Curso Básico de Cromatografía de Líquidos de Alta Resolución HPLC (High Pressure Liquid Chromatography) (High Performance Liquid Chromatography) (High Priced Liquid Chromatography!!!!) BUAP-CUV Sep.,12, 2008
Definición.
Cromatografía es una técnica analítica basada en la separación parcial o total de los componentes de una mezcla como consecuencia de su migración diferencial en un sistema dinámico formado por una fase estacionaria y una fase móvil.
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Proceso de separación cromatográfica
Fase móvil Mezcla
Fase estacionaria
Inyección
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Migración Separación de los componentes de una muestra
Elución
Etimología
El botánico ruso Mikhail Semyonovich Tswett (1872-1920), es conocido como el “padre de la cromatografía”, como resultado de sus experimentos en los cuales usó columnas tipo gis “chalk” para separar pigmentos extraídos de hojas. Tswet presentó los principios básicos de su método de separación en 1902, después publicó dos artículos en 1906 en los cuales llamó al método
cromatografía. 4
Clasificación De acuerdo a la naturaleza de la fase móvil, la cromatografía se clasifica en : CROMATOGRAFIA DE GASES (Gas) CROMATOGRAFIA DE LIQUIDOS (Líquido) En ambos casos , la fase estacionaria se encuentra contenida en una tubería llamada COLUMNA.
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Clasificación
Cromatografía GSC Empacada Capilar GLC Empacada Capilar
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LSC Partición (Reparto) Exclusión por tamaño. Intercambio iónico.
Mecanismos de Separación Xm
S
PARTICIÓN
ADSORCION
EXCLUSIÓN
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INTERCAMBIO IÓNICO
Aplicaciones Generales Clínica Polímeros
Bioquimica
Farmacéutica Alimentos y Bebidas Forense
Ambiental y Forestal 8
Agropecuaria
Aplicaciones Generales Insecticidas: carbamatos, organofosforados Fungicidas: benzimidazoles, carbamatos Herbicidas y reguladores del crecimiento: ureas, fenilureas, triazinas, glifosatos( diquat/paraquat)
Aflatoxinas: B1, B2, G1, G2 Micotoxinas: deoxinivalenol (DNO) Acidos Fenólicos, Carbohidratos Proteínas, Aminoácidos Antocianinas Vitaminas Liposolubles e Hidrosolubles Drogas de Abuso Antibióticos,Esteroides,Analgésicos
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Sistema Cromatográfico, BOMBA
FASE MÓVIL
COLUMNA
INYECTOR
DETECTOR 10
SISTEMA DE DATOS
Proceso de separación cromatográfica
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Tiempo de Retención tR
t´r= trto
1 < κ ´ < 20 to= tiempo muerto tr= tiempo de retención absoluto 12
Factor de Capacidad
13
Resolución (R) •
Mide la separación entre dos picos
•
Considera la distancia y el ancho entre dos picos adyacentes
14
Resolución (R)
R = ___( tr2-tr1 )___ 1/2(W1 + W2) tr2 ,tr1 = tiempos de retención de ambos picos W1,W2= anchos de pico en la base
15
Resolución (R)
Resolución vs Concentración. •Para columnas nuevas es recomendable que R> 1.5
16
Resolución (R) La curva Gaussiana representa la distribución estadistica resultante de las moléculas en el espacio que ocupan
17
Resolución (R) Existen tres fuentes que contribuyen al ensanchamiento de bandas:
La eficiencia de la columna es una función de la longitud de la columna y del tamaño y uniformidad de las partículas 18
Resolución (R) Existen tres fuentes que contribuyen al ensanchamiento de bandas:
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Eficiencia (N) [número de platos teóricos]
• Mide los efectos de ensanchamiento de pico que se presentan cuando un componente migra a través de la columna
20
Altura Equivalente de un Plato Teórico (HETP)
•
La HETP relaciona la longitud de la columna con el número de platos teóricos.
•
21
Valores de HETP más pequeños -> columna más eficiente.
