UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS (Universidad del Perú, Decana de América) Facultad de Ingeniería Geológica, Minera, Metalúrgica Y Geográfica. Escuela Académico Académico Profesional Profesional de Ingeniería Ambiental
PRACTICAS DE BIOLOGIA Mg. Olga Bracamonte Guevara FCB-UNMSM
2016
Practica N° 1
Guía de Recomendaciones para el trabajo en el laboratorio
Antes de de llevarse llevarse a cabo una práctica, práctica, se deberán tomar en en cuenta las siguientes recomendaciones:
En el laboratorio laboratorio debe trabajarse seriamente, con mucha responsabilidad y estar atento a las instrucciones del facilitador. No deben deben efectuarse experimentos a menos menos que estén supervisados y aprobados por el profesor. Leer cuidadosamente cuidadosamente el manual de prácticas antes de de entrar al laboratorio. Las instrucciones deben seguirse cuidadosamente. Cualquier anomalía debe consultarse con el profesor. El uso de bata de laboratorio es indispensable. No se deben ingerir alimentos ni fumar dentro del laboratorio. No trasladar varios objetos de vidrio al mismo tiempo. Lea cuidadosamente cuidadosamente la etiqueta etiqueta del frasco hasta hasta estar seguro de que es el reactivo que necesita, no utilice reactivos que estén en frascos sin etiquetas, después de usar un reactivo tenga la precaución de cerrar bien el frasco. Debe informarse informarse inmediatamente inmediatamente de de cualquier cualquier accidente, accidente, aunque aunque sea leve, al profesor o laboratorista. El orden y la limpieza deben presidir a todas las experiencias de laboratorio. En consecuencia al terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente los equipos, los materiales y las mesas de trabajo que se ha utilizado. Cuando se se ha calentado vidrio, se le debe colocar sobre sobre tela y en lugar no muy accesible de la mesa de trabajo y dar suficiente tiempo para que se enfríe antes de tocarlo. Recuérdese que el vidrio caliente tiene el mismo aspecto que el vidrio frío. Cuando se se calientan sustancias contenidas en un tubo de ensaye, no se debe apuntar la boca del tubo al compañero o así mismo, ya que pueden presentarse proyecciones de líquido caliente. En caso caso de incendio, incendio, empléese empléese una tela para para apagarlo y téngase siempre siempre presente la ubicación de los extintores. Los sólidos y papeles que se desechen desechen deben colocarse colocarse en un recipiente apropiado, asi como los vidrios y agujas. Los sobrantes de los líquidos no deberán devolverse a los recipientes iniciales a menos que el profesor lo indique. Los instrumentos y material delicado deben manejarse con cuidado evitando los golpes o forzando sus mecanismos. Los productos inflamables (gas, alcohol, éter y otros) deben deben mantenerse alejados de las llamas de los mecheros. Si se calientan tubos de ensayo
Practica N° 1
Guía de Recomendaciones para el trabajo en el laboratorio
Antes de de llevarse llevarse a cabo una práctica, práctica, se deberán tomar en en cuenta las siguientes recomendaciones:
En el laboratorio laboratorio debe trabajarse seriamente, con mucha responsabilidad y estar atento a las instrucciones del facilitador. No deben deben efectuarse experimentos a menos menos que estén supervisados y aprobados por el profesor. Leer cuidadosamente cuidadosamente el manual de prácticas antes de de entrar al laboratorio. Las instrucciones deben seguirse cuidadosamente. Cualquier anomalía debe consultarse con el profesor. El uso de bata de laboratorio es indispensable. No se deben ingerir alimentos ni fumar dentro del laboratorio. No trasladar varios objetos de vidrio al mismo tiempo. Lea cuidadosamente cuidadosamente la etiqueta etiqueta del frasco hasta hasta estar seguro de que es el reactivo que necesita, no utilice reactivos que estén en frascos sin etiquetas, después de usar un reactivo tenga la precaución de cerrar bien el frasco. Debe informarse informarse inmediatamente inmediatamente de de cualquier cualquier accidente, accidente, aunque aunque sea leve, al profesor o laboratorista. El orden y la limpieza deben presidir a todas las experiencias de laboratorio. En consecuencia al terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente los equipos, los materiales y las mesas de trabajo que se ha utilizado. Cuando se se ha calentado vidrio, se le debe colocar sobre sobre tela y en lugar no muy accesible de la mesa de trabajo y dar suficiente tiempo para que se enfríe antes de tocarlo. Recuérdese que el vidrio caliente tiene el mismo aspecto que el vidrio frío. Cuando se se calientan sustancias contenidas en un tubo de ensaye, no se debe apuntar la boca del tubo al compañero o así mismo, ya que pueden presentarse proyecciones de líquido caliente. En caso caso de incendio, incendio, empléese empléese una tela para para apagarlo y téngase siempre siempre presente la ubicación de los extintores. Los sólidos y papeles que se desechen desechen deben colocarse colocarse en un recipiente apropiado, asi como los vidrios y agujas. Los sobrantes de los líquidos no deberán devolverse a los recipientes iniciales a menos que el profesor lo indique. Los instrumentos y material delicado deben manejarse con cuidado evitando los golpes o forzando sus mecanismos. Los productos inflamables (gas, alcohol, éter y otros) deben deben mantenerse alejados de las llamas de los mecheros. Si se calientan tubos de ensayo
con estos productos se procederá al calentamiento en baño maría, nunca directamente a la llama . Si se manejan mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso de paso al apagar la flama.
