BUKPAN PRAKTIKAN 2017

LAPORAN PRAKTIKUM METODE ANALISA LABORATORIUM COVER Disusun Oleh : Dr. Ir. Bambang Budi Sasmi Sasmi to, MS Dr. Ir. Hardoko , MS Dr. Ir. Titik Dwi Sulistiyati, MP Dr. Ir. Anies Chami dah, MP Angg An gg a Wir a Perd ana, S.Pi., S.Pi ., MP Tim Asi st en 2017 2017

FAKULTAS PERIKANAN PERIKANAN DAN IL MU KELAUTAN UNIVERSITAS BRAWIJAYA MALANG 2017

LAPORAN PRAKTIKUM METODE ANALISA LABORATORIUM

Oleh: Nama

:

NIM

:

Kelompok

:

As is ten

:


LAPORAN PRAKTIKUM METODE ANALISA LABORATORIUM

Oleh: Nama

:

NIM

:

Kelompok

:

As is ten

:


KARTU ASISTENSI LAPORAN METODE METODE ANALISA L ABORATORIUM 2017 Nama

:

NIM

:

Kelompok / Shift

:

Asis As is ten Lap or an

:

Tangg Tangg al

Foto 3x4

Materi

Keterangan

Malang,

Desember 2017 2017

Menyetujui,

Mengetahui,

Dosen Dosen Laboratorium

Koord inator Asisten

Angg An gg a Wir a Perdana, Perd ana, S.Pi, S.Pi , MP NIK. 840521 08110093

Yan Cris Cr is t ho per Saragih Sarag ih NIM. 145080307111010 145080307111010

DAFTAR ISI

COVER COVER................................ ................................................. .................................. ................................. ................................. ............................... .............. i KARTU ASISTENSI ASISTENSI LAPORAN LA PORAN ................................. .................................................. .................................. ....................... ...... iii DAFTAR ISI ................................. ................................................. ................................. ................................. .................................. ..................... ... i v PERATURAN PERATURAN SELAMA PRAKTIKUM ............................... ................................................ ............................... .............. vii vi i DAFTAR ASISTEN ................................. ................................................. ................................. ................................. ........................ ........ vi ii JADWAL PRAKTIKUM ......................................... ......................................................... ................................. ............................. ............ ix PEMBAGIAN SAMPEL ................................ ................................................. .................................. .................................. ..................... .... x UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN................................. .................................................. .................................. .......................... ......... 1. PENDAHULUAN PENDAHULUAN ................................. ................................................. ................................. ................................. ............................. ............. 1.1 Latar Belakang ....................................... ........................................................ .................................. ................................. .................... .... 1.2 Maksud dan Tujuan................................ ................................................. .................................. ................................. .................... .... 1.3 Waktu dan Tempat ......................... ......................................... ................................. .................................. ............................. ............ 2. METODOLOGI METODOLOGI ................................. .................................................. ................................. ................................. ................................ ............... 2.1 Peralatan dan Fungsinya Fungsinya................................ ................................................. .................................. ............................. ............ 2.2 Bahan-Bahan dan Fungsinya Fungsinya .......................................... .......................................................... ............................. ............. 2.3 Skema Kerja..................... ...................................... ................................. ................................. ................................. .......................... .......... 3. PEMBAHASAN ................................ ................................................. ................................. ................................. ................................ ............... 3.1 Data Hasil Pengamatan............... Pengamatan............................... ................................. .................................. ................................ ............... 3.2 Analisa Prosedur .................................... ..................................................... .................................. ................................. .................... .... 3.3 Analisa Hasil ............................... ................................................ ................................. ................................. ................................ ............... 4. PENUTUP PENUTUP ................................ ................................................ ................................. ................................. .................................. ........................ ...... 4.1 Kesimpulan ................................. .................................................. ................................. ................................. ................................ ............... 4.2 Saran .................................. .................................................. ................................. ................................. .................................. ........................ ...... DAFTAR PUSTAKA ................................ ................................................ .................................. .................................. ............................ ............ LAMPIRAN PENGUJIAN PENGUJIAN KADAR KA DAR GARAM ........................ ......................................... ................................. ................................. ..................... .... 1. PENDAHULUAN PENDAHULUAN ................................. ................................................. ................................. ................................. ............................. ............. 1.1 Latar Belakang ....................................... ........................................................ .................................. ................................. .................... .... 1.2 Maksud dan Tujuan................................ ................................................. .................................. ................................. .................... .... 1.3 Waktu dan Tempat ...................... ....................................... ................................. ................................. ................................ ............... 2. METODOLOGI METODOLOGI ................................. .................................................. ................................. ................................. ................................ ............... 2.1 Peralatan dan Fungsinya Fungsinya................................ ................................................. .................................. ............................. ............ 2.2 Bahan-Bahan dan Fungsinya Fungsinya .......................................... .......................................................... ............................. ............. 2.3 Skema Kerja..................... ...................................... ................................. ................................. ................................. .......................... ..........

3. PEMBAHASAN ................................................................................................. 3.1 Data Hasil Pengamatan................................................................................ 3.2 Analisa Prosedur .......................................................................................... 3.3 Analisa Hasil ................................................................................................ 4. PENUTUP ......................................................................................................... 4.1 Kesimpulan .................................................................................................. 4.2 Saran ........................................................................................................... DAFTAR PUSTAKA .............................................................................................. LAMPIRAN UJI DAYA KEMBANG DAN DAYA SERAP MINYAK ........................................... 1. PENDAHULUAN ............................................................................................... 1.1 Latar Belakang ............................................................................................. 1.2 Maksud dan Tujuan...................................................................................... 1.3 Waktu dan Tempat ....................................................................................... 2. METODOLOGI .................................................................................................. 2.1 Peralatan dan Fungsinya.............................................................................. 2.2 Bahan-Bahan dan Fungsinya ....................................................................... 2.3 Skema Kerja................................................................................................. 3. PEMBAHASAN ................................................................................................. 3.1 Data Hasil Pengamatan................................................................................ 3.2 Analisa Prosedur .......................................................................................... 3.3 Analisa Hasil ................................................................................................ 4. PENUTUP ......................................................................................................... 4.1 Kesimpulan .................................................................................................. 4.2 Saran ........................................................................................................... DAFTAR PUSTAKA .............................................................................................. LAMPIRAN PENENTUAN KADAR β-KAROTEN ..................................................................... 1. PENDAHULUAN ............................................................................................... 1.1 Latar Belakang ............................................................................................. 1.2 Maksud dan Tujuan...................................................................................... 1.3 Waktu dan Tempat .......................................................................................