Altura Equivalente de un Plato Teórico (HETP)
•
La Ecuación de Van Deemter es una expresión teorica que define la eficiencia de la columna. Es la suma de los tres elementos que contribuyen al ensanchamiento de las bandas
22
Altura Equivalente de un Plato Teórico (HETP) A = Difusión de Eddy B = Difusión Longitudinal C = Resistencia a la transferencia de masa µ = Flujo de fase móvil
23
Eficiencia
(N, Número de Platos teóricos )
• Número de veces que un
componente presenta un estado de equilibrio entre las dos fases
• Se expresa cuantitativamente como el Número de Platos Teóricos
24
Selectividad, α
• Selectividad es
la medida de que una columna pueda distinguir entre dos componentes
Se ajusta al hacer cambios de fase móvil y fase estacionaria
25
Resolución vs Selectividad, Capacidad y Eficiencia
26
Resolución vs Selectividad, Capacidad y Eficiencia
• Rs = 0.8
• N = 7000 • α = 2.1
27
• .κ ´~1
Teória en práctica
• pico1 Tr=5.0 • pico2 Tr=6.2
28
• • • •
To=1.3
•
Calcular:.κ ´, α, R, N y HETP
W1=0.13 W2=0.15 L=25cm
Definiciones en Resumen
Eficiencia • Cuan estrechos son los picos – Medida del desempeño de la columna/fase estacionaria
Factor de Capacidad • Cuan bien es retenido un compuesto
Selectividad • La retención relativa de 2 compuestos
Resolución • La separación relativa de 2 compuestos • Evalua la separación en su totalidad 29
Optimización de una Separación – Factor de Capacidad
Para optimizar el Factor de Capacidad: Ajustar la fuerza del solvente Cambiar la fase estacionaria (columna)
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Optimización de una Separación– Selectividad Para optimizar la Selectividad (separación): Cambiar la composición de la fase móvil Usar aditivos en la fase móvil Cambiar la fase estacionaria Cambiar el pH y/o la temperatura
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Optimización de una Separación– Eficiencia Para optimizar la eficiencia de la columna : Disminuir el tamaño de partícula Emplear el flujo acorde al mínimo de la grafica HETP Emplear un solvente menos viscoso Incrementar la temperatura de la columna Incrementar la uniformidad de la partícula
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II.
Instrumentación
2.1 Fase móvil 2.2 Sistema de bombeo 2.3 Inyectores 2.4 Columnas 2.5 Detectores
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SISTEMA CROMATOGRAFICO BOMBA
FASE MÓVIL
COLUMNA
INYECTOR
DETECTOR 34
SISTEMA DE DATOS
2.1 Fase Móvil - Caracteristicas Preparación de la Fase Móvil Seleccionando la Fase móvil correcta •
• • • • •
35
• •
La consideración principal al elegir un sistema de solventes es seleccionar uno que separe adecuadamente los analitos. Además de la calidad en la separación, la fase móvil debe: No alterar la columna ni sus características Ser compatible con el detector Disolver la muestra Tener una viscosidad baja Permitir la recuperación fácil de la muestra, si es necesario. Ser de pureza elevada y no tóxico Ser comercialmente disponible a un precio razonable
2.1 Fase Móvil - Preparación
A) FILTRACIÓN MEMBRANAS
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Material
Tamaño de Poro
2.1 Fase Móvil - Preparación B) DESGASIFICACIÓN
Ultrasonido
H e
Gas Inerte
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Agitación y vacío
2.1 Fase Móvil - Preparación B) DEGASIFICACIÓN
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2.1 Fase Móvil - Preparación C) PREMEZCLADO Es recomendable medir los volumenes individuales y mezclarlos en un reservorio comun. Cuando se mezclan solventes orgánicos con agua siempre se obtiene un ∆ V de mezcla negativo. Para preparar MeOH/Agua 50/50, no se debe colocar 500 ml de metanol en el matraz aforado y añadir 500 ml de agua porque no serian suficientes para llevar al aforo.
39
2.1 Fase Móvil - Preparación D) BUFFERS Los buffers seran necesarios cuando se analicen muestras que contengan analitos ácidos o básicos. Las concentraciones recomendadas son del orden de 10 a 20 mM; de ser necesaria una mayor concentración asegurarse que no se presente precipitación. Recordar que el intervalo de amortiguamiento es de máximo +/-1.5 unidades en torno al valor de pka (ver tabla). El pH debera ajustarse en el buffer acuoso (teniendo considerado la modificación del pH por el solvente orgánico).
40
2.1 Fase Móvil - Preparación D) BUFFERS Recordar que el intervalo de amortiguamiento es de máximo +/-1.5 unidades en torno al valor de pka (ver tabla).
41
2.1 Fase Móvil - Preparación D) BUFFERS
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2.1 Fase Móvil – Mantenimiento Preventivo
ACERO INOXIDABLE
PEEK
P/N: 43
P/N:
28-211524-00 SOLVENT BOTTLE FILTER 10 µM, TITANIUM 27-180387-00
SOLVENT RESERVOIR FILTER, 10 UM, SS
Pureza de disolventes Verifique con los proveedores el rango apropiado de trabajo en UV de los disolventes •El oxígeno disuelto incrementa la abs en la región del UV lejano.Esnecesario desgasificar para lograr alta sensibilidad en esta región. •La absorción del oxígeno causará drift y ruido. Depende de la temperatura •Las sales de par iónico (TMA) pueden contener impurezas que absorben en la región UV. Usar de la más alta pureza 44
Cuidados con disolventes Preparación de la Fase Móvil Filtración •
45
Mantener los reservorios tapados.