Cuando se manejan productos corrosivos corrosivos (ácido, álcali, etc.) deberá deberá hacerse con cuidado para evitar que salpique el cuerpo o bata. Cuando en una reacción reacción se desprendan gases tóxicos tóxicos o se evaporen evaporen ácidos, la operación deberá hacerse bajo una campana de extracción o en un lugar ventilado. Cuando se se calienten calienten a la llama tubos de ensaye que contengan contengan líquidos deben de evitarse la ebullición violenta por el peligro que existe que puede producir salpicaduras. El tubo de ensaye se acercará a la llama i nclinado y procurando que este actúe sobre la mitad superior del contenido, cuando de observe que inicia la ebullición rápida, se retirará, acercándolo nuevamente a los pocos segundos y retirándolo otra vez al producirse otra nueva ebullición, realizando así un calentamiento intermitente. En cualquier caso se evitará dirigir la boca del tubo hacia la cara o hacia otra persona. Cuando se se quiera diluir un ácido, nunca se debe debe agregar agregar agua sobre ellos; siempre al contrario: ácido sobre agua. No se debe oler directamente directamente una una sustancia, sustancia, si se desconoce que es. es. No pipetear pipetear nunca nunca con la boca. boca. Se debe utilizar una perilla de succión. Las pipetas pipetas se agarrarán de forma que sea sea el dedo índice índice el que tape tape su extremo superior para regular la caída del líquido. Al enrasar un líquido líquido con una determinada determinada división de escala graduada graduada debe evitarse el error de paralelaje levantando el recipiente graduado a la altura de los ojos para que la visualización al enrase sea horizontal. 25. Cualquier material de vidrio no deberá enfriarse bruscamente justo después de haberlos calentado con el fin de evitar roturas. Manipula con con cuidado cuidado el equipo de vidrio para que no se rompa; en caso de que esto suceda, recoge con cuidado los fragmentos de vidrio envuélvelos en un papel y tíralos en el bote de la basura. En ocasiones ocasiones es necesario necesario reconocer una sustancia sustancia por su su olor, la manera manera adecuada de hacerlo consiste en abanicar con la mano hacia la nariz un poco de vapor y aspirar indirectamente; nunca inhalar directamente del recipiente. En caso caso de heridas, quemaduras con objetos calientes, salpicadura salpicadura de sustancias caústicas o de malestar por gases aspirados, acudir inmediatamente al profesor y de ser necesario al médico. No tirar o arrojar residuos químicos químicos de los experimentos al desagüe. desagüe. En En cada práctica deberá preguntar al profesor sobre los productos que puede arrojar al desagüe, para evitar la contaminación de ríos y lagos. Evitar el manejo de sustancia o reactivos reactivos si no te encuentras en buenas buenas condiciones de salud, o bajo tratamiento médico. Cuando utilice equipos equipos no olvide olvide apuntarse en el cuaderno cuaderno preparado para tal fin.
