejo generales. Prácticas de manejo reproductivas. Historia reproductiva (la glándula está estrechamente relacionada con el aparato reproductor). Historia productiva: fase de la lactación, producción diaria, producción total, duración de la lactación, tipo de ordeño (manual o mecánico), higiene en el ordeño. Si el problema es reciente o persistente.
Al igual que con los demás sistemas, el examen físico general es de suma importancia para vericar el estado de salud general, la condición corporal y la conformación, que son algunos de los factores que inciden directamente sobre el estado de la glándula y su producción. La evaluación completa incluye: ❏
❏ ❏
Exploración física de la ubre por inspección y palpación. Examen macroscópico de la leche. Examen microscópico de la leche (bioquímico y microbiológico).
La glándula mamaria o ubre de la vaca está formada por 4 glándulas, o cuartos, y la de borregas y cabras, por dos glándulas, o medios. Cada glándula tiene un pezón o teta con un solo oricio. Algunos animales presentan pezones accesorios o supernumerarios (politelia) comunicados o no a la glándula, que generalmente son eliminados (con tijeras o bisturí) a edades muy tempranas para evitar problemas posteriores de mastitis o dicultad para el ordeño mecánico.
INSPECCIÓN La inspección debe hacerse desde todos los ángulos posibles para determinar su tamaño, simetría, integridad física, posición, forma y coloración.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
El aumento de tamaño es causado por procesos inamatorios (mastitis) o edema (siológico en el periparto o patológico), y presentarse en las hembras altas productoras o en la fase de mayor producción (pico de la lactación). La disminución del tamaño puede ser de origen siológico (etapa de no producción, o secado), o patológico (procesos crónicos que causan la brosis de la glándula). La integridad física incluye la presencia de lesiones, neoplasias, heridas y laceraciones en la supercie de la ubre y los pezones. La posición y forma se reere a la simetría entre los cuartos o medios y entre los pezones; el tamaño de los pezones, pezones supernumerarios, implantación de la glándula (ubres colgantes o pendulosas). Los cambios de coloración se producen por hiperemia local o cianosis en el cuerpo de la glándula y los pezones.
PALPACIÓN La palpación se inicia de la punta de los pezones hacia arriba. Con este método exploratorio se detectan la temperatura local, consistencia, textura y sensibilidad del órgano. La temperatura local suele aumentar en los procesos inamatorios agudos y subagudos, y disminuir en casos de mastitis gangrenosa. La consistencia y textura aporta datos sobre el desplazamiento normal de la piel que recubre la glándula, el cual se pierde cuando ésta se inama, o es excesivo si hay atroa. Normalmente la consistencia es rme; una ubre muy dura sugiere brosis glandular por procesos infecciosos o inamatorios crónicos. Debe buscarse la presencia de nódulos, abscesos y neoplasias. La palpación fácil de los linfonodos supramamarios o inguinales indica alguna alteración de la glándula, ya que estos linfonodos son muy difíciles de palpar en estado normal. Las reacciones dolorosas a la palpación son signos de inamación por infecciones o traumatismos.
EXAMEN MACROSCÓPICO DE LA LECHE Las características físicas de la leche aportan datos clínicos importantes sobre el funcionamiento de la glándula y la salud general del animal. Las más importantes son la cantidad, la coloración, el olor y la consistencia.
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❏
Cantidad: la disminución anormal de la producción se asocia a enfermedades sistémicas, estrés excesivo por mal manejo, problemas o deciencias nutricionales y alteraciones propias de la glándula, por ejemplo, la mastitis. Coloración: los cambios provienen de la alimentación; los medicamentos; enfermedades sistémicas, como leptospirosis, o intoxicaciones. Normalmente el calostro es más amarillento y espeso que la leche. Olor: esta característica se altera por la ingestión de alimentos aromáticos o medicamentos; putrefacción de la leche en la glándula; enfermedades sistémicas (cetosis); absorción de olores ambientales, leche salada (mastitis). Consistencia: puede aparecer serosa (mastitis agudas), cremosa, purulenta, o con grumos o coágulos, que son indicativos de procesos inamatorios de la glándula.
PRUEBAS INDIRECTAS DE DIAGNÓSTICO DE MASTITIS ❏
❏
Tazón de fondo oscuro o paño negro: con esta prueba se detectan grumos en los primeros chorros de leche, lo cual indica precozmente un proceso de mastitis. Se realiza en forma rutinaria antes de cada ordeño. Prueba de California (CMT, por sus siglas en in glés): se basa en la presencia del ADN de las células somáticas en la leche y cambios en el pH, con lo que se detectan células inamatorias (linfocitos, polimorfonucleares). El reactivo contiene un detergente aniónico (alkil-aril-sulfonato de sodio) que lisa a las células causando la liberación del ADN que se coagula y produce un material gelatinoso; contiene además un detector de pH (púrpura de bromocresol), con el cual las leches alcalinas se tornan en color morado y las leches muy ácidas cambian de café rojizo a amarillo. Esta prueba está muy bien estandarizada para las vacas, pero en las borregas y las cabras los criterios de interpretación de resultados no son tan estrictos, ya que la leche de estas especies normalmente contiene mayor cantidad de células somáticas que la de la vaca.
Existen otras pruebas de laboratorio como la de Wisconsin, la conductividad eléctrica, el conteo celular y el método fosomático, entre otras.
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
INTERPRETACIÓN DE LA PRUEBA DE CALIFORNIA PARA MASTITIS (CMT) EN LECHE DE VACAS, CABRAS Y BORREGAS VACAS Resultados
Células somáticas cel/mL
Interpretación
Negativo
0-200 000
Normal
Traza
150 000-500 000
Sospechoso
1+
400 000-1 500 000
Mastitis
2+
800 000-5 000 000
Mastitis
3+
Más de 5 000 000
Mastitis
CABRAS Y BORREGAS
❏
Resultados
Células somáticas cel/mL
Interpretación
Negativo
0-480 000
Normal
Traza
0-640 000
Normal
1+
240 000-1 440 000
Normal
2+
1 080 000-5 850 000
Mastitis
3+
Más de 10 000 000
Mastitis
EVALUACIÓN EXTERNA ❏
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Examen bacteriológico de la leche: la colección de la muestra debe hacerse lo más asépticamente posible y antes de aplicar cualquier tratamiento. Después de lavar y secar el pezón, se limpia perfectamente el oricio de la teta con algodón y alcohol etílico al 70% y se procede a descartar los primeros chorros de leche. En seguida se colectan alrededor de 10 mL de leche en un tubo o recipiente estériles. La muestra deberá mantenerse a 4 °C hasta su envío al laboratorio, o en congelación si pasan más de 24 horas.
La historia clínica deberá incluir: ❏ ❏
❏ ❏ ❏
Problema individual o de rebaño. Alimentación y suplementación. Prácticas de manejo general (vacunaciones, desparasitaciones, recorte de pezuñas) y reproductivo (monta natural, inseminación articial, número de sementales). Enfermedades anteriores y actuales. Retorno al estro de las hembras. Problemas durante la monta, comportamiento sexual, libido.
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
Durante el examen físico general es muy importante evaluar la condición y conformación corporales, así como del estado del sistema locomotor (pezuñas y articulaciones), principalmente de los miembros pélvicos, donde cualquier anomalía puede ocasionar una disminución en el desempeño sexual del macho, ya que cargan todo el peso durante la monta. La evaluación diagnóstica de los machos incluye la inspección y palpación de los órganos genitales externos e internos, y en forma complementaria, la evaluación del semen y la circunferencia escrotal.
EVALUACIÓN DIAGNÓSTICA DEL MACHO ❏
❏
❏
Escroto: se debe inspeccionar y palpar la piel del escroto para determinar su integridad, la presencia de lesiones, su contractibilidad, grosor, textura, y su libre movimiento sobre los testículos. El escroto de los toros, carneros y machos cabríos es penduloso. Testículos: se exploran al mismo tiempo para vericar la forma, tamaño, consistencia, simetría y sensibilidad. Es necesario precisar si están presentes ambos testículos en el escroto, o bien, si uno (monorquidismo) o los dos (criptorquidismo) están en el conducto inguinal o en la cavidad abdominal, o si el animal está castrado. Debe señalarse que en la mayoría de las especies existe una ligera asimetría testicular, pero cuando es muy marcada puede sospecharse de orquitis unilateral o bilateral, hernia escrotal (más frecuente en bovinos y ovinos que en caprinos, en los que rara vez se encuentra), hipoplasia o atroa testicular. Normalmente los testículos tienen una consistencia rme, la cual aumenta un poco, al igual que el tamaño, en las especies estacionales (sementales caprinos y ovinos) durante la época reproductiva. En los casos de orquitis aguda, el o los testículos estarán inamados, dolorosos y el animal presentará ebre, depresión e inmovili dad. En orquitis crónica las adhesiones brosas li mitan el movimiento del escroto y los testículos se atroan y brosan. Epidídimo: la cabeza del epidídimo se localiza en la cara dorsolateral del testículo, el cuerpo es caudomedial y la cola del epidídimo, en donde se almacena el semen antes de la eyaculación, es ventral. La cabeza y la cola del epidídimo deben palparse para evaluar el aumento de volumen, dolor, brosis y signos de inamación. Una de las causas frecuentes
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
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de epididimitis es la infección por Brucella sp, principalmente en carneros por B. ovis. Conductos deferentes: se localizan en el cuello del escroto y a la palpación se perciben como conductos rmes. Deben palparse simultáneamente para vericar su presencia. Pene y prepucio: el pene en los rumiantes es broelástico y tiene la característica exura sigmoidea o “S” peneana, la cual diculta la exploración del órgano en toda su extensión, excepto durante la erección y eyaculación. Puede examinarse brevemente en el momento en que el animal monta a una hembra o con vagina articial. Cuando se requiere una evaluación más cuidadosa del pene, hay que intentar el bloqueo del nervio pudendo, el bloqueo epidural o el uso de tranquilizantes. En chivos y carneros la exploración de la parte libre del pene se realiza de preferencia con el animal “sentado” sobre el tren posterior, se retrae el prepucio con la mano y se coloca una gasa alrededor del pene justo en la unión de la porción libre de éste y el prepucio, para evitar la retracción. El manejo debe hacerse con gentileza y no dejar el pene sujeto y expuesto durante mucho tiempo.
La evaluación se lleva a cabo por medio de la inspección y palpación del saco prepucial, tanto en su cara externa como interna, así como de la supercie peneana, en busca de lesiones (vesículas, pústulas, costras), traumatismos, deformaciones y otras alteraciones. Es muy importante la exploración del oricio prepucial para detectar alteraciones patológicas infecciosas, congénitas o mecánicas que causen balanopostitis (in-
150
amación del prepucio y pene); priapismo (erección frecuente); mosis (imposibilidad para extender el pene); paramosis (dicultad para retraer el pene dentro del prepucio); secreciones anormales; adherencias; brosis, y acumulación de detritus en el oricio prepucial, entre otros. En borregos y chivos debe revisarse la integridad y estado del proceso uretral. Cuando se sospeche la presencia de infecciones será necesario obtener muestras de exudado prepucial, con un hisopo o por medio de un lavado prepucial y el posterior envio de éste al laboratorio para su estudio.
EVALUACIÓN INTERNA La palpación rectal en toros (muy limitada en ovinos y caprinos) permite conocer el estado de varias estructuras, como los conductos deferentes, las vesículas seminales, glándulas bulbouretrales o de Cowper, la próstata y la porción pélvica de la uretra. Con este método se evalúa el tamaño, la forma, la consistencia y la sensibilidad dolorosa. En algunos casos de ovinos y caprinos puede realizarse la palpación digital, aunque el alcance de la exploración es pequeño. Para completar la exploración del aparato reproductor de los machos es recomendable evaluar el semen en cuanto a color, consistencia, volumen; motilidad, número, morfología y relación vivos:muertos de los espermatozoides; ausencia de células inamatorias; asimismo, conviene medir la circunferencia testicular, tanto para nes diagnósticos como para selección de sementales.
PARTE 1 - CAPÍTULO 2
❏
Metodología diagnóstica en bovinos, ovinos y caprinos
> Literatura consultada
❚
Arthur GH, Noakes DE, Pearson H. Reproducción y obstetricia en veterinaria (Teriogenología). 6ª ed. España: Interamericana: McGraw-Hill,1991.
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Blood DC, Henderson JA, Radostits OM. Veterinary medicine. 7a ed. Filadela: Lea & Febinger, 1986.
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Haibel GK. Use of ultrasonography in reproductive management of sheep and goat herds. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice 1990; 6 (3),.
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Kelly WR. Diagnóstico clínico veterinario. 6ª ed. México: CECSA, 1987.
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Pugh DG, Sheep & goat medicine. EUA: Saunders, 2002.
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Radostits OM, Gay CC, Blood DC, Hinchcli KW. Veterinary medicine, a textbook of the diseases of cattle, sheep, pigs, goats and horses. 9a ed. Sydney: WB Saunders, 2000.
❚
Smith MC, Sherman DM. Goat medicine. EUA: Lea & Febiger, 1994.
151
Examen físico general del equino
3
Examen físico general en el equino Gabriela López Navarro
INTRODUCCIÓN E general sirve para conocer la condición clínica en la que se encuentra un animal y determinar si presenta o no algún problema y dónde está localizado, para así establecer el plan diagnóstico, las posibilidades terapéuticas y la obtención de un pronóstico certero para el paciente. Antes de realizar el examen físico general se debe conocer la reseña del equino, la cual consta de información básica para llevar un control de los pacientes, además de que puede orientar tanto el examen físico general como el plan diagnóstico hacia ciertas áreas especícas, ya que existen factores que predisponen la presentación de ciertas enfermedades, como son la raza, edad, sexo y función zootécnica, entre otras.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 3
ELEMENTOS QUE COMPLEMENTAN EL EXAMEN FÍSICO GENERAL
DATOS GENERALES DE LA RESEÑA ❏ ❏ ❏ ❏
❏ ❏ ❏ ❏
Propietario Raza Capa o pelaje y señas particulares Fierro y número del criadero: esta indica el lugar de procedencia del animal, el país y el criadero. Edad Talla y peso Sexo Función zootécnica
ANAMNESIS Es parte fundamental del examen físico general, donde recaba información acerca del problema que el animal presenta: ¿cómo empezó? y ¿cuándo?, si éste se ha detectado en otros animales, los programas de medicina preventiva que se han aplicado, como calendarios de vacunación y desparasitación, alimentación, si está connado o sale a potrero, el material que se utiliza para la cama de la caballeriza, si ha viajado últimamente, si ha estado recibiendo algún tratamiento, entre otros.
EXAMEN FÍSICO GENERAL El examen físico general tiene ciertas limitantes: el equipo con el que se cuente, el temperamento del animal, si éste es de carácter fuerte o agresivo, pues hay que saber cuántas personas deben participar para contenerlo,, en vista de que no es recomendable utilizar métodos de contención química al realizar el examen físico general, porque puede dar signos clínicos falsos de depresión, letargo o ataxia; en cambio los métodos de sujeción física, como una manga de manejo, son los más convenientes.
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Examen físico general en el equino
MÉTODOS PARA EL EXAMEN FÍSICO GENERAL INSPECCIÓN La inspección sólo se reere a la exploración por medio de la vista, y por lo tanto no se utilizan métodos invasivos en el animal. Se valora el comportamiento que presenta, ya que puede ser indicativa de algún padecimiento: comatoso, estuporoso, excitado, deprimido, alerta y reponsivo, inquieto, con signos de dolor (se rasca, se revuelca, se mira los ancos), postura, tipo de respiración: la toracoabdominal es normal, o abdominal o torácica, ya que el tipo de respiración sugiere la presencia de dolor en alguna cavidad; por ejemplo, la respiración abdominal puede ser el resultado de dolor en la cavidad torácica (pleuritis) y la respiración torácica puede ocurrir por la presencia de dolor y distensión en la cavidad abdominal (de estómago, colon, peritonitis, etc.), También se debe evaluar la conformación física, la cual puede predisponer a ciertas enfermedades, sobre todo del aparato locomotor, así como la condición corporal: sistema muscular (el estado de carnes), estado del pelo y de la piel (cicatrices, presencia de ectoparásitos, heridas etc.), aumento del tamaño en alguna región, entre otras.
PALPACIÓN La palpación puede ser directa con los dedos o indirecta con algún instrumento; mediante ésta se puede evaluar la consistencia de la estructura que estamos palpando y orientar así el examen físico, por ejemplo: consistencia rme, dura como hueso, suave, ensematosa (si crepita debido a la presencia de gas en el interior), edematosa (cuando al aplicar presión la huella digital se queda marcada), elástica (cuando se presiona y la estructura regresa a su forma original, sin quedar marcado el dedo).
PERCUSIÓN La percusión consiste en hacer vibrar la parte del cuerpo que se explora, mediante golpes bruscos en las supercies corporales, con el dedo o algún instrumento especial para ello, de cuyo sonido resultante se ineren las condiciones físicas de las partes que se percuten. T ❏
Resonante: principalmente se produce al percutir estructuras que contienen aire (pulmón normal, senos paranasales).
F 1. Equino en una manga de contención. Recomendable para elaborar un examen físico general de forma adecuada.
157
Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
❏
Timpánico: es aquel que se produce en órganos que contienen gas bajo presión (ciego). Mate: es el emitido por órganos sólidos como el corazón, el músculo o el hígado. Las alteraciones del sonido detectadas en la percusión de estructuras anatómicas u órganos son indicativas de anormalidades, por ejemplo: la presencia de sonido mate al percutir los senos paranasales puede indicar sinusitis secundarias, quistes o masas en el interior de los mismos.
❏
❏
AUSCULTACIÓN Con la auscultación se perciben manifestaciones acústicas originadas en ciertos procesos siológicos vitales como la respiración, la circulación o la motilidad intestinal, de las cuales se ineren las condiciones o el estado de los órganos correspondientes. Existen dos técnicas para auscultar: la directa, la cual se realiza aplicando el oído sobre la pared del cuerpo, y la indirecta, en la que se utiliza el estetoscopio.
CONSTANTES FISIOLÓGICAS NORMALES
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❏
❏
EN EL EQUINO ❏ ❏
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Frecuencia cardiaca: 30-40 latidos por minuto Frecuencia respiratoria: 8-20 respiraciones por minuto Temperatura rectal: se evalúa mediante la introducción de un termómetro de mercurio o electrónico, en el esfínter anal, aplicando ligera presión sobre la pared del recto durante un minuto; el rango normal en el equino adulto es de 37.5 a 38.3 grados centígrados. Un aumento de la temperatura indica un proceso infeccioso o de anhidrosis, que es la incapacidad para sudar; una disminución es sugerente de deshidratación, entre otras afecciones.
OÍDO ❏
EXAMEN FÍSICO GENERAL POR APARATOS Y SISTEMAS EN EL EQUINO
CABEZA
❏
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Cabeza: posición, simetría, orientación respecto al piso y movilidad. Ojos y párpados: reejos oculares, posición del globo ocular, funcionamiento de la membrana nicti-
Oído externo: presencia de heridas, secreciones: purulenta (otitis externa), hemorrágica (traumatismos); garrapatas o cuerpos extraños.
PELO Y PIEL ❏
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tante o tercer párpado, coloración de la conjuntiva, presencia de inamación, descargas oculares, lesiones corneales u opacidad. Boca: habilidad para masticar y prensar el alimento, exceso de salivación, olor, posición y retracción de la lengua. Mucosas: color, grado de humedad y tiempo de rellenado capilar, lo que indica el grado de irrigación sanguínea periférica y, por lo tanto, la hidratación del animal; también brinda información acerca del funcionamiento de algunos órganos, como el corazón, el hígado y el riñón. Dientes: su forma y desgaste están relacionados con la masticación; una mala condición dentaria puede favorecer la aparición de problemas digestivos. La presencia de placas de sarro dental está asociada a pacientes con daño renal crónico. Ollares: aspecto de la mucosa nasal, olor, descargas anormales (infecciones o neoplasias), epistaxis (hematomas etmoidales, hemorragias pulmonares, neoplasias y traumatismos) y simetría. Senos paranasales: se deben percutir manteniendo al paciente con la boca abierta; el sonido normal es hueco, ya que se encuentran llenos de aire. Si a la percusión se escucha mate, sugiere la presencia de neoplasias, exudado, quistes o masas. Para conrmar el diagnóstico es necesario realizar una endoscopia o radiografías de cabeza.
❏
Pelo: tipo de pelo según la época del año; en invierno el pelo es largo y abundante, por el contrario, en verano es delgado y corto. La prevalencia del pelo de invierno durante todo el año sugiere hiperadrenocorticismo. La presencia de áreas alopésicas puede ser por dermatomicosis, mala condición nutricional y problemas tiroideos, entre otras. Piel: lesiones por traumatismos, heridas, dolor a la palpación, aumentos de tamaño (traumatismos, alergias, neoplasias, como sarcoides), cicatrices, etcétera.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
Para conocer más de la evaluación del pelo y la piel, referirse al capítulo de evaluación de la piel.
❏
Frecuencia cardiaca: 30-40 latidos por minuto, se evalúa el ritmo y se auscultan las válvulas cardiacas del lado izquierdo: pulmonar, aórtica y mitral, y del lado derecho, la tricúspide. Pulso: se evalúa mediante la palpación en arterias superciales, como la submandibular, carótida y transversa facial, principalmente, y se mide la frecuencia, ritmo y carácter; la frecuencia del pulso debe ser igual a la frecuencia cardiaca, el ritmo, regular y el carácter, fuerte y lleno. El pulso indica el nivel de presión arterial y el grado de hidratación del caballo.
APARATO RESPIRATORIO ❏
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Patrón de la respiración: se evalúa mediante la inspección y puede ser tóracoabdominal, la cual se presenta de forma normal; torácica, que generalmente se presenta cuando existe dolor en la región del abdomen, y la respiración abdominal, que es un signo de dolor en la región del tórax (pleuritis). Frecuencia respiratoria: de 8 a 20 respiraciones por minuto. Campos pulmonares: se evalúa la presencia de sonidos anormales al paso del aire mediante la auscultación.
Examen físico general en el equino
vo de algún problema isquémico gastrointestinal o de deshidratación. El aumento en la cantidad de sonidos intestinales (borgorismos) se presenta por cambios en la dieta o por un problema infeccioso.
APARATO CIRCULATORIO ❏
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Para conocer más de la evaluación del aparato gastrointestinal, referirse al capítulo que trata del aparato gastrointestinal.
SISTEMA HEMATOPOYÉTICO /ENDOCRINO ❏
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Linfonodos: se evalúan por palpación. Los únicos linfonodos palpables de forma normal en el equino son los submandibulares, debido a que están localizados supercialmente, en posición medial y ventral con respecto a la rama de la mandíbula. Si se logran palpar otros linfonodos, como los cervicales o los poplíteos, quiere decir que su tamaño está aumentado (linfadenopatía). Glándula tiroides: aumento de volumen (neoplasias o hipertiroidismo). Glándula parótida: aumento de tamaño, dolor a la palpación (infecciones o metástasis de neoplasias, como melanomas).
Para conocer más de la evaluación del aparato respiratorio, referirse al capítulo de evaluación del aparato respiratorio.
APARATO GASTROINTESTINAL ❏
Sonidos intestinales por los ancos dorsal y ven-
tral: se evalúan por medio de la auscultación y debe escucharse el paso de gas, líquido o ambos en el lapso de un minuto. Los sonidos intestinales se pueden catalogar como normales o presentes, aumentados, disminuidos y ausentes. La disminución o ausencia de motilidad intestinal es indicati-
F 2. Área de palpación de la glándula tiroides.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
GENITALES EN MACHOS ❏
❏
Pene y prepucio: aumento de tamaño y lesiones (las más comunes son las neoplasias, como carcinomas de células escamosas, y la parasitosis externa, como habronemiasis). Testículos: aumento de tamaño (hernias escrotales, hidrocele) y edema. Para evaluar si existe dolor, los testículos se deben palpar gentilmente, ya que si se presiona con fuerza podemos tener falsos positivos.
SISTEMA MUSCULOESQUELÉTICO ❏
F 3. Área de palpación de la glándula parótida
APARATO REPRODUCTOR EN HEMBRAS ❏
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Conformación perineal: es de gran importancia para la función reproductora en las hembras, ya que una mala alineación del ano respecto a la vulva y un desplazamiento craneal de éste pueden favorecer la vaginitis y la metritis y, por lo tanto, un bajo índice de fertilidad. Labios/vulva: cicatrices por partos previos o por traumatismos, secreciones anormales y hemorragias.
GLÁNDULA MAMARIA ❏
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Implantación de tetas y glándula mamaria; aumento de volumen, secreciones anormales, dolor a la palpación.
❏
Simetría: se evalúa la simetría de los músculos, la presencia de atroas, el dolor a la palpación, calcicaciones, etcétera. La simetría en huesos y en tendones y ligamentos también es importante para descartar algún padecimiento. Conformación: se revisa el tipo y conformación de los aplomos, ya que pueden predisponer a cierto tipo de lesiones, tanto en articulaciones, como en huesos y tejidos blandos.
Para conocer más de la evaluación del aparato musculoesquelético, referirse al capítulo de evaluación del aparato locomotor. El examen físico general no permite la obtención de un diagnóstico y pronóstico certeros, por lo que se tiene que complementar con otros exámenes, como las pruebas especícas de laboratorio, radiología, ultrasonido y endoscopia, entre otros.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
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Examen físico general en el equino
> Literatura consultada
❚
Blood DC. Manual de medicina veterinaria. 2ª ed. Madrid: McGraw-Hill/Interamericana, 2002.
❚
Colahan PT, Mayhew IG, Merrit AM, Moore NJ. Equine medicine and surgery. 5a ed. St. Louis, Mo.: Mosby, 1999.
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Guyton, H. Medical physiology. 10a ed. Filadela: WB Saunders, 2000.
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Marek J, Mocsy J. Tratado de diagnóstico clínico de las enfermedades internas de los animales domésticos. 4ª ed. España: Labor, 1973.
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Reed SM, Bayly WM. Equine internal medicine. Filadela: WB Saunders, 1998.
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Rose RJ, Hodgeson DR. Manual clínico para equinos. México: McGraw-Hill/ Interamericana, 1995.
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Smith B. Large animal internal medicine. 3a ed. St. Louis, Mo.: Mosby, 2001.
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Spiers VC. Clinical examination of horses. Filadela: WB Saunders, 1997.
161
Evaluación clínica del aparato locomotor de los equinos Alejandro Rodríguez Monterde Gabriela López Navarro
INTRODUCCIÓN L permanecido como una especie doméstica debido a su sistema locomotor. Se han utilizado con nes militares, de transporte y deportivos, por ello, para que realicen su función óptimamente es imperativo mantener su aparato locomotor adecuadamente sano, por lo cual es necesario detectar sus claudicaciones a tiempo y con precisión. Sin duda, uno de los puntos más complicados en la evaluación de una claudicación es determinar cuál es el miembro afectado o más afectado. Esto depende en buena parte del buen ojo del clínico, así como de la experiencia y de las bases teóricas que se tengan. Se ha avanzado mucho en los métodos de imagenología para el diagnóstico de las claudicaciones, pero son pocos los logros en la práctica de la detección de una claudicación y todavía se considera como una más de las ciencias-artes en los caballos. En la actualidad, esta rama de la especialidad en equinos es considerada como una actividad de detectives, y la manera de trabajar las claudicaciones es muy similar a la de ellos; es decir, basada en evidencias y pruebas de acierto y error. Aunque ahora se cuenta con más métodos visuales para evaluar cada miembro en movimiento, éstos son básicos y hasta cierto punto empíricos y subjetivos; entre éstos está comprendida la observación del movimiento de la cabeza y el cuello, movimiento de grupa y cadera, grado de exión de cada articulación, longitud de la fase anterior y de la fase posterior de la marcha, apoyo del casco, qué tanto baja el menudillo cuando está apoyando, variedad de pisos y movimiento de la cruz.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 3
SECUENCIA PROPEDÉUTICA DEL EXAMEN
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Examen físico general en el equino
INSPECCIÓN EN ESTÁTICA
Se observa atentamente al equino desde todos los ángulos, primero a cierta distancia, y después de cerca. El primer paso en la evaluación clínica del aparato lo- A distancia se evalúa el estado físico, el tipo de concomotor consiste en realizar una anamnesis sobre el formación y los aplomos; además, es importante obpaciente lo más completa posible, ya que muchos de servar la actitud del caballo: por ejemplo, exionar o los datos que se obtendrán pueden desempeñar un apuntar continuamente uno de los miembros es un papel importante en el diagnóstico de las afecciones signo inequívoco de dolor. De cerca, se examina en musculoesqueléticas. La anamnesis y la historia clínica detalle cada miembro, comparándolo con su opuesto, se realizan con base en preguntas concretas hechas a evaluando la forma, integridad y condición de los caslas personas directamente relacionadas con el equino cos, determinando si existe engrosamiento de las arti(propietario, jinete, encargado, herrero), y debe in- culaciones y tendones, inamación o atroa muscular, cluir, como mínimo, la siguiente información: heridas, u otros. ❏ Edad, sexo, raza y función zootécnica del animal. ❏ Duración de la claudicación, para determinar si se trata de un padecimiento agudo o crónico. ❏ Patrón de la claudicación (si mejora o empeora con el ejercicio, si es continua o intermitente, si está relacionada con el tipo de piso sobre el que se ejercita, si hay algún tipo de actividad o movimiento en particular que la hagan más notoria, si tropieza durante el trabajo, etc.). ❏ Causa posible o sospechada de la claudicación. ❏ Historia de otras afecciones musculoesqueléticas o sistémicas. F 1. Inspección en estática. ❏ Ambiente en el que vive y trabaja el animal (húmedo o seco; pisos duros o blandos, etc.). Las lesiones que se ven más comúnmente en los ❏ Tratamientos aplicados y respuesta a los mismos (la administración reciente de anestésicos locales, cor- cascos son las asimetrías, formaciones anilladas, cuarticoesteroides, ácido hialurónico, o antiinamato- tos, contracción o laceración de los talones, e inamarios no esteroidales sistémicos pueden enmascarar ción. La asimetría en el tamaño de los cascos son el signos, alterar la severidad del problema e inuir de resultado de traumatismos, de una contracción (como consecuencia de una disminución en el apoyo del forma errónea el tratamiento y el pronóstico). miembro), de un defecto en el desarrollo, o bien, tie❏ Fecha del último herraje, alteraciones del casco que se hubieran observado durante el mismo, y si hubo nen origen congénito. Generalmente, el miembro con alguna relación entre el herraje y las primeras mani- el casco más pequeño suele ser el afectado. La formación de anillos puede ser unilateral (trauma) o bilateral festaciones de dolor. (laminitis, intoxicación por selenio, o alteraciones sis❏ Además, deben hacerse las preguntas especícas para cada una de las alteraciones de las cuales se témicas), pero no siempre está asociada con la claudicación. La contracción de los talones no es en sí misma sospeche. una enfermedad, sino una alteración secundaria a otra Una vez establecida la anamnesis y antes de pro- afección principal, la cual está provocando que dismiceder al examen físico de los miembros es recomenda- nuya el apoyo sobre el miembro, con la consecuente ble realizar una evaluación clínica general del animal, contracción de los talones. El grado de contracción se con el n de descartar procesos patológicos en otros puede evaluar midiendo con los dedos el espacio ensistemas del organismo que pudieran estar relaciona- tre ambos talones. También debe observarse si existe dos con la claudicación, o haberla causado. asimetría en el tamaño de estos, la cual, generalmente,
ANAMNESIS
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
está asociada con defectos en el herraje. Los cuartos en la pared del casco pueden o no estar asociados con la claudicación, pero deben evaluarse con la pinza para cascos y mediante bloqueos nerviosos. La inamación del área de la corona resulta de laceraciones superciales, traumatismos constantes durante el ejercicio, queratomas, dermatitis, o bien, es provocada por lesiones en los tejidos más profundos (como en el caso del hormiguillo y del gabarro cartilaginoso).
INSPECCIÓN EN DINÁMICA La inspección en dinámica consiste en observar al animal en movimiento desde diferentes ángulos, con el n de detectar cualquier irregularidad en la locomoción. Que un animal claudique es signo indicativo de una alteración estructural o funcional en uno o más miembros. Para examinar al equino, es importante que la persona que lo maneje lo sujete correctamente, permitiéndole cierta libertad de movimiento de la cabeza, pero sin que ésta pierda su alineación con respecto al resto del cuerpo. Lo ideal es dejar aproximadamente un metro de ronzal entre el manejador y el animal. También es posible evaluar al caballo montado; un jinete experimentado puede ser de gran ayuda al aportar información que el examinador no puede apreciar desde su lugar de observación.
F 2. Inspección en dinámica.
Es importante prestar atención al caballo cuando sale de la caballeriza, ya que algunas alteraciones se maniestan con mayor severidad en ese momento. Por ejemplo, el enganche rotuliano es a menudo más evidente durante los primeros pasos, y se va atenuando y desaparece al ir progresando el ejercicio.
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Un factor muy relevante es la selección de la supercie sobre la cual se desplazará el animal. Generalmente se preeren las supercies duras, ya que en éstas la conmoción y, por lo tanto, el impacto sobre los miembros es mayor, lo cual acentúa la claudicación de forma que resulta más fácil de visualizar y, asimismo, de escuchar, ya que el miembro afectado casi siempre es apoyado en el suelo con menos fuerza que los miembros sanos. Se recomienda ejercitar sobre suelos de grava a los pacientes en los que se sospecha de alguna afección del casco, ya que en estos se produce mayor presión sobre la región de la suela y de la ranilla que en los pisos lisos y duros, o los blandos. La secuencia en la cual se lleva a cabo la inspección en dinámica es la siguiente (llevando al caballo primero sobre pisos duros y después sobre pisos blandos): ❏
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Al paso en línea recta (observándolo por detrás, de frente y lateralmente). Al trote en línea recta (observándolo por detrás, de frente y lateralmente). Al trote en círculos (a mano izquierda y derecha, abriendo y cerrando el círculo). Al galope en círculos (a mano izquierda y derecha, abriendo y cerrando el círculo).
En los dos primeros casos (al paso y al trote en línea recta), cuando el caballo se aleja se observan los miembros pélvicos, y cuando se acerca, los torácicos. Al trote y al galope en círculos, cuando el animal va a la mano derecha, se observan los miembros torácico y pélvico derecho, y cuando va a la mano izquierda, el torácico y pélvico izquierdos. Las claudicaciones de miembro torácico se observan mejor situándose de frente y de lado, y las de miembro pélvico, por atrás y de lado. En general, las claudicaciones se hacen más notorias al trote, ya que durante éste sólo dos miembros son apoyados simultáneamente en el suelo, lo cual aumenta la presión sobre el miembro afectado. Algunos de los aspectos que deben tenerse en cuenta al observar al caballo al paso en línea recta son los siguientes: C ( ): ❏
¿Cómo entran en contacto con el suelo los cascos de los miembros pélvicos? El pie puede ser apoyado de forma plana y homogénea; o bien, el caballo
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
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puede apoyar primero las puntas, los talones o el aspecto medial o lateral del casco. ¿Dónde aterriza el casco de cada miembro pélvico con respecto a un punto determinado del caballo, como por ejemplo, la cadera? El casco puede entrar en contacto con el suelo en una posición lateral, medial o directamente por debajo del punto de referencia elegido. ¿Es homogénea la altura de los arcos que realizan en el aire los miembros posteriores durante el movimiento? ¿Existe alguna desviación a partir de las líneas imaginarias paralelas de apoyo entre el miembro pélvico izquierdo y el derecho? ¿Descienden los corvejones derecho e izquierdo en la misma medida al apoyar el casco del respectivo miembro en el suelo? Usando la base de la cola como un punto de referencia visual, ¿oscila la grupa de forma equiparable, hacia la derecha y hacia la izquierda a partir de una línea imaginaria trazada desde la base de la cola hasta el piso? Con el caballo alejándose del observador, ¿Existe alguna diferencia en el movimiento de ambos miembros torácicos, entre sí y con respecto a la línea media del caballo?
C ( ): ❏
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¿Cómo entran en contacto con el suelo los cascos de los miembros torácicos? El pie puede ser apoyado de manera plana y homogénea, o bien, el caballo puede apoyar primero las puntas, los talones o el aspecto medial o lateral del casco. ¿Los cascos de los miembros torácicos entran en contacto con el suelo al nivel de la punta del hombro, o se desvían medial o lateralmente con respecto a ésta? ¿Es homogénea la altura de los arcos que realizan en el aire los miembros torácicos durante el movimiento? ¿Los miembros torácicos derecho e izquierdo avanzan oscilando en una dirección paralela, medial o lateral con respecto al sentido en el que el caballo se está desplazando? ¿Las pinzas de los cascos de los miembros anteriores apuntan en dirección al sentido del desplaza-
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Examen físico general en el equino
miento del caballo cuando efectúa el movimiento hacia adelante de cada miembro? Al observar los miembros pélvicos del caballo mientras éste se acerca al examinador, ¿existe alguna diferencia en el movimiento hacia adelante de ambos miembros pélvicos, entre sí y con respecto a la línea media del caballo?
Cuando el caballo claudica de un miembro torácico, baja la cabeza cuando apoya en el suelo el miembro sano y la eleva cuando apoya el miembro afectado, en un intento por aliviar la presión sobre el mismo al desplazar el peso corporal hacia los miembros pélvico. Cuando la claudicación es en un pélvico, existe una asimetría en la elevación de la grupa; esta elevación corresponde a la contracción de los glúteos para sostener el peso de los miembros en el avance, y en un caballo sano debe ser simétrica, lo cual indica que ambas patas están siendo elevadas a la misma altura. Cuando existe una lesión en alguna región del miembro pélvico, el animal trata de evitar el dolor reduciendo la contracción de los glúteos, con una consecuente disminución en el tiempo y altura de la elevación. Esto ocasiona tres situaciones diferentes: ❏
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Disminución, tanto en la altura como del tiempo de elevación de los glúteos, lo cual es común en problemas que involucran las estructuras proximales a la babilla y particularmente la cadera. Elevación simétrica en cuanto a la altura, pero de duración menor en el lado afectado. Aumento en la contracción glútea, en el cual el miembro afectado es llevado más alto que el sano, pero durante un tiempo menor.
Es importante no confundir una claudicación del miembro pélvico, con una del miembro torácico del mismo lado. Esto puede suceder si el animal está lesionado, por ejemplo, del miembro pélvico izquierdo, ya que va a tender a apoyarse más rmemente sobre el miembro torácico del lado opuesto (el derecho); en consecuencia, podría parecer que el apoyo sobre el miembro torácico izquierdo estuviera disminuido y que la claudicación proviniera de éste. Existe una situación opuesta a la anterior, que también se presta a confusiones: cuando un animal, lesionado de un miembro pélvico, aparenta tener una claudicación del miembro torácico opuesto. Esto usualmente ocurre cuando al trote hay poco o ningún
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
movimiento de la cabeza hacia abajo. Si, por ejemplo, el miembro afectado es el pélvico izquierdo, la diagonal sana (pélvico derecho y torácico izquierdo) va a tocar el suelo con tanta fuerza, que parecerá que el animal está protegiendo el miembro torácico derecho. Estos errores suelen producirse al observar al animal de lado, pero al examinarlo desde atrás se podrá notar una elevación asimétrica de los glúteos, que es característica de las claudicaciones del miembro pélvico.
CLAUDICACIÓN La claudicación no es una enfermedad, es sólo un signo de algún trastorno del sistema locomotor; puede ser denida como una alteración de la marcha normal, debido a un desorden estructural o funcional en el sistema locomotor. Por esto, el análisis y descripción del patrón de locomoción es vital en cada evaluación de las claudicaciones, cuya meta es localizar la causa, y así poder realizar un diagnóstico lo sucientemente especíco para elegir la terapia adecuada.
TIPOS DE CLAUDICACIÓN Las claudicaciones no se maniestan siempre de igual forma, algunas son visibles durante la fase de elevación del miembro afectado, y otras se producen durante el apoyo. Con base en esto se han clasicado en los siguientes cuatro tipos: ❏
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Grado 1/5:
Claudicación no aparente, difícil de observar bajo cualquier circunstancia.
Grado 2/5:
Difícil de observar al paso o al trote en línea recta; aparente bajo ciertas circunstancias (cuando trota en círculos o sobre suelos duros).
Grado 3/5:
Claudicación al trote, bajo cualquier circunstancia.
Grado 4/5:
Claudicación evidente, con marcado movimiento de la cabeza y acortamiento del tranco.
Grado 5/5:
Apoyo mínimo sobre el miembro afectado.
PALPACIÓN DINÁMICA Una vez realizada la inspección, la cual permite la identicación del miembro afectado, y en ocasiones, el hacerse una idea de la posible localización y naturaleza de la lesión, se procede al examen de los miembros mediante la palpación directa (empleando las manos) e indirecta (mediante las pinzas para casco). Ésta también debe llevarse a cabo de una forma ordenada, comenzando por las regiones distales del miembro torácico, manipulándolas en orden ascendente, y repitiendo el procedimiento con el miembro pélvico.
Claudicación de apoyo: es la que se maniesta cuando el animal apoya el miembro afectado en el suelo. Claudicación de elevación: se observa cuando el miembro afectado está en movimiento. Claudicación mixta: es observable, tanto cuando el miembro afectado es apoyado en el suelo, como cuando se encuentra en movimiento. Claudicación mecánica: el dolor en un miembro provoca una distribución desigual del peso corporal sobre los demás, lo cual puede inducir una claudicación en otro miembro previamente sano.
CLASIFICACIÓN DE LAS CLAUDICACIONES Una vez identicado el(los) miembro(s) involucrado(s), y con base en la secuencia establecida anteriormente para la inspección visual en dinámica, es posible clasicar la claudicación por su severidad, en los siguientes grados (según la AAEP):
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F 3. Pinzado de cascos.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
Para evaluar la integridad y funcionalidad de las articulaciones, existen diferentes pruebas de exión e hiperextensión, que varían dependiendo de la región que se trate, pero cuyo principio consiste en sostener la articulación, ya sea exionada o hiperextendida, durante un lapso que varía entre 60 y 90 segundos, después del cual se hace que el animal se aleje trotando en línea recta, para observar si aumenta o no la claudicación. Se considera que una prueba de exión es positiva cuando la claudicación se acentúa en 70% con respecto al resultado que se obtuvo anteriormente, durante la inspección en dinámica. Estas pruebas no son exclusivas para articulaciones; también es posible emplearlas en otras regiones, exionando, extendiendo, aplicando la pinza para cascos o colocando objetos para que ejerzan presión sobre el área.
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Examen físico general en el equino
F 6. Flexión de dedo en el miembro torácico.
PRUEBAS DE FLEXIÓN
F 7. Flexión de menudillo.
F 4. Flexión de codo.
F 8. Flexión de corvejón. F 5. Flexión de carpo.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 9. Flexión de dedo en el miembro pélvico.
F 12. Flexión de cadera.
PRUEBAS DE HIPEREXTENSIÓN
F 10. Flexión de hombro. F 13 14. Prueba de hiperextensión para hueso navicular o sesamoideo distal.
PROCEDIMIENTOS DIAGNÓSTICOS AUXILIARES ANESTESIA LOCAL
F 11. Flexión de babilla.
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Se utiliza anestesia local con nes diagnósticos, ya sea mediante bloqueos nerviosos (inltración perineural), en anillo, o por inltración directa de la región sensible e intraarticular. La inltración perineural y los bloqueos en anillo se hacen para localizar el origen del dolor que está provocando la claudicación, por tanto, deben realizarse sistemáticamente, comenzando por las regiones más distales y progresando de forma ascendente hacia las proximales. La inltración directa y la intraarticular se emplean para conrmar o descartar la participación de estructuras especícas en la claudicación.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
Es recomendable usar la dosis mínima necesaria, con el n de evitar irritación excesiva de los tejidos por el anestésico local. Para prevenir infecciones durante el proceso, deben adoptarse las siguientes medidas antisépticas, obligadas particularmente en el caso de inltraciones intraarticulares: a) rasurar el área; b) embrocarla con yodo orgánico alternado con alcohol; c) emplear jeringas y agujas estériles; d) usar guantes estériles, y e) tomar el anestésico local de un frasco nuevo. Además, es importante emplear un método de sujeción adecuado, para evitar accidentes o que falle la inltración. Para que el bloqueo sea llevado a cabo de forma exitosa es indispensable tener conocimientos anatómicos. Al realizar un bloqueo perineural, todas las estructuras profundas distales al sitio de la inltración son anestesiadas, por lo tanto, entre más distal se realice la inltración, más especíco será el bloqueo. Esto falla únicamente en los casos en que exista inervación aberrante, por ejemplo, cuando hay más de un nervio.
RADIOLOGÍA LOS ESTUDIOS RADIOGRÁFICOS SON ÚTILES PARA: ❏
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Conrmar, desechar o modicar un diagnóstico presuntivo. Orientar el tratamiento. Tener información adicional para establecer un pronóstico acertado. Contar con un registro permanente que puede usarse como referencia para estudios posteriores. Dar seguimiento a la evolución del caso. Determinar si han cerrado las placas de crecimiento, con el n de saber si el animal se encuentra ya físicamente maduro para empezar a trabajar. Detectar lesiones que de otra manera no se sospecharían. Visualizar la evolución de las lesiones y reevaluar su cicatrización. Realizar los exámenes precompra. Disponer de una evidencia en casos legales.
ULTRASONOGRAFÍA La ultrasonografía constituye un excelente método diagnóstico no invasivo para la evaluación de los tejidos blandos. Esta técnica está basada en la reexión
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Examen físico general en el equino
de ondas ultrasónicas en la interfase de los tejidos blandos; la reexión es captada por un cristal piezoeléctrico, transformada en energía eléctrica y proyectada en un monitor.
UTILIDAD DE LA ULTRASONOGRAFÍA Anteriormente, el diagnóstico, tratamiento y pronóstico de las afecciones de los tejidos blandos que conforman los miembros de los equinos (músculos, tendones y ligamentos) se realizaba únicamente por palpación y observación, lo cual a menudo conducía al clínico a tomar decisiones arbitrarias, basadas en información subjetiva. En la actualidad, al combinar las técnicas de inspección y palpación con el uso de la ultrasonografía, se determina objetivamente el tamaño, la forma y la naturaleza de las lesiones que se producen en estas estructuras.
ARTROSCOPIA La inspección de las articulaciones mediante el uso del artroscopio hace posible la evaluación de los tejidos no óseos de la articulación, como la membrana sinovial y sus vellosidades, el cartílago articular, los ligamentos intraarticulares y los meniscos. La artroscopia también resulta de enorme utilidad en las intervenciones quirúrgicas intraarticulares, y es el tratamiento de elección para la remoción de fragmentos osteocondrales causados por traumatismos o procesos degenerativos, como la osteocondritis disecans.
UTILIDAD DE LA ARTROSCOPIA La efectividad de la artroscopia depende de qué tan accesible sea la visualización de una articulación. Es posible llevar a cabo un examen completo de todos los aspectos de las articulaciones femoropatelar y escapulohumeral del carpo, mientras que en la tibiotarsal y metatarso falángica existen algunas supercies que no pueden ser alcanzadas. Las estructuras articulares de mayor interés durante el examen artroscópico son la membrana sinovial y el cartílago articular, ya que son las estructuras más difíciles de evaluar con otros procedimientos diagnósticos. Las vellosidades sinoviales se aprecian mejor con este procedimiento, ya que quedan suspendidas en el uido, de manera que se pueden distinguir con nitidez. La magnicación que produce el artroscopio también contribuye a aumentar la denición.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
El principal uso diagnóstico de la artroscopia en el equino es la evaluación del cartílago articular, que en los estudios radiológicos resulta equívoca, o bien, es inexistente; en cambio, mediante el examen artroscópico es posible reconocer procesos patológicos tales como la brilación o erosión del cartílago articular.
GAMMAGRAFÍA La gammagrafía o scentigrafía es un método diagnóstico de gran sensibilidad para la detección temprana de las alteraciones óseas. Aun lesiones óseas no perceptibles radiográcamente pueden ser identicadas por scentigrafía, de 12 a 24 horas después de ocurridas; además, representa una herramienta valiosa para evaluar de forma objetiva y predecible la cicatrización de fracturas óseas. El uso clínico de la gammagrafía está basado en el conocimiento de que el hueso no es el material inerte que se pensaba antes, sino un tejido dinámico que cumple con dos funciones esenciales: la de soporte mecánico y de protección, así como de la regulación de algunos electrolitos sanguíneos básicos. Una característica distintiva de este tejido es que la matriz ósea está impregnada de minerales, que se van incorporando a ésta a intervalos regulares, inicialmente precipitándose como sustancia amorfa, y después organizándose como cristales de hidroxiapatita. La gran cantidad de estos cristales y su reducido tamaño provee una inmensa área de supercie disponible para el depósito y movilización de los componentes minerales.
UTILIDAD DE LA GAMMAGRAFÍA La aplicación de la medicina nuclear en la clínica de equinos ha sido utilizada para el diagnóstico de las siguientes afecciones: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
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Claudicaciones crónicas. Fracturas ocultas o por stress. Osteoartrosis temprana. Osteocondrosis. Osteomielitis. Entesiopatías (inamación de las inserciones tendinosas o ligamentosas al hueso). Diferenciación entre periostits y fracturas corticales. Cambios vasculares y óseos asociados al síndrome navicular.
TERMOGRAFÍA La termografía es un procedimiento diagnóstico no invasivo que permite al clínico detectar y cuanticar los cambios en la temperatura de la supercie de la piel, mediante un dispositivo que transforma las radiaciones infrarrojas liberadas por la piel, en impulsos eléctricos, que pueden ser visualizados como imágenes en blanco y negro o a color en una pantalla. Estas imágenes gracan fotográcamente la temperatura corporal, y reciben el nombre de termograma. En el espectro en blanco y negro, el blanco indica aumento en la radiación infrarroja, mientras que la imagen a colores es utilizada para cuanticar la radiación infrarroja emitida por la supercie del cuerpo. La termografía permite la identicación temprana de procesos inamatorios que involucren tejidos blandos y huesos; puede realizarse en cualquier región del cuerpo, pero en la clínica de equinos su uso más valioso ha sido en el diagnóstico de afecciones que producen claudicación, tales como síndrome navicular, abscesos subcórneos, tendinitis, osteoartritis, artritis, y síndrome de Horner. Las tendinitis pueden detectarse de una a dos semanas antes de que se maniesten clínicamente. Las vistas lateral, medial, dorsal y palmar son las más comunes, y deben ser comparadas con vistas análogas en el miembro contralateral.
TERMÓMETRO INFRARROJO PORTÁTIL Es un detector de radiación infrarroja portátil, que permite al clínico obtener la temperatura corporal supercial del paciente, convirtiendo la energía de la radiación infrarroja en señales eléctricas que son amplicadas y registradas en un medidor de temperatura.
UTILIDAD DEL TERMÓMETRO INFRARROJO PORTÁTIL ❏
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Identicación temprana de procesos inamatorios en tejidos blandos y huesos. Detección temprana de alteraciones musculoesqueléticas en caballos atletas, de forma que el tratamiento, el descanso y el programa de entrenamiento puedan llevarse a cabo antes de que ocurra el colapso funcional. Provee un indicio cuantitativo de la forma en que el animal está respondiendo al tratamiento.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
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Permite monitorear la evolución del curso posoperatorio.
Presenta la misma utilidad que la termografía, con las ventajas adicionales de que tiene un costo menor, ya que por su tamaño y simplicidad, resulta más práctico y puede ser empleado en cualquier lugar.
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Examen físico general en el equino
VENTAJAS DE LA CINEMATOGRAFÍA Esta técnica es un excelente auxiliar en el examen del aparato locomotor; además, en la actualidad, el desarrollo del análisis de películas por computadora permite una obtención rápida y precisa de los datos del patrón de locomoción de un caballo.
DESVENTAJAS
CINEMATOGRAFÍA La cinematografía, por medio de una cámara de alta velocidad, resulta útil como método diagnóstico de las claudicaciones. Consiste en lmar al caballo en movimiento, con la misma secuencia que en la inspección en dinámica (al paso y al trote en línea recta, y al galope en círculos a ambas manos; cuando se aleja, cuando se acerca, y por ambos lados), y después observar atentamente la película, en busca de alguna anormalidad en la locomoción, con la ventaja de que si se tiene alguna duda, es posible repetirla y pasarla en cámara lenta para evaluar mejor el movimiento de cada miembro. Un método más sosticado en la cinematografía consiste en poner marcas anatómicas en el miembro, y ejercitar al caballo sobre una supercie plana, en una distancia previamente establecida, y colocar una cámara de alta velocidad, en posición perpendicular al trayecto del caballo. Además, puede usarse una cámara adicional al inicio y otra al nal del recorrido, con el n de obtener una visión tridimensional del mismo. Durante la lmación, se corre la película a una veloci dad cinco veces mayor que la normal de forma que, al observarla, el caballo pueda ser visualizado moviéndose a una velocidad 5 veces menor, lo cual facilita considerablemente el análisis del movimiento. Las marcas anatómicas sirven como referencia y permiten evaluar, para cada miembro: amplitud del paso, arco del mismo, grado de elevación y aceleración, así como calcular la velocidad linear y la angular.
Las desventajas que presenta esta técnica son el tiempo que toma el procesamiento de la película, y el hecho de que las marcas proximales en los miembros tienden a desplazarse fácilmente con el movimiento, y, por lo tanto, no resultan tan ables como las distales.
DINAMOGRAFÍA La dinamografía consiste en el uso de transductores de fuerza para medir la intensidad y dirección de la fuerza ejercida por el casco al ser apoyado sobre el suelo. Los transductores más utilizados en la actualidad están formados por placas que se colocan sobre el piso. El peso del caballo al apoyar el casco sobre el transductor provoca una deformación en el mismo, la cual es convertida a medidas de tensión. Esta última es registrada como el porcentaje de peso corporal en dirección vertical, craneal, caudal, horizontal, lateral y medial; las fuerzas verticales resultan de la fase de apoyo del peso corporal sobre el miembro; las fuerzas laterales y mediales, del impacto del casco, el movimiento rotacional del miembro y el sentido del desplazamiento. La ventaja de este procedimiento es que hace posible registrar las fuerzas de torsión durante la locomoción; la desventaja es que los caballos a menudo se resisten a pisar los transductores, aunque estos se encuentren escondidos.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
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❚
Colahan PT, Mayhew IG, Merrit AM, Moore JN. Equine medicine and surgery. 5a ed. Baltimore: Mosby, 1999.
❚
Rose RF, Hodgson DR. Manual of equine practice. 2a ed. EUA: W.B. Saunders, 2000.
❚
Ross MW, Dyson SJ. Diagosis and management of lameness in the horse. St. Louis, Mo.: WB Saunders, 2003.
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Stashak TS. Claudicaciones en el caballo. 5ª ed. Argentina: Intermédica, 2004.
❚
White NA, Moore JN. Current techniques in equine surgery and lameness. 2ª ed. Filadela: WB Saunders, 1998.
Metodología diagnóstica del aparato digestivo en los équidos Alejandro Sigler Rangel Alejandro Rodríguez Monterde
INTRODUCCIÓN E de cualquier problema relacionado con la salud del equino, es necesario que el médico veterinario (MVZ) lleve a cabo un cuidadoso y completo examen clínico, a n de conocer la naturaleza de la afección, establecer un ecaz tratamiento y adoptar las medidas de prevención y control adecuadas. Para explorar el aparato digestivo del equino, el MVZ debe apoyarse en un conjunto de métodos físicos y químicos, así como en sus conocimientos de anatomía y siología, para diferenciar las anomalías que pudieran presentarse.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 3
ANAMNESIS La anamnesis, o historia, es el interrogatorio detallado, dirigido al dueño, el caballerango o el cuidador, sobre acontecimientos pasados y presentes del paciente. como enfermedades, tratamientos, cirugías, alimentación, medicina preventiva y manejo general en las instalaciones. En medicina veterinaria la anamnesis es una de las herramientas más importantes para el diagnóstico. Los animales son incapaces de describir sus signos clínicos, y como su respuesta al manejo y al examen es variable, se tiene que aceptar un amplio margen de normalidad en los criterios utilizados en el examen físico. Es necesario admitir la abilidad humana. El examen del medio es indispensable en toda investigación clínica, debido a la frecuente relación entre los factores ambientales y la incidencia de una enfermedad. Para obtener mayor cantidad de información sobre la historia pasada, se formulan preguntas sobre las enfermedades que ha padecido el animal, los tratamientos y su evolución, medicina preventiva, alimentación, etcétera. La historia presente considera el tipo de alimentación, horarios y cantidades de alimento; cambios recientes en la dieta, calendarios de desparasitación, incidencia de cólicos, limado de odontotos, apetito, estado de ánimo, funciones excretoras del intestino reejadas en el volumen y consistencia de las heces, y las condiciones ambientales que rodean al animal. Además, la edad y el sexo del paciente contribuyen a reducir los diagnósticos diferenciales. Por ejemplo, los potros recién nacidos son propensos a presentar retención de meconio (día 1) e infecciones sistémicas que pueden comprometer el tubo digestivo (día 1-4). Los animales de mayor edad son susceptibles a adquirir parásitos gastrointestinales y a desarrollar ulceración gastroduodenal, y los caballos menores de tres años de edad tienen mayor probabilidad que los animales adultos de sufrir invaginación intestinal. La posibilidad de hernia inguinal del intestino delgado debe considerarse en todos los sementales con cólico. En las yeguas, la torsión uterina al nal de la gestación puede producir signos de cólico, mientras que el cólico posparto se asocia con hemorragia en el ligamento ancho, torsión de colon mayor o ruptura del ciego o el colon durante la fase de expulsión del feto.
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Examen físico general en el equino
La inspección del estado general de carnes del animal y de la piel también es de utilidad en el diagnóstico de trastornos digestivos. Durante el examen físico, el clínico deberá emplear los sentidos de una manera ordenada, valiéndose de los métodos que se exponen a continuación.
EXAMEN CLÍNICO PROPEDEÚTICO El examen clínico del aparato digestivo de un équido consiste en la inspección, palpación, percusión y auscultación, tanto directas como indirectas, de cada uno de sus segmentos, seguidas de exámenes complementarios, como los estudios de laboratorio. El examen clínico completo de un paciente comprende pruebas físicas y de laboratorio que proporcionen información y sean prácticas y económicas. Hay que ser selectivo, el método más económico es examinar al animal y luego seleccionar las pruebas que apoyarán o invalidarán los diagnósticos diferenciales, con el n de lograr un diagnóstico presuntivo.
F 1. Examen físico.
INSPECCIÓN La inspección consiste en observar al animal en forma general. Las actitudes de intranquilidad se presentan ante problemas digestivos de naturaleza subaguda; adoptar una posición de perro sentado, mostrar inquietud, rascar con las manos y volver la cabeza hacia los ancos son signos de cólico, así como una respira ción acelerada, que se presenta en casos de dolor severo. El aspecto anormal de la piel indica problemas de nutrición y parasitarios.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
Las técnicas de inspección indirecta utilizadas en la evaluación del aparato digestivo son el ultrasonido y la radiología.
El peloteo es una técnica de palpación rectal que se emplea para detectar vísceras o masas otantes dentro de la cavidad abdominal. Se palpa la pared abdominal utilizando los dedos extendidos o el puño cerrado, para desplazar un órgano o masa, y luego dejar que rebote sobre las yemas de los dedos. El peloteo del abdomen del caballo con cólico, al igual que la auscultación, puede provocar ruidos de chapoteo por líquido, indicativos de un intestino lleno de líquido, como en el caso de obstrucción intestinal.
AUSCULTACIÓN
F 2. Inspección.
PALPACIÓN La palpación es la percepción, por medio del tacto, de anomalías que se proyectan hacia la supercie del cuerpo. Cuando hay una anormalidad es factible apreciar su tamaño, consistencia, temperatura, extensión, situación, forma, movilidad y sensibilidad. La palpación rectal es útil para jar la posición y resistencias de las vísceras abdominales, así como los trastornos del aparato digestivo, urogenital y circulatorio (trombosis).
F 3. Palpación rectal.
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La auscultación consiste en escuchar los sonidos producidos por la actividad del intestino (movimiento del órgano y su valoración); puede ser directa, poniendo el oído en contacto con la supercie del cuerpo del animal sobre la proyección del órgano que se desea examinar, o indirecta, que se lleva a cabo utilizando el estetoscopio y es el método más indicado para evitar la incomodidad y la interferencia de los sonidos del exterior. La auscultación es útil para diagnosticar problemas como aumento o disminución del peristaltismo, en casos de cólico. Deben auscultarse al menos cuatro sitios: ambas fosas paralumbares y los dos lados del abdomen inferior por detrás del arco costal, los cuales forman cuatro cuadrantes. Se pueden apreciar dos tipos de ruidos débiles asociados con contracciones intestinales localizadas (mezcla de la ingesta) y ruidos más fuertes de líquido, o borborigmos, provenientes de la propulsión de la ingesta. Los ruidos auscultados en la fosa paralumbar derecha reejan actividad de la válvula ileocecal (y posiblemente la cecocólica) y dieren de los sonidos percibidos en las otras localizaciones. Aquí, un periodo de silencio se interrumpe una o dos veces por minuto debido al ujo repentino de líquido que retumba a medida que las secreciones de un compartimiento pasan a través de la válvula y chocan contra la interfase hidroaérea del siguiente compartimiento. El cólico espasmódico es el mejor ejemplo de movimiento incrementado (hiperperistaltismo), en el cual se auscultan ruidos continuos de mayor intensidad que la habitual en todos los sitios. En cambio, el movimiento reejo está reducido en presencia de un proceso inamatorio o isquémico. Por lo tanto, la ausencia de ruidos o los ruidos infrecuentes y de intensidad redu-
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
cida pueden asociarse con peritonitis o desarrollo de hipoperfusión intestinal durante un cólico. La ausencia de ruidos también se asocia con parálisis del tubo digestivo, como ocurre con el íleo posoperatorio. La presencia de gas secuestrado (timpanismo) se pone de maniesto por ruidos tintineantes de tonalidad grave, que pueden superponerse a otros ruidos alimentarios, por ejemplo, timpanismo asociado con un cólico espasmódico. La localización del gas atrapado en un segmento del intestino grueso se puede establecer mediante la percusión y la auscultación simultánea sobre la pared abdominal. Un volumen de gas que está atrapado contra la pared corporal produce un ruido hueco o resonante.
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Examen físico general en el equino
durante 14 a 16 horas cada día, consumiendo pequeñas cantidades de alimento a la vez. Los órganos del tracto digestivo del caballo llenan la mayor parte del abdomen, y se sitúan entre el tórax y la pelvis. La manera más recomendable de llevar a cabo el examen propedéutico del aparato digestivo del equino, cada vez que la severidad del caso lo permita, es siguiendo la vía natural de éste, desde la boca hasta el esfínter anal. La anatomía del tracto digestivo es: boca, orofaringe, esófago, estómago, intestino delgado (duodeno, yeyuno, íleon), ciego, colon mayor (colon ventral derecho, exura esternal, colon ventral izquierdo, exura pélvica, colon dorsal izquierdo, exura diafragmática, colon dorsal derecho), colon menor, recto y ano.
F 4. Auscultación.
PERCUSION En la percusión, se golpea la supercie corporal con los dedos, el puño, o usando un plexor, con o sin la ayuda de un plexímetro, de manera que vibren las partes profundas que causan sonidos audibles. Los ruidos dieren según la densidad de las partes que vibran. Las vibraciones que se producen en los tejidos percutidos son sonidos audibles que varían de acuerdo con la densidad de la zona percutida. Los sonidos percibidos pueden ser de tres tipos: mate o sordo, timpánico o claro y resonante o hueco.
EVALUACIÓN CLINICA Los équidos son herbívoros, su sistema digestivo está adaptado para consumir y digerir grandes cantidades de forrajes. En su ambiente natural, el caballo pasta
F 5. Esquema de aparato digestivo
EXAMEN DE LA BOCA En toda circunstancia de dicultad en la prensión, masticación o deglución de alimento, debe examinarse con detalle la cavidad bucal.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
El examen de la cavidad bucal se realiza mediante una inspección directa de este órgano, tanto de sus tejidos externos como la integridad de los belfos, dientes, comisura labial y posición correcta, tanto del maxilar como de la mandíbula. La cavidad se inspecciona directamente abriendo la boca del équido, tomándola por las comisuras; a nivel del espacio interdentario se introducen los dedos índice y medio, la lengua del caballo se toma con la mano y se saca para dirigirla hacia un lado, se tira con la otra mano del carrillo opuesto, lo más ampliamente posible para poder visualizar el interior de la cavidad bucal. El método indirecto consiste en utilizar un abrebocas, el cual puede ser jo o articulado. Este examen implica la inspección somera del aspecto externo e interno de las estructuras que la conforman. Se basa en un examen en estática, que es la observación, y otro en dinámica, que se realiza con movimientos laterales de la arcada dentaria y mandibular. Aspectos que se consideran: simetría facial, alineación rostrocaudal de maxilares, alineación mediolateral de maxilares, desplazamiento laterolateral de la mandíbula, línea de oclusión de incisivos. Algunas anormalidades que se detectan con el examen de la cavidad bucal: fracturas, retención de dietes temporales, ausencia de piezas, diente de lobo implantado, gancho rostral, gancho caudal, rampa, escalón, diastema, perforación en encía, pieza perdida, odontotos, olas, crestas transversas acentuadas y desbalance. Una vez separadas las arcadas deberá examinarse la temperatura, introduciendo el dedo pulgar y el medio por la comisura; la elevación de la temperatura se presenta en estados febriles generales y locales, como en estomatitis, glositis, palatogingivitis y faringitis. La hipotermia bucal aparece en estados preagónicos, anemias graves, estados de choque y posanestesia. La sensibilidad se ve aumentada en estados inamatorios o traumáticos. En la boca puede encontrarse halitosis, bien por la descomposición de partículas de alimento, o bien, por exudados. El olor es ácido cuando hay hiperclorhidria y estomatitis; fétido, cuando hay caries o abscesos, y putrefacto, por estomatitis gangrenosa o fístulas. Una salivación excesiva con hilos de saliva colgando de la boca, y generalmente acompañada de movimientos de masticación, ocurre cuando está alojado
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en la boca un cuerpo extraño y también en muchas formas de inamación de la mucosa bucal o de la lengua.
F 6. Examen de la boca
El examen de los dientes proporciona información médica útil. Aun cuando la fórmula dentaria depende de la edad y el sexo, todo équido puede llegar a presentar en su cráneo los cuatro tipos de dientes conocidos en los mamíferos: incisivos (I), caninos (C), premolares (P) y molares (M); cada uno con características morfológicas y funcionales especícas. En los équidos, las fórmulas dentarias de los dientes temporales y permanentes son las siguientes: Temporales Permanentes
2 (I 3 C 0 P 3 M 0) 2 ( I 3 C 0-1 P 3-4 M 3)
En la nomenclatura tradicional se hace referencia a los dientes del équido de acuerdo con su posición (primero, segundo, tercero o cuarto), tipo (incisivo, canino, premolar o molar) y ubicación (mandibular o maxilar, derecho o izquierdo). Asimismo, algunas de las piezas reciben nombres especícos, como diente de lobo, para el primer premolar; pinzas, medios y extremos, para el primero, segundo y tercer incisivo, respectivamente. Aunque todavía en uso, esta nomenclatura se está sustituyendo por una más práctica, que es la del sistema Triadam. Éste identica los dien tes en forma numérica, de acuerdo con su ubicación y posición, comenzando por dividir la cabeza en cuatro cuadrantes: 100, 200, 300 y 400, que corresponden al maxilar derecho, maxilar izquierdo, mandibular izquierdo y mandibular derecho, respectivamente. Resultan, entonces, cuatro arcadas, que hacen oclusión 100 y 400 del lado derecho, y 200 y 300 del lado
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
izquierdo. Cabe señalar que al tratar con dientes deciduos, se hace la asignación de 500, 600, 700 y 800 en el mismo orden de progresión. Los dientes se designan comenzando con el uno para el primer incisivo y terminando con el once para el tercer molar. De esta manera resultan once piezas factibles para cada arcada, que se nombrarán como tales, aun cuando no se maniesten físicamente. Al nal, a cada diente se le asigna un número de tres dígitos que describe su ubicación y posición: el primer dígito indica el cuadrante de la cabeza y los dos siguientes, el tipo de diente. Se buscarán anormalidades y enfermedades que estén causando daño a otras estructuras de la cavidad oral, que comprometan el confort bucal, la masticación eciente y el bienestar del animal; además se valorará si el animal presenta dicultad o renuencia para masticar, lentitud para comer, renuencia para tomar agua fría, caída del alimento durante la masticación, grano entero en heces, cólico recurrente, desobediencia al freno o bocado, bolos de alimento entre las piezas dentarias, laceraciones o heridas en la lengua y las mucosas bucales, dolor a la presión moderada de los carrillos, inamación o dolor en la articulación temporomandibular, dicultad al manejo de la cara u hocico y evidencia de una pobre condición corporal. Para examinar la mucosa oral por la parte interna de ambos belfos, se levanta el belfo superior y se baja el inferior. La mucosa oral normalmente es de color rosa pálido y brillante; si hay un cambio, puede sospecharse de problemas sistémicos: se observa pálida en estados de anemia; rojo oscuro, en congestiones sanguíneas; azulosa, en estados cianóticos; la pigmentación amarilla o ictérica puede deberse a la presencia de grandes cantidades de bilirrubina en la sangre por un probable daño hepático. Al inspeccionar la cavidad bucal puede evaluarse el funcionamiento de las glándulas salivales. El aumento de la secreción salival se conoce como ptialismo, común en casos de estomatitis, caries dental, intoxicaciones alimentarias, presencia de cuerpos extraños; una disminución en la secreción salival, o hiposialia, puede ser el resultado de estados febriles con deshidratación, trastornos intestinales con diarrea o la administración de atropina.
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Examen físico general en el equino
F 7. Dientes.
En la dentadura podrá examinarse su integridad, forma y desgaste. Los molares se palpan en la región de los carrillos para diagnosticar la presencia de odontotos. Los daños o mala atención de la dentadura traerá como resultado una masticación inadecuada de los alimentos; o bien, que el animal deje de comer (anorexia), y en consecuencia, pierda peso y adquiera una predisposición a los cólicos por impactación.
EXAMEN DE LA
FARINGE La exploración de la faringe comprende la región externa y la interna. De manera directa se puede observar en ambos lados un mayor volumen que el normal; la palpación puede indicar un incremento de la sensibilidad a la presión ejercida, y en casos de procesos inamatorios se percibirá un aumento del volumen y la temperatura. La inspección indirecta se realiza mediante el endoscopio, el cual se introduce por los ollares de forma similar a la sonda nasoesofágica, o por otros métodos, como el ultrasonido y la radiología.
EXAMEN DEL ESÓFAGO Para determinar la existencia de trastornos disfágicos, que se denen como la alteración de la acción de tragar, el esófago puede palparse directamente del lado izquierdo en el canal yugular. En este examen se distinguen tres fases: la oral, la faríngea y la esofágica; en esta última se encuentran cuerpos extraños en la luz del esófago, bolos alimenticios grandes, divertículo esofágico y megaesófago. La inspección y palpación directa son sólo posibles en la región cervical. La palpación indirecta se realiza mediante el uso de una sonda
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
nasoesofágica o un endoscopio (9 mm), con los cuales es posible seguir el trayecto de este órgano hasta el cardias, para saber si hay obstrucciones por cuerpos extraños, alimento, espasmos, etcétera.
EXAMEN DEL ESTÓMAGO Los équidos tienen un estómago relativamente pequeño para el tamaño de su cuerpo; de esto se derivan importantes complicaciones relacionadas con la alimentación que reciben. La evaluación del estómago se realiza principalmente por medio de la introducción de una sonda nasogástrica, para la palpación indirecta, y un gastroscopio, para la inspección indirecta. Algunas enfermedades de estómago son la ulceración, impactación, dilatación y ruptura gástrica.
distensión se presenta en ambas fosas. Los cólicos por íleo provocan distensión del intestino grueso. La disminución del perímetro abdominal se observará en estados caquéxicos, deshidratación severa, diarrea intensa y en muchas enfermedades crónicas en las que disminuye el apetito. Con aparatos potentes, en potrillos y adultos podría practicarse la inspección indirecta con placas radiográcas. En una inspección de la pared abdominal ventral puede observarse hernia umbilical, onfaloebitis y goteo de orina procedente de un uraco persistente. Para la inspección indirecta comúnmente se emplea la laparoscopia.
F 9. Evaluación de intestino delgado.
F 8. Gastroscopia.
EXAMEN DE LA CAVIDAD ABDOMINAL INSPECCIÓN Las variaciones en el tamaño abdominal suelen apreciarse durante la inspección general del animal; el aumento se atribuye a la presencia de un feto, una neoplasia, una cantidad excesiva de alimento, líquido, heces, gases o sobrepeso. El examen ofrece la posibilidad de delimitar el tamaño relativo del abdomen y determinar el sitio de la distensión. El intestino grueso es el único que produce distensión abdominal observable clínicamente mediante la inspección; si la obstrucción es anterior a la exura pélvica, se detecta distensión en la fosa paralumbar derecha; si es anterior al colon menor, la
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F 10. Esquema del colon.
PALPACIÓN La palpación abdominal externa ofrece una información limitada, debido al grosor de la piel y la disposición anatómica del tubo digestivo. Los datos que con ésta podemos obtener son sensibilidad, presencia de
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
masas internas y distensión gaseosa. La palpación de algunas vísceras abdominales, o interna, deberá llevarse a cabo por la vía rectal.
EXAMEN RECTAL El examen rectal es de gran valor para el diagnóstico, ya que nos indica el grado de distensión visceral, y en casos de cólicos obstructivos permite tomar medidas terapéuticas tales como la realización de enemas. Con este método se identica la posición de segmentos intestinales; anomalías del espesor de la pared intestinal; dolor mesentérico; masas anormales como tumores, abscesos, intususcepciones, cuerpos extraños; ruptura intestinal, etcétera. Antes de examinar el recto, se inspeccionará el estado de la región anal, en la cual es posible apreciar neoplasias (melanosarcoma en tordillos) o la pérdida de pelos en la base de la cola, lo que pone de maniesto la presencia de Oxyurus equi. Para realizar el examen rectal, dependiendo del comportamiento del animal, se elegirá entre emplear el tirapié o el arcial, administrar tranquilizantes o levantar un miembro torácico, y así evitar que el animal pateé. Una sujeción insuciente puede conducir a una perforación rectal yatrogénica, complicación potencialmente mortal del examen rectal, o a lesiones graves en el examinador. Deberá utilizarse un guante de plástico (para palpación) previamente lubricado con aceite mineral, vaselina, glicerina o metilcelulosa. Se levanta la cola del animal haciéndola a un lado para introducir la mano en el recto; se recomienda extender los dedos y juntarlos en forma cónica. La mano se introduce gentilmente, poco a poco, con ligeros movimientos rotatorios hasta vencer la resistencia del esfínter anal. Cuando se alcanza la ampolla del recto debe valorarse la cantidad de heces y el tono de la musculatura. Después de estas maniobras, el examinador introduce nuevamente el brazo en el recto del animal, haciéndolo avanzar en forma lenta y sostenida hasta la mayor distancia que sea posible. El brazo se deja en esta posición sin realizar movimientos bruscos durante 20-30 segundos. En la mayoría de los casos este retraso inicial en la palpación interna permitirá que el recto se relaje alrededor del brazo del examinador, lo cual hace posible una palpación más completa de las regiones craneales del abdomen. Si durante el examen se percibe una contracción peristáltica o aumento de la resis-
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Examen físico general en el equino
tencia, el operador debe retirar de inmediato la mano del recto, para evitar una lesión rectal, porque existe el riesgo de que el colon menor se desgarre mientras se contrae sobre la mano del examinador. El examen debe ser sistemático para asegurarse de que sea completo y reducir el riesgo de pasar por alto una lesión. Se recomienda utilizar una técnica en dirección horaria, comenzando con el brazo en el cuadrante abdominal dorsal izquierdo, y siguiendo por los cuadrantes dorsal derecho, ventral derecho y ventral izquierdo. Con la palpación rectal, en el abdomen izquierdo se examina: riñón izquierdo, polo caudal, borde caudal del bazo, exura pélvica y, en hembras, el ovario izquierdo. En el abdomen derecho se palpa: base del ciego, ligamento cecocólico, colon dorsal derecho, ovario derecho, en hembras. En el abdomen medio se explora: colon menor, vejiga, útero en las hembras, anillos inguinales en el macho, mesenterio anterior y porciones del intestino delgado. La palpación rectal revela el tamaño, consistencia y posición de las asas intestinales; el grado de timpanización, tamaño y consistencia de las heces; traumatismos, contracción rectal, parálisis; gestación y fístulas rectovaginales en las hembras; integridad de los huesos pélvicos y sacros; presencia de trombosis en las arterias iliacas; cálculos o neoplasias en la vejiga, anomalías de las glándulas accesorias del aparato reproductor del macho. Con la técnica de peloteo se buscan masas otantes en la cavidad abdominal, como antes se explicó en el apartado de palpación.