Solventes Preparación de la Fase Móvil Solventes para fase inversa • • •
•
46
La mayoría de la LC por fase reversa utiliza agua como el componente principal de la fase móvil El agua es el líquido polar más común Casi todos todos los compuestos, excepto los más polares o más iónicos, experimentan una fuerza hidrofóbica fuerte que los conduce a la fase estacionaria y causa su retención Se debe utilizar siempre agua grado hplc
Solventes Preparación de la Fase Móvil Solventes para fase inversa • •
47
El ajuste de la concentración orgánica del modificador B es el medio primario de cambiar la retención Los tres más comunes son acetonitrilo, metanol y tetrahidrofurano
Solventes Preparación de la Fase Móvil Solventes para cromatografia de iones • • • • • • • 48
La cromatografía en fase normal utiliza mezclas. utiliza un buffer acuoso a un pH que mantenga a los analitos con carga. Para los ácidos, el pH debe ser mayor a 5 Para las bases, el pH debe ser menor a 5 Mientras que la concentración del buffer aumenta, aumenta la fuerza solvente y la retención disminuye Se puede agregar solvente orgánico para cambiar la retención y la selectividad El metanol se elige generalmente porque proporciona una mejor solubilidad
Solventes Preparación de la Fase Móvil Solventes para cromatografia de iones • • •
49
El reactivo de par iónico es generalmente un ion de cadena corta Para la separación de bases protonadas se utiliza el pentan sulfonato, hexan sulfonato, o el heptan sulfonato Para la separación de ácidos ionizados, se emplea el tetraetil-amonio o el tetrabutil-amonio
Solventes Preparación de la Fase Móvil Programación de Solventes •
• •
•
50
Las condiciones a considerar cuando se elige la fuerza óptima de fase móvil son resolución, duración del análisis y el factor de la capacidad La resolución debe siempre ser por lo menos 1.5 para análisis de cuantificación Tiempos de análisis más cortos pueden ser alcanzadas usando un solvente más fuerte para los picos suficientemente resueltos Una buena referencia es hacer que todos los picos se eluyan con con valores de k ' entre 1-20
2.1 Bombas - Caracteristicas
51
Operar a presiones elevadas
Libre de pulsaciones
Inerte
Operar con gradiente de solventes
Objetivo de la Bomba En la cromatografía clásica, la separación se realiza por efecto de la gravedad (Tamaño de partícula 50-100 micrometros, tiempo de separación de una a varias horas) La disminución de tamaño de partícula como soporte de la fase estacionaria (3, 5 o10 micras) exige forzar al líquido a cruzar a través de la columna por medio de una bomba. Las bombas comerciales basan su diseño en pistones reciprocantes 52
Funcionamiento de la Bomba
FASE MÓVIL
FASE MÓVIL 53
Funcionamiento de la Bomba •El disolvente es entregado por la bomba con el pistón reciprocante.(10 μL/min -10 mL/min) •El diseño del pistón con un control electrónico de su movimiento (stroke) proporciona un flujo ligeramente pulsante. •Un damper reduce la pulsación del flujo. •Una cámara de mezclado proporciona una homogenización de los disolventes atras del punto de inyeccion de la muestra. •Un transductor de presión convierte la presión del sistema en una salida eléctrica que se despliega en la pantalla
54
Funcionamiento de la Bomba •El movimiento del pistón es controlado por la rotación de la leva (cam). •Un ciclo completo en la bomba consiste del movimiento del pistón para llenar el cabezal, en el cual el pistón viaja en reversa (alejandose del cabezal de la bomba) y un movimiento de entrega , en la cual el pistón viaja en el sentido del cabezal de la bomba. •Durante el movimiento de entrega, el disolvente es descargado a través de la vávula check. •La rotación de la leva (cam) es determinado por un software de control del motor.