2. METODOLOGI .................................................................................................. 2.1 Peralatan dan Fungsinya.............................................................................. 2.2 Bahan-Bahan dan Fungsinya ....................................................................... 2.3 Skema Kerja................................................................................................. 3. PEMBAHASAN ................................................................................................. 3.1 Data Hasil Pengamatan................................................................................ 3.2 Analisa Prosedur .......................................................................................... 3.3 Analisa Hasil ................................................................................................

4. PENUTUP ......................................................................................................... 4.1 Kesimpulan .................................................................................................. 4.2 Saran ........................................................................................................... DAFTAR PUSTAKA .............................................................................................. LAMPIRAN MATERIAL SA FETY DATA SHEET (MSDS) ........................................................ 1. PENDAHULUAN ............................................................................................... 1.1 Latar Belakang ............................................................................................. 1.2 Maksud dan Tujuan...................................................................................... 1.3 Waktu dan Tempat ....................................................................................... 2. PEMBAHASAN ................................................................................................. 3. PENUTUP ......................................................................................................... 3.1 Kesimpulan .................................................................................................. 3.2 Saran ........................................................................................................... DAFTAR PUSTAKA .............................................................................................. LAMPIRAN ............................................................................................................

PERATURAN SELAMA PRAKTIKUM :

1. Praktikan wajib datang tepat waktu (15 menit sebelum praktikum). 2. Berpakaian rapi, bersepatu, memakai kaos kaki, memakai jas laboratorium dan membawa atribut keselamatan laboratorium lainnya (masker dan sarung tangan). 3. Dilarang membawa makanan dan minuman ke dalam laboratorium. 4. Mematuhi segala peraturan. 5. Penilaian praktikum meliputi: tiket masuk, pre-test , post-test, keaktifan dalam praktikum, laporan dan ujian akhir praktikum. 6. Dilarang merokok dan membawa korek api ke dalam laboratorium.

DAFTAR ASISTEN :

No

NAMA

NO. HP

1

Yan Cristhoper Saragih

082168977523

2

Muhammad Aji Bayu P.

081290911961

3

Isna Puji Utami

082229282336

4

Mery Betty Purba

082276087170

5

Irene Tiara Pusparani

082232128598

6

Fahma Mufti Hidayah

0816518240

7

Andi Sukarno Effendi

085791525491

8

Fitria Dwi Andhini

082231969866

9

Prisscylia Kartika Sari

082234634596

10

Andy Putra Dharmawan

082244141071

11

Muhammad Akbarrudin

085645560701

12

Devi Kumala Agustin

081249914948

13

Firman Yudha Axiomawan

085708122073

JADWAL PRAKTIKUM

Hari

Tangg al

Kegiatan

Minggu

03-12-2017

Shift 1

Maserasi

Senin

04-12-2017

Shift 1

Evaporasi

Shift 2

Maserasi

Shift 1

Praktikum

Shift 2

Evaporasi

Shift 3

Maserasi

Shift 2

Praktikum

Shift 3

Evaporasi

Shift 4

Maserasi

Shift 3

Praktikum

Shift 4

Evaporasi

Shift 4

Praktikum

Selasa

Rabu

Kamis

Jumat

05-12-2017

06-12-2017

07-12-2017

08-12-2017

PEMBAGIAN SAMPEL

No.

Materi

1

Uji Aktivitas Antioksidan

Sampel

Buah Sonneratia

Kelom pok

Semua kelompok

caseolaris

2

3

4

Pengujian Kadar

Terasi tradisional

1,2,3,4,9,10,11,12

Garam

Terasi modern

5,6,7,8,13,14,15,16

Kerupuk ikan

(Merk A)

1,2,3,4

Uji Daya Kembang dan

Kerupuk ikan

(Merk B)

5,6,7,8

Daya Serap Minyak

Kerupuk udang (Merk A)

9,10,11,12

Kerupuk udang (Merk B)

13,14,15,16

Alga Cokelat

1,2,3,4,9,10,11,12

Kepala Udang

5,6,7,8,13,14,15,16

Penentuan Kadar β-

karoten

UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN 1. PENDAHULUAN

1.1 Latar B elakang

Indonesia memiliki area mangrove terluas di dunia (3.5 juta hektar). Sejauh ini di Indonesia tercatat setidaknya 202 jenis tumbuhan mangrove, meliputi 89 jenis pohon, 5 jenis palma, 19 jenis pemanjat, 44 jenis herba tanah, 44 jenis epifit dan 1 jenis paku. Dari 202 jenis tersebut, 43 jenis (diantaranya 33 jenis pohon dan beberapa jenis perdu) ditemukan sebagai mangrove sejati (true mangrove), sementara jenis lain ditemukan disekitar mangrove dan dikenal sebagai jenis mangrove ikutan ( associate- associate) (Noor et al., 2006)[1]. Dari sekian banyak tanaman mangrove di Indonesia, jenis mangrove yang banyak ditemukan antaralain adalah jenis api-api ( Avicennia sp. ), bakau (Rhizophora sp.), tanjang atau lindur ( Bruguierasp. ), dan bogem atau pedada ( Sonneratia sp. ) yang merupakan tumbuhan mangrove utama (Bengen, 2002) [2]. Hutan mangrove merupakan salah satu bentuk ekosistem hutan yang unik dan khas, terdapat di daerah pasang surut di wilayah pesisir, pantai, dan atau merupakan potensi sumber daya alam yang sangat potensial. Hutan mangrove mempunyai banyak manfaat untuk kehidupan manusia diantaranya manfaat ekologi, sumber pangan dan obat (Ernianingsih et al., 2014)[3]. Sebagian besar bagian dari tumbuhan mangrove bermanfaat sebagai bahan obat, hal ini disebabkan senyawa fitokimia yang dikandungnya. Senyawa fitokimia (fito = tumbuhan) adalah zat kimia alami yang terdapat di dalam tanaman yang dapat memberikan cita rasa, aroma, ataupun warna khas pada tanaman tersebut. Senyawa fitokimia tidak termasuk zat gizi karena bukan berupa karbohidrat, protein, lemak, vitamin, mineral maupun air. Secara umum, fitokimia