PERCUSIÓN ABDOMINAL En la percusión se golpea la supercie corporal, para que vibren las partes profundas, con lo que producen sonidos que varían según la densidad de estas partes, y se clasicar en resonantes, timpánicos y sordos o mate. La percusión se puede realizar con los dedos, utilizando una mano como plexor y la otra como plexímetro. En los grandes animales se recomienda emplear el plexor y el plexímetro. La percusión, directa o indirecta, es de poco valor diagnóstico, indica la presencia de timpanitis, en cuya forma primaria generalmente aumenta la resonancia en toda el área, y en casos de origen secundario, el sonido es localizado.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
AUSCULTACIÓN ABDOMINAL La auscultación del abdomen es una parte esencial del examen físico; tiene un valor considerable, ya que proporciona datos del grado de actividad funcional de los intestinos, a través de los sonidos peristálticos. Para tener una mejor idea del lugar donde se están produciendo los sonidos deberá tomarse en cuenta la posición anatómica que guardan las vísceras en la cavidad abdominal. Los sonidos intestinales son claramente audibles e indican la naturaleza de los contenidos del aparato digestivo y la frecuencia y amplitud de los movimientos gastrointestinales. Hay que observar la intensidad, duración y frecuencia de los sonidos. Los valores de todas estas características aumentan en los animales que acaban de comer o inmediatamente después de la excitación. En la parte derecha y ventral del abdomen se escuchan ruidos fuertes (borborigmos) del colon y el ciego, que alcanzan una intensidad máxima cada 15 o 20 segundos. En la parte izquierda del abdomen los ruidos son más suaves, por la presencia de líquido en el intestino delgado; en casos de enteritis, su intensidad y frecuencia aumentan, y se aprecia claramente el origen acuoso; en casos de cólico espasmódico, los ruidos son fuertes, casi como crujidos. Cuando se produce retención del intestino grueso hay una disminución de la intensidad y frecuencia de los borborigmos, y en casos de cólico tromboembólico, puede haber ausencia total de ruidos debido a un aneurisma verminoso e infarto del colon. A la auscultación, los sonidos emitidos por el intestino delgado son de murmullo líquido o franco gorgoreo, en el intestino grueso se perciben como rumores sordos; el tipo de sonido reeja el carácter del contenido intestinal, que puede ser sólido o semisólido, líquido o gaseoso. La frecuencia de los sonidos depende de si el peristaltismo es activo o aumentado, lento, infrecuente o ausente. Cuando éstos son estrepitosos de gorgoteo o sordos y continuos sugieren enteritis, cólico espasmódico, fases primarias de obstrucción aguda causada por un vólvulo, invaginación, estrangulación o impactación de la válvula ileocecal. Los sonidos peristálticos se reducen o desaparecen en la indigestión, y hay atonía unas horas después de producirse la obstrucción aguda. Los sonidos agudos, ligeros y sonoros se oyen cuando hay timpanitis intes-
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tinal general o retención local de gas, debido a los espasmos del segmento afectado. El grado de motilidad intestinal se reeja en la cantidad y consistencia de las heces, cuyo carácter proporciona, además, una prueba de valor clínico. La evaluación de forma directa e indirecta se realiza por medio de auscultación, ultrasonido, duodenoscopia, laparoscopia y palpación rectal. El intestino grueso ocupa normalmente una posición estática, se divide en ciego, colon y recto. Este órgano presenta una proyección en ambos lados del abdomen, situación que no ocurre en el estómago ni el intestino delgado, lo cual impide auscultarlos. La base del ciego está situada en la región iliaca derecha y sublumbar, va hacia atrás de la tuberosidad coxal, y hacia adelante llega hasta las tres últimas costillas, mientras que el cuerpo en forma de "coma" ocupa casi completamente el área del ijar derecho. El vértice del ciego llega hasta el suelo del abdomen, a la derecha del plano medio y a unos 10 cm del cartílago xifoides. La primera parte del colon, el colon ventral derecho, se inicia en la base cóncava del ciego frente a la extremidad inferior de la última costilla, o espacio intercostal; luego se dirige ventral y cranealmente junto al arco costal derecho, y continúa por el suelo del abdomen; al nivel del cartílago xifoides se exiona hacia la izquierda y en sentido caudal, para formar la exura esternal. La segunda porción, el colon ventral izquierdo, se dirige en forma caudal sobre el suelo abdominal, a la izquierda de la primera parte del ciego, proyectándose del lado izquierdo, y al llegar a la entrada pélvica, se dobla dorsal y cranealmente para formar la exura pélvica. El colon dorsal izquierdo se localiza sobre el segmento ventral izquierdo, pasa por debajo y hacia adelante al nivel de la parte media del ijar izquierdo, para luego seguir hasta el arco costal y alcanzar el diafragma y el lóbulo izquierdo del hígado, donde tuerce a la derecha y hacia atrás para formar la exura diafragmática. La porción terminal, o colon dorsal derecho, se extiende hacia atrás sobre el segmento ventral derecho, hasta que llega a la parte media del ciego; ahí dobla a la izquierda, pasa por debajo del riñón izquierdo y su diámetro se reduce, formando el colon transverso que se continúa con el colon menor. El aspecto caudal de la caja torácica y el anco izquierdo se encuentra ocupada por las asas intesti-
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
nales, constituidas por partes del yeyuno y partes del colon descendente o colon menor. Se recomienda que la auscultación de la cavidad abdominal sea indirecta, mediante el uso de estetoscopio. Este método propedéutico es de valor apreciable, ya que proporciona una oportunidad de valorar el grado de actividad funcional del intestino. El clínico debe situarse mirando hacia la cola del caballo; se recomienda pasar la mano sobre el cuello, dorso y pared abdominal para dar conanza al animal y evitar movimientos bruscos que alterarían la interpretación de los sonidos. Los sonidos emitidos por el intestino delgado son de murmullo líquido o franco gorgoteo; en el intestino grueso se oyen como rumores sordos; el tipo de sonido reeja el carácter del contenido intestinal, que puede ser sólido o semisólido, líquido o gaseoso. Dependiendo de la frecuencia de los sonidos, el peristaltismo es activo o aumentado, lento, infrecuente o ausente. Los sonidos estrepitosos de gorgoteo o sordos y continuos sugieren enteritis, cólico espasmódico, fases primarias de obstrucción aguda causada por un vólvulo, invaginación, estrangulación o impactación de la válvula ileocecal. Los sonidos peristálticos se reducen o desaparecen en casos de indigestión, y hay atonía unas horas después de producirse la obstrucción aguda. Los sonidos agudos, ligeros y sonoros se oyen cuando hay timpanitis intestinal general o retención local de gas, debido a los espasmos del segmento afectado. El grado de motilidad intestinal se reeja en la cantidad y consistencia de las heces, cuyo carácter proporciona, además, una prueba de valor clínico.
PROCEDIMIENTOS COMPLEMENTARIOS SONDEO NASOESOFÁGICO El sondeo nasoesofágico está indicado cuando se sospecha de una obstrucción esofágica sin grave lesión de su pared; para explorar el estómago; realizar lavados gástricos en casos de cólico; detectar reujo de líquido; favorecer la descompresión en pacientes con obstrucción gastrointestinal, así como para la administración directa al estómago de medicamentos (atimpánicos, desparasitantes, etcétera). En los potros se recomienda utilizar sondas con un diámetro de 3/8 de pulgada y en caballos adultos, de 3/4 de pulgada.
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Examen físico general en el equino
La sonda desenrollada se coloca alrededor del cuello del operador para evitar que se arrastre por el suelo y con el n de tener libres las manos para controlar el paso de la sonda. Cuando el clima es frío, las sondas rígidas se deben ablandar haciendo correr agua caliente a través de ellas. Para realizar este manejo, en caballos dóciles bastará con sujetar al animal o colocar el arcial, el quiebradientes, etcétera, y si la situación lo amerita será necesario usar tranquilizantes, aunque esto reducirá el reejo de deglución. La sonda, antes de introducirla, se lubrica con metilcelulosa o agua, el extremo que se introduce debe ser liso y con bordes romos. El clínico se colocará a un lado del caballo (de preferencia del lado derecho de la cabeza del animal); se toma la ternilla y se siente la falsa nariz con la mano izquierda; se introduce el extremo de la sonda hacia abajo; con el dedo pulgar de la mano izquierda se guía la sonda para que penetre por el meato ventral hasta la faringe (40 cm aproximadamente); se suspende la introducción de la sonda y se realiza un movimiento rotatorio hacia arriba, procurando aprovechar el primer movimiento de deglución para seguir impulsando la sonda por la faringe hacia el esófago; deberá observarse si el desplazamiento de la sonda es muy fácil y el caballo presenta tos, pues si esto sucede seguramente la sonda habrá penetrado hacia la tráquea, y tendrá que sacarse hasta la faringe para volver a introducirla. Si esta maniobra fracasa en 3 o 4 intentos, el operador debe sospechar que el extremo está chocando contra el receso faríngeo por encima de la laringe y el esófago. En este caso, el extremo delantero se debe hacer descender girando la sonda hacia atrás alrededor de 90 grados antes de repetir el movimiento de avance. Si el desplazamiento de la sonda se diculta, no se presenta tos y se puede palpar u observar en la canaladura yugular izquierda, se presume que está en el esófago, y para comprobarlo se insua aire por el extremo libre de la sonda, con lo cual, al salir el aire, se dilata ligeramente la canaladura yugular; frecuentemente los movimientos peristálticos dicultan el paso de la sonda, con el aire insuado se vence este obstáculo. Una vez que la sonda ha llegado al estómago se presenta una pequeña resistencia en el paso por el cardias; estando en cavidad gástrica, se percibe un aroma a fermentación en el extremo libre de la sonda. Al ter-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
minar el manejo clínico, se recomienda que antes de extraer la sonda, se insue nuevamente para que el contenido que se encuentre en el trayecto de ésta quede depositado en la cavidad gástrica y no vaya a ser broncoaspirado de manera accidental en el momento de la extracción. Se procede a obstruir el extremo libre para provocar un vacío y evitar un reujo del contenido; y con un movimiento gentil pero rme y rápido en dirección ventral y media se extrae la sonda. En ocasiones hay un sangrado por los ollares que, aunque puede ser profuso, generalmente no es de cuidado.
F 11. Sondeo nasoesofágico.
ABDOMINOCENTESIS El análisis del líquido peritoneal en el caballo revela los cambios que ocurren en la supercie del peritoneo y los órganos contenidos en la cavidad abdominal. Esta técnica tiene un gran valor diagnóstico en la elección de casos quirúrgicos, ya que permite diferenciar los cólicos infartantes y conrmar la sospecha de ruptura de vísceras. La punción se realiza en el punto más bajo del abdomen, situado entre el proceso xifoides y la cicatriz umbilical. El sitio de punción se prepara asépticamente, se bloquea con xilocaína en forma subcutánea, y con una navaja de bisturí (del número 15) se realiza la punción, sólo cortando la piel, el tejido subcutáneo y el músculo; para obtener el líquido se usa una cánula para tetas, de 9.5 cm de largo —o un catéter uretral para perras, de 14 cm—, que se pasa por una gasa antes de ser introducida (el material deberá ser estéril).
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En otros casos, el método más sencillo es el empleo de una aguja hipodérmica de calibre 18 o 19 por 1.5 pulgadas. En caballos obesos a veces se requieren agujas más largas, debido al espesor de la capa de grasa retroperitoneal. Se prepara el sitio más pendiente del abdomen ventral y la aguja se inserta directamente a través de la línea alba. De otra manera, la aguja puede colocarse justo a la derecha de la línea media, para reducir el riesgo de puncionar el bazo. Si la aguja penetra el intestino, es probable que el contenido intestinal gotee a través de la aguja; este líquido tiene aspecto pardo oscuro o amarillo turbio y emite un olor característico desagradable. En este caso la aguja debe retirarse por completo o hasta que salga del intestino, mientras la punta se mantiene en la cavidad peritoneal. El líquido peritoneal que drena a través de la aguja limpiará el material contaminado, produciendo una muestra adecuada para el examen citológico. La enterocentesis accidental durante el procedimiento tiene muy baja probabilidad de causar problemas en caballos adultos. La reacción inamatoria peritoneal leve no suele requerir antibioterapia. El líquido se colecta en una jeringa, o bien, en un tubo de ensaye al vacío con EDTA, y en otro sin anticoagulante, para realizar los diferentes análisis (citología, proteínas peritoneales, cultivo, bioquímica). Una vez colectado el líquido y extraída la cánula se aplica al animal un cicatrizante en polvo o aerosol , en la zona de punción. El líquido se analiza macroscópicamente; se observa si son normales el color, amarillo paja, y la consistencia, serosa. Un color de rosa a café puede ser indicativo de estrangulación intestinal o tromboembolismo por congestión. La hemoglobina y los eritrocitos lo tiñen desde rosa hasta rojo. En peritonitis bacteriana y tóxica, la presencia de líquido es el resultado de la salida de bacterias y toxinas, por lo general hacia la cavidad abdominal, en casos de cólico infartante. Un líquido sanguinolento, mal oliente con contenido fecal, normalmente se presenta con signos de dolor parietal y conrma el diagnóstico de ruptura visceral. Los análisis citológicos y bioquímicos se deberán realizar simultáneamente con los similares en sangre completa, plasma o suero, según el caso. La elevación de proteína peritoneal se relaciona con los cólicos infartantes.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
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Examen físico general en el equino
permitirá al cirujano identicar la mayor parte de los problemas intestinales.
F 12. Paracentesis abdominal.
LAPAROTOMÍA EXPLORATORIA En los caballos las técnicas de laparotomía comúnmente usadas son las siguientes: por el anco al nivel de la fosa sublumbar, laparotomía paramedial y por línea alba. En casos de problemas digestivos, se recomienda realizar la técnica por línea alba. A continuación se describe una laparotomía con el animal en decúbito dorsal: el paciente es sometido a una preparación quirúrgica de rutina; la incisión en la piel se realizará partiendo del proceso xifoides hacia abajo, unos 25 cm aproximadamente. Al incidir la piel pueden dañarse algunos vasos sanguíneos que deberán ser controlados con pinzas de Kelly o de mosquito, o con compresas de gasas. Es importante controlar todas las hemorragias antes de seguir incidiendo. La piel se ja con pinzas de Allis para facilitar la manipulación. Se incide el tejido subcutáneo controlando las hemorragias que se presenten; se puede utilizar material absorbible de doble cero para ligar los vasos más grandes. Se incide la cavidad a lo largo de la línea alba con tijeras de Mayo; es importante palpar esta línea alba e incidir por dentro de ella. Después de incidir peritoneo, se abre el abdomen, y en este momento se inicia la laparotomía exploratoria. La cavidad abdominal (dividida en cuatro cuadrantes) y la pelviana se exploran brevemente con las vísceras in situ. El objetivo es identicar la o las lesiones, para solicitar el equipamiento apropiado (instrumentos quirúrgicos para la anastomosis, mesa auxiliar para el colon, etc.). No es muy importante ni benecioso dedicar mucho tiempo a establecer el diagnóstico especíco mediante palpación, porque la exteriorización
F 13. Laparotomía exploratoria.
En la mayoría de los casos, lo primero que se obtiene es el ciego; se observa el ápice del ciego con sus cuatro bandas características. Para localizar el íleon se busca el pliegue mesentérico y el pliegue antimesentérico; este último se encuentra únicamente en el íleon. Al localizar esta área pueden seguirse anterior o posteriormente todas las estructuras. Se deberán preparar compresas húmedas estériles, para mantener en buen estado el intestino delgado que será extraído; este órgano presenta un mesenterio bastante amplio y mientras más nos acercamos al duodeno el mesenterio será más corto. Al extraer el colon mayor, se localizan los órganos por sus bandas características; así, tenemos el colon ventral derecho con cuatro bandas, la exura esternal con cuatro bandas, el colon ventral izquierdo con cuatro bandas, la exura pélvica con una banda, el colon dorsal izquierdo con tres bandas, el colon dorsal derecho con tres bandas, el colon menor con dos bandas. El examen craneal del abdomen incluye la palpación del bazo, hígado, diafragma, foramen epiplóico, base del ciego y la arteria mesentérica craneal. Se expone el colon menor para examinarlo hasta el recto; al sacarlo hay que asegurarse de que no hay nada anormal, y cuando esté fuera, examinar el canal pélvico y los anillos inguinales. En el anco derecho es posible tomar el colon menor, cuya forma es muy característica y está lleno de heces ya formadas. El mesenterio es razonablemente largo. Se explora la mitad
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
posterior del abdomen, con la porción caudal del bazo, anillo inguinal, canal pélvico y tracto urogenital. Se coloca nuevamente el colon menor y todos los demás órganos en el abdomen para poder iniciar la sutura. Se sutura la línea alba y el músculo con puntos separados, y la piel con puntos en “U” o de colchonero horizontal. Deberán observarse los cuidados postoperatorios necesarios, e hidratar adecuadamente al paciente para evitar un choque (por pérdida de líquidos o exceso de manipulación de los órganos),
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prevenir infecciones bacterianas y favorecer el tránsito intestinal.
PRUEBAS DE LABORATORIO Los exámenes de laboratorio son fundamentales para conrmar o certicar el diagnóstico de cualquier anormalidad del aparato digestivo; sin embargo, están fuera del objetivo de este capítulo y se revisarán en las asignaturas correspondientes.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
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Examen físico general en el equino
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Examen del aparato respiratorio en equinos Enrique Núñez Hernández Alma A. García Lascuráin
INTRODUCCIÓN E una especie cuya respiración es obligadamente nasal, ya que no puede respirar por la boca, tanto en fases de descanso como en ejercicio. Hay que recordar que el caballo es una especie atleta que tiene gran capacidad de adaptación al ejercicio físico, aunque por sus características anatómicas, tiene alta resistencia al paso del aire, lo cual es un factor limitante para la realización de tal actvidad. No hay que perder de vista que el principal objetivo del aparato respiratorio es proveer de cantidades sucientes de oxígeno a la sangre (PaO 2), que lo conduce a los tejidos, recogiendo el CO2 (PaCO2), y de esta manera mantener las necesidades metabólicas del organismo. Para llevar a cabo un método preciso y constante de evaluación, es necesario realizar el examen orientado a problemas del aparato respiratorio, en el cual se debe investigar la presencia de los siguientes signos: tos, descarga nasal, epistaxis y hemoptisis, disnea, taquipnea o polipnea, cianosis, estridor o ruidos respiratorios, bajo o pobre rendimiento físico-atlético. El examen clínico del aparato respiratorio tiene gran relevancia para el diagnóstico de cualquier anormalidad, y deberá iniciarse con la obtención de todos los antecedentes alrededor del caso; a esto se le denomina historia clínica, y se obtiene por medio de una serie de preguntas dirigidas al dueño o encargado del caballo.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 3
HISTORIA CLÍNICA En la historia clínica las preguntas deberán ser fáciles de entender y no plantearse en un lenguaje rebuscado. Hay que tomar en cuenta a quién va dirigido el cuestionamiento, para determinar el tipo de preguntas y la forma en que se hacen, considerando que los que deben hablar son las personas relacionadas con el paciente. Nunca hay que plantear las preguntas de tal forma que se inuya en las respuestas, como por ejemplo: ¿Sí ha tomado agua? sino decir simplemente: ¿Ha tomado agua? La historia debe ser lo más completa posible para reconocer la duración y progresión de los signos, el tiempo de exposición, transporte, vacunación y programas de desparasitación, alimentación, características del lugar donde vive, convivencia con otros animales, así como si se ha dado algún tipo de tratamiento, quién lo ha aplicado y cuál fue la respuesta. La edad es importante porque ciertas enfermedades infecciosas son más comunes en caballos jóvenes y con la edad se incrementa la incidencia de otros problemas, como los pulmonares crónicos. La información sobre el tipo de ambiente, la cama en las caballerizas y el alimento es muy relevante, sobre todo cuando se sospeche que está asociada a los signos de la enfermedad. Se preguntará si ha habido pérdida de peso y anorexia, pues frecuentemente éstas se relacionan con infecciones bacterianas crónicas o neoplasias del aparato respiratorio bajo, que pueden manifestarse en cuadros de disnea (dicultad respiratoria), tos y, en animales jóvenes, retraso del crecimiento. Cuando se trata de faringitis es común observar anorexia, disfagia y sonidos respiratorios anormales. Existen muchos casos de enfermedades respiratorias en los que la historia expresada por los dueños o entrenadores es muy similar: la mayoría menciona bajo rendimiento en el ejercicio (se cansan fácilmente), tos o ruidos respiratorios y, en ocasiones, secreciones por los ollares.
EXAMEN FÍSICO GENERAL En el examen del aparato respiratorio se utilizan como métodos de exploración la inspección y la auscultación principalmente, y en menor grado, la percusión y palpación. Como métodos complementarios o más especializados están los llamados indirectos o complemen-
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Examen físico general en el equino
tarios, como radiografías, endoscopia, ultrasonido, termografía, aspirado bronquioalveolar, lavado transtraqueal, toracocentesis y toracoscopia, con los cuales se puede establecer un diagnóstico denitivo y de ahí derivar un plan óptimo de tratamiento. Con el caballo en reposo, el examen físico debe hacerse en un lugar tranquilo, de preferencia libre de ruido. Muchas veces es necesario hacerlo con el caballo en movimiento, para observarlo después del ejercicio, sobre todo si no presenta ningún signo respiratorio en fases de descanso, ya que esta especie sólo emite ruidos o maniesta alguna alteración cuando se incrementa el esfuerzo respiratorio por el ejercicio. El patrón respiratorio se examina con el caballo en descanso, observando su frecuencia, esfuerzo, ritmo y carácter o tipo de respiración, además de las manifestaciones posibles de dolor, sobre todo en la inspiración. La frecuencia normal (eupnea) en caballos adultos es de 8 a 20 respiraciones por minuto, y en potros, de 30 a 40 respiraciones por minuto al nacimiento, y de 30 al mes de vida; la respiración debe ser rítmica y de carácter toracoabdominal. Cuando la frecuencia se incrementa se le denomina taquipnea o polipnea o hiperventilación, y si disminuye, bradipnea o hipoventilación. A la dicultad respiratoria se le conoce como disnea, la cual puede manifestarse en el momento de la inspiración (disnea inspiratoria), o en la espiración (disnea espiratoria) o en ambas (disnea mixta). La simetría facial, el grado de distensión de los ollares y la expresión de ansiedad pueden acompañar a severos estados de disnea-hipoxemia y dolor. El dolor más intenso es el pleural, cuando los caballos sufren de pleuroneumonía o pleuritis (inamación e incremento del líquido pleural) o por fractura de costillas. En estos casos los caballos restringen el movimiento del tórax, mantienen los codos en abducción (hacia fuera), su paso es muy corto, maniestan molestias al mover el cuello y suelen rehusarse a caminar o echarse. En casos más graves se llegan a observar gruesas placas de edema en el pecho, o encuentro, que llegan, incluso, a bajar por los miembros. La disminución de la expansión del tórax sin dolor puede asociarse a las neumonías restrictivas, atelectasia, neumotórax y botulismo. El color de la mucosa nasal debe ser rosa pálido; está considerado como un pobre indicador de la función ventilatoria, ya que en valores tan bajos de la PaO2 como 40 mm Hg (lo normal es de 100 a la altura del
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
nivel del mar), la mucosa llega a mantenerse de color rosado. En este mismo sitio está la desembocadura del conducto nasolagrimal, el cual debe estar libre de obstrucciones; a través de él se practican lavados o tratamientos para favorecer el drenaje lagrimal del ojo. Los senos paranasales pueden ser examinados por inspección (deformaciones o fístulas) o por percusión de cada lado, comparándolos entre sí. Si gentilmente se le abre la boca al caballo y se sujeta la lengua de lado fuera de la cavidad, al mismo tiempo que se realiza la percusión de los senos, la resonancia puede incrementarse notablemente y cualquier anormalidad es más notoria. El tipo de sonido que se obtiene de los senos normales debe ser resonante, pero si por estar afectados contienen líquidos, como exudado (sinusitis), o alguna masa de tejido, el sonido se torna mate. Cuando los caballos extienden la cabeza y el cuello a causa de no poder respirar bien, en ocasiones se observan también los ollares distendidos y una expresión de ansiedad, lo cual es una manifestación de estenosis u obstrucción de las vías respiratorias altas, especialmente al nivel de la laringe o faringe. Esto puede además acompañarse de estridor, ronquido o ruido inspiratorio debido a una obstrucción parcial. Es necesario observar si hay secreciones en los ollares, en las paredes de la caballeriza, en el alimento o en el agua; determinar las características de la secreción nasal (serosa, mucosa, mucopurulenta, sanguinolenta), si es uni o bilateral; si está aumentada la cantidad y es serosa, como en los casos de infección viral o por alergenos e irritantes. Las secreciones mucopurulentas amarillas, cafés o verdosas sugieren infección bacteriana. El origen de este exudado purulento es la infección de una cavidad, como los senos paranasales, en donde se han acumulado (empiema) bolsas guturales o abscesos pulmonares stulizados que drenan hacia los conductos respiratorios. En estos casos el exudado uye en grandes cantidades cuando los equinos bajan la cabeza para comer o tomar agua. El aliento del caballo y el olor de este tipo de exudado es fácilmente distinguible al llegar a la cuadra, porque es muy desagradable (fétido), debido a la necrosis de tejidos o a la formación de gas, producto de la infección por bacterias anaerobias envueltas en la brina del tejido lesionado. En otros casos no se observa exudado en los ollares, ya que los abscesos pulmonares permanecen encapsulados y sin drenar.
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La sangre presente en los ollares (epistaxis) puede ser vieja (rojo oscuro o café) o fresca de color rojo brillante; tiene varias causas, como neoplasias, fracturas traumatismos o enfermedades como la hemorragia pulmonar inducida por el ejercicio (HPIE), en donde hay sangrado pulmonar, sin exudado ni olor, y que aparece en muchos caballos atletas, como los de hipódromo, de 30 a 45 minutos después de haber corrido; en algunas ocasiones este sangrado sale a través de los ollares y en otros casos, que son la mayoría, sólo es posible observarlo por endoscopia de la tráquea. Durante la realización del examen físico se pueden detectar algunos signos inespecícos de enfermedades respiratorias, como es el caso de la tos, que indica estimulación de receptores, por irritación, deterioro de la defensa mucociliar o excesiva producción de secreciones. Son inespecícos porque aparecen como consecuencia de diversas condiciones inamatorias, desde la faringe hasta los pulmones. Se cree que una tos profunda tiene un origen pulmonar, que es atenuada por una condición dolorosa. Los paroxismos de la tos (accesos intensos de tos) pueden ser el resultado de una irritación severa de las vías respiratorias. Mientras el caballo tose, es necesario evaluar el patrón respiratorio, la actitud y la postura, así como la presencia de exudado nasal y la intensidad de la tos. En estos casos se provoca el reejo tusígeno, apretando gentilmente los primeros anillos traqueales o cartílagos laterales de la laringe; la nalidad será conocer las características de la tos que se ha referido en la historia. La tos es un reejo involuntario, sólo se maniesta cuando hay un estímulo irritativo de las vías respiratorias. Los nódulos linfáticos intermandibulares (son los únicos que se palpan normalmente) y retrofaríngeos pueden ser palpados para reconocer cualquier anormalidad en ellos, producto del drenaje linfático proveniente de las vías respiratorias altas, lo cual indicará la presencia de una infección en vías respiratorias altas. Cuando se ven afectados de forma aguda, se sienten aumentados de tamaño, sensibles al tacto, con poca movilidad, duros y calientes. La laringe sufre de diferentes alteraciones infecciosas y no infecciosas; puede ser palpada en sus dos lados, así como en su porción dorsal, para examinar la simetría o atroa muscular. El proceso muscular del cartílago aritenoides es palpable sólo cuando existe atroa muscular. Esto es importante, sobre todo cuando se desea reconocer la capacidad de movimiento de
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
los aritenoides; para ello se realiza la prueba de la palmada, que consiste en un reejo dorsofaríngeo, al palpar los aritenoides y dar una palmada a la altura de la cruz, sobre el tórax dorsal; el cartílago opuesto al sitio que hemos golpeado debe moverse, por ejemplo, si se da la palmada del lado derecho del caballo, el cartílago que registra el movimiento debe ser el aritenoides izquierdo, aunque algunos clínicos arman, según su experiencia, que ambos cartílagos pueden moverse. Deben examinarse los dos lados, y si existen dudas, repetir la prueba. Este procedimiento es muy útil en los caballos que sufren de hemiplejia laríngea, ya que tienen una marcada disminución del movimiento del cartílago aritenoideo izquierdo (raramente del derecho o ambos), lo cual hace que baje notablemente su capacidad inspiratoria durante el ejercicio, manifestándose como cansancio. Cuando el caballo hace ejercicio se presentan ruidos inspiratorios como ronquidos y disnea inspiratoria por la obstrucción parcial del lumen laríngeo, que vibra junto con la cuerda vocal de ese lado, por la fuerza con que pasa el aire por esta vía. Por ello, a estos caballos se les denomina caballos roncadores. Para conrmar el diagnóstico de este padecimiento es necesario practicar un examen endoscópico que permita valorar el movimiento de los cartílagos laríngeos, con diferentes pruebas, como las de la palmada y la bolsa. La tráquea puede ser palpada para detectar cualquier anormalidad, como fracturas o irregularidades de los anillos. La auscultación de la tráquea y el tórax en un medio tranquilo es importante para llevar a cabo un adecuado examen del tracto respiratorio bajo. El movimiento del aire en la tráquea y los pulmones es conocido como murmullo vesicular, el cual produce un sonido claro. La condición corporal y el tamaño del pelo inuyen en la apreciación de la calidad de los sonidos; los sonidos pueden ser difíciles de escuchar en un animal obeso, y por lo tanto, los sonidos fuertes en éste, o el decremento de ellos en un animal en pobre estado de carnes, deben alertar al clínico sobre la probable existencia de una enfermedad pulmonar. Normalmente el murmullo vesicular en caballos sanos es poco audible; para escucharlo mejor se puede colocar una bolsa en los ollares para que el caballo respire en ella; con esto se pretende reducir la cantidad total de aire que el caballo respira (volumen tidal) y por lo tanto, de oxígeno, e incrementar sus niveles de
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Examen físico general en el equino
CO2 (hipercapnea), para que aumente el esfuerzo respiratorio, y por consiguiente, la frecuencia respiratoria, con lo cual el murmullo será más audible. Durante esta prueba los caballos sanos respiran con facilidad, su recuperación es muy rápida y no tienen por qué toser; los que presentan dolor, como los que sufren de pleuritis, no son candidatos a la prueba de la bolsa, ya que éste se exacerba con las respiraciones profundas. En estos casos es mejor recurrir a la oclusión intermitente de los ollares y escuchar las respiraciones profundas una vez que los ollares son liberados. En caballos sanos los sonidos pulmonares son poco audibles; el pulmón derecho es más audible que el izquierdo, principalmente al nivel de la carina (5º espacio intercostal). De las fases respiratorias, la inspiración es más audible que la espiración. Hay que recordar que debido a la posición anatómica del colon mayor, es fácil equivocarse y creer que se están escuchando sonidos intestinales dentro del tórax, lo cual complicaría la interpretación de los sonidos pulmonares. Se escuchan borborigmos que pueden confundirse con sonidos pulmonares anormales, especialmente con roces pleurales.
SONIDOS RESPIRATORIOS ANORMALES (RUIDOS) Denición: los sonidos respiratorios anormales se ge-
neran por la vibración de las vías aéreas por el paso del aire; están superpuestos en los sonidos normales y reejan un cambio en la tasa de ujo del aire. Durante la auscultación de los pulmones, en los caballos se pueden escuchar diferentes tipos de sonidos anormales catalogados como ruidos; en general son llamados estertores, ronquidos, burbujeos, silbidos o crepitaciones, éstos últimos son cortos, explosivos, no musicales, y se dividen en nos y gruesos. Los sonidos nos se asemejan al roce del pelo al frotarlo, y se escuchan con más fuerza a la mitad de la inspiración. Los sonidos gruesos se escuchan en la parte temprana de la inspiración. Los sonidos de burbujeo o estertores húmedos se presentan cuando hay secreciones en las vías aéreas (fases agudas de procesos inamatorios) y se escuchan durante la fase inspiratoria y espiratoria; estas secreciones por lo general se deben a exudado, edema o presencia de sangre. Los silbidos o ronquidos son sonidos musicales de diferente intensidad y duración y pueden ser sim-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
ples o múltiples; indican obstrucción de las vías aéreas, son exacerbados por las respiraciones profundas y se escuchan en la mayoría de los procesos inamatorios en vías de solución, cuando se han secado las secreciones y quedan como formación de pequeñas costras de exudado. Cuando hay inamación pleural, la fricción entre las pleuras puede ser auscultable; ésta es más audible al nal de la inspiración y principios de la espiración y su localización en el tórax varía con la enfermedad; sin embargo, se ubica de la mitad al tercio medio ventral de la cavidad. En algunos casos la efusión disminuye la fricción de las pleuras. El roce puede sonar como crepitaciones nas, que en opinión de algunos autores es similar al ruido que se produce el caminar en la nieve o al movimiento de un oleaje suave, incluso al leve rechinido de una puerta cuando se abre. Todos estos sonidos pueden cambiar de carácter en el transcurso de muy poco tiempo. La estrechez faríngea por colapso de las paredes, el edema, los quistes o las bolsas guturales distendidas también pueden causar ruidos respiratorios como crepitaciones. La palpación y percusión son métodos muy útiles, y aunque han sido desplazados por la ultrasonograa, nos ayudan a diagnosticar diversos problemas respiratorios. La percusión puede hacerse con los dedos o con la ayuda de algún instrumento, como el plexor y el plexímetro. El ángulo de golpeteo del plexor siempre deberá ser igual, con el n de examinar completamente el campo pulmonar. Hay que recordar que el sonido de un pulmón normal (lleno de aire) debe ser resonante; el tejido sólido y los líquidos lo vuelven mate. Los caballos sanos no tosen cuando el tórax se percute y si esto ocurre indica la probable afección de un área focal.
METODOS AUXILIARES DE EVALUACIÓN RESPIRATORIA El análisis de gases arteriales es una prueba ampliamente usada para evaluar el funcionamiento pulmonar. La determinación de gases sanguíneos es costosa, pero es muy útil para valorar la eciencia respiratoria; consiste en tomar una pequeña cantidad de sangre arterial (1-3 mL), en una jeringa previamente heparinizada y con una aguja delgada (22 a 25 G); si entraran en la
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jeringa burbujas de aire, éstas deben eliminarse completamente. Posteriormente se coloca un poco de la muestra en el aparato de medición, y después de unos 20-30 segundos, se obtiene el resultado de la cantidad de PaO2. PaCO2, pH y décit de base. Las arterias más adecuadas para tomar la muestra son, en la cabeza, la arteria tranversa facial, submandibular y facial; en el cuello, la carótida, y en las patas, la metatarsiana. El aspirado traqueobronquial es un método utilizado para obtener muestras de exudados, bacterias y células del tracto respiratorio bajo del caballo. Previo rasurado del área (tercio medio del cuello), la preparación se hace con técnica aséptica; cuando sea necesario se tranquilizará a los caballos. La tráquea se palpa sintiendo los anillos traqueales; entre ellos se hace pasar un catéter del núm. 16, de 58 cm de largo. El catéter debe estar estéril y se introduce teniendo mucho cuidado de que se dirija hacia la porción distal de la tráquea, y no a la faringe; esto se hace guiando el bisel de la aguja hacia abajo. Una vez que la cánula está en el lumen traqueal se coloca lo más adentro posible y se administran, con una jeringa de 60 mL, entre 30 y 100 mL de solución de cloruro de sodio al 0.9%, de forma gentil, y, sin sacar la aguja, inmediatamente se succiona el líquido con la jeringa; si no sale nada, pueden hacerse de 2 a 3 lavados más. Una vez terminada la aspiración del contenido traqueobronquial, el catéter se remueve lentamente del cuello. De la muestra colectada se hace un cultivo bacteriológico y un análisis citológico, para determinar el tipo y la cantidad total de células que contiene. La toracocentesis es un procedimiento diagnóstico que permite obtener líquido del tórax para su examen bacteriológico y citológico, en aquellos casos en que exista sospecha de mesoteliomas, linfosarcoma o metástasis de carcinomas gástricos, efusión pleural secundaria a neumonía o abscedación pulmonar. La técnica aséptica es muy importante. Se requiere de una cánula del número 12 o 14, de 6 cm de largo, normalmente se usan cánulas metálicas para tetas. El sitio para la punción es al nivel de la 7ª y 8ª costillas, debe utilizarse anestesia local y hacerse en la cara anterior de la costilla para evitar lesionar los vasos sanguíneos y nervios intercostales. Se incide la piel y a continuación la cánula es empujada hacia el espacio pleural, lo que se reconoce por la falta de resistencia. Si no se está muy seguro de colectar el líquido, es muy importante que la cánula esté conectada a una jeringa de 20
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
mL para evitar que entre aire al tórax, de otra forma debe salir el líquido en cantidades variables, llegando en algunos casos a ser de 10-15 L de un lado. Siempre hay que hacer la punción de cada lado (izquierdo y derecho), ya que son independientes las pleuras. El líqui-
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Examen físico general en el equino
do obtenido asépticamente debe ser colectado para enviarse a citología y cultivo. Para remover la cánula debe extraerse gentilmente, sin la necesidad de suturar la piel, sólo colocando algún antiséptico en aerosol.
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Evaluación del sistema cardiovascular en el equino Lucía Pérez Manrique
INTRODUCCIÓN L sistema cardiovascular es una parte esencial del examen físico general; no debe restringirse a los casos de sospecha de enfermedades primarias del corazón, mismas que son particularmente difíciles de tratar y frecuentemente incompatibles con la actividad atlética del caballo; la funcionalidad y capacidad del sistema cardiovascular determina el desempeño en los ejercicios físicos. El presente capítulo pretende explicar de manera sencilla los eventos cardiacos anormales y la necesidad de realizar pruebas especícas del sistema cardiovascular, de acuerdo con los problemas detectados durante el examen físico general. En casos de enfermedad sistémica asociada a desequilibrio de líquidos, ácido-básico y electrolítico, es necesario evaluar el sistema cardiovascular de manera general, pero cautelosa. En síncope o signos de inestabilidad durante el ejercicio, historia de poco desempeño atlético o disminución del mismo y ante hallazgos anormales durante el examen físico general (murmullos, arritmias, edema o anormalidades en el pulso), se recomienda una evaluación a fondo de la función cardiovascular, con ayuda de herramientas diagnósticas especializadas en este sistema, como el electrocardiograma (ECG), la ecocardiografía Doppler y las pruebas funcionales. Sin embargo, es importante considerar que el caballo tiende a presentar variaciones en la función cardiaca normal (murmullos, arritmias) sin ser necesariamente patológicas, lo cual puede dicultar la evaluación e interpretación del examen. Se ha sugerido que las enfermedades cardiovasculares son la tercera causa más común del mal rendimiento, después de las afecciones musculoesqueléticas y respiratorias. Al pensar en el sistema cardiovascular, lo primero que viene a la mente es el corazón, como componente principal del sistema; sin embargo, este órgano es sólo una bomba; los vasos sanguíneos y los elementos que reejan su función (rellenado capilar, color de mucosas, estado de su estructura, temperatura periférica, características del pulso) son los principales determinantes del comportamiento del sistema. Los murmullos y arritmias no siempre indican enfermedad cardiaca primaria, pueden ser secundarios a enfermedades metabólicas con inuencia en el corazón y en la circulación periférica. Por otro lado, las alteraciones funcionales de la circulación periférica (ej. integridad periférica, vasodilatación) pueden tener efectos secundarios severos
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sobre la función cardiaca; de hecho, la afección cardiaca secundaria por enfermedades sistémicas es la más común e importante para evaluar detalladamente el sistema cardiovascular. Las causas de enfermedad cardiovascular pueden subdividirse en anatómicas (ej. malformaciones, enfermedades valvulares, miocárdicas o pericárdicas, etc.) y siológicas o funcionales ( ej. Insuciencia valvular, estenosis valvular, disfunción
miocárdica sistólica o diastólica, etc.). También pueden clasicarse según su etiología (ej. malformaciones genéticas, enfermedades degenerativas, metabólicas, endocrinas o neoplasias, etc.) A continuación se describirán los puntos que deben tomarse en cuenta durante la evaluación del sistema cardiovascular.
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Examen físico general en el equino
RESEÑA
VENAS YUGULARES
Los datos de la reseña como edad, raza, función zootécnica y sexo aportan información relevante para diferenciar las enfermedades congénitas de las adquiridas. La raza puede ser relevante en condiciones cardiacas congénitas (ej. potros árabes). La reseña junto con la condición corporal y el grado de alerta son importantes para interpretar los hallazgos del examen; por ejemplo, las razas de sangre caliente por lo general tienen una caja torácica más angosta y un corazón más grande en relación con su peso corporal, son de temperamento más agitado y, por consiguiente, más reactivos que los caballos de razas pesadas, cuya caja torácica es muy amplia, y el corazón es relativamente pequeño y de menor reactividad; estas características pueden hacer que los sonidos cardiacos sean menos aparentes y de menor frecuencia.
La inspección de las venas yugulares aporta información sobre el funcionamiento cardiaco, ya que funcionan como un manómetro natural; es posible seguir el ciclo cardiaco mediante la observación y palpación. Para examinar las venas, el caballo debe tener la cabeza en posición relajada (normal). En un caballo normal, ambas venas y su ujo sanguíneo serán simétricos. El pulso yugular es consecuencia del llenado sanguíneo; puede ser reejo de la arteria carótida (que se encuentra más profunda) y de cambios en la presión torácica con ventilación o actividad cardiaca anormal. En casos de trombosis, puede observarse ujo asimétrico (habrá que palpar ambas venas y compararlas para evaluar el grado de obstrucción). El siguiente paso para evaluar las yugulares consiste en la obstrucción de cada una de las venas en la base del cuello, para observar el tiempo de rellenado de las mismas, el cual es indicativo del retorno venoso, volumen sanguíneo relativo y aporte sanguíneo a los tejidos irrigados por las yugulares. Un rellenado normal toma entre 6 y 10 segundos en cada vena. Posteriormente se recomienda bloquear las yugulares con el dedo pulgar y de forma individual, en su porción más cercana a la mandíbula; al quitar el dedo la vena deberá colapsarse de inmediato conforme la sangre regrese al lado derecho del corazón, lo cual ocurre de manera normal dentro de un ciclo cardiaco. Después se volverá a bloquear la vena con el pulgar, y al mismo tiempo se pasará la mano sobre el trayecto de la vena hacia el corazón; en condiciones normales la sangre no regresa. Por último, al retirar el dedo que está ocluyendo el vaso, debe observarse una pulsación normal en la entrada del tórax. Si se detecta que las venas no se están llenando normalmente, se recomienda obstruirlas en la parte más proximal, y al mismo tiempo volver a hacer un barrido hacia el corazón, sin dejar de ocluir el vaso, para vericar que la vena comienza a distenderse en la entrada del tórax. Cualquier tendencia de la yugular a distenderse proximalmente es anormal. El llenado anormal de esta vena puede ser persistente (por hipertensión venosa central, problemas obstructivos como masas torácicas, endocarditis atrioventricular derecha que provoque estenosis y regurgitación, efusión pericárdica) o intermitente (por arritmias, enfermedades respiratorias, bloqueo atrioventricular de segundo grado).
ANAMNESIS Una buena anamnesis es primordial para guiar el diagnóstico; en ésta se investiga si el inicio de los signos clínicos coincide con los cambios de manejo (cambios en el grupo de animales, nutrición, medio ambiente, tipo de entrenamiento pasado y actual), y si el paciente ha presentado ebre, enfermedades respiratorias, tremores, inestabilidad, tropiezos durante la locomoción o colapsos. También es relevante informarse sobre el contexto, frecuencia y duración con que se presentan los signos. Al tomar los datos, se debe indagar sobre el estado y cambios del ambiente (temperatura y humedad), medicina preventiva y tratamientos que se estén administrando.
INSPECCIÓN Y PALPACIÓN El examen comienza desde que el caballo sale de la caballeriza: el clínico debe observar la actitud del paciente, apariencia general (condición corporal), postura, fases durante la locomoción y respiración (patrón, esfuerzo y frecuencia); valorar si hay anormalidades como edema o distención abdominal. Ya con el caballo cerca, se evalúan las venas yugulares y la vasculatura periférica.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
VENAS PERIFÉRICAS La venas periféricas se evalúan también mediante observación y palpación. Las mucosas normales tienen un color rosado y un tiempo de rellenado capilar de 1 a 2 segundos. El clínico debe palpar las extremidades y el abdomen ventral en busca de edema; valorar el estado de hidratación según la turgencia de la piel y el tiempo de rellenado capilar y yugular. Las venas cefálicas y safenas corren en el interior de los miembros torácicos y pélvicos, respectivamente. Bajo condiciones normales se encuentran distendidas; así mismo, en caballos atletas se observan los vasos cutáneos dilatados y en cantidad abundante después del ejercicio. Cualquier hallazgo de distención de vasos cutáneos regionales fuera de estos contextos es anormal. En casos de estabulación prolongada e inactividad física, es común encontrar distención venosa por congestión crónica, lo cual pude también asociarse a fallas en las valvas de vasos superciales. Al igual que en las yugulares, habrá que palpar las áreas afectadas, pues comúnmente son pulsátiles.
red torácica izquierda, de lo cual resulta que el pulmón izquierdo sea más pequeño que el derecho. También del lado izquierdo, las dos cámaras ventriculares están en contacto con la pared torácica, entre el tercero y el quinto espacios intercostales, a la altura de la punta del codo; del lado derecho, sólo el ventrículo derecho toca la pared torácica en el tercero y el cuarto espacios intercostales. La proyección cardiaca hacia el lado izquierdo hace que la palpación y auscultación sea más reveladora de este lado. La disposición del corazón permite la evaluación de las cuatro valvas (incluyendo la atrioventricular derecha) también del lado izquierdo. La detección de tremores precordiales a la palpación es un hallazgo anormal, es importante identicar su localización dentro del tórax y ubicarlos en el ciclo cardiaco.
PULSO ARTERIAL El pulso es palpable en las arterias: facial, submandibular, transversa facial, carótida, radial, digital común, digital, safena y coccígea. Debe evaluarse su frecuencia, ritmo y carácter, tanto en la región de la cabeza como en sitios periféricos. Cuando se detectan variaciones marcadas en la frecuencia e intensidad del pulso, se sospechará de arritmias cardiacas. Pulsos fuertes, irregulares y acelerados entre la sístole y la diástole pueden ser indicativos de insuciencia de la valva aórtica.
F 1. Localización del corazón dentro de cavidad torácica. Lado izquierdo
CORAZÓN El gran tamaño y volumen del corazón del equino lo hacen fácilmente localizable para su palpación y auscultación. Este órgano ocupa casi toda la mitad craneal de la cavidad torácica. Aunque los dos lados del corazón se conocen como derecho e izquierdo, las cámaras ventriculares más bien son craneales y caudales, pues el ventrículo derecho se localiza frente al izquierdo. Su relación con el diafragma y pulmones dentro de la caja torácica se ilustra en la gura 1. La posición del corazón está ligeramente cargada hacia la izquierda de la línea media, quedando proyectado más cerca de la pa-
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F 2. Localización del corazón dentro de cavidad torácica. Lado derecho
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
El corazón tiene componentes activos y pasivos, por lo cual se necesitan diferentes métodos para evaluar sus estructuras y funciones asociadas. Para una acción cardiaca normal, debe producirse una coordinación de la actividad eléctrica, de la contracción y la relajación muscular y del movimiento valvular. Los eventos cardiacos son eléctricos y mecánicos, y los padecimientos debidos a su deciencia pueden dividirse de esta misma manera. Las enfermedades de la conducción eléctrica se traducen en bloqueos o arritmias; y las mecánicas, en soplos o murmullos, pues se producen por fallas en el cierre de las valvas, lo cual provoca un retorno de la sangre en dirección opuesta a su ujo normal. El tejido cardiaco especializado en la conducción eléctrica está formado por el nodo sinoatrial, las vías internodales, el nódulo atrioventricular , la rama de His y sus ramas, los fascículos y el sistema de Purkinje. El nódulo sinoatrial es una estructura grande localizada subpericárdicamente al nivel de la unión de la aurícula derecha y la vena cava craneal. Las enfermedades del nódulo sinusal son raras, pero las arritmias sinusales inducidas por el vago son frecuentes en el equino. El nódulo atrioventricular se localiza en la parte ventral del tabique atrial, y la rama de His, que se continúa en sus ramas divisorias, son las zonas para el bloqueo atrioventricular, siológico (vagal) y, raras veces, patológico. El sistema nervioso autónomo inerva de manera extensa el corazón e inuye sobre el ritmo cardiaco. La interacción entre las ramas simpáticas y parasimpáticas controla la frecuencia y el ritmo cardiaco en respuesta a los cambios en la presión arterial sanguínea. En general, la inuencia vagal es depresora de la frecuencia cardiaca, la conducción atrioventricular, la excitabilidad y la contractilidad del miocardio. La inervación del sistema nervioso simpático estimulador es extensa en el corazón y tiene un efecto opuesto al del parasimpático. Los receptores β1 adrenérgicos dominan en el corazón del equino, pero también existen subtipos de receptores autónomos: adrenérgicos y probablemente adrenorreceptores β2. Durante el ejercicio, la frecuencia de los latidos por minuto puede incrementarse hasta 220-240, de manera normal; este aumento se asocia al incremento de la actividad simpática eferente y la suspensión del tono parasimpático.
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Examen físico general en el equino
F 3. Dibujo del corazón, cámaras y grandes vasos del lado izquierdo.
F 4. Dibujo del corazón, cámaras y grandes vasos del lado derecho.
AUSCULTACIÓN CARDIACA La auscultación cardiaca debe realizarse en un ambiente silencioso, con el caballo restringido y de pie. Existen estetoscopios especiales para ello, que tienen dos lados: el de la campana, que sirve para detectar los sonidos de baja frecuencia, y la porción diafragmática, para los de alta frecuencia. Algunos sonidos que pueden interferir con la auscultación cardiaca son los tremores subcutáneos, el roce con el pelo del animal y los ruidos intestinales. Se deben evaluar ambos lados del tórax y las regiones anatómicas respectivas a las valvas cardiacas. La valva mitral se localiza en el
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
quinto espacio intercostal izquierdo, y dorsal al punto medio, entre el hombro y el esternón. La valva aórtica se detecta en el tórax izquierdo en el cuarto espacio intercostal y ventral a la punta del hombro, justo en el borde caudal del músculo tríceps. La valva pulmonar se ausculta en el tercer espacio intercostal del lado izquierdo, igualmente ventral a la punta del hombro, pero más profundo que el músculo tríceps. La valva tricúspide se proyecta en el tercer espacio intercostal, ligeramente dorsal al punto medio entre el hombro y el esternón, y más profundo al músculo tríceps; del lado derecho, la valva tricúspide se puede auscultar entre el tercer y cuarto espacio intercostal en el tercio ventral del tórax.
F 5. Dibujo del corazón dentro del tórax y áreas de auscultación.
SONIDOS CARDIACOS Los eventos mecánicos o de presión del ciclo cardiaco se denominan sístole y diástole, la sístole o contracción ventricular es el primer sonido cardiaco, o S1, que corresponde al cierre de las válvulas atrioventriculares (AV): la contracción ventricular, en un inicio, provoca que la sangre contenida en los ventrículos se mueva. Durante el cierre de la valva AV, al inicio de la sístole, la sangre de los ventrículos detiene su movimiento súbitamente por el cierre de dichas valvas y la contención de las paredes de los ventrículos. La presión dentro de cada ventrículo se incrementa continuamente, pero el volumen dentro de cada cámara se mantiene; inmediatamente después, hay una aceleración mientras la valva aórtica se abre y la sangre es expelida hacia la aorta. El sonido S1 es el de mayor intensidad, de duración larga y frecuencia baja; se ausculta más claro sobre la región atrioventricular izquierda.
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El segundo sonido cardiaco, o S2, corresponde al cierre de las válvulas semilunares. Éste se distingue al nal de la sístole ventricular, por una desaceleración súbita de la sangre que viaja por la aorta y la arteria pulmonar. Los eventos elásticos de estos vasos hacen que la sangre choque con las valvas semilunares ya cerradas. El S2 es detectado con más detalle sobre las valvas semilunares. Se caracteriza por ser corto e intenso, principalmente cuando se ausculta en la base del corazón. Su frecuencia alta y de corta duración lo hacen fácil de ser percibido, aunque el S1 es más fuerte. Tanto S1 como S2 son reejos mecánicos de la sístole ventricular que marcan el comienzo y el nal del tercer ruido. El tercer ruido cardiaco o S3, corresponde al llenado ventricular; se detecta justo al nal de este proceso, al inicio de la diástole y más próximo al sonido S2 que a la longitud del sonido de la diástole; se produce por el rebote de la sangre con las paredes de los ventrículos y la desaceleración de la sangre conforme se van llenando estas cámaras al principio de la diástole ventricular. Bajo condiciones normales, el S3 es de baja frecuencia y muy suave, sin embargo, varía mucho según la frecuencia cardiaca, pues puede ser prolongado y fuerte, sobre todo en caballos atletas. Éste se ausculta tanto del lado derecho como del izquierdo del tórax. Algunos autores lo consideran como la parte nal de S2, otros lo toman por un sonido diferente, pues hay un intervalo muy distinguible entre ambos. El S4 corresponde al sonido de la contracción atrial; ocurre justamente después de la contracción de los atrios y probablemente es causado por el rebote de las paredes ventriculares después del inujo de la san gre que viene de los atrios. Es un sonido muy corto, de baja frecuencia, que se detecta mejor sobre el área de los ventrículos. En ocasiones es difícil diferenciarlo del S1, por ser un sonido suave. En caballos con bloqueos atrioventriculares, este sonido se percibe fácilmente, ya que la contracción atrial no es seguida por la sístole ventricular. Al igual que el S3, el S4 es parte de la diástole y puede escucharse también en ambos lados del tórax.
CICLO CARDIACO Y SU EVALUACIÓN CLÍNICA Como ya se mencionó al principio, el objetivo de este capítulo es dar a conocer la nalidad de las herramientas diagnósticas y metodología de la evaluación del
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sistema cardiovascular; sin embargo, para el entendimiento de sus alteraciones particulares se recomiendan lecturas más especializadas. La actividad eléctrica del corazón se evalúa mediante el electrocardiograma, que consiste en gracar las ondas que produce. La onda P es el resultado de la despolarización atrial al nal de la diástole ventricular, y después de que los ventrículos se llenaron pasivamente. Es la contracción atrial la que genera el sonido atrial S4. El aumento en la presión atrial, que es la onda atrial a, se reeja en el sistema venoso sistémico, causando un pulso yugular normal en la región cervical ventral. El complejo QRS representa la sístole ventricular. Después de la despolarización de las células musculares ventriculares (miocitos), hay una tensión. Estos cambios provocan un aumento en la tensión de la pared ventricular y la presión intraventricular; entonces, las válvulas atrioventriculares se cierran una vez que la presión atrial ha sido excedida (generando el S1), la presión intraventricular aumenta, y posteriormente se abre la válvula semilunar; en este momento, las paredes ventriculares se movilizan hacia adentro y se eyecta la sangre hacia los grandes vasos. Al contraerse durante la sístole, el ventrículo izquierdo golpea la pared torácica caudal al olécranon izquierdo, causando el impulso cardiaco (que puede ser auscultable y palpable de manera caudal al olécranon izquierdo). Este movimiento sistólico inicial coincide con la apertura de la válvula aórtica (guía importante durante la auscultación). El retraso entre el incio del QRS y la apertura de las valvas semilunares se denomina preeyección; puede ser medible por ultrasonido y constituye un índice de la contractilidad miocárdica ventricular. La velocidad con la cual la sangre es eyectada hacia la arteria pulmonar y hacia las arterias sistémicas se puede determinar a través de la ecocardiografía. Una reducción en la velocidad normal (400 ms durante el reposo) sugiere disminución de la funcionalidad ventricular. Los soplos de eyección sistólica funcional generalmente son audibles durante la eyección. Por denición, estos soplos deben de comenzar después de S1 y terminar antes de S2. Conforme la sangre se va eyectando de los ventrículos, la presión de los mismos disminuye por debajo de la correspondiente a las arterias; se cierra entonces la válvula semilunar produciendo el segundo sonido cardiaco (S2). La válvula pulmonar puede cerrarse antes o después que la aórtica, pero un cie-
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Examen físico general en el equino
rre asincrónico de ésta valva puede conducir a un desdoblamiento audible del S2, que es normal, siempre y cuando no sea extremo, en cuyo caso puede tratarse de enfermedad pulmonar.
F 6. Ciclo cardiaco y su relación con EGC y sonidos cardiacos.
La contracción de los ventrículos disminuye la presión atrial, conduciendo a un descenso en la curva de la misma, y a un breve colapso sistólico de la vena yugular. Después del llenado atrial durante la sístole ventricular, se produce una onda de presión positiva, la onda v, en la curva de presión atrial. Una grave regurgitación tricuspídea acentúa esta onda y puede provocar una pulsación sistólica patológica en el surco yugular. Por último, la presión ventricular declina en relación con la relajación ventricular y el cierre de las valvas semilunares. Una vez que los ventrículos se han relajado y la presión atrial excede a la ventricular, las valvas atrioventriculares se abren, lo cual produce el llenado. La presión ventricular aumenta ligeramente durante esta fase. Un llenado rápido puede asociarse con un soplo protodiastólico funcional, que termina con el S3. La pérdida de volumen atrial y la declinación correspondiente en la presión arterial se reeja en el surco yugular como un colapso venoso. Después del llenado rápido, se presenta un periodo de llenado a una velocidad extremadamente baja, denominada diástasis (parte de la diástole ventricular). Este periodo puede durar unos segundos durante una bradicardia sinusal o una arritmia sinusal pronunciada, entonces la yugular puede manifestar un llenado prominente. La última fase de la diástole es la contribución al llenado ventricular causado por la contracción atrial. Los soplos presisitó-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
licos funcionales se asocian con este periodo entre el S4 y S1.
CONCLUSIÓN Mediante el examen físico y una correcta auscultación, en primera instancia debe indagarse la existencia de alteraciones cardiacas, en cuyo caso habrá que evaluar el sistema cardiovascular con herramientas diagnósticas más especícas, en reposo y durante el ejercicio.
Es importante tomar en cuenta que en el caballo hay alteraciones no patológicas que requieren diferenciarse de aquellas que sí lo son, sobre todo por estar tratando con pacientes (en su mayoría) atletas, cuyo n zootécnico involucra también un alto riesgo para los jinetes. A continuación se muestra un cuadro que resume la nalidad de cada paso de la evaluación cardiovascular y de las distintas herramientas diagnósticas.
HERRAMIENTAS DIAGNÓSTICAS Y SU FINALIDAD DURANTE LA EVALUACIÓN CARDIOVASCULAR Historia y examen físico Función zootécnica. Frecuencia y ritmo cardiaco +. Examen de pulso arterial, llenado y presión. Inspección de membranas mucosas. Evaluación de acúmulo anormal de líquidos (pulmonar, pleural, peritoneal, subcutáneo). Auscultación cardiaca y pulmonar. Electrocardiografía Frecuencia y ritmo cardiaco y secuencia de conducción. Complejos P-QRS-T (conguración, amplitud, duración y eje).
Electrocardiograma antes y después del ejercicio. Ecocardiografía (ultrasonido)
Dimensiones cardiacas. Anatomía cardiaca. Función ventricular sistólica. Movimientos valvares. Velocidades de llenado. Estimación de presiones intracardiacas (Doppler). Estimación de volumen y función ventricular (Doppler). Radiografía torácica Evaluación de espacio pleural, parénquima y vascularidad pulmonar. Estimación de tamaño cardiaco (potros). Patología clínica Hemograma completo y brinógeno (anemia e inamación). Perl bioquímico sérico (electrolitos, función renal, enzimas musculares para detección de arritmias, identicación de hiperazoemia
y reconocimiento de lesiones miocárdicas con concentración de isoenzimas cardiacas, creatina-cinasa o lactato deshidrogenasa y troponina). Proteínas séricas (hipoalbuminemia e hiperglobulinemia). pH arterial y gasometría (función pulmonar, renal, estado ácido básico). Urianálisis (lesión renal por insuciencia cardiaca o endocarditis).
Cultivo de sangre (bacteriemia y diagnóstico de endocarditis). Estudios radionucleares Detección de ujo sanguíneo.
Perfusión pulmonar. Función ventricular. Cateterización cardiaca y angiocardiografía Diagnóstico de ujo sanguíneo anormal. Identicación de presiones intracardiacas e intravasculares anormales.
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Examen físico general en el equino
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Examen del aparato urinario en el equino Alma Angélica García Lascuráin
INTRODUCCIÓN L ñ z dos funciones esenciales en el mantenimiento de la homeostasis: eliminación de productos de desecho y control del contenido del agua corporal y los minerales; además, son órganos endocrinos muy importantes que producen renina, eritropoyetina y la forma activa de la vitamina D; asimismo, participan de manera signicativa en la degradación y excreción de varias hormonas, incluyendo gastrina y paratohormona. Cuando se examina a un caballo en el que se sospecha enfermedad de las vías urinarias, es necesario realizar una investigación completa con una secuencia lógica, por medio de la reseña, la historia clínica y el examen físico, de manera que resulte una elección juiciosa de las pruebas que deberán aplicarse.
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HISTORIA CLÍNICA Y EXAMEN FÍSICO Se debe obtener una historia clínica completa y hacer un buen examen físico. La historia debe contener información de la duración y tipo de signos clínicos, número de caballos afectados, dieta, medicamentos administrados y respuesta al tratamiento, así como del consumo de agua y la producción de orina. La polaquiuria (orinar frecuentemente) puede ocurrir en hembras en estro y en machos o hembras con cálculos o cistitis. El aumento en la producción de orina se observa en enfermedad renal, adenoma pituitario, problemas de comportamiento (polidipsia primaria) y diabetes insípidas o mellitus. Se puede determinar el consumo de agua en 24 horas, al proveer al caballo del volumen de agua acostumbrado. El consumo puede variar según las condiciones del ambiente, nivel de actividad y dieta. La producción de orina, que va de 5 a 15 L en un caballo con función renal normal, es más difícil de determinar. En las yeguas se puede usar una especie de arnés para colectar orina en 24 horas, o una sonda de Foley y una bolsa colectora de orina, aunque ambos métodos tienen aplicación limitada en la clínica. En machos se emplea una botella grande de plástico, a la que se le corta el fondo, que se coloca en el prepucio y se va recolectando la orina cada cierto tiempo. Durante este proceso el caballo debe estar sujeto o en shuts. En los caballos con enfermedad del tracto urinario las quejas más comunes son pérdida de peso y micción anormal. Otros signos clínicos varían según la causa y sitio del problema, y pueden incluir ebre, anorexia, depresión, edema ventral, úlceras orales, sarro excesivo, cólico, irritación o el perineo o las patas traseras manchadas de sangre. Aunque el dolor lumbar y la claudicación de miembros pélvicos se ha atribuido a enfermedad del tracto urinario, casi siempre la causa de estos signos es un problema musculoesquelético. La disminución de la condición física puede estar originada en la enfermedad renal, pero la mala condición normalmente es resultado de la hiperazoemia, más que de dolor renal. Ocasionalmente un caballo con urolitiasis o neoplasia renal puede tener cólicos recurrentes. En estos caballos se debe revisar si la micción es frecuente, qué postura adquieren al orinar o si hay disuria o hematuria. Además de un examen físico completo, es necesario incluir la palpación rectal en la evaluación de todos
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Examen físico general en el equino
los caballos en que se sospeche enfermedad del tracto urinario. Al palpar la vejiga se determina el tamaño, grosor de la pared y presencia de cálculos o masas. Si la vejiga está llena, se cateteriza y se vuelve a palpar. También de esta manera se determina el tamaño y la textura del riñón izquierdo en el polo caudal. Los uréteres generalmente no se palpan a menos que estén agrandados u obstruidos, pero sí el abdomen dorsal (curso retroperitoneal de uréteres) y el trígono, para saber si son detectables. La dilatación de un uréter se produce en casos de pielonefritis o ureterolitiasis. De igual forma se evalúa el sistema reproductivo, para determinar el problema que está causando signos clínicos.
HEMATOLOGÍA Y BIOQUÍMICA CLÍNICA Un proceso inamatorio o infeccioso se ve con una cuenta celular blanca elevada (leucocitosis) y aumento de la proteína total o brinógeno. Puede encontrarse anemia ligera (Ht 20-30%) por disminución en la producción de eritropoyetina y una vida media corta de los eritrocitos en caballos con insuciencia renal crónica. Los índices más usados para evaluar la función renal son: tasa de ltración glomerular (TFG), nitrógeno ureico sanguíneo (BUN) y creatinina (Cr). Éstos aumentan cuando la mayoría de las nefronas (75%) no son funcionales. La urea se puede determinar por métodos directos o indirectos. El método directo es la reacción de diacetil monoxima, en el que la urea reacciona con el diacetil, después de la hidrólisis, a diacetil e hidroxilamina. Se puede determinar la concentración de urea por medio de espectrofotometría. El método indirecto se basa en la conversión enzimática de urea a amonio y ácido carbónico por la ureasa. La creatinina se evalúa por diferentes métodos, el más común es la reacción de Jae, que es un método colorimétrico. Los parámetros de las concentraciones de urea y creatinina varían según el país y el procedimiento empleado. Éstas se pueden obtener en mg/dL, milimoles/L y en micromoles/L. Para convertir BUN de mg/dL a milimoles/L y Cr de mg/dL a micromoles/L se multiplica por 0.357 y 88, respectivamente. El término azoemia se emplea para describir una elevación de BUN y Cr; es solamente una anormalidad de laboratorio. La hiperazoemia puede ser de origen prerrenal, por disminución de la perfusión renal; atri-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
buirse a enfermedad renal primaria, o acompañar enfermedades obstructivas o disrupción del tracto urinario (hiperazoemia posrenal). Por lo tanto, la BUN y la Cr se deben interpretar de acuerdo con el estado de hidratación, el problema actual y los hallazgos físicos. La hiperazoemia posrenal es la de mayor grado y la de tipo prerrenal, la de menor. Sin embargo, los rangos de hiperazoemia no identican su tipo. Lo que se ha hecho es estudiar la relación BUN/Cr, la cual será mayor para la prerrenal y posrenal que para la renal. En caballos, esta relación se ha usado más para diferenciar la insuciencia renal aguda de la crónica. En la forma aguda la creatinina aumenta proporcionalmente más que el BUN, arrojando una relación menor de 10:1. La forma crónica sobrepasa esta relación. El radio BUN/Cr es también útil para evaluar el consumo de proteína en casos de insuciencia renal crónica. Los términos “hiperazoemia prerrenal” e “insuciencia prerrenal” describen el aumento reversible en BUN y Cr, asociado con hipoperfusión renal. Son términos que se usan cuando se desconoce el daño renal que acompaña varias condiciones médicas. La hiperazoemia prerrenal se diferencia de la insuciencia renal al evaluar la habilidad para concentrar orina. En la primera se demostrará una densidad urinaria mayor de 1.020 y una osmolalidad urinaria mayor de 500 mOsm /kg. En contraste, en la insuciencia renal se habrá perdido la habilidad de concentrar la orina, por lo que la densidad urinaria será menor de 1.020 y la osmolalidad, menor de 500 mOsm/kg, en caso de deshidratación. Sin embargo, esto es válido antes de iniciar la terapia de líquidos y la medicación con alfa-2 agonistas o furosemida, que afectan el ujo y la concentración urinaria. También puede evaluarse el nitrógeno ureico, creatinina y excreción fraccional de sodio para diferenciar hiperazoemia prerrenal de insuciencia renal. Por ejemplo, caballos con hiperazoemia prerrenal tendrán relación de creatinina-orina:suero de más de 50:1 (orina concentrada) y una excreción fraccional de sodio menor de 1% (indicando adecuada función tubular); y en caballos con enfermedad renal tendrán radios menores de 37:1 y excreción fraccional mayor de 0.8%. La hipoperfusión renal se acompaña de pérdida progresiva en la habilidad de concentrar. Se sospecha de hiperazoemia posrenal cuando hay signos clínicos de obstrucción o lesión del tracto urinario, como disuria y cólico renal. Si se rompe la vejiga, algunos potros y caballos adultos continúan
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orinando, mientras que la distensión abdominal progresa (uroperitoneo). Se conrma al obtener más del doble del valor normal de creatinina en el peritoneo, comparado con el valor en suero. En ocasiones, los potros con problemas de uraco o los machos con problemas de uretra presentarán un aumento de exudado en la pared abdominal o en el prepucio, respectivamente. También deben evaluarse electrolitos séricos, proteínas (albúmina y globulina), concentración de glucosa y actividad muscular enzimática. Los caballos con enfermedad renal presentan comúnmente hiponatremia e hipocloremia. La concentración sérica de potasio puede ser normal o elevada en insuciencia renal aguda o crónica. La hipercaliemia es más seria cuando hay lesión severa del tracto urinario y el uroperitoneo. Puede haber hipercalcemia e hipofosforemia en insuciencia renal crónica, principalmente cuando se les alimenta con alfalfa, pero son más comunes en insuciencia renal aguda. La albúmina se pierde en las glomerulopatías con pérdida de la proteína en la orina. En enfermedad renal crónica pueden disminuir las proteínas y la albúmina. La hiperglucemia (> 150-175 mg/dL) debida a estrés, ejercicio, sepsis, adenoma pituitario o diabetes mellitus son causas de glucosuria. Cuando hay pigmenturia, se deben evaluar las enzimas musculares, para diferenciar hemoglobinuria de mioglobinuria o hematuria.
URIANÁLISIS El análisis de orina se realiza cuando se sospecha de enfermedad del tracto urinario. Se debe colectar en un frasco, por cateterización uretral o vía cistocentesis en potros. Los caballos no se estimulan tan fácilmente como las vacas para orinar, pero generalmente lo hacen unos minutos después de que son llevados a una caballeriza con cama limpia. También la estimulación manual de la vejiga por palpación rectal puede provocar la micción. Se evalúa el color, claridad, olor, viscosidad y densidad urinaria. Normalmente la orina en los caballos es de amarillo pálido a amarillo oscuro y turbia, debido a los cristales de carbonato de calcio y al moco. Al nal de la micción tiende a ser más turbia, ya que es cuando se eliminan mayores cantidades de cristales. Si hay pigmenturia habrá que observar el tiempo y duración en que pasa la orina sin color para localizar la causa. Si se presenta durante la micción, se sospe-
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chará de mionecrosis o lesión vesical o renal, mientras que si se detecta al inicio o al nal, puede deberse a lesiones de la uretra o las glándulas accesorias.
EVALUACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN URINARIA La densidad urinaria nos permite conocer de manera aproximada el número de partículas en la orina y es un estimado de la concentración. Aunque la determinación es rápida y fácil con un refractómetro, debemos tener en cuenta que sería más preciso hacerlo por osmolalidad, por la presencia de moléculas grandes en la orina, como glucosa o proteínas. La densidad urinaria (DU) es usada para separar la concentración en tres categorías: 1) orina que está más diluida que el suero (hipostenuria o DU < 1.008 y osmolalidad menor de 260 mOsm/kg); 2) orina y suero de igual osmolalidad (isostenuria o GE de 1.008-1.014 y osmolalidad de 260-300 mOsm/kg); y 3) orina que está más concentrada que el suero (DU > 1.014 y osmolalidad mayor de 300 mOsm/kg). Aunque la orina de la mayoría de los caballos está concentrada (3-4 veces más que el suero, con DU de 1.025-1.050 y osmolalidad de 900-1200 mOsm/kg), en ocasiones algunos caballos producen orina diluida o muy concentrada. Por ejemplo, cuando los caballos con función renal normal no toman agua por 24-72 horas, producen orina con una DU mayor de 1.045 y osmolalidad mayor de 1500 mOsm/kg. Al contrario, los potros tienen orina hipostenúrica como consecuencia de su dieta, basada principalmente en leche. Los caballos con insuciencia renal crónica, por lo general presentan isostenuria.
ANÁLISIS CON TIRAS REACTIVAS El pH de la orina de los caballos generalmente es alcalino (7.0-9.0). El ejercicio excesivo y la bacteriuria pueden acidicarla. Ésta última a veces da a la orina un olor a amoniaco. Los alimentos concentrados pueden causar un pH neutral. Entre más diluida se encuentre la muestra de orina, el pH estará más cercano a 7.0. Si se encuentra proteinuria puede deberse a enfermedad glomerular, bacteriuria, o piuria, y en ocasiones al ejercicio previo. La orina normal del caballo no contiene glucosa; su presencia es causada por hiperglucemia, o por la administración de soluciones con glucosa, productos
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Examen físico general en el equino
de nutrición parenteral, alfa-2 adrenérgicos o corticosteroides. Cuando hay glucosuria sin hiperglicemia se debe sospechar de enfermedad tubular. La glucosuria se ha observado en caballos con insuciencia renal aguda. Si en las tiras reactivas se detecta sangre puede ser porque contiene hemoglobina, mioglobina, o células rojas. Es conveniente asociar la bilirrubinuria a hemólisis intravascular, necrosis hepática y a hepatopatías.