55
Mantenimiento Preventivo en Bomba
Mala repetibilidad de tiempos de reten-
ción: - Fugas (visibles o no visibles)
56
SELLOS
PISTÓN
Solución: Cambio de pieza dañada
Válvulas check
2.1 Bombas– Tipos de Bombas Isocrática
Gradiente
Composición
%B
57
Tiempo
2.1 Bombas– Análisis Isocratico
58
Estabilidad en la línea base
Tiempo de análisis largo
Presión Constante
Resolución limitada
Solventes Preparación de la Fase Móvil Separación isocratica o por gradiente •
•
59
La fase móvil isócratica no puede resolver todas las separaciones • Algunas muestras son demasiado complejas • Resolución pobre de picos tempranos • Ensanchamiento de picos y coleo de los picos finales En la elución por gradiente de solventes, la fuerza de la fase móvil se incrementa por cambio de la composición de los solventes en un cierto tiempo • Elegido para una amplia gama de muestras o de biopolímeros • Limpia la columna durante cada corrida • Empleada para estimar condiciones isocraticas óptimas
2.1 Bombas– Análisis con Gradiente
Resolución de Mezclas Complejas Tiempo de Análisis Corto Variación de la Presión Inestabilidad de Línea Base Vida útil de la Columna Limitada
60
2.1 Bombas– Análisis con Gradiente
Composición
%B
Tiempo
61
2.1 Bombas– Desarrollo de un Gradiente Tiempo
%A
(min)
%B
Etapa
0
Prerun
0
100
20
80
20
Gradiente
30
80
20
Isocratico
35
100
0
Cond. Inicial
40
100
0
Equilibrio
Isocratico te n ie d a Gr
Cond. Inicial
Equilibrio 62
2.3 Inyector Manual - Caracteristicas
Válvula de 6 puertos
2 posiciones: carga e inyección
Utiliza un loop / requiere cambio de loop para inyectar diferentes volumenes
Jeringa para introducir la muestra
Limpieza manual de línea de inyección
63
2.3 Inyector Manual - Funcionamiento
64
2.3 Inyector Manual - Mantenimiento Preventivo
Filtración de la Muestra Jeringa (aguja) apropiada
Loop correcto Limpieza correcta del 65
inyector
2.3 Inyector Automatico – características
Válvula de 6 puertos / 2 posiciones
Utiliza un loop / no requiere de cambio de loop para volumenes menores
2 posiciones: carga e inyección
Aguja / Jeringa para introducir muestra en forma programada
Limpieza automática de la línea de inyección.
66
2.3 Inyector Automatico- Consideraciones de Operación
Jeringa El vólumen de muestra es medido con una jeringa de 250 uL.
El interior de la jeringa debe estar libre de burbujas.
De observarse burbujas: Verificar la degasificación del solvente de enjuague.
Verificar el buen estado de la punta del émbolo.
Verificar que la aguja no este tapada.
Es necesario verificar que no se 67
presenten fugas provenientes del émbolo de la jeringa.
2.3 Inyector Automatico- Consideraciones de Operación
Válvula de Inyección La muestra es introducida por una válvula automática de seis puertos.
Emplea tambien un sello/rotor que puede rallarse. (mala repetibilidad de áreas)
La falla se evidencia cuando se observan gotas de líquido en la punta de la aguja, crecen y se desprenden.
Y además, un incremento en la presión tambien incrementa la intensidad del goteo.
68
2.3 Inyector Automatico- Resumen de funcionamiento
Importante Jeringa y tuberia libre de burbujas. No fugas en jeringa. Presurización de vial solo funciona si HeadSpace Pressure esta habilitado.
Recomendado solo con septas nuevas.
La aguja de aire es insertada hasta la parte superior del vial, por lo que los viales solo llenarlos hasta 2/3 de alto (Contaminación Cruzada).
69
2/3 máximo
2.3 Inyector Automatico- Mantenimiento Preventivo
Factores que afectan la Repetibilidad de Areas A.
MUESTRA
B.
MODOS DE INYECCIÓN
C.
LOOP
D.
70
EFECTO MEMORIA (Contaminación cruzada)
2.3 Inyector Automatico- Mantenimiento Preventivo A) CONSIDERACIONES DE LA MUESTRA
Compatible (soluble) con la fase móvil. Disuelta en un solvente de la misma polaridad (o más debil que la fase móvil).
Libre de partículas suspendidas (Filtrada)
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2.3 Inyector Automatico- Mantenimiento Preventivo B) MODOS DE INYECCIÓN Modo Parcial
Modo Total
72
Hasta el 50 % del volumen del loop
Toma de 3 a 2 veces el volumen del loop
2.3 Inyector Automatico- Mantenimiento Preventivo
Tamaño:
C) Material y tamaño del LOOP
5, 10, 20, 50, 100,200, 500 (µ l),1, 2,5 (ml) Material: Acero Inoxidable, Titanio,PEEK
73
2.3 Inyector Automatico- Mantenimiento Preventivo D) EFECTO MEMORIA
Contaminación cruzada
74
Se evidencia en la inyección de un blanco inmediato posterior.
Son residuos de muestra (o estándar) de la inyección anterior.