terdiri atas 8 kelas utama, yaitu terpenoid (isoprenoid), polifenol, glukosinolat, fitosterol, kapsaisin, klorofil, betalain (betanin, betain) dan pektin (Astawan dan Kasih, 2008)[4]. Tumbuhan mangrove mengandung senyawa-senyawa seperti alkaloid, flavonoid, fenol, terpenoid, steroid dan saponin (Eryanti et al., 1999)[5]. Senyawa fenol meliputi berbagai senyawa yang berasal dari tumbuhan yang memiliki cincin aromatik yang mengandung satu atau dua gugus hidroksil. Senyawa ini cenderung mudah larut dalam air karena umumnya berikatan dengan gula sebagai glikosida (Harborne, 1987) [6]. Senyawa fenol terbukti sebagai sumber antioksidan yang efektif, penangkap radikal bebas dan pengkelat ion-ion logam. Aktivitas antioksidan dari senyawa fenol berhubungan dengan struktur senyawa fenol. Keberadaan grup hidroksil atau metoksi diketahui dapat meningkatkan aktivitas antioksidan dari senyawa fenol (Meskin et al., 2002)[7]. Antioksidan adalah zat yang dapat menangkal atau mencegah reaksi oksidasi yang disebabkan oleh radikal bebas. Antioksidan mampu menghambat radikal bebas dan mengubahnya menjadi senyawa non radikal (Romansyah, 2011)[8]. Berdasarkan sumber perolehannya terdapat dua jenis antioksidan, yaitu antioksidan alami dan antioksidan sintetik. Antioksidan alami dapat diperoleh dari berbagai jenis tumbuhan karena mengandung senyawa kimia yang memiliki gugus hidroksi yang terikat pada cincin benzena sehingga berpotensi sebagai antioksidan, seperti tumbuhan mangrove (Tursiman et al., 2012) [9]. Salah satu metode untuk memperoleh senyawa-senyawa antioksidan tersebut adalah dengan cara ekstraksi. Ekstraksi adalah proses pemisahan komponen-komponen terlarut dari komponen yang tidak larut dari suatu campuran dengan pelarut yang sesuai (Lehninger dan Beverloo, 1975) [10]. Proses ekstraksi dipengaruhi oleh lama ekstraksi, suhu dan jenis pelarut yang digunakan. Semakin lama waktu yang digunakan dan semakin tinggi suhu yang digunakan, semakin sempurna proses

ekstraksi. Semakin dekat tingkat kepolaran pelarut dengan komponen yang akan diekstrak, semakin sempurna proses ekstraksi. Metode ekstraksi yang biasa dilakukan adalah ekstraksi dengan pelarut (maserasi). Prinsip ekstraksi menggunakan pelarut adalah bahan yang akan diekstrak kontak langsung dengan pelarut selama selang waktu tertentu dan komponen yang akan diekstrak akan terlarut dalam pelarut (Hougton dan Raman, 1998) [11]. Sebelum memulai ekstraksi, dilakukan persiapan bahan baku yang mencakup pengeringan bahan sampai kadar air tertentu dan penggilingan bahan untuk mempermudah proses ekstraksi (Purseglove et al., 1981)[12].

1.2 Maksud d an Tujuan

Maksud dari praktikum Metode Analisa Laboratorium dengan materi Uji Aktivitas Antioksidan adalah agar praktikan mampu menguasai metode analisa pengujian aktivitas antioksidan pada jenis mangrove Sonneratia caseolaris dengan analisa laboratorium yang tepat dan teliti. Tujuan dari praktikum Metode Analisa Laboratorium dengan materi Uji Aktivitas Antioksidan adalah sebagai berikut.

-

Agar praktikan mengetahui metode analisa uji aktivitas antioksidan pada buah mangrove Sonneratia caseolaris .

-

Agar praktikan mengetahui pengaruh perbedaan pelarut dalam ekstraksi antioksidan.

-

Agar praktikan mampu melatih ketepatan dan ketelitiannya dalam melakukan analisa di laboratorium.

-

Agar

praktikan

antioksidan.

mengetahui

manajemen

laboratorium

uji

aktivitas

1.3 Waktu d an Tempat

2. METODOLOGI

2.1 Peralatan dan Fung sin ya

Peralatan yang digunakan dalam praktikum Metode Analisa Laboratorium dengan materi Antioksidan adalah sebagai berikut. 2.1.1 Preparasi Sampel

- Baskom

:

Wadah buah mangrove

- Pisau

:

Untuk membantu mengupas dan mengiris buah oven

- Talenan

:

Alas saat pengupasan buah mangrove

- Loyang

:

Wadah saat pengeringan sampel buah mangrove dengan oven

- Oven

:

Untuk mengeringkan sampel buah mangrove

- Nampan

:

Alas saat pengeringan sampel buah mangrove dengan diangin-anginkan

- Mortar dan alu

:

Untuk menumbuk sampel buah mangrove

- Kamera

:

Untuk mendokumentasikan perlakuan

- Stopwatch/jam

:

Untuk menghitung lama perlakuan

- Timbangan digital

:

Untuk menimbang berat dengan ketelitian 10 -2 g

- Botol kaca kecil

:

Wadah maserasi sampel buah mangrove dan wadah

2.1.2 Ekst raksi Sampel

ekstrak setelah dievaporasi

- Gelas ukur 100 ml

:

Untuk mengukur volume pelarut yang dibutuhkan

- Beaker glass 100 ml

:

Wadah aseton 70% dan wadah filtrat ekstrak buah mangrove hasil penyaringan

- Corong kaca

:

Untuk membantu memasukkan filtrat ke dalam labu rotary evaporator

- Rotary evaporator

:

Untuk memisahkan pelarut ekstraksi dari fitrat secara vakum

- Nampan

:

Untuk tempat alat dan bahan

- Mortar dan alu

:

Untuk menghaluskan asam askorbat

- Kamera

:


- Stopwatch/jam

:


2.1.3 Uji Aktivi tas Anti oksid an

- Gelas ukur 100 ml

:

Untuk mengukur volume pelarut yang dibutuhkan


:

Wadah saat pengenceran ekstrak dan wadah tabung

- Botol UC

:

Untuk wadah pengenceran bertingkat

- Pipet tetes

:

Untuk mengambil pelarutan/reagen dengan volume 1 ml (22 tetes)

- Pipet serologis

:

Untuk mengambil pelarutan/reagen dengan volume 0,1 - 1 ml

- Bola hisap

:

Untuk membantu mengambil pelarut dengan pipet serologis

- Tabung reaksi

:

Wadah saat mereaksikan ekstrak sampel

- Spatula

:

Untuk membantu menghomogenkan

- Inkubator

:

Untuk menginkubasi ekstrak sampel pada suhu 30oC

- Spektrofotometri UV-Vis

:

Untuk mengukur absorbansi ekstrak sampel dan larutan standar

- Kamera

:


- Stopwatch/jam

:


2.2 Bahan-Bahan dan Fungsi nya

Bahan-bahan

yang

digunakan

dalam

praktikum

Metode

Analisa

Laboratorium dengan materi adalah sebagai berikut. 2.2.1 Preparasi Sampel

- Buah Sonneratia caseolaris

:

Sampel kering

- Air

:

Untuk mencuci buah mangrove

2.2.2 Ekst raksi Sampel

- Sampel kering

:

Sampel yang diekstrak

- Heksan

:

Pelarut ekstraksi

- Etil asetat

:

Pelarut ekstraksi

- Etanol

:

Pelarut ekstraksi

- Aseton

:

Pelarut ekstraksi

- Plastik wrap

:

Untuk menutup mulut botol

- Alumunium foil

:

Untuk menutup seluruh permukaan botol

- Kertas saring

:

Untuk menyaring

- Air

:

Untuk perlakuan kondensasi dan untuk mencuci peralatan setelah digunakan

- Kertas label

:

Untuk menandai

- Tisu

:

Untuk mengeringkan peralatan setelah dicuci

- Ekstrak sampel

:

Sampel yang diuji aktivitas antioksidannya

- Methanol

:

Larutan pengencer dan blanko

- DPPH 0,4 mM

:

Radikal bebas

- Kapas

:

Untuk menutup mulut tabung reaksi agar tidak

2.2.3 Uji Aktivi tas Anti oksid an

terkontaminasi

- Plastik wrap

:

Untuk menutup mulut tabung reaksi agar vakum

- Alkohol

:

Untuk membersihkan cuvet spektrofotometri

- Asam askorbat

:

Larutan standar

- Aquadest

:

Pelarut saat membuat larutan standar

- Air

:

Untuk mencuci peralatan setelah digunakan

- Kertas label

:

Untuk menandai

- Tisu

:


2.3 Skema Kerja 2.3.1 Preparasi Sampel ( 13Paputungan et al., 2017 dan

14

Utari et al., 2016)

Buah Sonneratia caseolaris

Dikupas

Daging dicuci dengan air mengalir

Diiris tipis

[13]

Dikeringkan dengan oven bersuhu 65oC selama 4 jam

Hasil (sampel kering)

[14]

2.3.2 Ekst raksi Sampel (Paputun gan et al., 2017 dengan modi fi kasi)

Sampel kering 10 g

Dimasukkan dalam botol

Ditambah pelarut Heksan 1:7,5 (b:v)

Ditambah pelarut Etil asetat 1:7,5 (b:v)

Ditambah pelarut Etanol 1:7,5 (b:v)

Ditutup hingga rapat

Dikocok selama 15 menit

Mulut botol ditutup plastik wrap

Seluruh botol ditutup alumunium foil

Disimpan pada suhu ruang selama 24 jam

Disaring

Residu

Filtrat Dievaporasi Hasil

Ditambah pelarut Aseton 70% dan asam askorbat 0,25% 1:7,5 (b:v)

2.3.3 Uji Akti vitas Antiok sidan (Bloi s, 1958 dengan modi fikasi Rahim, 2012[15] )

0,005 gram sampel

Diencerkan dengan methanol

12,5 ppm

25 ppm

Diambil 0,8 ml

100 ppm

50 ppm

200 ppm

0,8 ml masing-masing pelarut

Ditambah 1 ml DPPH 0,4 mM

Dimasukkan dalam botol vial lalu ditutup

Diukur absorbansinya menggunakan spektrofotometer UV-Vis 517 nm

Dihitung % inhibisi = [

 − 

] x 100%

Dibandingkan dengan larutan standar: asam askorbat 0,5, 1, 1,5, 2 dan 2,5 ppm

Dihitung regresi dan IC 50 (Inhibition Concentration ) Hasil

3. PEMBAHASAN

3.1 Data Hasil Pengamatan

3.2 Analisa Prosedur

3.3 Analis a Hasil

4. PENUTUP

4.1 Kesimpulan

4.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

[1] Noor R., Y., M. Khazali dan I.N.N Suryadiputra. 2006. Panduan Pengenalan Mangrove di Indonesia. Ditjen. PHKA dan Wetlands International – Indonesia Programme. Bogor. [2] Bengen, D.G. 2002. Ekosistem dan Sumberdaya Alam Pesisir Dan Laut Serta Prinsip Pengelolaannya. Sinopsis.Pusat Kajian Sumberdaya Pesisir dan Lautan. IPB. [3] Ernianingsih, S.W.,Mukarlina.,dan Rizalida. (2014). Entnofarmakologi tumbuhan mangrove Achantus ilicifolius L., Acrostichum speciosum L. dan Xylocarpus rumphii Mabb. di desa tungai tekong kec. kungai kakap kab. kubu raya. Jurnal Protobiont 3 (2): 252 – 258. [4] Astawan, M., Kasih, A. L. 2008. Khasiat Warna-Warni Makanan Gramedia. Jakarta. [5] Eryanti, 1999. Identifikasi dan Isolasi Senyawa Kimia Dari Mangrove (hutan Bakau). Pusat Penelitian Kawasan Pantai dan Perairan, Universitas Riau. 18 hal. [6] Harborne J.B. 1973. Phytochemical Methods. Chapman and Hall in association with Methuen. Inc. New York. Terjemahan Oleh Padmawinata K, I. Soediro. 1987. Metode Fitokimia. Edisi ke-2. Institut Teknologi Bandung. Bandung. [7] Meskin, M. S., W. R. Bidlack, A. J. Davies, S. T. Omaye. 2002. Phytochemicals in Nutrition and Health. CRC Press. London-New York. [8] Romansyah, Y. 2011. Kandungan Senyawa Bioaktif Antioksidan Karang Lunak Sarcophyton Sp. Alami Dan Transplantasi Di Perairan Pulau Pramuka, Kepulauan Seribu . Skripsi . Departemen Ilmu Dan Teknologi Kelautan Fakultas Perikanan Dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.Bogor. [9] Tursiman , P. Ardiningsih, R. Nofiani. 2012. Total fenol fraksi etil asetat dari buah asam kandis (Garcinia dioica Blume). JKK 1 (1) : 45 - 48. [10] Lehninger, H.A and W.A Beverloo. 1975. Food Process Engineer ing. D. Reidel Publishing Company. Holland. [11] Houghton PJ, Raman A. 1998. Laboratory Handbook for the Fractionation of Natutal Extracts. Chapman and Hall. London. [12] Purseglove, J. W, E. G. Brown, C. L. Green dan S. R. J. Robbins. 1981. Spices, Volume II. Longman Inc. New York. [13] Paputungan, Z., D. Wonggo dan B. E. Kaseger. 2017. Uji fitokimia dan aktivitas antioksidan buah mangrove Sonneratia alba di desa nunuk kecamatan pinolosian kabupaten bolaang mongondow selatan. Jurnal Media Teknologi Hasil Perikanan 5 (3) : 190 - 195.