EXAMEN DEL SEDIMENTO La prueba del sedimento casi no se emplea en los caballos. En ésta se evalúan cilindros, eritrocitos, leucocitos y células epiteliales, y se determina si hay bacterias. En la orina del caballo la presencia de cilindros es rara y se asocia a procesos infecciosos o inamatorios. Un gran número de eritrocitos indica procesos infecciosos, inamatorios, toxemia, neoplasia o ejercicio. La piuria ocurre por infecciones o inamación. En la orina normal del caballo no deben encontrarse bacterias; sin embargo, el hecho de que el sedimento esté libre de ellas no quiere decir que no las haya, por lo cual, cuando se sospeche de cistitis o pielonefritis, es necesario hacer un cultivo de una muestra tomada por cateterización o cistocentesis (en potros). Finalmente, la orina del caballo es rica en cristales de fosfato de calcio, de oxalato de calcio y, principalmente, de carbonato de calcio. Existen otras pruebas para la evaluación del aparato urinario del caballo, algunas son sencillas, otras complejas, ya sean económicas o caras, entre las cuales están la enzimuria (detecta diferentes enzimas en la orina); la excreción fraccional de electrolitos; las técnicas de imagen, como el ultrasonido (transrectal o transabdominal), la radiología (que rara vez en caballos adultos, y con más frecuencia en potros o caballos miniatura), el medio de contraste, la escintigrafía nuclear y la endoscopia; las pruebas especializadas como la cateterización uretral, la privación de agua y la prueba de la hormona antidiurética (prueba simple para determinar si la poliuria hipostenúrica es ocasionada por polidipsia psicogénica o diabetes), medidas cuantitativas de la función renal (urea y creatinina), biopsia renal (guiada por ultrasonido) y procedimientos urodinámicos (cistometrografía y presión uretral, todavía usadas experimentalmente en caballos sanos).
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Metodología diagnóstica de la piel en equinos Enrique Núñez Hernández Alma A. García Lascuráin
INTRODUCCIÓN L la piel o dermatosis son muy comunes en los equinos y representan un reto para el clínico, ya que su diagnóstico no es un procedimiento sencillo, por la similitud de los signos clínicos entre ellas. El diagnóstico clínico orientado a problemas (DOAP), es un método dirigido a la identi cación de los problemas reconocibles de cualquier enfermedad, y en el caballo es un efectivo camino de exploración de las enfermedades dermatológicas. El objetivo inicial debe ser la identicación del signo clínico predominante, y de éstos, los más importantes en dermatología son: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Prurito Alopecia y alteraciones en la calidad y cantidad del pelo (dermatosis alopécica). Lesiones nodulares Escaras, escamas y costras (dermatosis seca) Secreciones y escurrimientos (dermatosis húmedas) Alteraciones pigmentarias
Para poder determinar o reconocer estos signos, es importante realizar un cuidadoso examen clínico del paciente.
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PARTE 1 - CAPÍTULO 3
HISTORIA CLINICA La historia clínica es indispensable para obtener los principales diagnósticos diferenciales. Todas las preguntas enlistadas en una forma simple deben ser respondidas, incluyendo el área geográca, la estación del año y el entorno local.
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EXAMEN CLINICO El examen clínico se divide en dos partes: revisión de las condiciones generales del animal y examen por aparatos. Se detalla la condición de la piel y capa de pelo, se señala la morfología de las lesiones cutáneas presentes. Los diagramas y la listas sencillas de términos son una guía útil para anotar los hallazgos físicos, en primer lugar, la condición del animal. El examen clínico general debe realizarse en su totalidad para determinar si el proceso de enfermedad es limitado a la piel o si algunos otros signos de enfermedad están presentes. La distribución de las lesiones, así como alguna área en particular que esté afectada deben ser anotadas. Aquí se examinarán el tamaño y la morfología de las lesiones individuales; si todas las lesiones tienen la misma forma, o si están mezclados diferentes tipos: pápulas, nódulos, ronchas, vesículas, zonas de alopecia. Hay que inspeccionar las mucosas y la supercie de la piel para determinar la presencia de lesiones que no son detectadas a simple vista, como costras bajo el pelo, resequedad, parásitos o linfadenopatía periférica. Después del examen, se hace la lista de los problemas detectados en éste, para establecer los diagnósticos diferenciales, considerando la probabilidad y posibilidad de causar la enfermedad. Los algoritmos o cartas de ujo son útiles para todos los clínicos.
FUNCIONES GENERALES Y PROPIEDADES DE LA PIEL La piel es el órgano más grande y visible del cuerpo, funciona de manera sinérgica con otros aparatos y sistemas del cuerpo, por lo que puede reejar diferentes procesos patológicos primarios de ellos. Las funciones y propiedades generales de la piel son: ❏
Barrera interna: impide la pérdida de agua, electrolitos, macromoléculas y provee soporte interno para varios órganos.
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Examen físico general en el equino
Almacén: reserva de vitaminas, grasas, carbohidratos, proteínas, agua, electrolitos y otros materiales. Barrera protectora: contra factores químicos y físicos como calor, frío, organismos microbiológicos y luz ultravioleta (melanocitos). Percepción sensorial: para calor, frío, dolor, palpación, presión y prurito. Regulador de temperatura corporal: a través de la capa de pelo. Regulador de la presión sanguínea: por cambios en la vasculatura periférica. Productor de estructuras queratinizadas: como pelo, casco y la capa más externa de la epidermis. Órgano secretor y excretor: mediante glándulas apocrinas y sebáceas que incluyen factores antimicrobianos. Provee exibilidad, elasticidad o rigidez: para permitir dar forma a la estructura del pelo. Es un órgano inmunovigilante: a través de los queratinocitos, linfocitos y células de Langerhans. Indicador de la salud general: piel ictérica, puede indicar disfunción hepática. Movimiento y forma: la exibilidad, elasticidad y resistencia de la piel permiten los movimientos, además coneren la gura y forma del cuerpo. Producción de vitamina D3 (colecalciferol): se forma en la epidermis a partir de la provitamina D 3.
ANATOMÍA DE LA PIEL La piel está formada de dos capas: dermis y epidermis. La epidermis a su vez consta de cuatro capas: basal espinosa, granular, transparente y córnea, en orden de mayor a menor profundidad. Cada una está formada por diferentes tipos de células con su propia función. Los queratinocitos basales contienen melanosomas, que son estructuras como lamentos intermedios de queratina. Otras estructuras que ayudan a la cohesión celular y a la formación de la capa basal son las células conocidas como desmosomas y hemidesmosomas. La dermis tiene diferentes células que son esenciales para el funcionamiento normal de la piel: broblastos, macrófagos, histiocitos, eosinólos y mastocitos en la matriz brosa y no brosa. La matriz brosa contiene colágeno y bras elásticas. La matriz no brosa consiste de glicosaminoglicanos y proteoglicanos. Los vasos sanguíneos, linfáticos, nervios, pelo y glándulas sudoríparas y sebáceas se encuentran en la dermis. Las
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
glándulas sudoríparas y sebáceas en el caballo son más grandes y numerosas, comparadas con otras especies, característica que les permite sudar más fácilmente por todo el cuerpo. Los patrones de crecimiento de pelo tienen relación estacional, lo cual es completamente dependiente de las horas luz/día. La respuesta de la piel a una enfermedad reeja cambios en su apariencia física y textura, incluyendo alteraciones en la densidad y color del pelo.
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PELO
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El pelo tiende a ciclar de una manera especíca. Inicialmente los pelos están en crecimiento o fase anágena, progresivamente cambian a una fase intermedia o fase catágena y de ahí a una de reposo o fase telógena. Diferentes condiciones, incluida la temperatura, fotoperiodo y hormonas afectan el ciclo del pelo. Los folículos pilosos están localizados dentro de la dermis y en contacto con las glándulas sudoríparas y sebáceas.
ESTRUCTURAS ADICIONALES RELACIONADAS CON LA PIEL Los équidos tienen estructuras queratinizadas únicas en la piel: espolón, espejuelo y casco. El espolón es una pequeña masa de tejido cornicado, que se localiza en un manojo de pelos en la supercie exora de cada menudillo. Es un vestigio del segundo y cuarto dígitos. El espejuelo es una masa de tejido córneo situada en la supercie medial del radio y se cree que sea un vestigio del primer dedo. El casco es una cubierta córnea sobre la porción distal del tercer dígito; éste incluye la ranilla, que es una estructura importante para la absorción de choque al caminar o correr y bombear el ujo de sangre del pie.
TÉCNICAS DIAGNÓSTICAS ❏
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Raspado de la piel: utilizado primariamente para observar ectoparásitos como ácaros y dermatotos. Cultivo de hongos: para la determinación de dermatotos. Hidróxido de potasio: para el diagnóstico de dermatotos.
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Cinta de acetato: diagnóstico primario de Oxyuris equi y Chorioptes spp. Preparación de Dermatophilus: prueba utilizada para la identicación de Dermatophilus congolensis. (Coco grampositivo). Citología: estudio de valor diagnóstico cuando se trata con pústulas, vesículas, nódulos, tumores o inamaciones. Indican de manera rápida la presencia o ausencia de organismos infecciosos y provee a grosso modo el tipo de células en una lesión (neoplásica, acantolítica o inamatoria). Biopsia: para examen histopatológico de rutina. Biopsias para prueba de inmunouorescencia directa: puede ser como adyuvante a una prueba histológica convencional, cuando el clínico sospecha que el paciente sufre de inamación inmunomediada de la piel. Preparación para microlaria: es una técnica para el diagnóstico de oncocercosis equina. Cultivo bacteriano. Cultivo fungal profundo y subcutáneo de tumores, nódulos e inamaciones.
PRINCIPALES SIGNOS Y LESIONES DE LA PIEL Y SU DIAGNÓSTICO
PRURITO Es la sensación no placentera que provoca el deseo de rascarse. Existen dos categorías: a) Fisiológico o espontáneo. Se reere a la sensación de prurito sucientemente intensa para rascarse, pero sin causar irritación. b) Patológico. Es una intensa ansiedad a nivel cutáneo que provoca rascado vigoroso. Muchos estímulos físicos y químicos están implicados como mediadores del prurito en los seres humanos. Ejemplo de estos mediadores, que se asume que tienen importancia en los animales domésticos incluyen: ❏
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Histamina: presente en los mastocitos de la dermis y basólos. No se considera mediador primario de prurito, ya que hay muy pobre respuesta terapéutica cuando se utilizan los antihistamínicos. Endopeptidasa: incluye tripsina, papaína, kalikreína y bradiquinina. Prostaglandinas: de la serie E y endoperoxidasas, potencian la liberación de proteasas de los quera-
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tocitos y leucocitos, incrementando la duración del prurito. Opioides: la aplicación de morna induce prurito. La naloxona atenúa el efecto de prurito inducido por la histamina. Sustancia P: es un neurotransmisor del sistema nervioso central y periférico. Cuando se le aplica intradérmicamente causa prurito.
Muchos factores contribuyen a la existencia de prurito: los neurológicos, como aburrimiento y cansancio, pueden potenciar la comezón patológica y posiblemente transformar una picazón siológica en patológica; las infecciones bacterianas secundarias, la vasodilatación e inamación dan como resultado un incremento local de proteasas que acentúan el prurito. DIAGNÓSTICO DE PRURITO El prurito es el signo más común de las enfermedades cutáneas. Puede ser la manifestación de enfermedades sistémicas o primarias de la piel. Las reacciones de hipersensibilidad causan prurito y pueden, o no, limitarse a la piel. Las enfermedades pruríticas limitadas a la piel incluyen las inmunomediadas, como péngo foliáceo; enfermedades infecciosas bacterianas, virales, micóticas y parasitarias; irritaciones directas por químicos y dermatosis fotoactivada. ❏
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Historia: Se debe poner atención en el clima, ya que el prurito puede tener presentación cíclica (estacional o anual). Cuando el problema es recurrente, sugiere la presencia de alergenos estacionales como el polen, parásitos estacionales e insectos. Hay que denir el nivel de exposición para el animal prurítico en los meses de mayor calor: a) Si es generalizado o local, dermatosis fotoactiva limitada a regiones con pelo blanco. Determinar si hay contacto con otros animales de la misma u otra especie y si están afectados. b) Tratamientos aplicados. Examen físico: Investigar en particular: a) Si todas las lesiones cutáneas pueden ser atribuidas a un solo problema o si hay otros. b) Si los animales muestran evidencia de enfermedad. c) Cuáles son las áreas del cuerpo afectadas. d) Tipo de insectos voladores en su ambiente, si el paciente es examinado ahí. e) Inspección cercana del pelaje, que puede tener pequeños parásitos, como piojos o sus huevos.
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Examen físico general en el equino
NÓDULOS, TUMORES E INFLAMACIÓN ❏
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Nódulo: elevación sólida circunscrita mayor de 1 cm de diámetro que no se deforma al palparla. Se extiende hacia las capas más profundas de la piel y da como resultado un inltrado celular de la dermis y tejido subcutáneo (celulitis). Tumor: es un alargamiento nodular neoplásico de la piel. Inamación: incluye lesiones abultadas que se marcan con presión por la presencia de edema intersticial (ronchas) y lesiones uctuantes (quistes y abscesos).
DIAGNÓSTICO Estas lesiones se presentan en gran variedad de desórdenes cutáneos y en casos esporádicos son un signo de enfermedad sistémica. Los diagnósticos diferenciales incluyen reacción de hipersensibilidad, infecciones, inamaciones y neoplasias. ❏
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Historia clínica: se debe poner atención en animales viejos y tordillos, los que están predispuestos a sufrir melanomas, aunque otro tipo de neoplasias se presentan en animales geriátricos, tal es el caso de los papilomas y el sarcoide equino, que se presentan en animales jóvenes (promedio de 3 años de edad). Curso: la erupción súbita sugiere problemas de hipersensibilidad. Si sólo existe una lesión aislada debe considerarse la hipersensibilidad a un piquete de insecto. Si son varias lesiones como ronchas, sugiere respuestas inmunes a la aplicación de fármacos, piquetes de insectos, alimento o alergenos inhalados. Enfermedad sistémica reciente: de la que se pueda sospechar una infección con formación de abscesos.
ÚLCERAS Y EROSIONES Son lesiones que se originan de condiciones primarias, como pápulas y pústulas. La ruptura de estas frágiles lesiones da como resultado la destrucción epidermal y formación de úlceras y erosiones. También pueden formarse a partir de abscesos y quistes que puedan romperse, pero estas lesiones son más estables y más fácilmente permanecen intactas. La causa más común
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
en la formación de úlceras y erosiones es el prurito, el cual induce excoriación y destrucción epidermal. DIAGNÓSTICO Pueden tener diferente origen, como en vesículas, pústulas, abscesos, quistes, con prurito o traumatismo externo.
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H ISTORIA CLÍNICA ❏ ❏
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Investigar si hubo prurito o si ha existido traumatismo. Investigar qué medicamentos tópicos o sistémicos se han utilizado en el paciente.
E XAMEN FÍSICO ❏ ❏
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Examen de la cavidad oral y mucosas. Evidencia de excoriación o ulceración secundaria a prurito. Observar la evidencia de lesiones primarias como pústulas, vesículas, nódulos, tumores o inamación, que anteceden a las lesiones.
PÁPULAS, PÚSTULAS Y VESÍCULAS ❏
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Pápula: es una lesión sólida circunscrita, que mide 1 cm de diámetro en promedio. Son pequeños nódulos que afectan la dermis y epidermis. Pústula: es una acumulación de pus y tejido necrótico, elevada, circunscrita y uctuante, de 1 cm de diámetro. Las pústulas se asocian a condiciones infecciosas, aunque pueden presentarse sin ellas. Vesícula: es una lesión de 1 cm de diámetro circunscrita, sin células y llena de líquido. Bulla: es una vesícula mayor de 1 cm de diámetro. Clínicamente es más común observar pápulas, que pústulas o vesículas, ya que éstas duran poco tiempo, porque se rompen fácilmente.
DIAGNÓSTICO El diagnóstico diferencial de pápulas, pústulas y vesículas no es necesariamente el mismo. En todos los casos hay que denir si la enfermedad está limitada a la piel o a la salud en general. Las lesiones papulares son el problema más común de los diagnósticos diferenciales: ❏
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Reacciones de hipersensibilidad: La hipersensibilidad parasitaria es muy común (hipersensibilidad a Culicoides), igual que el alimento y algunos fár-
macos. Las reacciones más frecuentes cursan con prurito. Parásitos: Algunas especies irritan la piel con sus mordeduras, sin inducir hipersensibilidad. Enfermedades infecciosas producidas por bacterias, hongos y virus. Algunas enfermedades neoplásicas, papilomas o sarcoides. Enfermedades de baja incidencia: Incluyen enfermedades autoinmunes, como péngo foliáceo y enfermedades inciertas, como enfermedad granulomatosa generalizada. En ambas la presentación es sistémica.
Las pústulas se forman en infecciones bacterianas, aunque hongos, y raramente parásitos (Demodex spp.), también pueden causarlas. Las enfermedades asociadas a la formación de vesículas incluyen: virales (estomatitis vesicular), autoinmunes (péngo foliáceo), dermatosis por contacto y quemaduras. H ISTORIA CLÍNICA ❏
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Reconocer las lesiones, si son pruríticas, dolorosas o asintomáticas. Examinar si los animales afectados son de la misma o de diferente especie (contagio). Determinar el curso. Si son de presentación sobreaguda, lo que sugiere una reacción de hipersensibilidad. Revisar la estacionalidad, lo cual sugiere un problema parasitario o alérgico. Los piojos son un problema en invierno; los insectos voladores, en primavera, verano o inicio del otoño. Determinar qué medicamentos tópicos o sistémicos se han utilizado. Determinar la posibilidad de traumatismo.
E XAMEN CLÍNICO ❏
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Palpación gentil de las lesiones para determinar si son sólidas (pápulas) o uctuantes (pústulas o vesículas). Determinar si las lesiones involucran la cavidad oral y las mucosas. Vericar si hay prurito (excoriaciones). Examinar el pelaje para observar parásitos.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
ESCAMAS Y COSTRAS Las escamas son la acumulación visible de fragmentos de la capa córnea de la piel, representa el producto nal de la queratinización epidermal. Histológicamente las escamas son reconocidas como hiperqueratosis, la cual se divide en: paraqueratosis (cornicación con retención nuclear) y ortoqueratosis (cornicación sin retención nuclear). Las escamas varían en apariencia; su color puede ser blanco, plateado, amarillo, café o gris. La apariencia puede ser como de caspa, polvosa, de hojuela, gruesa o seca. Las costras cubren las erosiones o ulceraciones; son restos de exudado seco, que se adhiere a la supercie de la piel y pelo, y están compuestas de cantidades variables de suero, células (leucocitos, eritrocitos, keratinocitos), brina, agentes infecciosos (bacterias, hongos), basura o mugre y medicamentos. DIAGNÓSTICO Son importantes si el paciente tiene prurito y si alguna o todas las lesiones son inducidas por traumatismo. Si el prurito es el factor predisponente debe reorientarse su diagnóstico, porque todas las enfermedades que cursan con él pueden causar costras y escamas. Si el paciente no tiene prurito, los diagnósticos diferenciales son muy amplios, e incluyen: enfermedades infecciosas (particularmente dermatolosis y dermatotosis), desórdenes nutricionales, tóxicos, enfermedad autoinmune (péngo foliáceo) endocrinopatías (hiperadrenocorticismo), lariasis cutánea, fotosensibilización, reacciones irritantes de contacto o quemaduras y enfermedades de etiología incierta (enfermedad granulomatosa equina, anhidrosis, placas aurales, leucotriquia reticulada y seborrea primaria). H ISTORIA CLÍNICA
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Examen físico general en el equino
Observar si en el animal hay indicios de que padezca alguna enfermedad contagiosa.
DENSIDAD Y LONGITUD ANORMAL DEL PELO Esta anormalidad tiene dos presentaciones: disminución (alopecia e hipotricosis) o incremento de la longitud y densidad del pelo (hirsutismo e hipertricosis). El hirsutismo o pelo corporal excesivo es menos común que la alopecia, denida como la ausencia de pelo en áreas en donde el pelo está normalmente. Las alopecias se clasican en cicatrizales y no cicatrizales. En las alopecias cicatrizales, el pelo y sus folículos están destruidos, y la pérdida de pelo es permanente, porque en los adultos no ocurre la neogénesis del folículo piloso. En alopecias no cicatrizales, el pelo está retenido en el folículo, por lo tanto, el potencial de recrecimiento permanece. La alopecia y el hirsutismo pueden ser completas o parciales, difusas o locales, y congénitas o adquiridas. DIAGNÓSTICO El diagnóstico diferencial es relativamente limitado, el incremento en la longitud y densidad del pelo es una anormalidad adquirida asociada a hiperadrenocorticismo equino. La aproximación al diagnóstico diferencial del problema de alopecia es extenso. El paso inicial es precisar si la alopecia es congénita, hereditaria o adquirida. Si la anormalidad es adquirida el clínico determinará si es un problema primario o secundario a otra anormalidad cutánea, como prurito o ulceración. Cuando la alopecia es resultado de otra anormalidad cutánea primaria, el clínico debe enfocar el diferencial asociado con la anormalidad primaria. Es importante obtener una biopsia para determinar si la alopecia es cicatrizal o no. H ISTORIA CLÍNICA
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Investigar si ha habido prurito. Determinar si ha habido contagio. Denir la estacionalidad. Problemas de parásitos. Medicación sistémica o local.
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E XAMEN FÍSICO ❏ ❏ ❏
Evidencia de excoriación, sugestiva de prurito. Inspeccionar cuidadosamente el pelo para determinar si hay parásitos (piojos o sus huevos).
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Determinar si las lesiones son congénitas o adquiridas. Si son congénitas, investigar si han progresado desde el nacimiento. Observar si hay prurito u otra lesión, cuando la alopecia es adquirida. Analizar la calidad de la dieta. Establecer si hay exposición a sustancias tóxicas. Determinar cuántos animales afectados existen. Comprobar los medicamentos aplicados.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Indagar si el animal ha estado sujeto a un estrés capaz de provocar la activación de la fase telógena.
E XAMEN FÍSICO ❏
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Comprobar si existe evidencia de enfermedad en otros órganos. Determinar el efecto nutricional, hormonal o del estrés. Observar evidencia de excoriación. Precisar las lesiones generalizadas o localizadas del cuerpo.
PIGMENTACIÓN ANORMAL Se utilizan diferentes términos para denir los proble mas de la pigmentación: ❏
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Melanina: es el pigmento insoluble, absorbente de luz, café-negro formado en muchos órganos por células especializadas llamadas melanocitos. Hiperpigmentación: depósito excesivo de melanina. Hipopigmentación: disminución del depósito de melanina, puede ser congénita o adquirida. Leucoderma, acroderma o hipomelanosis: pérdida adquirida, parcial o total de pigmentos de melanina en la piel. El término vitíligo también se reere a la pérdida adquirida de melanina de la piel. Leucotriquia (acromotrichia): es la pérdida adquirida del pigmento en el pelo. Albinismo: es la falta congénita de pigmento en todos los tejidos.
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TRAUMATISMOS El caballo es muy propenso a sufrir heridas en la piel. La secuencia de eventos involucrados en reparar el tejido dañado puede fácilmente interrumpirse por factores presentes en el área afectada y el estado general del paciente. La respuesta inamatoria aguda es crítica en el proceso de cicatrización y su extensión depende de la eciencia de este mecanismo. El retraso en la reparación del daño hace que la fase aguda de la inamación provoque un inevitable desarrollo de la inamación crónica.
FACTORES QUE AFECTAN LA CICATRIZACIÓN ❏
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DIAGNÓSTICO Establecer si su causa es congénita o adquirida. Si es adquirida, reconocer si es una anormalidad primaria o asociada a otro cambio patológico, como inamación o trauma.
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H ISTORIA CLÍNICA ❏ ❏
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Reconocer si el cambio es congénito. Si el trastorno es adquirido, investigar si hubo trauma u otras alteraciones. Determinar si la dieta está bien balanceada. Establecer si ha habido exposición a alguna sustancia tóxica. Mencionar si se han empleado desparasitantes, especialmente contra Onchocerca cervicalis.
Reconocer si hay incidencia de enfermedades sistémicas. Si hay hipopigmentación, examinar detenidamente el pelo para evaluar si hay leucoderma o leucotriquia o ambas. Buscar otras lesiones cutáneas (inamación-ulceración) que pueden producir cambios pigmentarios posinamación.
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Infección: Algunas bacterias producen enzimas proteolíticas como colagenasas y otras enzimas destructivas. Movimiento: El movimiento del sitio o tejido afectados impide la formación del tejido de granulación para reparar los tejidos, retrasando su cierre y, por lo tanto, alargando el proceso de inamación crónica. Presencia de cuerpos extraños y tejido necróti co: Arena, partículas de polvo, restos vegetales, metal o madera, junto con tejido necrótico (de hueso, músculo, tendón, piel) retrasan también la cicatrización. Irrigación: La isquemia, anemia o retraso en la formación de capilares por trombosis, edema, contusión o vendajes de compresión. Oxigenación: La oxigenación adecuada de los tejidos vecinos en los límites de la lesión. La anaerobiosis predispone a infecciones como la provocada por Clostridium spp.
PARTE 1 - CAPÍTULO 3
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pH de la herida: Un pH ácido provee un signicante soporte celular, favoreciendo la fase de reparación. Idealmente el pH debe ser ligeramente ácido. Factores locales: La tensión de la piel, los espacios muertos, la temperatura local son modicadores del proceso. Transformación célular: Las heridas en las partes distales de los miembros son causas predisponentes para desarrollar sarcoides broelástico y formación de tejido de granulación exuberante. Enfermedades nutricionales o sistémicas: Las heridas de los caballos débiles o viejos cicatrizan más lentamente, como los casos de enfermedad de hi-
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Examen físico general en el equino
peradrenocorticismo, hipoalbuminemia, deciencias de vitamina A, K, E y C, Cobre y Zinc. Factores yatrogénicos: Demasiada presión de los vendajes, exceso de lavados, uso de sustancias antisépticas irritantes o nocivas, administración de corticoesteroides.
Después de hacer el reconocimiento de la integridad que guardan los tejidos afectados, la extensión del daño y el control de la hemorragia, se debe establecer el tratamiento. Después de 4 horas de haberse producido las heridas sin dar tratamiento, éstas deben considerarse contaminadas.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
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Metodología diagnóstica en aves, cerdos, peces, abejas, conejos, animales de laboratorio y fauna silvestre
Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves Norma L. Calderón Apodaca Félix Sánchez Godoy
INTRODUCCIÓN E zootecnista que participa en los sistemas de producción avícola necesita conocer las acciones para obtener la mayor productividad y rentabilidad posibles para el avicultor. Una de estas acciones es reconocer los procesos patológicos presentes en la parvada, la cual se puede realizar por medio del diagnóstico. La metodología del diagnóstico en aves es un proceso ordenado que consta de varios pasos: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Establecer una historia clínica de la granja. Realizar el examen clínico de las parvadas. Formular el diagnóstico clínico presuntivo. Aplicar el examen de necropsias. Selección, conservación y envío de muestras para: ❏ Conrmar el diagnóstico por estudios de laboratorio. ❏ Establecer un diagnóstico denitivo.
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PARTE 2 - CAPÍTULO 1
HISTORIA CLÍNICA La anamnesis consiste en la recopilación de datos sobre los hechos que antecedieron o están relacionados con la manifestación de un proceso patológico o de improductividad de la parvada. El acopio de estos datos se obtiene mediante un interrogatorio extenso a la persona o personas que presentan el caso. En la historia clínica se registran datos concernientes a la ubicación de la granja, n zootécnico, tipo de instalaciones, estirpe de las aves e incubadora de procedencia, condiciones climáticas generales de la granja (macro y microclima).
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Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
Posteriormente se puede realizar la inspección clínica de las aves vivas mediante un examen directo en donde pueden evaluarse los siguientes aspectos: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
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Actitud del ave. Desarrollo del ave de acuerdo con su n zootécnico. Estado de hidratación. Coloración de cresta y barbillas. Evidencia de dicultad de respiratoria o indicio de diarrea. Condición corporal y de las plumas. Evaluación del sistema nervioso central y periférico.
INSPECCIÓN CLÍNICA El examen clínico tiene la nalidad de determinar la presencia de signos que sugieran la causa del proceso patológico. Es importante considerar que en la práctica de la medicina aviar, la inspección clínica se lleva a cabo por medio de la observación de grupos y no por exploración de individuos en particular. Se debe observar la actitud de la parvada, sonidos extraños, revisión de la cama, equipo, medio ambiente de la caseta. F 2. Aves de combate que al examen físico mostraron parálisis y extensión de patas.
TÉCNICA DE NECROPSIAS EN AVES
F 1. La inspección clínica de las aves se realiza a través de la observación de poblaciones: actitud de las aves, apariencia del plumaje, desarrollo corporal, condiciones ambientales dentro de la caseta y calidad de la cama.
Este método es útil para realizar la necropsia de aves industriales, de corral o de traspatio, y puede emplearse en aves de compañía y ornato, tomado en cuenta las posibles diferencias anatómicas. La presentación de enfermedades en las aves comerciales puede manifestarse por bajos parámetros productivos, signos clínicos o por aumento en la mortalidad. Para el diagnóstico de la enfermedad que afecta una parvada se requiere, como ya se mencionó anteriormente, de la historia clínica mediata e inmediata, la necropsia y los estudios de laboratorio llevados a cabo, de cinco a diez aves enfermas, elegidas por presentar los signos clínicos representativos del padecimiento actual. La necropsia tiene como nalidad observar los cambios macroscópicos en órganos y tejidos que puedan sugerir al agente causal y a través de ella se toman las muestras de histopatología, bacteriología, virología, serología,
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
parasitología y toxicología, con el objeto de integrar un diagnóstico nal. La eutanasia debe ser lo menos traumatizante posible para no hacer sufrir a las aves. El método empleado en pollitos de menos de dos semanas de edad es la decapitación por medio de tijeras o guillotina. En el caso de aves adultas se recomienda la dislocación cervical, para lo cual se hace tracción a nivel de la articulación atlanto-occipital en un ángulo de 45º, y con la otra mano se sujetan las patas y la punta de las alas. La necropsia debe de llevarse a cabo de preferencia en aves muertas recientemente, y realizarse en forma sistemática y de preferencia en serie, con el objeto de comparar grados de lesiones y frecuencia de ellas.
MATERIAL Puede utilizarse una charola grande de acero inoxidable, o bien, realizar la necropsia en una mesa de material que sea lavable y puedan trabajarse y recolectarse los órganos; sobre esta mesa se colocan periódicos o bolsas de alimento, los cuales sirven para absorber los líquidos y la sangre que se liberen. Son igualmente necesarios jeringas y tubos para tomar muestras de sangre, un par de tijeras para descuartizar aves, unas tijeras de disección de punta roma; dos pinzas, unas con dientes y unas sin dientes; hilo resistente para ligar los diferentes segmentos del intestino; frascos estériles para recolectar muestras para otros laboratorios; frascos con formalina al 10% amortiguado a pH 7.4 y portaobjetos.
EXAMEN EXTERIOR DEL ANIMAL Examinar el aspecto del plumaje y oricios corporales, registrar lesiones o presencia de ectoparásitos.
POSICIÓN DEL ANIMAL Colocar el ave en decúbito-dorsal, después realizar una incisión en cada uno de los pliegues de las piernas con la nalidad de proceder a la luxación de las articulaciones coxo-femorales.
F 3. Dislocación cervical en aves mayores de 2 semanas de edad y con menos de 3 kg de peso corporal.
MATERIAL Y MÉTODOS La necropsia puede ser llevada a cabo no sólo en una sala acondicionada especialmente para tal efecto, como sucede en un laboratorio de diagnóstico. En la granja también puede realizarse, siempre y cuando haya manera de evitar la contaminación del sitio en el que se practica, colocando los cadáveres, por ejemplo, en una charola o bolsas de material absorbente con objeto de poder desechar la totalidad de líquidos y material orgánico, para ser posteriormente incinerados.
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F 4. El cadáver se coloca en decúbito dorsal y se realiza la luxación de la articulación coxo-femoral de ambas piernas.
PARTE 2 - CAPÍTULO 1
ESTADO GENERAL ❏
Caquexia u obesidad
CABEZA ❏
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Aumento de volumen: ❏ Síndrome de cabeza hinchada ❏ Coriza, pasteurelosis ❏ Sinusitis Secreción nasal (coanas): serosa en irritación por
gases (cama con amoniaco), polvo, principio de enfermedades respiratorias. Coriza, Ornitobacterium rhinotracheale. Secreción brino-caseosa: enfermedades respiratorias crónicas o complicadas.
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Plumas sucias: conglomerado fecal alrededor del ano. Pulorosis, diarrea verde esmeralda. Enfermedad de Newcastle, cama muy sucia. Plumas arrancadas: picoteo, peleas, canibalismo, presencia de ectoparásitos que estén provocando prurito (piojos).
ESTADO DE LA PIEL ❏
Heridas: duperpoblación, peleas.
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Inamación heterofílica y granulocítica: infección
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bacteriana de las heridas, ampolla en la quilla por Staphylococcus sp. Aunque las aves no forman propiamente abscesos como los mamíferos, su aspecto macroscópico es como éstos. Tumores: hipertroa de folículos plumosos, enfermedad de Marek. Vesículas y pústulas alrededor del pico, ojos y crestas, barbillas por viruela aviar. Inamación y necrosis por dermatitis gangrenosa. Aspecto de quemadura, más ausencia de plumas en la quilla, por cama sucia. Deformación de las escamas de las patas, por presencia de ectoparásitos.
ESTADO DEL ESQUELETO Y DE LOS MIEMBROS ❏
Desviación de la quilla por raquitismo en pollo de engorda o por osteoporosis en adultos.
Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
Luxación del tendón gastrocnemio, en caso de perosis. Dedos torcidos por Mycoplasmas en pavos. Artritis por Mycoplasmas o Reovirus, gota articular.
CRESTA, BARBILLAS, CARÚNCULAS ❏
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Cianosis, por histomoniasis (cabeza negra) en pavos, erisipela, cólera aviar, tifoidea aviar, estrés por calor. Edematosas, cólera aviar crónica.
ESTADO DE LAS MUCOSAS ❏
PLUMAJE ❏
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Bucal, exudado adherente de color blanco por tricomoniasis de las palomas, úlceras diftéricas amarillas-grisáceas en intoxicación por tricotecenos. Ocular, sinusal, inamación con secreción serosa o blanquecina en coriza aviar, y en enfermedades respiratorias evolutivas. Cloacal, inamada o hemorrágica por diarreas o picoteo.
INCISIÓN La piel y el plumaje se humedecen con una solución jabonosa para evitar la dispersión de plumas y plumones. Las tijeras de punta roma se introducen en el pico para cortar la articulación craneomandibular; se corta la piel de la base del pico hasta la punta del esternón sin dañar los órganos adyacentes, se prolonga esta incisión hasta la cloaca y se disecan los planos subcutáneos. Se ponen en evidencia las masas musculares, músculos pectorales, músculos de muslos y piernas, en donde se pueden encontrar las siguientes lesiones: ❏ Edemas subcutáneos, en dermatitis gangrenosa, traumatismos, heridas. ❏ Heridas y traumatismos asociados a un proceso inamatorio debido a agentes oportunistas (E. coli, Staphylococcus sp , Pasteurella, Pseudomonas, Clostridias, etc.). en ENC, inuenza aviar por ❏ Hemorragias septicemias. ❏ Ampollas en la punta del esternón debido a percheros, jaulas o pisos en mal estado. ❏ Canales o carcasas muy rojas, por congestión en las septicemias por tifoidea aviar, cólera aviar, inuenza aviar, muerte súbita.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Músculos pálidos, por deciencia de vitamina E y Se, o por desórdenes metabólicos agónicos en ebres intensas por septicemias. Músculos atroados, por emaciación en enfermedades crónicas debilitantes como la tuberculosis aviar. Exploración de la cavidad bucal y orofaringe:
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Aspecto y color de las mucosas, puede encontrarse material brino-necrótico grisáceo o blanquecino adherente en la mucosa enrojecida en los casos de Trichomonas de las palomas o gallinas, candidiasis en patos y gallinas de Guinea, lesiones diftéricas por Poxvirus en caso de viruela aviar. Timo con 5 a 7 lóbulos muy aparentes en ambos lados del cuello en aves jóvenes. La atroa de los lóbulos del timo sugiere el desarrollo de alguna enfermedad inmunosupresora tal como: Gumboro, Marek, anemia infecciosa, reovirus.
En la cavidad abdominal puede haber presencia de líquido ascítico, debido a síndrome ascítico o por hepatopatías tóxicas o virales. Se continúa con la incisión abdominal, la cual se prolonga hasta la base de los muslos; los músculos pectorales se seccionan con las tijeras de descuartizar aves, siguiendo la trayectoria de la última costilla, la cual se secciona junto con el coracoides y la clavícula; las masas musculares pectorales y los huesos torácicos se levantan y se extraen en su totalidad. Una vez expuestos los órganos de cavidad torácica y abdominal, se procede a observar y describir el aspecto de los órganos. ❏
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Se efectúa una incisión para abrir la cavidad abdominal desde el vértice del esternón hasta arriba de la cloaca y otra incisión siguiendo la trayectoria de la última costilla a ambos lados de la línea media, seccionando las articulaciones costocondrales.
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Ausencia de grasa abdominal: en enfermedades crónicas caquéxicas como tuberculosis, parasitosis, enfermedades tumorales. Aspecto general congestionado rojo oscuro: septicemias, choque endotóxico, salmonelosis, cólera aviar, peritonitis por postura abdominal. Sacos aéreos con aspecto de vidrio esmerilado, engrosados y con presencia de brina: mycoplasmosis, cólera aviar, serositis, ERCC, colibacilosis, reovirosis. Sacos aéreos con moho: por aspergilosis Sacos aéreos y serosas con depósito blancuzco de aspecto de talco: uratosis (en gota visceral).
EVISCERACIÓN
F 5. Abertura de la cavidad, en donde se deben revisar la posición in situ, tamaño y forma de órganos, presencia de líquidos y hemorragias.
Se liga en el extremo anterior del esófago para seccionarlo y separarlo de la orofaringe. Todos los órganos abdominales son retraídos hacia la cola del ave, la porción distal del recto es ligada y seccionada para colocar a continuación el aparato digestivo en una charola, la cloaca se queda en su sitio. En aves que aún presentan bolsa de Fabricio, ésta se localiza en la parte dorsal de la cloaca, tiene forma de un pequeño saco con pliegues hacia su interior y es de color blanco cremoso. Para su extracción de toma la bolsa de un extremo con unas pinzas sin dientes, y con unas tijeras de punta roma se secciona el tejido conectivo que la mantiene en su sitio anatómico. La tráquea se retira de la cavidad torácica junto con los pulmones y el corazón.
CORAZÓN ❏
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Pálido ácido y redondo por miocarditis.
PARTE 2 - CAPÍTULO 1
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Petequias y sufusiones: en septicemias, toxinas, ascitis, nefritis, enfermedad de Newcastle, inuenza aviar. Metástasis por enfermedades neoplásicas. Decoloraciones blanquecinas: necrosis por deciencia de vitamina E y selenio.
A continuación, la laringe y la tráquea son seccionadas longitudinalmente con tijeras de punta roma, hasta los pulmones, para examinar el contenido y el aspecto de la mucosa. Mucosa traqueal inamada caracterizada por mucosa enrojecida, recubierta por moco o líquido sanguinolento, o brina amarillenta o material caseoso: causada por bronquitis infecciosa, laringotraqueítis infecciosa aviar, rinotraqueítis del pavo, enfermedad respiratoria crónica complicada (ERCC). ❏
❏
Hemorragias petequiales o equimóticas: ENC, inuenza aviar, Bronquitis Infecciosa (BI), Laringo Traqueitis Infecciosa (LTI). Mucosa inamada, más la presencia de parásitos rojos, padecimiento denominado singamosis.
PULMONES ❏
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Aspecto de los pulmones rojo oscuro en su totalidad o en algunas porciones. Por congestión, septicemias, toxemias, neumonías, congestión hipostática. Presencia de nódulos: en tuberculosis aviar, aspergilosis de los pollitos. Depósito de material blancuzco, en uratosis.
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Color de hojas secas: tifoidea aviar. Hemorragias petequiales y sufusiones: septicemias, toxemias, enterovirosis. Áreas de color rojo oscuro (congestión), o áreas pálidas o amarillentas de bordes irregulares (degeneración), o puntos amarillentos o blancos agrupados, coalescentes o dispersos en un área (necrosis): cólera aviar, colibacilosis, histomoniasis, salmonelosis, aatoxicosis, hepatitis por cuerpos de inclusión. Color blanco-amarillento: esteatosis o hígado graso: siológica en pollitos de 1 a 6 días de edad; en intoxicaciones por micotoxinas.
Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
Nódulos con material amarillo o blanco de aspecto caseoso: por tuberculosis, coligranulomas. Hipertroa y palidez diseminada: tumores de enfermedades linfoproliferativas, como enfermedad de Marek. Hipertroa más coloración rojo oscuro: hepatitis. Hipertroa más nódulos blanquecinos de consistencia rme: leucosis aviar. Hipertroa más bordes redondeados y deformes: aatoxicosis y carcinomas. Disminución de volumen: hepatitis crónicas por micotoxicosis, ascitis.
El esófago y el buche son incididos longitudinalmente para examinar las mucosas y la ingesta. ❏
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Mucosa enrojecida (congestión) por la presencia de parásitos como las capilarias. Mucosa con exudado adherente de color grisáceo, en candidiosis. Traumatismos o desgarramientos por cuerpos extraños.
Se inciden longitudinalmente el proventrículo y la molleja para examinar la mucosa. ❏
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Se continúa con el examen del aparato digestivo.
HÍGADO
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Hemorragias en la mucosa del proventrículo: ENC, inuenza aviar, intoxicación con sulfonamidas, proventriculitis virales. Ulceraciones: contaminación del alimento por micotoxicosis. Engrosamiento y erosines de la cutícula córnea de la molleja: paraquetatosis o hiperqueratosis por deciencias nutricionales (deciencia de vitamina A).
El páncreas es disecado del asa duodenal y después se examina. ❏
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Aspecto blanquecino: anemia, hemorragias extensas. Aspecto de jabón: en pancreatitis debidas a la liberación de sus enzimas (peritonitis asociada). Hemorragias: por septicemias o toxemias.
Se continúa con la exploración del intestino, que será abierto a todo lo largo de su trayecto, hasta el recto. El contenido se recolecta para exámenes parasitarios, asimismo pueden realizarse raspados de la mucosa con un portaobjetos en diferentes lugares, para hacer un examen microscópico y diagnosticar las diferentes coccidiosis (E. acervulina, en duodeno,
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
Ea necatrix, E. maxima, parte intestinal media; Eimeria brunetti, en íleon; E. tenella, en ciego). La toma de muestras para el examen histológico deberá hacerse antes del raspado de la mucosa.
REVISIÓN DEL CONTENIDO ❏ ❏
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Presencia de helmintos: cestodos, nematodos. Contenido caseoso de los ciegos: histomoniasis de los pavos, salmonelosis, enfermedad de Newcastle complicada, por ejemplo con E. coli. Contenido hemorrágico: diversas coccidiosis, enteritis infecciosas, ENC, inuenza aviar. Engrosamiento de la pared: parasitosis severas, enteritis crónicas. Ulceraciones: tricomonas en las palomas, salmonelosis, perforaciones parasitarias. Presencia de nódulos en la pared y las serosas adyacentes: tuberculosis, coligranulomas, leucosis.
REVISIÓN DEL APARATO GENITAL
REVISIÓN DEL APARATO URINARIO Los riñones se examinan en su sitio. Si van a ser extraídos para tomar muestras, debe emplearse una forma delicada, es decir, con las pinzas sin dientes se toma el paquete vascular, se realiza una pequeña tracción, al mismo tiempo que se corta con tijeras romas el tejido conectivo, los nervios y otros vasos sanguíneos, para que puedan desprenderse los lóbulos. En las aves el catabolismo de las proteínas culmina con la formación de ácido úrico, sustancia insoluble que es eliminada por los riñones, cuyo exceso en la sangre provoca el que ésta se precipite en forma de cristales en los tejidos. ❏
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MACHO Los testículos son internos en las aves; además, su tamaño está sujeto a las variaciones estacionales. Ciertas aves, como los palmípedos y las avestruces, están provistas de un pene localizado en el pliegue cloacal.
ÓRGANOS HEMOLINFÁTICOS Se revisan los órganos esencialmente responsables de la inmunidad.
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Atroa testicular: por intoxicación con furazolidona.
TIMO
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Tumores: virus de la leucosis aviar.
Está constituido de 5 a 7 pares de lóbulos, que se atroan hasta desaparecer en la vida adulta. Son el origen de la inmunidad de mediación celular (células T). Se revisa su volumen.
HEMBRA En la hembra adulta sólo se encuentra el ovario, el oviducto y el útero izquierdos. El racimo ovárico está sujeto a la inuencia hormonal, por lo que en la época de postura es enorme y presenta numerosos óvulos en diferentes estadios de maduración. ❏
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Riñones amarillentos: nefritis o nefrosis. En estos casos el trayecto de los uréteres tiene un color blanquecino debido a los cristales de uratos acumulados. Congestión (color rojo oscuro): septicemias, nefritis, intoxicaciones, bronquitis infecciosa (BI). Hipertroa: virus variantes de la BI, enfermedad de Marek, procesos tumorales, micotoxicosis agudas. Depósitos blanquecinos: sobre los riñones, serosas de varios órganos y en la luz ureteral, gota visceral en casos de nefritis.
Cavidad abdominal amarilla con presencia de exudado inamatorio en cantidad variable: postura abdominal, infecciones por salmonelosis o colibacilosis, pasteurelosis, tuberculosis. Huevos deformes: virus de la bronquitis infecciosa, infección del útero. Huevos blandos, sin cascarón: coronavirosis de las ponedoras, infección del útero, deciencias de Ca. Yemas (óvulos) hemorrágicos: deciencia de vitamina A, infecciones ováricas.
❏
Atroa: siológica en el adulto (a partir de las 23
semanas de edad), patológica en las aves jóvenes (menos de 17 semanas de edad), en casos de enfermedades inmunosupresoras, Gumboro, Marek, reovirosis, anemia infecciosa.
BAZO ❏
Hipertroa: procesos tumorales como leucosis o
Marek. ❏
Hipertroa más color rojo oscuro: septicemias y,
sobre todo, salmonelosis.
PARTE 2 - C - CAPÍTULO 1
❏
Hipertroa más nódulos blanquecinos o amarillen-
tos con material caseoso: tuberculosis, coligranuloma o embolias de una gran variedad de bacterias. ❏
❏
Hipertroa más puntos de necrosis blanquecinas:
reovirosis de los patos, colibacilosis, cólera aviar crónica. Hipertroa más aspecto marmoleado: adenovirosis del pavo, faisán y gallina de Guinea.
❏
Hipertroa: principio de enfermedades inmunosu-
presivas, como Gumboro. ❏
❏
❏
Degeneración más exudado mucoseroso, que puede convertirse en exudado granulocítico en la fase evolutiva de gumboro.
MÉDULA ÓSEA Es necesario seccionar los huesos largos en forma longitudinal para revisar la médula ósea. ❏
❏
❏ ❏
Hipertroa más hemorragias: Gumboro, enferme-
dades virales no especícas, como reovirosis, herher pesvirosis, ENC, anemia infecciosa.
Aspecto de gelatina de frambuesa de la médula ósea: en anemias no regenerativas (anemia infecciosa), en aplasia medular, aatoxicosis, parasiparasi tosis masivas como la coccidiosis, o bien, infestación por corucos como los Dermanyssus gallinae y Ornithonyssus sylviarum. sylviarum .
Hematomas de la bóveda craneal: craneal: traumatismos craneales, por ejemplo, por manejo brutal en la caseta. Lesiones de reblandecimiento con una consisten cia gelatinosa: en gelatinosa: en casos de edema cerebral, en la encefalomalacia por deciencia de vitamina E y selenio. Hipertroa de los nervios periféricos: sobre todo los nervios ciáticos, lumbosacros y braquiales en la enfermedad de Marek. Congestión de meninges: enfermedades virales. Hemorragias de tipo petequial: petequial: ENC, inuenza aviar, septicemias.
APARATO LOCOMOTOR El examen de las estructuras musculotendinosas se realiza después de haber retirado la piel de piernas y muslos. ❏
❏
❏
❏
❏
ENCÉFALO El encéfalo se extrae realizando un corte triangular con las tijeras de punta roma para el caso de aves jóvenes (menos de 17 semanas), en el caso de aves adultas (más de 17 semanas) se utiliza una segueta, iniciando los dos primeros cortes a ambos lados de los cóndilos occipitales dirigidos hacia los huesos periorbitales; se realiza un tercer corte para unir los cortes anteriores; una vez hecho el corte se retira la bóveda craneana, se expone el encéfalo y, con las tijeras de punta roma, se cortan los nervios craneales para poder liberar el encéfalo. En el encéfalo se pueden encontrar edemas, hematomas, congestión, hipertroa. El sistema nervioso
Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
debe ser sumergido lo más pronto posible en el líquido jador utilizado para las preparaciones histológicas.
BOLSA DE FABRICIO La bolsa se sitúa en la supercie dorsal de la cloaca y da origen a la inmunidad de mediación humoral (células B).
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Desviación del tendón gastrocnemio: deciencia de magnesio, colina, ácido fólico, (perosis), con luxación del tendón. Deformación de la quilla: deciencias de vitamina D3 y calcio (raquitismo). Hipertroa de las articulaciones costocondrales (aspecto de rosario): raquitismo. Hipertroa de la placa de crecimiento de los huesos sin osicación, pero con vascularización normal de los vasos metasiarios: raquitismo. Dedos retraídos y encorvados: por deciencia de vitamina B2 (riboavina). Necrosis de dedos y de cojinetes plantares: camas húmedas, deciencia de biotina, micotoxicosis por T2 y ergotamina. Inamaciones articulares: reovirosis, micoplasmomicoplasmo sis, estalococosis. Tenosinovitis Tenosinovitis del corvejón: reovirosis del pato y del pollo. Músculos decolorados y secos: necrosis por dede ciencia de vitamina E y selenio.
La necropsia proporciona una orientación para la selección y obtención de las muestras necesarias para realizar estudios de laboratorio.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO Después de haber obtenido los datos de la historia clínica, de realizar el examen clínico y de hacer una recapitulación de los hallazgos a la necropsia, se efectúa un análisis de los datos obtenidos, el cual termina en la formulación de un diagnóstico presuntivo del tipo de proceso patológico presente, en la denición de la probable causa. Este diagnóstico debe ser corroborado, por lo que se requiere del diagnóstico diferencial y de pruebas de laboratorio para poner de maniesto e identicar los agentes causales del padecimiento. Un diagnóstico diferencial es aquel que incluye otras enfermedades que presenten una semiología o lesiones similares a las propias del proceso patológico que supuestamente afecta a la parvada en estudio. El diagnóstico clínico presuntivo tiene la utilidad de orientar las pruebas de laboratorio necesarias para la conrmación del diagnóstico, así como de estableestable cer acciones inmediatas de tratamiento para el control del proceso patológico.
SELECCIÓN, OBTENCIÓN Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO Para la selección y obtención de muestras que se hará durante el examen de necropsia, es necesario seguir un plan cuidadoso, en donde se obtengan las muestras y se determine el estudio que se debe realizar, así como considerar los alcances y limitaciones del tipo de resultados que se van a obtener.
Es importante que la muestra obtenida sea representativa del proceso patológico que aqueja a la parvada, para que la información que se obtenga resulte conforme al padecimiento real que predomine en la parvada.
ESTUDIOS BACTERIOLÓGICOS Y MICOLÓGICOS Las muestras se obtendrán de aves recién sacrica das o con un máximo de 2 horas de muertas, además deben ser colectadas y conservadas en condiciones de asepsia utilizando, de ser posible, un mechero, así como equipo e instrumental limpios. Para transportarlas al laboratorio, las muestras se pueden colocar en bolsas de polietileno nuevas, cajas de Petri de plástico o medios de transporte como el medio de Stuart; el método de conservación adecuado es la refrigeración a 4 ºC, y el tiempo que tarden en llegar al laboratorio de diagnóstico no debe ser superior a 24 horas.
MUESTRAS PARA ESTUDIOS HISTOLÓGICOS Al igual que en el caso anterior, las muestras se colectan de aves recién sacricadas, o un máximo de 2 horas después, para evitar los cambios pos mortem en mortem en los tejidos. El manejo de los tejidos debe ser delicado; éstos se sumergen en una solución de formalina al 10%, amortiguada a un pH 7.4, lo más pronto posible. Las muestras seleccionadas no deben tener un espesor mayor de 3 mm y el volumen del jador debe ser diez veces mayor al de la muestra.
MUESTRAS PARA ESTUDIOS VIROLÓGICOS Se requiere asepsia, del mismo modo que para los estudios bacteriológicos. Los órganos se seleccionan de acuerdo con la enfermedad que se sospeche, y los métodos de conservación utilizados son la refrigeración y congelación dentro de cajas de Petri o frascos estériles.
MUESTRAS PARA ESTUDIOS SEROLÓGICOS
F 6. Los cambios macroscópicos observados durante la necropsia son la base para la toma y envío de muestras a los diferentes laboratorios.
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Se llevan a cabo para la determinación determinación de título de anticuerpos y evaluación del estado de inmunidad de las aves. Se toma una muestra de sangre a través de la punción con una jeringa de 3 o 5 mL y con aguja de 21G de las venas radiales, yugulares o punción cardiaca, se recomienda obtener 3 a 5 mL de sangre, que se deposita inmediatamente en un tubo de ensayo o un popote y se coloca en posición horizontal hasta que se lleve a cabo la coagulación. El método de conservación del suero es la refrigeración a 4 ºC.
PARTE 2 - C - CAPÍTULO 1
MUESTRAS PARA ESTUDIOS PARASITOLÓGICOS Las muestras requeridas pueden ser a partir de heces, cama, raspado de piel, sangre completa y suero. Las muestras de heces o cama se depositan en frascos o en bolsas de polietileno. El método de conservación es la refrigeración para las muestras de heces, sangre completa, suero y cama, además puede agregarse dicromato de potasio al 2.5%, utilizando 35 mL del dicromato para 5 g de heces. Los ectoparásitos se recolectan manualmente y se depositan en frascos con alcohol al 70%.
MUESTRAS PARA ESTUDIOS TOXICOLÓGICOS Las muestras que se remiten son alimento, material de cama, órganos (especialmente hígado, riñón y contenido digestivo). Se sugiere especicar el tóxico del que se sospecha.
CARACTERÍSTICAS DE LO LOSS ESTUDIOS DE LABORATORIO Los resultados y la interpretación de los estudios de laboratorio servirán para conrmar o descartar un diagdiag nóstico clínico. Para que las pruebas puedan auxiliar al diagnóstico avícola de rutina, deben ser sensibles, especícas, repetibles, sencillas y accesibles. ❏
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La sensibilidad se reere a la capacidad de detectar un caso positivo cuando realmente lo sea. La especicidad se reere a detectar un caso neganega tivo cuando realmente lo es. Repetibilidad se reere que deben obtenerse iguaigua les resultados en pruebas repetidas de la misma muestra y en diferentes laboratorios. Sencillez, que no se requiera un procedimiento complejo o con gran cantidad de pasos. Accesibilidad, que puedan llevarse a cabo en cualquier laboratorio.
Las diferentes técnicas de laboratorio, dependiendo de su naturaleza, persiguen los siguientes propósitos: ❏
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Aislamiento, identicación y cuanticación del agente causal de la enfermedad. La identicación de las lesiones producidas por el proceso morboso, ya sea de tipo estructural o funcional. La medición de la respuesta inmune del ave hacia el agente.
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Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
Aislamiento, identicación y cuanticación del agente.
SEROLOGÍA Es posible obtener información en cuanto a la respuesta del sistema inmune de las aves a través del estudio del suero; lo que se busca es determinar los títulos de anticuerpos contra agentes infecciosos, vacunales o de campo. La mayoría de las pruebas requieren de 5 a 50 microlitos, por lo que es suciente el envío de 1 a 2 mL de suero, que se obtiene a partir de 3 a 5 mL de sangre. La calidad del suero enviado al laboratorio es fundamental para la correcta interpretación de los resultados, ya que la hemólisis o contaminación pueden llevar a resultados falsos. La sangre debe ser extraída con una jeringa y depositada en frascos limpios, no necesariamente estériles; resulta conveniente colocar los tubos de ensayo en posición horizontal hasta que la sangre coagule, y después desprender el coagulo sin romperlo; el suero es liberado al cabo de 10 minutos y debe ser tomado con otra jeringa o pipeta Pasteur y depositado en viales, popotes sellados o tubos de microcentrífuga. Una alternativa, si es que el laboratorio está cerca, es enviar la sangre en la misma jeringa, pero no deben transcurrir más de dos horas sin que las muestras se procesen. Independientemente de la prueba utilizada, en la interpretación de los resultados deben tomarse en cuenta el n zootécnico, edad, calendario de vacunavacuna ción, vías de aplicación de las vacunas, así como las cepas empleadas. Se requiere, por lo menos, de dos muestras tomadas con una o dos semanas de diferencia, ya que un solo muestreo no determina la variación de los títulos. Siempre existe la pregunta de cuál es el título de anticuerpos correcto; ese número “mágico”, en realidad no existe, pues para cada granja y condiciones particulares es diferente, sin embargo, más que el número debe considerase la variación de los títulos. Las principales técnicas para la determinación de anticuerpos en clínica de las aves son: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Inhibición de la hemoaglutinación. Aglutinación en placa. ELISA. Virus suero neutralización. Precipitación en gel de agar.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
INHIBICIÓN DE LA HEMOAGLUTINACIÓN La inhibición de la hemoaglutinación (HI por sus siglas en inglés) detecta y cuantica anticuerpos contra agentes hemoaglutinantes tales como los virus de la enfermedad de Newcastle, inuenza aviar, bronquitis infecciosa, síndrome de baja postura, y micoplasmas. El principio consiste en que los anticuerpos del suero inhiben al antígeno y evitan la aglutinación de glóbulos rojos de pollo; existen dos variantes de la técnica: en una el suero es constante y el antígeno es utilizado en diluciones, y en otra el antígeno es constante y el suero diluido; se emplean generalmente diluciones dobles seriadas, de modo que los resultados pueden expresarse como diluciones, es decir, el laboratorio reporta 1:2, 1:16, 1:256, por ejemplo, o bien, pude reportar como logaritmos 3-6 log2. Dado que se emplean varios sueros, conviene calcular la media geométrica, para tomar en cuenta el factor dilución y la dispersión de los datos, de este modo el valor obtenido es más representativo.
AGLUTINACIÓN EN PLACA Esta prueba consiste en mezclar el suero o sangre completa directamente con el antígeno, se emplea por po r lo general para micoplasmas y Salmonella. Salmonella. La mezcla produce, después de algunos segundos, grumos o precipitados que se ven a simple vista. Esta prueba es muy sencilla y se utiliza como tamiz, para las parvadas. Si se encuentran resultados positivos, se procede a la determinación de anticuerpos mediante diluciones o se busca el aislamiento del agente patógeno. En el mercado existen diferentes antígenos coloreados y sus mezclas.
ELISA Esta prueba permite determinar títulos de anticuerpos, se lleva a cabo en una microplaca, la cual generalmente está sensibilizada con el antígeno. Existen diversas variantes de la técnica (captura, competitiva, etc.), lo que se busca es poner de maniesto la reac ción antígeno-anticuerpo mediante un anticuerpo secundario o conjugado que está marcado con la enzima peroxidasa, a la cual se le proporciona un sustrato con un colorante; de este modo, en la ELISA de captura, el anticuerpo secundario detecta los anticuerpos del suero y mediante la reacción enzimática de una coloración azul, o bien, como en la ELISA competitiva no cambia de color porque los anticuerpos del suero han ocupado los sitios con antígeno y el anticuerpo secundario,
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está dirigido contra otro anticuerpo que se emplea después del suero. Mediante esta técnica se detectan anticuerpos contra virus tales como el de la infección de la bolsa de Fabricio, bronquitis infecciosa, laringotraqueítis aviar, enfermedad de Newcastle, inuenza aviar, reoreo virus, neumovirus, anemia infecciosa, bacterias como Salmonella, Pasteurella o Pasteurella o micoplasmas. En el mercado existen dos compañías que distribuyen las pruebas de ELISA, ambas son muy buenas, pero debe tenerse en cuenta que cada una tiene sus escalas para la interpretación de resultados. El laboratorio proporciona el resultado como lecturas de densidad óptica (ya que la intensidad de la coloración se realiza mediante este método) para cada suero, calcula además la media geométrica, el valor máximo y mínimo, así como el coeciente de variación (que en forma ideal no debe ser mayor de 30%), que nos indica qué tan homogéneos son los resultados, y además proporciona una gráca en la cual los valores obtenidos son agrupados en perles y la observación de esta gráca nos da una idea del comportamiento de los anticuerpos.
VIRUS SUERO NEUTRALIZACIÓN Conocida comúnmente como VSN o MNT (microvirus neutralización) se basa en la propiedad de los virus de producir un efecto citopático en el cultivo celular y cuando son mezclados con anticuerpos pierden esa capacidad para infectar, es decir, son neutralizados. Esta prueba es muy útil en investigación y diagnóstico, y de hecho es utilizada como referencia para estandarizar otras técnicas. Al igual que en la HI, el suero es diluido y la dilución más alta en la cual el suero neutraliza una cantidad conocida de virus, y por lo tanto no produce efecto citopático, es el título de anticuerpos; dependiendo del antígeno utilizado, puede diferenciar anticuerpos contra cepas especícas, o bien, cuando se emplea a la inversa y se tienen antisueros conocidos, es posible identicar los virus que se aíslan en el laboratorio. La prueba generalmente se lleva a cabo en cultivos celulares de broblastos, células renales, células hepáticas y linfoides; puede, sin embargo, llevarse a cabo en embriones de pollo, aunque cada vez se utilizan menos. Esta técnica se usa comúnmente para virus de infección de la bolsa de Fabricio, bronquitis infecciosa, reovirus y adenovirus.
PARTE 2 - C - CAPÍTULO 1
PRECIPITACIÓN EN GEL DE AGAR GAR La reacción antígeno-anticuerpo puede ser visualizada cuando los anticuerpos y el antígeno son depositados en una matriz de gel de agar, en la cual, tanto los anticuerpos como el antígeno difunden. Esta prueba también es conocida como doble difusión y es cualitativa, es decir, únicamente proporciona un resultado positivo o negativo a través de la presencia o ausencia de bandas de precipitación. Se considera una de las pruebas más especícas que existen y es muy económica, aunque requiere cantidades grandes de antígeno y anticuerpos. Se utiliza comúnmente para encefalomielitis aviar, inuenza aviar, reovirus y adenovirus.
BACTERIOLOGÍA Y MICOLOGÍA Por lo general se remiten al laboratorio secciones de órganos, estos deben ser tomados de aves recién sacricadas que estén en las primeras fases de enfermeenferme dad, y en la forma más aséptica posible. Se envían en bolsas de plástico nuevas, o bien, en cajas de Petri o frascos estériles en refrigeración preferentemente, por no más de 24 horas; debe evitarse el congelar la muestra y mezclar diferentes órganos. Usualmente se remiten muestras de pulmón, tráquea, hígado, bazo, y en el caso de aislamiento de Salmonella, se Salmonella, se incluyen además tonsila cecal, ovario, saco vitelino y vesícula biliar. Para el aislamiento de Haemophillus la Haemophillus la cabeza y cuello completos se envían envueltos en papel aluminio. En el laboratorio se lleva a cabo una siembra en medios generales, como agar sangre y agar McConkey para enterobacterias; si hay crecimiento de colonias, una tinción de Gram, y se procede al aislamiento en cultivo puro para separar la bacteria y poder identiidenti carla mediante pruebas bioquímicas, como catalasa, oxidas, citrato, malonato ureasa SIM, LIA y TSI. En toda solicitud de aislamiento bacteriano debe tenerse una petición precisa y contar con información de los tratamientos con antimicrobianos administrados, así como el periodo de tratamiento, ya que el hecho de no tener un aislamiento exitoso no implica necesariamente que el agente no está presente. Algunos laboratorios proporcionan a sus clientes tubos con medios de transporte; en estos casos, durante la necropsia se introduce un hisopo estéril en los órganos, cuya supercie fue quemada con una espátuespátu -
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Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
la caliente; las pinzas y tijeras que se utilizan deben ser ameadas con alcohol. También es posible el empleo de hisopos para aislamiento bacteriano a partir de rapados traqueales o cloacales. El hongo que generalmente se busca en el diagnóstico es el Aspergillus el Aspergillus.. El aislamiento se lleva a cabo a partir de tejidos infectados o de hisopos de arrastre que se emplean en las incubadoras, en este caso, todas las esquinas y uniones de paredes y piso son raspadas con el hisopo, lo mismo que los conductos de ventilación y aspas de las nacedoras. En muchas ocasiones se requieren exámenes bacteriológicos del agua, en ese caso es mejor ponerse de acuerdo con el laboratorio, ya que la preparación de medios y reactivos lleva un proceso diferente, y es muy importante el tiempo que transcurre entre la toma de la muestra y su procesamiento. Los exámenes bacteriológicos y micológicos son de mucha utilidad, sobre todo si van acompañados de un antibiograma; el uso indiscriminado y erróneo de muchos antimicrobianos ha hecho una selección de los agentes, de modo que hoy en día el fenómeno de resistencia es común.
VIROLOGÍA Para este tipo de estudios, las muestras tienen las mismas características que para estudios bacteriológicos, pero en este caso sí es recomendable la congelación de la muestra, o bien, su conservación en glicerina o PBS. Los órganos son macerados y pueden ser inoculados en embriones de pollo, cultivos celulares o aves susceptibles. El embrión de pollo es quizá el método más empleado para el aislamiento de virus de enfermedad de Newcastle, inuenza aviar, bronquitis infecinfec ciosa y viruela aviar, mientras que se preere el cultivo celular para adenovirus, virus de IBF, virus de anemia infecciosa y reovirus. El embrión comercial puede ser empleado para ENC, IA, BI y VA; en el resto de los agentes es mejor usar embriones libres de patógenos especícos, por el riesgo de la transmisión vertical. Los embriones son inoculados en la cavidad alantoidea, membrana corioalantoidea y saco vitelino; en ellos se buscan lesiones como hemorragias (ENC, IA), enanismo y deformidad (BI), o pústulas en la membrana corioalantoidea Viruela Aviar (VA) y Laringo Traqueitis Aviar (LTA). Algunos virus pueden ser demostrados por su capacidad de aglutinar glóbulos rojos (ENC IA).
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
En la mayoría de las ocasiones se requiere de algunos pases antes de obtener un aislamiento, en algunos virus como el de BI se requieren al menos cuatro pases, lo que hace que un aislamiento de este virus pueda demorar hasta dos semanas. La inoculación de aves susceptibles es uno de los mejores métodos, pues reproduce el cuadro clínico, pero requiere de instalaciones adecuadas y más tiempo. Algunos virus, como el de anemia infecciosa, son difíciles de aislar, pueden requerir de hasta 10 pases en cultivo celular, y la inoculación en aves libres de patógenos especícos demora hasta tres semanas, por lo que en estos casos la demostración del agente por otras técnicas es de utilidad.
en cadena de la polimerasa (RT-PCR) y los patrones de restricción (RFLP).
PCR PC R La técnica de PCR consiste en amplicar un segmensegmen to del ácido nucleico de un agente del cual se ha demostrado previamente que sólo existe en él, en otras palabras, no logra el aislamiento del agente, sino que demuestra que su ácido nucleico está en la muestra. Virus como el de anemia infecciosa, del cual ya se han mencionado las dicultades de aislamiento, pueden ser demostrados en tan solo dos días. Mediante estas técnicas, el proceso de diagnóstico se lleva a cabo en tres fases: ❏
HISTOPATOLOGÍA Salvo en casos excepcionales, las lesiones microscópicas no son patognomónicas, sin embargo, en la mayoría de las ocasiones pueden orientar un diagnóstico, es decir, de acuerdo con las lesiones que se observan se propone el resto de los exámenes de laboratorio. La muestra ideal para histopatología debe tener una parte de tejido sano y una parte de tejido lesionado, un grosor no mayor a 0.5 cm en órganos parenquimatosos, y hasta 1 cm en los órganos tubulares, en los cuales la mucosa nunca debe ser tocada. Las muestras deben ser jadas en formol al 10% amortiguado, con una relarelación muestra: jador de 1:10. Después de la jación por 24 horas, las muestras son tratadas con diferentes alcoholes e incluidas en bloques de parana, a partir de los cuales se llevan a cabo cortes de 4 micras, que son teñidos con hematoxilina y eosina. El patólogo emite diagnósticos morfológicos (nombre de la lesión, ubicación, curso y grado) y descripción de las lesiones, así como los probables agentes o condiciones asociadas.
BIOLOGÍA MOLECULAR La biología molecular está teniendo cada vez más aceptación en el diagnóstico, en el caso de clínica de las aves es de particular importancia, sobre todo en aquellos casos en los que aislar o demostrar el agente es difícil o lleva mucho tiempo. Las técnicas más utilizadas son la reacción en cadena de la polimerasa (PCR por sus siglas en inglés), reacción inversa de reacción
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Extracción de ácidos nucleicos. Reacción en cadena de la polimerasa. Visualización de los productos amplicados.
La extracción de ácidos nucleicos se lleva a cabo a partir de tejidos de los cuales se requieren unos cuantos gramos, líquido alantoideo, sangre e inclusive heces o material de cama. Se emplean soluciones de fenol-cloroformo-alcohol isoamílico que degradan las proteínas y lípidos, dejando libres el ácido nucleico de los tejidos y del agente; posteriormente se precipita con etanol y es lavado a un volumen mínimo (100 microlitros). Una vez con al ácido nucleico extraído, la reacción en cadena de la polimerasa consiste en mezclar en un tubo de 200 microlitros el material genético aislado (que servirá de molde para la amplicación), los iniciadores (que son secuencias de 20 a 25 nucleótidos se unen a su sitio homólogo en la cadena de ADN), una enzima la Taq polimerasa (que sintetiza ADN uniendo nucleótidos a partir de los iniciadores), nucleótidos (que son la unión de un azúcar, un fosfato y una base nitrogenada) y agua. A través del tratamiento térmico se lleva a cabo la reacción: primero, la muestra es calentada a 94 ºC por 5 minutos, temperatura en la cual las cadenas de ácido nucleico son desnaturalizadas y al separarse dejan expuestos los sitios en los cuales los iniciadores han de unirse para dar inicio a la síntesis de nuevas cadenas de ADN; los iniciadores, entre otras propiedades, se unen a su sitio homólogo, es decir, encuentran la secuencia del agente que se está buscando, si éste está presente. Una vez que se han desnaturalizado las cadenas de ADN se inician 25 a 30 ciclos térmicos de tres pasos: en el primero la muestra se calienta otra
PARTE 2 - C - CAPÍTULO 1
vez a 94 ºC por 30 segundos para que las cadenas se separen; después, bajando la temperatura entre 55 y 65 ºC por 30 segundos, los iniciadores se alinean a su sitio homólogo; en el tercer paso, la muestra es calentada a 72 ºC por uno o dos minutos, temperatura en la cual la enzima incorpora los nucleótidos a la cadena de ADN para formar nuevas cadenas. En el siguiente ciclo de tres pasos, las temperaturas y tiempos se repiten de modo que las cadenas nuevas también sirven de molde para formar más cadenas de ADN. El proceso entonces produce la amplicación exponencial del fragmento de interés. Al nal del proceso, a partir de una sola cadena se pueden producir millones de copias del fragmento amplicado. Por último, la visualización de los producproduc tos de PCR se lleva a cabo cuando una pequeña parte (entre 3 y 5 microlitros) es corrida mediante electroforesis en un gel de agarosa y teñida con bromuro de etidio, que en presencia de luz ultravioleta produce uorescencia anaranjada. Si en el gel se depositan adeade más fragmentos de ADN de tamaño conocido, es posible saber la longitud de las bandas amplicadas, y así determinar si la prueba ha amplicado el fragmento especíco que se busca. El tamaño esperado del frag mento se conoce cuando se eligen la posición de los iniciadores en la cadena de ADN.
RT-PCR La técnica de PCR amplica fragmentos de ADN a partir del material genético aislado, pero sólo puede hacerlo a partir de ADN. En el caso de los virus ARN se requiere primero sintetizar cadenas de ADN complementarias (ADNc); este proceso es llevado a cabo mediante enzimas reverso transcriptasas (o transcriptasas inversas) que toman como molde la secuencia de ARN para sintetizar ADNc, el proceso es conocido como RT-PCR. El ADNc así obtenido puede ser amplicado en el PCR como cualquier otro ADN. En general los procesos de extracción y puricapuricación del ARN son similares a los empleados para el ADN, existen además en el mercado soluciones de fenol que extraen el ARN en solo un paso. La técnica de RT-PCR consume más tiempo y material, además de que la probabilidad de degradación de ARN es mayor; sin embargo, una vez que se ha estandarizado, la técnica permite un diagnóstico conable. Los virus aviares que pueden ser identicados mediante esta técnica incluyen el de
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Metodología diagnóstica y técnica de necropsia en aves
la enfermedad de Newcastle, bronquitis infecciosa, inuenza aviar e infección de la bolsa de Fabricio.
RFLP El producto obtenido por PCR permite generalmente un diagnóstico preciso y oportuno, no obstante, en algunas ocasiones se requiere el diferenciar cepas de un mismo virus; uno de los mejores ejemplos es el virus de la bronquitis infecciosa en el que las cepas variantes complican el diagnóstico. Una de las técnicas que mayor aplicación tiene para diferenciar cepas es el polimorsmo de la longilongi tud de fragmentos de restricción, conocida por sus siglas en inglés como RFLP. Esta técnica emplea las enzimas de restricción y se le conoce también como patrones de restricción. El ADN, resultado del PCR, puede ser cortado en dos o más fragmentos mediante las enzimas de restricción, las cuales reconocen secuencias especícas, o sitios de corte, de manera que una misma enzima puede puede distinguir distinguir cadenas diferentes de ADN al no cortarlo, o bien, producir fragmentos de distintos tamaños, que al ser corridos en un gel de agarosa o poliacrilamida migran de diferente manera. Las variaciones se establecen por la presencia o ausencia de bandas en el gel, así como por el tamaño de éstas. En ocasiones no es posible establecer diferencias pequeñas mediante RFLP, por lo que se preere la se cuenciación. Esta técnica, si bien no está al alcance de la mayoría de los laboratorios, permite la mejor prueba de que dos cepas son diferentes.
INTEGRACIÓN DE UN DIAGNÓSTICO DEFINITIVO Para emitir un diagnóstico denitivo del proceso patopato lógico que afecta a las aves de una parvada, se tiene que realizar un análisis crítico de los resultados de las diferentes pruebas de laboratorio y estos resultados deben ser confrontados con la historia clínica, los signos y los hallazgos a la necropsia. Por tanto, los conocimientos de los aspectos clínicos y zootécnicos de las aves, así como los alcances y limitaciones de las pruebas de laboratorio son fundamentales para emitir un diagnóstico nal. Es necesario mencionar que puede haber participación de varios agentes infecciosos en un proceso patológico, por lo cual, no es sorprendente realizar el diagnóstico de más de un agente infeccioso dentro de una parvada.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
> Literatura consultada
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Chairman HG, Arp LH, Domermuth CH, Pearson JE, eds. A laboratory manual for the isolation and identication of avian pathogens. 2da ed. Pensylvania: American Association of Avian Pathologist, 1989.