SUSTANCIAS QUE DEBEN USARSE CON PRECAUCIÓN Todas las que se utilizan en las operaciones y reacciones en el laboratorio de química son potencialmente peligrosas por los que, para evitar accidentes, deberán trabajarse con cautela y normar el comportamiento en el laboratorio por las exigencias de la seguridad personal y del grupo que se encuentre realizando una práctica. Numerosas sustancias orgánicas e inorgánicas son corrosivas o se absorben fácilmente por la piel, produciendo intoxicaciones o dermatitis, por lo que se ha de evitar su contacto directo; si este ocurriera, deberá lavarse inmediatamente con abundante agua la parte afectada.
PRACTICA DE LABORATORIO N° 2
MICROSCOPIA OBJETIVOS Identificar cada una de las partes del microscopio y aprender a utilizarlos correctamente Formular y enumerar los cuidados básicos que se debe tener en cuenta en el uso y manejo del microscopio durante las sesiones de prácticas.
EL MICROSCOPIO El microscopio es un instrumento diseñado para posibilitar la observación y examen de organismos o partes del mismo muy pequeñas no visibles al ojo humano. Hay varios tipos de microscopio, los más usados y conocidos son los microscopios simples o lupa, los microscopios compuestos y el microscopio binocular estereoscopio, también lo hay otros tipos de uso más especializado en determinados campos de la biología y otras ciencias como el microscopio electrónico. El microscopio simple (de un lente o varios lentes), es un instrumento que amplifica una imagen y permite la observación de mayores detalles de los posibles a simple vista. El microscopio más simple es una lente de aumento o un par de anteojos. El poder de resolución del ojo humano es de 0,2 mm es decir que para ver dos objetos separados estos deben estar como mínimo a esa distancia. El microscopio aumenta la imagen hasta el nivel de la retina, para captar la información. La resolución depende de la longitud de onda de la fuente luminosa, el espesor del espécimen o muestra, la calidad de la fijación y la intensidad de la coloración. Teóricamente la máxima resolución que se puede alcanzar es de 0,2 um dada por una luz con longitud de onda de 540 nm, la cual pasa por un filtro verde (muy sensible por el ojo humano) y con objetos condensadores adecuados. El ocular aumenta la imagen producida por el objetivo, pero no puede aumentar la resolución.
Microscopio compuesto SISTEMA ÓPTICO OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador. Amplía la imagen del objetivo. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación. Amplía la imagen de ésta. CONDENSADOR: Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
SISTEMA MECÁNICO
SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo. PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación. CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos. TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.
MATERIAL Y METODO Microscopio Papel filtro o papel de arroz Papel milimetrado Letra “e” minúscula recortada de periódico o revista Hebras de lana Recorte de una figura o foto de revista Laminas portaobjetos Laminas cubreobjetos Gotero
METODO
Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina completamente. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones. Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas Comenzar la observación con el objetivo de 4x (ya está en posición) o colocar el de 10 aumentos (10x) si la preparación es de bacterias. Para realizar el enfoque: Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo macrométrico. Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose dañar alguno de ellos o ambos. Mirando, ahora sí, a través de los oculares, ir separando lentamente el objetivo de la preparación con el macrométrico y, cuando se observe algo nítida la muestra, girar el micrométrico hasta obtener un enfoque fino. Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las
precauciones anteriores y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó con el objetivo de inmersión (100x). Para realizar el proceso descrito anteriormente se utilizara como muestra o preparación una letra “e” minúscula y una hebra de hilo, las cuales se colocaran sobre el centro de un portaobjetos con el lado de debajo de la letra hacia arriba en el caso de la “e”
minúscula. Ponga una gota de agua sobre la muestra. Después de esperar unos segundos hasta que el agua haya empapado el papel, coloque la laminilla (cubreobjetos) sobre la preparación, si quedan algunas burbujas de aire se presiona ligeramente la laminilla con un lápiz hasta que desaparezcan y continúe con el proceso