[14] Utari, A.A.P.C.P., I. E. Suprihatin dan N. K. Ariati. 2016. Kandungan tembaga (Cu) buah lindur ( Bruguiera gymnorrhiza ), pedada ( Sonneratia caseolaris), nyirih ( Xylocarpus granatum ), dan bakau ( Rhizopora mucronata) di taman hutan raya ngurah rai, bali. Cakra Kimia 4 (1) : 49 - 54. [15] Rahim, A. 2012. Uji Aktivitas Antioksidan dengan Metode 1,1-Difenil-2Pikrilhidrazil (DPPH) dan Uji Terpenoid terhadap Ekstrak Acanthaster . Skripsi. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Indonesia.

PENGUJIAN KADAR GARAM 1. PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Ion klorida adalah anion yang dominan di perairan laut. Sekitar ¾ dari clorin (Cl2) yang terdapat di bumi berada dalam bentuk larutan, sedangkan sebagian besar florin (F 2) berada dalam bentuk batuan mineral. Unsur klor dalam air terdapat dalam bentuk ion klorida (Cl -). Ion klorida adalah salah satu anion anorganik utama yang ditemukan di perairan alami dalam jumlah lebih banyak daripada anion halogen lainnya. Klorida biasanya terdapat dalam bentuk senyawa natrium klorida (NaCl), kalium klorida (KCl) dan kalsium klorida (CaCl 2) (Kusumaningrum et al., 2014)[1]. Natrium dan klorida biasanya berhubungan sangat erat baik sebagai bahan makanan maupun fungsinya dalam tubuh. Sebagian besar natrium didapat dalam plasma darah dan dalam cairan di luar sel (ekstraseluler), beberapa diantaranya juga terdapat dalam tulang. Dalam badan seperti halnya dalam makanan, sebagian natrium bergabung dengan klorida membentuk garam meja, yaitu natrium klorida. Sebagai bagian terbesar dari cairan ekstraseluler, natrium dan klorida juga membantu mempertahankan tekanan osmotik, juga membantu menjaga keseimbangan asam dan basa (Winarno, 2002) [2]. Penambahan

garam

dapat

membuat

ikan

menjadi

awet,

tetapi

penambahan yang berlebihan selain membuat cita rasa menjadi kurang disukai juga dapat membahayakan kesehatan tubuh karena dapat meningkatkan tekanan darah tinggi. Intake natrium berpengaruh terhadap hipertensi dan merupakan faktor resiko pada timbulnya peyakit jantung koroner, hipertensi, kegemukan, kolesterol, dan lemak yang tinggi, walaupun bukan satu-satunya faktor pengaruh.

Hipertensi juga meningkatkan resiko stroke dan kegagalan ginjal (Yuniarti dan Almasyhuri, 2012)[3]. Kandungan garam dapur (NaCl) dalam suatu pangan dapat ditentukan kadarnya dengan menggunakan titrasi argentometri. Dalam titrasi argentometri, untuk mengetahui tercapainya titik ekivalen pada titrasi argentometri ini adalah dengan metode mohr dimana hasil akhir dari titrasinya adalah pembentukan endapan berwarna (Vantyca et al., 2016)[4]. Titrasi argentometri menurut Nofiana, et al. (2014)[5], ialah titrasi dengan menggunakan perak nitrat sebagai titran dimana akan terbentuk garam perak yang sukar larut. Dasar titrasi argentometri adalah reaksi pengendapan (presipitasi) dimana zat yang hendak ditentukan kadarnya diendapk an oleh larutan baku AgNO Zat tersebut misalnya garam-garam halogenida (Cl, Br, I), sianida(CN), tiosianida (SCN), dan fosfat. Berdasarkan pada indikator yang digunakan argento mettri dapat dibedakan menjadi metode Mohr (pembentukan endapan berwarna dengan penambahan K2CHO4 sebagai indikator), Model Valhard (Penentu zat warna yang mudah larut dengan penambahan indikator Fe 3+ ), dan Motode Fajans ( Pembentukan endapan dengan menggunakan indikator absorbsi seperti cosine atau fluonescein). Titrasi argentometri didasarkan pada reaksi: AgNO3 + Cl- → AgCl(s) + NO3Kalium kromat dapat digunakan sebagai indikator, menghasilkan warna merah dengan kelebihan ion Ag + titrasi yang lebih banyak dapat digunakan adalah metode titrasi balik (Watson, 2007) [6].


Maksud dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Pengujian Kadar Garam adalah agar praktikan mampu melakukan pengujian kadar garam pada produk perikanan menggunakan salah satu metode pengujian kadar garam. Tujuan dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Pengujian Kadar Garam adalah agar praktikan dapat mengetahui kadar garam pada produk hasil perikanan serta dapat menetapkan kesesuaiannya dengan standar.

1.3 Waktu dan Tempat

2. METODOLOGI


Peralatan yang digunakan dalam praktikum Metode Analisa Laboratorium dengan materi Pengujian Kadar Garam adalah sebagai berikut.


:

Wadah untuk preparasi sampel

- Labu ukur 100 ml

:

Wadah untuk pengenceran sampel

- Washing bottle

:

Wadah aquades

- Timbangan digital

:

Untuk menimbang berat dengan ketelitian 10 -2 g

- Pipet volume

:

Untuk mengambil pelarutan/reagen

- Pipet tetes

:

Untuk mengambil pelarutan/reagen dengan volume 1 ml = 22 tetes

:

- Bola hisap

Untuk membantu mengambil larutan dengan pipet pipet volum

- Spatula

:

Untuk membantu menghomogenkan

- Erlenmeyer 50 ml

:

Wadah untuk melarutkan sampel

- Mikrobiuret

:

Wadah indikator AgNO 3 saat titrasi

- Statif

:

Sebagai penyangga mikrobiuret

- Kamera

:

Untuk dokumentasi tiap perlakuan


Bahan-bahan

yang

digunakan

dalam

praktikum

Metode

Analisa

Laboratorium dengan materi Pengujian Kadar Garam adalah sebagai berikut.

- Terasi

tradisional

dan

:

Sampel yang diuji kadar garamnya

:

Sebagai pelarut sampel

modern

- Aquades

- Indikator K2CrO4

:

Indikator perubahan warna

- AgNO3

:

Sebagai titran

- Air

:


- Kertas label

:

Untuk menandai

- Tisu

:


2.3 Skema Kerja 2.3.1 Preparasi Sampel

0,45 gram terasi

Masukkan ke beaker glass

Tambahkan 5 ml aquades dan homogenkan

Pindahkan larutan ke labu ukur 100 ml

Encerkan dengan aquades hingga tanda batas dan dihomogenkan

Hasil 2.3.2 Uji Kadar Garam (Mohr, 1856) [7]