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Riddell C, ed. Avian histopathology. 2 da ed. American Association of Avian Pathologist, 1996.
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S. de Aluja A, Constantino CF. Técnica de necropsia en animales domésticos. JGH editores, Manual Moderno, 2002.
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Saif YM, Barnes HN, Glisson Jr eds. Diseases of poultry 11a ed. Ames Iowa: Iowa State University Press, 2003.
Metodología diagnóstica en cerdos Marco Antonio Herradora Lozano
INTRODUCCIÓN scropha) es una especie cuyas características anatómicas, siolósioló E (Sus scropha) gicas y etológicas permiten que se le explote, ya sea en forma individual, grupal o en grandes poblaciones, de manera intensiva en connamiento o extensiva en campo abierto. Sin embargo, algunas de estas características anatómicas y siológicas, como una gruesa capa de piel y grasa subcutánea, la presencia de cerdas a manera de pelo, una elevada predisposición al estrés por manejo y sujeción, así como el n zootécnico de la especie (producción de carne para abasto), limitan de manera importante el empleo de equipos y recursos como el estetoscopio, laringoscopio, otoscopio, percusión, auscultación, etcétera.
F 1-3. Los cerdos son una especie que por sus características pueden producirse de manera individual, grupal o en grandes poblaciones.
Metodología Diagnóstica Veterinaria
Por consiguiente, en la práctica clínica de esta especie, sólo se puede hacer uso del termómetro y de los sentidos, por ejemplo: ❏
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Sentido de la vista: es probablemente el sentido más utilizado, de ahí la conveniencia y necesidad de desarrollar el “ojo clínico”. La vista es empleada tanto en la inspección de las condiciones ambientales que rodean a los animales, como durante la inspección clínica de los mismos. A través de ella se puede apreciar el comportamiento de los animales, primero en estática y posteriormente en forma dinámica; así como cuadros clínicos representativos de enfermedades digestivas o entéricas (diarrea, vómito, dolor abdominal), respiratorias (secreción nasal, disnea, polipnea, brinco), neurológicas (convulsiones, ataxia, incoordinación), reproductivas y urinarias (aborto, hematuria, poliuria, piouria, disuria), y sistémicas (eritema, cianosis, hemorragias). Sentido del oído: a través de éste es posible detectar la presencia, intensidad (moderada, grave, severa) y tipo (con o sin exudado) de tos; la presencia de estornudo y el tipo de respiración (supercial o profunda). Sentido del olfato: olfato: es de gran utilidad durante la evaluación de las condiciones ambientales, sobre todo en lo que respecta a la ventilación y manejo de excretas, ya que a través de él es posible detectar la acumulación de amoniaco y ácido sulídrico. También es empleado para evaluar el estado de un alimento (fresco, fermentado o rancio) o la inclusión de algunas materias primas en el mismo (harina de pescado, harina de carne, aromatizantes). Por otra parte, es necesario para determinar el olor característico de líquidos y exudados. Sentido del tacto: el tacto: el uso del sentido del tacto no implica necesariamente la palpación; esta es una idea errónea, ya que se pueden percibir sensaciones a través de toda la piel. De esta manera, el sentido del tacto es útil para evaluar condiciones ambientales a través de la detección de corrientes de aire y de humedad, así como de la temperatura circundante; mientras que la palpación implica percibir sensaciones a través de las manos: formas cóncavas (depresiones) o convexas (protuberancias); supercies lisas o irregulares; consistencias (rme, sólida, suave, friable, crepitante, serosa, mucosa,
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etc.); temperaturas (caliente o frío); humedad (hidratado o seco). Sentido del gusto: éste gusto: éste se emplea en la evaluación del alimento y de las diferentes materias primas que lo componen. A través del él es posible detectar los sabores básicos: dulce, salado, ácido y amargo. Cabe mencionar que por ningún motivo deben probarse sustancias desconocidas o que representen un riesgo para la salud del ser humano.
F 4-6. En la práctica clínica de esta especie, sólo podemos hacer uso del termómetro y de nuestros sentidos.
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
Finalmente, es conveniente señalar que en la práctica clínica encaminada al diagnóstico y solución de problemas, resulta de poca utilidad la aplicación de estos cinco sentidos, si no se cuenta con un sexto, haciendo aquí referencia al sentido común, que por cierto, no suele ser el más común de los sentidos. Por otra parte, dadas las características propias de la especie y de su producción, es indispensable que el método diagnóstico esté sustentado de manera esencial en una apropiada anamnesis o historia clínica, acompañada del análisis de los registros de producción, la inspección clínica de los animales, la inspección física de las instalaciones (granja), así como la toma y envío de muestras al laboratorio. Sólo a través de la integración de todos y cada uno de estos elementos y de la adecuada interpretación de los resultados de laboratorio, será posible emitir un diagnóstico nal y, en consecuencia, establecer los programas de control correspondientes.
ANAMNESIS La anamnesis o historia clínica es la etapa más importante del método diagnóstico, ya que a través de un adecuado interrogatorio, en el que deberán incluirse la menor cantidad de términos técnicos, el médico veterinario podrá obtener del propietario de los animales, o del encargado correspondiente, la información necesaria para orientar el diagnóstico. Por otra parte, es importante que durante la aplicación del interrogatorio se valore la personalidad, los conocimientos y habilidades del interrogado, ya que, por lo general, mientras más instruido es el informante, los datos que se aportan son más exactos. Para que la anamnesis tenga validez es conveniente valorar la veracidad de la misma y complementarla con otras fuentes (registros), ya que una historia clínica incompleta induce a errores y con cierta frecuencia los propietarios o encargados intentan ocultar su negligencia durante el interrogatorio; a pesar de ello, se deben evitar preguntas confusas o capciosas y, en contraparte, infundir conanza en el informante. La habilidad para obtener información y valorarla depende del conocimiento y experiencia del médico, y resulta imposible denir todas las preguntas que se deben hacer ante un caso en particular; sin embargo, es conveniente obtener la mayor información de los siguientes elementos:
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Generalidades Historia inmediata Antecedentes Ambiente
GENERALIDADES Son los datos a partir de los cuales se obtiene una visión panorámica de la explotación, por ejemplo: ❏ ❏
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Ubicación de la explotación. Fin zootécnico (ciclo completo, pie de cría, lechonera, engorda, semen). Capacidad (número de hembras reproductoras o población). Sistema de producción (uno, dos o tres sitios, sitios múltiples). Flujo de producción (continuo o todo dentro-todo fuera). Grado de tecnicación (tecnicado, semitecnicado, traspatio). Presencia de explotaciones aledañas y a qué distancia se encuentran. Datos generales: nombre, dirección y teléfono del propietario.
F 7. A partir de la anamnesis es indispensable obtener información sobre las generalidades de la explotación, la historia inmediata del problema y el ambiente en que se encuentran los animales
HISTORIA INMEDIATA Es el conjunto de acontecimientos recientes (gura 8), en el periodo en que los animales han manifestado alteraciones de su estado clínico, y es importante el orden cronológico en que se observaron los cambios, por lo que se deben formular preguntas como: ❏
¿Cuándo empezó el problema?
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¿Inicialmente, qué animales se afectaron? ¿Posteriormente, cómo se distribuyó el problema en la población? ¿Cuál es el porcentaje de animales afectados (morbilidad)? ¿Cuál el porcentaje de muertes o bajas (mortalidad)? ¿Cómo se vieron afectados (signos clínicos)? ¿Cuánto tiempo permanecieron enfermos antes de la recuperación o muerte (curso)? ¿Existen vectores o transmisores? ¿Hay otras especies afectadas? ¿Se han aplicado tratamientos? ¿Cuál ha sido la respuesta?
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AMBIENTE Los animales y su estado clínico, son el producto de la interacción de tres elementos: genética, alimentación y ambiente; de ahí que el examen de un animal deba acompañarse del estudio de su ambiente. Esto es particularmente importante en el caso de animales que se explotan en grupos o grandes poblaciones, como el cerdo. Para obtener información relacionada con el ambiente, se pueden hacer preguntas como las siguientes: ❏
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F 8. A partir de la anamnesis es indispensable obtener información sobre las generalidades de la explotación, la historia inmediata del problema y el ambiente en que se encuentran los animales
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ANTECEDENTES
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Se intenta obtener información sobre la naturaleza (morbilidad, mortalidad, curso, etc.) de cualquier enfermedad que haya afectado previamente a la piara; así como de todos aquellos factores que pudieron predisponer el problema actual, por lo que es conveniente hacer los siguientes cuestionamientos: ❏
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¿Qué enfermedades se han presentado en por lo menos un ciclo productivo anterior (150-170 días)? ¿Cuáles son los programas de medicina preventiva establecidos (vacunación, medicación, desparasitación, etcétera)? ¿Cuáles son las medidas de bioseguridad y cómo funcionan? ¿Recientemente han ingresado animales a la explotación?
¿Cuál es el origen del pie de cría o semen? ¿Qué tipo de alimento o materias primas se emplean? ¿De dónde proviene el agua? ¿Han habido cambios ambientales (temperatura, humedad, etc.) o de personal?
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¿Cuál es la temperatura ambiente y sus variaciones a lo largo del día? ¿Qué grado de humedad prevalece en las instalaciones? ¿Cómo están orientadas las naves, de dónde provienen los vientos dominantes y qué altura tienen las bardas de los edicios? ¿Qué materiales conforman los techos, las paredes y los pisos? ¿Las instalaciones cuentan con aislantes térmicos, ventanas, cortinas, etcétera? ¿Cómo son los pisos de los corrales (sólidos, emparrillados, plasticados, de cemento o metal)? ¿Cuál es la densidad de población por corral y el espacio brindado por animal? ¿Las jaulas paridero cuentan con lechonera, fuente de calor y cama? ¿Cuándo se emplea cama, qué materiales se usan y cómo se manejan? ¿A cuántos bebederos y de qué tipo tienen acceso los animales? ¿Qué tipo de comedero es utilizado y cuál es la disponibilidad de espacios de comedero? ¿Cómo se efectúa el manejo de desechos y excretas? ¿Cómo es la interacción hombre-animal (rutinas de manejo)?
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
F 9. A partir de la anamnesis es indispensable obtener información sobre las generalidades de la explotación, la historia inmediata del problema y el ambiente en que se encuentran los animales
Como se puede apreciar, resulta imposible incluir en un texto todos los cuestionamientos posibles, ya que la propia anamnesis depende de cada caso en particular y solamente el conocimiento de las entidades que desencadenan problemas y la experiencia permiten elaborar una anamnesis precisa, oportuna y conable.
REGISTROS Y ANÁLISIS DE LA INFORMACIÓN En las explotaciones porcinas es indispensable contar con información sobre la producción, ya que a través del análisis de la misma es posible generar elementos de juicio (auxiliares en la toma de decisiones), que permitan conocer y evaluar la explotación, y así establecer las medidas correctivas o de control.
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Metodología diagnóstica en cerdos
Una herramienta esencial para el manejo de la información son los registros, que no son sino formatos conformados por hileras y columnas, en los que se anotan los distintos eventos (partos, nacimientos, bajas, consumos de alimento, ganancias de peso, etc.), relacionados con un individuo, un grupo o un área en particular (servicios, gestación, maternidad, destete o engorda). En términos generales, los registros se clasican en dos grandes grupos: registros de corral y registros de ocina. Los registros de corral son, como lo indica su nombre, aquellos en los que se maneja la información generada directamente en el lugar en donde se encuentran los animales y son manejados por la persona que está en contacto directo con los mismos; mientras que en los registros de ocina se condensa la información recabada en los de corral y por lo general son manejados por el encargado de la granja, el médico veterinario e incluso por el propietario de la misma. Ahora bien, la mayoría de los eventos que se anotan en los registros corresponden a características o parámetros productivos, establecidos a manera de rangos óptimos o aceptables, mismos que representan los presupuestos o metas de cada explotación en particular; por consiguiente, éstos varían entre granjas y dependen de todos y cada uno de los elementos que conforman el sistema productivo: genética, alimentación, estado sanitario, n zootécnico, etcétera.
TIPOS DE REGISTROS DE CORRAL Y OFICINA, COMUNMENTE UTILIZADOS EN LAS GRANJAS PORCINAS Registros de corral
Registros de ocina
De la hembra: servicios, gestación y maternidad.
Historial de la hembra y el semental.
De producción codicada por grupo de cerdas.
Control de desempeño productivo de granja (semana, periodo, año).
Control de servicios: montas o inseminaciones.
Controles de mortalidad, ventas, movimiento de animales y semovientes.
Comportamiento por grupo: destete y engorda.
Consumo de alimentos, medicamentos y biológicos.
Uso de sementales.
Control de insumos (varios).
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
DESCRIPCIÓN DE ALGUNOS DE LOS PARÁMETROS MÁS UTILIZADOS EN LA PRODUCCIÓN DEL CERDO, CON SUS RANGOS ÓPTIMOS Parámetro
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Descripción
Rango
Ciclo productivo de la cerda
Días de gestación + días de lactancia + días de destete a primer servicio
140-160 días
Edad a la pubertad
Corresponde a la manifestación del primer celo
168-220 días
Edad al primer servicio
Corresponde al primer servicio que recibe la cerda
200-245 días
Porcentaje anual de reemplazos
Es el porcentaje de animales que ingresan a la piara
Hembras: 30-40% Machos: 40-50%
Porcentaje anual de desechos
Es el porcentaje de animales que son eliminadas de la piara
Hembras: 30-40% Machos: 40-50%
Fertilidad al primer servicio
Son las hembras que quedan gestantes en el primer servicio
80-95%
Fertilidad al parto
Es la proporción de hembras servidas que pare
80-85%
Repeticiones
Corresponde a las hembras servidas que no quedan gestantes
5-20%
Días abiertos
Es el tiempo en que la hembra se encuentra vacía
30–48 días
Días de destete al primer servicio
Lapso que va del destete al primer celo y servicio
4-7 días
Días de destete al servicio efectivo
Lapso que va del destete al servicio con gestación (+)
7-15 días
Intervalo entre partos
Lapso que transcurre entre parto y parto
Nacidos vivos por hembra
Son los lechones que nacen vivos
Nacidos muertos por hembra
Son los mortinatos expresados en porcentaje
4-9%
Nacidos totales por hembra
Es la sumatoria de vivos y muertos
8-12
Peso individual al nacimiento
Es el peso al nacer de los lechones
800-2000 g
Peso de la camada al nacer
Es la suma de los pesos individuales de los lechones
10-14 kg
Días de lactancia
Corresponde a la edad del destete
21-28 días
Mortalidad en lactancia
Es la relación entre nacidos vivos y destetados
4-10%
Destetados por hembra
Son los cerdos que desteta una hembra por parto
7.4-9.5
Peso individual al destete
Es el peso de cada lechón al momento del destete
6.5-7.6 kg
Peso de la camada al destete
Es la suma de los pesos individuales de los destetados
48-73 kg
Partos por hembra por año
Corresponde al número de partos que tiene un cerda en un año
2.2-2.4
Nacidos vivos por hembra por año
Son el promedio de nacidos vivos, multiplicado por el número de partos por hembra por año
17.6-26.4
Destetados por hembra por año
Son el promedio de destetados multiplicado por el número de partos por hembra por año
16.3-22.8
140-156 días 7.7-10.9
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
Como se puede apreciar en el cuadro anterior, los presupuestos pueden establecerse de manera individual, por grupo de animales o para un área en particular; corresponden a los valores esperados de producción y, al ser comparados con los valores reales u obtenidos, se establecen las diferencias o indicadores, que van a conformar los elementos de juicio en el proceso de análisis de información y evaluación de la producción; dicha evaluación se puede efectuar en forma mensual, semanal, por periodo (28 días), o anual. En el caso particular de la metodología para arribar al diagnóstico de problemas, es conveniente hacer evaluaciones de por lo menos un ciclo productivo, esto es, 150 días para las cerdas (21 semanas o 5 periodos) y 170 para los animales de engorda (24 semanas o 6 periodos). El siguiente registro se reere al control de desempeño productivo del área de servicios, gestación y maternidad, en el que se incluyen presupuestos, valores obtenidos y la diferencia correspondiente. REGISTRO DE CONTROL DE DESEMPEÑO Parámetro
Presupuesto
Real
Diferencia
Repeticiones
12
10.5
1.5
Fertilidad
84
83.1
0.9
D.D.P.S.*
7
7.3
-0.3
Partos
111
111.5
-0.5
Nac. Totales
10
10.4
-0.4
Nac. Vivos
9.4
9.5
-0.1
Nac. Muertos
6
5.1
0.9
Momias
2
2.6
-0.6
150
148.1
1.9
965.7
964
1.7
Destt/ cerda
8.7
8.7
0
Mort. Lactancia
7.45
7.6
-0.15
Destetadas
111
110
1
Inventario
670
661.6
8.4
Serv./ Periodo
132
134
-2
Peso al nac.
1.5
1.5
0
Peso al destt.
6.5
6.45
.05
Días lactancia
21
21.8
-0.8
Mort. Pie de cría
2
6.4
-4.4
Intervalo / partos Destt / periodo
*D.D.P.S.: Síndrome de Desmedro post destete
❏
Metodología diagnóstica en cerdos
Las diferencias entre los valores esperados y los obtenidos que se presentan en el registro anterior son elementos de juicio a través de los cuales se puede apreciar claramente una problemática en el comportamiento reproductivo de las cerdas. Finalmente, cabe señalar que en la práctica clínica de la producción porcina, es necesario invertir más tiempo en el análisis y evaluación de la producción, que en la inspección clínica de los animales; ya que en este caso la metodología diagnóstica va encaminada a resolver los problemas de una población y, por ende, la información obtenida a partir de registros brinda una visión panorámica del problema, por ello los registros son considerados una herramienta esencial en la explotación de esta especie.
INSPECCION CLÍNICA Después de la anamnesis y del análisis de registros, la siguiente herramienta utilizada en la integración del diagnóstico es la inspección o examen clínico. En la práctica clínica de la producción porcina, el médico veterinario debe examinar a los animales de una explotación, desde tres ópticas diferentes: inspección individual de los animales enfermos, inspección de un grupo de animales enfermos y la comparación con un grupo de los animales sanos. El examen individual por lo general está reservado para las hembras reproductoras y los sementales, debido al merito comercial de los mismos; mientras que el método para el diagnóstico de entidades que provocan brotes exige el examen clínico individual de aquellos cerdos que muestran signos característicos de la enfermedad.
F 10. Examen clínico a partir de la inspección individual de cerdos enfermos.
249
Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 11. Examen clínico a partir de la inspección individual de cerdos enfermos, inspección de un grupo de animales enfermos.
F 12. Examen clínico a partir de la inspección de cerdos enfermos y su comparación con animales sanos.
F 14. Examen clínico individual en cerda en gestación.
F 15. Examen clínico individual en semental de reemplazo (observe los aplomos posteriores) y evaluación de la condición corporal a través de la medida de grasa dorsal.
INSPECCIÓN INDIVIDUAL Generalmente los cerdos no están habituados a que se les sujete o restrinja en movimiento; para evitar alteraciones ocasionadas por cambios siológicos debidos a estas restricciones, la inspección debe efectuarse, de preferencia y en la medida de las posibilidades, sólo de manera visual, en silencio y en el ambiente original; posteriormente y si fuera necesario, el animal puede ser sometido para su inspección.
F 13. Examen clínico individual en pie de cría.
250
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
F 16-18. Sujeción química y física de animales de pie de cría, para su inspección clínica.
La postura, andadura, conducta, estado nutricional y respiración deben observarse y registrarse antes del proceso de sujeción, de lo contrario, todo esto se verá modicado con el mínimo intento por sujetar al cerdo, pero una vez que se ha sujetado, lo primero que se tiene que hacer es tomar la temperatura corporal.
❏
Metodología diagnóstica en cerdos
Los animales pueden adoptar posturas anormales, presentándose en decúbito lateral (problemas cardiacos, respiratorios o hipertermia) o esternal (ebre, depresión). La postura de perro sentado se asocia a problemas respiratorios, neumonía, insuciencia cardiaca o pleuritis. También la postura con extensión de la cabeza, es indicativa de problemas respiratorios (congestión, edema o exudado pulmonar), mientras que el arqueamiento de la espalda se puede relacionar con pleuritis. Los cerdos con problemas en miembros (artritis, tendinitis, sinovitis) se rehúsan a ser colocados de pie y a caminar, y evitan apoyar los miembros afectados. En ocasiones pueden manifestar incoordinación y debilidad al tratar de caminar, debido a severos cuadros febriles; mientras que la cabeza inclinada hacia uno de los lados puede indicar problemas de otitis media, interna o meningitis. El examen de los miembros locomotores se inicia con la palpación e inspección de los dedos, y termina de manera ascendente hacia la articulación coxofemoral, para los miembros posteriores y escapulohumeral para los anteriores; a la vez se lleva a cabo la revisión de las articulaciones correspondientes, comparando tamaño, forma, consistencia y temperatura. En cuanto a la conducta, es indispensable hacer comparaciones entre animales de distintos corrales, para determinar si los cerdos afectados se encuentran deprimidos o hiperquinéticos. Los cambios de conducta generalmente están asociados a problemas sistémicos, mientras que los desórdenes localizados como artritis, abscesos, infecciones localizadas en piel, son acompañados de una conducta normal, pero en estado de alerta. Los cerdos sanos mantienen las orejas erectas, la cola levantada y se encuentran en un constante estado de alerta, o bien, corriendo, comiendo o durmiendo, y responden de inmediato a estímulos auditivos (silbidos, aplausos, etc.) y visuales (personas en movimiento); una conducta diferente indicaría que los cerdos están enfermos, sordos o ciegos. La condición corporal o estado nutricional es un indicador del estado de salud. Los cerdos en crecimiento no deben presentar estructuras óseas que se aprecien a simple vista (caderas, vértebras, costillas), en su lugar, es deseable que presenten un lomo ligeramente arqueado con una leve depresión a lo largo de la espalda y un vientre recto pero lleno a los costados.
251
Metodología Diagnóstica Veterinaria
Debido al amplio rango de valores que se tiene para la frecuencia respiratoria (cuadro 4), es preferible hacer comparaciones entre los cerdos de un mismo corral y con los animales de otros. Las frecuencias respiratorias elevadas están relacionadas con neumonía, insuciencia cardiaca, pleuritis, anemia, dolor y esfuerzo. La respiración abdominal se observa en casos de neumonía y pleuritis, mientras que la torácica corresponde a dolor o esfuerzo. Junto con la frecuencia y tipo de respiración, es conveniente revisar los ollares para detectar la presencia de secreciones (serosa, mucosa o sanguinolenta) y la conformación de la nariz (arrugada, desviada o corta). Los cerdos también tienen un amplio rango de temperatura corporal, debido a la rapidez con que ésta se eleva por la excitación que experimentan a partir de que son sujetados. Sin embargo, el cerdo es una especie muy susceptible a la depresión por enfermedad, de ahí que un animal enfermo permanezca en decúbito y tolere fácilmente el que se le tome la temperatura rectal. Por otra parte, hay que considerar que los primeros animales a los que se les toma la temperatura dentro de un corral pueden presentar un registro menor, en comparación con los últimos, a causa del estrés y la excitación que presentan en el proceso. Especícamente el color de la piel en el hocico, orejas, vientre, entrepiernas, vulva y ano debe observarse con cuidado, ya que un color azuloso es indicativo de falla circulatoria; el rojo, de eritema o pirexia;
el amarillo, de alteraciones hepáticas o hemólisis; y grisácea, de parasitosis o desnutrición. Una cerda sana debe tener aspecto brilloso y plano, pues un pelo hirsuto y opaco indica frío, enfermedad o retraso en el desarrollo. En los ojos se puede apreciar conjuntivitis, hipopión, queratitis, epífora y secreciones. La glándula mamaria también tiene que ser inspeccionada para reconocer alteraciones en cuanto a color, consistencia, temperatura y presencia de dolor. Por otra parte, el comportamiento de los lechones reeja indirectamente la capacidad de la cerda para producir suciente leche. Los pezones deberán ser prominentes, funcionales y estar bien implantados. En cuanto a la inspección genital de la hembra, aquella se limita a la vulva, misma que debe estar íntegra anatómicamente y presentar una pigmentación rosa; sin embargo, la presencia de inamación, hematomas o secreciones mucosas o purulentas, son indicadores de procesos patológicos. En el caso de los sementales, se revisan los testículos, los cuales deben ser simétricos, de tamaño uniforme y estar bien implantados. Su palpación puede revelar calor, dolor, protuberancias o depresiones, así como su consistencia. El pene debe ser exteriorizado en busca de laceraciones, úlceras, malformaciones, adherencias y persistencia del frenillo peneano. Finalmente, es conveniente reconocer el comportamiento sexual del semental (libido).
TEMPERATURA, FRECUENCIA CARDIACA Y RESPIRATORIA EN CERDOS DE DIFERENTES EDADES Temperatura rectal (°C)
Frecuencia respiratoria (resp./min.)
Frecuencia cardiaca (latidos/min.)
Recién nacido
39.0
50-60
200-250
Lechón destetado
39.3
25-40
90-100
Crecimiento
39.0
30-40
80-90
Finalización
38.8
25-35
75-85
Hembra gestante
38.7
13-18
70-80
Verraco
38.4
13-18
70-80
Edad
252
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
INSPECCIÓN EN GRUPO Por lo general, los servicios veterinarios son solicitados para atender a un grupo de cerdos, cuando en la piara está presente una enfermedad a manera de brote; o bien, para identicar aquellas áreas en las que el com portamiento productivo es inapropiado. Durante la inspección de un grupo de animales, no solo deberá prestarse atención a los cambios físicos de éstos, también es necesario observar la dinámica poblacional, el ambiente y la alimentación del grupo. La dinámica poblacional incluye la interacción entre cerdos y grupos de cerdos, así como entre trabajadores y cerdos. Algunos aspectos que se analizarán son: densidad de población (cerdos/corral, cerdos/ nave, m2/cerdo, ft3 de aire/cerdo); uniformidad (edad y conformación 90% similares en un mismo corral o nave); interacción social cerdo-cerdo (peleas, mordedura de cola, mordedura de orejas, canibalismo); estado de competitividad (espacios de comedero, número de bebederos, supercie de área limpia y sucia); reacción y comportamiento frente al personal, etcétera. Respecto al ambiente, es importante detectar la presencia de corrientes de aire, polvo y gases, y en cuanto a la temperatura, ésta debe corresponder a las necesidades de los cerdos, de acuerdo con su edad o etapa productiva. Con la presencia de corrientes de aire, los animales no discriminan en el corral las áreas sucias de las limpias, por lo que defecan y orinan en las áreas de descanso y alimentación; con una elevada contaminación por polvo y gases, los cerdos tienden a estornudar, particularmente cuando aumenta su actividad (carreras y juegos); con temperaturas por arriba del confort térmico, los animales se dispersan en el corral, buscan lugares frescos y se echan; mientras que con temperaturas por debajo del confort térmico, tienden a apilarse. En cuanto a la alimentación, la conformación, ganancia de peso y conversión, suelen ser los mejores indicadores de su calidad; sin embargo, siempre es necesario revisar las características del alimento, tales como: tamaño de la partícula (700 µ), tamaño e integridad del pellet, calidad de mezclado, olor, color y sabor. Los animales siempre deben recibir un alimento fresco y no contaminado con micotoxinas, excremento de roedores o rancio.
❏
Metodología diagnóstica en cerdos
Finalmente, se debe tener en cuenta que las formas de comportamiento son múltiples y variadas, y que en ocasiones lo anormal puede pasar inadvertido; actos como caminar, comer, beber, defecar, orinar, montar, reposar, dormir, competir, jugar, comunicar, etc., etc., tendrán que ser observados con detalle, con la nalidad de ampliar la información disponible en la historia clínica, herramienta indispensable en el diagnóstico.
INSPECCION FISICA DE LA GRANJA Como se señaló anteriormente, el ambiente en el que se encuentran los animales es determinante para su estado clínico, de ahí la relevancia de llevar a cabo una adecuada inspección física de las instalaciones.
F 19. Inspección física de las instalaciones del área de maternidad.
F 20. Inspección física de las instalaciones de las áreas de servicios-gestación.
253
Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
❏
F 21. Inspección física de las instalaciones de las áreas de engorda.
La inspección física de la granja debe efectuarse bajo un estricto orden, procurando no obviar ningún aspecto relacionado con el ambiente en el que se encuentran los animales y siempre en forma unidireccional: de las áreas con menor riesgo sanitario, a las más contaminadas; por ejemplo, de maternidad a destete y de destete a engorda. Cabe señalar que la inspección física no se inicia precisamente en la propia granja, ya que es preciso reconocer las vías de acceso y los elementos que se encuentran cercanos a la misma, tales como: otras explotaciones (cerdos, aves, bovinos, etc.), rastros, empacadoras, depósitos de desechos, poblados, etcétera. A manera de ejemplo se presenta a continuación una guía sobre los aspectos que se deben reconocer durante la inspección física de una granja de ciclo completo, que cuenta con una pequeña planta de alimentos. Cabe mencionar que dicha metodología varía por tipo de granja (ciclo completo, lechonera, engordadora, pie de cría o traspatio), grado de tecnicación (tecnicada, semitecnicada y traspatio) y sistema de producción (granja en tres sitios o sitios múltiples). Ejemplo: Granja de ciclo completo, con planta de alimentos. ❏
254
Como ya se señaló, la inspección inicia con el reconocimiento de las vías de acceso a la granja y los elementos que se encuentran en la vecindad de la misma. No es pertinente que la granja se encuentre a pie de carretera, cercana a caminos comunales, o expuesta al tránsito de vehículos transportadores de ganado. Es preferible que las granjas estén totalmente aisladas, o por lo menos ubicadas a 3 km de distancia de la explotación más cercana.
❏
❏
❏
Antes de ingresar en la granja, se deben vericar algunas medidas de bioseguridad, tales como: la presencia de una barda perimetral, arco y vado sanitario, restricciones para el acceso de personal y vehículos, entre otras. Ya en la granja, el primer paso a seguir corresponde a la síntesis y análisis de la información relacionada con la producción y los problemas que le atañen; dicho análisis se efectúa dentro del área de ocinas. A la vez, es conveniente establecer una programación de la manera en que se llevará a cabo la inspección, dividiendo la granja en áreas rojas con riesgo sanitario (sucias) o azules sin riesgo sanitario (limpias); así como los puntos relevantes que se tendrán que revisar durante la misma. Posteriormente se ingresa en el área de duchas y vestidores, con la nalidad de utilizar exclusivamente ropa y calzado propios de la explotación. Es preferible no introducir en la granja equipos y materiales ajenos a la misma, por lo que se tendrán que utilizar portapapeles, bolígrafo, termómetro y calculadora propios. Para este ejemplo en particular, sería recomendable inspeccionar en primer lugar la zona limpia de la planta de alimentos (azul), correspondiente al área de almacenaje de materias primas, y a la fabricación y almacenamiento del alimento; de lo contrario, al visitar previamente un área contaminada dentro de la granja (roja), se correría el riesgo de diseminar enfermedades a través del alimento. En este momento conviene revisar las condiciones de almacenamiento (temperatura, humedad, ventilación e higiene), así como la calidad de las materias primas y del alimento elaborado, sobre todo si se sospecha de un problema originado por éstos, y si fuera necesario, llevar a cabo un muestreo para remitirlo al laboratorio. La siguiente inspección se efectúa en las salas de maternidad y debe realizarse en estricto orden cronológico —de menor a mayor riesgo sanitario—, es decir, de las salas donde se encuentran las hembras pariendo, a las ocupadas por cerdas con 1, 2, 3, o 4 semanas de lactancia. En dicha inspección se revisarán externamente las condiciones de aislamiento de la sala, la presencia de fauna nociva y malezas. Ya en su interior, la inspección se inicia metodológicamente de arriba abajo y del frente hacia atrás, considerando:
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Techos (materiales, aislamiento, diseño e higiene) Paredes (materiales, aislamiento, diseño e higiene) Ventanas (materiales, diseño, capacidad e higiene) Jaulas (materiales, diseño e higiene) Equipo (comederos, bebederos y lechoneras) Pisos (materiales, diseño e higiene) Drenajes (materiales, diseño e higiene)
En este momento es conveniente vericar la temperatura, humedad y ventilación; así como la interacción hombre-animal. ❏
❏
❏
❏
En seguida se realiza la inspección de las salas de destete, siguiendo también un orden cronológico basado en la edad de los animales, por lo que se inicia con los cerditos más jóvenes (recién destetados) y se termina con los de mayor edad (10 semanas de edad). Al igual que en el área de maternidad, durante la inspección del destete se lleva a cabo un reconocimiento del exterior de las salas y en su interior se inspeccionan techos, paredes, ventanas, corraletas, equipo, pisos y drenajes. Finalmente es recomendable determinar las condiciones ambientales en cuanto a temperatura, humedad, ventilación, densidad de población y, por supuesto, el manejo rutinario al que son sometidos los animales. Después se lleva a cabo la revisión de las áreas de adaptación, servicios y gestación, donde se encuentran los animales de reemplazo, las cerdas destetadas, los sementales, las cerdas recién servidas y las gestantes. Nuevamente se aconseja practicar una inspección externa de las naves y en su interior, vericar las características de las instalaciones (techos, paredes, jaulas, equipo, pisos y drenajes), la temperatura ambiental, pero sobre todo la interacción hombre-animal. A continuación se realiza la inspección de la engorda, conformada por animales en las etapas de crecimiento, desarrollo y nalización. Al igual que en las otras áreas, se inspecciona el exterior e interior de las naves, poniendo especial atención en techos, sistemas de ventilación, equipos de alimentación, pisos, drenajes y densidad de población. Finalmente se lleva a cabo la inspección de las áreas de embarcadero (sólo la zona limpia), de necropsias (inspección post mortem y toma de muestras) y el depósito de desechos.
❏
Metodología diagnóstica en cerdos
En el ejemplo anterior se aprecia que para una inspección ecaz de la granja es necesario establecer un método basado en el orden y la disciplina, de lo contrario se incurrirá en el error de no detectar detalles, de los que puede depender el éxito o el fracaso de un diagnóstico.
OBTENCIÓN Y ENVÍO DE MUESTRAS Para establecer un diagnóstico preciso, el médico veterinario recurre frecuentemente a los servicios que brindan los laboratorios de diagnóstico; sin embargo, este esfuerzo profesional se pierde por un manejo inadecuado de las muestras seleccionadas e incluso por el tipo de prueba solicitada. Por consiguiente, a continuación se señalan las recomendaciones correspondientes. Factores que se deben considerar al tomar una muestra: ❏
Deben ser representativas del problema; cuando la situación económica de la empresa lo permita, se recomienda enviar uno o varios animales que se encuentren en las diferentes etapas de la enfermedad.
❏
La historia clínica debe ser lo más completa posible, y comprender: ❏ ❏
❏
❏
❏
❏
❏
❏
❏ ❏ ❏
Nombre y dirección del propietario. Descripción del (los) animal (es): especie, sexo, raza, edad. Curso de la enfermedad o epizootia, porcentaje de morbilidad, porcentaje de mortalidad, cuadro clínico, hallazgos a la necropsia, etcétera. Diagnóstico clínico o enfermedad de la que se sospecha, incluyendo una breve descripción clínica. De ser posible, indicar el examen solicitado, ya que a una misma muestra se le pueden realizar varios exámenes. Señalar los tratamientos establecidos, incluyendo dosis, duración y nombre del producto. Historia de enfermedades que se han padecido en la granja. Señalar cambios de personal, programas de manejo, alimentación o medicina preventiva. Adquisiciones recientes de pie de cría (lugar). Posibles contactos con otras granjas. Nombre y dirección del médico responsable.
255
Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
❏
Tipo de muestra y conservador utilizado para su preservación.
El tipo de conservador dependerá del análisis a efectuarse:
ESTUDIOS BACTERIOLÓGICOS Se recomienda la refrigeración, sobre todo cuando se envían órganos. El hielo húmedo conserva las muestras hasta por 24 horas, siempre que el recipiente sea de material aislante y esté perfectamente cerrado. Cuando se emplea hielo seco, éste no debe tener contacto directo con la muestra; de lo contrario, se puede provocar la destrucción de tejidos y bacterias; el tiempo de conservación va de 2 a 3 días. La colección de líquidos se efectúa con aguja y jeringa o hisopos estériles; mientras que la de exudados sólo con hisopos incluidos en medios de transporte. A este laboratorio también se pueden remitir muestras de alimento y agua; para el primer caso, se recomienda enviar las muestras en bolsas de papel y a temperatura ambiente; las muestras de agua se mandarán en refrigeración (4oC) y en frascos estériles.
ESTUDIOS VIROLOGICOS Es conveniente enviar los órganos o sitios de replicación viral (fetos, pulmones, cerebro, etc.) lo más completos que sea posible, dentro de bolsas de plástico y en refrigeración.
ESTUDIOS HEMATOLÓGICOS
ESTUDIOS HISTOPATOLOGICOS
Las muestras deben ser tomadas antes de la muerte o sacricio del animal, y colocarse en un tubo con solución anticoagulante como: citrato de sodio, oxalato de potasio, ácido etilendiaminatetraacético, etc. Las muestras de sangre se colectan asépticamente, jeringas o tubos vacutainer y agujas calibre 20 (1.5 pulgadas) para cerdos con menos de 50 kg de peso, o calibre 18 (2.5 pulgadas) para cerdos de mayor peso. La punción se efectúa en las venas cava anterior o yugular exterior. Para el primer caso, los animales pueden permanecer de pie o en decúbito dorsal, la aguja se inserta en la región del encuentro, paralelamente a la tráquea, con una dirección cráneocaudal y ventrodorsal hacia la línea media. Para puncionar la yugular exterior se requiere que el animal esté de pie, y la aguja se inserta sobre el surco de la yugular, aproximadamente 10 cm antes de la región del encuentro.
Las muestras para estudios histopatológicos deben provenir de animales con menos de 2 horas de haber muerto, de lo contrario no serán de utilidad, a causa de los cambios de autólisis que se presentan en el cadáver. Es importante que la muestra contenga tejido sano y afectado; sin embargo, sus dimensiones deberán permitir que el conservador (formol al 10%) penetre por completo, para una correcta conservación; de ahí que las dimensiones correspondan a un grosor de no más de un centímetro, y el tamaño de la muestra deberá mantener una relación de 1:10, respecto al conservador.
ESTUDIOS SEROLOGICOS Para estas pruebas, se remite una muestra de suero sanguíneo al laboratorio. Para su obtención se
256
requiere, en primera instancia, una muestra de sangre, que se colecta en jeringas o tubos vacutainer sin anticoagulante. Una vez obtenida la muestra de sangre, ésta se transere lentamente a un tubo de ensaye de 10 mL, el cual, para facilitar la separación del suero, deberá llenarse a la mitad, permitiendo que la sangre se deslice por las paredes del recipiente y así evitar la hemólisis. Los tubos con sangre se colocarán en un plano inclinado, a la sombra y a una temperatura ambiente, hasta que se forme el coágulo (20-30 minutos) y posteriormente se conservará la muestra en refrigeración, hasta la separación del coágulo (6-8 horas). Finalmente se retira el coágulo, el suero se decanta en un nuevo tubo y se remite en condiciones de refrigeración al laboratorio.
ESTUDIOS PARASITOLÓGICOS Algunas muestras, como las de heces con huevos u oocistos, pueden sufrir cambios evolutivos o de autólisis que dicultan su identicación, por lo que es conveniente conservarlas en refrigeración, mientras que los endoparásitos adultos pueden conservarse en formol al 10%. En el caso de ectoparásitos como ácaros, se recomien-
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
da hacer raspados de piel empleando como conservador: formol al 5%, alcohol al 70% o glicerina al 10%.
ESTUDIOS TOXICOLOGICOS Cuando se sospecha de una intoxicación, deberán enviarse muestras de hígado, riñones, contenido estomacal e intestinal, sangre y orina. Cada una de estas por separado, en frascos de vidrio, sin adicionar absolutamente nada en ellos. Las muestras se conservarán en refrigeración y si el material sospechoso de la intoxicación se encuentra al alcance (agua, alimento, plantas, etc.), se mandará al laboratorio con las leyendas
❏
Anamnesis
❏
Análisis de registros
❏
Inspección clínica
❏
Inspección física
❏
Toma y envío de muestras al labortarorio
❏
Metodología diagnóstica en cerdos
y advertencias correspondientes. En el caso de micotoxicosis, es recomendable enviar muestras de 500 g de materias primas o alimento, en bolsas de papel y a temperatura ambiente.
INTEGRACION DEL DIAGNOSTICO La integración consiste en amalgamar todos los conceptos correspondientes, partiendo de lo general a lo particular (método inductivo), hasta emitir un diagnóstico preliminar, y nalmente, a través de la interpreta ción de los resultados de laboratorio, determinar el diagnóstico denitivo.
Pruebas de laboratorio
Mét. inductivo Dx. preliminar Dx. denitivo
257
Metodología Diagnóstica Veterinaria
Para concluir, se presenta un diagrama de ujo, en el que se señala el método inductivo para la realización del diagnóstico de problemas en la especie porcina. El ser humano determina A
d
Prácticas de Manejo Si
e
c
u
a
Instalaciones y su uso
No
Si
d
a
s
Nutrición y alimentación
No
Si
Inmunización
No
Si
Tensión
Hacinamiento
Desnutrición
Inmunodepresión
Desequilibrio ambiental
Tensión
Tensión
Inmunodepresión
No
Inmunodepresión
Susceptibilidad y predisposición a enfermedades Bienestar animal y protección adecuada
Si
Si Cerdo sano
Anam. propietario Antecedentes Medio
No
Cerdo estresado
Si
Cerdo Enfermo
Ambiente
Signos
Problema
Anam. operador
Anam. encargado Antecedentes Medio Ambiente Signos
Inspección física Examen clínico y Necropsia
Antecedentes Medio
Ambiente
Signos Registros Rutinas
Animales vivos
Instalaciones
Signos
Caracteristicas
Actitud
Equipo
Toma
Medio Ambiente
de muestras
de corral de Manejo
Animales muertos Lesiones Toma
de Muestras
Dxs. diferenciales
Dxs. preliminar
Dxs. diferenciales
Rxs. zootecnicas
Rxs. terapeúticas
Rxs. inmunologicas
Pbas. de laboratorio
258
Erradicación
Programa de control
Zootécnico
Terapéutico
Inmunológico
PARTE 2 - CAPÍTULO 2
❏
Metodología diagnóstica en cerdos
> Literatura consultada
❚
Cole DJA, Wiseman J, Varley MA. Principles of pig science. Inglaterra: Nottinham University Press, 1994.
❚
English PR, Smith WJ, Mac Lean A. La cerda como mejorar su productividad. 2ª ed. México: El Manual Moderno, 1985.
❚
English PR, Fowler VR, Baxter S, Smith B. The growing and nishing pig. Inglaterra: Farming Pess, 1988.
❚
Flores CJ, Haro TM, Herradora LM, Martínez GRG, Ramírez HG, Trujillo OME. Cálculo para la planeación y control de empresas porcinas. México: McGraw-Hill, 2004.
❚
Jackson PGG, Cockcroft PD. Clinical examination of farm animals. EUA: Blackwell Publishing, 2002.
❚
Morilla GA. Manual para el control de las enfermedades infecciosas de los cerdos. 2ª ed. México: El Manual Moderno, 2005.
❚
Straw BE, D’Allaire S, Mengeling WL, Taylor DJ. Diseases of swine. 8a ed. EUA: Iowa State University Press, 1999.
❚
Wiseman J, Varley MA, Chadwick JP. Progress in pig science. Inglaterra: Nottinham University Press, 1998.
259
Metodología diagnóstica en peces Angel García Hernández María de la Luz Chavacán Ávila Luis Andrés Castro Fuentes Alma Rosa Mercado Naranjo
INTRODUCCIÓN L México se inicia en el periodo prehispánico, cuando los peces eran cultivados en ríos y lagos naturales y articiales, con nes ornamentales y religiosos: algunos peces se ofrendaban a los dioses para obtener abundante pesca. Sin embargo, después de la conquista, uno de los principales cambios fue la modicación de la dieta del mexicano, en la que se introduce el consumo de peces, con lo cual comienza el desarrollo de la piscicultura. Al inicio de la década de los setenta, la captura de peces en los océanos parecía haber alcanzado su nivel máximo, de acuerdo con la FAO (1978), por lo que fue necesario promover la investigación sobre el cultivo de los organismos acuáticos y su puesta en práctica, de tal manera que se mantuviera el equilibrio en los ecosistemas, no sólo nacionales, sino mundiales. En México, la acuicultura se ha desarrollado en el terreno experimental, con especies nativas (pescado blanco, mojarra nativa), y en la producción comercial de especies introducidas (bagre, carpa, tilapia, trucha). Desde hace ya muchos años se ha mantenido un crecimiento sustentable de la producción piscícola, la cual representa una proporción signicativa de la producción alimentaria nacional; en el año 2006 se alcanza un consumo de productos pesqueros de 15.21 kg por habitante, así como una participación económica de 31.74% del total nacional, de acuerdo con las cifras de la SAGARPA; en este rubro, la producción de peces de ornato es también relevante. Por lo anterior, es obligación del médico veterinario y los responsables de la granja, centro, laboratorio o acuario, informar de inmediato a las instituciones nacionales competentes, acerca de las enfermedades que se presenten, para darles la solución adecuada, según la problemática general de la enfermedad existente en ese momento. Los peces, producto de la piscicultura de tipo artesanal o industrial, altamente rentable, pueden tener diversas nalidades zootécnicas: como mascotas o peces ornamentales dentro de acuarios; para la pesca deportiva; como alimento para otros organismos acuáticos; como animales de consumo, ya que son una fuente de proteína de origen animal para el hombre, y como modelo animal para la investigación en las ciencias biológicas, especialmente en diferentes áreas de la medicina humana y la medicina veterinaria, ya que permiten observar y experimentar enfer-
Metodología Diagnóstica Veterinaria
medades (cáncer, determinación de metales pesados, etc.) u otros problemas dentro de las especialidades (nutrición, alimentación, etc.). Antes de discutir los métodos utilizados para el diagnóstico de enfermedades de los peces, es importante tener en cuenta la gran cantidad de especies que son cultivadas y la diversidad de los sistemas de culti-
262
vo; además, debemos comprender las necesidades de mantenimiento de los diferentes grupos de peces: entre las distintas especies, se encuentran organismos de agua fría, templada o tropical; dulce o salada; blanda o dura; con un pH alcalino o ácido; con o sin movimiento, y cada una tiene requerimientos especícos.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
HISTORIA CLÍNICA La historia clínica se reere al registro de la informa ción, tanto médica como administrativa del paciente o los pacientes, en este caso, de los peces afectados. El registro será llevado a cabo por el médico veterinario zootecnista, ya sea que visite el lugar donde se encuentren los peces afectados, o bien, proporcione asistencia a éstos (vivos o muertos), en la clínica o laboratorio donde ejerza su profesión. La principal función de la historia clínica es dar continuidad al problema de los pacientes, observar su evolución y, en su caso, cambiar el tratamiento que se había estado administrando. Otras aplicaciones de la historia clínica son: para estudios de epidemiología, evaluación de la calidad asistencial, planicación, gestión sanitaria y situaciones jurídicas. La historia clínica se puede dividir en dos: mediata e inmediata, dependiendo del momento del cual se quiera obtener información. Para elaborarlas es necesario realizar una serie de preguntas acerca del paciente y su entorno; a esto se le conoce con el nombre de anamnesis. Mediante este procedimiento se recopila información del o de los pacientes, la cual puede ser objetiva o subjetiva. Los datos de la historia clínica deben asentarse en un formato unicado, de manera tal, que cualquier miembro del equipo médico pueda hacer uso de ella sin dicultades, y así dar seguimiento a los casos pre sentados; esto implica la actualización y veracidad de todos los datos.
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Metodología diagnóstica en peces
Datos de identicación del o los pacientes (especie, etapa del ciclo de vida, sexo, fecha de eclosión, número de historia clínica, etc.); sitio en el que habita el pez (acuario, estanque, cubeta); si el organismo es silvestre o de cultivo, y origen geográco del pez. Es fundamental determinar si ha estado expuesto a enfermedades endémicas de ciertas regiones, que no son prevalentes en su entorno actual; la procedencia de la fuente de agua; si existen poblaciones o fábricas cercanas al lugar en donde se encuentran los organismos; tipo de alimentación (alimento balanceado, alimento vivo, ambos, otro, etc.), marca del alimento, número de veces que se proporciona el alimento, método de alimentación (manual, automático o ambas), cantidad de alimento administrado.
F 1. Costal de alimento para acuacultura de alta calidad.
HISTORIA CLÍNICA OBJETIVA O MEDIATA Se denomina así porque está basada principalmente en datos dedignos, ya que se pueden constatar mediante hechos que se presentaron con anterioridad en la granja, y que pueden determinar directamente el caso o problema clínico presente. Se reere a información como la siguiente: ❏
Datos generales del propietario (nombre, dirección, teléfono); datos relativos al lugar en donde se encuentran los organismos (nombre, dirección, teléfono, n zootécnico, etc.)
F 2. Lenteja de agua para alimentar juveniles.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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F 3. Estanque profuctor de pulga de agua o Daphnia
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F 4. Colecta de crías de pulga de agua o Daphnia ❏
HISTORIA CLÍNICA SUBJETIVA O INMEDIATA La historia clínica se denomina subjetiva, porque se basa principalmente en la interpretación de los hechos por parte del propietario o encargado, y consiste en la descripción del motivo de la consulta. Para su realización se requiere revisar previamente el historial médico de los peces y los problemas que podría haber evaluado otro médico veterinario zootecnista, así como constatar los registros de los ejemplares. Para ello, comúnmente se plantean algunas preguntas: ❏
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¿Cuál es el ciclo, el sistema o tipo de producción de la granja, centro, laboratorio acuícola o acuario? ¿Cuándo se inició su ciclo productivo? ¿Qué edades tienen los ejemplares? ¿Qué etapas de desarrollo son las más afectadas? ¿Con qué tipo de instalaciones se cuenta o en qué condiciones están las instalaciones de la granja, centro, laboratorio acuícola o acuario? ¿Se han introducido nuevos ejemplares en la granja, centro, laboratorio acuícola o acuario? ¿Cuántos peces están enfermos?
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¿Están afectados todos los peces? Si no es así, ¿cuáles son los afectados? ¿Cuál es la edad de los peces afectados? ¿Muestran los peces afectados algún cambio de comportamiento? ¿Qué tipo de alimento se usa en la granja, centro laboratorio acuícola o acuario? ¿El tamaño del alimento es el ideal para la boca del animal o la etapa de desarrollo? ¿En la granja, centro, laboratorio acuícola o acuario se cuenta con algún calendario de vacunación? ¿Qué ejemplares se vacunan y cada cuándo? ¿Se llevan registros de las variables productivas? ¿Se llevan registros de las variables sicoquímicas del agua? ¿Qué medidas de bioseguridad se observan en la granja, centro, laboratorio acuícola o acuario? ¿Se sabe cuál es el estado sanitario de los animales introducidos en la granja, centro, laboratorio acuícola o acuario? ¿Al momento de la compra o la recepción de ejemplares adquiridos, se solicitan certicados de sanidad? ¿Se lleva a cabo una cuarentena? ¿Se lleva a cabo algún tipo de aislamiento? ¿Se cuenta con un área de enfermería? ¿Qué porcentaje de la población está enferma? ¿Qué porcentaje de la población ha muerto desde que se presentó el problema? ¿Cuánto tiempo tardan en morir los peces? ¿Qué problemas ha presentado la granja con anterioridad?
Para obtener una anamnesis completa, se debe realizar el examen físico del pez afectado (general y por sistemas), esto comprueba la información obtenida mediante la anamnesis. La importancia de la historia clínica radica en que, junto con el examen físico, es una herramienta que permitirá obtener información para sentar las bases para un diagnóstico y un plan terapéutico adecuado. Además de la serie de preguntas que se realizan, es necesario estar conscientes de que los índices de morbilidad y mortalidad determinarán de manera preponderante la presencia de enfermedad o la situación existente en la granja, acuario, centro o laboratorio de producción de peces; por esto es indispensable conocer el signicado de ambos términos.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
M ORBILIDAD
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La morbilidad es la cantidad de peces enfermos en un espacio y tiempo determinados; dato estadístico de alta importancia para comprender la evolución y avance o retroceso de una enfermedad, así como las razones de su surgimiento y las posibles soluciones. Se debe saber con precisión el período y el lugar donde se presenta la enfermedad.
Alta +
Media +
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+ + + +
+
M ORTALIDAD La mortalidad es el porcentaje de muertes en una población, en un tiempo determinado, y se mide en relación con el total de la población, mediante el índice de mortalidad, que indica el número de muertes registradas en un año o una cosecha de producción. Dependiendo de la velocidad con que se presentan los hechos, el curso de la enfermedad puede ser: sobreagudo, agudo, subagudo o crónico. Esto se investiga mediante las preguntas en la anamnesis; algunos ejemplos son:
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Las tasas de morbilidad más usadas son la prevalencia y la incidencia. La prevalencia es la frecuencia de todos los casos (antiguos y nuevos) de una enfermedad en un momento especíco (prevalencia de punto) o durante un periodo denido (prevalencia de periodo). La incidencia es la rapidez con la que ocurre una enfermedad. De igual manera, es considerada como la frecuencia con que se desarrollan o descubren nuevos casos de una enfermedad o afección durante un periodo particular y en un área determinada.
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Baja
Tomado de Auró A. Principios de acuicultura. México (DF): UNAM, FMVZ, 2000.
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MORBILIDAD ESPERADA SEGÚN EL AGENTE ETIOLÓGICO. Agente Virus RNA Virus DNA Bacterias gram – Bacterias gram + Parásitos Hongos
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¿En qué etapa de desarrollo ha muerto el pez? ¿Cuánto tiempo ha pasado desde que los peces murieron? ¿Ha observado que el pez o los peces se van al suelo, o contra los objetos de la decoración, otros peces o las paredes de los estanques o acuarios?
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Metodología diagnóstica en peces
¿Ha notado que el pez o los peces se ubican donde está el aireador en el estanque o acuario? ¿Conoce la cantidad de oxígeno que tiene el agua? ¿Ha notado cambios bruscos en el ambiente con respecto a las variables sicoquímicas del agua en los estanques o acuarios? ¿En los días recientes realizó alguna manipulación de los peces en el estanque o acuario? ¿Qué ha observado en el pez? ¿Ha observado algún comportamiento distinto del normal en el pez o los peces? ¿Ha notado alguna lesión en la piel o en las aletas de sus peces? ¿Se han presentado peces de un mismo lote con diferentes tamaños y pesos? La presencia de enfermedades pude tener varias causas, entre ellas: factores genéticos, desnutrición, mala alimentación, o inadecuadas condiciones sicoquímicas del agua (que demeritan su calidad); por eso hay que revisarlos, y antes de realizar una contención física de los peces enfermos, se deben practicar análisis sicoquímicos del agua; este punto es el más importante, ya que el agua es el medio en donde se desenvuelven. Si tan solo una variable no es adecuada para esa especie, los peces sufrirán estrés antes de que se adapten al cambio, lo cual repercute en una baja de defensas contra los organismos patógenos.
Las variables sicoquímicas del agua que comúnmente se monitorean, así como los valores ideales de cada una de ellas, aparecen, en orden de importancia VARIABLES FISICOQUÍMICAS DEL AGUA ADECUADAS PARA PECES DULCEACUÍCOLAS Y MARINOS. Parámetro
Dulceacuícolas
Marinos
Oxígeno disuelto (DO2)
5 mg/L
6 – 8 mg/L
Amonio (NH3 – NH4+)
0 mg/L
0 mg/L
0.8 mg/L
0.8 mg/L
Varía dependiendo de la especie
25 – 28 °C
6–9
8–9
Nitritos (NO2) Temperatura (T) Potencial de iones de hidrógeno (pH) Dureza general (GH y KH) Dureza especíca
1 – 150
mg/L
1 – 150
mg/L
151 – 300 mg/L 151 – 300 mg/L
Autor: MVZ Luis Andrés Castro Fuentes.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
ASPECTOS PRÁCTICOS DE LA CONTENCIÓN DEL ANIMAL
CONTENCIÓN FÍSICA DE LOS PECES El examen físico comienza con la evaluación visual del pez, el cual se puede realizar durante la anamnesis. Se hace una breve descripción del organismo afectado; en este apartado se pueden registrar datos como: peso, talla, etapa productiva, estado general de las mucosas, piel, boca, malformaciones aparentes, así como el comportamiento del organismo. La revisión general es un método frecuente en peces vivos. Cuando se manipulan los peces de manera individual, se les provoca estrés; este es un factor predisponente a las enfermedades, sobre todo de agentes oportunistas como bacterias y hongos, por lo que hay que evitarlo. Se recomienda que al realizar la sujeción se utilicen guantes de látex o de nitrilo, para prevenir algún tipo de enfermedad zoonótica. En peces de talla pequeña, de tres a diez centímetros, se recomienda un manejo con redes de cuchara. En peces de talla mediana, de once a treinta centímetros, es preferible que la sujeción sea rápida y rme, procurando que éstos no se caigan por intentar escapar, y se lastimen; también se pueden utilizar franelas húmedas, redes, o bien, las manos impregnadas con grenetina, para evitar desprender el moco del cuerpo del pez.
sal, para evitar que la extienda, ya que algunos peces presentan espinas en esta aleta y pueden lastimar al operador, y con los dedos medio, anular y meñique se sujeta el abdomen del pez. En peces de talla mayor, se pueden utilizar bolsas de polietileno para realizar la observación.
CONTENCIÓN QUÍMICA DE LOS PECES La contención química nos permite obtener de manera segura las biopsias de piel y branquias y las muestras o frotis fecales y sanguíneos, para identicar bacterias, ectoparásitos, protozoarios y metazoarios, entre otros. SEDACIÓN Es la utilización de un producto anestésico o tranquilizante, como clavo y ácido acetil salicílico (Alka Seltzer), especialmente formulado para la inmovilización de los peces; se administra en el agua como infusión, colocando 15 gramos de clavo machacado en un litro de agua en ebullición o 2 a 3 comprimidos efervescentes de ácido acetil salicílico, lo cual provoca un bloqueo de las bras nerviosas, lo que a su vez produce pérdida temporal y reversible de la sensibilidad y la capacidad motora. Este procedimiento puede usarse de manera conable, debido a su periodo de latencia y su rápida biotransformación; además no irrita las branquias ni otros tejidos internos. El equipo y material básico para el procedimiento incluye anestésicos y medios para cultivo bacteriológico, guantes desechables de látex, bisturí, pinzas, tijeras, portaobjetos, cubreobjetos, desinfectantes, antisépticos y un microscopio óptico que tenga los objetivos de inmersión 10X, 40X y 100X.
F 5. Manejo de cría de perico.
Para llevar a cabo la sujeción, se captura al pez en su estanque con una red de cuchara, mediante un movimiento envolvente; se saca y se descubre en la palma de la mano, colocando el dedo índice en la punta de la boca para que el animal tenga un tope y no pueda escapar; el dedo pulgar se pone sobre la aleta dor-
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F 6. Contenedor de agua.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
F 7. Llenado de agua procedente del acuario donde se encuentra el pez.
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Metodología diagnóstica en peces
F 11. Observación de los movimientos de la Tilapia después de ser administrado el agente anestésico.
F 12. Letargo en la Tilapia por los inicios del efecto de la sedación. F 8. Colocación del ejemplar de Tilapia a sedar.
F 9. Observacion del desplazamiento de la Tilapia antes de ser sedada.
F 11. Administración del agente anestésico en el agua.
F 13. Constatación de la sedación de un ejemplar de Tilapia para poder realizar cualquier tipo de manejo.
F 14. Material y equipo básico necesario para la toma de muestras de los peces.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
CALIDAD DEL AGUA Es importante conocer las características sicoquí micas del agua de la que se dispone en una granja, acuario, centro o laboratorio de peces; es decir, si se conserva el volumen y es la misma agua con la que se inició el ciclo de cultivo; si el tipo de sistema es de ujo abierto o continuo, en donde todo el tiempo entra y sale agua, o bien, si es semiabierto o cerrado, donde tras cierto periodo hay un recambio del agua. Lo anterior conlleva la necesidad de tener en cuenta las variables productivas de las diferentes especies de peces, para compararlas y determinar si la producción es eciente.
VARIABLES
F 16. Crías de Guppys en sistema semicerrado.
PRODUCTIVAS QUE DEBEN CONSIDERARSE EN LOS
PECES DE UNA GRANJA, CENTRO, LABORATORIO Y ACUARIO.
Variable
Peso inicial Peso nal Mortalidad Porcentaje de grasa del organismo Índice de conversión alimenticia Ganancia de peso individual Factor de condición Talla inicial Talla nal Ganancia de talla individual Peso de la canal eviscerada Peso gonadal Peso de la pituitaria Peso hepático
Unidad
Gramos Gramos Porcentaje Porcentaje Valor Gramos Gramos Centímetros Centímetros Centímetros Gramos Gramos Gramos Gramos
F 17. Estanque de reproductores de Carpa Koi con sistema semicerrado.
Autor: MVZ Ángel García Hernández.
F 18. Ejemplares de Tilapia en un sistema semicerrado.
F 15. Fuente abastecedora de agua para los estanques de producción. F 19. Acuario de Perico Durazno con sistema semicerrado.
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PARTE 2 - CAPÍTULO 3
F 20. Estanque con sistema de agua semicerrado.
VARIABLES FISICOQUÍMICAS DEL AGUA Los peces son completamente dependientes, tienen una relación muy estrecha con su entorno acuático y son muy vulnerables ante la toxicidad en el agua, la cual constituye su fuente de oxígeno y es donde los productos de desecho se liberan. La temperatura del agua determina el metabolismo de los peces, y sus supercies respiratorias (branquias) se bañan en ésta; por lo tanto, la composición del agua es crítica. Una alteración en la calidad del agua mata a más peces que los agentes infecciosos. La mayoría de los casos de toxicidad en el agua se deben a deciencias en el mantenimiento del estanque, por lo que la comprensión básica de estos factores es fundamental en la metodología diagnóstica en los peces. La mayoría de las variables, como oxígeno disuelto, amoniaco, nitritos, dióxido de carbono, salinidad, dureza general, dureza especíca, pH y temperatura, puede medirse con equipos digitales o colorimétricos. Todas estas variables deben ser especícas para las especies que se encuentren en los sistemas de producción acuícolas, pero existen algunos rangos generales.
F 21. Equipo digital para tomar los parámetros físico-químicos de la calidad del agua.
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Metodología diagnóstica en peces
F 22. Kits para realizar las pruebas físico-químicas de la calidad del agua en el campo.
Las uctuaciones agudas de las variables mencionadas son más perjudiciales que los cambios graduales. Éstas se producen con mayor frecuencia en sistemas con bajos volúmenes de agua. Las variables sicoquímicas de la calidad del agua deben determinarse en el lugar que presenta el problema, en diferentes puntos del estanque: en la entrada, durante el recorrido y en la salida de agua; cada hora, durante 24 horas; sin embargo, si no se cuenta con personal capacitado y equipo para monitorear estas variables, se pueden tomar al menos una vez por semana; de esta forma se tendrá información acerca del agua en la que están viviendo los peces y, desde luego, la afección de éstos y su estado de salud.
F 23. Recipiente con agua para determinar sus parámetros físico-químicos en el campo.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 25. Equipo digital para determinar oxígeno disuelto en agua.
F 24. Equipo necesario para determinar parámetros físicoquímicos del agua.
OXÍGENO DISUELTO El oxígeno es absorbido a través de las branquias en la respiración. El oxígeno disuelto en el agua está en equilibrio con el oxígeno atmosférico en la supercie de contacto aire-agua; en el cuerpo de agua depende del movimiento de ésta. En los sistemas cerrados, usualmente se requieren bombas de agua o de aire. La concentración de oxígeno disuelto en el agua se encontrará disminuida cuando el agua muestre poca o nula turbulencia, altas temperaturas, elevadas concentraciones de sal y cuando exista alta carga orgánica. Este es un problema particularmente común en estanques al aire libre durante el verano. La concentración de oxígeno es mucho más baja en la mañana, antes de que comience la fotosíntesis. En los acuarios, un factor que la disminuye es la presencia de formalina, que por lo común es utilizada como tratamiento antiparasitario. El oxígeno disuelto debe determinarse en el lugar donde se reere el problema.
F 26. Preparación y lanzamiento de las sondas para evaluar el oxígeno disuelto del estanque.
F 27. Lanzamiento de las sondas lectoras del oxígeno disuelto.
F 28. Colocación de las sondas lectoras del oxígeno disuelto en el estanque.
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PARTE 2 - CAPÍTULO 3
❏
Metodología diagnóstica en peces
temperaturas y pH alcalinos; por lo tanto, el nitrógeno amoniacal es altamente dañino cuando se combina con altas temperaturas y pH alcalinos.
F 29. Análisis del parámetro de oxígeno.
F 31. Kit colorimétrico para realizar la prueba físico-química de amoniaco en el campo.
F 30. Lectura de la prueba de oxígeno.
AMONIACO Y NITRITOS El amoniaco es el principal producto de desecho nitrogenado de los peces, y es tóxico para éstos, por lo cual no debe estar presente en el agua: se retirará con cambios parciales de agua o se transformará en el ciclo del nitrógeno. En este ciclo, las bacterias oxidan el amoniaco en nitritos y posteriormente en nitratos, que son menos tóxicos. Los nitratos son utilizados por las plantas y las algas, que en ocasiones son ingeridas por los peces. Estas bacterias esenciales se encuentran en todas las supercies y en los ltros biológicos. El amoniaco está presente en el estanque cuando las bacterias nitricantes no son muy abundantes y además hay hacinamiento de peces, sobrealimentación y cambios de agua esporádicos, o bien, cuando las bacterias nitricantes están dañadas por antibióticos, por cambios de salinidad o por el uso indiscriminado de tratamientos con cobre. El amoniaco y los nitritos pueden medirse con productos comerciales, para lo cual se toman muestras de agua para su análisis. El nitrógeno amoniacal total se compone de amoniaco ionizado, también llamado ion amonio (NH4 +) y la forma no ionizada (NH3), que es soluble, tóxica y aumenta con altas
F 32. Kit colorimétrico para realizar la prueba físico-química de nitritos en condiciones de campo.
SALINIDAD Este analito agrupa todas las sales presentes en el agua y, junto con el pH, la alcalinidad y la dureza, afecta el equilibrio iónico de los peces, los cuales están adaptados a vivir dentro de rangos de salinidad especícas. La salinidad puede medirse con un refractómetro de mano, pero es más exacto hacerlo con un medidor de conductividad. PH
Es el logaritmo negativo de la concentración de iones hidrógeno. Los peces están adaptados a vivir en rangos especícos, que suelen ser ligeramente alcalinos en los peces marinos y la mayoría de los peces dulceacuícolas, y ligeramente ácidos en algunos peces de agua dulce, por ejemplo, las especies amazónicas. Un pH elevado potencia la toxicidad del amoniaco. El pH puede medirse con productos comerciales.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 33. Kit colorimétrico para determinar pH en condiciones de campo.
DUREZA GENERAL Y DUREZA ESPECÍFICA La dureza especíca, también conocida como alcalinidad o dureza de carbonatos o KH, es una medida de la concentración de aniones (por ejemplo, bicarbonato) y proporciona una evaluación de la capacidad buer del agua. Se reconoce la baja alcalinidad cuando el pH está muy cerca de uctuar con rapidez hacia lo neutral. La dureza general, también conocida como GH, es una medida de la concentración de cationes; por ejemplo, de magnesio y calcio, que son minerales esenciales para los peces. La alcalinidad y la dureza se pueden evaluar con productos comerciales, aunque son medidas que uctúan menos que otras variables, por lo que no es necesario determinarlas con la misma frecuencia.
F 34. Kit colorimétrico para realizar la prueba físico-química de dureza general y específica en condiciones de campo.
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F 35. Muestra colorida de verde donde muestra la dureza general del agua evaluada.
F 36. Muestra colorida de amarillo que evidencia la dureza específica del agua evaluada.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
F 37. Equipo digital para tomar temperatura del agua.
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Metodología diagnóstica en peces
desechos, así como agregar las sales utilizadas por los animales. Un total de 10 a 20% del volumen de agua se sustituirá cada semana con agua a la misma temperatura, y en el caso de los acuarios, libre de cloro. Ningún sistema deberá recibir cambios totales de agua porque esto alteraría gravemente el ambiente de los peces y el ltro biológico. Los cambios de agua van a depender del tipo de sistema de producción implementado en la granja, acuario, centro o laboratorio de peces; asimismo, las biomasas de los estanques determinarán los porcentajes de adición de agua, y no hay que olvidar el monitoreo de las concentraciones de metabolitos presentes en el agua, para su recambio.
F 38. Manejo del equipo digital para tomar la temperatura del estanque.
TEMPERATURA Las altas temperaturas aumentan la proporción de amoniaco tóxico y disminuyen la concentración de oxígeno disuelto. La temperatura también afecta la propensión a enfermedades, la ingesta de alimentos y la farmacocinética de los medicamentos. Es necesario que se establezca la temperatura en el lugar afectado, mediante el uso de un termómetro. Todos los sistemas de apoyo para el mantenimiento de las variables sicoquímicas del agua deben ser adaptados al tamaño y diseño del sistema de producción, y requieren un seguimiento y conservación regulares. Las averías en cualquiera de éstos pueden alterar las variables ambientales y causar mortalidad. Un problema común es la obstrucción o el daño de los ltros biológicos, que interrumpe la instauración del ciclo del nitrógeno; también los cambios bruscos en la temperatura pueden ocasionar la muerte de los peces. Independientemente del equipo con el que cuente el sistema de producción, se deberá cumplir un horario de cambio parcial de agua, a n de eliminar los
F 39. Lectura de la prueba de temperatura.
TRANSPARENCIA Y TURBIDEZ La transparencia signica que un material deja pasar fácilmente la luz visible; es una propiedad óptica de la materia, que tiene diversos grados y propiedades. A través de un material traslúcido las formas se hacen reconocibles. Un material opaco es el que no deja pasar la luz. Para aplicaciones técnicas, se estudia la transparencia u opacidad a la luz infrarroja u otros tipos de luz. Según la mecánica cuántica, un material será transparente a cierta longitud de onda, cuando en su esquema de niveles de energía no haya ninguna diferencia de energía que corresponda a esa longitud de onda. Sin embargo, los peces sí pueden absorber energía lumínica por el ojo, ya que presentan sensibilidad para las longitudes de onda, cortas y largas; por ejem-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
plo, parte de la radiación infrarroja es absorbida por las moléculas de agua y de dióxido de carbono. La transparencia se cuantica como transmitancia, porcentaje de intensidad lumínica que atraviesa la muestra, y para ello se utiliza un colorímetro o un espectrofotómetro. El agua en estado puro es transparente, la presencia de sólidos suspendidos reduce la transmisión de la luz, dispersándola o absorbiéndola. La turbidez se entiende como la falta de transparencia de un líquido, debido a la presencia de partículas en suspensión; mientras más sólidos en suspensión haya en el líquido, más turbio será. Esta característica permite determinar la calidad del agua, la cual será menor cuanta más turbia se observe.
agua más caliente, mientras que se favorece la multiplicación de otros.
F 40. Manejo para la introducción del disco de Secchi, para evaluar la transparencia y turbidez del agua del estanque.
MEDICIÓN DE LA TURBIDEZ La turbidez se mide en unidades nefelométricas de turbidez, o NTU (nefelometric turbidity unit), y el instrumento usado para ello es el nefelómetro o turbidímetro, que mide la intensidad de la luz que se disperso a 90 grados, cuando un rayo de luz pasa a través de una muestra de agua. La unidad usada en tiempos pasados era la unidad de turbidez de Jackson, JTU ( Jackson turbidity unit), que se medía con el turbidímetro de vela de Jackson. Esta unidad ya no está en uso. En los lagos, la turbidez se mide con el disco Secchi. Esta medición puede ser usada para estimar la concentración de TSS (sólidos totales en suspensión), mediante el disco de Secchi. Causas de la turbidez del agua Hay varios factores que inuyen en la turbidez del agua, algunos de estos son: ❏ ❏ ❏
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Presencia de toplancton y crecimiento de algas. Presencia de sedimentos procedentes de la erosión. Presencia de sedimentos resuspendidos del fondo (frecuentemente revueltos por peces que se alimentan en el fondo, como la carpa). Descarga de euentes, por ejemplo, escorrentías urbanas, mezcladas con el agua que se analiza.
Las partículas suspendidas absorben calor de la luz del sol, haciendo que las aguas se vuelvan más calientes, con lo que se reduce la concentración de oxígeno (el oxígeno se disuelve mejor en el agua más fría). Además, algunos organismos no pueden sobrevivir en
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F 41. Observación de la primera lectura de la introducción del disco de Secchi.
Las partículas en suspensión dispersan la luz, de esta forma decrece la actividad fotosintética en plantas y algas, lo que contribuye aún más a disminuir la concentración de oxígeno. Las partículas suspendidas también ayudan a la adhesión de metales pesados y muchos otros compuestos orgánicos tóxicos y pesticidas. Como consecuencia de la sedimentación de las partículas en el fondo, los lagos con depresiones y poco profundos se rellenan más rápido por materiales arrastrados por las aguas, ocasionando que los huevos
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
de los peces y las larvas de los insectos sean cubiertas y sofocadas, y que las branquias de los peces se dañen.
❏
Metodología diagnóstica en peces
cual añade un costo extra al tratamiento de las aguas superciales. Aunque no es una variable con un valor indicativo absoluto, la medición de la turbidez habitualmente se emplea para caracterizar la calidad del agua: si es alta, suele estar relacionada con una baja calidad del agua para ciertos usos; también es útil para evaluar la fotosíntesis y la cantidad de partículas suspendidas, tanto de origen orgánico como inorgánico.
FOSFATOS
F 42. Manejo e introducción del disco de Secchi, para realizar la segunda lectura.
Son productos formados por la sustitución de una parte o de todo el hidrógeno del ácido fosfórico, por metales. Los fosfatos son importantes para el metabolismo de los animales y las plantas. En los últimos tiempos existe mayor preocupación por los efectos medioambientales perjudiciales de los fosfatos contenidos en los detergentes domésticos. Los detergentes que contienen fosfatos contribuyen a la contaminación del agua, pues proveen de nutrientes a las algas, las cuales, si crecieran en exceso, dicultarían la vida acuática de lagos y ríos por falta de oxígeno.
MUESTREO, TOMA, ENVÍO Y CONSERVACIÓN DE
F 43. Observación de la segunda lectura de la introducción del disco de Secchi.