2.4 Columnas para HPLC
Diagrama
75
2.4 Columnas para HPLC
¿Cómo funcionan? La fase estacionaria esta empacada dentro la columna no se mueve.
La fase móvil esta circulando dentro la columna a una velocidad regulada (flujo constante) arrastrando a la muestra. 76
2.4 Columnas para HPLC
¿Cómo funcionan? Si el analito es más soluble en la fase móvil que en la fase estacionaria, el analito migrará dentro de la columna con poca interacción con la fase estacionaria.
77
2.4 Columnas para HPLC
¿Cómo funcionan? Si el analito es más soluble en la fase estacionaria, migrará más lentamente dentro de la columna, y dependiendo de la magnitud de la interacción, el tiempo invertido será más o menos grande. 78
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Dimensiones
79
Modern HPLC for Practicing Scientists, Michael W. Dong, Wiley – Interscience, 2006
2.4 Columnas para HPLC
Efecto del cambio en la longitud de la columna
80
Modern HPLC for Practicing Scientists, Michael W. Dong, Wiley – Interscience, 2006
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características •Tipo de soporte
• Silica, polimero.
•Grupo químico enlazado
• C18, C8, C4, CN, NH2, Si
•Tamaño de partícula
Longitud 3, 5, 10, 15, 25 cm)
• 2, 3, 5, 10 um
•Tamaño de poro y Area Superficial (60 ~ 200 A) (100 ~ 500 m2/g)
•Densidad de ligando • 2 ~ 4 µ
81
Diámetro Interno (1, 2, 4, 4.6 mm)
mol /m2
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características •Tipo de soporte • Silica (SiO2) es el material dominante. Posee una alta resistencia mecánica y permite fabricar partículas uniformes.
82
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características •Tipo de soporte • Silica (SiO2) posee una superficie polar que permite ser modificada para darle propiedades no polares por tratamiento químico. • Tiene como limitante el que se degrada fuera del intervalo de pH de 2 a 8. 83
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características •Tipo de soporte La Silica (SiO2) tiene como limitante el degradarse fuera del intervalo de pH de 2 a 8.
84
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características •Tipo de soporte • Polímero. Poliestireno divinil benceno entrecruzado, polieteres y metacrilatos son los más comunes. • Tienen como desventaja que regularmente poseen menos eficiencia comparadas con las columnas de Si. • Tienen como ventaja la operación en el intervalo de pH de 1 a 14. • Existen nuevos materiales como son la Zirconia que permiten operar a temperaturas elevadas. 85
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características Grupo químico enlazado • C18 C8 C4 CN Ph NH2 Si
No Polar Fase Reversa
86
Polar Fase Normal
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características Grupo químico enlazado • C18 C8 C4 CN Ph NH2 Si C18: Muy hidrofobica, estable y primer elección. C8: Menos hidrofobica, requiere menos solvente orgánico. CN: La menos hidrofobica, no muy estable. Ph: Para compuestos de mediana polaridad. Recomendada para aromáticos. C4: Recomendadas para análisis de proteinas. NH2: Recomendada para carbohidratos. Si: Adecuada para compuestos orgánicos de polaridad media 87
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características Tamaño de poro y Area Superficial • 200 ~ 60 A Area Superficial (100 a 500 m2) • Mayor densidad en fase enlazada • Mayor retención (más hidrofóbica) • No recomendado para biomoleculas.