Dibuje lo que observa en cada aumento observado Empleo del objetivo de inmersión (100x) : Bajar totalmente la platina Subir totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona que se va a visualizar y donde habrá que echar el aceite. Girar el revólver hacia el objetivo de inmersión Colocar una gota mínima de aceite de inmersión sobre la muestra en la lámina portaobjetos. Terminar de girar suavemente el revólver hasta la posición del objetivo de inmersión Mirando directamente al objetivo, subir la platina lentamente hasta que la lente toca la gota de aceite. En ese momento se nota como si la gota ascendiera y se adosara a la lente. Enfocar cuidadosamente con el micrométrico. La distancia de trabajo entre el objetivo de inmersión y la preparación es mínima, aun menor que con el de 40x por lo que el riesgo de accidente es muy grande Una vez se haya puesto aceite de inmersión sobre la preparación, ya no se puede volver a usar el objetivo 40x sobre esa zona, pues se mancharía de aceite. Por tanto, si desea enfocar otro campo, hay que bajar la platina y repetir la operación desde el paso 3. Una vez finalizada la observación de la preparación se baja la platina y se coloca el objetivo de menor aumento girando el revólver. En este momento ya se puede retirar la preparación de la platina. Nunca se debe retirar con el objetivo de inmersión en posición de observación. Limpiar el objetivo de inmersión con cuidado empleando un papel especial para óptica. Comprobar también que el objetivo 40x está perfectamente limpio. Para realzar el proceso descrito anteriormente se usan preparaciones fijas previamente coloreadas. Dibujar lo observado. Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda
CAMPO VISUAL El campo de visión de un microscopio es la zona circular que se observa al mirar la preparación bajo un determinado aumento. Para medir el campo de visión de un microscopio, se debe usar una unidad llamada micra. Una micra equivale a 0,0001 mm; en otras palabras, hay 1000 micras en un milímetro. El diámetro de este campo es su medida.
Para calcular el diámetro del campo de visión para un determinado aumento hay que seguir los siguientes pasos: Recorte un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado Colóquelo sobre la abertura central del portaobjeto Observando por el ocular y con el objetivo de 4X, mover la muestra hasta lograr que la línea 0 mm quede en el borde izquierdo del campo visual Enfocar con el objetivo de menor aumento 4X hasta que se vea con claridad. Enfocar la preparación quiere decir situarla a la distancia del objetivo que permite su observación nítida. Esta distancia se conoce como distancia de trabajo y es tanto menor cuanto mayor es el poder de aumento del objetivo Medir el campo visual haciendo coincidir una de las líneas del papel milimetrado con el borde del campo de visión Contar el número de milímetros que se ven (recuerde que la distancia entre dos líneas es un milímetro) y estimar aproximadamente la fracción sobrante, si la hay . El resultado será el diámetro del campo visual para ese aumento (objetivo x ocular). Si queremos calcular el diámetro del campo de visión para aumentos mayores, hay que tener en cuenta que cuanto mayor sea el aumento, el campo será menor, es decir, se verá menos de la muestra que estemos observando. De forma que, si el aumento es el doble, el campo será la mitad, si el aumento es el triple, el diámetro será la tercera parte, etc. (inversamente proporcionales). Por tanto, bastará con realizar un sencillo cálculo matemático para saber el nuevo diámetro. Dibujar lo observado
RECOMENDACIONES
Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo.
Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica.
No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio
Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción.
No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador).
El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular.
Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol.
CUESTIONARIO 1. 2. 3. 4.
Explique brevemente la definición del microscopio y su finalidad Identifica en el gráfico un microscopio compuesto y todas sus partes Describa los diferentes tipos de microscopios Explique la trayectoria del rayo de luz a través del microscopio y por que se invierte la imagen que observamos 5. Defina: poder de definición del microscopio, poder de penetración o profundidad, poder de resolución, campo de visión 6. Como se determina el aumento total (Xt) del microscopio óptico compuesto 7. Por que se usa aceite de inmersión para utilizar el objetivo de 100x?
PRÁCTICA DE LABORATORIO No. 3 CARACTERISTICAS DE LO SERES VIVOS
OBJETIVOS La vida es el conjunto de cualidades propias de los seres vivos, ellos tienen una compleja estructura material y poseen características que los diferencian de los seres inanimados, entre las que se distinguen la irritabilidad, adaptación, reproducción, metabolismo, crecimiento y homeostasis. En la presente practica probaremos que los seres vivos responden a estimulos.