Otro de los inconvenientes de la turbidez es meramente estético: a nadie le gusta el aspecto del agua sucia, además de que es esencial eliminarla para desinfectar efectivamente el agua que se desea beber, lo
MUESTRAS DE AGUA El tiempo de muestreo depende de las condiciones reinantes en los estanques; cuando las condiciones sicoquímicas de éstos se encuentran sujetas a gran uctuación, se deben hacer muestreos cada 15 días (en muchos casos cada 8 días), ya que el efecto del crecimiento compensatorio es más notorio y es necesario realizar ajustes en la alimentación; por ello, hay que diferenciar las variables que se registrarán diariamente, de aquellas que se registrarán cada semana, para no perjudicar la producción de los peces que más tarde saldrán al mercado. Esto va a depender de la organización y manejo de cada granja, centro, acuario o laboratorio, y del tipo de sistema, según la especie a tratar. La toma de muestra de agua es una operación delicada, que debe llevarse a cabo con el mayor cuidado posible, dado que condiciona los resultados del análisis y su interpretación. La muestra debe ser homogénea y representativa, y no permitir que se modiquen sus características sicoquímicas o biológicas (gases disueltos, materias en suspensión, etc.). Para un análisis sicoquímico se requieren dos litros de agua.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
ENVASE
TOMA DE AGUA
Un dispositivo de muestreo de agua tiene que obtener una porción de la totalidad de agua para su análisis. Los dispositivos de muestreo pueden ser tan simples como una botella de plástico o mucho más complejos. Existen sistemas de muestreo automatizado, controlado con microprocesadores, para la obtención de muestras en tiempos y lugares predeterminados del cuerpo de agua. No hay un dispositivo de muestreo ideal para todos los propósitos. La selección del dispositivo dependerá del objetivo especíco del programa de muestreo. El dispositivo apropiado para la variable que se desea medir debe proporcionar una muestra de volumen adecuado, ser químicamente inerte, no contaminar la muestra, no absorber los constituyentes del agua, y además, ser de uso sencillo. Los envases que se emplean comúnmente son de vidrio (borosilicato), pero también pueden ser de plástico (polipropileno o polietileno); esto dependerá de los análisis que se quieran realizar. Es necesario que el envase se encuentre perfectamente limpio y que su tapa o cierre no permita la salida del líquido, ni tampoco la entrada de elementos contaminantes.
El método para la toma de agua es diferente según el lugar en donde se va tomar la muestra. ❏
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F 44. Recipiente de plástico ideal para enviar muestras al laboratorio.
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F 45. Recipiente que muestra la toma de la muestra de agua para ser analizada.
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Sistema de distribución: se abre el grifo, se deja correr 4 o 5 minutos y se toma la muestra. Agua léntica (pozos, lagos, lagunas, mares, océanos): se debe sostener el envase en el fondo, a una profundidad de por lo menos veinte centímetros y hasta un metro, con la boca hacia arriba y ligeramente inclinado. Agua lótica (ríos, arroyos, cascadas): se sostiene el envase en el fondo, a una profundidad de por lo menos diez centímetros y hasta treinta, con la boca hacia arriba, ligeramente inclinado, apuntando hacia la corriente del agua. En todos los casos se llena completamente el envase y se tapa. Es importante que no quede una cámara de aire en el envase, para evitar el intercambio gaseoso. Rótulo: algunos datos que se requieren son: remitente, solicitante, fecha de la toma, lugar de procedencia (ciudad, estado, población), origen de la muestra (pozo, arroyo, lago, sistema de distribución, etc.), tipo de análisis requerido (aptitud para riego, consumo animal). Conservación: los cambios químicos comienzan a ocurrir inmediatamente después de la colección del agua, por lo tanto, ésta puede ser conservada haciendo uso de controladores de pH, mediante adición química, congelación, refrigeración, ya que hay variables (nitratos, nitritos, amoniaco) que pueden modicarse por efecto del calor, debido a la proliferación microbiana. Congelación: la muestra se conserva a una temperatura de –10°C a –20°C; cabe mencionar que no debe recurrirse a este tipo de conservación si lo que se quiere analizar son gases disueltos, el pH o trazas de metales. Para realizar el análisis es necesario que estas muestras se descongelen por completo y posteriormente sean agitadas para homogeneizar todos sus componentes. Refrigeración: este es quizá el mejor método de conservación temporal para la muestra de agua. El tiempo máximo que puede transcurrir entre la toma de la muestra y el análisis es de 24 horas cuando la muestra se mantiene en refrigeración.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
CONTROL DE PH La acidicación del agua permite la estabilidad de las muestras, ya que inhibe la actividad biológica y previene la precipitación o absorción de metales. Se puede utilizar ácido nítrico o ácido sulfúrico, los cuales disminuyen el pH hasta menos de dos. No debe recurrirse a este tipo de conservación en muestras donde se quiera analizar el amoniaco o la cantidad de metales.
ADICIÓN QUÍMICA La adición de compuestos químicos facilita la conservación de las muestras durante cierto tiempo. No obstante, algunas variables deben ser determinadas dentro de las 24 horas siguientes, por ejemplo: color, turbidez, residuos, cianuros, fenoles, detergentes, compuestos nitrogenados. El agente químico más comúnmente empleado es el cloruro de mercurio (HgCl 2).
ALIMENTO En la elaboración de un alimento hay una serie de pasos, en los que, ya sea que se produzca la contaminación del alimento con microorganismos, o bien, que los microorganismos ya presentes se multipliquen con mayor facilidad.
MUESTREO, TOMA, ENVÍO Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS DE ALIMENTO
P UNTOS CRÍTICOS : ANÁLISIS Y TRATAMIENTO Estos pasos del proceso se denominan puntos críticos, y sobre ellos hay que actuar para mejorar las características microbiológicas del alimento. Un producto tiene calidad microbiológica cuando sus cargas microbianas son reducidas y constantes (esto es, no presentan variaciones estacionales o de cualquier otro tipo de periodicidad que impidan que el producto sea homogéneo a lo largo del tiempo). Para mejorar la calidad microbiológica de un alimento, la industria tiene que determinar cuáles son los puntos críticos del proceso, y evitarlos, siguiendo un código estricto de Buenas Prácticas de Elaboración y distribución del alimento (BPE). La prevención, por tanto, está en evitar la producción de alimento sin calidad microbiológica, y no solo en comprobar la calidad microbiológica de los ya elaborados (lo que, por otra parte, presenta una rela-
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Metodología diagnóstica en peces
ción costo-benecio muy baja, por la gran cantidad de muestras que es necesario analizar). P RINCIPIOS DE HIGIENE DE LOS ALIMENTOS Los alimentos pueden ser vehículos de propagación de enfermedades; siempre presentan microorganismos en su supercie o en su interior. Estos microorganismos se clasican, atendiendo a su origen, en endóge nos (ya presentes en el interior de las estructuras del alimento, y pueden provocar zoonosis, enfermedades animales no transmisibles al hombre y enfermedades vegetales no transmisibles al hombre), y exógenos (se incorporan al alimento durante su manipulación y procesado); y, atendiendo a su relación con el consumidor, pueden ser agentes patógenos o alterantes (saprótos). Los agentes endógenos a veces son inocuos (patógenos de plantas), ya que es posible eliminarlos en los mataderos (animales enfermos) o durante el procesado (pasteurización). Una vía importante de transmisión de microorganismos son los alimentos; éstos pueden causar infecciones e intoxicaciones que, en general, tienen un tiempo de incubación corto (de dos a diez horas) y suelen desarrollar síndromes gastrointestinales. Algunas de estas enfermedades tienen una Dosis Mínima Infectiva (DMI) muy baja, por lo que es necesaria la higiene en el manejo de los alimentos y en los procesos de su elaboración. La incidencia real de las toxiinfecciones no está clara, porque sólo se notica 10% de estos padecimientos, entre los que se encuentran la salmonelosis; shigelosis o disentería bacilar; gastroenteritis por Escherichia coli enteropatógeno; enteritis causada por Yersinia enterocolitica; diarreas por Vibrio parahaemolyticus y por otros vibrios próximos al V. cholerae; enteritis causadas por Campylobacter ; enteritis producidas por Bacillaceae, intoxicaciones alimentarias agudas, como el botulismo (intoxicación por Clostridium botulinum) y la intoxicación estalocócica; intoxicaciones alimentarias crónicas causadas por hongos; virosis transmitidas por alimentos, como la hepatitis de tipo A; enfermedades causadas por protozoos y transmitidas por alimentos, y enfermedades causadas por helmintos. Cada uno de los trastornos antes citados puede prevenirse mediante un tratamiento correcto del alimento; sin embargo, hay que extremar este cuidado cuando se trata de producción de alimentos o comidas a gran escala, ya que en estas condiciones es más facti-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
ble que la contaminación de éstos provoque un elevado número de víctimas. Existen diversas técnicas para llevar a cabo un adecuado muestreo del alimento, las cuales varían de acuerdo con el tipo de ingrediente, la cantidad y el contenedor en el que se encuentren. Al adquirirse un lote de materia prima, es importante tomar varias muestras primarias representativas, en diversos puntos de éste, para obtener la mezcla bruta y de ella, la muestra contractual. Si se trata de un muestreo de ingredientes sólidos (en bultos o sacos), por cada bulto o saco muestrear de 500 a 1 000 gramos. De uno a diez sacos, se deben de muestrear todos. Sí es mayor de diez, se muestrean diez costales, o por lo menos 2% del lote. El muestreo puede llevarse a cabo a granel, que es cuando la materia prima se encuentra sin empaquetar dentro de las bodegas, vagones o camiones; en estas circunstancias, se tomarán muestras en tres niveles diferentes y en varios puntos, de acuerdo con la capacidad del transporte o bodega.
MUESTREO EN EL TRANSPORTE
O LA BODEGA QUE
ABASTECE EL ALIMENTO EN LA GRANJA , EL LABORATORIO Y EL ACUARIO.
Capacidad
Número de puntos de referencia a muestrear
1 – 15 toneladas
5
15 – 30 toneladas
9
30 – 50 toneladas
11
Autor: MVZ Ángel García Hernández.
Es muy importante evitar que las muestras se tomen del alimento que se encuentra pegado a las paredes, ya que puede sufrir algunos cambios que lo alteren, y por lo tanto, no ser representativa del lote. Otra forma para muestrear los alimentos a granel es hacerlo al momento de descargar el producto; en este caso, solamente se coloca un recipiente cuando se esté descargando, a intervalos de tiempo proporcionales, para así obtener la muestra bruta. A continuación se presentan algunos conceptos utilizados en el tema del manejo de los alimentos: ❏
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Lote: es la cantidad de alimento que se adquiere en un momento determinado.
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Muestra primaria: es la muestra que se obtiene de un punto determinado del lote. Muestra bruta o compuesta: es la combinación de varias muestras primarias, de esta muestra se obtiene la muestra contractual. Muestra contractual: es la muestra representativa de todo el lote; es la que se utiliza para el análisis del alimento y se obtiene por reducción de la muestra bruta, comúnmente por el método del cuarteo, hasta obtener el tamaño adecuado de muestra.
Asimismo, la forma adecuada de conservar las muestras de alimento en seco es utilizando como recipientes, primero, bolsas de papel, y después, de plástico, que contengan de 250 a 500 gramos, cantidad necesaria para su análisis, y para que el envío de las muestras sea el correcto, los contenedores deben estar perfectamente cerrados e identicados. La identicación o etiqueta se escribirá con tinta indeleble y, de preferencia, que contenga los siguientes datos: nombre del ingrediente, nombre del remitente, fecha de muestreo, análisis requeridos, dirección y teléfono. Es de suma importancia que el piscicultor determine el tipo de alimento, el tamaño y cuándo debe proporcionarse. Si se usa alimento extruido o otante, el pez puede tomarlo a voluntad; la cantidad de alimento que se suministre debe ser totalmente consumida entre quince y treinta minutos. Cuando el alimento del pez esté basado en un porcentaje del peso corporal, es necesario conocer el número de peces en el estanque y el promedio de su peso. Al utilizar cosechas parciales, hay que mantener el récord de la biomasa; sin embargo, el cálculo del número de animales se torna difícil y a veces imposible. De ahí que algunos piscicultores alimentan con base en un valor aproximado de la biomasa de los animales del estanque. La determinación de la biomasa se hace con la medida de peso más actualizada que se tenga, y se calcula a partir del número de peces presentes en el momento de realizarse el muestreo. Un muestreo al azar de un número aleatorio de peces da una medida del peso actual del animal, o también este peso puede ser calculado a partir de curvas de crecimiento teóricas, desarrolladas para las condiciones propias de cada una de las explotaciones, gran-
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
jas o centros acuícolas, y para cada una de las tallas de los peces en el ciclo de producción. En el caso de contar con jaulas pequeñas, canales de corriente rápida o estanques, es factible el conteo y el pesaje del total de los peces; en explotaciones con traslados, pueden ajustarse las tablas de alimentación deniendo el peso de la biomasa trasladada y sacando el promedio de peso a partir de una muestra pequeña de los peces trasladados. Otra práctica muy frecuente en el ajuste de las raciones alimenticias una vez por semana, es retar a los animales con 110 o 120 por ciento del alimento programado, con el n de estimar visualmente el consumo y tener otro elemento de juicio en un posible ajuste de alimento antes de realizar los muestreos. Para el cálculo de la ración alimenticia en el estanque, es necesario tener un estimado de las pérdidas (predación, mortalidad diaria), en las diferentes fases de crecimiento, a partir de un registro histórico de cada una de las explotaciones, granjas o centros acuícolas, cantidad que debe ser descontada en el momento del cálculo de la ración.
F 46. Captura de Tilapias para su evaluación.
EUTANASIA El término eutanasia se deriva del griego: "eu", bien, y "thanatos", muerte. Es todo acto u omisión realizado por el personal médico, que ocasiona la muerte de un ser vivo, con el n de evitarle sufrimientos insoportables. Desde el punto de vista ético, la eutanasia se clasica en directa e indirecta, en tanto que exista o no la intención de provocar primariamente la muerte con las acciones que se realizan sobre el enfermo terminal. La eutanasia no es un problema nuevo y menos la manera de ligarlo al desarrollo de la medicina moderna. El solo hecho de que el ser vivo esté gravemente enfermo ha
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Metodología diagnóstica en peces
provocado que en las distintas sociedades se plantee la cuestión. La eutanasia es un problema persistente en la historia de la humanidad; en él se enfrentan ideologías diversas, pues se propone procurar la muerte sin dolor ni estrés en cualquier especie animal. El médico veterinario se ve constantemente en la necesidad de decidir sobre la vida y la muerte de los animales, bajo diferentes situaciones, tanto en animales de compañía, como en animales de producción para el consumo humano; en animales de experimentación biomédica e investigación, y también en animales silvestres, que por diferentes circunstancias deben ser eutanasiados. Es responsabilidad del médico veterinario o del investigador proponer el momento y la selección del método de eutanasia, cuando ésta sea necesaria. Lamentablemente no existe un método único de eutanasia que se aplique a todas las especies animales y bajo todas las circunstancias. Por otro lado, se debe considerar que todos los animales empleados para el benecio humano tienen el derecho de una muerte tranquila, y el hombre tiene la obligación y la responsabilidad de inducirla de esta manera, mediante el conocimiento de los métodos verdaderamente eutanásicos y la especie en que pueden ser aplicados. En los animales para abasto, el problema de la eutanasia se basa en la cantidad de individuos en el centro de producción. En los peces se recomienda realizar la eutanasia en el mismo tipo de agua que sea habitual para la especie. Si hay que usar sustancias, se reducirá el nivel de agua para asegurar una sedación rápida, pero no tanto como para producir angustia antes de añadir el agente que provocará la muerte. La dosicación en el agua es preferible a la inyección, ya que esta última implica una manipulación del pez, que le generaría estrés; lo recomendable es que los peces ayunen entre 24 y 48 horas, antes de la eutanasia química, lo que permitirá una absorción por el intestino y así se minimizará el riesgo de regurgitación que podría reducir el efecto de las sustancias químicas sobre las lamelas de las branquias. Los estanques que se utilicen para realizar la eutanasia deben permitir al técnico observar el comportamiento de los peces y reconocer la presencia de algún signo que manieste sufrimiento. Sin embargo, hay que tener presente que en el agua dulce se reducen los procesos metabólicos y locomotores, facilitando así su manipulación; asimismo, resulta esencial tener en cuenta la temperatura habitual del pez y su grado
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
de tolerancia a la hipotermia, y que en los peces de agua salada se forman cristales de hielo dentro de las células, antes de que se congele el agua marina, lo que les provocará un dolor muy intenso. En los peces de agua dulce, se producirá primero la congelación del agua que la formación de cristales internos. El reconocimiento y conrmación de la muerte en los peces se realiza a partir del cese de la respiración (movimiento opercular) y del latido cardiaco (observación y palpación); y por la destrucción del cerebro para estar seguros de la muerte del pez. Existen métodos de eutanasia recomendados y aceptados hoy en día, tanto para peces adultos, como para los alevines; de tal manera, que los acuicultores tienen a su alcance una serie de medicamentos que pueden ser utilizados para practicar la eutanasia.
BENZOCAÍNA (ETIL AMINOBENZOATO)
ANESTÉSICOS
AGENTES INYECTABLES
La sobredosicación de un anestésico se maniesta primeramente por el cese de los movimientos respiratorios, seguido de la sobreextensión espasmódica o ensanchamiento de los opérculos. Al principio del proceso se producen cada 15 o 30 segundos y después a intervalos más largos. Cuando los intervalos entre espasmos son aproximadamente de un minuto, se considera que en pocos minutos se producirá el paro cardiaco y la muerte.
Se pueden usar los barbitúricos; sin embargo, como sacar al pez del agua y su manipulación implican estrés, son preferibles otros métodos. Se recomienda la vía intraperitoneal, sólo si el animal está inconsciente. La dosis para este tipo de productos no está determinada en la literatura existente debido a su gran variación, según el pez del que se trate.
AGENTES QUÍMICOS METANO SULFONATO DE TRICAINA (MS-222) Actúa deprimiendo el sistema nervioso central; es un medicamento del tipo benzocaína, considerado como el método más ecaz para producir la muerte a la ma yoría de los peces. Para la eutanasia es común usar una sobredosis del anestésico MS-222 a una concentración de 150-500 mg/L, en casi todos los peces. Es soluble tanto en agua dulce como en saldada. Se debe añadir bicarbonato, imidazol, fosfato ácido de sodio o hidróxido sódico para neutralizar el agua (a pH 7.5), y con ello reducir la irritación y el daño tisular; para incrementar su efectividad puede utilizarse junto con quineldina o sulfato de quineldina. Para producir la muerte del pez, éste se debe sumergir en un recipiente con 350 ppm de MS-222 (350 mg de MS-222 por litro de agua) durante 10 minutos.
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Su ecacia es pH independiente, debido a que baja el pH del agua, por lo que debe buerarse a 7.5. Antes de añadirla al agua, hay que disolverla en acetona, ya que no es hidrosoluble. Para realizar la eutanasia en peces se usa en forma de baño o dentro de un sistema de recirculación. Las dosis en peces son de 15 a 20 mL/100 L, de 4, 20, 30 - 100 mg/L, o bien, de 50, 100 y 150 ppm; el efecto se produce a los 5 a 15 minutos, dependiendo de la especie.
HALOTANO Por ser un gas, puede ser burbujeado en el estanque para producir anestesia y posteriormente la muerte. La dosis para este tipo de productos no está determinada en la literatura existente.
ELECTROANESTESIA Se emplea para producir una inducción instantánea y una recuperación rápida, y se han usado varias formas de corriente para inmovilizar peces, una corriente continua directa (12 voltios), usando desde dos hasta seis electrodos, y variando el amperaje o polaridad; así, con 150 mA se consigue la inmovilización en peces de agua salada. Para lograr la inducción se puede utilizar la corriente alterna sin recticar (onda de 50 Hz a 60 Vrms) por 30 segundos, aunque una corriente pulsátil recticada de onda media, con un pico de 200 V, es menos dañina.
MÉTODOS NO QUÍMICOS I NSERCIÓN DE AGUJA DE DISECCIÓN O DESCEREBRACIÓN Es un método usado sólo en animales inconscientes, propio para peces pequeños y con nes de estudio, cuando los métodos químicos no son adecuados. Se introduce un estilete metálico en la parte superior de
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
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Metodología diagnóstica en peces
la cabeza, entre los ojos, el cual se mueve hacia adelante y hacia atrás para destruir el cerebro y el extremo proximal de la médula espinal .
F 50. Primer corte detrás del opérculo.
F 47. Captura de para su evaluación.
DECAPITACIÓN Se aplica en peces pequeños y sólo debe llevarse a cabo en aquellos previamente anestesiados o aturdidos. F 51. Segundo corte para lograr la separación de la cabeza del resto del cuerpo.
Nota: Por no existir un método indoloro y adecuado para las condiciones de pesca comercial a gran escala, la mayor parte de los métodos descritos se aplican en peces de ornato. Estos métodos contaminan químicamente los tejidos de los animales, por lo tanto, no deben ser consumidos por otros animales ni por el hombre. F 48. Localización de la zona a puncionar, e introducción de la aguja para realizar la descerebración del pez.
HIPOTERMIA Cuando se disminuye drástica y rápidamente la temperatura del agua los peces se vuelven torpes, quedan inmóviles o pierden el equilibrio y la coordinación. Comúnmente este método se lleva a cabo poniendo a los peces directamente sobre hielo picado o nieve por un periodo de 10 a 15 minutos. En peces de aguas cálidas, templadas y tropicales se puede observar la torpeza e inmovilización profunda a causa de la hipotermia.
EXAMEN FÍSICO GENERAL F 49. Localización para realizar la decapitación del pez.
El examen físico general siempre debe realizarse in situ, no en el laboratorio, porque al pez se le debe examinar en su medio para observar la posición que ocupa normalmente en la columna de agua: si son peces que se encuentran en la supercie, en la parte media o en
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
el fondo, para hacer con ello un diagnóstico presuntivo. También es importante considerar el aspecto de los peces, como adelgazamiento, curvatura de la espina dorsal (infección por esporozoos, tuberculosis, problemas hereditarios), hinchazón, inamación, tumores en la cavidad oral o en alguna otra parte del cuerpo del pez, con posibles oclusiones en la boca.
opérculo son contabilizados y registrados; los rangos normales son de ochenta por minuto.
F 54. Cavidad opercular.
BRANQUIAS
F 52. Tumor en la parte dorsal de una Monjita.
CUERPO Y OJOS
Los arcos branquiales pueden ser examinados cuando se levanta el opérculo, de esta forma se observan las lamelas branquiales, con el objetivo de apreciar su integridad, color, áreas de pigmentación o despigmentación, hemorragias y necrosis.
Deben ser examinados en su totalidad; se inicia por la revisión del reejo ocular de los peces sanos, procurando que se encuentren en posición vertical, pues en posición lateral desplazarán los ojos. En caso de que falle este reejo, habrá que prestar atención al cerebro. Es necesario observar el tamaño y la forma; algunos peces, como los goldsh (Carassius auratus auratus), tienen los ojos grandes y saltones. Únicamente los endoftalmos o exoftalmos se observan fácilmente.
F 55. Observación del arco branquial del pez.
PIEL
F 53. Carpa que muestra exoftalmia.
BOCA Puede ser revisada con una espátula para buscar la presencia de lesiones o cuerpos extraños.
CAVIDAD OPERCULAR Se tiene que abrir para vericar si existen lesiones o cuerpos extraños en su interior. Los movimientos del
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Es el órgano de los sentidos más grande y extenso en el cuerpo del pez, por eso debe examinarse cuidadosamente en su totalidad (porción dorsal, ventral y lateral), usando guantes de látex, y con especial atención en las siguientes características: Sacos pendientes del cuerpo en forma de racimos; erizamiento de las escamas; apariencia de piel cauterizada; enturbiamientos lechosos; inamaciones; viscosidades; protuberancias esféricas duras al tacto de hasta 2 mm, sobre todo en las aletas; nódulos de color rojizo a negro; zonas inamadas enrojecidas, que más tarde adquieren un tono gris blanco; zonas circulares de inamación; coloración pálida permanente; coloración de oscura a negra parcial o total. En las aletas: nódulos blancos y opacos; destrucción, deshilachamien-
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
to o desprendimiento de éstas. Sobre la piel, presencia de: crustáceos, sobre todo en la aleta dorsal; películas nas o gruesas; películas con un aspecto similar al de los granos de trigo; películas blancas y algodonosas; lamentos nos en zonas aisladas; estructuras adheridas de aspecto traslúcido parecido al de una fresa. Debajo de la piel: zonas blanquecinas o pequeñas burbujas que crepitan al momento de sacar a los peces del agua. En la zona de la boca: coloración blanca, sobre todo en peces ovovivíparos. La textura normal de la piel presenta una apariencia húmeda uniforme y recubierta de moco. Pueden ser observadas algunas áreas de edema, hemorragia, abrasión o ulceración. Muchos ectoparásitos son visibles y alteran la textura normal de la piel de los peces. Las escamas son producidas por las células osteogénicas dentro de la dermis y en muchos peces son un importante mecanismo de protección y defensa. Las escamas normales aparecen recostadas sobre el cuerpo, y se requiere cierta fuerza para removerlas. Las escamas con apariencia elevada se caen fácilmente, algunas veces están recubiertas con algas u hongos, estructuras que pueden ser identicadas si se observan macroscópicamente acercándose al cuerpo del pez.
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Metodología diagnóstica en peces
F 57. Obtención de la muestra sanguínea, para ser analizada.
F 58. Punción en la aleta caudal para obtener una muestra de sangre.
ALETAS Las aletas tienen una función locomotora. Generalmente están compuestas por rayos óseos cubiertos por tejido epitelial sensitivo, y nos permiten obtener muestras de sangre, para ser analizadas. Su apariencia es transparente, de tal forma que las lesiones y parásitos son muy fáciles de observar al microscopio mediante una pequeña biopsia. Otras lesiones que encontramos son inamación, desprendimiento y deshilachamiento.
ABDOMEN El abdomen puede ser palpado y percutido, particularmente si está aumentado de tamaño. Su examen permite la detección de masas internas o de líquidos en el interior del abdomen.
F 59. Sujeción para la punción y obtención de la muestra de líquido ascítico.
F 56. Pequeño corte de la aleta dorsal para obtención de una muestra de sangre.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 60. Gota de líquido para ser analizada en el laboratorio.
ANO Los peces tienen una abertura externa para defecar y eliminar la orina. Esta abertura puede ser examinada con un catéter lubricado o con una sonda roma que se inserta en el oricio. Aquí se pueden detectar signos de inamación, aumento de tamaño, protrusión, ulceración y endoparásitos.
COMPORTAMIENTO A continuación se describen algunos comportamientos de los peces cuando presentan algún trastorno: Los peces saltan y se mueven a sacudidas cuando padecen acidosis; boquean, respiran con irregularidad y se sitúan en la supercie cuando les falta oxígeno, por envenenamiento por amoniaco o por nitrito; la respiración es acelerada (polipnea) cuando los opérculos branquiales se mueven más deprisa que lo habitual, lo cual se puede deber a parásitos branquiales; posterior al trastorno, los animales dejan de moverse y mueren, a causa de una de las múltiples enfermedades posibles, aunque es frecuente la presencia de parásitos branquiales; en casos extremos, los animales se dejan atrapar con la mano.
EXAMEN FÍSICO POR SISTEMAS Algunos estudios, como la necropsia, se pueden realizar en una mesa, cerca del estanque, sin ser necesario llevar a los organismos al laboratorio para la toma de las muestras en fresco, los raspados y las biopsias; de la misma manera se lleva a cabo el examen físico de los animales. Debe considerarse que con el sacricio de unos pocos especímenes se puede salvaguardar la vida y la salud de la mayoría de la población de estas especies.
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Para la necropsia, se llevan a cabo los siguientes pasos: se coloca al pez muerto en posición de decúbito lateral derecho; a continuación, se hace el primer corte, que va del oricio del ano hacia la boca, siguiendo la línea media ventral. El segundo corte se hace, de nuevo, de la incisión del ano hacia la mitad de la línea lateral u opérculo, en línea recta o un poco convexa, hasta la boca. El tercer corte se realiza del opérculo hacia la aleta dorsal en línea recta, para que quede al descubierto la branquia, y el cuarto corte, a la altura de los ojos, para exponer el cerebro. De esta manera podremos observar el espécimen internamente y todos sus órganos in situ. La revisión del pez sigue un método, éste se inicia en la cabeza y termina en la aleta caudal, tanto externa como internamente, y se toman muestras de los órganos que presenten cambios aparentes, las que se enviarán después al laboratorio para su estudio. Para practicar el examen físico por sistemas in situ, si no es posible capturar peces vivos enfermos, lo ideal es optar por los que murieron más recientemente (de treinta minutos a una hora), ya que mientras menor sea el tiempo transcurrido, los datos obtenidos serán más conables, debido a que los procesos autolíticos post mortem apenas empiezan. Este tipo de manejo permite llevar a cabo el examen físico por sistemas aun con el pez muerto. El examen post mortem es muy útil para el diagnóstico; lamentablemente no siempre se realiza, de ahí la importancia de que el médico veterinario zootecnista determine el procedimiento adecuado en el pez que acaba de morir o en el que se encuentra moribundo, pues se sabe que en el agua, el suelo, el aire y los organismos (vegetales o animales) existe una gran cantidad de microorganismos y enzimas que intervienen en la descomposición que sufren los peces, aunque en muchas ocasiones no son relevantes para realizar y conrmar el diagnóstico, ni para la toma de muestras y vericación de las lesiones, a causa del proceso de autólisis ya generado. Para llevar a cabo este examen, es importante comenzar con la selección del material que se va a usar, el cual dependerá del tamaño del pez, pero generalmente se necesita lo siguiente: ❏ ❏
Una charola de acero inoxidable Un bisturí
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
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Metodología diagnóstica en peces
Dos tijeras: una para realizar la disección de tejido grueso y otra para la disección de tejido no Una pinza.
Todos los instrumentos deben esterilizarse después de usarse y de preferencia deben ser exclusivamente para exámenes post mortem, los cuales se realizan con una secuencia lógica y sistemática, por lo que es recomendable empezarlos en la parte craneal del pez, y continuar hacia la zona caudal; primero llevar a cabo inspección externa y terminar con la inspección interna.
F 61. Ejemplar de Lisa para realizar la necropsia.
F 62. Obtención de largo total (biometría).
F 63. Introducción de la sonda canalada a través del orificio anal.
F 64. Corte de la línea media con tijera recta.
F 65. Corte con tijera a partir del ano.
F 66. Corte que va hacia el opérculo.
F 67. Corte lateral y retiro de masa muscular, piel y escamas.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
terias, parásitos y hongos; además se pueden evaluar el peso y la longitud. Es necesario pesar al pez y medir su longitud; esta última se obtiene con cualquier instrumento de medición, en centímetros o pulgadas, y se realiza de la punta de la boca hasta la punta de la aleta caudal. Ojos y narinas: al examinar el ojo es posible identicar: exoftalmia, opacidad corneal, cataratas, tumores. Al revisar las narinas se pueden encontrar secreciones y malformaciones. ❏
F 68. Muestra del corte del opérculo y señalamiento de la ubicación del corazón en el pez.
F 70. Comparación y revisión de los ojos de un pez que muestra afección de lado izquierdo. F 69. Observación y muestra de los órganos
in situ del pez.
INSPECCIÓN EXTERNA Condición general: la anatomía externa es diversa entre los peces, por lo que debe vericarse si la que se observa es la propia del organismo examinado. Las alteraciones externas que se evaluarán son la pérdida de escamas, presencia de úlceras, hemorragias, variación de color, masas tumorales, parásitos y hongos. Cabe resaltar la importancia de tomar nota acerca de la localización de todas y cada una de las lesiones identicadas. ❏
❏
Aletas: dieren en tamaño y forma entre las diferentes especies, por lo que es necesario conocer la anatomía del pez con el que se esté trabajando, antes de considerarlas como anormales. Entre las lesiones que se observarán se encuentran: ausencia de alguna aleta, deshilachamiento, hemorragias, erosión, necrosis, hongos, parásitos, tumores, áreas con variación de color.
INSPECCIÓN INTERNA Para el examen de la anatomía interna, se colocará al organismo sobre una supercie antideslizante; ésta puede ser una charola de acero inoxidable, que es un material durable de fácil limpieza y desinfección. El pez se colocará en posición lateral izquierda, para visualizar mejor los órganos. Cabe mencionar que la anatomía interna varía de acuerdo con la forma, edad y especie del pez con el que se trabaje. Hay que recordar que la inspección se realizará de zona craneal a la caudal, por tanto, se comienza por la cabeza y se termina con la aleta caudal. ❏
Ojo: Con ayuda de las pinzas y las tijeras, se remueve el ojo de la cavidad ocular; después se examina la órbita del ojo, buscando exudado, hemorragia, parásitos o masas.
RASPADO DE PIEL Este procedimiento implica el empleo del bisturí para realizar un pequeño raspado sobre la piel del organismo, con la nalidad de observarlo después al micros copio. Entre otros hallazgos están los siguientes: bac-
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F 71. Corte final del arco branquial.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
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Metodología diagnóstica en peces
Opérculo: Para examinar las branquias es necesario remover el opérculo; éste se observa para determinar si cubre por completo las branquias o presenta malformaciones. En cuanto a las branquias, se debe examinar la coloración, y si hay abrasiones, hemorragias, exceso de moco y parásitos.
F 75. Corte medial y lateral de la cabeza para obtener el cerebro del pez.
F 72. Muestra del arco branquial para ser evaluado. ❏
Cerebro: Se examinará el color, el tamaño y si hay hemorragias. F 76. Retiro de escamas, piel y músculo de la cabeza del pez.
F 73. Señalamiento para realizar el corte del cerebro en el pez. F 77. Corte del hueso de la cabeza del pez.
F 74. Señalamiento de la punción con la aguja y corte para obtener el cerebro del pez. F 78. Retiro del hueso para extraer el cerebro del pez.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 79. Muestra del cerebro in situ.
Antes de remover cualquier órgano se hará una inspección visual in situ; en ésta se pondrá especial atención en el volumen de cualquier uido presente en la cavidad celómica; color y consistencia de líquidos, color y tamaño de cada órgano, cantidad de tejido adiposo entre los órganos, presencia de cualquier otro tejido anormal. Cabe mencionar que durante esta inspección se encuentra el momento ideal para tomar muestras que ayuden en el diagnóstico del problema que afecta a los peces.
F 82. Vista lateral completa de la cavidad celómica. F 80. Extracción del cerebro del pez con tijeras rectas.
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Corazón: en los peces este órgano se localiza caudoventral a las branquias y se deben buscar lesiones, variaciones del color, aumento de tamaño.
F 81. Vista dorsal del cerebro del pez.
Para la inspección de la cavidad celómica se realiza una incisión que se inicia con un corte en el opérculo en dirección ventrodorsal, hasta el inicio de la espina dorsal; llegando ahí se continúa la disección en dirección caudal hasta el pedúnculo caudal, para posteriormente llevar el corte en dirección dorsoventral hasta el ano. Por último, se extiende la incisión a lo largo de la línea media ventral hasta encontrar el primer corte. Una vez realizados todos los cortes, se retira la pared del cuerpo, vigilando que ningún órgano quede adherido a ella.
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F 83. Señalamiento y localización del corazón de un pez
F 84. Forma y tamaño del corazón de un pez.
in situ.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
❏
Hígado: en esta glándula se examinarán: variaciones de color, tamaño, textura, bordes y presencia de parásitos.
❏
❏
❏
Metodología diagnóstica en peces
Gónadas: aunque son difíciles de observar si el organismo no es sexualmente maduro, cuando se logran ver se evalúa: tamaño, color, consistencia, estado de desarrollo. Músculo: se busca la presencia de parásitos y se examina el color y la textura.
F 85. Forma y tamaño del hígado afectado de un pez. ❏
❏
❏
Vesícula biliar: se debe atender principalmente al color de la bilis y si en ella existe o no obstrucción. Bazo: en algunas especies no es tan aparente, ya que está envuelto en tejido adiposo, lo que diculta su examen; sin embargo, si se logra ver, se evaluarán principalmente su color y tamaño. Estómago e intestino: existen algunas especies de peces que no tienen estómago, y otras que presentan, bien variaciones en cuanto a la forma y tamaño del intestino, o bien, sacos ciegos pilóricos, por lo que es indispensable considerar estos aspectos antes de tomarlos por anormalidades.
F 86. Observación completa del aparato digestivo de un pez.
En estos órganos se investigarán: áreas de hemorragia, contenido gastrointestinal, irregularidades en la supercie de la mucosa, parásitos, color. ❏
❏
Vejiga natatoria: se examina el color y la presencia de hemorragias o exudados. Riñón: se determinan su color y tamaño.
F 87. Observación del aparato digestivo de un pez con afección.
MUESTREO POBLACIONAL El muestreo poblacional de peces para el diagnóstico requiere ser lo más representativo posible; la técnica y la frecuencia de muestreo dependen de la densidad de siembra, la edad del cultivo, los fenómenos meteorológicos, las rutinas o cambios de alimentación, la producción primaria, las variables sicoquímicas de la calidad del agua y los comportamientos o signos anormales en los peces, incluyendo mortalidades esporádicas, frecuentes, acumulativas y masivas. Para ello existen dos técnicas de muestreo en peces: aleatoria o al azar y selectiva o sesgada. La técnica de muestreo aleatorio tiene como propósito determinar la prevalencia de una enfermedad o condición subclínica en la población, para evaluar la presencia de un portador o una infección latente por un agente patógeno, de acuerdo con un criterio estadístico que garantice un nivel de conanza establecido, según el número de individuos que conforman la población. También se recomienda en organismos aparentemente sanos, así como en los huevos, las crías, los reproductores y los peces silvestres. Esta técnica permite determinar la sobrevivencia y el estado de desarrollo promedio e individual de los animales en la población; evaluar su apariencia física y la calidad del producto, todo lo cual tiene el propósito de pronosticar la producción.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
Las características del muestreo aleatorio serán diferentes entre las poblaciones naturales (silvestres) y las de cultivo. En el primer caso, como se desconoce el tamaño de la población, sólo se podrá determinar el valor de prevalencia de una determinada situación. En el segundo, una vez que se conoce su tamaño, es posible determinar el tamaño de la muestra en función del grado de conanza que se pretende alcanzar para un determinado valor de prevalencia escogido arbitrariamente. Esta posibilidad es importante, en especial cuando hay peces carentes de signos de enfermedad. Por tanto, en este caso se asume que el estado de la muestra reeja a la población para los valores escogidos. TAMAÑO DE LA MUESTRA REQUERIDA PARA UN GRADO DE CONFIANZA DE 99% PARA DETECTAR POR LO MENOS UN PEZ INFESTADO POR PARÁSITOS PARA DIFERENTES VALORES DEL PORCENTAJE DE PREVALENCIA
Tamaño de la población Prevalencia
10 000
5 000
3 000
1 000
500
100
1%
448
438
425
376
300
99
2%
225
223
219
204
183
90
5%
89
89
89
86
82
59
10%
44
44
43
43
42
35
Tabla de tamaño de la muestra de Simon & Schill, 1984, tomado de Métodos de estudio y técnicas laboratoriales en parasitología de peces Da Costa, Massato, Cezar 2 000.
Con base en la experiencia, para determinar la presencia de un agente patógeno con un porcentaje de seguridad por arriba de 90, son sucientes de 140 a 150 animales, colectados en uno a seis sitios en el estanque, si la población de organismos en el estanque es mayor de 1 000 peces. La técnica selectiva se recomienda en peces que maniesten signos de enfermedad; aquí el número de organismos estudiados es menor, por lo tanto, el cálculo de prevalencia y nivel de conanza es relativamente sencillo de obtener. En los muestreos selectivos o sesgados se recomienda tomar en cuenta: la uniformidad en las tallas de la población, el peso, la anorexia, la relación de la cabeza con el cuerpo, la coloración del cuerpo y todos aquellos signos que indiquen un problema; la aparición y comportamiento de las mortalidades durante el cultivo, que pueden ser masivas, acumulativas, esporádi-
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cas, y ocurrir en las mallas de los drenes, en las orillas o en el fondo de los estanques, así como por la presencia de predadores; cambios bruscos en el manejo zootécnico, alimentación, calidad del agua, aplicación de medicamentos; presencia de dragados o cosechas de contingencia en granjas vecinas; sequías o lluvias torrenciales; uso indiscriminado de pesticidas en los alrededores. Si el propósito de la muestra sesgada es enviar organismos aparentemente enfermos o con un comportamiento anormal a un laboratorio de diagnóstico, se recomienda el envío de cinco a diez individuos que muestren los signos de la enfermedad, los cuales deberán ser sucientes para realizar el diagnóstico. Como la rutina básica de muestreo y examen precisa de mucho tiempo, no podrán ser analizadas mayores cantidades de peces en una sola sesión. Pueden mantenerse vivos algunos grupos de peces separados y ser estudiados más tarde. Normalmente los peces son capturados con mayor facilidad en acuarios y estanques pequeños, pero en instalaciones grandes a menudo es necesario reducir el nivel del agua vaciándola parcialmente o, en algunos casos, elevar la red de la jaula otante. Los peces capturados con redes, al responder a la administración manual de comida, en general no son útiles para el diagnóstico de enfermedades. Por lo común se requiere paciencia para capturar a los peces en etapas iniciales de la enfermedad, ya que todavía pueden escaparse de la red. Si no es posible capturar peces vivos enfermos, se recogen aquellos que hayan muerto en un lapso no mayor de dos horas; éstos proporcionarán indicadores más ables en el examen post mórtem, que una muestra de peces sanos, a pesar de que la autólisis será más rápida a temperaturas templadas (15°C). A veces los exámenes microbiológicos especícos (por ejemplo, furunculosis), aun pueden ser realizados con peces que han muerto hace 24 horas. Los peces que son demasiado grandes para mantenerlos vivos convenientemente hasta que se realicen los exámenes, serán sacricados de inmediato y mantenidos en hielo, si la toma de muestras no puede ser ejecutada al momento. Las situaciones anteriores evidencian el porque no se puede determinar con facilidad cual es el tamaño correcto de la muestra, ya que existen muchas teorías acerca de la determinación del número mínimo de
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
peces que deben capturarse para que la muestra sea representativa; entre los diferentes criterios están: 10% de la población, 5% de la población y la raíz cuadrada de la población, lo que implica un manejo excesivo de los peces en grandes poblaciones. De acuerdo con algunas investigaciones, se ha estimado que para las diferentes etapas existe un número representativo que asegura estar muy cerca del promedio de peso. En la etapa de crianza, con animales de hasta 80 gramos, 200 peces de la población es suciente; en la etapa de engorda, 250 es un número adecuado. Existe un método estadístico para determinar el número mínimo de peces en una muestra; éste se dene mediante muestreos pilotos a partir de estadígrafos convencionales (media, desviación estándar, error y varianza); según el cálculo del correspondiente coeciente de variación, obtenido mediante una fórmula ya establecida. Es importante que los peces se capturen con instrumentos que permitan que el moco se mantenga en el cuerpo, ya que éste contiene glicoproteínas que los protegen de organismos patógenos e irritaciones, a la vez que les sirve para desplazarse. Algunos instrumentos que se ocupan para tal nalidad son los llamados artes de pesca, entre los cuales encontramos: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Red de cuchara Chinchorro Atarraya Red agallera y Red de arrastre
El tipo de arte de pesca que se utilice dependerá del número de peces que se vayan a manipular y del tipo de estanque o acuario en el que se encuentren los peces.
MUESTREO, TOMA, ENVÍO Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS DE PECES El muestreo en la producción acuícola se realiza dentro de las instalaciones de la granja, el centro o el laboratorio, dentro de sus estanques o acuarios. Se requiere una persona capacitada para la toma de las muestras, así como un médico veterinario especializado en peces. Las muestras deberán ser turnadas a instituciones o empresas que cuenten con los materiales para determinar las pruebas de las variables sicoquímicas del agua, del alimento y de los peces.
❏
Metodología diagnóstica en peces
El equipo para la toma de muestras debe incluir: pinzas de dientes de ratón, pinzas de extremos romos de tamaño mediano y pequeño, tijeras rectas de punta alada, un par pequeño para usar con los alevines y otras de mayor tamaño para el resto de los peces, mango de bisturí, hojas de bisturí curvas de tamaño mediano, cuchillo de carnicero pequeño, pinzas de disección y lupa. Muchos exámenes parasitológicos y algunos procedimientos bacteriológicos precisan el uso del microscopio. La potencia de los objetivos es normalmente baja, media y alta, y los aumentos más utilizadas son 4X, 10X y 40X, respectivamente. Los peces comúnmente son manejados con las manos desnudas, lo cual puede ser arriesgado. El moco que los protege puede representar una dicultad para revisarlos, por lo que se sugiere utilizar guantes de látex para evitar dañarles la piel. Cuando ya se cuenta con estanques en condiciones estables, los muestreos se pueden realizar cada 30 días, ya que en éstos no existirá una uctuación importante de crecimiento y éste se puede predecir, de acuerdo con los datos históricos de crecimiento de las explotaciones, granjas o centros acuícolas. La elección del momento y los sitios del estanque en que se realizarán los muestreos dependerá de la talla del animal y de la especie, por ejemplo, los peces grandes normalmente se sitúan cerca de los lugares de alimentación y las entradas de agua; los medianos, hacia el centro y a la mitad del estanque, y los pequeños, por lo general, al nal de estanque y en las salidas; pero también debemos considerar que en la época reproductiva, encontraremos en las orillas los nidos, razón por la cual se debe muestrear por lo menos a 2 metros de distancia de la orilla, para evitar el sesgo de las hembras que están anidando, ya que por esto hay más oxígeno en las orillas que en el centro. De ahí que, para diferenciar el lugar, deba usarse un equipo especial, como las redes (atarraya), que para el muestreo son necesarias, pero no óptimas, sobre todo en estanques con grandes poblaciones y donde se requiera un número considerable de peces para el ajuste de la ración. Los muestreos realizados con redes en animales menores de 30 gramos causan un estrés mayor que en animales con mayor peso, aunque también en éstos lo causan. Por lo anterior, los muestreos deben ser realizados, siempre que se pueda, con chinchorros en arras-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
tres suaves, que no causen estrés a los animales ni ocasionen posteriores deciencias en el consumo de alimento y mortalidad. Lo ideal es contar con redes (chinchorros) con una luz de malla de un cuarto de pulgada para la fase de cría, de veinte a ochenta gramos, y uno con una pulgada de luz de malla para la fase de engorda (mayor de ochenta gramos), que garantice que el pez no se atorará en la red.
EXTENSIONES DE LA SUPERFICIE CORPORAL Con una hoja de bisturí se rasca sobre las zonas sospechosas o bajo las aletas pectorales, sobre la aleta dorsal y en la base de la aleta caudal; cada muestra se extiende sobre un portaobjetos, adicionando una gota de agua. Se coloca un cubreobjetos sobre el extendido para posteriormente buscar la posible presencia de parásitos. Los parásitos grandes deberían ser visibles a simple vista, aunque para los estadios juveniles podría ser necesario el examen con una lupa. Para la conservación de estos parásitos y su posterior identicación, se colocan en agua y luego se agrega lentamente un volumen igual de formol al 10% (jador histológico). Los helmintos vivos pueden inmovilizarse en posición extendida si se ponen en etanol al 70%.
ESPECIFICACIONES SEGÚN EL TAMAÑO DEL PEZ ❏
❏
❏
❏
Alevines y crías con saco vitelino: la muestra es el pez entero, pero se elimina el saco vitelino, si está presente. Peces de cuatro a seis centímetros: se toman todas las vísceras incluyendo el riñón. Se puede obtener un trozo del encéfalo, después de cortar la cabeza al nivel del borde posterior del opérculo, ejerciendo presión lateral. Peces de más de seis centímetros: se toma el riñón, bazo, corazón y encéfalo. Reproductores: se toma uido ovárico y tejidos.
PRUEBAS DE ESTUDIO SOLICITADAS PRUEBAS BACTERIOLÓGICAS Para aplicar estas pruebas se solicitan el riñón y el bazo, y cuando se muestrea para pruebas del síndrome epizoótico ulcerativo, se requiere la piel y el mús-
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culo. Para ello, se toman muestras de diez peces muertos y se combinan para formar grupos con un máximo de cinco peces cada uno. En el caso de las infecciones virales sistémicas, se pueden usar los órganos internos como fuente para el aislamiento. Sin embargo, la proliferación activa de microorganismos saprotos supone una desventaja tan importante, que para los exámenes bacteriológicos se emplean tejidos frescos recién tomados. Esta preferencia se refuerza con el hecho de que no se pueden añadir sustancias antibióticas al medio de transporte en el que se recogen las muestras.
MEDIOS DE CULTIVO Pocas especies de las bacterias patógenas que afectan a los peces requieren medios especiales de cultivo; la mayoría de las peptonas que se utilizan por lo común para aislamiento (tripsina-soja, cerebrocorazón, etc.) pueden emplearse adecuadamente. No obstante, las bajas temperaturas, óptimas para el desarrollo de algunas especies, causan un crecimiento lento, y durante el aislamiento se obtienen con frecuencia colonias pequeñas. En estos casos, para mejorar el cultivo se añaden factores de enriquecimiento, como suero o sangre del 5 al 10%. De manera contraria, Renibacterium salmoninarum es un organismo que presenta muchas dicultades para crecer, por lo que requiere medios especiales enriquecidos con cisteína (No. A11B). En el caso de los peces, la bacteriología se lleva a cabo a temperaturas entre 20 y 26°C. A veces resulta necesario tener acceso a diversas estufas. Renibacterium salmoninarum, Flavobacterium psychrophilus y otras bacterias necesitan 15°C para un crecimiento óptimo. Muchas de las bacterias aisladas de peces de agua caliente pueden incubarse a 30°C para acelerar su crecimiento y sean de mayor ayuda en las diferentes etapas del diagnóstico.
ALMACENAMIENTO DE LOS CULTIVOS Las cepas bacterianas se pueden guardar a corto plazo en medios ordinarios, manteniendo los tubos con agar inclinado o los cultivos en medios líquidos a 4 °C. Para muchas cepas, el uso de medios comerciales o de cultivo en agar inclinado, recubiertos con una capa de aceite mineral, prolonga la viabilidad de uno a dos años, conservando las mismas condiciones, sin requisitos adicionales.
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
La congelación es probablemente el mejor método de conservar las suspensiones bacterianas de títulos elevados; sin embargo, no siempre evita que cambien algunas características fenotípicas. Cuando es importante la estabilidad de alguna característica, como la virulencia, es preferible recurrir a la liolización, aunque el número de bacterias viables puede descender notablemente. Se han propuesto diversas clases de aditivos para mejorar la ecacia de la congelación y de la liolización: en el primer caso, principalmente glicerol (5-15%), y en el segundo, leche desnatada, lactosa o dextrano (5-10%). No hay una regla general, y las condiciones más convenientes tienen que determinarse para todas las especies en ensayos previos. La adición a cultivos frescos de un volumen de aditivo que contenga bactopeptona al 11% + dextrano al 4% ha proporcionado excelentes resultados en la liolización de algunas bacterias que afectan a los peces, pero en muchos casos merecen ensayarse otras fórmulas.
TÉCNICAS PARA TOMAR LAS MUESTRAS PARA BACTERIOLOGÍA Para la toma de muestras, el primer paso es limpiar la supercie corporal del pez con una toallita de papel, y posteriormente realizar un corte en el abdomen. En los estudios bacteriológicos se preere obtener el riñón. Para recolectar las muestras también se utilizan hisopos; se emplea un bisturí estéril o un cauterizador con lo cual se rompe la membrana del riñón y después se toma la muestra con el hisopo, el que puede conservarse en un medio de crecimiento por dos o tres horas antes de inocularlo. Los medios de crecimiento que se ocupan con mayor frecuencia son las placas de agar con un medio para el crecimiento de colonias bacterianas. Un ejemplo de éstos son las placas de agar soja tristona (TSA) para organismos de agua dulce, y TSA salino cuando se trata de peces de agua salada. Para la identicación bacteriana se utilizan diferentes métodos, como las pruebas bioquímicas de la actividad de la oxidasa, la oxidación y la fermentación de glucosa. Un ejemplo de otras pruebas más especicas son la Vibrostat 0/129, que se usa para algunas especies de vibrio y bacilos Gram negativos, como las especies de Aeromonas sp. Se recurre al antibiograma si se va a implementar una terapia con antibióticos. Si se eligen las improntas, el procedimiento consiste en extender los elementos celulares para des-
❏
Metodología diagnóstica en peces
pués teñirlos; en caso de que se sospeche la presencia de hongos, se utiliza una gota de lacto fenol azul-algodón (20 gramos de fenol, 10 mL de ácido láctico, 40 mL de glicerol, 20 mL de agua destilada y 0.075 gramos de azul-algodón), la cual se coloca en un extremo de la preparación y se permite que se extienda por difusión. Se puede emplear la tinción de Gram, que es útil para identicar bacterias, dependiendo de la coloración que obtengan y de los protozoarios. La tinción May Grunwald-Giemsa está recomendada para diagnosticar la enfermedad proliferativa renal en salmónidos.
TÉCNICAS PARA TOMAR LAS MUESTRAS PARA VIROLOGÍA Para estabilizar los virus cuando el tiempo de transporte supera las 12 horas, se puede añadir suero o albúmina (5-10%). Para extraer los virus se debe emplear material y equipo especícos, ya que este trabajo se realiza siempre por debajo de 15°C, aunque es preferible una temperatura entre 0 y 5°C; de la muestra del órgano que va a analizarse, debe decantarse el medio suplementado con antibióticos; se homogeneizan los grupos de órganos, en un medio de transporte a una dilución nal de 1/10, utilizando un mortero con mano o un homogeneizador eléctrico, hasta obtener una pasta; después se centrifuga el homogeneizado en una centrífuga refrigerada de 2 a 5°C y de 2 000 a 4 000 gramos durante 15 minutos; se recoge el sobrenadante y se trata por cuatro horas a 15°C, o durante toda la noche, a 4°C, con antibióticos; por ejemplo, con gentamicina a una dosis de 1 mg/mL. Si el envío de la muestra se ha realizado en un medio de transporte con exposición a antibióticos, puede omitirse el tratamiento del sobrenadante con antibióticos. El tratamiento con antibiótico hace innecesario pasarlo a través de ltros de membrana. Las muestras de uido ovárico pueden tratarse con antibióticos, para controlar la contaminación microbiana. En ningún caso las muestras de homogeneizados o de uidos ováricos pueden diluirse más de dos veces, y deben centrifugarse del mismo modo que los homogeneizados de órganos. Los sobrenadantes se emplearán en los pasos que se describen a continuación.
TRANSPORTE DE MUESTRAS Los contenedores para el transporte de material biológico se aseguraran rmemente, pero no demasiado, y se jan con cinta adhesiva. Cada recipiente debe ser
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
identicado claramente con una referencia escrita, utilizando un rotulador indeleble; además se deben envolver con material absorbente. Las muestras se empaquetan al menos en dos bolsas impermeables. Todos los datos relevantes se deben escribir claramente en una hoja separada y ser colocados en la parte externa de las bolsas que las contienen. Los peces que se conserven enteros (una vez jados) se pueden envolver con papel absorbente.
TRATAMIENTO PARA NEUTRALIZAR VIRUS ENZOÓTICOS En algunos países, los peces con frecuencia son portadores subclínicos de virus enzoóticos, como el virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV), que puede inducir un efecto citopático en cultivos celulares susceptibles (CPE) y, por tanto, complicar el aislamiento y la identicación de patógenos concretos. En tales situaciones, la capacidad infecciosa de los virus enzoóticos debería neutralizarse antes de realizar ensayos para los virus listados en el Código Acuático. Sin embargo, cuando es importante determinar si está presente uno de los virus enzoóticos, las muestras deben ensayarse con y sin anticuerpos neutralizantes (NAbs). Para neutralizar los birnavirus acuáticos, se mezclan volúmenes iguales (200 μL) de una solución de NAbs contra los serotipos del birnavirus endógeno y del sobrenadante de prueba. Se deja reaccionar la mezcla durante una hora a 15°C, o durante toda la noche, a 4°C, antes de la inoculación a monocapas de células susceptibles. El título de la solución de NAb empleada (puede ser un suero multivalente) debería ser de al menos 2 000, en un ensayo de reducción de placas al 50% contra los serotipos víricos presentes en el área geográca correspondiente. Cuando se considera que las muestras de peces de un país, de una región, de una población o de una unidad de producción están libres de infecciones víricas enzoóticas, puede omitirse el tratamiento del homogeneizado de los órganos. Este esquema también puede utilizarse para neutralizar otros virus enzoóticos del área que se está analizando. Para realizar pruebas virológicas se solicitan los siguientes órganos: riñón anterior, bazo, corazón y el encéfalo.
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LÍNEAS CELULARES DE PECES Las siguientes líneas celulares son necesarias para los ensayos de los patógenos de peces, mencionados en el Código Acuático: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Mojarra oreja azul (BF-2) Salmón real (CHSE-214) Trucha arco iris (RTG-2) Carpita cabezona (FHM) Ronco catire (GF) Riñón cefálico de salmón (SHK1) Riñón de salmón atlántico (ASK) Medios de cultivo: el medio más ampliamente utilizado para el cultivo de células de peces es el tradicional medio mínimo esencial de Eagle (MEM) con sales de Eagle, suplementado con suero fetal bovino (FBS) al 10%, antibióticos y 2 mL de L-glutamina.
No obstante, el medio de Stocker, que es una forma modicada del medio anterior, con doble concentración de algunos aminoácidos y vitaminas, se recomienda particularmente para aumentar el crecimiento celular, empleando los mismos suplementos que los arriba indicados, más un 10% de triptosa fosfato. Estos medios se tamponan con bicarbonato sódico, con 0.16 M de tris-hidroximetil aminometano (Tris) HCl; los cortes, preferiblemente con 0.02 M de ácido N-2-hidroxietil-piperazina-N-2-etanosulfónico (HEPES). El uso de bicarbonato sódico se restringe sólo a cultivos celulares mantenidos en recipientes de cultivo celular muy bien cerrados. De manera alternativa, para algunas líneas celulares como la SHK1, se puede usar el medio de Leibovitz (L15) suplementado con FBS (al 5 o 10%), L-glutamina (4 mM) y gentamicina (50 μg/mL). Para el crecimiento celular, el contenido normal de FBS en el medio es de 10%, mientras que para el aislamiento de virus o para la producción de virus el FBS puede reducirse hasta el 2%. De modo similar, el pH del medio de cultivo para el crecimiento de las células es de 7.3 a 7.4 y se ajusta a 7.6 para la producción de virus o para el ensayo de virus. La composición de la mezcla de antibióticos utilizada con más frecuencia es penicilina (100 IU/mL) y dihidroestreptomicina (100 μg/mL). Si se espera una contaminación por hongos es conveniente usar Mycostatin (50 IU/mL). Se pueden emplear otros antibióticos y otras concentraciones de antibióticos, se-
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
gún lo decida el operador, de acuerdo con la sensibilidad antibiótica de las cepas bacterianas encontradas.
TRANSPORTE Y TRATAMIENTO DE LAS MUESTRAS CON ANTIBIÓTICOS
Los grupos de órganos o de uidos ováricos se colocan en viales estériles y se guardan a 4°C hasta que se realiza la extracción de virus en el laboratorio. La extracción de virus debe llevarse a cabo preferentemente dentro de las 24 horas siguientes al muestreo de los peces, pero es aceptable hasta las 48 horas. Las muestras de órganos también pueden transportarse al laboratorio colocándolas en viales que contengan un medio de cultivo para células o solución salina equilibrada de Hanks (HBSS), con antibióticos, que se añaden para evitar el crecimiento de contaminantes bacterianos (un volumen de órgano en al menos cinco volúmenes de líquido de transporte). Las concentraciones adecuadas de antibióticos son: gentamicina (100 μg/mL) o penicilina (800 UI/mL) y estreptomicina (800 μg/mL). También es posible incorporar al medio de transporte los compuestos antifúngicos Mycostatin® o Fungizona® a una concentración nal de 400 UI/mL.
PRUEBAS HISTOPATOLÓGICAS Para emplear este tipo de pruebas, se debe realizar el examen histopatológico mediante la recolección de información, la cual es muy útil, ya que no puede ser obtenida por medio de la microscopía directa o por el examen macroscópico.
FIJACIÓN DE LOS TEJIDOS Los tejidos de los peces se autolisan rápidamente, por lo que se deben tomar muestras de los especímenes sacricados recientemente; el grosor de las muestras no podrá exceder de los 0.5 centímetros. Un jador adecuado es el formol salino al 10% (38% p/v de formaldehído diluido con 9 partes de agua, incluyendo 0.9% p/v de NaCl), pero el formol al 10% es preferible para los tejidos de los peces. Las alteraciones post mórtem afectan rápidamente a las branquias, y por eso tienen que ser las primeras en recolectarse, antes de incidir el cuerpo del pez. Las muestras de las vísceras para bacteriología se tomarán inmediatamente después de que el pez sea abierto; en seguida podrán tomarse muestras para
❏
Metodología diagnóstica en peces
histología de los órganos internos, evitando cualquier zona cercana a aquellas donde se haya tomado muestras para bacteriología. Los seis tejidos que se mencionan a continuación son los que se mandan comúnmente para análisis. Branquias: se selecciona una porción de branquia que incluya aproximadamente 0.5 centímetros de cartílago procedente del segundo o tercer arco branquial; en peces de talla pequeña se utilizará todo un arco branquial. ❏ Corazón: se incluye todo el órgano en peces de menos de 100 gramos, o tan solo una porción, en individuos mayores. ❏ Hígado: se corta una porción de aproximadamente un centímetro, de una supercie plana y amplia. ❏ Páncreas y tracto gastrointestinal: con peces pequeños, se debe tomar una muestra de 0.5 centímetros de sección transversal de intestino, incluyendo los ciegos pilóricos adheridos, y descartando los extremos de los ciegos. Con peces de 500 gramos o más, se corta una sección plana de 1 cm, de la parte proximal de cuatro o cinco ciegos en el sitio donde se jan a la pared intestinal. En algunas especies que carecen de ciegos, se toma como muestra una porción del intestino anterior con tejido adiposo adherido. ❏ Bazo: en peces pequeños se toma todo el órgano, y en peces mayores, una sección plana. ❏ Riñón: en peces grandes se realizan cuatro cortes para aislar un trozo de 1 X 0.5 cm, el cual se extrae con suavidad mediante un bisturí. En peces pequeños se hacen dos cortes transversales y se extrae toda la porción de órgano comprendida entre ambos cortes. Los peces de talla pequeña, como los alevines, serán sacricados usando un anestésico, y se conser varán enteros, para en seguida practicar dos cortes detrás del cráneo y en la pared abdominal. Se pueden emplear dos técnicas: en la primera, se hace una incisión en la supercie ventral del cuerpo, desde el ano hasta la cavidad pericárdica, de donde se extraen las vísceras, incluyendo la vejiga natatoria, y se elimina un lado de la pared abdominal; la segunda técnica consiste en tomar muestras de la cabeza y de dos secciones transversales del cuerpo. ❏
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
PRUEBAS SEROLÓGICAS Para aplicar este tipo de pruebas es necesario producir antisueros de conejo y anticuerpos policlonales contra virus de peces. Existen varios modos de obtener estos anticuerpos; no obstante, el título y la especicidad inuyen en el programa de inoculación utilizado. Los siguientes protocolos de inmunización se pueden emplear en la producción de antisueros para el aislamiento de virus y en los procedimientos de identicación que se describen más adelante.
ANTISUEROS CONTRA EL VIRUS DE LA NECROSIS PANCREÁTICA INFECCIOSA
Inyección intravenosa el día 0 con 50-100 μg de virus puricado, seguida de una inoculación de recuerdo idéntica, el día 21, y una sangría entre cinco y siete días más tarde. Los conejos pueden reutilizarse si la sangría no es completa.
ANTISUEROS CONTRA OTROS VIRUS Los protocolos de inmunización alternan una inyección intramuscular o intradérmica con posteriores dosis intravenosas de recuerdo: ❏
Día 0: para la inyección primaria, se mezcla (v/v)
500-1.000 μg de virus puricado con adyuvante (adyuvante incompleto de Freund u otros) hasta un volumen total de 1.2 mL. Este antígeno se inocula en el conejo mediante inyecciones intradérmicas multipuntuales (20 puntos en cada lado), después de que el animal haya sido afeitado. ❏ Día 21: se recogen aproximadamente 20 mL de sangre y se prueba su reactividad (neutralización, uorescencia); se reinocula de manera intravenosa con la misma cantidad de virus puricado que en la inyección primaria, pero sin adyuvante. Antes de la inyección intravenosa de recuerdo, el conejo se debe tratar con promotazina (12 mg, intramuscularmente), para evitar una posible respuesta analáctica. ❏
Día 28: se toma una muestra de sangre, se com-
prueba la reactividad del suero y se sangra o se vuelve a inocular, según los resultados. Este procedimiento de inmunización es muy adecuado en los casos de rabdovirus, para producir antisueros que se utilicen en pruebas de inmunouorescencia y en enzimoinmunoensayos (ELISA). Sin embargo, un
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método más ecaz para la producción de antisueros neutralizantes es la inyección regular intravenosa sin adyuvante (0.2 mL) cada tres o cuatro días (dos veces a la semana). Pueden ser necesarias hasta 15 inyecciones; una semana después de la última inyección, se debe recoger una muestra de suero y probarla.
ANTISUEROS CONTRA BACTERIAS DE PECES Todavía resulta difícil obtener de fuentes comerciales sueros antimicrobianos en grandes cantidades, y a menudo será necesario preparar dichos antisueros. Los métodos generales son los mismos que para los virus. Con frecuencia los antígenos bacterianos se usan como preparaciones crudas de bacterias muertas por calor o por formalina (0.35% de formalina). La inoculación del conejo en dosis crecientes puede ser intramuscular, cada semana, con adyuvante la primera vez; o intravenosa, en intervalos de tres a cuatro días, sin adyuvante. Comúnmente se requiere una inyección de recuerdo después de 15 días. Para la producción de sueros anti-Renibacterium resulta muy ecaz un programa especial de inoculaciones intradérmicas multipuntuales, y es también útil para otras bacterias de baja antigenicidad en conejos. El antígeno está conformado por bacterias muertas por calor (60 °C durante 45 minutos) y se ajusta a 2 mg/ mL. Los costados de los animales se afeitan cuidadosamente y se realizan inyecciones intradérmicas multipuntuales, utilizando cantidades totales de 1 mg de bacteria por animal, de acuerdo con el siguiente programa: ❏
Día 1: 1 mg + adyuvante completo de Freund (CFA) (v/v).
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Día 21: 1 mg + adyuvante incompleto de Freund
(IFA) (v/v). ❏ Día 42: 1 mg + IFA. ❏ Día 63: 1 mg de antígeno. ❏ Día 68: Recolección de muestras de sangre (30 mL). Las inyecciones de recuerdo y las sangrías para recoger suero pueden repetirse en intervalos de un mes. El uso de adyuvante completo de Freund puede estar restringido con base en las consideraciones de protección animal. Los adyuvantes alternativos sintéticos son trehalosa dimicolato y monofosfato del lípido A.
PROCESAMIENTO Y DEPÓSITO DE SUEROS INMUNES Después de la coagulación de la sangre, se recoge y centrifuga el suero a 20°C y se calienta durante 30 minutos a 56°C. El suero resultante, tratado por calor, se
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pasa a través de un ltro de membrana (tamaño de poro 450 nm) y se guarda temporalmente a 4°C durante el tiempo necesario para el análisis de su reactividad y especicidad, y para probar que estas propiedades no se afectan por las condiciones de conservación (por ejemplo, congelación o liolización). Los sueros estériles de conejo se pueden mantener al menos dos meses a 4°C sin ningún cambio en sus propiedades. Se distribuye (normalmente en pequeños volúmenes) y se congela a –20°C, o se lioliza. Las inmunoglobulinas (Ig) se pueden extraer de los antisueros por métodos convencionales apropiados para la puricación de Ig. La unión selectiva a la proteína A constituye un método able y ecaz. La concentración de las soluciones de Ig se ajusta a los valores requeridos para la posterior preparación de conjugados o para el almacenamiento. Conservación de Ig. Mezclar una solución de Ig de una concentración de 2 mg/L con glicerol puro estéril (v/v) y mantener a –20 °C. También se pueden preparar soluciones de Ig en glicerol, con una concentración más elevada.
ANTICUERPOS MONOCLONALES DE RATÓN CONTRA VIRUS Y BACTERIAS DE PECES
En los últimos años, se han obtenido anticuerpos monoclonales (MAbs) contra la mayoría de los virus de peces. Algunos de ellos, como MAbs, solos o asociados en dos o tres, han originado reactivos biológicos adecuados para la identicación de grupos víricos (IPN, VHS, IHN). Otros MAbs, tomados individualmente o como componentes de combinaciones de Ab, permiten la tipicación exacta de VHSV e IHNV. También se ha descrito la producción de MAbs contra bacterias. Ello ha permitido el desarrollo de kits comerciales de diagnóstico para Renibacterium salmoninarum, pero en la mayoría de los casos, la producción permanece limitada a laboratorios especializados. Teóricamente, las IgGs monoclonales de ratón se pueden procesar y guardar como las IgGs policlonales. Sin embargo, la reactividad de algunos MAbs puede alterarse por procesos enzimáticos, de radiomarcaje o de liolización. Por tanto, es necesario probar los distintos MAbs en las condiciones en que van a ser empleados.
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Metodología diagnóstica en peces
USO DE TÉCNICAS MOLECULARES PARA PRUEBAS Y DIAGNÓSTICOS CONFIRMATIVOS
Para la identicación de muchos agentes patógenos de animales acuáticos se han desarrollado técnicas moleculares que incluyen las sondas de ácido nucleico y la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Sin embargo, como en el caso de otras técnicas de diagnóstico, las ventajas de la sensibilidad se contrarrestan frecuentemente por problemas técnicos de interpretación o susceptibilidad. Mientras que los métodos basados en el cultivo directo o en la serología son relativamente ables, la PCR puede ser muy dependiente de las condiciones en las que se lleva a cabo, y muy susceptible de contaminaciones en el laboratorio, por productos de PCR previas, lo cual origina resultados falsos positivos. Por tanto, se incluyen como métodos de diagnóstico y conrmativos varios protocolos con sondas de ácido nucleico y PCR; siempre que sea posible se especican como métodos estándar de análisis o técnicas bien establecidas (por ejemplo, el aislamiento del virus). Cuando se empleen estas nuevas técnicas moleculares, deben realizarse con cuidado y con especial atención en la inclusión de controles positivos y negativos adecuados.
PREPARACIÓN DE MUESTRAS Las muestras tienen que tratarse de manera que conserven el ADN del patógeno. De modo similar, las muestras preparadas para pruebas basadas en métodos con anticuerpos deben conservarse para que retengan los sitios antigénicos reactivos frente a los anticuerpos usados. Las muestras seleccionadas para pruebas de diagnóstico, basadas en ADN o en anticuerpos, deben manejarse y envasarse con el máximo cuidado para minimizar la potencial contaminación cruzada entre las muestras o la degradación de éstas antes del ensayo. Para evitar la contaminación es necesario usar recipientes nuevos (bolsas de muestra o botellas de plástico). En cada envase o contenedor se colocará una etiqueta resistente al agua, en la que se anotarán los datos apropiados para cada serie de muestras. Algunos métodos adecuados para la conservación y el transporte de muestras obtenidas para pruebas moleculares, o basadas en anticuerpos, son los siguientes:
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Ejemplares vivos helados o refrigerados: cuando los ejemplares pueden ser transportados rápidamente al laboratorio para la realización de ensayos en 24 horas, las muestras se envasan en bolsas que se rodean de una apropiada cantidad de hielo húmedo en una caja aislada y se envían al laboratorio. Ejemplares completos congelados: se seleccionan ejemplares vivos según el propósito del muestreo, se congelan rápidamente en el campo, usando hielo seco machacado, o se congelan en el laboratorio de campo, mediante un congelador mecánico, a –20°C, o a una temperatura más baja. Se prepara e inserta la etiqueta en el contenedor; las muestras se empaquetan con una cantidad adecuada de hielo seco en una caja aislada y se envían al laboratorio. Muestras conservadas en alcohol: en regiones donde es problemático el almacenamiento y envío de muestras congeladas, se puede usar etanol de 9095% para conservar, guardar y transportar algunos tipos de muestras. Se envasan para el transporte, de acuerdo con los métodos antes descritos. Tejidos jados para la hibridación in situ e inmunohistoquímica: para esta nalidad son pertinentes los métodos clásicos de conservación de tejidos. Una buena elección para el posterior uso de sondas moleculares es la solución de Davidson. Especícamente, para ADN se debe evitar la sobrejación (más de 48 horas).
CONSERVACIÓN DE ARN Y ADN EN TEJIDOS USANDO RNALATER El tejido se corta hasta que sea menor de 0.5 centímetros, en una dimensión, y se sumerge en 10 volúmenes de solución RNAlater (por ejemplo, una muestra de 0.5 gramos requiere 5 mL de RNAlater). Los órganos pequeños, como el riñón, el hígado y el bazo se pueden mantener enteros en RNAlater. Es posible guardar estas muestras a 4°C durante un mes; a 25°C durante una semana, o a –20°C indenidamente. Los tejidos tratados con RNAlater se mantienen a –20°C.
EXTRACCIÓN DE ADN Para extraer el ADN, se homogeneizan a polvo los tejidos conservados. Se añaden alrededor de 10 volúmenes de tampón de extracción (NaCl [100 mM], ácido etilendiaminatetraacético [EDTA, 25 mM], pH 8, dodecil sulfato sódico [SDS, 0.5%]) y proteinasa K (100 μg/
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mL). Después de incubar durante toda la noche a 50 °C, se extrae el ADN con fenol/cloroformo, usando un protocolo estándar, y se precipita con etanol. Teniendo en cuenta las limitaciones de tiempo y los riesgos para el personal de laboratorio, los juegos de reactivos comerciales disponibles constituyen una alternativa técnica satisfactoria, cuyo uso debería validarse mediante comparación con un protocolo estándar a base de fenol/cloroformo, antes de emplearlos como método rutinario en los laboratorios de diagnóstico.
EXTRACCIÓN DE ARN Para aislar el ARN de tejidos conservados en RNAlater, se extrae simplemente el tejido de la solución de RNAlater y se trata como si fuera un tejido fresco. La mayoría de los tejidos puede homogeneizarse directamente en tampón de lisis o de extracción.
PREPARACIÓN DE CORTES FINOS PARA HIBRIDACIÓN IN SITU Para hibridación in situ (ISH), los tejidos se jan en solución jadora de Davidson durante 24 horas, y después se incluyen en parana, según los métodos estándar en histología. Se realizan cortes de 5 μm de grosor, los cuales se colocan en portaobjetos tratados con aminoalquilsilano, y se incuban durante toda la noche en una estufa a 40°C. Posteriormente se elimina la parana de los cortes mediante inmersión en xile no durante 10 minutos. Este paso se repite y luego se elimina el solvente, por inmersión sucesiva en dos baños de alcohol absoluto, durante 10 minutos cada vez. Después, los cortes se rehidratan por inmersión en una serie de etanol. El protocolo puede exigir un paso de permeabilización de membrana para facilitar el acceso al ADN diana. Con este n, los cortes se tratan a 37°C durante 30 minutos con proteinasa K (100 μg/mL) en tampón TE (Tris [50 mM], EDTA [10 mM]). En pruebas de ISH resulta esencial teñir, tanto un corte conocido positivo, como un corte conocido negativo, para eliminar resultados positivos falsos, debidos a una tinción inespecíca, y resultados negativos falsos por errores en el protocolo de tinción.
PRUEBAS PARASITOLÓGICAS Para este tipo de pruebas es necesario preservar los parásitos; como se sabe, muchos de los protozoarios pueden ser identicados en cortes histológicos o di-
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rectamente en piel y branquias, utilizando formalina o alcohol al 70%. Los parásitos monogenésicos son jados con formalina caliente; los microsporidios con tinción Gram o Wright; y los amoeba, agelados y ciliados con tinción de Wright.