10 ml larutan terasi

Masukkan ke erlenmeyer

Tambahkan 1 ml indikator K 2CrO4

Titrasi dengan larutan AgNO 3 sampai berubah warna menjadi jmerah bata

Catat volume titrannya

Dihitung %NaCl

Hasil

Rumus Perhitungan % NaCl =

mL AgNO3 x N AgNO3 x 58,46 mg sampel

x 100%

3. PEMBAHASAN



3.3 Analis a Hasil

4. PENUTUP

4.1 Kesimpulan

4.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

[1] Kusumaningrum , W. , I.I. Rosita, N. M. Awaliyah, U. Kalsum A.L, dan A. Rachmawati. 2014. Penentuan Kadar Klorida Dalam MgCl 2 dengan Analisis Gravimetri. Fakultas Ilmu Tarbiyah dan Keguruan, Universitas lslam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta. hlm.1-8. [2] Winarno, F. G. 2002. Bahan Tambahan Makanan. Pusat Antar Universitas Pangan dan Gizi, Institut Pertanian Bogor. Bogor. [3] Yuniarti dan Almasyhuri, 2012. Kandungan natrium (Na) dan garam (NaCl) dalam ikan asin kering mentah dan goreng di pasar anyar bogor. Jurnal Penelitian Gizi dan Makanan 5 :183-186. [4] Vantyca,D., D.N.Indrawati, M.N. Aristya, Y. Nofiana, dan Y. Puspita. 2016. Penetapan kadar garam dapur (NaCl) dalam bahan pangan. Praktikum Kimia Pangan. 6 hlm [5] Nofiana , E.N.A., M. Ilma, dan N.A. Damayanti. 2014. Titrasi argentometri dengan cara mohr. Jurnal Kimia Analitik 2 : 1-7. [6] Watson, D.G. 2007. Analisis Farmasi. Edisi 2. Buku Kedokteran EGC. Jakarta. [7] Mohr. 1856. dalam Julisti, B. 2010. Analisa NACL Metode Argentometri Cara Mohr. http://btagallery.blogspot.com/2010/03/analisa-kadar-nacldalam-tepung-tapioka.html. Diakses: 04 Oktober 2017 pukul 14.30 WIB.

UJI DAYA KEMBANG DAN DAYA SERAP MINYAK 1. PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Kerupuk pada umumnya dihasilkan dari pencampuran bahan baku, pati, dan air. Adonan dicampur hingga kalis, dibentuk lalu di kukus. Adonan lalu didinginkan, diiris, dan dikeringkan untuk mengurangi kadar air. Setelah kerupuk kering kemudian kerupuk bisa dimasak dengan cara digoreng menggunakan minyak mendidih. Setelah mengalami proses penggorengan maka kerupuk akan mengembang (Huda et al., 2009) [1]. Pengembangan kerupuk adalah salah satu faktor mutu kerupuk yang paling

penting

karena

menentukan

penerimaan

konsumen.

Terjadinya

pengembangan dapat disebabkan oleh terbentuknya rongga-rongga udara pada kerupuk yang telah digoreng karena pengaruh suhu selama proses penggorengan . Hal ini dapat menyebabkan air yang terikat dalam gel menjadi uap. Tekanan uap yang dihasilkan mendesak gel-gel pati, hingga membentuk suatu produk yang mengembang (Koswara, 2009)[2]. Daya penyerapan minyak pada kerupuk menurut Zulfahmi, et al. (2014)[3], saat digoreng dipengaruhi oleh kandungan protein dalam kerupuk, semakin besar kandungan protein dalam kerupuk, maka daya serap minyak akan semakin kecil. Protein dapat mengakibatkan penurunan pengembangan amilopektin dalam pati, sehingga akibatnya mengecilkan pori-pori yang terdapat dalam kerupuk saat digoreng. Karena pori-pori dalam kerupuk mengecil, minyak akan sulit untuk masuk kedalam kerupuk, jadi kandungan minyak dalam kerupuk akan menurun.


Maksud dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Uji Daya Kembang dan Daya Serap Minyak adalah agar praktikan mampu melakukan uji daya kembang dan daya serap minyak pada kerupuk. Tujuan dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Uji Daya Kembang dan Daya Serap Minyak adalah agar praktikan dapat mengetahui daya kembang dan daya serap pada kerupuk serta dapat menetapkan kesesuaiannya dengan standar.


2. METODOLOGI


Peralatan yang digunakan dalam praktikum Metode Analisa Laboratorium dengan materi Uji Daya Kembang dan Daya Serap Minyak ad alah sebagai berikut.

- Kompor

:

Sumber api

- Wajan

:

Wadah proses penggorengan

- Penggaris

:

Untuk mengukur diameter kerupuk

- Sutil

:

Alat bantu saat menggoreng

- Timbangan digital

:

Untuk menimbang berat kerupuk dengan ketelitian 10-2 g

- Toples

:

Wadah meniriskan kerupuk

- Kamera

:



Bahan-bahan

yang

digunakan

dalam

praktikum

Metode

Analisa

Laboratorium dengan materi Uji Daya Kembang dan Daya Serap Minyak adalah sebagai berikut.

- Kerupuk udang

:

Sampel yang diuji daya kembang dan daya serapnya

- Kerupuk ikan

:

Sampel yang diuji daya kembang dan daya serapnya

- Minyak goreng

:

Untuk menggoreng kerupuk

- Tali

:

Untuk membantu mengukur diameter kerupuk

- Kertas minyak

:

Sebagai alas saat penirisan

- Air

:


- Tisu

:


2.3 Skema Kerja 2.3.1 Daya Kembang (Ku sum aning rum , 2009)[4]

Kerupuk mentah kering Diukur keliling kerupuk dengan benang dan penggaris (A)

Kerupuk yang sudah diukur, digoreng sampai matang

Kerupuk matang

Diukur keliling kerupung matang (B)

Dihitung % daya kembang kerupuk keliling kerupuk matang (B)− keliling kerupuk mentah (A)

% Daya kembang =

keliling kerupuk mentah (A)

x 100%

2.3.2 Daya Serap (Kus umanin grum , 2009)

Kerupuk mentah kering Ditimbang beratnya (A)

Kerupuk yang sudah ditimbang, digoreng sampai matang

Kerupuk matang

Ditimbang beratnya (B)

Dihitung % daya serap minyak kerupuk

% Daya serap =

berat kerupuk matang (B)−berat kerupuk mentah(A) berat kerupuk mentah (A)

x 100 %

3. PEMBAHASAN



3.3 Analis a Hasil

4. PENUTUP

4.1 Kesimpulan

4.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

[1] Huda, N ., I. Boni, dan I. Noryanti. 2009. The effect of different ratios of dory fish to tapioca flour on the linear expansion, oil absorption, colour and hardness of fish cracers. International Food Research Journal 16 : 159 - 165. [2] Koswara ,S. 2009. Pengolahan Aneka Kerupuk. Ebookpangan.com . hlm. 1 31. [3] Zulfahmi , A.N. , F. Swastawati, dan Romadhon. 2014. Pemanfaatan commersoni ) dagingikan tenggiri ( Scomberomorus dengan konsentrasi yang berbedapada pembuatan kerupuk ikan. Jurnal Pengolahan dan Bioteknologi Hasil Perikanan 3 (4) : 133 -139. [4] Kusumaningrum, I. 2009. Analisa faktor daya kembang dan daya serap kerupuk rumput laut pada variasi proporsi rumput laut ( Eucheuma cottonii ). Jurnal Teknologi Pertanian 4 (2) : 63-68.