CARACTERISITICAS DE LOS SERES VIVOS Los seres vivos se caracterizan por:
Estructura compleja y organización específica, característica que se refiere a que todos los organismos tienen una forma propia y definida según su especie, las partes que lo forman están adaptadas a un fin y también realizan sus funciones en un orden determinado. Metabolismo, como la habilidad para tomar la materia y la energía del medio para transformarla y satisfacer sus necesidades. Existen dos tipo de organismos de acuerdo a como se alimentan: Autótrofos y Heterótrofos. Irritabilidad que les permite responder a estímulos de su ambiente. Reproducción utilizando un patrón molecular de ADN. Todos los seres vivos son capaces de generar seres idénticos a ellos mismos para así asegurar la permanencia continua de las especies. Crecimiento y desarrollo, manifestado por el aumento de masa celular, talla y volumen. Homeostasis, mantenimiento del equilibrio de las condiciones internas del su cuerpo para contrarrestar los cambios del medio. Adaptación y evolución. Capacidad de los seres vivos de modificar su estructura y su fisiología para sobrevivir en un determinado ambiente.
MATERIAL Y METODO MATERIAL
Hojas de Elodea Cochinillas Lombriz de tierra Cloruro de calcio Algodón Portaobjetos Cubreobjetos Caja Petri Piseta
Fósforos METODO
1. Colocar una hoja pequeña de Elodea sobre un portaobjetos y agregar una gota de agua, luego cubrir con el Cubreobjetos y enfocar en el microscopio con el objetivo de 10 x, disminuya y aumente la luz. Observar, describir y esquematizar en su bitácora de trabajo. 2. Colocar una lombriz en la caja de petri, observar con el estereoscopio la estructura y características, describir y esquematizar lo observado. Luego acercarle una fuente de calor (la llama de un fósforo) y observar la reacción, luego unas gotas de agua y observar. 3. En una caja de petrí coloque un trocito de cloruro de calcio y un algodón húmedo, en extremos opuestos, luego coloque la cochinilla en el centro de la caja y observe hacia donde se dirige. Por último toque con la punta de un lápiz a la cochinilla observar, esquematizar y describir lo ocurrido. CUESTIONARIO 1. Defina los siguientes términos: Movimiento b. Estímulo c. Adaptación d. Factor ambiente e. Crecimiento f. Organización g. Homeostasis h. Tropismo 2. Investigue el nombre científico de las especies que ha usado en la práctica. 3. Investigue dos plantas que presenten tropismos, adaptaciones permanentes.
BIBILIOGRAFIA Audesirk, Audesirk, Byers. Biología “La vida en la Tierra” 8va. Edición. Pearson
Educación de México, 2008. Pelaez Garavito, I y Marulanda Ángel M.L. Texto Guia de Biología General y Laboratorio Morales J. Laboratorio de Biología, , Universidad Libre, Facultad de Ingeniería. Solis Rojas J.l, Manual de Practicas de Biología General, Universidad Nacional del Centro del Perú, Facultad de Ingenierías en Industrias Alimentarias Correa M. L. Laboratorio de Biología Vegetal y Ecologia. Universidad del Valle, Facultad de ingenieria Piña Lopes, E,E. Salazar Nuñes, Y. Avila Garcia, B. Guía de Laboratorio de Biología, Escuela de Ciencias Básicas, Tecnología e Ingeniería, Universidad Nacional Abierta y a Distancia http://www.conevyt.org.mx/cursos/cursos/planeta/
PRÁCTICA DE LABORATORIO No. 4 ORGANISMOS VIVOS – PROTOZOARIOS DE VIDA LIBRE OBJETIVO Este laboratorio tiene dos objetivos: 1. identificar algunos protozoarios de vida libre de agua dulce (ciliados, flagelados ameboideos) además observar algunas características físicas y de locomoción de estos microorganismos. 2. Reforzar el manejo del microscopio para las actividades de investigación.
MARCO TEORICO Los protozoarios constituyen un grupo heterogéneo de organismos microscópicos unicelulares que poseen estructura celular típica. Son organismos que varían de tamaño, existiendo desde los sub microscópicos hasta los macroscópicos., sin embargo podemos decir que en general s0n pequeños y microscópicos. Estos organismos tienen por característica ser unicelulares manifestando todas las características de un ser vivo. En la única celula que tienen presentan un amplio grado de complejidad y especificidad tanto en forma como en función. Entre ellos hay que destacar la presencia de algunos grupos como,
Ciliados Organismos microscópicos que seencuentran generalmente en el planctone ríos, lagos, mares y océanos. Se caracterizan por presentar estructuras filiformes denominadas cilios, los cuales pueden rodear toda la célula o parte de ella. Los cilios, les sirven tanto para desplazarse como para crear corrientes que lleven alimento hacia su boca. Flagelados del grupo de los Zoomastiginos, con muchas especies que viven como parásitos de plantas y de animales. Los protozoos flagelados o mastigóforos están provistos de uno o varios flagelos que les permiten moverse. Se reproducen por división binaria. Ejm Euglena Ameboides del grupo Sarcodinos, que incluyen a los Foraminíferos y Radiolarios, y que son componentes importantes del plancton.