88
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por Características Densidad de ligando (Carga de carbono [peso Fase Enlas/peso Silica]) • 2 ~ 4 µ mol/m2
89
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por tecnologia
90
(Pureza de SiO2)
Modern HPLC for Practicing Scientists, Michael W. Dong, Wiley – Interscience, 2006
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por tecnologia (Pureza de SiO2)
91
Modern HPLC for Practicing Scientists, Michael W. Dong, Wiley – Interscience, 2006
2.4 Columnas para HPLC
Clasificación por tecnología (Fase estacionaria modificada)
92
2.4 Columnas para HPLC Clasificación por Tecnología (Resumen 1)
93
2.4 Columnas para HPLC Resumen
94
2.4 Columna – Mecanismos de Separación Tipo de interacciones ♦No polares - fuerzas de van der Walls ♦covalentes – Formación de puentes moleculares ♦Polar - dipolares y puentes de hidrógeno ♦Ionicas - cationicas y anionicas
95
2.4 Columna – Selección de Columnas METODO EXISTENTE SATISFACTORIO
SELECCIONAR LA COLUMNA ESPECIFICA
SELECCIONAR COLUMNA NUEVA MUESTRA
PESO MOLECULAR < 2000
PESO MOLECULAR > 2000
SOLUBLE EN ORGÁNICO
SOLUBLE EN AGUA
SOLUBLE EN ORGÁNICO
SOLUBLE EN AGUA
EXCLUSIÓN
EXCLUSIÓN
PERMEACIÓN 96
FILTRACIÓN
SOLUBLE EN
SOLUBLE EN METANOL
HEXANO
ADSORCIÓN
FASE ENLAZADA NORMAL
FASE
ENLAZADA REVERSA
INTERCAMBIO IÓNICO
Mercanismos de adsorción Dependiente de la concentración de soluto y la temperatura (Isotermas de adsorción) Retención de Compuestos polares Orden de elución: menor polaridad más rápido Columnas: sílica & alumina
97
2.4 Columna – Adsorción
98
2.4 Columna – Partición
Fase enlazada Normal
S m K = Cs Cm
99
Reversa
2.4 Columna – Fase Normal enlazada
100
Características del mecanismo Interacciones: Polares (puentes de H2, fuerzas de van Der Walls). Retención: Favorecida por disolventes no polares. Elución: Fuerza de disolvente aumenta con la polaridad (hasta disolvente medianamente polares) Columnas : Ciano y amino
101
2.4 Columna – Fase Normal
102
2.4 Columna – Fase Reversa
103
Caracteristicas del mecanismo Interacciones: No polares (inducción de dipolo, dipolo-dipolo) Retención: Favorecida con disolventes polares Elución. Fuerza de disolvente aumenta disminuyendo polaridad
104
2.4 Columna – Fase Reversa Es la técnica de HPLC más popular: • Las columnas son estables y de rápido equilibrio. • El orden de elución es predecible: Si más hidrofobico el soluto -> mayor retención. • Agua es uno de los solventes más importantes • Permite cambios en la selectividad por la adición de modificadores • Fase reversa incluye algunas variantes: • Regular, supresión de iones, ionización controlada, par iónico y formación de quelatos metálicos.
105
2.4 Columna – Fase Reversa
106
Mecanismos de fase reversa: Fase reversa clásica Los solutos no polares son retenidos por la fase estacionaria . La elución se logra por cambio en la polaridad de la fase móvil (disminución de polaridad) Fase reversa clásica
107
2.4 Columna – Fase Reversa Fase reversa clásica
108
Mecanismos de fase reversa: Control de la ionización •Algunos solutos presentan ionización a un valor determinado de pH. •Los solutos en forma no ionizable son retenidos por la fase estacionaria. Al cambiar a su forma ionizable eluyen de la columna. •Se emplean soluciones de fosfatos, boratos, citratos. •Concentración máxima (recomendada) 0.01M •Compatibilidad de solubilidad con la fase orgánica •Compatibilidad con el detector
109
2.4 Columna – Intercambio Ionico carga fija Ión de la muestra
+
Catiónico
+
-
contraión
110
resina
Aniónico
2.4 Columna – Intercambio Ionico
111
2.4 Columna – Intercambio Ionico
Base sílica Base polímero
112
2.4 Columna – Exclusión
SOLUBILIDAD EN ORGÁNICO (GPC)
SOLUBILIDAD EN AGUA (GFC)
113
2.4 Columna – Exclusión
Bomba
Fase móvil
Banco de columnas Sistema de datos Detector
114
2.4 Columnas – Uso, Mantenimiento y Cuidados Uso: •
Almacenar la columna en un solvente recomendado por el fabricante.
•
Colocar tapones durante no-uso.
• Siempre “lavar” columna con un solvente fuerte. • Siempre utilizar guardacolumna o filtro en línea
115
2.4 Columnas – Uso, Mantenimiento y Cuidados Precauciones: • No exceder rango de pH de la columna. •
No exceder rango de temperatura de la columna.
•
Nunca guardar la columna con sales o buffer dentro de ella.
• Permitir que la columna se enfrie antes de detener el flujo. 116
2.4 Columnas – Uso, Mantenimiento y Cuidados Mantenimiento y Regeneración: • Tiempo de vida desde 3 hasta 24 meses o de 1000 a 3000 inyecciones. •
El desempeño disminuye con el uso (incremento en la presión y coleo de picos).