PENENTUAN KADAR β-KAROTEN

1. PENDAHULUAN

1.1 Latar Latar Belakang

Karotenoid menurut Fretes, et al. (2012)[1], merupakan pigmen paling umum yang berada di alam dan di sintesis oleh semua mikroorganisme fotosintetis dan fungi. Karetonoid berasal dari kelas terpenoid, berupa rantai poliena dengan 40 karbon yang dibentukdari 8 unit isoprena C5 yang memberikan struktur molekul karetonoid yang khas. Karetonoid dikelompokan menjadi 2 yaitu karoten yang merupakan hidrokarbon hidrokarb on dan xantofil

yang merupakan turunan karoten

teroksigenasi. Beta karoten (β -karoten) merupakan jenis karetonoid yang paling banyak

jumlahnya dialam dan hamper semua tanaman mengandung β -karoten. β-karoten dapat diubah menjadi vitamin A didalam tubuh. Cincin β dari β -karoten didalam tubuh akan diubah menjadi vitamin A oleh enzim 15, 15’ dioksigenase menjadi 2

molekul retinal, kemudian molekul retinal akan direduksi menjadi retinol yang merupakan vitamin A (Dufosse, 2009) [2]. Beta-karoten memiliki aktifitas antioksidan yang tinggi sehingga mampu mengurangi resiko penyakit jantung, stroke, semua penyakit kardiovaskuler dan melindungi tubuh dari resiko kanker paru-paru, payudara, dan prostat. Selain itu beta karoten juga mempunyai kemampuan yang handal dalam meredam radikal bebas terutama radikal singlet O 2 (Parwata et al., 2010) [3]. Spektrofotometri UV-Vis menurut Octaviani, et al. (2014)[4], adalah metode analisis berdasarkan interaksi antara radiasi elektromagnetik ultra violet dekat (190-380 nm) dan sinar tampak (380-780 nm) dengan memakai instrument spektrofotometer dengan suatu materi (senyawa). Metode ini berdasarkan penyerapan sinar ultraviolet maupun sinartampak yang menyebabkan terjadinya

transisi elektron (perpindahan electron dari tingkat energi yang rendah ketingkat energi yang lebih tinggi). 1.2 Maksud d an Tujuan

Maksud dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Penentuan Kadar β-karoten adalah agar praktikan mampu melakukan uji kuantitaif β -karoten pada suatu bahan menggunakan salah satu metode pengujian kadar garam. Tujuan dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Penentuan Kadar β-karoten adalah agar praktikan dapat mengetahui kadar β-karoten pada suatu bahan serta dapat menetapkan kesesuaiannya dengan standar. 1.3 Waktu Waktu dan Tempat

2. METODOLOGI


Peralatan yang digunakan dalam praktikum Metode Analisa Laboratorium dengan materi Penentuan Kadar β-karoten adalah sebagai berikut.

- Erlenmeyer 50 ml

:

Wadah untuk menghomogenkan sampel dan larutan

- Mortal dan alu

:

Untuk menghaluskan sampel

- Magnetic stirrer

:

Untuk menghomogenkan sampel

- Timbangan digital

:

Untuk menimbang dengan ketelitian 10 -2 g

- Corong buchner

:

Untuk menyaring agar mendapat bagian polar

- Labu takar 5 ml

:

Wadah sampel bagian polar

- Spektrofotometer

:

Untuk mengukur panjang absorbansi

- Kamera

:


- Blender

:

Untuk menghaluskan sample


Bahan-bahan

yang

digunakan

dalam

praktikum

Metode

Analisa

Laboratorium dengan materi Penentuan Kadar β-karoten adalah sebagai berikut.

- Kepala Udang

:

Sampel yang diuji kadar β-karotennya

- Alga Cokelat

:

Sampel yang diuji kadar β-karotennya

- Aluminium foil

:

Untuk menutup mulut erlenmeyer

- Heksana

:

Larutan ekstraksi

- Aseton

:

Larutan ekstraksi

- Etanol

:

Larutan ekstraksi

- β-karoten

:

Sebagai larutan standar

- Air

:


- Kertas label

:

Untuk menandai

- Tisu

:


2.3 Skema Kerja

Sampel dihaluskan Diambil 50 gram

Masukkan kedalam erlenmeyer dan tutup alufo

Tambahkan 50 mL larutan (heksana:aseton:etanol = 2:1:1)

Kocok 30 menit dengan magnetic stirer

Saring dengan corong buchner

Bagian polar

Dimasukkan labu takar 0,5 ml

Ditambah etanol sampai tanda batas

Diukur absorbansinya dengan spektrofotometer UV-vis 451 nm

Dibandingkan dengan larutan standar β-karoten 3, 6, 9, 12, dan 15 ppm

Hasil

3. PEMBAHASAN



3.3 Analis a Hasil

4. PENUTUP

4.1 Kesimpulan

4.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

[1] Fretes, Hd., Budhi, P., AB, Susanto., & L, Limantara. 2012. Karotenoid dari makroalgae dan mikroalgae: potensi kesehatan aplikasi dan bioteknologi. Jurnal Teknologi dan Industri Pangan 23 (2): 221 - 228. [2] Dufosse, L. 2009. Microbial and Microalgal Carotenoids as Colourants and Suplements. In Britton , G. Liaaen-Jensen, S . Pfander, Hanspeter (Eds). Carotenoids, Nuttrition And Healt 5. Biarkhuser Verlag, Basser. Switzerland. [3] Parwata, I.M.O.A., K. Ratnayani, dan A. Listya . 2010. Aktivitas antiradikal bebas serta kadar beta karoten pada madu randu ( Ceiba pentandra ) dan madu kelengkeng (Nephelium longata L. ). Jurnal Kimia 4 (1) : 54-62. [4] Octaviani, T., A. Guntarti dan H. Susanti. 2014. Penetapan kadar β -karoten pada beberapa jenis cabe (Genus Capsicum ) dengan metode spektrofotometri tampak. Pharmaciana 4 (2) : 101-109.