MATERIAL Y METODO MATERIAL Agua estancada Laminas Laminillas Goteros o pipetas Papel lente Microscopio compuesto
METODO Observación de flagelados 1. Obtenga muestras de agua que contenga protozoarios en un frasco con boca ancha procedente de un charco, pantano o laguna. 2. Con la ayuda de un gotero o pipeta, coloque una gota de la muestra en el centro de una lamina. 3. Coloque cuidadosamente una laminilla sobre la gota de agua. La parte superior de la laminilla deberá estar siempre libre de agua. 4. Identifique la presencia de flagelados entre ellos a Euglena sp.
CUESTIONARIO 1. 2. 3. 4.
¿Cómo es la forma de este protozoario? ¿Cómo se llama la estructura locomotriz, es posible observarla? ¿Cuál es la posición, color y función del estigma? Que otras características ha observado?
Observación de ciliados 1. Con la ayuda de un gotero o pipeta, coloque una gota de la muestra procedente del fondo de su frasco (con sedimento) en el centro de una lámina. 2. Coloque cuidadosamente una laminilla sobre la gota de agua. La parte superior de la laminilla deberá estar siempre libre de agua. 3. Identifique la presencia de ciliados entre ellos a Paramecium sp
1. ¿Cómo es la forma de este protozoario? 2. ¿Cómo se llama la estructura locomotriz, es posible observarla? 3. Que otras características ha observado?
Observación de ameboideos 1. Con la ayuda de un gotero o pipeta, coloque una gota de la muestra procedente del fondo de su frasco (con sedimento) en el centro de una lámina. 2. Coloque cuidadosamente una laminilla sobre la gota de agua. La parte superior de la laminilla deberá estar siempre libre de agua. 3. Identifique la presencia de ciliados entre ellos a Amoeba sp
CUESTIONARIO 1. 2. 3. 4. 5.
¿Cómo es la forma de este protozoario? ¿Cómo se llama la estructura locomotriz, es posible observarla? ¿Cuál es la posición, color y función del estigma? Que otras características ha observado? Que otros protozoarios identifico en la clase.
Algunos protozoarios frecuentes en aguas estancadas
BIBILIOGRAFIA Audesirk, Audesirk, Byers. Biología “La vida en la Tierra” 8va. Edición. Pearson
Educación de México, 2008. Pelaez Garavito, I y Marulanda Ángel M.L. Texto Guia de Biología General y Laboratorio Morales J. Laboratorio de Biología, , Universidad Libre, Facultad de Ingeniería. Solis Rojas J.l, Manual de Practicas de Biología General, Universidad Nacional del Centro del Perú, Facultad de Ingenierías en Industrias Alimentarias Correa M. L. Laboratorio de Biología Vegetal y Ecologia. Universidad del Valle, Facultad de ingenieria Piña Lopes, E,E. Salazar Nuñes, Y. Avila Garcia, B. Guía de Laboratorio de Biología, Escuela de Ciencias Básicas, Tecnología e Ingeniería, Universidad Nacional Abierta y a Distancia http://www.conevyt.org.mx/cursos/cursos/planeta/
PRÁCTICA DE LABORATORIO No. 5 CELULA EUCARIONTE OBJETIVO -
Reconocer tipos de célula eucarionte Identificar semejanzas y diferencias entre célula animal y de plantas
MARCO TEORICO Es aquella que tiene un núcleo definido por la presencia de una membrana nuclear donde contiene su material hereditario. Las células eucariotas tienen un modelo de organización mucho más complejo que las procariotas. Su tamaño es mucho mayor y en el citoplasma es posible encontrar un conjunto de estructuras celulares que cumplen diversas funciones denominan organelas celulares. Podemos distinguir dos tipos de células que presentan algunas diferencias: son célula animal y vegetal.