P Los hongos son saprotos ubicuos y aparecen en los peces como patógenos cuando hay un cambio brusco en las condiciones de su medio, por ejemplo, cambios en las variables sicoquímicas del agua. Por lo general, los productores de peces tienden a resolver inmediatamente problemas de tipo práctico, como en los casos en los que ha habido una alta mortalidad de peces, atribuible a un hongo en particular, cuya pronta eliminación es lo prioritario para controlar el brote, pero no se interesan en investigar el agente causal y su relación con las especies afectadas, no obstante que las micosis de los peces constituyen uno de los aspectos más confusos y menos explorados de la ictiopatología, y que producen grandes pérdidas económicas en la acuicultura, menores sólo a las pérdidas producidas por bacterias. Las micosis afectan la industria de la pesca y la acuicultura no sólo por la disminución que provocan en la cantidad del producto, sino también por la falta de calidad que presentan los individuos infectados, los cuales no son aptos para los tratamientos de conservación. Una gran variedad de hongos y otros organismos relacionados, que actúan como agentes patógenos en peces, tienen una posición taxonómica incierta. Los peces dulceacuícolas frecuentemente sufren infecciones por hongos como Phoma sp., Trichoderma sp. y Aspergillus sp., y oomycetos como Aphanomyces invadens, Achlya sp. y Saprolegnia sp., tanto en vida libre como en granjas de producción acuícola, lo cual representa, en estas últimas, factores importantes de pérdidas económicas. Típicamente, la infección fúngica se presenta como un crecimiento supercial algodonoso del micelio en la piel de los peces, que puede iniciarse de manera localizada y posteriormente generalizarse; para ello, se deben tomar las muestras que se mencionan a continuación.
TOMA DE MUESTRAS EN AGUA Las muestras se obtendrán en el lugar que contenga los organismos afectados y se procesarán dentro del
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Metodología diagnóstica en peces
menor tiempo posible, para evitar cambios en las variables de pH, temperatura y oxígeno, entre otros, que pudieran causar alteraciones en los patógenos presentes, producción de bacterias y formación de hongos externos a la muestra (véase el apartado 3.2: Muestreo, toma, envío y conservación de muestras de agua).
TOMA DE MUESTRAS EN PECES Para la obtención de muestras de los peces infectados se debe realizar un raspado supercial de la epidermis, con asa de siembra, tomando el material de la parte media lateral del cuerpo, el cual se suspenderá en agua estéril. Si se requiere transportar a los peces para que sean examinados en el laboratorio, éstos pueden jarse en formol al 10% tamponado con fosfatos 0.1 M, con un pH de 7.2.
CULTIVO DE HONGOS Y OOMYCETES A partir de las muestras de agua y raspados se hacen diluciones con solución salina amortiguadora de fosfatos estéril (PBS 1X), para cultivarlas según las condiciones de la Norma Ocial Mexicana (NOM-111-SSA1-1994) para la identicación de hongos.
DIAGNÓSTICO EN MEDICINA DE POBLACIONES Para poder llegar a un diagnóstico en una producción acuícola, es necesario conocer las formas de cultivo, que pueden ser sistemas extensivos, semiintensivos, intensivos, e hiperintensivos; en ellos hay que considerar los aspectos que puedan tener efectos negativos en la salud de los animales, por ejemplo, que los lleve a frecuentes periodos de estrés que, a su vez, provoquen una disminución en su sistema inmune, lo cual incrementará en el pez la susceptibilidad de padecer enfermedades. De ahí que se deba tener en cuenta una gran variedad de factores, por ejemplo: condiciones adversas del agua, agresión por parte de otros organismos, mala ubicación de los estanques, inapropiada iluminación, modo de transportación o manejo, calidad de la alimentación, temperatura del agua, falta de oxígeno. También hay que considerar el tiempo que los peces son capaces de soportar fuera del agua, cuando son extraídos para pesarlos, tomar medidas merísticas, medicarlos y revisarlos, pues no todos pueden sobrevivir por periodos prolongados. Los peces
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
son más dependientes que otras especies, por ello, su manejo debe hacerse bajo el criterio de connamiento, es decir, que se cuente con el espacio suciente para permitirles realizar todas las actividades vitales como comer, respirar, reproducirse, moverse, etcétera. Por lo anterior, es de suma importancia identicar la naturaleza de la enfermedad que esté afectando a los peces, lo que sólo se conseguirá mediante el empleo de ciertas herramientas, como la historia clínica mediata e inmediata, el examen físico y las pruebas de laboratorio. Existe una serie de diagnósticos que se clasican de acuerdo con el orden en el que se cons truyen; éstos se describen a continuación.
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO Este tipo de diagnóstico se genera a través de la historia clínica, la anamnesis y el examen físico; es, en cierta forma, una hipótesis generada por el médico veterinario acerca de la naturaleza de la enfermedad que afecta al paciente. Sin embargo, se requieren elementos complementarios para armar dicha hipótesis.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL Se genera mediante el análisis de los datos obtenidos en la historia clínica, la anamnesis y el examen físico. Su objetivo es descartar las enfermedades que tengan manifestaciones similares a la que en realidad está afectando a los organismos.
DIAGNÓSTICO DEFINITIVO El conocimiento del paciente se logra a través la integración de la historia clínica, anamnesis, examen físico y pruebas de laboratorio; estas últimas proporcionan objetividad al proceso diagnóstico, dando como resultado el descubrimiento de la naturaleza real de la enfermedad causante del problema en los organismos.
MANEJO LEGAL Y REPORTE ANTE LAS AUTORIDADES CORRESPONDIENTES La Ley de Pesca (1992, enmienda del 2001) y el Reglamento de la Ley de Pesca (1999, enmienda del 2004) son los instrumentos legislativos que rigen sobre la conservación, preservación, explotación y administración de la ora y fauna acuáticas. Las normas ociales mexicanas (NOM), propician la implementación de la Ley de Pesca mediante la especicación de los requisitos estipulados en relación con la ejecución de
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actividades pesqueras y acuícolas. Generalmente, las NOM son disposiciones jurídicas que permiten el desarrollo armónico de la acuicultura y son propuestas por diversas secretarías de Estado, en correspondencia con su competencia jurisdiccional y emitida por el Ejecutivo Federal. Reglamento de la Ley de Pesca: en el título tercero que hace referencia a la acuicultura; en el capítulo I (Artículos 101 al 105), se mencionan las disposiciones generales de la acuicultura. El capítulo II se reere a la acuicultura comercial, en el Artículo 107 y 108 se especican las concesiones para este tipo de acuicultura en aguas de jurisdicción federal y los respectivos requisitos. En el capítulo III se hace referencia a la acuicultura de fomento (Artículos 114-119), donde se establecen los requerimientos para la concesión de permisos para dicha acuicultura. Dentro del capítulo IV (Artículos 120124) se menciona la acuicultura didáctica y sus respectivas autorizaciones para llevarla a cabo. Con respecto a la introducción de especies vivas en cuerpos de agua de jurisdicción federal, el capítulo V (Artículos 125-127) detalla la información que debe contener la solicitud para tramitar este proceso. El capítulo VI (Artículos 128-136) se reere a la sanidad acuícola: a la presenta ción de certicados de sanidad para la introducción de especies vivas de la ora y fauna acuáticas, que será expedido por la autoridad competente del país de origen. Asimismo, con respecto a las especies sometidas a las normas de cuarentena, y al término de la misma, para su disposición nal, será necesario obtener un certicado de sanidad acuícola expedido por la Secretaría (Ley de Pesca y su reglamento, 2001). ❏
Instrumentos de política ambiental en acuicultura.
En contraste con la acuicultura de tipo comercial, la acuicultura de pequeña escala no ha mostrado impactos graves de tipo ambiental. Sin embargo, en seguida se muestran las generalidades de la política ambiental y de ordenamiento ecológico que atañen a cualquier actividad, incluida la acuicultura. Con el n de proveer a los productores del medio rural de benecios para el aprovechamiento sustentable de sus recurso naturales, es necesario hacer énfasis en que la normatividad vigente aplicada a la expedición de permisos y concesiones acuícolas no representa un obstáculo para instalar sus unidades de producción, más bien signica un elemento que les permite alcanzar los siguientes objetivos:
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Impulsar un desarrollo que sea compatible con las aptitudes y capacidades de cada región. Aprovechar de manera plena y sustentable los recursos naturales, como una condición básica para la superación de la pobreza. Cuidar el ambiente y los recursos naturales a partir de un efectivo cumplimiento de las leyes.
ORDENAMIENTO ECOLÓGICO: DE ACUERDO A LA LEY GENERAL DEL EQUILIBRIO ECOLÓGICO Y LA PROTECCIÓN AL AMBIENTE (LGEEPA) El ordenamiento ecológico es "El proceso de planeación dirigido a evaluar y programar el uso del suelo y el manejo de los recursos naturales en el territorio nacional y las zonas sobre las que la nación ejerce su soberanía y jurisdicción, para preservar y restaurar el equilibrio ecológico y proteger al ambiente". Este proceso comprende las siguientes etapas: evaluación o diagnóstico ambiental, planicación ambiental, y gestión o manejo ambiental. Las políticas de ordenamiento ecológico son: de protección, conservación, aprovechamiento y restauración. Los estudios de ordenamiento ecológico se desarrollan en áreas de atención prioritaria, denidas por sus características de alta diversidad, pobreza extrema, alto grado de deterioro, o con alto potencial de recursos naturales y socioeconómicos; son el marco para impulsar acciones públicas encaminadas a la preservación de los recursos naturales y el desarrollo sustentable, es decir, facilitan la identicación de las áreas donde la acuicultura puede desarrollarse en armonía con otras actividades. Asimismo, promueve la regularización de unidades productivas, a efecto de lograr el conocimiento exacto de su distribución y evitar así aglomeraciones que provoquen efectos negativos sobre los ecosistemas e, incluso, sobre ellas mismas.
EVALUACIÓN DEL IMPACTO AMBIENTAL De acuerdo con la LGEEPA, la evaluación del impacto ambiental es denida como un mecanismo técnicoadministrativo que permite identicar y prevenir los efectos ambientales adversos asociados a la realización de un proyecto de la actividad pública o privada que pueda provocar desequilibrio ecológico o rebasar los límites y condiciones señaladas en los reglamentos y en las normas técnicas ecológicas.
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Metodología diagnóstica en peces
NORMAS OFICIALES MEXICANAS En el marco de la Ley federal sobre Metrología y Normalización y de la Ley de Pesca y su reglamento, a partir de 1993, mediante la instalación del Comité Consultivo Nacional de Normalización de Pesca Responsable, se han elaborado las siguientes disposiciones jurídicas que permiten el desarrollo armónico de la acuicultura, de las cuales están vigentes las siguientes: ❏
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NOM-002-PESC-1993: para ordenar el aprovecha-
miento de las especies de camarón en aguas de jurisdicción federal de los Estados Unidos Mexicanos. NOM-009-PESC-1993: establece el procedimiento para determinar las épocas y zonas de veda para la captura de las diferentes especies de la ora y fauna acuáticas, en aguas de jurisdicción federal de los Estados Unidos Mexicanos. NOM-010-PESC-1993: establece los requisitos sanitarios para la importación de organismos acuáticos vivos en cualquiera de sus fases de desarrollo, destinados a la acuicultura u ornato, en el territorio nacional. NOM-011-PESC-1993: regula la aplicación de cuarentenas a efecto de evitar la introducción de enfermedades certicables y noticables en la importación de organismos acuáticos. NOM-128-SSA1-96: bienes y servicios. Establece la aplicación de un sistema de análisis de riesgos y control de puntos críticos ARCPC (en inglés HACCP) en la planta industrial procesadora de productos de la pesca. NOM-059-ECOL-2001: protección ambiental. Especies nativas de México de ora y fauna silvestre, categorías de riesgo y especicaciones para su inclusión, exclusión o cambio en lista de especies en riesgo.
Si se presenta algún tipo de enfermedades, es obligación del médico veterinario o dueños responsables de la granja, centro, laboratorio o acuario, noticarlo de inmediato a las instituciones competentes y dar soluciones a la problemática existente en ese momento de la enfermedad, ya que se tiene que controlar y salvaguardar el interior de los estados de la República Mexicana.
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Las instituciones de atención son: A nivel gubernamental se jan prioridades de investigación, recurriendo a varias estrategias, como convocatorias a foros, disposición de las redes nacionales de investigación en acuicultura (camarón, tilapia, trucha, peces marinos, etc.), organización de reuniones nacionales (p. ej. congresos), establecimiento de comisiones donde se entrevisten productores, investigadores y agencias de nanciamiento (); con toda la información recabada se determinan las líneas prioritarias de investigación en acuicultura, a las que dará seguimiento la institución correspondiente, en este caso, la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación () y, a su vez, el Instituto Nacional de la Pesca (), a través de la Dirección General de Investigación en Acuicultura (); a éstas se les tendrá que dar a conocer las enfermedades que se deben noticar, que son las siguientes: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Necrosis hematopoyética epizoótica Necrosis hematopoyética infecciosa (IHN) Necrosis pancreática infecciosa (IPN) Septicemia hemorrágica viral (VHS) Necrosis eritrocítica viral (VEN) Enfermedad viral por herpes (HSVD) Viremia primaveral de la carpa Anemia infecciosa del salmón Iridovirosis de la carpa dorada japonesa Herpesvirosis de la carpa koi
Las enfermedades bacterianas que deben noticarse son: ❏ ❏ ❏
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Renibacteriosis (Renibacterium salmoninarum) Columnaris (Flexibacter columnaris) Septicemia hemorrágica bacteriana (Aeromonas móviles) Edwardsielosis (Edwardsiella tarda) Tuberculosis (Mycobacterium sp) Estreptococosis septicémica (Streptococcus iniae)
Las instituciones públicas desempeñan un papel muy importante dentro de la enseñanza, investigación y cultura sobre el diagnóstico de enfermedades en los organismos acuáticos. En el caso de la investigación en acuicultura, su función principal es la de desarrollar tecnologías que permitan aumentar la biomasa de la acuicultura. Para obtener un buen desarrollo dentro
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de la acuicultura, es necesario contar con la participación activa de los productores, lo que no se ha logrado por completo, ya que sólo existe una mínima cantidad de grupos de productores dispuestos a trabajar en coordinación con los investigadores y las instituciones. Los avances de la investigación en acuicultura se dan a conocer por medio de manuales, publicaciones, conferencias, talleres y estancias de capacitación, entre otras. Entre las principales instituciones, universidades o centros que llevan a cabo investigación sobre el sector acuícola, y las que ofrecen estudios de licenciatura, maestría y doctorado, se encuentran: el Instituto Tecnológico de Boca del Río; el Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste (), el Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo () y el Centro de Investigación Cientíca y de Educación Superior de Ensenada (), Instituto Tecnológico del Mar de Nayarit (en éste se imparte la carrera de Biología con especialidad en acuicultura), La Universidad Nacional Autónoma de México (), la Universidad Autónoma Metropolitana (-Xochimilco y -Iztapalapa), la Universidad Autónoma de Nuevo León (), la Universidad Autónoma de Campeche (), la Universidad Juárez Autónoma de Tabasco (), la Universidad Autónoma de Baja California (), la Universidad de Sonora (), la Universidad de Occidente (), la Universidad Autónoma de Baja California Sur, la Universidad Autónoma de Yucatán, el Instituto Tecnológico de Monterrey el Mazatlán y Hermosillo y el Centro de Ciencias de Sinaloa ().
PROGRAMAS DE VIGILANCIA Y CONTROL SANITARIO Recordemos que para elaborar y ejecutar un programa de vigilancia, se deben considerar los agentes patógenos y las enfermedades de los peces que actualmente se incluyen en el código sanitario de animales acuáticos (Código Acuático), según las siguientes consideraciones básicas: las enfermedades resisten la terapia o responden escasamente a ella, y tienen una distribución geográca restringida; son de gran importancia socioeconómica y ocurren en especies implicadas en el mercado internacional y nacional. Un abordaje completo del control sanitario animal en cultivos de peces requiere:
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Una evaluación del estado sanitario de los animales, empleando métodos basados en las disposiciones del capítulo 1.1.4. La obligación de reabastecer las instalaciones de aguas libres o cerradas solamente con animales que tengan un estado sanitario superior o igual al de los animales que ya viven en las áreas consideradas. La erradicación, cuando sea posible, de la enfermedad, mediante el sacricio de las existencias infectadas, la desinfección de las instalaciones y la repoblación con peces libres de enfermedad y de origen aprobado. La noticación por parte de cada país miembro, de sus necesidades particulares, además de aquellas consideradas en el Código Acuático, para la importación de animales acuáticos y de productos de animales acuáticos.
Si se siguen los procedimientos anteriores, es posible tener una seguridad de la adecuación del estado sanitario de los productos de acuicultura, en cuanto a las enfermedades especicadas y respecto a su país, zona o lugar de origen. La emisión de un certicado sanitario por el funcionario correspondiente (médico veterinario), basado en un informe sobre el estado sanitario y en los exámenes de los animales acuáticos, proporciona la certeza de que los productos de la acuicultura de un envío denido se originan en un país, zona, granja, centro, laboratorio, acuario o sitio de recolección que está libre de una o más de las enfermedades que se especican en el Código Acuático. Para lograr lo anterior, se evalúa el estado sanitario de las existencias de peces, basado en la inspección de los sitios de producción piscícola y en el examen posterior de muestras en el laboratorio, procedentes de ejemplares de peces tomados de las existencias, en una población denida. Para ello se cuenta con requisitos de vigilancia para el reconocimiento internacional de la ausencia de infección. Sin embargo, para aquellas pruebas diagnósticas en las que no se ha establecido la sensibilidad y la especicidad, el tamaño de la muestra debe decidirse a partir de la determinación del estado sanitario de una reserva o población de peces, en un sitio especíco de inspección. Cada unidad de cultivo de peces tiene que ser inspeccionada dos veces al año, durante dos años; cuando la temperatura y la estación son ideales, ofrecen la
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Metodología diagnóstica en peces
mayor oportunidad de observar signos clínicos y de aislar los agentes patógenos. Por eso es importante que en cada ocasión se recojan los peces de las especies susceptibles que aparecen en el Código Acuático, para la enfermedad en cuestión, a n de detectar la prevalencia de infección igual o superior a 2%, con un nivel de conanza de 95%. Con frecuencia se toman 150 peces en cada ocasión. Si durante una de las dos inspecciones están presentes los reproductores, se tomarán hasta 150 muestras de uidos ováricos en dicha unidad de cultivo. Si la vigilancia sanitaria se realiza en poblaciones de peces libres, en un sitio determinado de inspección, o en estanques de crianza sin instalaciones de retención, en las que pueden juntarse diferentes cultivos de peces, es necesario recoger 150 ejemplares una vez al año, durante dos años. En la medida que sea posible, se recogerán los peces de más edad o el uido ovárico de los salmónidos. Durante este período de dos años, la unidad de producción pesquera sólo puede recibir peces de una unidad, cuyo estado sanitario ya haya sido aprobado y sea igual o superior al estado sanitario que se desea para la instalación que está siendo inspeccionada. Para tener un mantenimiento del estado sanitario, las inspecciones deben continuar dos veces por año después de que una unidad de producción pesquera, incluyendo unidades de producción en estanques equipados con instalaciones de retención, hayan sido reconocidas como libres de todas o de alguna de las enfermedades listadas en el Código Acuático tras dos años de vigilancia, con pruebas de laboratorio y con ausencia de cualquier signo clínico sospechoso. Un establecimiento de acuicultura que se haya reconocido ocialmente como libre de infección, puede mantener este reconocimiento siempre que las condiciones básicas de bioseguridad sean continuas. La unidad de producción pesquera sólo puede recibir peces cuyo estado sanitario sea igual o superior al de los ya presentes.
SALUD PÚBLICA Los conceptos de salud y cuidados se reeren al manejo saludable de los peces y se usan en acuicultura para describir las prácticas destinadas a prevenir la aparición de una enfermedad en los peces, ya que una vez que un pez enferma, puede ser muy difícil restablecer-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
lo de la afección. Por eso, el manejo saludable de los peces empieza con la prevención de la afección, antes que con su tratamiento. La prevención está basada en el mantenimiento de la calidad del agua, la nutrición y la sanidad. Sin estos pilares, es imposible prevenir el brote de una enfermedad oportunista. Los peces están constantemente en contacto con agentes patógenos potenciales, los cuales incluyen bacterias, hongos y parásitos. Aun usando métodos de esterilización, ya sean esterilizadores ultravioletas u ozonización, no se garantiza la total eliminación de los potenciales agentes patógenos del medio. Un agua sin calidad, una pobre nutrición o la supresión del sistema inmunológico, generalmente asociados a condiciones de estrés prolongadas, permiten que estos potenciales patógenos provoquen una enfermedad. La medicación utilizada para tratar las enfermedades de los peces ofrece la oportunidad de que éstos se recuperen y se sobrepongan a las infecciones oportunistas, pero no es un sustituto del manejo adecuado y el mantenimiento de los peces.
La observación detallada del estado de ánimo y el comportamiento de los peces durante la alimentación permite detectar un problema que apenas empieza, así como efectuar un diagnóstico antes de que la mayoría de la población contraiga la enfermedad. Si el diagnóstico es acertado y el tratamiento es el indicado y se implementa de manera temprana, mientras que los peces todavía se encuentran en buena forma, los resultados serán más satisfactorios. Independientemente del cuidado que tenga el personal encargado de la granja, centro, laboratorio o acuario, es inevitable que éste entre en contacto con alguna enfermedad, ya que siempre se mantienen peces afectados durante un tiempo suciente para ello. Cuando el problema se detecta, es esencial una respuesta rápida y efectiva. No hay mejor preparación para esto, que conocer a los peces. En condiciones normales, los peces muestran el comportamiento habitual; comen vigorosamente cuando el alimento está presente en el agua; en algunos casos, como en los estanques o en acuarios plantados, los peces son visibles en el momento en que se alimentan. Es útil pensar en enfermedad o salud, como una interacción entre el huésped, el agente patógeno y el ambiente. Los factores relativos al huésped incluyen la especie del pez, el tamaño, la edad, el estado de inmu-
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nidad y las condiciones siológicas generales. En los agentes patógenos, el número de microorganismos infecciosos presentes, la cepa y su virulencia. La diferencia entre la salud y la enfermedad depende del balance entre el huésped y el agente patógeno; este balance se encuentra gravemente afectado por los factores ambientales, principalmente la temperatura y las condiciones químicas del agua. Por ejemplo, un factor ambiental adverso como la alta temperatura puede acelerar la replicación de un microbio y al mismo tiempo causar estrés en el huésped, reduciendo así su resistencia. No olvidemos que el estrés juega un papel muy importante en la susceptibilidad de los peces hacia las enfermedades infecciosas. Los peces silvestres, en condiciones normales, viven en perfecto equilibrio con los agentes patógenos que son endémicos, dentro de su área geográca, por lo que la aparición de un brote natural es raramente observada, salvo si ocurren grandes cambios ambientales. Los peces mantenidos en cautiverio con frecuencia se ven afectados por condiciones ambientales adversas (temperatura o química del agua) y por prácticas de manejo inadecuado (superpoblación), que pueden provocar en la mayoría de los peces un estrés muy signicativo para sus mecanismos de defensa. Algunos agentes patógenos de los peces son sumamente virulentos y pueden causar enfermedad aun en instalaciones muy bien manejadas, y muchas enfermedades se ven aumentadas por el estrés. También se sabe que, aunque si bien muchas especies de bacterias patógenas oportunistas están presentes en el agua de los estanques o acuarios, no aparecerá un brote de enfermedad, a menos que la calidad de los factores ambientales o el sistema de defensa de los peces se haya deteriorado. La mejor manera de prevenir estos brotes es a través de un excelente manejo. Recordemos que hay varios tipos de de enfermedades que afectan a los peces: ❏ Enfermedades infecciosas: son causadas por microorganismos, ya sea los presentes en el medio o los que son transportados por otros peces, los cuales provocan enfermedades generalmente contagiosas y, en algunos casos, es necesario un tratamiento a base de medicamentos especícos para controlar el brote infeccioso. ❏ Enfermedades bacterianas: generalmente son infecciones internas y requieren el suministro de
PARTE 2 - CAPÍTULO 3
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medicamentos a través de la comida o en forma de baños. Los peces afectados por éstas mostrarán hemorragias petequiales o úlceras a lo largo del cuerpo y alrededor de la boca y los ojos. Asimismo, pueden presentar abdomen distendido y exoftalmia. Las enfermedades bacterianas también son externas y dan como resultado erosión de la piel y ulceración. Columnaris es un ejemplo de una enfermedad bacteriana externa que es causada por un incorrecto manejo. Enfermedades virales: es prácticamente imposible distinguir entre enfermedades bacterianas y enfermedades virales sin un examen adecuado de laboratorio. Estas últimas son de muy difícil diagnóstico y no hay medicamentos especícos para tratarlas. Enfermedades parasitarias: frecuentemente son originadas por microorganismos llamados protozoarios, que viven en el medio acuático. Hay una variedad de protozoarios que infectan las branquias y la piel de los peces, éstos provocan irritación, pérdida de peso y, eventualmente, la muerte. La mayoría de las infecciones por protozoarios son relativamente fáciles de controlar mediante químicos de uso común, como el sulfato de cobre, formalina o permanganato de potasio; o bien, con medicamentos especícos contra parásitos. Enfermedades fúngicas: es muy frecuente encontrar esporas de hongos en el medio acuático, pero generalmente no causan enfermedad en los peces sanos. Cuando un pez es infectado por una bacteria o un parásito externos, o ha sido herido por un mal manejo, los hongos pueden colonizar los tejidos dañados en la parte externa del pez. Estas áreas aparentan tener una zona algodonosa o aparece una coloración marrón cuando el animal es extraído del agua. El permanganato de potasio, la formalina y el yodo povidona son efectivos contra la mayoría de las infecciones fúngicas, ya que los hongos son generalmente un problema secundario; sin embargo, es importante diagnosticar el problema original y corregirlo.
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Metodología diagnóstica en peces
Enfermedades no infecciosas: en contraste con las anteriores, éstas son causadas por factores ambientales, que incluyen incorrectas prácticas de manejo, inadecuada calidad de agua, deciencias en la nutrición, ya sea por una dieta inadecuada o por un mal acopio de los alimentos; o anomalías genéticas. Estas enfermedades no son contagiosas y usualmente no pueden ser contrarrestadas con tratamientos a base de medicamentos. Hay que tener en cuenta que pueden provocar grandes pérdidas si se mantienen por un periodo prolongado. ❏ Enfermedades ambientales: constituyen las más numerosas en la acuicultura intensiva y en el acuarismo en general; son causadas por factores ambientales, como bajas concentraciones de oxígeno en el agua, altas concentraciones de amoniaco, altas concentraciones de nitritos o de toxinas naturales o articiales en el medio acuático. Las técnicas apropiadas en el manejo de la calidad del agua permitirán la prevención de la mayoría de este tipo de enfermedades. ❏ Enfermedades nutricionales: son muy difíciles de diagnosticar; los peces afectados por éstas pueden sufrir diversos trastornos, como malformaciones óseas, anemias, retardo en el crecimiento, despigmentación, erosión de las aletas, hemorragias, trastornos en la coagulación, letargia, trastornos del equilibrio, inltración grasa hepática y deformaciones. Algunas condiciones suelen desaparecer cuando la nutrición ineciente es corregida o reemplazada por una nueva alimentación. ❏ Enfermedades genéticas: incluyen rarezas en la conformación, entre otras: falta de cola o la presencia de una cola extra. La mayoría de estas anormalidades son de mínimo signicado; sin embargo, es importante incluir peces nuevos que no estén emparentados con los que ya se cuenta y disminuir de esta manera los riesgos de endogamia. Hay que recordar que las enfermedades no infecciosas pueden actuar sinérgicamente con agentes infecciosos, provocando grandes pérdidas. ❏
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Metodología diagnóstica de la abeja melífera Angélica G. Gris Valle Adriana Correa Benítez Daniel Prieto Merlos
GENERALIDADES IMPORTANCIA DE LA APICULTURA EN MÉXICO L una actividad pecuaria que tiene gran importancia social, económica y ecológica. En ella se estima la participación de 40 000 apicultores y cerca de 500 000 personas dependen de esta actividad, como los proveedores de equipo apícola, envasadores, exportadores de miel, etc. El inventario apícola en 2004, según datos proporcionados por el Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP), el cual, a su vez, maneja información de las delegaciones de la Secretaría de Agricultura Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (SAGARPA), estima 1 745 078 colmenas. Se calcula que 80% de estas colmenas son manejadas por campesinos que perciben bajos ingresos, a los cuales la venta de miel, polen, jalea real, propóleos y cera les permite una mejoría en la economía familiar, repercutiendo positivamente en su nivel de vida. Cada año se exporta miel y cera con valor aproximado a 60 millones de dólares, siendo la miel el tercer producto de origen pecuario que ingresa más divisas al país. La polinización de cultivos es la actividad más importante en la apicultura, ya que el efecto polinizador de las abejas en los cultivos agrícolas, de acuerdo con la Food and Agriculture Organization (FAO), tiene un valor 20 veces superior a la producción de miel.
F 1. Cultivo de girasol polinizado por abejas.
Metodología Diagnóstica Veterinaria
IMPORTANCIA DE LA METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN ABEJAS
Existe una diversidad de enfermedades conocidas de las abejas melíferas (Apis mellifera L.), por lo cual resulta necesario que el médico veterinario aprenda a reconocerlas y diferenciarlas de algunos predadores o problemas de toxicosis. Entre los predadores que afectan a las abejas y pueden ocasionar un fuerte debilitamiento de la colonia y en consecuencia la muerte de éstas, encontramos: insectos (lepidópteros, dípteros, coleópteros, odonatos, isópteros, ortópteros, himenópteros), arácnidos, aves, anbios, reptiles y mamíferos, entre los que destacan algunos lepidópteros, como la polilla mayor de la cera (Gallieria mellonella), la polilla menor de la cera ( Achoria grisella) y un coleóptero encontrado en 1998 en Estados Unidos, conocido como el pequeño escarabajo de la colmena ( Aethina tumida), de cuya presencia en México, en el ejido San Carlos del municipio de Jiménez, estado de Coahuila, se informó el 25 de octubre de 2007.
Las enfermedades de la cría así como de las abejas adultas, se clasican a su vez, según el tipo de agente etiológico en: ❏ ❏ ❏ ❏
Bacterianas Fungales Virales Parasitarias
Aunque en México no existen estadísticas conables sobre los daños que ocasionan a la economía nacional las enfermedades de las abejas, se tiene el conocimiento de que los principales padecimientos que debe controlar un apicultor en México son: varroosis, loque americana, cría de cal y cría de piedra.
ASPECTOS BIOLÓGICOS BÁSICOS EN UNA COLONIA DE ABEJAS, RELACIONADOS CON LA METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA
Hay que tomar en cuenta que las abejas no pueden ser diagnosticadas de manera individual, como se hace con un perro, una vaca, un caballo, etcétera. El diagnóstico en las abejas se realiza de forma poblacional, por colonias. Éstas se encuentran integradas por una reina, obreras y zánganos, y su población varía de acuerdo con la época del año; es decir, la población de abejas puede variar desde unas pocas abejas obreras, 10 000 cuando no es época de oración, hasta cerca de 60 000 en época de oración. Los zánganos se en cuentran principalmente durante la época de oración; como máximo puede haber 10%, en relación con la población de obreras presentes en la colonia.
F 2. Aethina tumida (a) adulto y (b) larva.
Las enfermedades de las abejas se clasican en enfermedades de la cría y de las abejas adultas. Las enfermedades de la cría revisten particular importancia, ya que de no tratarse a tiempo una colonia enferma, las pérdidas económicas pueden ser muy grandes; las afecciones de las abejas adultas en ocasiones se confunden con toxicosis, las cuales pueden ser causadas, de acuerdo con la clasicación de Bailey, por azúcares venenosos, venenos vegetales y plaguicidas o insecticidas.
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F 3. El diagnóstico en abejas se realiza observando a todos los miembros de la colonia.
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
En cada panal se repite un determinado orden en la disposición de la cría y provisiones. Las celdas para las crías forman una supercie ovalada en la parte inferior del panal; una cría sana siempre se verá de color blanco perlado y tendrá una distribución simétrica, compacta, olor sui generis (fresco), sea abierta o cerrada; la cría abierta debe ser turgente, de color blanco perlado, mientras que la cría cerrada (operculada) tendrá una tapa de cera porosa y convexa. En la primera franja, situada por encima de estas celdas, las abejas colocan polen como alimento proteínico. Más hacia fuera se encuentran las reservas de carbohidratos, en forma de miel o néctar. Así, las abejas encargadas de cuidar a las crías disponen siempre, en inmediata proximidad, de suciente cantidad de alimento para sus protegidas. En una colonia sana la población de abejas adultas trabaja en armonía, sus movimientos son seguros y se observa organización en la composición del nido. La cría debe ser simétrica, compacta. La colonia habita dentro de una colmena, que puede ser de tres tipos: silvestre, rústica o tecnicada. La colmena tecnicada más utilizada en México es de tipo jumbo y consta, de abajo hacia arriba, de piso, cámara de cría, alza(s), techo interno y techo externo o telescópico. Es en la colmena tecnicada donde podemos percatarnos de las enfermedades de las abejas. Cada piso se construye con tres bordes más elevados, de forma que quede un estrecho espacio horizontal bajo el borde de la cámara de cría, para formar la entrada o piquera. La cámara de cría y las alzas son cajas de madera dentro de las cuales son colocados bastidores con cera estampada para la formación de los panales por parte de las abejas, en los que almacenarán miel y polen, así como a su cría en diferentes fases de desarrollo. Las alzas se apilan simplemente una sobre otra, proporcionando el espacio preciso para que las colonias se desarrollen y almacenen miel. Sólo con el empleo de bastidores con panales móviles el apicultor puede descubrir la existencia de enfermedades en la colmena y atender a su curación sin tener que romper los panales y la colonia.
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Metodología diagnóstica de la abeja melifera
Zánganos: estos individuos pueden ser aceptados en cualquier colonia durante la oración, lo cual incrementa la transmisión de enfermedades de las abejas adultas por contacto directo a grandes distancias. Enjambrazón: es un comportamiento natural de las colonias, que ocurre en la época de oración. Para que esto suceda, las obreras deben criar varias reinas en celdas reales, y poco antes de que las futuras reinas salgan de sus celdas, la reina madre, con la mitad de la población de obreras, sale en busca de un nuevo lugar para instalarse. Las abejas del enjambre pueden transmitir diferentes enfermedades. La comida que llevan consigo, al transportarla en el buche melario o en las corbículas, puede contener gérmenes patógenos, como algunas esporas de bacterias y hongos, así como virus, que llegan a través de las glándulas hipofaríngeas.
F 4. Los enjambres pueden transportar enfermedades a largas distancias. ❏
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FACTORES QUE INTERVIENEN EN LA TRANSMISIÓN DE ENFERMEDADES
Existen diferentes factores que desempeñan una función importante en la transmisión de enfermedades en las abejas melíferas, entre los que destacan los siguientes:
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Evasión: el enjambre puede abandonar su colonia por falta de alimento en su entorno, o porque las condiciones de manejo son desfavorables. El grupo que emigra también puede ser transmisor de muchas enfermedades, y a su vez dejar expuesta a la cría a una muerte irremediable, que se convertirá en un foco transmisor de enfermedades. Deriva: es un comportamiento en el cual las abejas, al querer retornar a su colmena, se equivocan y entran a una colmena vecina o cercana, por lo tanto, pueden convertirse en un foco transmisor de enfermedades. Pillaje: las abejas, al no tener alimento en su entorno, buscan cualquier fuente que contenga altas
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
concentraciones de azúcares. Lo buscan en las proximidades de sus colmenas o en otras, si es necesario, por lo cual, las colmenas fuertes (con una gran población de abejas) en ocasiones roban alimento de las que se encuentran débiles y enfermas, y de esta manera llevan la enfermedad a su colmena, con lo que pueden incluso convertirse en un foco transmisor de enfermedades.
manejo inadecuado en el proceso de extracción; esta miel no siempre es recolectada ni almacenada adecuadamente, lo cual facilita que se contamine con diferentes agentes patógenos, y al ser usada en la preparación del alimento y dosicarla en el apiario la enfermedad se distribuye. La miel para alimentar las colonias también puede proceder de colonias enfermas, por lo cual, el apicultor debe de tener cuidado al implantar prácticas de alimentación con miel y cuidar que ésta proceda de colonias sanas.
F 5. Abejas pillando una colonia. ❏
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Compra de colonias, núcleos o paquetes de abejas: cuando éstos proceden de apiarios enfermos o con bajo control de enfermedades, al introducirlos en las colonias en el apiario pueden convertirse igualmente en un foco transmisor de enfermedades. Equipo apícola contaminado: hay que tener cuidado en la transferencia de panales con cría o alimento para el fortalecimiento de las colonias, ya que si proceden de una colonia enferma se estará provocando la dispersión de enfermedades en el apiario. Además de esto, se debe cuidar el almacenamiento del equipo, destruir los panales con signos de enfermedad, porque pueden contaminar la cera de los panales adyacentes, y al momento de introducirlos nuevamente en una colonia se inducirá la enfermedad. Alimento contaminado con miel procedente de colonias enfermas: este es uno de los factores comunes de transmisión de enfermedades, ya que para la alimentación de las abejas en ocasiones el apicultor utiliza la miel que no pudo vender por un
F 6. Transfiriendo panales de una colmena a otra. ❏
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Unión de colonias débiles y enfermas con colonias fuertes: cuando va a iniciarse la oración, es común que las colonias débiles se unan con colonias fuertes para optimar los recursos en el apiario, sin embargo, hay que asegurarse de que la colonia débil no esté enferma, de lo contrario, las enfermedades se transmitirán a las colonias sanas al realizarse las uniones. Manejo inadecuado por parte del apicultor: otra práctica del apicultor es el manejo rutinario de las colonias, en las cuales se emplea la cuña para desprender las diferentes partes de la colmena; si la colonia está enferma y revisamos otra colonia con la misma herramienta, lo que haremos es distribuir las enfermedades. Para evitar esta diseminación, la cuña debe ser ameada en el ahumador después de revisar una colonia enferma.
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
HISTORIA CLÍNICA ANAMNESIS En la anamnesis o recopilación del historial clínico en apicultura, debe obtenerse la siguiente información:
F 7. La entrevista debe ser clara y precisa para poder realizar el análisis de la información.
LUGAR Y FECHA ❏
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Datos generales del propietario: son todos los datos del propietario: nombre, dirección, municipio, estado, teléfonos y fax. Datos generales del apiario: nombre del apiario, ubicación, municipio, estado, número de colmenas en el apiario, número de apiarios, número de la o las colonias afectadas. Interrogatorio: en la entrevista con el apicultor se deberá reunir la siguiente información: Motivo por el cual solicita la intervención del médico veterinario zootecnista ¿Con que periodicidad se revisa el apiario y cuándo fue la última vez? ¿Qué se ha observado en las colonias? ¿Ha disminuido la producción de miel? ¿Se han detectado olores anormales en la colmena o en el apiario? ¿Cuándo comenzaron a presentarse los signos en las colonias? ¿Cuántas colonias están siendo afectadas? ¿Cuándo empieza la oración en el lugar donde están instaladas las colmenas? ¿Cuál es el manejo que ha recibido la colonia? (alimentación, control de pillaje, enjambrazón, revi-
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Metodología diagnóstica de la abeja melifera
siones rutinarias, fortalecimientos, uniones, tratamientos, etc.) ❏ ¿Cómo se encuentran instaladas las colmenas? ❏ ¿Cuándo fue la última vez que se sustituyó a la reina? ❏ Si hubo reemplazo, ¿De dónde se obtuvo la reina? ❏ ¿Ha ingresado algún enjambre al apiario? ❏ ¿Las colonias presentan signos de robo por parte de otras colonias? ❏ ¿Ha notado que algunas colonias aumentaron grandemente de población? ❏ ¿Ha notado que las colonias han disminuido la población drásticamente? ❏ ¿Existen cultivos cercanos? ¿Cuáles? ¿A qué distancia? ❏ En caso de que no exista agua alrededor o ora ción: ¿Lleva agua al apiario? Nota: Es importante analizar cada respuesta antes de manejar las colonias.
INSPECCIÓN
DEL APIARIO Antes de llegar al apiario se deben observar las condiciones climáticas, vericar la disponibilidad de agua, polen y néctar con la que cuentan las colonias, así como la instalación de las colmenas.
CONDICIONES CLIMÁTICAS DE LA ZONA La temperatura ambiental ideal para instalar un apiario es de 26 a 28 oC, ya que si la temperatura externa es superior, las abejas no saldrán a trabajar por tener que enfriar la colmena y si es inferior, igualmente no saldrán a trabajar por tener que calentarla, ya que la colonia debe permanecer entre 32 y 35 oC para que exista una adecuada incubación de la cría. Una temperatura mayor o inferior dentro del nido causará la muerte de la cría, provocando debilitamiento de la colonia y predisponiéndola a padecer enfermedades. Hay que revisar si el ambiente del lugar donde se instale la colmena tiende a almacenar mucha humedad, ya que ésta, en exceso, es inconveniente. En colmenas poco pobladas, puede producirse un enmohecimiento de las celdas inferiores o laterales en los panales de la cámara de cría (donde se encuentra la cría de zángano). Es frecuente que las colmenas ubicadas en lugares muy húmedos se desarrollen lentamente y por ello resulten más propensas a presentar
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
enfermedades de naturaleza fungal, ya sea en la cría o en las abejas adultas.
F 9. Revisión de la pileta de agua para las abejas.
F 8. Lugar con excesiva humedad (Tres Marías, Morelos).
La época en que se presenta la enfermedad es de suma importancia, ya que la colonia disminuye la población al terminar la oración y normalmente al comenzar las lluvias, que es cuando las colonias empiezan a desarrollarse rápidamente y se evidencian las distintas enfermedades, algunas de las cuales son autorreguladas por las abejas por medio de su comportamiento, y otras, como las enfermedades de la cría, se intensican conforme aumenta la cría, lo cual induce a la reina a incrementar su postura. No hay que olvidar que las colonias de abejas no son individuos domésticos, las abejas deben dejarse en el campo y realizarse en ellas manejos adecuados para evitar el debilitamiento de una colonia y por consiguiente la aparición de enfermedades. La disponibilidad de agua es necesaria para las colonias, ya que deben contar con un ujo continuo de agua limpia a no más de 200 metros de su colmena, pues las abejas necesitan diluir la miel almacenada para poder alimentarse. Si no hay fuente natural de agua cerca de la colmena, se pueden instalar bebederos articiales, los cuales deben mantenerse limpios y situarse fuera de la dirección principal de vuelo de las abejas, en un lugar lo más soleado posible y al abrigo del viento, estos bebederos pueden representar un peligro, puesto que a su vez pueden transmitir enfermedades.
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La disponibilidad de polen y néctar es un punto de gran importancia para la salud de la comunidad, pues únicamente las abejas bien nutridas pueden construir la colmena y cuidar a otras abejas, a la vez que disminuye su probabilidad a presentar enfermedades. Por tanto, deberá procurarse que las abejas tengan una buena disponibilidad de polen (proteínas) y néctar (carbohidratos) de forma natural, o bien, proporcionarles alimento en épocas de escasez.
F 10. Condiciones néctarpoliníferas de la zona.
INSTALACIÓN DE LAS COLMENAS El terreno donde se instalen las colmenas deberá ser preferentemente plano, con una inclinación no mayor de 45º, para evitar encharcamientos y pendientes prolongadas. Los encharcamientos predisponen a las colonias a enfermedades de naturaleza fungal o parasitaria, mientras que las pendientes prolongadas pueden ocasionar que la colmena se caiga de la base y las abejas queden expuestas a las inclemencias del ambiente.
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
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Metodología diagnóstica de la abeja melifera
colonias a que no padezcan enfermedades fungales. La distancia entre colmenas deberá ser de dos a tres metros para evitar problemas de pillaje y deriva. Por lo tanto, la correcta instalación de las colmenas deberá ser revisada.
F 11. El terreno donde se encuentren las colmenas deberá ser plano preferentemente.
Como se mencionó anteriormente, existe una serie de compuestos químicos capaces de matar a los insectos o, como mínimo, debilitarlos; sobre las abejas ejercen su acción tóxica algunos venenos vegetales como el polen y el néctar de muchas especies de plantas, o bien, diversos azúcares venenosos, como el piloncillo, la melaza, la miel calentada o vieja, o incluso la sacarosa hidrolizada, por lo que es recomendable evitar alimentar a las colonias con azúcares que puedan provocarles intoxicación, y mantener a las abejas alejadas de lugares donde puedan existir estos azúcares, así como de plantas que puedan causarles intoxicación, ya que al haber escasez tenderán a recolectarlos. Asimismo, debe atenderse a la posible vecindad de contaminaciones industriales. Dentro de lo posible hay que evitar que en los cultivos vecinos se apliquen plaguicidas o insecticidas. Se debe tener en cuenta también la densidad de población apícola existente (la cantidad de abejas en la zona); un apiario no debe contener más de 30 colmenas, y cada apiario debe estar distanciado uno de otro por lo menos 3 km. La densidad de la población apícola naturalmente inuye, no sólo en la disponibilidad de alimento en las colonias, sino también en la transmisión de enfermedades. A medida que aumenta la población, se acentúa la posibilidad de pillaje y deriva. En la instalación de las colmenas debe considerarse que no deben ser colocadas directamente sobre el suelo; por lo menos debe existir una separación de 20 a 30 cm entre el piso de la colmena y el suelo. Cada colmena debe tener además una pendiente de inclinación de la piquera del 4 al 5%. El cumplimiento de las dos condiciones anteriormente citadas, ayudarán a las
F 12. Deberá revisarse la correcta instalación de la colmena. La distancia del suelo al piso de la colmena deberá ser de 20 a 30 cm.
F 13. Revisando la correcta instalación de las colmenas.
A la entrada del apiario se debe observar el comportamiento de las abejas que se encuentran fuera de las colmenas, ver si existe alguna anormalidad, como pueden ser vuelos erráticos de las abejas pecoreadoras, abejas con temblores o dando giros a la entrada de la colmena, abejas muertas o débiles alrededor de las colmenas o en la piquera, ya que estos datos ayudan para tener una idea del estado del apiario en general, sin tener que abrir las colmenas aún. Observar la parte superior de la piquera buscando deyecciones color café, que nos pueden dar indicios de diarrea en las abejas de la colonia, o mortandad excesiva de abejas o cría
315
Metodología Diagnóstica Veterinaria
momicada (en forma de gis) a la entrada de la colmena o en el suelo, frente a la colmena.
a amear la cuña para evitar diseminación de enfermedades. La revisión de una colonia debe realizarse en forma sistemática, cada quince días en época de escasez de alimento, revisando los siguientes puntos:
F 14. Revisión de la piquera. F 16. Colmena tecnificada tipo jumbo.
F 15. Cría en forma de gis a la entrada de la colmena.
También es importante ver el ujo de abejas que entran y salen de las colmenas, así como observar la piquera para ver si hay posibles peleas con abejas de otra colonia (signos de pillaje). Todo lo anterior nos va a proporcionar información para decidir por dónde iniciar la revisión de las colonias, comenzando con las sanas y terminando con las colonias enfermas para de esta forma evitar la diseminación de enfermedades.
REVISIÓN DE LA COLONIA La revisión de una colonia deberá comenzar por aquellas que observemos a simple vista que están sanas y seguir con las menos enfermas, hasta terminar con las colonias que sospechemos más enfermas. Cada vez que se revise una colonia enferma se deberá proceder
316
F 17. Panal en bastidor con la distribución caracteristica. ❏
Existencia de la reina: en cada colonia existe una reina y no es necesaria la observación de ella para conrmar su existencia, pues ésta se comprobará al encontrar en cada una de las celdas del centro del bastidor un huevo colocado en el centro. En algunos casos de enfermedades parasitarias o virales puede existir la reina sin que se encuentre postura,
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
por lo cual habrá que buscarla y eliminarla, sustituyéndola por una reina proveniente de un criadero certicado.
❏
Metodología diagnóstica de la abeja melifera
ción) y por ello será más susceptible a padecer enfermedades. La cantidad de zánganos dependerá de la época de oración, si no es época de oración no debe haber cría de zángano y durante la época de oración, no más de 10%. Si se encuentra mayor porcentaje de cría de zángano puede tratarse de una reina zanganera u obreras ponedoras (obreras que depositan huevos) y debe remplazarse a la reina o hacer una división, con la nalidad de que la colonia sobreviva.
F 18. Al revisar una colonia es necesario confirmar la presencia de la reina, ya que de ella depende la sobrevivencia de la colonia. ❏
Postura y calidad de la reina: se determina observando el centro de los bastidores de la cámara de cría y revisando que la cría operculada tenga forma elíptica y sin muchos espacios vacíos (buena calidad de postura o buen patrón de postura), ya que la reina comienza la ovoposición en el centro del panal, siguiendo hacia las partes laterales, formando una elipse bien denida cuando la cría se encuentra operculada.
F 20. Mal patrón de postura. ❏
Enfermedades de la cría y de las abejas: si se observa gran cantidad de cría muerta, posiciones anormales de la cría, en estado de putrefacción, con colores anormales o consistencia anormal se tratará de enfermedades en la cría de las abejas, y si las abejas adultas están alopécicas, débiles, con el abdomen distendido o las alas desarticuladas se tratará de enfermedades de las abejas adultas. Sólo la varroosis y cría de piedra afectan indistintamente a la cría y a las adultas. Los signos característicos de cada una de las enfermedades se muestran en el cuadro 1 y 2.
F 19. Buena calidad de postura de la reina. ❏
Necesidad de cambio de reina: de encontrar muchos espacios vacíos (mal patrón de postura) o más de un huevo por celda (reina vieja o enferma, o bien, obreras depositando huevos, se deberá reemplazar a la reina, por otra comprada a criadores de reinas certicados, ya que una reina enferma jamás podrá desarrollar una colonia populosa (con gran pobla-
F 21. Signos de enfermedades en la cría (opérculos perforados o sumidos, cría amarillenta).
317
Metodología Diagnóstica Veterinaria
s e l a r i V
. r e a l l u b o g d n e ó r i r n i o c n c a r ó o i s o f c l u u r e c b i r p r é t s p i D O
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318
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a l e d a b e u r P : o i o r . l l o i l t e t a a r n p o a l g b l e a o d l c a n a b e t e y o u r o g P p m a c n e s o n g i S
o c i t s ó n g a i D
a n i c i m a r r e T
o p i u q e e d n ó i c c e f n i s e d , o d a e m a l F
o t n e i m a t a r T
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
. s , e y a o o , o s t d o d o n , i s d s a i t a a n r a o r , s r n s j a d i u e p t g s s l o e b n t i s e ) a u l i o a e s v b i t n e l r i q e v ( r o v t i r n A t s l e . o p r o e d i r i i r n o p s s m e l a b n u d e n a p a , l s d i l a á g n n r t o a e o r e a c s i s e e a i e d b d d i a n n m c u s e d a l i n s t r t A a o o e p q r n a x a o b c d i e i p r l l e a b p d n e r e ó e u f r T v a t m
s e l a r i V
o t o a n l l e e i c z i n o l a e m s b o , o c o r t s t a i a i n l d z , i o c n l i r e i a b t c o e A r m o e l c d
s i s o m e s o N
s , o a o a d s d x o r n , d e o a i a i n a r t g e r , s a d s a n z s n p ó d e i s s l a a a n e l a e n T t a o e r r e . o ( R p j t e v r f t r l t e t o i b . m o r i s s ) e d i i s u s t e a o s v d e e a b n u d m r s a á g n d a a o a t a n s l r p r d c e e s n s i a p i a r l e u s a l a j s l s l n n m e e i m e b i u o r r o A a o o b q r d l i l b e p b c d a r o o p e y f a b p v n a a m l e
y n i l e h e o i g d i c p o n g l l ó ó a u i l c í c o M r a i t e t v r e d n e e s e s t o v b n l u O e b g ú a t
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o o . i n s s n , o s d a o a d ” a c e y d n r g o a t t r r a g y m r n u o a t i e l d u e c s s s i r u i e n i s d n c f s d s m e i u n a a l o o i e s n p s r t á a e r e r v j s r a o m j e a e e l s e p n o b m o d A o c b u e “ d b A m d a b e a d
s o c o e i n i d s í l r n o c o r t ó s a i o r o c f ó n o a i c d g b i i a i s l t n o n n o p e e c y d i m a C
e n o t d o c n n s i e ó j a i c e m o c b a c e a t r i l n e e o i é S d p g . i o s m h j o e e p c n i r o a t t s l M e a
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a s n e o n . l a d s o l o r a , l o r e s a s r u h l a e o c o c l y l r i o t t t o e n n v r e n r c l a e o t e u e a l s e d d i n d m s s e E r . f a e e s a d u d s e e d P o m t n a e c i a i l a j s n l . p a p e m , e o i o s o e a b b m m s c a t o l r r d i e u n s o i a e e c h t N L s d á f l a y
o o a o r o s d i r l l d d a e a r e y a n j o t t d e o u s i a a o c b d r r n i c l t a a i n e o b ó r e s i g i e t b a l m ó d n d a c d r a l n i l a j a o c i ó m o s l e t i d t a o e i d c c e a a m o n s t e c a n u o r t r e t d e d c a e c x f i d l i i n e n e o n u n c e g r í e c l l é a p c e o e T n r i
o e d b i c a á r a ó j l a e n n i c e i o m c a i r r r í t e c T
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S A T L U D A S A J E B A S A L E D S E D A D E M R E F N
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y s s r s e a a t d t n i a a l n v o a i E i d i e n c n . i r u r o a r a c r t c g i a e n ú n b b e a z c a m r n a s a a o e n o J c d c c
s e a t r e i n c c e i m g r á r a p o l l t e e s d n a n e e u ó i o q c á c i a g r t v r ó e e l o d s i r b t O e a p
A ( S A T L U D A S A R E F Í L E M S A J E B A S A L E D S E D A D E M R E F N E S A L E D O T N E I M A T A R T Y O C I T S Ó N G A I D , S O C I N Í L C S O N G I
e d . l a a s l a e e i c b g d e n n c u n é r e ó T A p n i c . S I y ó i c d s s u a L d u d E o f v i o e i t l d r m u e p e r e C d R f n e
s a n i r t e m u l F
s a i r a t i s a r a P
A R E F I L L E M S I P
Metodología diagnóstica de la abeja melifera
e t s n l a e e j g e e a r b l b a e o s a d s l n o e c d ó i i c g o a ó l p v o r r i e t e s e u b c O
s i s o o r r a V
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❏
s s s e o a n r l a e i o c á d c a o s n p r m o e r e l u o n m c l l a o f a v e r d b e a m , n s l s b e a e o j e e n S e b a l o y a e , l r t s o o a o i r n , d o p v g i s i r e o s s d a l a a t o r e n n n d p ( d s a o e t a l e n s s ) e t r r c o v e e a s f r i u p d e t o d i n l s d d a s n u m e x a l a i l r g á a d i d c e n s d t r r i e i a n o ó s b s n s j u T l a a n m o e l a b r . l o b i A b o a r e o e a c d b o u t s v a m q a e i p p d
s s o o c i n n g í i l S c
a e s i a c d l j n e a e r b i r e a a n s p e a l A g
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
❏
Cantidad de provisiones (miel y polen): la provisión
se lleva a cabo por los panales laterales de la cámara de cría (cachetes), y se debe tener por lo menos dos bastidores con alimento para el mantenimiento de la colonia.
Falta de espacio en la cámara de cría y falta de alzas: esto se realizará cuando la población de la colonia lo indique; entre menor sea la población, menor será el número de alzas que requiera la colmena, pudiendo prescindir de alzas, y viceversa. Si la colonia cuenta con mucho espacio (exceso de alzas) padecerá frío y estará predispuesta a enfermedades fungales y muerte de la cría; si por el contrario, cuenta con poco espacio, es posible que enjambre. Las abejas indicarán la falta de espacio construyendo panales en cualquier hueco dentro de la colmena (falsos panales), celdas reales, o bien, tenderán a aglomerarse en el exterior de la colmena (barba).
F 22. Provisiones de alimento (polen). ❏
Necesidad de alimentación y curación: si la cantidad de alimento no es la adecuada y no hay oración, deberá procederse a alimentar a la colonia, o de lo contrario padecerá hambre, se debilitará, y estará predispuesta a enfermedades. Las colonias de abejas melíferas pueden alimentarse con jarabes hechos con azúcar morena y agua, pastas hechas con azúcar morena y miel, sustitutos o suplementos de polen. Si se percibe un signo de cualquier enfermedad, deberá alimentarse y medicar a la colonia, teniendo en cuenta que es necesario suspender cualquier medicamento por lo menos dos meses antes del ujo de néctar para evitar contaminación de la miel y la cera.
F 23. Alimentando una colonia con jarabe y pasta.
320
F 24. Falsos panales, los cuales indican falta de espacio en la colmena.
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO El diagnóstico presuntivo se basa en los datos recabados durante la historia clínica (entrevista con el apicultor e interrogatorio), revisión del apiario (condiciones climáticas e instalación de las colmenas) y revisión de la colonia; es importante para determinar qué muestra enviar al laboratorio. En las enfermedades que afectan a las abejas, es necesaria la correcta interpretación de los factores mencionados para poder plantearnos un diagnóstico presuntivo; así, podemos pensar en enfermedades de la cría, abejas adultas o envenenamientos; y con base en esto, tomar una muestra para poder obtener un diagnóstico denitivo. Las enfermedades de la cría pueden diferenciarse observando los signos clínicos en su medio natural, muchas veces sin tener que acudir al laboratorio. Estas muestras sólo se envían al laboratorio con la nalidad de hacer una identicación exacta del tipo del agente
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
que está causando la enfermedad (diagnóstico denitivo). Así pues, en el cuadro 1 se muestran los signos que presenta la colonia, el diagnóstico y tratamiento para cada tipo de agente etiológico que afecta a la cría de las abejas melíferas. En las enfermedades de las abejas adultas el diagnóstico no puede realizarse con base en los signos clínicos que presenta la colonia, en este caso debemos enviar una muestra al laboratorio para un diagnóstico de la causa de la enfermedad; con excepción de una enfermedad de tipo parasitario que afecta a las abejas melíferas llamada varroosis, ya que en este tipo de enfermedad en ocasiones se observan ácaros (parásitos externos) sobre el dorso o parte ventral de las abejas, los cuales son de color marrón, aplanados dorsoventralmente y poseen cuatro pares de patas, aunque no siempre son visibles, sólo se observan en infestaciones altas. En el cuadro 2 se muestran los signos clínicos que presenta la colonia, así como el diagnóstico y tratamiento, dependiendo del origen de la enfermedad. En casos de envenenamiento los signos se presentan de acuerdo con la toxicidad del producto, sean azúcares venenosos, venenos vegetales o diferentes tipos de plaguicidas e insecticidas (clorados, fosforados, piretroides, entre otros). Los signos varían desde una leve mortandad en una colonia, hasta la afectación de todo el apiario. Si el producto no es muy tóxico: encontrará abejas muertas en la entrada de la colmena (piquera), lentas, paralizadas, que no pueden volar, defensivas y con diarrea. ❏ Si el producto es altamente tóxico: mueren en la colmena, por lo cual, en ésta disminuye la población, aunque haya una gran cantidad de cría en la colmena. Los signos de intoxicación se pueden confundir con las enfermedades de las abejas adultas; por ello deben enviarse muestras al laboratorio para tener el diagnóstico denitivo. En caso de que la colonia presente predadores como polillas, los signos se encontrarán únicamente en colonias muy débiles y se observará gran cantidad de larvas destruyendo los panales para alimentarse de la cera, capullos formados en los bordes de los bastidores, insectos adultos en el interior de la colmena. Los signos, en el caso del pequeño escarabajo de la colmena, son similares: con gran cantidad de larvas en los ❏
❏
Metodología diagnóstica de la abeja melifera
bastidores, alimentándose de la miel procedente de la colonia; no hay presencia de pupas pues el escarabajo empupa en el piso frente de la colmena, y observaremos numerosos escarabajos adultos cuya característica principal es el color marrón de su cuerpo y las antenas en forma de mazo.
TOMA DE MUESTRAS PARA ANÁLISIS DE LABORATORIO
IDENTIFICACIÓN Y CONSERVACIÓN DE LA MUESTRA Independientemente de lo que se sospeche, todas las muestras deben acompañarse del nombre y dirección del propietario, nombre del apiario, número de la colmena, municipio y estado, teléfono, fax, así como la fecha de colección y el nombre de quien lo recolectó. Con base en el diagnóstico presuntivo procederemos a colectar la muestra. La toma y envió de las muestras al laboratorio para su diagnóstico debe hacerse de una manera adecuada, con el n de obtener un diagnóstico preciso e implantar un tratamiento adecuado. Si se sospecha de una enfermedad en la cría es necesario recolectar panales de cría: la forma adecuada es seccionando un panal que básicamente contenga cría en todos los estados de desarrollo y se corta una muestra de 10 × 10 cm 2, donde se pueden apreciar con claridad los signos que se presentan en la cría muerta (cambios de color, consistencia, etc.). La muestra debe mantenerse en refrigeración durante el envió; primero se envolverá en papel de estraza, periódico u otro material que permita la ventilación, y luego será introducida en una caja de cartón con el refrigerante y perfectamente identicada. El tiempo para el diagnóstico no deberá exceder 48 horas, o será imposible la identicación del agente patógeno debido a una probable contaminación bacteriana. Si sospechamos de enfermedades en las abejas adultas, la muestra debe ser de por lo menos 200 abejas, colectadas en la piquera de la colmena sospechosa, o bien, de los bastidores laterales de la cámara de cría. Las abejas se mandan en un envase pequeño de plástico (150 mL) que contenga alcohol de uso común al 70%, aproximadamente tres partes de alcohol de 96° y una parte de agua. Deberán mantenerse lejos del sol y en lugares templados hasta su análisis, en un tiempo no mayor de 2 meses.
321
Metodología Diagnóstica Veterinaria
Si se sospecha de un envenenamiento, el diagnóstico sólo puede realizarse en el laboratorio; en caso de que fuesen agroquímicos, la anamnesis será muy valiosa, ya que desafortunadamente no se cuenta con laboratorios que tengan la infraestructura en equipo y personal especializado para la determinación del químico causante de la intoxicación. Para esto hay que reunir 1 000 abejas muertas y colocarlas en un frasco. Si se sospecha cuál es la causa de los daños, deben remitirse 100 g de material vegetal y colocarlo en otro envase. El análisis deberá hacerse lo más pronto posible, sin exceder las 24 horas. En el caso de predadores, nos guiaremos por los signos clínicos, o bien, en caso de sospechar del pequeño escarabajo de la colmena, éste deberá ser enviado al laboratorio de diagnóstico en un vial que contenga alcohol al 70 por ciento.
INTEGRACIÓN DEL DIAGNÓSTICO Integrar signica juntar, es decir, debemos analizar toda la información con la cual obtuvimos nuestro diagnóstico presuntivo y compararla con los resultados de laboratorio; es como ir reuniendo las piezas de un rompecabezas hasta llegar nalmente a un diagnóstico denitivo.
DIAGNÓSTICO DEFINITIVO Resulta de integrar las piezas anteriormente mencionadas. Una vez obtenidos los resultados del laborato-
322
rio, y apoyándose en la historia clínica, se van descartando o aceptando las hipótesis iníciales, con lo que se obtiene el diagnóstico denitivo.
F 25. La observación e identificación del agente causal en el laboratorio nos llevará al diagnóstico definitivo. Acarapis woodi en la tráquea de la abeja. 40X. . Yireli Calvete
TRATAMIENTO Una vez que se cuenta con el diagnóstico denitivo y dependiendo del tipo de agente, procedemos a proporcionar el tratamiento. Los hay a base de antibióticos, químicos de síntesis, ácidos orgánicos y aceites esenciales orgánicos, así como químicos cuyos principios activos son: cloro, fósforo, piretroides y amidinas; su administración puede ser por vía oral en el jarabe, sólida, por nebulización y de contacto.
PARTE 2 - CAPÍTULO 4
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Metodología diagnóstica de la abeja melifera
> Literatura consultada
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Alins C. Enfermedades y enemigos de las abejas. Barcelona: Alins Casagran Elias, 1989.
❚
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Cornejo LG, Rossi C. Enfermedades de las abejas. Buenos Aires: Hemisferio Sur, 1975.
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañía y de granja Carlos Alberto Tena Betancourt Félix Eduardo Tena Betancourt Miguel Ángel Martínez Castillo
INTRODUCCIÓN E salud de los conejos, como el de cualquier otro animal, es producto de la e ciencia de sus mecanismos homeostásicos, pues a pesar de que el animal entre en contacto con agentes infecciosos o que esté expuesto a ambientes adversos, puede ser que se conserve saludable, si es que funcionan adecuadamente sus mecanismos de defensa. Sin embargo, cuando los animales enferman, el médico veterinario zootecnista (MVZ) tiene que llevar a cabo una evaluación integral de la situación y, si es posible, un examen clínico cuidadoso y completo, con el propósito de conocer la naturaleza de la afección y establecer un tratamiento ecaz, para así, posteriormente, adoptar las medidas necesarias de vigilancia que impidan que en el futuro el problema se vuelva a presentar. Es importante mencionar que durante mucho tiempo, en nuestro medio se ha identicado al conejo sólo como un animal de granja; sin embargo, debe reconocerse que en los últimos años poco a poco también ha ido constituyéndose de manera signicativa como un animal de compañía. Esta aseveración es necesaria, dado que, si bien los problemas de salud del conejo de granja han sido resueltos más o menos de manera eciente, la atención dirigida al conejo de compañía es un área relativamente nueva para el MVZ que practica la clínica.
PARTE 2 - CAPÍTULO 5
❏
Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL CONEJO
EL CONEJO COMO ANIMAL DE COMPAÑÍA
El conejo doméstico (Oryctolagus cuniculus) es un animal que conserva muchas características siológicas y etológicas de su antecesor, el conejo silvestre, debido a que tiene relativamente poco tiempo de haber sido domesticado (siglo ); además posee muchas particularidades de su vida reciente en libertad: tiene hábitos crepusculares, es un herbívoro, con fermentación cecal, que practica la cecotroa o cecofagia; la hembra amamanta una sola vez al día y por un periodo muy corto (5 minutos en promedio), maniesta ovulación inducida (al igual que los demás lagomorfos, los mustélidos, los camélidos, los insectívoros y muchos carnívoros), por lo que no tiene un ciclo estral de duración regular; es una hembra poliéstrica continua, aunque en ambientes adversos cae en anestro durante el invierno. Carece de glándulas sudoríparas y su principal órgano termorregulador son sus grandes orejas. Es un animal fácilmente depredable por carecer de mecanismos de defensa ecientes. Ante las agresiones de sus adversarios se limita a huir efectuando desplazamientos muy rápidos, pero sumamente cortos, por su precaria capacidad respiratoria, y ante el enfrentamiento inevitable intenta arañar y morder. Es un animal muy asustadizo, nervioso y susceptible a experimentar distrés, tanto agudo como crónico; el distrés agudo demanda una respuesta inmediata que conduce al animal “a la pelea o a la huída”, y el conejo lo experimenta cuando percibe la presencia de un depredador, de personas extrañas, de eventos súbitos, de movimientos intempestivos, etcétera. El distrés crónico es experimentado por el conejo cuando es obligado a permanecer en ambientes hostiles, como estar alojado cerca de avenidas o carreteras muy transitadas, estar expuesto a voces y ruidos diversos durante la mayor parte del día, visualizar y estar al acecho de depredadores potenciales, etcétera. El distrés crónico estimula la liberación prolongada de glucocorticoides, especialmente de corticoesterona, lo cual incrementa su riesgo de padecer enfermedades desencadenadas por infecciones crónicas. Además del distrés, otro factor adverso muy importante que puede afectar el estado de salud del conejo es la alimentación a la que esté sometido y su alta dependencia de niveles de bra en la dieta.
Se dice que el perro es “el mejor amigo del hombre”; sin embargo, dentro del mismo afán de autocomplacencia, variabilidad y sosticación, el hombre ha integrado a muchas otras especies como animales de compañía, entre las que destacan los gatos domésticos, una gran variedad de roedores –como el hámster, el ratón y la rata–, mustélidos –como el hurón–, reptiles saurios –como el camaleón, la lagartija y la iguana–, reptiles quelónidos –como la tortuga–, anbios –como la rana– y lepóridos –como el conejo–. El conejo es un animal de carácter vivaz, alerta y nervioso; es fácil de manejar y responde siempre de manera favorable al trato seguro y amable. Existen muchas razas de conejos, con una gran diversidad de colores y de tallas. Como animal de compañía, el conejo adquiere una connotación muy diferente de aquella que se le conere como animal de granja. El valor apreciativo es sustancialmente mayor por la estrecha relación que se establece entre éste y el dueño. Es importante hacer notar que el conejo como animal de compañía puede vivir hasta 10 años, o probablemente más, dependiendo de la calidad de vida que se le proporcione y, por esta razón, puede presentar enfermedades que el conejo de granja nunca manifestará, debido a que su periodo de vida productivo es bastante más corto (de dos a tres años, en el caso de los reproductores). Muchas enfermedades requieren un tiempo considerable para manifestarse; algunos agentes infecciosos demandan circunstancias muy especícas para establecerse; numerosas alteraciones patológicas son consecuencia de la convivencia estrecha con otras especies animales y todo esto sólo es posible observarlo en el conejo como animal de compañía. Tal es el caso de un sinfín de enfermedades cardiovasculares, endocrinas, degenerativas, tumorales, inmunológicas, urinarias, etcétera. También es importante tener en cuenta que cuando un conejo de compañía enferma, deberá ser atendido tan rápido como sea posible y dirigir todo el esfuerzo para rehabilitarlo, muchas veces sin importar la identicación precisa de la causa que lo aqueja; sin embargo, cuando se maniesta una enfermedad en los conejos de una granja; curiosamente lo más relevante no es atender por separado a cada uno de los conejos enfermos, sino conocer la etiología precisa del trastorno padecido para tomar medidas co-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
rrectivas y proteger al resto de los conejos de la nave o la granja (la colectividad).
EL CONEJO DE COMPAÑÍA ENFERMO Cuando este tipo de conejo enferma o maniesta algún trastorno, es llevado al consultorio para que el MVZ aplique un examen clínico, diagnostique y aplique el tratamiento adecuado para el restablecimiento completo del paciente. El examen clínico es el procedimiento sistemático a través del cual el médico tiene la posibilidad de diagnosticar o conocer la alteración o enfermedad que afecta a un paciente. Llevar a cabo un examen clínico adecuado requiere no sólo de la revisión propiamente dicha del animal enfermo, sino demanda también la supervisión del ambiente que lo circunda: condiciones de alojamiento, alimentación, manejo, etcétera. Todas las observaciones importantes al respecto deben compilarse cuidadosamente para su análisis exhaustivo para formular un diagnóstico. La posibilidad de que el médico realice un diagnóstico certero dependerá de la sistematización adecuada para reunir y analizar las evidencias que el trastorno o enfermedad provoca en el animal, sin embargo, esto no siempre es posible debido a limitaciones prácticas, técnicas y, con frecuencia, presupuestarias.
pero también habilidad y pericia para percibirlos. El signo es toda manifestación objetiva de enfermedad, casi siempre cuanticable y perceptible por el médico. La técnica de diagnóstico clínico requiere la aplicación racional de conocimientos precisos y esfuerzos intelectuales, ambos sustentados en la experiencia clínica. Por esto, la metodología diagnóstica es una parte esencial de la medicina veterinaria, ya que brinda al médico las herramientas necesarias para elaborar un diagnóstico conable; ésta consiste en el procedimiento sistemático y especíco para la obtención de información, el análisis exhaustivo de la misma y la deducción clínica con base en evidencias para identicar la enfermedad que presenta el conejo.
ELEMENTOS CLAVE PARA LA APLICACIÓN CORRECTA DE LA METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN EL CONEJO COMO ANIMAL DE COMPAÑÍA ❏ ❏
❏ ❏ ❏ ❏
❏ ❏
Reseña e historia clínica. Examen físico general y especial (por aparatos y sistemas). Lista de problemas. Lista maestra. Diagnóstico presuntivo. Obtención de muestras y solicitud de pruebas de laboratorio. Integración de resultados. Diagnóstico denitivo.
RESEÑA E HISTORIA CLÍNICA La atención clínica de un conejo, al igual que el de cualquier otro animal de compañía, comienza con la elaboración de una reseña y la obtención de una historia clínica adecuada. Para lograrlo puede diseñarse un formato general que haga más ordenada, precisa y conable la captura de datos relativos al paciente. Se propone un formato similar al siguiente (adaptado y modicado por los autores, del texto original de Flecknell, 2000): ❏
F 1. Revisión clínica de un conejo enfermo en un consultorio veterinario.
Durante el examen clínico, la obtención de información a partir de los signos requiere conocimientos,
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Datos del propietario del animal de compañía
Nombre: Dirección particular: Teléfono particular:
Fecha: Dirección laboral: Teléfono laboral:
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Datos del conejo
Nombre: Raza: Color: Fecha de nacimiento o edad aproximada: Sexo: Origen (tienda para mascotas, granja, etcétera): ¿Es el único ejemplar? En el caso de tener otros conejos, especique también sus características. ❏
Datos sobre otros animales de compañía (si es el caso)
Especie(s): Edad(es): Origen(es):
❏
Datos relativos a su alimentación
Tipo de alimento consumido: Natural o industrializado. Si es alimento natural, especique e indique la cantidad proporcionada por día. Si es alimento industrializado, especique la marca y la cantidad proporcionada por día. ¿Ha cambiado últimamente de alimento? Si cambió de alimento, describa aquel que proporcionaba anteriormente. ¿Proporciona algún tipo de suplemento alimenticio (vitaminas, minerales, tónicos, prebióticos, medicamentos, etcétera)? especique. Cantidad de agua ingerida por el conejo al día. ¿Ha incrementado o disminuido últimamente su consumo de agua?, ¿desde cuándo?
Estado(s) de salud: ¿Convive(n) estrechamente con el conejo? ❏
Datos inherentes a su hábitat
¿Está connado a una jaula o vive en completa libertad dentro de la casa?
❏
Historia clínica
Describa brevemente el problema de salud de su conejo. ¿Ha observado descarga nasal u ocular de parte del conejo?
Si está connado a una jaula, especique las dimensiones de la misma.
¿El conejo ha modicado su ingestión de alimento y de agua? ¿Desde cuándo?
Describa brevemente las condiciones ambientales circundantes a la jaula.
¿Ha observado que el conejo practique la cecotroa (consumo de sus propias excretas)?
Si el conejo vive en libertad dentro de la casa, ¿a qué áreas tiene acceso?
¿Ha observado cambios en el tamaño y apariencia de las excretas?
¿Ha experimentado daño alguno dentro de la casa? especique.
¿Ha observado cambios con respecto a la cantidad de excremento y de orina expulsados por el conejo?
Describa el bebedero y el comedero utilizados por el animal.
¿Cuál es el color de la orina?
¿El animal es expuesto al humo generado por los fumadores? (si se aplica).
¿Ha observado cambios en su pelaje?
Si el animal tiene acceso al jardín, descríbalo brevemente.
¿Ha escuchado vocalizaciones poco comunes en el conejo?
¿En el jardín ha observado ratas, ratones, tuzas, etcétera, o evidencias de su presencia?