MATERIAL SAFETY DATA SHEET (MSDS) 1. PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Dalam melaksanakan eksperimen, kontak terhadap bahan kimia akan terjadi baik langsung maupun tidak langsung. Pengetahuan sifat dan karakter bahan kimia perlu dimiliki mengingat bahan kimia memiliki potensi untuk menimbulkan bahaya baik terhadap kesehatan maupun bahaya kecelakaan. Hal ini dapat dipahami karena bahan kimia dapat memiliki tipe reaktivita s kimia tertentu dan juga dapat memiliki sifat mudah terbakar (BPPT, 2006) [1]. Aktivitas kerja yang selalu memperhatikan aspek kesehatan dan keselamatan kerja perlu dibudayakan dalam bekerja di laboratorium. Untuk dapat mendukung jaminan kesehatan dan keselamatan kerja maka para peneliti maupun laboran yang bekerja di laboratorium harus mengetahui dan memiliki pengetahuan serta keterampilan untuk menangani bahan kimia khususnya dari segi potensi bahaya yang mungkin ditimbulkan. Informasi atau pengetahuan yang harus diketahui pelaksana di laboratorium kimia dimuat dalam Material Safety Data Sheet (MSDS) (BPPT, 2006).

MSDS adalah dokumen yang dibuat khusus tentang suatu bahan kimia mengenai pengenalan umum, sifat-sifat bahan, cara penanganan, penyimpanan, pemindahan dan pengelolaan limbah buangan bahan kimia tersebut. Berdasarkan isi dari MSDS maka dokumen tersebut sebenarnya harus diketahui dan digunakan oleh para pelaksana yang terlibat dengan bahan kimia tersebut yakni produsen, pengangkut, penyimpan, pengguna dan pembuang bahan kimia. Pengetahuan ini akan dapat mendukung budaya terciptanya kesehatan dan keselamatan kerja (Tahir dan Sugiharto, 2002) [2].

MSDS dibuat oleh berbagai pihak seperti produsen bahan, institusi yang bergerak dan terkait dengan kesehatan dan keselamatan kerja, industri atau perguruan tinggi. MSDS sendiri memuat informasi tentang : (1) Informasi umum tentang bahan, (2) Informasi komponen berbahaya, (3) Reaktivitas bahan, (4) Sifat mudah terbakarnya bahan, (5) Sifat fisika bahan, (6) Sifat kimia bahan, (7) Dampak kesehatan, (8) Pertolongan pertama, dan (9) Penyimpanan. Secara umum MSDS mengandung bab sebagai berikut yang semuanya menjelaskan tentang bahan yang bersangkutan: (1) Produk dan identitas perusahaan, (2) Komposisi/informasi kandungan bahan, (3) identifikasi bahaya, (4) Tindakan pertolongan pertama, (5) Penanganan penanggulangan kebakaran, (6) Penanggulangan kondisi darurat tumpahan dan kebocoran, (7) Penanganan dan penyimpanan, (8) Pengendalian pemaparan/perlindungan diri, (9) Spesifikasi fisika dan kimiawi, (10) stabilitas dan reaktivitas, (11) Data toksikologi, dan (12) Informasi ekologi lingkungan. Salah satu hal penting yang harus diketahui pada MSDS yakni simbol tanda bahaya yang digunakan di MSDS. Pada MSDS tanda bahaya dikelompokkan menjadi 4 hal yakni bahaya dari segi kesehatan, kemudahan terbakar, reaktivitas bahan dan bahaya khusus, dan digunakan simbol belah ketupat yang terdiri dari 4 bagian seperti gambar di bawah ini.

Arti simbol tersebut adalah sebagai berikut: 1.

Bagian sebelah kiri berwarna biru menunjukkan skala bahaya kesehatan.

2.

Bagian sebelah atas berwarna merah menunjukkan skala bahaya kemudahan terbakar.

3.

Bagian sebelah kanan berwarna kuning menunjukkan skala bahaya reaktivitas.

4.

Bagian sebelah bawah berwarna putih menunjukkan skala bahaya khusus lainnya. Masing-masing bagian akan terisi dengan angka skore tertentu dengan

nilai 0, 1, 2, 3 atau 4 tergantung dari tingkat bahaya bahan kimia. Skore 0 mengindikasikan bahan kimia tidak berbahaya, sedangkan skore 1 menunjukkan bahaya pada level rendah dan skore 4 menunjukkan bahan tersebut termasuk sangat berbahaya. Detail arti tingkat bahaya tersebut diuraikan pada tabel berikut. Tabel Arti Tingkat Bahaya pada Dokumen MSDS

Untuk MSDS yang dibuat dalam file teks, maka tanda bahaya di atas dituliskan dalam bentuk 4 atau 3 angka berturutan. Penulisan pada jenis MSDS ini adalah sebagai berikut:[4,1,1,0] atau [4,1,1. Kode angka tersebut secara berturutturut mengartikan tingkat bahaya dari segi kesehatan, kemudahan terbakar, reaktivitas dan bahaya khusus lainnya.


Maksud dari praktikum Metode Analisa Laboratorium mater i Material Safety Data Sheet (MSDS) adalah agar praktikan mengetahui prosedur bekerja di

laboratorium serta mengetahui pengenalan umum, sifat-sifat bahan, cara penanganan, penyimpanan, pemindahan dan pengelolaan limbah buangan bahan kimia yang digunakan di laboratorium dengan tujuan untuk menjamin kesehatan dan keselamatan kerja. Tujuan dari praktikum Metode Analisa Laboratorium materi Material Safety Data Sheet (MSDS) adalah agar praktikan dapat menerapkan prosedur dalam

MSDS agar kesehatan dan keselamatan kerja di laboratrium terjamin.


2. PEMBAHASAN

2.1 Ring kasan Material Safety Data Sheet (MSDS) beberapa pelarut (berisi deskripsi, bahaya jika terpapar serta pencegahannya, dan cara penyimpanannya) 2.1.1 Etanol

2.1.2 Heksan

2.1.3 Etil Asetat

2.1.4 Aseton

2.2 Simbol-Simbol Berbahaya dalam Laboratorium (15 simbol) No.

Gambar

Bahan

Keterangan

3. PENUTUP

3.1 Kesimpulan

3.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

[1] Badan Pengkajian dan Penerapan Teknologi ( BPPT), 2006. Material Safety Data Sheet (MSDS). http://www.kelair.bppt.go.id/sib3pop/Iptek/MSDS/msdsinfo.htm. Diakses 04/ Oktober 2017.

[2] Tahir, I. dan E. Sugiharto. 2002. Pengelolaan dan implementasi material safety data sheet (MSDS) pada riset mahasiswa untuk mendukung kesehatan dan keselamatan kerja di laboratorium. Seminar Nasional Pendidikan MIPA Universitas Negeri Semarang . hlm. 1-13.

BUKPAN PRAKTIKAN 2017

Recommend Documents