• Monitorear presión (¡¡bitacoras!!), probar invertir columna. •
Regenerar la columna con una serie de solventes de débil a fuerte y viceversa en forma gradual. 117
2.4 Columnas – Uso, Mantenimiento, Cuidados y Regeneración SILICA 50 ml de hexano 50 ml de cloruro de
metileno 50 ml de isopropanol 30 ml de cloruro de metileno 25 ml de fase móvil Probar la columna
Consultar siempre folleto del fabricante
118
FASE NORMAL 50 ml de cloroformo 50 ml de cloruro de metileno 50 ml de isopropanol 30 ml de cloruro de metileno 25 ml de fase móvil Probar la columna
2.4 Columna – Regeneración FASE REVERSA 50 ml agua caliente
( 55 ºC) 50 ml de metanol 50 ml de acetonitrilo 30 ml de THF 25 ml de metanol 25 ml de fase móvil
Consultar siempre folleto del fabricante
119
INTERCAMBIO IÓNICO 50 ml de agua caliente 50 50 25 25 25
(55 ºC) ml de metanol ml de acetonitrilo ml de cloruro de metileno ml de metanol ml de fase móvil
2.4 Columna – Guardacolumna Bomba Guarda Columna Inyector
Columna
Fase móvil
Detector 120
Sistema de datos
2.4 Columna – Horno
Objetivos Aumentar la solubilidad de la muestra Disminuir la presión de la columna
Disminuir la selectividad Disminuir el tiempo de análisis 121
2.5 Detectores
Uv-vis (λ fija) Indice de Refracción
Uv-vis (Arreglo de diodos)
Fluorescencia 122
ELSD
2.5 Detectores - ProStar 350 Características
Indice de Refracción a) Universal b) Mide el cambio de índice de refracción entre la celda de muestra y la celda de referencia. c) No destructivo de la muestra d) Baja sensibilidad : %w e) No compatible con gradiente 123
f) Sensible a la temperatura ambiente
2.5 Detectores - Indice de Refracción ProStar 350 -Restricciones de Solventes No recomendados • Haluros , Formato de Amonio, CCl4 Utilizables abajo del 10% • Acido Bórico, Anhidro Acetico, KOH • Sales de Formato de Amonio, perclorato, HPO42• Sales de bicarbonato, clorato y nitrato Utilizables abajo de 30% • Acido Citrico, NaOH, Sales de Citrato de Amonio, oxalato, sulfato, H2PO4Utilizables abajo de 50% • Acido Acetico, Acido lactico, Hidrazina, Nitrato de Amonio, K2CO3, Formato de Sodio 124
2.5 Detectores- Ultravioleta Visible PS-325 Características
Ultravioleta Visible a) Alta sensibilidad b) Mide la absorción de la luz UV o Visible en el eluyente del HPLC. c) No destructivo de la muestra d) Selectivo e) Rango 190-900 nm f) Compatible con gradiente 125
2.5 Detectores-Ultravioleta Visible PS-325 Recomendaciones de Operación
• Encender la lámpara por lo menos 15 minutos antes del análisis. • Configurar longitud de onda y tiempo de respuesta. • La duración de las lámparas es de aprox 2000 hrs, pero pueden fallar antes o después.
126
2.5 Detectores- Arreglo de Diodos PS-335 Características
a) Sensibilidad similar a UV-VIS b) Mide la absorción de la luz UV o Visible en el eluyente del HPLC. c) No destructivo de la muestra d) Selectivo e) Rango 190-900 nm f) Compatible con gradiente 127
2.5 Detectores- PS-335 Resultados Arreglo de diodos
• Espectro de cada Compuesto, comparación de Espectros • Parámetro de Pureza • Biblioteca de Espectros • Cromatogramas a diferentes λ
128
.
2.5 Detectores - Arreglo de Diodos PS-335 Recomendaciones de Operación
• Encender la lámpara por lo menos 15 minutos antes del análisis. • Configurar longitud de onda y tiempo de respuesta. • Configurar rango de longitudes de onda para desarrollo de métodos, y porque sea necesario en trabajo de rutina. Los archivos son muy grandes. • La duración de las lámparas es de aprox 2000 hrs, pero pueden fallar antes o después. 129
2.5 Detectores- Fluorescencia PS-363 - Características
•
Alta sensibilidad (100 a 1000x)
•
Compatible con gradiente
•
Selectivo: λ excitación, λ emisión
•
Rango de λ s: Ex: 200-850nm y Em:200-900 nm
•
Formación de derivados: columna
Precolumna y Post
• Puede trabajar con la lámpara apagada (Chemiluminescencia, Bioluminescencia) • GLP integradas (horas de la lampara) 130
2.5 Detectores- Fluorescencia PS-363 – Lámpara de Xe. • Duración aprox de 500 hrs • Contiene gas Xe
presurizado. Manejese con cuidado. • La radiación emitida
es muy intensa.