¿Desea hacer algún otro comentario relevante para la salud de su conejo?
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
Una vez que se han obtenido todos los datos correspondientes, se procederá a evaluar clínicamente al conejo enfermo.
EXAMEN FÍSICO Aproximación al conejo: dado que el medio para transportar a un conejo al consultorio comúnmente es una caja o jaula de plástico, es importante la forma en que el MVZ se aproxima a él: es aconsejable la aproximación en sentido vertical (desde arriba), pues el conejo adoptará una actitud de sumisión, agachándose y depositando todo su cuerpo en el piso. La aproximación horizontal y, sobre todo, la frontal, permitirá que el conejo se sienta más seguro e intente defenderse mediante arañazos o mordidas. Conviene señalar que el conejo posee un esqueleto sumamente frágil y que es indispensable una manipulación rme y decidida, pero cuidadosa al mismo tiempo. Una sujeción inadecuada puede provocar que el conejo se caiga y se fracture. Debe enfatizarse que dependiendo del tipo y gravedad de la enfermedad padecida, el conejo maniesta un estado alterado de su comportamiento. La evaluación física del enfermo deberá efectuarse bajo condiciones ambientales estables, preferentemente de tranquilidad y conanza, pues ante cualquier disturbio, el conejo se pondrá nervioso y no cooperará para la revisión correspondiente; además, también pueden alterarse su comportamiento y sus valores siológicos. Bajo situaciones contrarias, el animal puede escaparse y, en consecuencia, lesionarse gravemente. Siempre deberá tenerse una actitud cordial con el animal y hacer todo aquello a nuestro alcance para tranquilizarlo y lograr que se muestre relajado. Es conveniente depositar al conejo en una supercie rugosa de plástico o sobre un tapete tipo alfombra, para que se sienta seguro; ante conejos muy nerviosos será aconsejable también que el MVZ tape gentilmente con su mano los ojos del animal hasta que éste se tranquilice. Revisión general de la parte dorsal del cuerpo: una vez que el animal ya esté tranquilo, deberá procederse a revisarle todo el dorso, evaluando la calidad del pelaje (brillo, sedosidad, caída al contacto); se deslizará la mano a contrapelo para revisar la piel y la probable existencia de descamaciones a manera de “talco” o “caspa”, pues esto puede ser indicativo de la presencia de ácaros (Cheyletiella parasitivorx). También se revisará toda la capa del animal para detectar zonas alo-
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pécicas y diferenciarlas de áreas afectadas por ectoparásitos o por hongos; también pueden ser producto de autofagia o tricofagia inducidas por deciencias nutricionales, falta de bra en la dieta o como consecuencia de malos hábitos.
F 2. Sujeción apropiada del conejo.
F 3. Sujeción inadecuada del conejo. ❏
Registro de la temperatura corporal y ausculta ción cardiorrespiratoria: es recomendable evaluar la temperatura corporal al principio del procedimiento de revisión clínica; para lograrlo, primeramente debe sujetarse al conejo de manera tal que quede inmovilizado sobre una supercie adecuada en decúbito dorsal; entonces se introduce el termómetro lubricado y adecuado al tamaño corporal, por vía rectal, y se dirige dorsalmente para que entre en contacto con el epitelio rectal. Después se facilita la incorporación del conejo y se le permite que se apoye sobre sus cuatro extremidades. Para auscultar el corazón, es conveniente utilizar
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
el fonendoscopio (la campana del estetoscopio), ya que la presencia del pelaje puede provocar interferencia durante los movimientos respiratorios naturales. El fonendoscopio se dirige al tercero y cuarto espacio intercostal en la parte izquierda del tórax. En seguida se desplaza también sobre toda la supercie corporal correspondiente a la zona pulmonar, para tratar de identicar signos respiratorios. Revisión de la cabeza: debe observarse cuidadosamente la posición que guarda la cabeza con respecto al espacio: siempre deberá mostrarse erecta, sin tendencia a inclinarse de un lado u otro, lo cual estaría indicando problemas diversos (otitis media, sarna psoróptica, afección previa con pasteurelosis, disfunciones nerviosas, etcétera). Los ojos deberán ser siempre prominentes y brillosos. Las orejas deberán manifestarse siempre erectas y receptivas (con excepción de los conejos Belier o Lops). Es necesario vericar que el pelaje sea homogéneo en toda la cara, especialmente alrededor del hocico y de los ojos. La carencia o presencia irregular de pelo alrededor del hocico puede ser provocada por ácaros, hongos o por un acceso dicultoso al comedero. La falta de pelo alrededor de la comisura interna del ojo indica que ha habido frotamiento constante de la zona, por lagrimeo excesivo o por irritación local; puede ser un indicio de pasteurelosis, de alta concentración de amoniaco en el ambiente o de la obstrucción temporal del conducto nasolagrimal (trastorno frecuentemente observado). Debe constatarse la presencia de moco en la nariz, ya que ésta es un fuerte indicativo de problemas respiratorios imputables casi siempre también a la pasteurelosis. Las orejas deben estar limpias interna y externamente; debe comprobarse la ausencia de descamaciones y secreciones epiteliales en su parte interna, especialmente en aquella muy próxima al oído, pues el caso contrario puede ser indicativo de la presencia de ácaros (Psoroptes cuniculus). Es aconsejable utilizar un otoscopio. Es probable que la revisión de la cabeza se facilite si inmovilizamos al conejo por medio de un contenedor o cepo adecuado.
F 4. Conejo inmovilizado mediante un cepo o contenedor. ❏
Revisión de la boca: para este procedimiento será conveniente sedar o tranquilizar al animal mediante la administración de los productos adecuados. Se revisarán los dientes, especialmente los incisivos, pues su sobrecrecimiento puede deberse a problemas genéticos (maloclusión), alimentarios (dieta carente de dureza), nutricionales (desbalances minerales), etc. Si el animal experimenta sialorrea puede deberse a que el epitelio oral esté irritado o lacerado, o haya un objeto atorado entre los dientes.
F 5. Conejo con maloclusión. ❏
Revisión del cuello: debe realizarse minuciosamente, tratando de identicar, mediante palpación directa, masas o agrandamientos que pudieran corresponder a abscesos, adenitis o neoplasias, o simplemente a la manifestación de linfonodos inamados. La alopecia padecida en la región de la nuca puede ser consecuencia de la presencia de ácaros. Es muy importante la revisión de la papada en las razas en las que ésta es característica, especialmente en la hembras adultas, debido a la alta
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
incidencia de dermatitis en las áreas profundas de los pliegues que se forman; es un problema muy común en la raza Nueva Zelanda, y un poco menor en la California; esta dermatitis con frecuencia es resultado del exceso de exposición a la humedad de la región del cuello, producto de bebederos au-
tomáticos disfuncionales o de la excesiva salivación observada durante el sobrecrecimiento de los dientes incisivos. Cuando el animal presenta zonas de la piel excesivamente húmedas, alopécicas y con tonalidad azul-verdosa es muy probable la infección con Psudomonas aeruginosa.
VALORES CLÍNICOS DE REFERENCIA EN EL CONEJO DE RAZA NUEVA ZELANDA BLANCO* Principales datos biológicos
Rango considerado normal
Constantes siológicas:
Temperatura corporal, °C Frecuencia respiratoria/minuto: ❏ Conejo de 1.0 kg ❏ Conejo de 2.5 kg ❏ Conejo de 4.5 kg Frecuencia cardiaca/minuto: ❏ ❏ ❏
Conejo de 1.0 kg Conejo de 2.5 kg Conejo de 4.5 kg
Volumen sanguíneo total, % peso corporal Hemograma y analitos selectos Eritrocitos/1012/L, promedio macho adulto promedio hembra adulta 9 Leucocitos/10 /L promedio macho adulto promedio hembra adulta ❏ Neutrólos, % ❏ Linfocitos, % ❏ Basólos, % ❏ Monocitos, % ❏ Eosinólos, % Plaquetas/mm3 Hematocrito L/L, promedio macho adulto promedio hembra adulta Hemoglobina g/L Proteínas séricas, g/L Albúmina, g/L Glucosa sérica, mg/dL Colesterol, mg/dL Características de la orina: Volumen de excreción, mL/kg de peso corporal pH Proteínas Glucosa Bacterias *Fuente: M.A. Martínez, 2004.
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38.5 – 40.0 40.0 – 80.0 35.8 – 58.0 30.0 – 50.5 180 – 360 150 – 320 120 – 280 7-8
6.66 6.15 8.35 6.90 40 – 50 40 – 50 3–7 3 – 10 0.5 – 3.0 300-600 X 10 3 .42 .40 116 – 148 38 – 75 27 – 46 125 – 145 35 – 50
35 – 40 7.8 – 9.0 Negativo – trazas Negativo – trazas Negativo - raro
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
Revisión de la región ventral del animal: para lograrlo, se sujetará la piel dorsal al nivel de la nuca, incluyendo las orejas, y el resto del cuerpo se descansará sobre el antebrazo, apoyándose en una mesa. Deben revisarse las glándulas mamarias y vericar que no presenten irritación o inamación (mastitis). Aprovechando esta posición del animal (decúbito dorsal), se revisan los genitales (vulva, prepucio, pene), el ano, la zona perineal, la cual, por cierto, si llegase a presentar costras es probable que el conejo padezca de treponematosis. Asimismo, deben observarse las plantas de los miembros pélvicos, para identicar a tiempo la pododermatitis, también llamada “mal de patas”, y tomar medidas correctivas. También se revisan las uñas y, si hace falta, se recortan. Percusión abdominal: en el conejo es especialmente importante percutir el área epigástrica derecha para valorar la resonancia del ciego. Para ello será necesario que un ayudante del MVZ sujete al conejo, de tal manera que todo el dorso del animal descanse sobre el pecho y el abdomen del ayudante, el cual, al mismo tiempo, inmovilizará con una mano los miembros torácicos y el pecho del paciente, y con la otra, contendrá el abdomen bajo y las partes proximales de los miembros pélvicos del conejo. Al respecto, debe mencionarse que los conejos alimentados con niveles adecuados de bra maniestan una zona de resonancia (sonido mate) restringida, pero en aquellos sometidos a dietas pobres en bra y ricas en almidones fácilmente fermentables se incrementa al doble o más la supercie de resonancia, con consecuencias digestivas ya evidentes. En contraste, es importante hacer notar que muchas enfermedades digestivas conducen a un incremento de contenido líquido en el ciego, resultando con ello una reducción signicativa de la resonancia epigástrica.
LISTA DE PROBLEMAS Con base en el examen físico aplicado al paciente, y apoyándose en la historia clínica, el MVZ elaborará una lista de los problemas detectados y establecerá entre ellos una correlación apropiada que conduzca a la obtención de la lista maestra. Bajo una situación hipotética, un ejemplo de lista de problemas podría ser la siguiente: 1. Presencia de moco en ollares.
2. Estornudos frecuentes. 3. Secreciones oculares abundantes. 4. Ligera inclinación de la cabeza hacia el lado izquierdo. 5. Desplazamiento inseguro y poco armonioso. 6. Crepitaciones. 7. Disnea leve. 8. Anorexia. 9. Pérdida de peso. 10. Depresión. 11. Fatiga.
LISTA MAESTRA A partir de la lista de problemas se establecerá una correlación para identicar los aparatos, sistemas, órganos, tejidos o áreas corporales afectadas. Por ejemplo: I. Crepitaciones (1, 2, 7) II. Alteración del equilibrio (4, 5) III. Anorexia (9, 10, 11) IV. Afección respiratoria (1, 2, 3, 6, 7, 10, 11) La presencia de moco, los estornudos, el lagrimeo, los crepitaciones y la disnea nos sugieren una afección del aparato respiratorio; pero la leve inclinación de la cabeza puede deberse a una incipiente otitis infecciosa, o estar relacionada con la infestación auditiva avanzada por Psoroptes cuniculi, o por una encefalitis incipiente provocada por la encefalitozoonosis, lo cual es reforzado por el desplazamiento incoordinado. La evidente pérdida de peso nos indica que el proceso patológico tiene carácter crónico. La anorexia, la depresión y la fatiga son signos poco especícos y pueden ser provocados casi por cualquier trastorno signicativo.
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO Con la información obtenida a partir de los cuatro puntos anteriores, y tomando en cuenta que aún resta considerar la obtención de muestras, la solicitud de pruebas de laboratorio, la integración de los resultados y el diagnóstico denitivo, se puede identicar la causa probable de la enfermedad padecida y establecer un diagnóstico presuntivo sucientemente sustentado en evidencias clínicas, que permitirá al MVZ tomar decisiones. En primer lugar, el MVZ considerará si la información obtenida es suciente para aplicar medidas correctivas y establecer un tratamiento terapéutico. Es probable que el curso de la enfermedad padecida amerite la aplicación inmediata de medica-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
mentos, y si se obtiene el efecto esperado, el conejo se restablecerá y recuperará su estado de salud, concluyendo con ello la atención clínica del paciente. Esta situación, sin ser estrictamente la correcta, es muy común en el ámbito del conejo de compañía. Sin embargo, también es probable que el MVZ necesite más evidencias y entonces decida tomar muestras de material biológico para su posterior análisis en el laboratorio de diagnóstico.
sanguíneo. Dependiendo de la talla del animal, se utilizará una jeringa con aguja calibre 22 o menor; se introduce la aguja en un ángulo de 20 a 25º con respecto a la supercie de la oreja; una vez dentro del vaso se procede a extraer lentamente la sangre, previa supresión de la presión física sobre la base de la oreja. Si el volumen es mayor, podrá recurrirse a la vena yugular, previa sedación con diazepam. También puede puncionarse la arteria central auricular. Para información más especíca al respecto, es aconsejable revisar la bibliografía recomendada al nal de este capítulo.
OBTENCIÓN DE MUESTRAS Y SOLICITUD DE PRUEBAS DE LABORATORIO
A continuación se describen las técnicas para la obtención de muestras clínicas.
F 7. Detalle de la punción en la vena marginal de la oreja. ❏
F 6. Obtención de una muestra de sangre a través de la vena marginal de la oreja. ❏
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Obtención de sangre. Si el volumen requerido es menor a 1-2 mL, la sangre puede obtenerse fácilmente a través de la vena marginal de la oreja. Primero deberá inmovilizarse al animal mediante la utilización de un cepo o contenedor y colocarlo dirigiendo la cabeza y cara hacia el operador; después debe aplicarse alcohol sobre el área marginal externa del pabellón auricular para así visualizar la vena; posteriormente deberá aplicarse presión digital en la base de la oreja para obstruir momentáneamente la circulación y estimular la dilatación del vaso
Obtención de orina. Para obtener una muestra de orina, puede depositarse al conejo en una jaula que disponga de una charola limpia, misma que permita captarla. También puede optarse por sondeo, ameritando entonces la anestesia del animal e introduciendo una sonda uretral conectada a una jeringa para extraer la orina por succión; es muy importante utilizar la sonda con el calibre apropiado para evitar lesionar la uretra o inducir uretroespasmo en el semental. Puede también aplicarse la técnica de cistocentesis; para ello es necesario que la vejiga esté pletórica; es imprescindible anestesiar al conejo; posteriormente deberá rasurarse el pelo de la región púbica y preparase asépticamente. La vejiga debe localizarse por palpación y estabilizarse mediante los dedos; la aguja, calibre 23-25, conectada a una jeringa de 3-5 mL, deberá guiarse en dirección craneocaudal al interior de la vejiga y entonces extraer la orina desplazando el émbolo lentamente. Existe riesgo de provocar peritonitis.
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
Obtención de heces: pueden colectarse directamente del ano mediante la aplicación de presión ligera sobre el esfínter y toma directa a través de una pinza. Debe evaluarse el tamaño de la excreta y su consistencia, para deducir la cantidad de bra contenida en ella. Las heces deberán transportarse en solución salina siológica. También pueden colectarse indirectamente a través de una malla de alambre o de plástico colocada debajo de la jaula. Obtención de pelo: para la identicación de algunos ectoparásitos será recomendable tomar muestras de pelo. Simplemente, por tracción moderada se arranca el pelo y se coloca en un portaobjetos, depositando encima de la muestra un cubreobjetos. A veces es necesario obtener un raspado de piel para identicar a algunos ácaros. Obtención de otras muestras: contenidos purulentos superciales; secreciones oculares; secreciones orales anómalas; etcétera.
PRUEBAS DE LABORATORIO ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Bacteriología. Histopatología. Estudios coproparasitoscópicos. Hematología. Toxicología. Inmunología. Análisis de orina. Antibiogramas Otros.
INTEGRACIÓN DE RESULTADOS Consiste en recopilar toda la información obtenida (historia clínica, examen físico, lista de problemas, lista maestra, resultados de exámenes de laboratorio) y analizarla bajo criterios clínicos adecuados para llegar a la obtención de conclusiones válidas. Es probable que se conrme el diagnóstico presuntivo, pero también es posible que los resultados sugieran otro. En este punto, la experiencia clínica del MVZ es trascendente.
DIAGNÓSTICO DEFINITIVO Con toda la información obtenida, directa o indirectamente, el MVZ podrá integrar un diagnóstico denitivo, el cual le permitirá tomar decisiones respecto al enfermo. Podrá establecer el tratamiento que considere adecuado y ejecutará las medidas correctivas.
Esta es la metodología diagnóstica general que se sugiere para la atención de los problemas de salud del conejo como animal de compañía.
EL CONEJO COMO ANIMAL DE GRANJA La metodología diagnóstica dirigida a los conejos alojados en las granjas es muy distinta de aquella aplicada al conejo de compañía; por lo general, un solo conejo enfermo no amerita la asistencia veterinaria especializada. Cuando una parte de los conejos pertenecientes a una granja se enferman, generalmente la integración de un diagnóstico no está sustentada sólo en la revisión de los animales enfermos de manera individual, sino que requiere de una revisión escrupulosa de las instalaciones de la granja; la constatación de las condiciones ambientales que circundan a los animales; la ejecución de necropsias, aplicadas tanto a cadáveres adecuadamente preservados, como a animales enfermos sacricados ex profeso; el análisis de los procesos productivos y reproductivos a los que se somete a los conejos, etcétera. Dentro de las naves de las granjas, la “agresividad” o “benevolencia” de las condiciones ambientales constituye un factor favorable o adverso que inuirá sobre la conservación de la salud de los animales expuestos. Los factores zootécnicos, las medidas prolácticas generales y el control medioambiental en conjunto determinan en gran medida que los conejos se enfermen o no. Cabe mencionar que en nuestro medio las granjas comúnmente albergan a los conejos en todos sus estadios productivos: hembras reproductoras (gestantes, en lactación, vacíos), sementales, animales en engorda, recién destetados, animales de reemplazo, etcétera. Elementos clave para la aplicación correcta de la metodología diagnóstica en el conejo como animal de granja: ❏ ❏
❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Reseña e historia clínica. Ronda de evaluación: ubicación geográca y orientación de la(s) nave(s). Ronda de evaluación de instalaciones y equipo. Ronda de evaluación clínica. Etapas críticas. Ejecución de necropsias y obtención de muestras. Diagnóstico presuntivo. Integración de resultados. Diagnóstico denitivo y medicina preventiva.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
RESEÑA E HISTORIA CLÍNICA
❏
Es muy conveniente elaborar un cuestionario adaptable a todas las circunstancias, para obtener información general; se sugiere el siguiente: ❏
Datos del propietario de la granja
Nombre:
Fecha:
Dirección particular:
Dirección laboral:
Teléfono particular:
Teléfono laboral:
❏
Datos especícos de la granja
Dirección:
Teléfono:
Nombre del responsable de la granja:
Nivel de estudios del responsable:
Cantidad de naves:
Núm. de animales/nave:
Tipo (s) de jaula de alojamiento:
Sistema de distribución de jaulas:
Sistema de ventilación:
Sistema de iluminación:
Sistema de evacuación de excretas:
Periodicidad de la evacuación de excretas: ¿Cuenta con un área especíca para ejecutar necropsias? ¿Cuenta con rastro o matadero?
¿Disposición nal de las excretas? ¿Cuenta con área de cuarentena? ¿Cuenta con bodega de alimento? ❏
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Otras áreas:
Datos especícos del equipo de la granja
Tipo de bebedero:
Tipo de comedero:
Tipo de nidal:
Tipo de jaula de transporte:
Equipo de desinfección o descontaminación:
Equipo para identicar a los animales:
Equipo para el sacricio de los animales (si es el caso):
Otro. Especique.
Datos relativos a la alimentación de los animales
Tipo de alimento proporcionado (natural o industrializado):
Si es natural, especique:
Si es natural, indique el método de descontaminación.
Frecuencia de suministro:
Si es industrializado, especique marca y variedad.
Frecuencia de suministro: ¿Se ha cambiado últimamente de alimento?
¿Se raciona o se suministra ad libitum?
❏
Datos relativos a los animales alojados
Razas de conejos alojadas. Especifíquelas. ¿Existe separación entre el área de maternidad y la de engorda? ❏
Propósito de las razas alojadas:
Datos relativos a los animales enfermos
Describa brevemente el problema de salud de los conejos. ¿Con cuántos animales ¿Cuándo inició el problema? se inició el problema? Edad de los animales Cantidad de animales enfermos: enfermos: ¿El problema se ha ¿A qué tipo de animales dispersado? se dispersó? ¿Se ha aplicado algún ¿A qué dosis?, ¿durante tratamiento?, ¿cuál? cuánto tiempo? ¿Se han realizado necropsias? ¿Se han presentado decesos?, ¿cuántos? ¿Cuál es la disposición nal de los cadáveres?
¿Cuáles fueron los resultados relevantes? ¿Se conservó en refrigeración algún cadáver? ¿Hay algún comentario relevante al respecto?
RONDA DE EVALUACIÓN: UBICACIÓN GEOGRÁFICA Y ORIENTACIÓN DE LAS NAVES Tomando en cuenta los mecanismos homeostásicos propios del conejo, se inere que los climas templa dos o ligeramente fríos favorecen su producción, y los
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
cálidos lo afectan adversamente debido a su limitada capacidad para disipar el calor; sin embargo, esto no quiere decir que el conejo no pueda ser reproducido en lugares con clima tropical, pues para ello existen alternativas de construcción y equipamiento que permiten alcanzar niveles de producción aceptables. Cuando se pretenda ubicar una granja en una zona cálida, es necesario procurar que los vientos entren y ventilen las naves; arquitectónicamente, el eje longitudinal de la nave, o naves, según sea el caso, deben ser orientados de este a oeste. Si la granja se construye en una zona fría, deben evitarse a toda costa los vientos dominantes del norte y, por ello, el eje longitudinal de las naves deberá orientarse de sur a norte; con esto también se logra que los rayos solares incidan en las naves, pues su ubicación es perpendicular al desplazamiento natural del sol, de este a oeste.
F 8. Orientación adecuada de una nave bajo ambientes cálidos.
F 9. Orientación adecuada de una nave bajo ambientes fríos. Para climas templados pueden existir orientaciones intermedias, pero siempre deberá tomarse en cuenta la incidencia de los vientos dominantes y la presencia de barreras naturales.
RONDA DE EVALUACIÓN DE INSTALACIONES Y EQUIPO Técnicamente se denomina ronda a la revisión sistemática de animales, instalaciones y equipo para la identicación de las causas de la modicación del estado de salud de los animales alojados en una granja. Especícamente, la ronda de instalaciones y equipo consiste en la supervisión de la calidad de las instalaciones y lo adecuado del equipo para la producción de conejos en una granja. La ronda de instalaciones implica: la evaluación integral de la edicación de la construcción, la calidad de los acabados, la eciencia de los materiales utilizados, la calidad del ambiente interno, así como la distribución de las áreas constitutivas de la nave y la granja en general. También debe evaluarse la eciencia del equipo utilizado: limpieza y funcionamiento de comederos y bebederos; limpieza, integridad, tamaño y distribución de las jaulas de alojamiento; limpieza, tamaño y disponibilidad de nidales en la maternidad. Al evaluar la calidad de construcción de la nave, debe vericarse la impermeabilidad de los techos y su aislamiento térmico; la solidez y el acabado de las paredes; disposición de las ventanas y el tamaño de las mismas; la resistencia, impermeabilidad, inclinación y acabado de los pisos; la anchura de los pasillos; la disposición de los accesos y las medidas arquitectónicas consideradas para evitar el alto impacto interior de las condiciones ambientales externas, las medidas de bioseguridad; la calidad de la iluminación y la ventilación; el aislamiento con respecto al ruido, etcétera.
F 10. Naves para conejos.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
F 13. Sistemas eficientes de ventilación en naves cunícolas. F 11. Naves para conejos.
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Es importante hacer notar que el funcionamiento inadecuado de las instalaciones y el equipo en general, dependiendo de su impacto en los animales, puede provocar trastornos y desencadenar enfermedades diversas a los animales; por ejemplo: ❏
La altura excesiva de los techos en un ambiente frío propiciará que los animales estén expuestos a una temperatura inferior a la adecuada y entonces manifestarán problemas de termorregulación, especialmente los gazapos recién nacidos.
F 14. Muerte de gazapos por exposición a corrientes de aire.
F 12. Sistemas eficientes de ventilación en naves cunícolas. ❏
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La disposición inadecuada de las ventanas y la exposición a corrientes de aire intempestivas provocarán casos de neumonías agudas y muerte súbita de gazapos, especialmente aquellos en proceso de engorda.
La humedad excesiva y la ventilación inapropiada predispondrá a los animales a padecer problemas respiratorios y enfermedades fungales. La iluminación excesiva en conejos albinos puede provocar conjuntivitis y potencial daño en la retina.
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La acumulación de excretas y la remoción poco frecuente de las mismas, aunada a una ventilación inapropiada, propiciará el incremento de la concentración de amoniaco en el interior de la nave y estimulará la aparición de enfermedades respiratorias en las vías altas, por la parálisis de los cilios del epitelio respiratorio.
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
F 16. Ronda clínica. Procedimiento sistemático para evaluar a los conejos. F 15. Extracción de excretas mediante pala y carretilla.No es recomendable permitir su acumulación intranave. ❏
La exposición a ruidos constantes e intempestivos alteran la manifestación normal de la cecotroa, contribuyen a desencadenar procesos de canibalismo, abandono de las camadas por alteración de la galactopoyesis, etcétera.
RONDA DE EVALUACIÓN CLÍNICA. DETECCIÓN DE ANIMALES CON MANIFESTACIONES INCIPIENTES Y REVISIÓN FÍSICA DE LOS ENFERMOS. ETAPAS CRÍTICAS. La ronda clínica consiste en la revisión sistemática de los animales que constituyen la nave o la granja, con el propósito de identicar lo más pronto posible a los conejos que maniesten alguna alteración en su salud. Si el tiempo y las circunstancias lo permiten, es deseable revisar animal por animal. Se recomienda comenzar por los animales presumiblemente sanos y dejar hasta el nal a aquellos considerados enfermos, pues en sentido contrario se correría el riesgo de dispersar el problema, si tiene carácter contagioso. Es preferible que el examen físico de los animales enfermos se realice en un área especial o simplemente separada del resto de los animales; para llevarlo a cabo, síganse las mismas recomendaciones, detalladas de manera puntual en el examen equivalente del conejo como animal de compañía. En este punto es importante hacer notar que si el MVZ lo considera pertinente, podrá obtener muestras antes de sacricar al animal enfermo.
F 17. Ronda clínica. Procedimiento sistemático para evaluar a los conejos.
F 18. Auscultación cardiorrespiratoria del conejo en una mesa de trabajo de una granja.
Como ya se mencionó en la primera parte de este capítulo, muchas de las enfermedades que padecen los conejos de compañía tendrán escasa posibilidad de presentarse en los conejos de granja, por las razones
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
ya expuestas. Debido al periodo de vida tan corto de los conejos de granja, las enfermedades que los afectan constituyen un espectro muy estrecho y, puesto que las condiciones ambientales tienden a mantenerse dentro de cierto rango, los problemas de salud de los conejos de granja son muy similares, repetitivos y cíclicos, y se maniestan generalmente sólo en etapas críticas.
LAS ETAPAS CRÍTICAS EN LA CUNICULTURA ❏
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La primera semana de lactancia. Si la camada es muy grande (>8) y durante este lapso los gazapos pierden una o dos tetadas, probablemente morirán; si la coneja experimenta distrés intenso, abandonará a la camada; si padece mastitis, se negará a amamantar; si se asusta, puede ingresar súbitamente al nidal y matar a algún gazapo por aplastamiento, etcétera. El destete constituye una experiencia crítica para todo mamífero, y si es efectuado en condiciones desfavorables, los gazapos sufren de diarreas. El destete prematuro, la desintegración de las camadas al destete, la densidad animal inapropiada en las jaulas de crecimiento y los cambios bruscos ambientales y de alimentación constituyen los principales factores desencadenantes. Si bien las diarreas pueden tener diferentes orígenes, en esta etapa frecuentemente pueden estar asociadas a la infestación con coccidias. La semana previa al parto: una hembra próxima al parto se convierte en un animal sumamente susceptible a los trastornos de su salud y algunas etopatías. Las prácticas inadecuadas de alimentación, siempre importantes, adquieren más trascendencia antes del parto. Una reproductora obesa y sobrealimentada con una dieta pobre en bra es candidata a padecer toxemia de la preñez y a experimentar distocia. Una coneja próxima al parto sometida a distrés (disponibilidad inapropiada del nidal, falta de limpieza en su entorno inmediato, carencia de agua y alimento, exposición a ruidos intempestivos, etcétera) presentará canibalismo, sobre todo si es primeriza. El periodo de gestación y lactancia simultáneas. Dado el potencial aprovechamiento del estro posparto, el esfuerzo metabólico al que es sometido una coneja que gesta y amamanta al mismo tiempo es muy intenso, y si no se le proporciona la ali-
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mentación adecuada y se le expone a un ambiente apropiadamente controlado, es muy probable que muera durante el proceso. La exposición de los animales adultos a ambientes adversos. Los conejos adultos padecen con frecuencia problemas respiratorios, por diversas causas. La alta concentración de amoniaco intranave, la exposición a corrientes de aire súbitas y a ambientes polvosos con bajos niveles de humedad, el distrés crónico, etcétera, son causas desencadenantes de problemas respiratorios, casi siempre representados por pasteurelosis (Pasteurella multocida), probablemente la enfermedad más común en los conejos adultos.
EJECUCIÓN DE NECROPSIAS Y OBTENCIÓN DE MUESTRAS Otro rasgo distintivo entre la metodología diagnóstica aplicada al conejo de granja y aquella propia del conejo de compañía es que, en la primera, la práctica de necropsias constituye una parte fundamental. A través de las necropsias es posible identicar alteraciones macroscópicas en órganos y tejidos, muchas veces lo sucientemente signicativas como para establecer un pronóstico y un diagnóstico presuntivo de la o las enfermedades padecidas por los animales de la granja. Las necropsias podrán realizarse en cadáveres preservados de manera adecuada, pero será mejor ejecutarlas en animales recién muertos, o idealmente en conejos enfermos sacricados ex profeso; antes de aplicarles la eutanasia será recomendable tomar las muestras pertinentes.
F 19. Obtención de una muestra de moco nasal en un conejo de granja.
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Metodología diagnóstica en enfermedades y problemas de salud en conejos de compañia y de granja
F 20. Obtención de una muestra de heces en un conejo de granja.
Durante la necropsia el MVZ decidirá la conveniencia de obtener muestras de tejidos y solicitar los exámenes de laboratorio pertinentes. La utilidad del material biológico obtenido dependerá de la técnica de muestreo aplicada, del medio de preservación empleado y de la prontitud en el envío y el procesamiento del mismo. A diferencia de la metodología diagnóstica aplicada en el conejo de compañía, aquí el material para el diagnóstico estará constituido principalmente por muestras de tejidos y uidos diversos, colectados poco antes y durante la ejecución de las necropsias. Para la obtención de muestras a partir de conejos vivos y los exámenes de laboratorio que pueden ser solicitados, favor de consultar las técnicas descritas en la primara parte de este capítulo.
F 21. La necropsia en el conejo.
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO Con base en los cinco puntos anteriores, el MVZ podrá emitir un diagnóstico presuntivo muy probable, si se toma en cuenta que ha revisado conejos enfermos y ya cuenta con evidencias anatomopatológicas, obtenidas por medio de las necropsias realizadas. Dependiendo de la experiencia clínica del MVZ
especialista en cunicultura, la información obtenida será o no suciente para identicar la etiología y la enfermedad que padecen los conejos de la granja; el diagnóstico presuntivo le permitirá tomar decisiones respecto a la situación. Deberán corregirse las disfunciones del equipo e instalaciones, detectadas durante la ronda técnica correspondiente, para evitar la predisposición a la presentación de trastornos de la salud a causa del ambiente. Deberán cuarentenarse los animales con manifestaciones incipientes de enfermedad. Si es necesario y las evidencias acumuladas hasta el momento son sucientes, se aplicarán los medicamentos que se consideren adecuados y especícos. Si no hay suciente evidencia de las enfermedades padecidas por los conejos de la granja, se suministrará tratamiento de soporte y se esperarán los resultados de los exámenes de laboratorio.
INTEGRACIÓN DE LOS RESULTADOS Consiste en recopilar toda la información obtenida (historia clínica, rondas de evaluación, necropsias, resultados de los exámenes de laboratorio), analizarla objetivamente y llegar a conclusiones médicas, las cuales permitirán conrmar el diagnóstico presuntivo, o sugerirán otro.
DIAGNÓSTICO DEFINITIVO Y MEDICINA PREVENTIVA El análisis de la información permitirá obtener el diagnóstico denitivo. A nivel de granja, es muy importante conocer de manera precisa la etiología de la o las enfermedades padecidas por los animales, ya que de esta manera se podrán aplicar, primero las medidas correctivas, incluyendo un tratamiento especíco y, después, las medidas preventivas necesarias para impedir una nueva presentación de la enfermedad y corregir los errores de manejo y los factores ambientales predisponentes. Dentro de la medicina aplicada a grandes poblaciones, lo más importante es la colectividad y no precisamente el individuo; por ello adquiere tanta relevancia la medicina preventiva. Es probable que algunos aspectos de la metodología diagnóstica descrita en el presente documento diera someramente con aquellas aplicadas en otras especies, sin embargo, su esencia no cambia y el propósito es el mismo.
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Metodología diagnóstica en animales de laboratorio Carlos A. Tena Betancourt Eduardo Tena Betancourt
INTRODUCCIÓN E de cualquier problema relacionado con la salud de los animales, el médico veterinario debe llevar a cabo un cuidadoso y completo examen físico e historia clínica, los cuales consideran la información referente al pasado, las circunstancias inmediatas, el manejo, ambiente, alojamiento, además del comportamiento animal mostrado, entre otras facetas; lo anterior tiene la nalidad de llegar a conocer la naturaleza de la afección y poder así establecer un tratamiento ecaz, así como adoptar las medidas necesarias de vigilancia y control cuando sea posible. Hay que recordar que los datos clínicos son la base más segura para desarrollar la pericia; la aplicación sistemática de los métodos clínicos, aunada al conocimiento etológico del animal en cuestión, permite al médico veterinario conocer la diferencia entre un animal enfermo y uno sano.
F 1. Rata con signos evidentes de enfermedad.
Metodología Diagnóstica Veterinaria
Generalmente la enfermedad se maniesta con cambios en la estructura de un órgano o tejido, en su función o en el comportamiento del organismo; tales cambios pueden ser cuantitativos, cualitativos o ambos a la vez, y pueden ser descritos como signos clínicos de la enfermedad. El proceso de deducir a partir de estos signos la naturaleza de la enfermedad existente se llama “hacer un diagnóstico” . El diagnóstico debe basarse en una consideración racional de todas las características que presenta una situación anormal en la salud del individuo, aunada a una conclusión razonada. En ocasiones, en medicina veterinaria el diagnóstico se elabora a partir de experiencias anteriores; empero, este método puede fallar cuando los signos clínicos de una enfermedad son atípicos o se trata de una enfermedad nueva. Formular un pronóstico signica expresar una opinión respecto a la probable duración y desenlace de una enfermedad. Generalmente siempre existe un interés en el pronóstico, es decir, se desea conocer si es posible esperar una pronta mejoría o si el animal se restablecerá totalmente. Sin embargo, para el médico veterinario, la mayor importancia radica en el diagnóstico, ya que sólo su conocimiento le permitirá formular el pronóstico requerido y, cuando sea necesario, prescribir el tratamiento adecuado y establecer las medidas prolácticas oportunas. No siempre se logra establecer un diagnóstico exacto, es decir, determinar la causa y naturaleza de la anormalidad o enfermedad; por esto, en ocasiones se elabora un diagnóstico etiológico, en el cual se identica la causa de la enfermedad. Si la enfermedad no se puede precisar con certeza, se dice, entonces, que el diagnóstico es tentativo o presuntivo. Si existe un signo particularmente destacado, pero se desconoce el origen y la causa de la anormalidad primaria, se denominará diagnóstico sintomático, por ejemplo, la ictericia no es una enfermedad, sino sólo un signo clínico de varios trastornos que pueden ocasionarla, tales como la obstrucción del conducto biliar, anemias hemolíticas producidas entre otras causas por ciertas infestaciones protozoarias de sangre y algunas afecciones que causan lesiones al hígado.
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Existen muy pocos signos clínicos con los que, por sí solos, se pueda establecer un diagnóstico correcto, éstos constituirán los signos patognomónicos, por ejemplo: el pulso venoso positivo en la insuciencia de la válvula tricúspide, el prolapso de la membrana nictitante en el tétanos de equinos. Ahora bien, si sólo se tuvieran que tomar en consideración los signos patognomónicos, la técnica de diagnóstico clínico se denominaría fácilmente, sin embargo, como la mayoría de los signos pueden tener varias causas, el diagnóstico requiere en cada caso la aplicación de conocimientos precisos, junto con la experiencia práctica, de lo cual se deduce que el estudio de los signos y circunstancias presentes en una enfermedad (propedéutica clínica o metodología diagnóstica) es un antecedente necesario para realizar el diagnóstico. Por lo anterior, es importante conocer el comportamiento y la forma en que se presentan los signos y los métodos para poder ponerlos de maniesto o deducirlos, considerando su posible origen y función. De ahí que la metodología diagnóstica sea una parte esencial en la práctica de la medicina veterinaria, ya que brinda al médico las herramientas necesarias para poder complementar y emitir un correcto diagnóstico, inicialmente en forma de pronóstico o diagnóstico presuntivo, para que al complementar la información obtenida mediante evidencias, pueda integrar e interpretar los resultados para elaborar un diagnóstico denitivo.
F 2. Médico haciendo uso de la computadora para integrar información que le permita integrar el diagnónstico.
PARTE 2 - CAPÍTULO 6
ANTECEDENTES Es requisito indispensable establecer un correcto diagnóstico, basado en aquellos factores de manejo que afecten el bienestar y la productividad de los animales alojados en el bioterio. Por denición, el manejo es “Un conjunto de normas prácticas encaminadas a obtener una mayor producción, y proporcionar al animal el confort, seguridad y desarrollo corporal adecuado acorde a su n zootécnico”. Ya que las situaciones adversas ocasionarán disturbios que van a repercutir en un estado de estrés. A su vez el estrés puede ser denido como “Un conjunto de reacciones internas de tipo siológico, inmunológico y de comportamiento, que el animal pone en funcionamiento como respuesta a cualquier factor externo al organismo, que intente modicar su estado de bienestar psicofísico u homeostasis, alejándolo de su estado normal”. De acuerdo con Stott, los factores contrarios al bienestar animal, que intervienen en la presencia de estrés pueden ser clasicados desde cinco aspectos:
FACTOR HUMANO Quizás el más importante de todos, en vista de que los animales de un bioterio dependen totalmente del trabajo y la calidad de las actividades desarrolladas en la atención y cuidado diario, entre las cuales se encuentran: A
El alimento suministrado debe estar acorde con la especie o estirpe alojada. Otro aspecto que puede inuir es el referente al propósito experimental, en el cual el sujeto experimental puede ser sometido a dietas diversas, tales como dieta baja en sodio, con alto contenido de grasa o proteína, entre otros, o simplemente podría requerir de una dieta especial (puricada o semipuricada). Otro aspecto por considerar es la calidad y la digestibilidad de la dieta, ya que el consumo del alimento proporcionado puede variar según la calidad de la misma. Por otro lado, es necesario evitar cambios imprevistos de dieta o privaciones de alimento (conejo) y agua, salvo que el bioensayo lo incluya, por cortos periodos (ayuno), lo cual podría ocasionar hipoglucemia en los animales.
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Es otro aspecto importante que tiene por objeto eliminar la polución generada durante la operación diaria y programada. La rutina de limpieza diaria incluirá: la desinfección del alojamiento animal, equipo accesorio (comederos, bebederos, etc.), además del cambio de material de cama o lecho. La limpieza programada deberá de incluir: fumigaciones, limpieza de las áreas de alojamiento primario (piso, paredes, etc.), así como del encierro secundario o áreas anexas. La limpieza y desinfección estará determinada de acuerdo con el nivel de bioseguridad o calidad microbiana en los sujetos experimentales alojados y con un estricto apego al manual de operación del bioterio (descripción de las actividades del personal). Por último, debe llevarse a cabo la rotación de desinfectantes, considerando para ello el tipo, características y capacidad residual de los desinfectantes empleados. A
Incluye las jaulas, el encierro primario o cuartos de alojamiento y el encierro secundario. Estos revisten importancia, ya que brindarán bienestar y un adecuado desarrollo corporal y reproductivo. Este deberá ser acorde con la especie (roedores, lagomorfos, etc.) y los lineamientos establecidos en la normatividad respectiva para espacio físico. Por otro lado, el encierro primario puede estar inuido por la distribución, características de la construcción (paredes, techos, pisos, etc.), así como del tipo de equipamiento, el sistema de ventilación y su distribución dentro del encierro primario. Por último, deberán considerarse las medidas de control de insectos y roedores silvestres.
F 3. Higiene factor humano.
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Aspecto que debe ser realizado de acuerdo con la especie, ya que una manipulación proporcionada a una especie determinada no corresponderá a otra, además de que si ésta es inadecuada, puede afectar en la salud, conducta y reproducción del sujeto experimental, y repercutir en el procedimiento experimental. Este tema será abordado más adelante con detalle.
F 5. Condiciones ambientales, área funcional de alojamiento animal.
FACTORES QUÍMICOS Son producto de la interacción de factores humanos y físicos, derivados de un deciente desarrollo de las actividades por la acumulación de fermentaciones generadas por la cama, excretas, detritus y alimento. Dentro de la polución provocada se encuentran vapores y gases de CO2, SH3, NH3 (bióxido de carbono, ácido sulídrico, amoníaco), entre otros, que se incorporan al medio ambiente. Asimismo, se deben considerar los químicos que se emplean durante la rutina diaria, como insecticidas, desinfectantes, o los que se incorporan al agua de bebida y el alimento. F 4. Manipulación de un primate.
FACTORES FÍSICOS Están causados por las condiciones del macroambiente, el cual a su vez determinará el microclima prevaleciente dentro de la jaula, que es un factor preponderante para el bienestar animal. El macroambiente está conformado por los siguientes parámetros: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Temperatura Humedad relativa Ventilación o reciclaje de aire Iluminación Ruido
Estos parámetros serán abordados ampliamente en la sección correspondiente a la ronda de instalaciones.
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FACTORES PATOLÓGICOS Están predispuestos por la presencia y prevalencia de agentes infecciosos y parasitarios en una colonia determinada, que pueden ser originados por distintos factores, como las deciencias de manejo, una inadecuada rutina de trabajo (higiene), falta de acatamiento en las disposiciones sobre medicina preventiva (intromisión de animales de nuevo ingreso), falta de previsión en los procesos de esterilización o de desinfección de material de cama, del área física, o por estrés, todo lo cual ocasionará una alteración en la homeostasis de los animales.
FACTORES FISIOLÓGICOS O SOCIALES Están determinados por la estimulación que se ejerce sobre los órganos olfativos, visuales, auditivos y táctiles del animal, los cuales le permiten relacionarse con el entorno y sus congéneres en la jaula. Sobrepasar la capacidad física del alojamiento (cuarto/jaula) propicia estrés en los animales, derivado de la sobrepoblación
PARTE 2 - CAPÍTULO 6
(síndrome Whytten, Bruce), lo que predispondrá al establecimiento de jerarquías, agresiones e infertilidad, generado por competencia por el espacio vital, alimentación, agua, etcétera, lo cual modicará el comportamiento, y con ello el bienestar animal.
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Por ello, para mantener estas exigencias productivas y sanitarias, así como garantizar el bienestar de los animales de laboratorio, se requiere que condiciones ambientales y de manejo sean las óptimas, pues si éstas se ven modicadas o se carece de ellas, habrá incomodidades, disturbios, tensión y estrés, que conllevan cambios conductuales y productivos, incluso de tipo aberrante.
RONDA DE INSTALACIONES El examen clínico es efectuado por medio de los sentidos de la vista, el tacto, oído y olfato, y comprende dos partes: ❏
❏
F 6. Jaula de poliétileno blanco, densidad poblacional.
Dichos factores se encuentran interactuando constantemente y una forma de controlarlas o corregirlos es implantar un manual de operación y procedimientos, que esté apoyado en el desarrollo tecnológico y los avances en la zootecnia, ya que éstos han determinado el paso de los bioterios de tipo convencional a bioterios de barrera, con diferentes niveles en su status microbiológico. Es común encontrar que en los bioterios de laboratorios, centros de investigación, docencia y empresas comerciales se producen y multiplican sujetos de prueba y para experimentación, que están expuestos a una mayor densidad poblacional, que los lleva a exigencias productivas casi al límite de sus posibilidades siológicas, con mayores ritmos reproductivos, entre otros. Asimismo, existen especies que son más sensibles al estrés, como el ratón DBA/2, cobayos, y los jerbos, que debido a sus hábitos crepusculares o al instinto de vivir en madrigueras subterráneas, presentan un carácter tímido y miedoso. Otro ejemplo puede ser el conejo y los roedores, los cuales presentan un elevado metabolismo que les permite incrementos ponderables en los primeros días de vida (los tres primeros meses), superiores a los de cualquier mamífero doméstico. De igual forma, el denso pelaje en el caso del conejo es un serio problema, ya que no cuenta con glándulas sudoríparas, haciéndolo más susceptible a las altas temperaturas que afectan el bienestar.
Examen general y particular incluyendo la primera inspección. Examen físico.
La inspección preliminar o ronda de instalaciones debe iniciarse estableciendo un canal de comunicación (médico veterinario, personal e investigador), para recabar datos sobre los antecedentes del problema. Posteriormente se verica el entorno, el cual incluirá la inspección a distancia de los animales, donde se considerará el aspecto físico, la postura, el comportamiento y su desplazamiento en la jaula. La información podrá ser reunida por medio de un sencillo interrogatorio con preguntas orientadas hacia el problema y aspectos del manejo, como higiene, alimentación, reproducción, producción y sanidad animal, entre otros. El siguiente listado podría servir de guía, aunque las preguntas pueden variar según las circunstancias presentes, tipo de bioterio y causas que lo ocasionan. ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
❏ ❏ ❏ ❏
Identicar cual puede ser el problema. ¿Cuando se inició el problema? ¿Es posible establecer la causa del problema? ¿Cuántos animales presentan el problema? ¿Se ha difundido en otros animales? ¿Qué tan rápido y cómo se ha difundido? ¿Qué cambios clínicos se han observado en los animales? ¿Ha habido animales muertos? ¿Cuántos animales han muerto? ¿Cómo se disponen los cadáveres? ¿Se implementaron medidas o tratamientos para solucionar el problema?
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¿Ingresan personas ajenas a las áreas de alojamiento animal? ¿Existe control sobre el ambiente? ¿Existe manejo reproductivo de las colonias? ¿El sistema reproductivo implantado corresponde a la cepa o estirpe genética reproducida? ¿Quién es responsable de aplicar y manejar el sistema reproductivo? ¿Qué medidas de control sanitario se implantaron? ¿Las medidas sanitarias son acordes con el tipo de bioterio y el estatus microbiológico de la estirpe o cepa? ¿Se cumple con las medidas de control sanitario? ¿Son supervisadas las rutinas de trabajo que se desarrollan? ¿Existe control de fauna nociva? ¿Qué fauna nociva ha sido capturada y dónde? ¿Qué tipo de alimentación se emplea? ¿El alimento proporcionado es especíco para la especie? ¿Siempre se suministra el mismo tipo y marca de alimento? ¿Cómo es suministrado el alimento a los animales? ¿Dónde y cómo es almacenado el alimento?
E : ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
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¿Qué tipo de forraje se proporciona? ¿En dónde y cómo es almacenado el forraje? ¿Se toma alguna medida sanitaria con el forraje? ¿A qué especies se les proporciona? ¿De dónde se abastece de agua suministrada? ¿El agua se almacena en cisterna o tinacos? ¿Cada cuándo se limpian y desinfectan éstos? ¿Recibe algún tratamiento de potabilización el agua antes de utilizarla? ¿Cómo se administra el agua a los animales? En caso de sistema automatizado o semiautomático: ¿En qué intervalos se limpian y desinfectan las líneas de abastecimiento, botellas o chupones de agua? ¿El equipo es acorde con la especie que aloja? ¿Cuál es la frecuencia de limpieza y desinfección del equipo? ¿Cuál es la frecuencia de limpieza y desinfección del encierro primario? ¿Cuál es la frecuencia del cambio de material de cama o lecho? ¿Cuál es el destino nal de los residuos biológico-infecciosos?
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¿El procedimiento experimental interere en la salud del animal?
VERIFICACION DEL AMBIENTE Una vez recabada la información anterior, se procede a realizar el recorrido por las instalaciones, con el objeto de determinar y constatar las condiciones imperantes, incluyendo un análisis del ambiente (temperatura, humedad relativa, ventilación, luminosidad, ruido), las actividades del personal y ujos, así como las características físicas del alojamiento, la distribución de áreas funcionales (drenaje), higiene y manipulación de los animales. Los aspectos básicos que deben ser evaluados en una vericación son:
CONDICIONES AMBIENTALES La evaluación del ambiente del bioterio es básica, ya que estos recintos son totalmente cerrados y requieren tener un control absoluto del ambiente, a efectos de evitar uctuaciones en las condiciones presentes, que puedan interferir o afectar el bienestar animal y repercutir en su reproducción o en el procedimiento experimental. Los bioterios son instalaciones que cuentan con sistemas de aire acondicionado con distintas grados de sosticación (con o sin ltrado en diferentes grados), de acuerdo con el tipo o características de los animales alojados en él.
F 7. Control computarizado de ambiente.
Los parámetros por evaluar comprenden: T
La temperatura, humedad relativa y ventilación son parámetros que encuentran íntimamente relaciona-
PARTE 2 - CAPÍTULO 6
dos e interactúan entre sí, ya que si uno de ellos es afectado, los otros se verán modicados. Por ello, se requiere vericar el registro de control de temperatura; asimismo, se estima necesario conocer el número y la distribución de las rejillas de inyección y extracción de aire dentro de las áreas funcionales. Otro aspecto que se verica es si el sistema ambiental cuenta con la capacidad para mantener rangos de temperatura, humedad y ventilación, de acuerdo con las especies alojadas en forma independiente o general. En el caso de que el equipo no tenga esa capacidad, entonces se deberá establecer un rango intermedio, a n de mantener el confort de las distintas especies. La densidad poblacional, el diseño de la jaula, la presencia o no de ltros en la jaula, así como el tamaño de los cuartos y la distribución o localización de las rejillas de inyección y extracción de aire, dentro del alojamiento animal, son causas que deben considerarse para establecer el volumen, velocidad del aire y rango de temperatura óptimos, pues son variables que pueden modicar el microclima o el ambiente del animal. Por ejemplo, en las jaulas con tapa y ltros, para alojamiento de roedores, la temperatura se incrementará de 0.55 a 2.2ºC por arriba del ambiente del cuarto; así también, una elevación cercana a los 30ºC, puede predisponer a la muerte por golpe de calor, y las temperaturas bajas, a la presencia de problemas respiratorios o hipotermia. Asimismo, puede producir alteraciones metabólicas, cambios siológicos y conductuales, repercutiendo en los resultados experimentales del sujeto experimental y modicándolos. Los cambios de temperatura, ventilación y humedad generalmente ocasionan alteraciones conductuales y siológicas, razón por la cual es necesario establecer el control medioambiental de las áreas de alojamiento para animales. Esta regulación puede verse reejada en la disminución o incremento de la ingesta de alimento o agua; en modicaciones en el bienestar del animal (ataque al estado general de salud), o incluso llegar a inducir la termorregulación con o sin presencia de estremecimientos musculares, a efecto de compensar las variaciones de la temperatura ambiental. Los rangos de temperatura que deberán observarse como normales podrán depender de la especie en cuestión.
❏
Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
TEMPERATURA
AMBIENTAL
Especie
Rango
Ratón Rata Hamster Cobayo Conejo
22 - 25 ºC 20 - 25 ºC 21 - 24 ºC 16 - 20 ºC 15 - 20 ºC
H
Puede ser mantenida a través del uso de humidicadores portátiles o por medio de un sistema de aire acondicionado automatizado. Dicho tipo de equipo proporcionará una gran estabilidad ambiental. La presencia de una sobrepoblación en el cuarto podrá elevar los niveles de amoniaco (20o + ppm) y del bióxido de carbono ambiental (CO2), lo que ocasionará un incremento en la humedad relativa ambiental, lo cual predispondrá a la presencia de rinitis, o procesos respiratorios, así como a micosis cutáneas o superciales (tiña). Por otro lado, cuando se presentan disminuciones acentuadas en el porcentaje de humedad relativa del ambiente, ésta predispondrá a un padecimiento en ratas conocido como cola anillada. El rango de humedad relativa puede variar con la especie de acuerdo con siguiente cuadro. HUMEDAD RELATIVA Especie
Rango
Ratón Rata Hamster Cobayo Conejo
50 - 70 % 50 - 55 % 45 - 65 % 50 - 60 % 40 - 50 %
V
El objetivo principal de la ventilación es asegurar la oxigenación y sustituir el aire viciado por gases nocivos, generados en un área, debido a la presencia de fermentaciones del alimento, material de cama, polvo, CO2, NH3, entre otros. La ventilación dinámica es esencial en el bioterio, ya que éste es una instalación cerrada, por lo que necesariamente se requerirá de un sistema de intercambio gaseoso eciente, con capacidad para preservar la temperatura y humedad, además de que puede incluir preferentemente el ltrado del aire, acorde con el nivel del bioterio y status microbiológico de los animales.
349
Metodología Diagnóstica Veterinaria
❏
Cuando el sistema de ventilación resulta deciente, lo primero que se incrementará será el nivel de NH3 y CO2, más allá de los niveles permisibles (+ 8 - 10 ppm). Para mantener este rango, se requiere forzosamente de un correcto número de cambios de aire por hora y de la regulación de la temperatura y humedad relativa.
En la ventilación dinámica es necesario considerar que un caudal de ventilación alto obliga a una mayor velocidad de aire, lo que ocasiona menor temperatura y humedad relativa dentro del cuarto, por lo que este tipo de ventilación precisará de temperaturas elevadas y de una higrometría también alta. Asimismo, es esencial considerar el gradiente de presión dentro de las áreas funcionales, ya que éste puede fungir como barrera física, de acuerdo con el ujo o volumen in yectado (presión +) o extraído (presión -), aunado al número y distribución de las rejillas de inyección y extracción de aire. De igual forma, la ubicación permitirá un barrido longitudinal adecuado, con lo que se evitará la formación de zonas grises u oscuras dentro de las áreas. Cuando las rejillas de inyección quedan por encima de las jaulas de alojamiento animal, predisponen a la prevalencia de procesos respiratorios en los animales (corriente continua). Los aspectos que deben evaluarse incluyen: la concentración de gases o de vapores ambientales en el área (NH3, CO2), la polución generada de la operación diaria (polvo, partículas, pelos), mantenimiento de los gradientes de presión, estado o capacidad de ltrado del aire, además de determinar el barrido y la densidad poblacional del área. El avance en la tecnología en el ámbito de la ciencia en los animales de laboratorio e investigación ha permitido la implantación de sosticados sistemas de alojamiento animal, los cuales proveen al animal de un microambiente dotado de barrera ambiental o tapas ltro, así como el ltrado de aire con ltros de alta eciencia tipo HEPA, mismos que garantizan la esterilidad del entorno del animal, manteniendo de esta forma la barrera de bioseguridad, misma que se realiza a través de un ujo de aire de entrada y de salida estéril, al tiempo de regular la temperatura y humedad relativa. El manejo de este tipo animales requiere del uso de campanas de ujo laminar con ltrado de tipo HEPA (99.97% de ltrado).
350
F 8. Equipos con ventilación automatizada.
Estos equipos, permiten mantener un microambiente estéril, de tal forma que no se requiere de aire acondicionado con capacidad de ltración alta (tipo HEPA), los cuales facilitan y mantienen la barrera. El control de la eciencia de gradientes de presión y ujo de aire es llevado a cabo por medio de barómetros y anemómetros. Los cambios de aire por hora recomendados según la especie se describen a continuación. CAMBIOS DE AIRE / HORA Especie
Rango
Ratón Rata Hamster Cobayo Conejo
8 - 12 10 - 20 6 - 12 4-8 10 - 20
I
Durante la inspección es necesario determinar si los animales alojados son estacionales o no estacionales, a efectos de considerar si el fotoperiodo es el correcto. De igual forma, debe observarse la fotointensidad, para determinar la calidad del espectro lumínico, acorde con la especie. Por ejemplo, la rata, el ratón y el hámster son animales no estacionales y tienden a presentar ciclos estrales normales durante todo el año, además de que dichas especies muestran respuestas importantes a las variaciones en la intensidad lumínica y al fotoperiodo; por tal motivo, es importante evitar que las luces del alumbrado público o de los pasillos del bioterio no intereran durante la noche con el ciclo circadiano de los animales (interferencias en el fotoperiodo). Asimismo, lograr una difusión homogénea del haz o arco de luz dentro de las áreas evitará la presen-
PARTE 2 - CAPÍTULO 6
cia de zonas grises u oscuras, que también afectarán el ciclo. Los ciclos de luz/oscuridad pueden ser de 14 x 10 hrs. o de 12 x 12 hrs. de acuerdo con la especie. En algunas especies como el conejo, pueden ser de 8 x 14 (gazapos) o 16 x 8 hrs. (reproductora); el control de dichos ciclos puede lograrse con el empleo de relojes de tiempo programables (timers), que determinarán las horas luz/oscuridad y pueden ser eléctricos, digitales y electromecánicos. La intensidad de luz (fotointensidad) en el alojamiento del animal se determina por medio de la unidad de medida conocida como lumens, o bujía pie, a un metro del piso, que es regulada por medio de controladores de intensidad lumínica (dimmer); esto generalmente depende del número de focos e intensidad (watts), así como de su distribución en el área. En cuanto al espectro lumínico, éste deberá tener preferentemente una calidad similar al espectro solar o la luz de día, con el objeto de no afectar los procesos reproductivos y siológicos de los animales. Asímismo, es necesario evitar que el haz de luz se proyecte directamente sobre las jaulas de los animales, con el objeto de impedir una sobreexposición lumínica, sobre todo en cepas de roedores albinas. Ztotzer, en 1970, y Greenman y colaboradores, en 1982, demostraron que los niveles de 806 a 1076 lúmenes (lx) o bujía pie (a 1 m del piso), se consideran una iluminación adecuada para el ser humano, pero no así en el caso de ratas y ratones albinos, ya que la presencia de dichos niveles ocasiona degeneración retinal, razón por la cual éstos no deberán exceder los 323 lúmenes, a un metro del piso alojados en cajas o racks (100 bujías pie). Por lo anterior, es necesario determinar si las lámparas se encuentran ubicadas principalmente sobre los pasillos, de tal forma que el haz de luz que forman permita un ángulo o arco de luz que se distribuya diagonalmente hacia los estantes con jaulas, logrando así una distribución más homogénea dentro del cuarto, sin que la luz quede directamente sobre los animales del bioterio. Cabe señalar que las lámparas de luz incandescente no se recomiendan para los cuartos de alojamiento del animal, ya que el calor generado por la incandescencia varía la temperatura ambiental del cuarto. R
Este factor inuirá directamente en el bienestar animal y modicará el proceso reproductivo y el comporta-
❏
Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
miento, por el estado de alerta o estrés que ocasionará en los animales. De acuerdo con estudios realizados por Peterson (1980), el ruido es capaz de afectar los parámetros metabólicos y de tipo endocrino, provocando incrementos en la presión arterial, por ejemplo, en primates. Otro aspecto que debe considerarse es el alojamiento de especies antagónicas o enemigos naturales; así, las especies demasiado ruidosas (perros, primates, gatos), constituyen un factor estresante para roedores y lagomorfos, los cuales normalmente son silenciosos. También se tiene que considerar el ruido, que es atribuible a las actividades de las rutinas de trabajo diario (manejo de equipo, racks, jaulas), así como al personal (chiidos, gritos, música, etc.). Existen estudios, como el de Anthony y colaboradores (1959), que mencionan la capacidad de daño del ruido, el cual es medido en decibeles. Los decibeles se traducen en presión de sonido que, dependiendo de la intensidad y exposición, puede ocasionar desde daño mecánico en el oído (+ 160 db), hasta lesiones por exposición prolongada (100 db), como las ocasionadas en el ratón DBA/2, el cual sufre de convulsiones audiogénicas derivadas de exposición a ruidos superiores a los 85 decibles de presión de sonido. Es necesario considerar que los animales toleran ruidos acústicos similares a los tolerados por el hombre, motivo por el cual, es menester observar el tipo de especie alojada, las rutinas de trabajo y la distribución de la planta física del bioterio, para vericar si las áreas cuentan con un adecuado asilamiento acústico, ya sea por medio de trampas de aire, puertas (o doble puerta), paredes, (con buena densidad), pasillos y materiales diversos que proporcionan un correcto asilamiento acústico.
MANEJO FÍSICO DE ANIMALES El manejo de animales requiere que el personal cuente con la técnica y destreza necesarias para manipular a los animales, acorde con la especie en cuestión. Durante el manejo deben tenerse en cuenta tres acciones básicás, consistentes en capturar, manipular y levantar; además, el manejo está condicionado a la ocasión, la especie y el temperamento del animal, considerando para ello la actitud y comportamiento que muestra el animal durante el acercamiento previo al manejo. Uno de los objetivos del manejo es el de proveer al manejador de un acceso al área de auscultación, evitando una excesiva manipulación, estrés, dolor o que
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
inuya en los cambios de conducta. Asimismo, el ma nejo debe estar regido por tres premisas fundamentales: rmeza, cuidado o gentileza y seguridad. La manipulación física permite realizar diagnóstico de preñez, revisiones clínicas, obtención y administración de líquidos corporales, manejo de animales y procedimientos experimentales. En ocasiones un método físico inicial permitirá la inducción de un método químico que facilite la manipulación o sujeción del animal. A continuación se mencionan diferentes técnicas para la manipulación física de los animales de laboratorio.
RATA ❏
Sujetar la cola, en su porción media o base, utilizando para ello los dedos índice y pulgar.
MANEJO FÍSICO DE ANIMALES DE LABORATORIO RATÓN ❏
Sujeción de la parte media o base de la cola, por medio de los dedos índice y pulgar o con el empleo de pinzas con punta ahulada.
F 11. Manejo de rata. ❏
Se sujeta inicialmente la cola en la zona media o la base, con los dedos índice y pulgar, y se coloca sobre una supercie áspera (que se aance), haciendo una ligera pero rme tracción hacia atrás; se emplea la otra mano para colocar el dedo índice sobre el hombro, mientras el pulgar se desliza por la axila del lado contrario al dedo índice, y los dedos medio, anular y meñique son colocados por debajo de la otra axila, lo que permite rodear el tórax de la rata. Por último, la cola se coloca entre el dedo meñique y el anular de la misma mano que sujeta a la rata.
F 9. Sujeción de ratón. ❏
Por retracción o repliegue de la piel de la espalda o del cuello, con sujeción de la cola.
F 12. Manejo de rata. ❏
F 10. Manejo correcto de ratón
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Se sostiene el cuerpo (tórax y abdomen) en posición dorsoventral, sin ejercer presión excesiva durante el proceso de traslado a otra jaula en el cambio de cama.
PARTE 2 - CAPÍTULO 6
F 13. Manejo de rata.
HÁMSTER ❏
❏
❏
Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
F 15. Sujeción de cobayo por el torso con un guante. ❏
Aprovechando su naturaleza curiosa, el hámster puede ser manejado introduciendo un bote dentro de la jaula, para que entre en él. Formando una oquedad con ambas manos e introduciéndolas en la jaula para que el hámster entre ahí por curiosidad. Por medio del repliegue de la piel de la espalda y cuello: para ello se emplea el dedo pulgar e índice y junto con los demás dedos se repliegan sosteniendo la piel contra la palma de la mano.
❏
Se sujeta al animal alrededor del cuerpo (tórax y abdomen), sin presionarlo excesivamente, para trasladarlo a otra jaula durante la rutina.
COBAYO ❏
Se coloca al cuyo sentado sobre la palma de la mano, dejando que la espalda y grupa del animal se recarguen sobre la palma de la mano (animales pequeños).
F 16. Sujeción del cobayo envuelto en trapo.
MÉTODOS FÍSICOS DE CONTENCIÓN CEPOS O RESTRICTORES DE CONTENCIÓN FÍSICA PARA ROEDORES
F 14. Manejo de cobayo. ❏
Se sujeta al cobayo por el tórax, por debajo de las axilas, soportando el peso del animal en la palma de la otra mano (animales adultos y gestantes).
Los cepos son dispositivos que permiten la introducción de roedores o lagomorfos. En el caso de roedores, la cola queda fuera del cepo; la base del mismo presenta oricios para tener acceso al cuerpo del animal. Los cepos para conejos exponen básicamente la cabeza del animal. Son manufacturados en diferentes diseños y materiales, como plástico (acrílico o policarbonato) o metal; esto permite tener las manos libres para realizar diversos procedimientos: inyecciones, sangrado, toma de presiones o constantes siológicas.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
ANESTÉSICOS INYECTABLES El uso de estos anestésicos requiere habilidad y el conocimiento técnico de las diferentes vías de administración, de acuerdo con la especie en cuestión. El tipo de sedante dependerá de la especie, cepa y vía de administración. Tz ❏ ❏ ❏
F 17. Cepo de contención, procedimiento de introducción.
BASES DE INMOVILIZACIÓN
O PARA USO QUIRÚRGICO
Los restrictores permiten sujetar al animal por las extremidades en una posición dorsoventral o en decúbito ventral (con o sin anestesia). Este procedimiento facilita la realización de diversos procedimientos técnicoquirúrgicos o experimentales, tales como laparotomías, punciones cardiacas, entubado endotraqueal, curaciones, entre otros. Los dispositivos son generalmente manufacturados en distintos materiales.
MANEJO QUÍMICO Las sustancias químicas deberán ser utilizadas cuando el manejo o procedimiento experimental pueda ocasionar estrés, dolor, malestar o altere el bienestar del sujeto experimental, siempre y cuando éste no afecte o interera en los resultados del estudio. El manejo químico requerirá de una sujeción física previa a la inducción química. Los tipos de sustancias que se pueden emplear son los siguientes:
ANESTÉSICOS INHALADOS
❏
Xilacina Clorhidrato de ketamina Acepromacina Droperidol (no emplear en cobayos, produce necrosis muscular)
A ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Tiopental sódico Pentobarbital sódico Fenobarbital sódico Clorhidrato de ketamina Hidrato de coral
VÍAS DE SANGRADO Especie
Seno Vena Corazón Vena Vena Vena Dedo Orbital Facial * Safena Oreja Cola del pie * **
Ratón
x
Rata
x
Hámster
x
Cobayo
x
Conejo
x
x
x
x
x
x
x
x
x
x x
x
x x
x
* Procedimiento que requiere anestesia ** Vía que sustituye al plexo venoso del seno orbital
Este tipo de anestesia se aplica a través de diferentes vías como el goteo en cono abierto, campana de anestesia, cámara de anestesia o equipo de anestesia inhalada, los cuales evitarán la inhalación de vapores por parte del personal y los animales. ❏ ❏
❏ ❏ ❏
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Éter (actualmente en desuso por su toxicidad) Halotano (no emplear en cobayos, produce hepatoxicidad) Metoxiurano Enuorano Otros
F 18. Proceso experimental en rata.
PARTE 2 - CAPÍTULO 6
VÍAS DE ADMINISTRACIÓN
❏
Oral H2O SC IM Especie Alimento Dorso-lateral Bíceps femoral IP Intragástrica y nuca Músculos glúteo Ratón X X x x Rata X X x x Hámster X X x x Cobayo X X x x Conejo X X x x
❏
(SC=subcutânea, IM=Intramuscular, IP=Intraperitoneal, IV =Intravenosa o endovenosa).
VÍAS DE ADMINISTRACIÓN ENDOVENOSA Ubicación Ratón Rata Hámster Cobayo Conejo Vena cola x x Vena safena x x x x Vena marginal x auricular Vena lateral x x x metatarsiana Venas yugulares x
❏ ❏
Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
Axénicos Gnotobióticos Libres de patógenos especícos Convencionales.
D ❏ ❏
Experimentación de corto plazo Experimentación de largo plazo
C ARACTERÍSTICAS CONSIDERADAS : ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
❏ ❏
VERIFICACIÓN DE INSTALACIONES
❏
❏
DE DISEÑO DE UN BIOTERIO QUE DEBEN SER
Características de las instalaciones Capacidad física por área funcional Categoría del bioterio Especies alojadas y características genéticas Tipo de barreras implantadas y estatus microbiológico de los animales Diagramas de ujo Desarrollo de actividades del personal. A continuación se describen los aspectos que deben tenerse en cuenta durante la evaluación.
INFRAESTRUCTURA DEL BIOTERIO Los bioterios son instalaciones totalmente cerradas y dotadas de una infraestructura básica con diferentes grados de sosticación y control del ambiente animal. El sistema de ventilación del aire acondicionado deberá estar protegido de la presencia de vientos dominantes para que no entorpezcan la eciencia y funcionamiento del equipo. Las instalaciones, equipamiento y manejo del bioterio dependerán esencialmente de su propósito, el estatus microbiológico de los animales y, en su defecto, de la duración del procedimiento experimental. Los bioterios pueden ser clasicados como sigue: D ❏ ❏ ❏
Centro de producción Centros de experimentación Centros de producción y experimentación (mixtos)
A ,
Determinado por el estatus microbiológico de los animales, grado de sosticación de las barreras, manejo y tipo de experimentación.
F 19. Desarrollo de actividades del personal, área de lavado sin secciones delimitadas.
I
Están formadas por áreas denominadas funcionales, que incluyen básicamente el área de lavado o servicios, de alojamiento animal (producción y experimentación), de aislamiento (recepción y cuarentena), áreas especia-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
les o de bioseguridad, área administrativa, vestidores de personal, bodegas, almacenes, área técnica (equipos), pasillos. La presencia de barreras en un bioterio está determinada por el diseño de construcción, acabados, equipamiento, medidas de control y manejo, características microbiológicas de los animales alojados y tipo de experimentación o propósito del bioterio, aunado a la eciencia en el desarrollo de las actividades del personal.
nes. Es necesario que dicha zona cuente con secciones y la implantación de barreras físicas, para mantener un correcto ujo de circulación (puertas de apertura en solo sentido), así como el manejo de gradientes de presión (presiones +/-), e intercambio gaseoso adecuado. En la evaluación de paredes, techos o plafones y piso, se deberá vericar que éstos sean de tipo monolí tico, resistentes a la humedad y con cuervas sanitarias que faciliten su limpieza. Es necesario determinar la presencia o no de pisos técnicos. En lo que se reere al techo, es necesario tener presente si se cuenta o no con un piso técnico, de tal forma que éste facilite realizar las reparaciones necesarias, sin necesidad de que el personal ingrese a las distintas áreas y las contamine. La altura recomendada oscila entre 2.15 y 2.50 m. El piso deberá de ser de acabado monolítico y con resistencia química y mecánica al impacto además de presentar curva sanitaria y evitar la presencia de coladeras que contaminen.
F 20. Protector muro de pasillo.
La inspección deberá incluir los acabados y características de paredes, techos, pisos, puertas, lámparas y tubería, distribución de las áreas –incluyendo el equipo de control ambiental y las rejillas de inyección y extracción de aire (condiciones ambientales)–. De igual forma, se evaluará el asilamiento de tipo acústico y lumínico de las áreas, así como la capacidad física del cuarto y por unidad de jaula y las especies alojadas (evitar distintas especies o cepas en el mismo alojamiento.
F 22. Pasillo del zoclo sanitario.
F 21. Pasillo bidireccional, amplitud 1.50 metros.
El área de lavado constituye un área de servicio esencial para el bioterio, ya que es donde se realiza todo el proceso de descontaminación del equipo empleado, éste se considerará en el manual de operacio-
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La amplitud de las puertas debe oscilar entre 1.00 y 1.20 m, y su altura, entre 1.90 y 2.30 m, dependiendo del equipo. El empalme tiene que ser exacto para que constituya una barrera física (lumínica, ambiental, acústica). El ancho de los pasillos será de entre 1.20 y 2.00 m, para permitir un adecuado ujo de circulación y del personal. Se sugiere que los gradientes de presión en los pasillos sean de tipo negativo, con relación a los cuartos de alojamiento, con el objeto de evitar que la contaminación penetre a las áreas de alojamiento animal.
PARTE 2 - C - CAPÍTULO 6
❏
Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
tico. Asimismo, el personal deberá contar con equipo de protección especial, que proporcione aislamiento y evite contaminación de los animales o del ambiente.
F 23. Pasillo amplio, amplitud 2 metros. Z
Son zonas que permiten mantener en asilamiento u observación a los animales de nuevo ingreso (cuarentena), los enfermos o en experimentación. Dicha área deberá contar con la misma infraestructura que el resto del bioterio, estar ubicada preferentemente a la entrada o salida de éste, y lo más retirado o asilado posible de las colonias; el manejo deberá ser realizado al nal de la rutina.
F 25. Área restringida.
Dichas áreas deberán inspeccionarse con estricto apego a las restricciones y lineamientos de bioseguridad establecidos para tal efecto. Es necesario que los implementos de limpieza y personal sean diferentes a los empleados en otras áreas, para evitar una posible contaminación. E
F 24. Área de aislamiento.