Partes Membrana plasmática Es el límite externo de la célula, encargada de controlar el paso de las sustancias y compuestos que ingresan o salen de la célula. Está formada por una doble capa de fosfolípidos y proteínas, algunas proteínas atraviesan la doble capa de lípidos (proteínas de transmembrana) y otras sólo se encuentran asociadas a una de las capas, la interna o externa. Las proteínas de la membrana tienen diversas funciones, como por ejemplo el transporte de sustancias y el reconocimiento de señales. El núcleo celular
El núcleo contiene el material genético de la célula o ADN. Es el lugar desde el cual se dirigen todas las funciones celulares. Está separado del citoplasma por una membrana nuclear que es doble, presenta orificios o poros nucleares que permiten el intercambio de moléculas entre el citoplasma y el interior nuclear. Una zona interna del núcleo, que se distingue del resto, se denomina nucleolo. Está asociado con la fabricación de los componentes que forman parte de los ribosomas.
Citoplasma Es la parte del protoplasma que se ubica entre las membranas nuclear y plasmática. Es un medio coloidal de aspecto viscoso en el cual se encuentran suspendidas distintas estructuras y organoides: Retículo endoplasmático. denominada retículo endoplasmático rugoso o granular (RER o REG). Complejo de Golgi. Lisosomas. Mitocondrias. Cloroplastos. Vacuolas. Ribosomas. El citoesqueleto. Centriolos.
MATERIAL Y METODO MATERIAL cebolla Laminas Laminillas Goteros o pipetas Papel lente Microscopio compuesto Lugol Azul de metileno Pinza Una navaja o bisturi
METODO Observación Célula de epitelio bucal (Célula animal): -Antes de obtener la muestra enjuáguese la boca por dos o tres veces para eliminar los restos de alimento. -
Obtenga la muestra de epitelio bucal con la ayuda un palillo de dientes o haciendo un raspado suave con el extremo de una lámina porta objetos debidamente limpia. Si extrae la muestra de epitelio bucal con un palillo de dientes, haga una frotis con el palillo sobre la lámina y deslícelo en un solo sentido. Sostenga por un extremo una segunda lamina entre los dedos pulgar e índice y forme un ángulo de 45° con la lámina que contiene la muestra, luego mueva la
-
lámina en una sola dirección para que las células queden esparcidas en una sola capa sobre la otra lamina (frotis) . Seque las láminas al medio ambiente durante 5 a 8 minutos. Cúbralas con una gota de azul de metileno durante 5 minutos. Elimine el exceso decolorante y lave en agua corriente. Seque la lámina por la parte inferior. Examine la preparación con el objetivo de menor aumento y posteriormente cambie de objetivo progresivamente. No olvide plasmar sus observaciones en su bitácora de trabajo.
Responda. 1. ¿Por qué es posible obtener algunas células, por simple frotamiento del interior de las mejillas? 2. ¿Qué características tienen las células? 3. ¿Donde está ubicado el núcleo?
Observación Célula eucariota vegetal: -
Coloque una gota de agua en el centro de la lámina. Realice un pequeño corte a la cebolla y con una pinza desprenda la epidermis de la cara interna del catafilo .La capa de la epidermis debe ser transparente. Coloque en la lámina el trozo de epidermis de cebolla que no será mayor que el diámetro de la gota de agua. Extienda cualquier doblez de la epidermis y cubra con una laminilla, sin aplicar presión alguna. Con papel de filtro o toalla seque cualquier exceso de agua después de haber colocado la laminilla Examine la preparación con el objetivo de menor aumento y posteriormente cambie de objetivo progresivamente. No olvide plasmar sus observaciones en su bitácora de trabajo. Prepare una nueva lámina de epidermis de cebolla con las condiciones señaladas anteriormente pero esta vez agregue una gota de lugol, en lugar de la gota de agua. Observe.
Responda. 1. ¿En cuál de las preparaciones se observan más detalles de la estructura celular? ¿Por qué? 2. ¿Por qué la pared celular es más fácil de observar que las estructuras de las áreas internas de las células? 3. ¿En el núcleo de estas células que estructuras puedes distinguir? 4. Haga un cuadro y establezca las semejanzas y diferencias entre las celulas animales y vegetales.
Complete las partes de les modelos celulares que les entrego a continuación.
BIBILIOGRAFIA Audesirk, Audesirk, Byers. Biología “La vida en la Tierra” 8va. Edición. Pearson
Educación de México, 2008.