131
2.5 Detectores- Fluorescencia PS-363 - Areas de aplicación Mercado Farmaceutico / Bioquimico
– Catecholes e Indoles – Vitaminas – Derivados OPA de amino ácidos – Derivados FMOC de amino ácidos – Marcadores Fluorescentes Mercado Ambiental – Carbamatos, Glifosatos
– PNAs 132
3.0 Analisis Cuantitativo Concentración
tr4
133
tr2
tr3
tr1
Area
3.1
Por ciento área
3.2
Área Normalizada
3.3
Estándar Externo
3.4
Estándar Interno
A1
A2
A3
A4
1.
3.0 Analisis Cuantitativo- Por ciento Area Inyectar la Muestra Problema tr4 tr2
Datos
tr3
A1 A2 tr1
A3 A4 A1
2.
A2
A3
A4
Calcular el % A:
%A = Ai x 100 Σ Ai 134
3.0 Analisis Cuantitativo- Por Ciento 1.
Area Normalizada
Preparar una mezcla estándar de concentración conocida
2.
Inyectar la mezcla estándar de calibración
3.
Obtener el cromatograma , así como las áreas: tr4 tr2
tr3
Datos
pico de referencia
A A
1
tr1
A1 135
A2
A3
A4
C1
2
C2
A3
C3
A4
C4
3.0 Analisis Cuantitativo- Por Ciento Area Normalizada 4.
Calcular los Factores de respuesta Fr:
a)
Seleccionar un pico de referencia y asignarle un valor de Fr = 1
b)
Calcular los Fr de los demas Picos:
Fri = A ref x Ci C ref x Ai Fr i = Factor de respuesta del pico de interés A ref = Area del pico de referencia Ci Ai 136
= Concentración del pico de interés = Area del pico de interés
C ref = Concentración del pico de referencia
3.0 Analisis Cuantitativo- Por Ciento Area Normalizada 5. Inyectar la muestra problema, obtener el cromatograma, asi como sus áreas:
Datos
tr4 tr2
tr3
A1 A2 A3
tr1
A4 A1
6.
137
A2
A3
A4
Calcular las concentraciones de cada uno de los componentes, en unidades relativas: %w, %v, % mol
3.0 Analisis Cuantitativo- Por Ciento Area Normalizada
%Ci = Ai x Fri x100 Σ (Ai Fri)
138
Ci =
Concentración del pico de interés en la muestra
Ai =
Área del pico de interés en la muestra
Fri =
Factor de respuesta del pico de interés
1.
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Externo Preparar una mezcla de estándares de concentración conocida con los componentes de interés
2.
Inyectar la mezcla de estándares
3.
Obtener el cromatograma, así como sus respectivas áreas tr 4
tr2
Datos
A A
139
1
C1
2
C2
A3
C3
A4
C4
tr3
tr1
A1
A2
A3
A4
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Externo 4.
Calcular los factores de respuesta uno de los picos:
de cada
Fri = Ci Ai 5.
140
Inyectar la muestra problema, obtener el cromatograma , así como las áreas:
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Externo tr4 tr2
Datos
tr3
A1 A2
tr1
A3 A1
6.
A2
A3
A4 A4
Calcular la concentración de cada uno de los componentes:
Ci = Ai Fri
141
Ci =
Concentración del pico de interés en la muestra
Ai =
Área del pico de interés en la muestra
Fri =
Factor de respuesta del pico de interés
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Interno Requisitos del Estándar Interno
•
Alta pureza
•
Estable químicamente y térmicamente
•
Estructura química semejante a los componentes de interés
•
142
Separado e identificado de los componentes de la muestra
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Interno 1.
Preparar una mezcla de calibración que contenga los componentes de interés, asi como el componente que servirá como estándar interno
2.
Inyectar la mezcla de calibración, obtener el cromatograma y las áreas tr4 tr2
Datos
A A
143
1
C1
2
C2
A3
C3
A4
C4
tr3
Est. Interno tr1
A1
A2
A3
A4
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Interno 3.
Calcular los Fr tomando como referencia el pico del estándar interno, es decir asignarle un Fr = 1 Fri = Ci X A std int Ai X C std int Fri = Factor de respuesta del pico de interés Ci = Concentración del pico de interes Astd int = Área del estándar interno Ai = Área del pico de interés C std int = Concentración del estándar interno
144
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Interno 4.
Inyectar la muestra problema y obtener las áreas: tr4 tr2
tr3
Datos
A A
1
2
A3
tr1
A4 A1
5.
A2
A3
A4
Calcular la concentración de cada uno de los componentes tomando como referencia el pico del estándar interno 145
C2
3.0 Analisis Cuantitativo- Estandar Interno
Ci= Ai Fri C std int A std int Ci = Concentración del pico de interés Ai = Área del pico de interés Fri = Factor del pico de interés Cstd int = Concentración del estándar interno Astd int = Área del estándar interno
146