El área de bioseguridad es una zona de barrera prioritaria, en donde se alojan o producen sujetos experimentales con un estatus microbiológico alto (SPE, gnotióticos, axénicos), que requieren de alta seguridad biológica y una atención y cuidados especiales, que incluyen esterilidad y estrictas restricciones de acceso. Este tipo de áreas mantienen sujetos experimentales sometidos a procedimientos experimentales de alto riesgo biológico (vacunas, estudio de enfermedades infecciosas) que pueden implicar en un momento dado un alto riesgo para la salud pública o de tipo epizoó-
Se considera la circulación del equipo y del personal que se lleva a cabo a través de los pasillos existentes (limpio y sucio), acorde con el diseño de la planta física y en concordancia con el manual de operación del bioterio. Se entiende por pasillo limpio aquel por donde transita el equipo limpio proveniente del área de lavado de la zona de preparación y se dirige hacia el área de alojamiento animal. El pasillo sucio permitirá el traslado del equipo sucio proveniente de las áreas funcionales hacia el área de lavado en la zona de desenvaine. Generalmente la circulación incluye también el tránsito del personal, de tal forma que permita un desarrollo higiénico de las rutinas de trabajo y coadyuve a respetar el ujo de circulación, así como las barreras y restric ciones implantadas. Existen bioterios con un ujo bidibidi reccional (un pasillo), el cual implica que el personal y equipo deberán transitar por el mismo pasillo. La inspección de este aspecto abarcará su amplitud, acaba-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
dos, remate de piso con paredes y techo (zoclo sanitario), puertas y la ausencia de objetos sobrepuestos, con excepción del protector de pared. D
Las actividades del personal tienen que ser siempre supervisadas, ya que pueden provocar factores adversos de tipo no experimental, los cuales, entre otros problemas, ocasionan estrés o procesos infecciosos, derivados de la falta de higiene o de condiciones ambientales inadecuadas. Los aspectos que deben revisarse son los siguientes: Manipulación de animales Se desarrolla durante la revisión clínica de los animales y en la rutina de trabajo diario. Una manipulación inadecuada, excesiva o deciente, propiciará estrés, lesiolesio nes, así como cambios en la conducta de los animales, además de el posible abandono de los críos o pérdida de los mismos, sobre todo durante el cambio de cama. Otro aspecto que se evalúa es el manejo de controles y registros reproductivos, pues de éstos puede obtenerse información relativa a la eciencia reproductiva, curvas de crecimiento, mortalidad y datos clínicos. ❏
Higiene Deberá incluir tanto el equipo de alojamiento animal, como las instalaciones y el personal; de esta forma se podrá abatir la carga bacteriana. Este aspecto también está en relación directa con el status microbiológico status microbiológico y la clasicación del bioterio, y deberá estar implícito en los manuales de operación estándar del bioterio. De esta manera se evitará un problema de salud ocupacional (zoonosis) o de epizootias estreptococias, estaloestalococias, pseudomoniasis, micoplasmosis, legioneliosis, salmonelosis, leptospirosis, parasitosis, etc. ❏
RONDA CLINICA La ronda clínica es un proceso propedéutico auxiliar, que permite al médico veterinario determinar de forma rápida y sencilla el estado de salud de los animales, así como de las condiciones prevalecientes en el ambiente, equipamiento e instalaciones. Dicho aspecto involucra la visita de las diferentes áreas del bioterio y la observación a distancia de los animales, para detectar cambios en el comportamiento, postura, actitud y presencia de signos de enfermedad (secreciones o exudados, tumoraciones, abscesos, diarreas, desnutrición, entre otras), así como el deterioro de instalaciones o uctuaciones en las condiciones del ambiente animal. De esta forma se optimiza el tiempo y esfuerzo del médico o responsable, para establecer tratamientos, aislar a los enfermos y corregir las fallas. Asimismo, se deberá observar el material de cama, charolas o parrillas en busca de cambios en las deyecciones (diarrea, en forma de rosario, sangre o secreciones mucopurulentas o sanguinolentas). También se determinará la densidad poblacional, con base en la capacidad física del área y del equipo de alojamiento animal existente. El espacio físico estará determinado por las características de la especie que se va a alojar. A continuación se menciona la supercie requerida por especie. El no cumplir con las especicaciones de espacio físico vital puede causar competencia y peleas por alimento y agua, trastornos nutricionales, menor tasa de crecimiento, excitabilidad, problemas de viabilidad de camadas y muerte, de igual forma se presentará presentará ingesta de pelo y estrés, entre otros. ÁREA DE SUPERFICIE DE PISO Especie Ratón Rata Hámster Cobayo Conejo
Supercie cm2 39 - 97 110 - 552 65 - 123 387 - 652 0.37 - 0.46 m2
DETECCIÓN DE ANIMALES ENFERMOS
F 26. Equipamiento de personal, área de lavado.
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Posterior a la ronda clínica y habiendo realizado la lista maestra, en la cual se haya detectado a los enfermos, se procederá a la revisión clínica de éstos; para ello se vericará la integridad y características del pelaje (hir(hir -
PARTE 2 - C - CAPÍTULO 6
suto, enmarañado de pelo, entre otras), asimismo, si la especie lo permite, se tomará la temperatura corporal por vía rectal y se palpará la conformación corporal (masa muscular y esqueleto) y el sistema linfático supercial, para detectar la presencia de alteraciones como inamación de linfonodos, abscesos, heridas o mutilaciones corporales. Inmediatamente después, se inspeccionarán los oricios naturales, para buscar inamación, exudados o secreciones; asimismo, se auscultarán los órganos huecos (corazón, pulmones, etc.) siempre y cuando la especie lo permita, por último, se revisará el abdomen por palpación y percusión, en busca de inamainama ción abdominal, cuerpos extraños o dolor. Durante este proceso, se determinará si se requiere la toma de muestras para envió al laboratorio o de histopatología, o si el caso lo amerita, se enviarán para necropsia los cadáveres o animales enfermos vivos.
TOM OMA A DE MUESTRAS La toma de muestras de animales enfermos es una herramienta básica que provee al médico veterinario zootecnista del medio para corroborar las alteraciones a través del laboratorio o por métodos diagnósticos clínicos y ofrecer un diagnóstico veraz. La toma de muestras debe incluir: selección, recolección, manejo, identicación y envío de las mismas; éstas irán acompañadas de un resumen clínico con un diagnóstico presuntivo. Estos pasos permitirán obtener resultados veraces y conables, así como evitar posibles confusiones en el procedimiento diagnóstico. S
Las muestras recolectadas deben ser previamente seleccionadas según la enfermedad o servicio que se solicite, con especial atención en las lesiones representativas. La muestra ideal es el animal completo, aunque a veces no es posible o no es necesario hacerlo. La muestra debe tomarse de un caso clínico que sea representativo de la enfermedad que afecta a la población, seleccionando al animal que haya muerto recientemente y que no esté en estado de descomposición. En ocasiones, para conocer el origen de un problema de una población y poder prevenirlo, será necesario tomar también muestras de alimento, agua y ambiente del entorno animal (hisopados de paredes,
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Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
comederos, etcétera, así como colocación de cajas de Petri abiertas en los alojamientos). M
El manejo de muestras incluirá: la toma y empaquetado de la misma. Una vez seleccionada, ésta se recolectará procurando que sea del tamaño adecuado, obtenida en condiciones asépticas para evitar contaminaciones o cambios post mortem que mortem que alteren o enmascaren los hallazgos. El tiempo que tarde la muestra en llegar al laboratorio puede determinar posibles alteraciones y resultados falsos. Las muestras se deben guardar según su tipo, ya sea en frascos o tubos con cerrado hermético (tapón de rosca) o en bolsas de plástico cerradas con calor o con liga, o bien, de manera hermética, y ser empacados para evitar su ruptura o perforación y facilitar, en su caso, su refrigeración y traslado. La preservación de las muestras tiene por objeto conservar y evitar la descomposición de tejidos o la proliferación de microorganismos contaminantes. Entre los métodos de preservación se encuentra la refrigeración entre los 5 y 10 ºC; la congelación, la cual ocurre por debajo de la temperatura de refrigeración (hielo seco), tomando en consideración que existen muestras como leche y sangre que se descomponen con la congelación, por lo que sólo se refrigeran. Las muestras deberán ser empaquetadas preferentemente en cajas de polietileno con cierre hermético, acompañadas de refrigerantes y un poco de aserrín o productos similares, para evitar que se golpeen, rompan o pierdan. Otro método de preservación podría ser el formol al 10% (en frasco de boca ancha). El tipo de conservador debe de elegirse de acuerdo con el tipo de muestra y análisis que se va a solicitar. Para la toma de muestras se requerirá de material limpio y estéril, el cual consta de material de vidrio (frescos y tubos), jeringas y equipo de cirugía (bisturí, tijeras, pinzas, entre otros). I
Toda Toda muestra enviada al laboratorio deberá proporcionar una mínima información consistente en: ❏
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Nombre, dirección y teléfono del remitente o propietario. Descripción del animal: especie, raza, sexo, edad, entre otros. Fecha de la muerte.
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Fecha y hora de recolección de la muestra. Descripción de la muestra y conservador usado. Tipo de análisis que se solicita. Resumen clínico: ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏ ❏
Fecha de inicio de la enfermedad Número de animales afectados Edad de los animales Índice de morbilidad Índice de mortalidad Tratamientos efectuados, en su caso Diagnóstico presuntivo emitido por el médico veterinario responsable.
PRUEBAS DE LABORATORIO Constituyen una herramienta valiosa que coadyuva a emitir un diagnóstico denitivo y veraz, basado en evidencias. Existen diferentes tipos de pruebas de laboratorio que pueden ser realizadas, entre las que se encuentran: anatomopatalogía, histopatología, botánica, bromatología, toxicología, hematología, bioquímica clínica, bacteriología, análisis de orina, parasitología, micología, serología, virología e inmunouorescencia. Los métodos de diagnóstico podrán incluir, entre otros: rayos X, resonancia magnética, tomografía computarizada, endoscopia diagnóstica y cateterismo. Estas últimas son de poco uso en animales de laboratorio, salvo cuando el procedimiento experimental lo amerite. Al respecto, cabe señalar que en el ámbito de la producción de animales de laboratorio, algunas de estas pruebas de laboratorio no son generalmente empleadas, en parte por su alto costo (costo-benecio) o porque son imprácticos por el tamaño de la especie, aunque en algunas ocasiones son desarrolladas con nes experimentales. Dentro de las pruebas de laboratorio que se pueden realizar se encuentran las siguientes: E
Tiene por objeto estudiar las lesiones típicas de las enfermedades, tratando de determinar el proceso patológico que causó la muerte del animal. Estos datos podrán orientar al médico veterinario respecto a qué exámenes de laboratorio complementarios se necesitan para llegar a un diagnóstico nal. En ocasiones se llega a omitir este tipo de estudio, sin que para ello exista impedimento para realizar otras pruebas de
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laboratorio que permitan llegar a integrar un buen diagnóstico. H
Se centra en detectar los cambios básicos microscópicos presentes en un proceso patológico. Las muestras se obtienen durante la necropsia de los animales, utilizando instrumental preferentemente estéril, en cortes en forma de cubo de 1 x 1 x 5 cm, de cada lesión seleccionada, incluyendo parte del tejido sano circundante. La muestra se coloca en un frasco de boca ancha que contenga formol al 10% como conservador, co nservador, que los cubrirá totalmente. B
Este tipo de pruebas se emplea para identicar plantas o forrajes que hayan causado algún problema al ser ingeridos por los animales. Las muestras deberán incluir varias plantas del mismo tipo, para su identicación (si es chica, se recolecta completa, incluyendo la raíz). Si la planta presenta frutos, se podrán enviar completos o cortes. Cuando la planta es grande, se toman las partes terminales con las ores o los frutos, incluyendo hojas adultas. El material recolectado se coloca en una hoja de papel periódico, procurando no maltratar las hojas, ores o frutos (se puede doblar con cuidado); además, la muestra se colocará entre dos papeles secantes (cartoncillo de 48 x 30 cm) y posteriormente se ata entre dos cartones corrugados. En dicho tipo de estudio se requiere anexar cierta información acerca de la localización de la planta (estado, municipio, rancho o predio y distancia en kilómetros de la población más cercana). Si el mismo tipo de planta se localiza en diferente zonas se deberá anexar otra hoja de datos, para hacer estudios sobre la distribución de la planta. B
Permite identicar los valores nutritivos del alimento, pastos y forrajes. Conociendo las carencias nutritivas de los alimentos, se podrá determinar si existen trastornos carenciales y evitar que la producción decaiga o se presenten enfermedades. Las muestras se envían en frascos o bolsas limpias y secas. T
Este tipo de estudios permite analizar las substancias que son causa de intoxicaciones en los animales. Los
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principios tóxicos de ciertas plantas, insecticidas, herbicidas, medicamentos y otras sustancias, cuando son ingeridas causan serios trastornos e incluso la muerte de los animales por envenenamiento o bioacumulación. Esta prueba permitirá conocer la terapia especíespecíca y controlar así la situación. Las muestras requeridas son alimentos y forrajes enviados en frascos o bolsas de plástico limpias y secas. Todas las muestras de órganos se recolectarán por separado en frascos o bolsas de plástico limpias y secas, y se enviarán congeladas sin adicción de conservadores. Si la muestra es de origen animal se tomará como sigue: ❏
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Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
F 28. Delimitación de arteria y venas marginales
Si hay signos neurológicos, de cerebelo, cerebro y médula. Si hay problemas digestivos, diarreas, vómito, entre otros, de intestinos, bazo, hígado, riñón y estómago. Si hay alteraciones respiratorias, de pulmón y tráquea.
H
Permite conocer un proceso patológico a través de las alteraciones que sufren los diferentes elementos que constituyen la sangre. Este tipo de pruebas se realiza con anticoagulante. La muestra se obtiene de las venas superciales del animal y una vez obtenida se le da un movimiento rotatorio suave para que la sangre se mezcle perfectamente con el anticoagulante (EDTA, heparina), y se deposita lentamente en un tubo. La muestra deberá de ser remitida como máximo ocho horas después de haberse tomado. Generalmente este tipo de muestras se acompañan de un frotis.
F 29. Sangrado en vena metatarsiana en ratón. B
Permite la realización del diagnóstico, pronóstico y terapéutica en deciencias nutricionales o alteracioalteraciones del metabolismo. La muestra requerida para para este estudio es el suero sanguíneo no hemolizado y centrifugado en una cantidad no menor de 5 mL. La muestra será obtenida a través de las venas accesibles del animal, llenando el tubo en sus dos terceras partes; si se obtiene el suero, este puede ser congelado para su preservación o envío. B
F 27. Punción del plexo venoso orbitario en ratón.
Se pueden obtener muestras de órganos, tejidos, líquidos orgánicos (leche, orina, líquido peritoneal, semen), así como de exudados, excremento, forrajes, concentrados, agua e hisopos de bebederos, comederos, jaulas. Las muestras para este tipo de estudios deben tomarse a lo sumo una hora después de la muerte del animal y deberán ser enviadas sin conservadores, procurando que vayan refrigeradas. Si se va a retrasar
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
el envío de la muestra, hay que evitar en lo posible que del agua antes de la toma, depositándola en un frasco sobrepase el límite máximo de 10 horas. Las muestras estéril, que se sella con cinta adhesiva. Estas muestras deben enviarse cada una por separado para evitar que deberán enviarse rápidamente al laboratorio y refrigese contaminen. Las tomas se realizarán de acuerdo rarlas (si el agua estaba clorinada, se puede inactivar con el tipo de afecciones que se va a evaluar, entre las el cloro con 1 mL de una solución al 10% de tiosulfato cuales se encuentran: de sodio). ÓRGANOS Y TEJIDOS
A
Se toman muestras representativas de la lesión, que abarquen una zona sana circundante; se guardan en frascos limpios de boca ancha. Para evitar contaminaciones, no deben almacenarse juntos órganos o tejidos diferentes.
Esta prueba permite detectar no sólo trastornos en riñones, vejiga y órganos accesorios urinarios, sino también de otros órganos y tejidos del organismo. La muestra se recolecta en un frasco estéril o limpio y deberá de ser preferentemente de la primera orina de la mañana, permitiendo que salga una muestra inicial y pequeña de orina, para después recolectar la muestra, evitando el contacto con las manos del operador y con otras partes del cuerpo o con excretas.
E XCREMENTO XCREMENTO Y EXUDADOS DE ÓRGANOS DE ÓRGANOS GENITALES Se recomienda la toma de muestras con hisopos estériles, por vía rectal, vaginal o prepucial (previa desinfección del entorno). Una vez obtenida la muestra, se coloca dentro de un tubo con o sin medio de transporte y tapón de rosca, evitando dejar dentro del tubo la zona de donde se manejó el hisopo. LÍQUIDOS CORPORALES Orina La muestra se toma preferentemente a primera hora, evitando contacto con el exterior. ❏
Leche Cuando se observa o sospecha de la presencia de mastitis, podrá ser tomada una muestra, desinfectando el pezón y la zona aledaña con alcohol al 70% o cloruro de benzalconio, eliminando la primera leche que salga y recolectando la mayor cantidad posible (hasta 10 mL), según la especie. ❏
Otros líquidos Se puede recolectar sangre, líquido cefalorraquídeo y ascítico; en cuanto al cadáver, se pueden obtener líquidos pleural, peritoneal, hidropericárdico y contenido estomacal, los cuales pueden ser recolectados con hisopos o con jeringa estéril y colocados en frascos estériles, herméticos mantenidos en refrigeración. ❏
A
Se toma una pequeña cantidad de alimento, principalmente del que los animales tienen acceso, y se introduce en una frasco estéril. En el caso del agua se recomienda esterilizar (ameado) la salida de la toma de donde se obtendrá la muestra, dejando correr un poco
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P
Determinar los diferentes tipos de parásitos que pueden estar presentes en los modelos animales. Las pruebas pueden involucrar la toma de muestras de: E XCREMENTO XCREMENTO La toma se deberá depositar en un frasco limpio y seco, procurando que la muestra no caiga al suelo, o tomarla directamente del ano. En el caso de conejos y roedores es común que durante la manipulación éstos defequen. R ASPADO ASPADO DE PIEL DE PIEL La muestra es tomada de la orilla de la lesión con una navaja de mango y humedecida con glicerina, se raspa la epidermis hasta que aparezcan puntos rojos y se deposita en un recipiente limpio y seco. V ÍSCERAS ÍSCERAS Las vísceras empleadas incluyen: hígado, pulmones y tracto gastrointestinal, los cuales pueden obtenerse durante la necropsia. Asimismo, se puede enviar exudado de prepucio o de vagina. M
Determina la presencia de hongos que puedan estar infectando un animal de laboratorio y provocando diversos tipos de lesiones que pueden ser confundidos por bacterias, sobre todo si el animal no ha respondido al tratamiento con antibióticos. La recolección de
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la muestra se realiza por medio de un raspado de piel, que incluya pelos de la zona aledaña y parte de piel sana, depositándola en un frasco limpio y seco. S
Cuando una enfermedad no puede ser diagnosticada por medio del aislamiento e identicación del agente causal, se tendrá que recurrir a las pruebas del suero sanguíneo de los animales afectados. La muestra se obtiene de la sangre de las venas accesibles. El tubo es llenado en sus dos terceras partes (nunca menos de 2 mL) y se deja en posición inclinada a temperatura ambiente, para que forme el coágulo. Una vez formado, se vacía el suero a un tubo limpio y se congela para enviarse al laboratorio. V
Permite comprobar la presencia de enfermedades virales a través de cultivo de tejidos. Para este tipo de estudios, es preferible tener al animal vivo que muerto, pero cuando esto no es posible, se envían las vísceras afectadas. Es importante considerar que los virus se inactivan más rápidamente que las bacterias, por lo que deben ser enviados lo antes posible. Las muestras muestras pueden ser conservadas en refrigeración, congeladas o en una solución de glicerina fosfatada o de glicerina al 50 por ciento. I
Es una prueba muy exacta y rápida que se emplea para el diagnóstico de rabia, y otras enfermedades. enfermedades. La muestra podrá variar de acuerdo con la enfermedad, entre las que se encuentran: ❏
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Metodología diagnóstica en animales de laboratorio
Laringotraqueitis: Laringotraqueitis: tráquea. Newcastle: Newcastle: improntas de córnea jadas en acetona durante 10 min. Cólera: Cólera: linfonodos, placas amigdalinas, bazo y riñón. Aujesky: Aujesky: cerebro, tejido celular subcutáneo.
Las muestras se enviarán en frascos limpios con glicerina al 50% (mitad agua y mitad glicerina) para evitar su descomposición.
INTEGRACIÓN DE DELL DIAGNÓSTICO La integración consiste en recopilar y analizar la información obtenida durante el cuestionamiento de la visita, incorporando las observaciones realizadas durante la ronda clínica de instalaciones, la revisión clínica de los animales, aunado a los resultados obtenidos de los exámenes de laboratorio llevados a cabo.
DIAGNÓSTICO DEFINITIVO Se fundamenta en la integración de la información proporcionada, así como del análisis racional de los factores que interactúan en la causa del problema o enfermedad, a través de las observaciones hechas durante la ronda, información obtenida, así como del examen físico realizado y la interpretación de los resultados de pruebas de laboratorio, a los cuales se aplicarán los conocimientos y criterio profesional, que permita emitir un diagnóstico veraz y conable, que esté basado en evidencias vericables, con el objeto de implantar la terapéutica apropiada y las medidas preventivas o sanitarias necesarias.
Rabia: Rabia: encéfalo (cerebro).
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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Metodología diagnóstica en fauna silvestre Dulce María Brousset
INTRODUCCIÓN L L G de Vida Silvestre dene a la fauna silvestre como: “Especies animales que subsisten sujetas a los procesos de selección natural y que se desarrollan libremente, incluyendo sus poblaciones menores que se encuentran bajo el control del hombre, así como los animales domésticos que por abandono se tornen salvajes y por ello sean susceptibles de captura y apropiación”. Por lo tanto, el médico veterinario (MV) dedicado a la fauna silvestre requiere tener conocimientos de la anatomía y la siología de una gran variedad de especies, que incluye invertebrados, peces, anbios, reptiles, aves y mamíferos. El trabajo del MV con fauna silvestre abarca dos grandes áreas: el manejo en cautiverio y las poblaciones en vida libre. Dentro de la primera, las actividades se realizan, ya sea con grupos de diversas especies, como es el caso de las colecciones zoológicas, delnarios, criaderos, etcétera; o bien, con individuos, lo cual corresponde a lo que en general se denomina manejo de animales de compañía no tradicionales. Por lo tanto, los conocimientos generales con los que debe contar el veterinario que trabaja con fauna silvestre pueden variar en tanto se trate de animales cautivos o silvestres; sin embargo, en todos los casos debe conocer las características propias de las especies con las que trabaja, entre las que destacan la distribución natural y situación actual de las poblaciones silvestres, taxonomía y relaciones logenéticas, requerimientos particulares de alimentación, instalaciones, manejo y problemas o enfermedades especícos de la especie. Además, cuando el MV decide incluir a la fauna silvestre dentro de su práctica profesional, su responsabilidad no se limita a garantizar la buena salud de estos individuos para su mantenimiento; también está obligado a conocer la normatividad relacionada con la legalidad de la procedencia de los ejemplares, la situación de las especies en sus poblaciones silvestres e, incluso, cuáles de ellas se crían en cautiverio para su comercialización y cuáles son sometidas a tráco ilegal. Debido a esto, los médicos veterinarios deberán estar informados de cuáles son las especies silvestres del propio país, que puedan estar sujetas a protección dentro del marco legal especíco, ya que, además de conocer y acatar las regulaciones en materia de salud pública, los veterinarios tienen que conocer y acatar las leyes, reglamentos y normas ociales nacionales e internacionales que se reeren a la fauna silvestre y al bienestar animal.
Metodología Diagnóstica Veterinaria
La medicina de la fauna silvestre, en general, aplica los mismos principios que se aplican para los animales domésticos. La metodología que se utiliza para el diagnóstico y tratamiento es muy similar, simplemente hay que considerar las características particulares y las necesidades de las diferentes especies. La selección de las pruebas diagnósticas y su interpretación en las especies de fauna silvestre depende del conocimiento de la siopatología particular, asociada a la condición del paciente, así como a la facilidad de manejo de los animales. No obstante, la aplicación en estas especies de las generalidades de la metodología diagnóstica veterinaria depende del grupo taxonómico y la función zootécnica especíca. Por ejemplo, una gran parte de la metodología descrita en el capítulo de perros y gatos puede ser usada en los demás mamíferos del orden de los carnívoros (lobos, jaguares, osos, hienas, mapaches, coatís, zorrillos, pandas, entre muchas otras especies), como base para realizar el examen físico, identicar anormalidades, interpretar los hallazgos y seleccionar las pruebas diagnósticas adecuadas. De la misma manera ocurre con la información contenida en los otros capítulos del libro: la metodología diagnóstica de los caballos domésticos es la base para los demás perisodáctilos (cebras, tapires, rinocerontes, etc.), la de los rumiantes domésticos, para los demás artiodáctilos (venados, antílopes, jirafas, etc.), y la de los capítulos de conejos y animales de laboratorio, para todas las demás especies de roedores y lagomorfos. Debido a lo anterior, en este capítulo no se describirá cómo se realiza un examen ortopédico, los nombres de las lesiones dermatológicas o de los sonidos respiratorios anormales, ya que esta información está contenida en los capítulos anteriores. Asímismo, debido a la gran diversidad de especies de animales silvestres que existen, en este capítulo sólo se incluirán algunos ejemplos de las aplicaciones, modicaciones
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o limitaciones de la metodología diagnóstica cuando es aplicada a alguna especie de fauna silvestre en particular. El tipo de manejo que se puede realizar con estas especies varía desde individuos mantenidos para colecciones particulares, grupos de animales en zoológicos o criaderos, hasta poblaciones silvestres. Esto modica el enfoque de la medicina que se hace en cada caso, así como las posibilidades de conocer los antecedentes del animal, o de realizar el seguimiento del mismo. En algunas situaciones la medicina preventiva es prioritaria, como ocurre, por ejemplo, con los zoológicos, los programas de recuperación de especies en peligro de extinción o los criaderos. En otros, como los mantenidos como animales de compañía o en los individuos provenientes de vida libre sometidos a programas de rehabilitación, el diagnóstico y resolución de casos clínicos es lo más frecuente. Para las poblaciones silvestres, el manejo de las enfermedades emergentes, la epidemiología y las contingencias ambientales son prioritarias. Todo esto inuye en la manera en que el MV aborda los problemas médicos de la fauna silvestre, ya que en algunas ocasiones la historia clínica puede ser inexistente, o ser la mayor fuente de información;, en otras, los signos clínicos o las lesiones encontradas son decisivas, y en algunas más, el comportamiento de la enfermedad en la población o los hallazgos a la necropsia son los puntos clave. Además, el grado de dicultad para la contención y el manejo varía según la especie y las condiciones en las que el animal se encuentre, lo que se reeja en las posibilidades que tendrá el veterinario para examinarlo y obtener las muestras necesarias. Sin embargo, en todos los casos el sistema de diagnóstico orientado a problemas puede ser aplicado, aunque sea con algunas modicaciones.
PARTE 2 - CAPÍTULO 7
CONTENCIÓN Y MANEJO EN FAUNA SILVESTRE: GENERALIDADES
Cualquier persona que decida restringir la actividad de un animal, o contenerlo, asume una responsabilidad que no debe tomarse a la ligera, pues este procedimiento siempre tiene un efecto sobre el comportamiento, la vida o las actividades de un animal y, en general, representa un hecho estresante. En cada intento de contención o manejo de algún animal silvestre es necesario analizar las siguientes cuestiones: ¿Por qué debe contenerse al animal?, ¿qué procedimiento producirá el mayor benecio con los menores daños?, ¿cuándo sería el mejor momento para llevarlo a cabo? y ¿quién es la persona mejor calicada para realizarlo de manera que produzca el menor estrés en el animal? Los factores que deben considerarse para elegir el tipo de contención incluyen: seguridad para el personal, seguridad para el animal, capacidad para realizar el procedimiento planeado y la evaluación posterior del animal hasta su recuperación completa. En todos los casos, una contención o manejo exitoso requiere de un proceso previo de planeación detallada, donde es necesario considerar aspectos de la especie, las instalaciones o el lugar, el procedimiento que se realizará y el personal que estará involucrado. Por ejemplo, con respecto a la especie, se deberá poner atención en la edad, grupo social, número de animales que se va a manejar, estado siológico y de salud del animal, etcétera. En relación con las instalaciones, debe valorarse si es posible aislar al individuo que se manejará; si se requiere vaciar o limitar el acceso a bebederos, comederos o estanques; si existen zonas donde el animal podría lastimarse en caso de que se estrese durante el manejo. Con respecto al procedimiento, es necesario denir el objetivo del manejo, nivel de urgencia, duración estimada, equipo y recursos disponibles, clima, fecha y hora del día, entre otros. Asimismo, se deberá tener en cuenta quién será el personal involucrado, su nivel de experiencia, el número de personas necesario, etcétera. Finalmente, se realizará un plan de contingencias y urgencias, con el n de prevenir las complicaciones posibles, o por lo menos estar preparados para afrontarlas. Se recomienda llevar a cabo una reunión del personal requerido para el procedimiento antes del manejo, con el n de acordar las funciones de los participan-
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Metodología diagnóstica en fauna silvestre
tes y los preparativos que se requieren en el animal y el albergue. Además, deberá realizarse otra reunión una vez terminado el manejo, en la cual pueda revisarse el procedimiento y se hagan los ajustes necesarios para prevenir en el futuro cualquier complicación que se haya presentado. También es indispensable llevar un sistema de registro de todos estos procesos, los cuales podrán ser revisados cuando haya que volver a manejar a los animales. Los principios de la contención y manejo se aplican a todas las clases de animales. El grado de contención varía desde el connamiento en un ambiente articial, hasta la restricción completa de la actividad muscular o la inmovilización. Actualmente en la fauna silvestre se realizan tres tipos de contención y manejo: ❏
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Condicionamiento operante por refuerzo positivo o entrenamiento Contención física Contención química
CONDICIONAMIENTO OPERANTE POR REFUERZO POSITIVO O ENTRENAMIENTO Para poder trabajar de manera segura en la contención y manejo de los animales es necesario entender sus características conductuales y su siología. Para el manejo de la fauna silvestre mantenida en cautiverio, el entrenamiento por condicionamiento operante mediante refuerzo positivo ha tenido un gran auge en los últimos años. El objetivo de esta técnica es permitir que el animal se familiarice con ciertos procedimientos para que éstos tengan un menor impacto negativo cuando deban llevarse a cabo. Por consiguiente, la mayor ventaja que se obtiene es un menor grado de estrés y el aumento en la facilidad para tener acceso al animal. Sus mayores desventajas son el prolongado tiempo que se invierte en llevarlo a cabo, la necesidad de personal capacitado en el área y la limitación de su aplicación para procedimientos dolorosos. El entrenamiento requiere del establecimiento de un vínculo de conanza entre el manejador y el animal. Esto es un fenómeno conductual complejo que implica un largo proceso de manejo, el cual incluye diversas etapas sucesivas y no se extiende a cualquier otra persona relacionada con el animal. Hoy en día se utiliza esta técnica para facilitar la contención y el manejo en una gran diversidad de es-
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
pecies de mamíferos, aves y reptiles mantenidos en cautiverio. Algunas de las que han recibido mayor atención son aquellas que tradicionalmente representan mayor grado de dicultad para la contención física o química, entre otras: elefantes, rinocerontes, jirafas, delnes, grandes felinos y osos. Los procedimientos para los cuales se ha usado varían, desde el cambio de un albergue a otro, hasta la realización del examen físico, la obtención de muestras biológicas como sangre o semen, la aplicación de tratamientos médicos o pruebas clínicas como ultrasonido y radiografías, entre otras.
CONTENCIÓN FÍSICA Los conceptos de distancia social, individual y de huida tienen particular relevancia en el manejo y contención de la fauna silvestre: los animales están habituados a ciertas interacciones sociales y responden de manera negativa a la violación de su distancia social, ya sea huyendo o manteniéndose quietos. La distancia de huida varía entre especies, dependiendo de su agilidad, velocidad y de las características de la amenaza; pero también varía entre individuos de una misma especie, de acuerdo con la habituación que tengan a ciertos estímulos o amenazas. Cuando se viola esta distancia en un animal, la respuesta es generalmente explosiva y los animales pueden tratar de huir o defenderse a su máxima capacidad, incluso intentarán huir a través de una malla, foso, etcétera, sin medir las consecuencias. En todos los casos, es necesario estar familiarizado con el comportamiento y la anatomía y siología de la especie que va a manipularse, incluyendo las conductas de defensa, la distancia de los miembros, la agilidad y destreza, el comportamiento social, etcétera, de manera que pueda elegirse una técnica de contención y manejo que tome en cuenta estas características y prevenga las complicaciones. La contención física consiste en la restricción de los movimientos del animal por medio del empleo de diversas técnicas, cuyo objetivo puede ser: a) disminuir la percepción sensorial del animal, b) connarlo, c) crear barreras físicas o d) obtener una extensión de los brazos del manejador o aumentar su fuerza.
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F 1. Erizo africano, mostrando su comportamiento natural de enrollarse como medida de defensa. D
Una de las técnicas más utilizada es la reducción o eliminación de la comunicación visual de un animal con su entorno. Esto puede lograrse a través del manejo de un animal diurno en un ambiente oscuro, o viceversa, cubriendo los ojos o la cabeza del animal o colocándole una capucha. Una vez realizado esto, los animales generalmente permanecen quietos. Los sonidos también deben disminuirse durante el manejo y la contención de los animales; por esto, se evitarán los motores, vehículos o voces altas mientras se lleva a cabo el procedimiento. Una alternativa es colocar una barrera en los oídos de los animales, sin olvidar retirarla antes de liberarlos. La mayoría de los animales silvestres que no están habituados a la cercanía de los hombres responden de manera negativa al contacto, por lo que una vez que se captura al animal podrá disminuirse el estrés si sólo se le toca lo estrictamente necesario. C
El grado de connamiento varía ampliamente, dependiendo de la especie y las necesidades del manejo. Para las especies de fauna silvestre en vida libre, colocarlas en un área amplia delimitada por una malla representa connamiento y provoca cierto grado de estrés. El connamiento puede ser intensicado de manera progresiva, primero en albergues de exhibición, siguiendo con albergues nocturnos, después en jaulas de transporte, hasta aquellos que tienen contacto físico directo con el animal. Entre estos últimos se encuentran las jaulas de compresión, mangas de manejo, bolsas o sacos, toallas, tubos de plástico o redes.
PARTE 2 - CAPÍTULO 7
B
Éstas se utilizan para proteger al manejador y al animal o para permitir que los manejadores se acerquen sin alarmar al animal. Entre los más empleados están los escudos y toallas. Los animales reconocen los objetos opacos como una barrera, como el plástico negro, mientras que no es así con una cerca de alambre o madera. Por esto, los animales pueden ser dirigidos a las cajas de embarque u otro albergue utilizando estos materiales para formar “paredes sólidas” a través de las cuales guiar a los animales, especialmente a los artiodáctilos y perisodáctilos. E z
Las cuerdas, domadores, redes, pinzas y ganchos herpetológicos son excelentes formas de extender el rango de acción de los brazos y permitir la realización de procedimientos cortos como inyecciones, revisiones u obtención de algunas muestras. Es necesario conocer las características del material con que están fabricados (nylon, algodón, etc.), ya que cada uno tiene diferentes grados de fuerza y elasticidad. Muchos de los procedimientos de contención y manejo requieren del uso de las manos y es necesario protegerlas por medio del conocimiento del animal, en forma detallada, y de dónde y cómo sujetar de forma correcta a las diferentes especies. También pueden utilizarse guantes para facilitar el manejo de algunos animales, sin embargo, conforme estos son más gruesos, disminuye más la sensación del tacto a través de ellos, además de que éstos no son una garantía de protección contra las mordidas.
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Metodología diagnóstica en fauna silvestre
CONTENCIÓN QUÍMICA Actualmente existe una gran diversidad de medicamentos que pueden ser empleados para la contención de las diferentes especies de fauna silvestre. La búsqueda de medicamentos que satisfagan todos los requerimientos de seguridad y efectividad aún continúa; sin embargo, cada día son más los que cuentan con un alto índice terapéutico (dosis letal / dosis efectiva). Otras características deseables de estos fármacos son un periodo de inducción corto, capacidad de ser mezclados con otros medicamentos, no ser irritantes, que se cuente con un antagonista, no provoquen efectos colaterales, sean estables durante largo tiempo, se produzcan en diferentes concentraciones, sean seguros para el personal y de un costo poco elevado. Para usar la contención química el primer reto es la administración del fármaco en algún sitio que permita su absorción. Las técnicas varían entre especies, individuos, distancia requerida del animal, posibilidad de connarlo temporal o parcialmente, habilidades del manejador y equipo disponible. La vía de aplicación más común es la intramuscular, aunque en algunas ocasiones puede ser oral, endovenosa, inhalada, etcétera. La inyección intramuscular puede realizarse directamente, tanto manual como utilizando una extensión (como el telecisto), o a distancia, por medio de dardos que se disparan desde una cerbatana, una pistola o un rie de captura. La dosis del medicamento se calcula con base en el peso del animal; sin embargo, en la mayoría de los casos no es posible conocer el peso exacto antes de la administración del medicamento. Por esto es necesario desarrollar la habilidad para estimarlo de una manera certera y, en todos los casos, se recomienda veri car el peso del animal una vez que se tenga acceso a él.
COMPLICACIONES DURANTE LA
F 2. Contención física de una paloma
CONTENCIÓN O MANEJO La contención y manejo exitoso de la fauna silvestre es una habilidad que requiere de conocimientos técnicos y biológicos especícos, así como de suciente experiencia, adquirida a través de la repetición y modicación a partir de las complicaciones que se hayan presentado. Hay muchos factores involucrados y el manejador no debe sólo considerar el equipo que va a utilizar y las condiciones del animal, sino también
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
sus habilidades personales. Si no se cuenta con los conocimientos y entrenamiento especíco de la técnica seleccionada, será muy difícil aplicarla de manera satisfactoria. Las causas de las fallas en los procedimientos de inmovilización pueden clasicarse en tres grandes rubros: falla del equipo, falla del manejador y factores misceláneos, como el clima. En cualquiera de los casos anteriores, es necesario estar preparado para las posibles complicaciones y emergencias derivadas de alguna falla en el procedimiento de manejo o contención, tanto en el animal como en el personal involucrado. No obstante, el margen de error siempre podrá disminuirse si se lleva a cabo una planeación exhaustiva del procedimiento y, una vez terminado el mismo, se analiza lo que ocurrió y se realizan los ajustes necesarios para prevenir en el futuro cualquier complicación similar a la que se haya presentado.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN FAUNA SILVESTRE EN CAUTIVERIO La fauna silvestre en general, como medida de supervivencia, enmascara la presentación de signos clínicos para evitar la depredación. Aunado a esto, las dicultades inherentes al manejo de la mayoría de las especies de fauna silvestre y al estrés asociado con las contenciones repetidas, han hecho que la medicina preventiva, más que la curación de los problemas médicos, sea prioritaria. Los programas de medicina preventiva para estas especies abarcan muchos rubros, entre los que destacan la cuarentena, vacunación, uso de bacterinas, desparasitación, higiene, limpieza y desinfección de instalaciones o equipo, salud pública, etcétera. Uno de los puntos del programa de medicina preventiva que vale la pena destacar en este capítulo es la detección temprana de los problemas médicos a través de la realización de evaluaciones clínicas periódicas en todos los animales de la colección. Esto presenta muchas ventajas, por ejemplo, se tiene mayor control de los procedimientos de contención y manejo, ya que se llevan a cabo de manera planeada y en animales sanos, lo que además permite adquirir conanza y experiencia en el manejo de las diferentes especies y generar registros anestésicos que sirven como antecedente cuando es necesario manejar al animal en una situación de urgencia. Otra ventaja es que se realizan
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exámenes clínicos y se obtienen diversas muestras biológicas a partir de animales sanos, con lo cual se puede ir generando no sólo un expediente para cada individuo, sino también conocer los parámetros normales de la colección. Además, cada uno de estos manejos le proporciona al médico la oportunidad de familiarizarse con la anatomía y siología normal de las distintas especies que se mantienen en el inventario. Estas evaluaciones médicas de rutina, y la obtención de muestras biológicas durante las mismas, hace posible la creación de un banco donde se conserven para posteriormente realizar exámenes adicionales o estudios retrospectivos; un ejemplo de este tipo de análisis son las evaluaciones serológicas retrospectivas de toda la colección cuando se presenta una nueva enfermedad y se desea saber el momento en el que ésta entró al zoológico o en cuál especie se presentó por primera vez. La metodología para el diagnóstico y tratamiento de los problemas de salud en la fauna silvestre es muy similar a la descrita para animales domésticos, ya sea en la medicina de individuos, cuando se mantienen como animales de compañía no tradicionales, o en la medicina de poblaciones, cuando se encuentran en criaderos, zoológicos, etcétera. Sin embargo, hay que considerar las características particulares y las necesidades de las diferentes especies. En general es posible practicar un examen físico completo; una evaluación del hemograma y bioquímica clínica; un análisis de orina; radiografías, ultrasonido y otras pruebas de imagen como la endoscopia exible y rígida, resonancia magnética o tomografía computarizada; además de exámenes coproparasitoscópicos, estudios reproductivos, citológicos e histopatológicos, incluyendo improntas, raspados, frotis, biopsias y otras técnicas de aspiración; lavados gástricos y traqueales; cultivos bacterianos o micológicos, y cirugías exploratorias, entre otras, por ejemplo, la necropsia, que en estas especies es considerada como una técnica diagnóstica particularmente importante, ya que no sólo permite establecer un diagnóstico denitivo de la causa de la muerte del animal, sino que también brinda al MV la oportunidad de familiarizarse con la anatomía normal de las diferentes especies de la colección, corroborar los cambios o lesiones que se identicaron en otras pruebas diagnósticas, como palpación, radiografías o ultrasonidos, y también ofrece la opción de desarrollar un banco de material biológico.
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La selección de las pruebas diagnósticas y su interpretación en las diferentes especies de fauna silvestre depende del conocimiento que se tenga sobre las características normales en cada especie y la siopatología particular asociada a la condición del paciente; por ejemplo, cuando se realiza un hemograma es necesario saber que los eritrocitos de las aves, reptiles, an bios y peces son nucleados y que la muestra no puede ser analizada en un equipo calibrado para mamíferos, el cual interpreta como leucocitos a cualquier célula sanguínea nucleada. Es importante considerar que para muchas especies de fauna silvestre los valores de referencia aún están en proceso de establecerse, ya sea porque se ha tenido acceso a un número limitado de muestras o porque todas provienen de una misma colección, y cuando se hace la interpretación de una prueba diagnóstica de un individuo en particular es posible encontrar variaciones importantes entre individuos de la misma especie o en aquellos pertenecientes al mismo orden o familia. Otro ejemplo es la necesidad de que las pruebas serológicas que han sido desarrolladas para seres humanos y animales domésticos sean validadas para su uso en diferentes especies de animales silvestres. La utilización de pruebas serológicas, como aglutinación, radioinmunoensayo, ELISA, etcétera, es frecuente en la fauna silvestre, pero en los laboratorios disponibles en México no se cuenta con todas las técnicas establecidas para cada una de las enfermedades que pueden estar presentes en estas especies. Estas pruebas permiten diferenciar entre animales expuestos a un organismo patógeno y aquellos que no han estado expuestos, aunque el grado de conanza de los resultados no es tan alto como en otras pruebas más especícas como el PCR. El problema es que la mayoría de este tipo de pruebas se aplican sin la validación correspondiente, inriendo que la especicidad es la misma entre animales domésticos y silvestres. Es necesario considerar que pueden existir diferencias entre cepas o serovariedades del organismo patógeno y entre las respuestas serológicas de los diferentes huéspedes, y además, la posibilidad de exposición a organismos antigénicamente similares que pudieran provocar la producción de anticuerpos que causan una reacción cruzada. Cabe agregar que algunas pruebas necesitan reactivos y otros componentes que son especícos de especie, pero éstos no se encuentran disponibles comercialmente para el caso de fauna silvestre.
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Metodología diagnóstica en fauna silvestre
Un ejemplo de lo anterior es el diagnóstico de tuberculosis en fauna silvestre. Esta es una enfermedad que causa una morbilidad y mortalidad importante, tanto en animales domésticos como en las especies silvestres y, aunque existe una amplia variedad de mycobacterias que son patógenas en mamíferos, aves, reptiles, anbios y peces, el término “tuberculosis” se reere a la infección por organismos especícos del complejo Mycobacterium tuberculosis. La importancia del diagnóstico de la enfermedad se basa, tanto en que existe una amplia interacción de animales silvestres con el ganado doméstico, como en el riesgo zoonótico y de salud pública. Por lo tanto, el diagnóstico rápido y preciso en las especies silvestres no sólo es relevante para el veterinario de zoológico. Sin embargo, hoy en día no existe ninguna prueba diagnóstica ante mortem que sea 100% conable para detectar la enfermedad en las especies silvestres y se requiere de la combinación de múltiples pruebas, muchas de las cuales no han sido validadas para estos animales, y siempre se recomienda tener mucha cautela y conocer las limitaciones de cada análisis al momento de interpretar los resultados. Algunas de las pruebas que pueden ser combinadas para elaborar el diagnóstico de tuberculosis en fauna silvestre son: cultivo e identicación de la especie, pero con la limitante de que no en todos los casos es posible y tarda por lo menos ocho semanas; la tinción ácido-alcohol resistente, pero hay otros microorganismos que pueden dar resultados positivos, como Nocardia sp.; la de intradermorreacción, que presenta muchos problemas para su interpretación en fauna silvestre, pues existen respuestas anérgicas en animales con la enfermedad fulminante, hay gran variabilidad en la respuesta individual entre individuos y especies, hay falsos positivos y falsos negativos y se sabe que algunas especies de zoológico presentan muchas reacciones no especícas después de realizar esta prueba, como es el caso de los tapires y orangutanes. En otras especies, como los elefantes, el diagnóstico de la enfermedad debe incluir siempre una prueba directa positiva a partir del lavado de la trompa, ya sea tinción de Ziehl-Neelsen, cultivo o PCR. A continuación se mencionarán algunos de los puntos más importantes que deben tenerse en cuenta al aplicar los principios de la metodología diagnóstica en los diferentes grupos de fauna silvestre, con particular atención en las diferencias especícas con respecto a lo que generalmente se realiza en animales
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domésticos. Debido a que la toma de muestras de laboratorio es una parte integral de la evaluación clínica de un paciente, se recomienda colectarlas durante el mismo manejo que se efectúe para el examen físico, ya que un nuevo manejo aumentará el estrés causado en el paciente. En todas las especies de fauna silvestre, igual a lo que ocurre en los animales domésticos, cada tipo de muestra puede ser utilizada para una amplia variedad de pruebas diagnósticas, pero antes de colectarla es necesario denir cuáles de estas pruebas se llevarán a cabo, ya que algunas requieren condiciones particulares en la toma, conservación y transporte.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN AVES SILVESTRES La evaluación clínica es una parte esencial del diagnóstico de las enfermedades en las aves y requiere de la contención y manejo de los animales para poder realizarla en forma completa. Para examinar un ave hay varios prerrequisitos importantes, el primero es asegurarse de tener una historia lo más precisa posible, que incluya información no sólo del ave, sino también de su ambiente, el manejo que recibe, antecedentes, etcétera. Al igual que en cualquier otra especie, debe ser elaborada de forma metódica y sistemática. El tipo de información que debe contener es muy similar al que se recaba para las especies domésticas; sin embargo, los signos clínicos en los mamíferos son más evidentes que en las aves, por lo que se requiere de un interrogatorio más detallado. En la historia clínica se registra una descripción general del problema actual, así como los antecedentes médicos, prestando especial atención a los signos clínicos, la duración del problema, la actitud del ave, si tiene la posibilidad de volar en su albergue, el consumo de agua y alimento, la consistencia y apariencia de las excretas, el estado reproductivo y las medicaciones y tratamientos que se hayan realizado. Asimismo, deben incluirse las características de la jaula o albergue, el tamaño, materiales, vegetación, ubicación, perchas, nidos, comederos, bebederos, otros individuos en la misma jaula (de la misma especie o diferente) y el contacto con aves silvestres o ferales. Por último, es importante asentar la información relacionada con el tipo de dieta, cambios recientes, fuente y almacenaje del alimento.
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Después de obtener la historia completa, se observa al ave, sin manejarla, tanto cuando el animal esté consciente de la presencia del médico, como cuando no lo vea. La observación debe ser sistemática, evaluando la respuesta del ave ante la presencia de las personas y los ruidos, así como su actitud; además pueden evaluarse las características de la respiración, como la frecuencia, e identicar movimientos respiratorios anormales que puedan indicar insuciencia. Finalmente, para realizar el examen físico es necesario manejar al ave; debe entonces tomarse en cuenta que entre más se restrinjan los movimientos del animal, más se estresará y menos “normal” se encontrará al momento de examinarla; si esto no se tiene presente, la interpretación de los hallazgos puede complicarse. Todas las aves deben pesarse una vez que se tiene acceso a ellas, y en seguida iniciar el examen físico, que deberá ser completo y sistemático, e incluir: cabeza, cuello, cuerpo, alas, patas y cola, siempre comparando ambos lados. Es imposible describir aquí con detalle todos los puntos que deben formar parte del examen físico de un ave, especialmente por la gran diversidad de especies que existen y, en consecuencia, por las muchas variaciones en tamaño, forma y anatomía; sin embargo, a continuación se presentan algunos de los puntos más importantes. El pico debe tener una apariencia normal, ser simétrico bilateralmente, sin lesiones o evidencias de daño; la morfología normal varía mucho de acuerdo con la especie de ave de que se trate y los hábitos alimenticios. Las narinas normalmente son del mismo tamaño y apariencia. Hay que vericar la presencia o ausencia de cualquier tipo de secreción. La mucosa oral debe ser de color normal, sin lesiones en ella o en las estructuras asociadas, como la glotis; en su morfología normal hay muchas variaciones, de acuerdo con la especie. Los oídos deben estar libres de cualquier tipo de secreción, cuerpos extraños o parásitos externos, como miasis. En el cuello se evalúa la presencia de alguna inamación y las condiciones del ingluvis (buche): si hay alimento, impactación, etcétera. El cuerpo en general se palpa para identicar heridas, lesiones o inamación y se complementa con la auscultación y percusión. La cloaca debe observarse limpia, sin restos de uratos o heces ni inamación. En las alas y miembros pélvicos se revisa que no existan heridas o inamación y que las estructuras óseas estén normales; además de la apariencia general de las plumas primarias, secunda-
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rias y coberteras en las alas y en los miembros pélvicos, se revisan la piel, las uñas y la función de los miembros para pararse y caminar; también se investigará la presencia de lesiones de pododoermatitis. Deben revisarse las plumas de la cola para vericar su integridad y la existencia de marcas de estrés, así como la glándula uropigial, en las especies en que está presente. La temperatura normal de un ave varía entre 40 y 41 °C; pero es un parámetro con valor diagnóstico limitado. En las aves, debido a que no existe diafragma, la respiración normal es toracoabdominal; se recomienda obtener la frecuencia respiratoria antes de manejarlas, ya que el estrés provocará un aumento de la misma. No es posible evaluar la frecuencia cardiaca antes del manejo, por ello es necesario ser cauteloso en su interpretación, ya que los pacientes presentarán taquicardia. Los valores normales de la frecuencia cardiaca y respiratoria varían ampliamente dependiendo de la especie de ave de que se trate. Es importante que cuando se planea el manejo para realizar el examen físico de una vez se prepare el material que podría necesitarse para las muestras (agujas, jeringas, tubos, laminillas, etc.), de manera que puedan obtenerse fácil y rápidamente para no estresar más al ave. Las muestras que pueden ser colectadas son plumas, ectoparásitos, sangre, uratos y heces, exudados o material aspirado o colectado por biopsia. El volumen total de sangre de un ave es de aproximadamente 10% de su peso corporal, por lo que un animal de 30 g. tendrá alrededor de 3 mL de volumen total, y en un ave sana, puede obtenerse hasta un total de 10% (0.3 mL) sin problemas. Este volumen deberá disminuirse en aves enfermas. Hoy en día el desarrollo de microtécnicas permite realizar un hemograma completo en 0.3 mL de sangre. La obtención de muestras de sangre en las aves se puede realizar a partir de la vena cutánea ulnar supercial (que cruza inmediatamente bajo la piel en la supercie ventral de la articulación húmeroradioulnar), de la yugular (generalmente de la derecha, que es de mayor tamaño) o de la tibial caudal (supercie medial del tibiotarso). Se debe utilizar heparina de litio, particularmente en especies como los cuervos, las grullas y las avestruces, ya que el EDTA causa hemólisis progresiva. Las radiografías son una herramienta diagnóstica esencial en las aves, debido al sistema de contraste natural que proporcionan los sacos aéreos; con éstas
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se evalúa tanto el sistema músculoesquelético, como los órganos de la cavidad celómica. En las aves pueden realizarse radiografías simples y con medio de contraste positivo, incluyendo tránsitos gastrointestinales, urografías, angiografías y mielografías. Aunque existen algunos factores limitantes para la obtención de ultrasonidos en las aves, como el tamaño pequeño del animal y la presencia de los sacos aéreos, es una técnica útil para evaluar diversos órganos: hígado, riñones, gónadas, ojos, corazón (ecocardiografía), así como a pacientes con ascitis.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN REPTILES Generalmente los signos de enfermedad en los reptiles mantenidos en cautiverio son poco especícos, ya que en muchas ocasiones lo único que se presenta es anorexia, letargo, cambios conductuales o la muerte. En todos los casos será necesario obtener una historia clínica precisa y sistemática, que proporcione información sobre el animal, su albergue, alimentación, antecedentes médicos y el problema actual. Antes de realizar el manejo del reptil es necesario llevar a cabo una observación detallada, para obtener información sobre su actitud, condición corporal, postura, características de la respiración, locomoción y alguna lesión evidente. Cualquier signo de letargia severa, disnea o incoordinación son indicativos de problemas graves de salud. Una vez que se tiene acceso al ejemplar, se realiza el examen físico completo y sistemático, revisando la cabeza, cuello, cuerpo, miembros y cola, tomando en cuenta las diferencias anatómicas que existen entre los cocodrilos, serpientes, saurios y tortugas, además de las particularidades de cada especie. No se recomienda realizar el manejo de ninguna especie venenosa, a menos que se cuente con una amplia experiencia al respecto y un protocolo especíco para accidentes. La cavidad oral debe observarse limpia, de color normal sin signos de palidez, cianosis o congestión, y revisar si existen lesiones como úlceras, petequias o material caseoso. Las serpientes generalmente meten y sacan la lengua cuando se encuentran en un ambiente nuevo, ya que eso les permite obtener información, que es interpretada a través del órgano vomeronasal. La glotis se encuentra en el piso de la cavidad y los reptiles tienen control voluntario sobre ella. En los co-
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codrilos, serpientes e iguanas es necesario revisar las piezas dentales. Deben evaluarse los ojos para ver si existe resequedad, inamación, secreciones, conjuntivitis, blefaroespasmo (en las especies que presentan párpados) y simetría, así como la apertura o membrana timpánica, en las especies que la presentan. Al revisar la supercie corporal es importante vericar que no se encuentren ectoparásitos sobre o entre las escamas, ni otro tipo de lesiones, inamación, cambio de color o mudas de piel retenidas; en los pacientes deshidratados se pierde la elasticidad normal de la piel. En las tortugas hay que revisar el caparazón y plastrón para descartar queratinización o conformación anormal, ulceración o reblandecimiento de las supercies. En todas las especies es importante palpar la cavidad celómica para identicar los diversos órganos y la presencia de alguna estructura anormal o ascitis. Las especies herbívoras muestran un colon prominente durante la palpación. En las tortugas la palpación de la cavidad celómica se hace insertando los dedos cranealmente a los miembros pélvicos en la fosa prefemoral. La cloaca puede evertirse para ver el grado de hidratación, su color y buscar evidencias de materiales extraños, como sustrato, y evaluar si existe eritema, edema, traumatismos o secreciones. En aquellas especies que presentan miembros debe vericarse que no exista inamación, fracturas o disminución en el rango de movimiento; al revisar la supercie palmar y plantar hay que descartar lesiones por pododermatitis. La frecuencia cardiaca puede ser difícil de evaluar por medio de un estetoscopio, por lo que se recomienda el uso de un Doppler. En las serpientes, las muestras sanguíneas pueden obtenerse de las venas yugulares, la vena coccígea ventral o el corazón; en los cocodrilos, de la vena coccígea ventral, a la cual se puede acceder desde la cara ventral o lateral de la cola, y del seno supravertebral que se localiza sobre la línea media, en la unión de la cabeza y el cuello. En los saurios, las muestras de sangre pueden obtenerse de las venas coccígea ventral, yugular y celómica (abdominal) ventral, que se encuentra sobre la línea media. En el caso de las tortugas, de la vena yugular, el seno venoso dorsal y la vena coccígea dorsal. En general el anticoagulante que se recomienda para el hemograma en esta especie es la heparina de litio. Es conveniente realizar los frotis san-
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guíneos a partir de una muestra de sangre sin anticoagulante. Los eritrocitos de los reptiles son nucleados y su número puede verse afectado por las condiciones ambientales, el estado reproductivo, la época del año y la nutrición del animal. Como regla general, el volumen sanguíneo máximo que se recomienda obtener en los reptiles es de 0.5% de su peso corporal, lo que equivale a 0.5 mL de sangre por cada 100 g de peso; sólo en animales grandes y saludables es posible obtener un volumen mayor (1 mL/100 gr). El análisis de orina es una herramienta diagnóstica útil en los mamíferos, sin embargo, su aplicación en los reptiles es controvertida debido a que no presentan asa de Henle en los riñones y no pueden concentrar la orina; además, las serpientes no tienen vejiga urinaria y la que se colecta de la cloaca generalmente está contaminada con heces. Existen algunos reportes sobre la densidad especíca, el pH y el nivel de proteínas en la orina de algunas especies de reptiles, en particular de tortugas; pero es importante recordar que los riñones de las tortugas pueden producir orina hipo o isostenúrica y que existe intercambio de electrólitos a través de la pared de la vejiga. En los reptiles, las técnicas diagnósticas de imagen, en especial las radiografías y el ultrasonido, son muy útiles; sin embargo, su interpretación requiere de amplios conocimientos sobre la anatomía de cada especie.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN ANFIBIOS Los anbios deben ser evaluados a distancia antes de manejarlos y durante esta observación es necesario revisar la condición general y la actitud del animal, las características de su respiración, la postura, la anatomía ocular y la presencia de lesiones en la piel. Si se observan lesiones importantes en la piel, úlceras grandes, fracturas, prolapso de órganos y letargia severa, se recomienda extremar las precauciones en la planeación del manejo. En todos los casos será necesario obtener una historia clínica detallada, metódica y completa, en la cuales se pondrá especial atención en las condiciones del ambiente y la calidad del agua, además de la información general del problema actual, su duración, los antecedentes médicos, los signos clínicos, el estado reproductivo y las medicaciones y tratamientos que se hayan realizado. Asimismo, se debe incluir informa-
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ción sobre otros individuos en el mismo albergue, de la misma especie o diferentes, y sobre el contacto con animales silvestres o ferales. Por último, es importante asentar el tipo de dieta, cambios recientes, fuente y forma de almacenaje del alimento, etcétera. Una vez que se tiene acceso al anbio, deberá re gistrarse su peso corporal e iniciar un examen físico completo y sistemático. El peso de los anbios puede uctuar rápidamente debido al grado de hidratación y al volumen de orina contenido en la vejiga. También debe prestarse atención a la condición corporal, ya que la pérdida de la masa muscular en los miembros y sobre la columna vertebral sugiere problemas crónicos. La piel de los anbios puede tornarse hiperémica durante el manejo y es posible causar deshidratación cuando se realiza un manejo prolongado. En estas especies es muy importante revisar el integumento de manera completa para notar la presencia de úlceras, erosiones y laceraciones, ya que éstas facilitan la presentación de infecciones oportunistas. La palpación de la cavidad celómica puede proporcionar mucha información relacionada con la condición general del anbio. También debe evaluarse la conformación esquelética general del animal, ya que en cautiverio son frecuentes los problemas de desnutrición. Los signos vitales como la frecuencia y el ritmo cardiaco pueden evaluarse utilizando un Doppler, pero es necesario considerar que el estrés del manejo a veces provoca taquicardia. La auscultación pulmonar sólo se lleva a cabo en anbios de talla grande. Antes de realizar el manejo y el examen físico de los anbios, igual que en el resto de las especies de fauna silvestre, es conveniente preparar el material para la toma de muestras biológicas, de manera que el estrés provocado por estos procedimientos pueda ser mantenido al mínimo. En las ranas y sapos, las muestras de sangre se obtendrán de la vena abdominal ventral, el plexo venoso lingual y las venas safenas y femorales. En las salamandras y tritones las muestras se toman de la vena abdominal ventral y la ventral caudal de la cola. El volumen de sangre aproximado que puede obtenerse de manera segura en los anbios es de hasta 1% de su peso corporal (1 mL/100 g de peso) y en los animales enfermos se recomienda reducirlo a la mitad. Es preferible utilizar heparina de litio, como anticoagulante, y microcontenedores Los eritrocitos son nucleados y los resultados del hemograma y bioquímica clínica pueden
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ser difíciles de interpretar, ya que hay muchas variaciones asociadas a la especie, sexo y época del año. Existe muy poca información en relación con los cambios del leucograma asociados a enfermedad en anbios. En los anbios, el líquido de la cavidad celómica proporciona información relevante sobre el estado del animal, ya que es posible practicar en éste pruebas de proteínas totales, densidad urinaria, citología, cultivo y química. El líquido puede ser claro, azul o verde. La linfa de los anbios es equivalente al suero. Las técnicas diagnósticas por imagen, particularmente las radiografías y el ultrasonido, son excelentes herramientas diagnósticas en estas especies. Existen pocas pruebas serológicas y moleculares, como el PCR, que estén disponibles comercialmente para su uso en anbios. Sin embargo, la necropsia, por lo general, proporciona información muy valiosa; debe llevarse a cabo inmediatamente después de la muerte del animal, ya que los cambios por autólisis ocurren rápidamente.
TERAPÉUTICA EN FAUNA SILVESTRE Casi todas las elecciones terapéuticas, al tratar diferentes enfermedades en las especies no domésticas, se basan en la experiencia adquirida con animales domésticos similares. A partir de estos modelos bien conocidos se ha aprendido, por ejemplo, cuáles antibióticos son efectivos contra una bacteria en particular, como reanimar animales en colapso cardiovascular o choque; con cuáles técnicas se obtiene una mejor reparación de las fracturas complejas de huesos largos; cómo alimentar y mantener a un animal caquéxico, sólo por nombrar algunos. Este es el conocimiento que forma las bases de la medicina en fauna silvestre; pero más allá de este conocimiento, es necesario ser creativo, debido a que hay muchas diferencias entre los pacientes domésticos y los silvestres que no permiten aplicar simplemente el conocimiento básico a estas circunstancias tan inusuales. Algunos de estos retos incluyen la accesibilidad al paciente, las dicul tades para evaluar su progreso, el temor ante objetos extraños como vendajes, venoclisis o férulas, la necesidad de implantar formas creativas para administrar tratamientos, así como los problemas para determinar las dosis pertinentes, entre otros. Estas situaciones se discuten a continuación con más detalle.
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F 3. Obtención de una muestra sanguínea de la vena yugular en un hurón.
Existen tres grandes impedimentos para la administración de medicamentos en fauna silvestre: uno es el riesgo, el segundo es el miedo y el tercero, el estrés. La fauna silvestre no está confortable en presencia del hombre y muchas veces tampoco al estar en cautiverio, con o sin la presencia humana, por lo que pueden tratar de escaparse o de evitar el contacto. Esto provoca que la administración de medicamentos sea un reto que requiere de creatividad y paciencia por parte del veterinario, además de una vigilancia cercana para que las fallas en la terapia no pasen inadvertidas. Una dicultad inicial al evaluar la evolución del paciente es la identicación correcta del problema y de la efectividad del tratamiento elegido. En muchos casos, al principio se trabaja bajo anestesia, para permitir el acceso completo al animal. Esta oportunidad inicial debe ser aprovechada al máximo para hacer lo más posible antes de regresar a la situación de acceso remoto. En ocasiones esto implica el desbridamiento quirúrgico radical con cierre primario; la colocación de puertos de acceso semipermanentes, como catéteres endovenosos, sondas de alimentación, etcétera; la aplicación de vendajes o férulas; la utilización de material de sutura absorbible en piel, y otros. Las evaluaciones tradicionales de algunas constantes, como la temperatura corporal, la frecuencia cardiaca y el manejo directo del paciente, muchas veces son imposibles. La valoración a distancia muchas veces requiere de la interpretación de ciertos indicadores del progreso del animal, como son el apetito, el consumo de agua, la actitud, los cambios posturales, las evacuaciones, etcétera. También puede usarse la observación remota con binoculares o equipo de video.
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F 4. Auscultación de un loro.
F 5. Auscultación de un varano.
Algunos problemas médicos necesitan ser revisados con frecuencia y cerca del animal, como en el caso de heridas, infecciones, lesiones oftálmicas o algunas fracturas. En estas situaciones la elección entre una sedación repetida, probablemente diaria, deberá valorarse en vista del el estrés o daño que pueda provocar. Muchos animales no toleran la colocación externa de objetos. En algunas circunstancias pueden permitirla mientras están deprimidos, pero una vez que se sienten mejor, intentarán retirárselos. Esto incluye venoclisis y catéteres endovenosos, suturas, férulas, vendajes, jadores externos, tubos de alimentación. Es necesario tener esto en cuenta para la elección del tratamiento inicial, o el problema original puede complicarse en lugar de mejorar. Los animales silvestres son capaces de causarse mutilaciones severas bajo ciertas circunstancias de estrés.
PARTE 2 - CAPÍTULO 7
Al momento de decidir el tratamiento también debe considerarse la tolerancia y facilidad del manejo del paciente, por ejemplo, la preferencia de la jación interna a la externa en fracturas; el uso de suturas subcuticulares con material absorbible, en lugar de suturas no absorbibles, para heridas en la piel (así se evita un segundo manejo para el retiro de los puntos de sutura); o la administración de bolos subcutáneos de líquidos y electrólitos cada 12 horas, en lugar de goteo endovenoso a lo largo de 24 horas. La administración de los medicamentos puede ser un gran reto debido a los problemas de accesibilidad y al factor de estrés. Las opciones para elegir entre las vías oral e inyectable no es fácil, pues cada una tiene sus inconvenientes. En el caso de la vía oral, es necesario considerar si existe en esta presentación el fármaco elegido, y en la concentración adecuada; evaluar la palatabilidad y accesibilidad de la formulación o la necesidad de combinarla con agua o comida, la opción de usar alimentos medicados, la biodisponibilidad del producto para la especie, el intervalo de dosis necesario, así como el costo. Para elegir la aplicación inyectable también es necesario considerar la concentración del medicamento en un volumen razonable; el intervalo de dosis requerido para obtener un tratamiento efectivo; las opciones de administración manual o a distancia con el uso de dardos y el costo del sistema elegido. En los animales domésticos es relativamente sencillo determinar la dosis necesaria de un medicamento; pueden usarse los formularios especícos y buscar la dosis del medicamento deseado en la especie en particular. Al contrario, con las especies no domésticas puede ser un gran reto encontrar la dosis apropiada y muchas veces se requiere del uso de fármacos no especícos para éstas. Afortunadamente cada vez hay más fuentes de información con recomendaciones de dosis para el uso en diferentes especies de fauna silvestre. Sin embargo, muchas de las dosis citadas en la literatura se basan exclusivamente en la experiencia de algún clínico, otras son extrapolaciones de las dosis bien estudiadas en las pequeñas especies, sin ningún tipo de ajuste; y sólo unas cuantas han sido establecidas con base en la investigación farmacocinética. ¿Qué puede hacerse cuando se necesita la dosis de un fármaco en particular y no se encuentra información para la especie de interés? El desarrollo de un plan
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terapéutico racional requiere de varios puntos básicos: conocer el medicamento en cuestión buscando la información farmacológica disponible; conocer el uso de ese medicamento en otras especies, y entender la siología del paciente en el que se desea utilizar. Una vez que se cuenta con estos datos, se debe buscar la especie más cercana en la cual esté bien establecido el uso del fármaco y extrapolar un plan terapéutico “óptimo” basado en la información disponible. Finalmente,será necesario ajustar cuidadosamente este plan “óptimo” a uno que sea “práctico”, considerando las limitaciones del caso, como serían la vía de administración directa o a distancia, frecuencia de administración, opciones de presentación y formulación, todo con base en el paciente en el que se vaya a emplear. Además, es necesario considerar que aunque existen pocos medicamentos aprobados para su uso en especies no domésticas, el cual es muy frecuente. En estas situaciones es necesario que el caso justique su uso y llevar siempre registros detallados de su efecto. Otra opción para el cálculo de dosis de medicamentos es aplicar la escala alométrica, la cual es un método más preciso para calcular protocolos de tratamientos con base en el tamaño y metabolismo del paciente. Esto último es de particular importancia en las especies ectotermas, donde su tasa metabólica se asocia a la temperatura ambiente.
METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA EN FAUNA SILVESTRE EN VIDA LIBRE Otra área del trabajo del MV en relación con la fauna silvestre es la evaluación del estado de salud y la identicación de enfermedades en poblaciones silvestres, lo cual, muchas veces representa un reto mayor. La vigilancia epidemiológica permanente es costosa y requiere de mucho apoyo de todos los grupos involucrados (gobierno, ONGs, cientícos, etc.). Con frecuencia la investigación de vida libre se asocia a la ocurrencia de una contingencia que causa alta mortalidad, o a la identicación de una especie en particular como reservorio de una enfermedad importante para la salud del hombre o los animales domésticos. La metodología diagnóstica para la fauna silvestre mantenida en cautiverio puede ser utilizada en los animales silvestres libres, sin embargo, en muchas ocasiones el acceso a los animales es más difícil
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y se requieren de adecuaciones para el manejo y conservación de las muestras en condiciones de campo. Adicionalmente, es necesario mencionar que en la actualidad se han venido desarrollando técnicas no invasivas para la obtención de información sobre el estado de salud de las poblaciones silvestres a partir de muestras como orina, heces o pelo; que en ciertas condiciones se aplican también para los animales mantenidos en cautiverio que no pueden ser manejados con la frecuencia que el estudio requiere. Para la conservación de las poblaciones amenazadas o en peligro de extinción es fundamental el diagnóstico de enfermedades; esto ha dado paso al concepto de medicina de la conservación, donde se consideran las enfermedades y el papel que juegan en la dinámica de las poblaciones y el ecosistema, y se promueve el concepto de salud ecológica. Esto incluye la evaluación y monitoreo epidemiológico, incluyendo toxinas, microorganismos y macroparásitos, además de las enfermedades emergentes, y diferenciando entre la presencia de un agente en particular y el desarrollo de la enfermedad. Debido a lo anterior, la tendencia actual es aprovechar las oportunidades en las que se tiene contacto con un animal silvestre para colectar diversas muestras biológicas e ir generando información del estado general de salud de las poblaciones. Algunas técnicas usadas para la evaluación de la salud en la fauna silvestre en vida libre son: estudios demográcos, que son indicadores de la salud de la población, estado reproductivo y supervivencia de crías; necropsias rutinarias en los animales encontrados muertos o en los trofeos de caza; captura y obtención de muestras biológicas de individuos o poblaciones, y la telemetría y muestreo a distancia. Los países con un programa activo de evaluación del estado de salud de la fauna silvestre están mejor preparados para enfrentar, o incluso anticipar, los brotes de enfermedades en estas poblaciones. Esta información es también muy útil para el diseño de estrategias de manejo de animales domésticos o silvestres. La fauna silvestre en vida libre ha ganado atención como un factor importante en las enfermedades que podrían ser un riesgo para los animales domésticos o el hombre. La fauna silvestre puede actuar como reservorio para la emergencia de nuevas enfermedades, o como vectores en los programas de reubicación. Los agentes patógenos de las especies silvestres también
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pueden ser una amenaza real para ciertas especies críticamente amenazadas de extinción. ¿Es necesario dar tratamiento a las enfermedades presentes en vida libre? Las enfermedades han sido una parte normal de la historia natural de las especies, sin embargo, el aumento de las actividades humanas ha modicado el balance natural de estos agentes patógenos sobre poblaciones particulares, lo que produce un mayor impacto. Generalmente es muy difícil dar tratamiento contra algunas enfermedades en las poblaciones silvestres como para ser considerado una opción para el control de las mismas. Sin embargo, las poblaciones muy reducidas, que ya han sido manejadas, podrían ser la excepción. Esta técnica es muy cara y laboriosa, por lo que se considera una opción a corto plazo en caso de una amenaza crítica, y que debe ir acompañada de estrategias asociadas al manejo del hábitat a largo plazo. El tratamiento directo puede estar indicado en programas de reubicación, para la prevención de la introducción de enfermedades exóticas, o en algunas contingencias asociadas a actividades humanas, como el caso de derrames de petróleo. La prevención de las enfermedades en las poblaciones de fauna silvestre puede hacerse de diferentes maneras. Una muy simple y barata es retirar a los animales muertos para evitar la dispersión de las enfermedades infecciosas, aunque no siempre es fácil encontrar los cadáveres. Otra estrategia puede incluir la modicación del hábitat, para disminuir la transmisión de enfermedades, procurando no causar mayor daño ambiental. Algunos ejemplos incluyen: quemar o cortar árboles, la creación de drenaje para disminuir el estancamiento de agua que produce mosquitos. El tratamiento del ambiente a través de la utilización de insecticidas para reducir vectores como los mosquitos, tiene el inconveniente de que estos químicos generalmente no discriminan las especies sobre las que actúan, por lo que pueden acabar con otros invertebrados importantes para la ecología del área. Además, puede desarrollarse resistencia a los químicos o existir daño por efectos residuales, por lo que la decisión de emplearlos deberá evaluarse cuidadosamente. El control biológico ha sido practicado en diversas circunstancias utilizando insectos estériles para desplazar vectores de enfermedades o se han introducido agentes infecciosos para el control de la población de vectores. El uso de agentes para el control biológico
PARTE 2 - CAPÍTULO 7
puede tener un efecto negativo en especies diferentes de aquellas a las que está dirigido, por lo que deberá ser evaluado constantemente. Además, debe considerarse como una forma de introducción de especies que pueden alterar el equilibrio ecológico. La vacunación, como una forma de prevención o erradicación de enfermedades en fauna silvestre de vida libre, ha sido exitosa en algunas circunstancias. La técnica es costosa y requiere de grandes esfuerzos. Un ejemplo es el control de la rabia en Europa por medio de la vacuna oral para carnívoros silvestres. Las técnicas para el control de la población también han sido usadas para reducir el número de especies de hospederos capaces de albergar una enferme-
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Metodología diagnóstica en fauna silvestre
dad en particular. Reducir el número de individuos o el área de distribución puede disminuir la oportunidad de transmisión. Los métodos para reducir o redistribuir una población en particular pueden ser controvertidos o políticamente complicados y la matanza de animales positivos a la enfermedad es poco práctica para la fauna silvestre. La evaluación general de salud es vital para entender los detalles de la epidemiología de alguna enfermedad en particular, ya que éstas se mueven dentro de los ecosistemas en un patrón muy complicado. Conforme se cuente con mayor información, se estará mejor preparado para intervenir ante un brote de alguna enfermedad y disminuir su impacto o costo.
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Metodología Diagnóstica Veterinaria
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METODOLOGÍA DIAGNÓSTICA VETERINARIA
Editada por la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia.
Se terminó de imprimir el 00 de 00000 de 2011 en la imprenta de la Secretaría de Comunicación: Edicio 2, Planta baja, FMVZ-UNAM. Avenida Universidad # 3000, Coyoacán, Ciudad Universitaria, México 04360, D.F.; tel: 5622 5909. El tiraje constó de 100 ejemplares, más sobrantes para reposición. Forros impresos en cartulina sulfatada de 12 pts., interiores en papel cultural de 75 g. Formación y composición tipográca en tipo Candara 10.5 puntos y Optima 15 puntos, imprimiéndose en Duplicadora. El cuidado de la edición estuvo a cargo de: 00000000