Pelaez Garavito, I y Marulanda Ángel M.L. Texto Guia de Biología General y Laboratorio Morales J. Laboratorio de Biología, , Universidad Libre, Facultad de Ingeniería. Solis Rojas J.l, Manual de Practicas de Biología General, Universidad Nacional del Centro del Perú, Facultad de Ingenierías en Industrias Alimentarias Correa M. L. Laboratorio de Biología Vegetal y Ecologia. Universidad del Valle, Facultad de ingenieria Piña Lopes, E,E. Salazar Nuñes, Y. Avila Garcia, B. Guía de Laboratorio de Biología, Escuela de Ciencias Básicas, Tecnología e Ingeniería, Universidad Nacional Abierta y a Distancia http://www.conevyt.org.mx/cursos/cursos/planeta/
PRÁCTICA DE LABORATORIO No. 6 ORGANELAS CELULRES
OBJETIVO -
Reconocer algunas organelas celulares. Complementar los conocimientos teóricos.
MARCO TEORICO El citoplasma es la parte del protoplasma que se ubica entre las membranas nuclear y plasmática en el que se encuentran suspendidas distintas estructuras y organoides: Entre ellos los plastos que son orgánulos citoplasmáticos típicamente vegetales. Pueden estar coloreados por pigmentos liposolubles o ser incoloros. En el primer caso se incluyen cloroplastos y cromoplastos y en el segundo los leucoplastos. Los cloroplastos son los responsables de la asimilación fotosintética del carbono en las plantas verdes, los cromoplastos lo son del color anaranjado o rojizo de distintas estructuras vegetales (flores, frutos, etc.). Los leucoplastos pueden almacenar almidón, y se denominan amiloplastos; éstos se encuentran en diferentes órganos de reserva (rizomas, tubérculos).
MATERIAL Microscopio Gotero Portaobjetos y cubreobjetos Navaja de afeitar nueva Lugol Tubérculo de patata Zanahoria Harina de trigo Avena Arroz Tuna Lentejita de agua
METODO
1.
OBSERVACION DE CLOROPLASTOS EN Lemna minor “lentejita de agua” En un portaobjetos se coloca una gota de agua con unos filamentos del alga y se protege con un cubre. Se observa al microscopio con objetivo de 4x, 10X y 40 X de manera progresiva . - Observe la forma y tamaño de los cloroplastos. - Cuantos por célula. - tienen algún movimiento.
2.
OBSERVACION DE CROMOPLASTOS: En células de Daucus carota “Zanahoria” y “Aji amarillo”.
-
Con la navaja de afeitar y con mucho cuidado haga cortes muy finos de zanahoria y prepare una muestra húmeda de cada una de las muestras obtenidas. Con papel toalla elimine el exceso de agua de la muestra. Coloque la muestra sobre el microscopio y visualice a 40X, 100x y 400x Observe los cromoplastos que se sitúan generalmente adheridos a la membrana celular. Dibuje y describa. ¿Qué características destacables presentan?
_______________________________________________________________ 3.
OBSERVACIÓN DE LEUCOPLASTOS EN CÉLULAS DE TUBÉRCULO DE PAPA, ARROZ Y AVENA -
Se toma una porción de tubérculo de patata y se raspa con la punta de la lanceta. Se deposita el raspado sobre un porta y se añade una gota de agua y otra de lugol. Se coloca un cubre y se observa al microscopio.
-
Para observar en avena se coloca una porción mínima y se prepara una muestra húmeda , para el arroz el grano se frota sobre la lámina y luego se le añade agua.
Observe al microscopio y para observar mejor puede agregarle una gota de lugol, lo que le facilitara ver crecimiento de los gránulos los alrededor de un punto central o "hilo".
4.
OBSERVACION DE Drusas en Cactáceas. - Haga un corte transversal de hoja trate de observar en las células - Identifique los cristales de oxalato de calcio Drusas.
BIBILIOGRAFIA Audesirk, Audesirk, Byers. Biología “La vida en la Tierra” 8va. Edición. Pearson Educación de México, 2008. Pelaez Garavito, I y Marulanda Ángel M.L. Texto Guia de Biología General y Laboratorio Morales J. Laboratorio de Biología, , Universidad Libre, Facultad de Ingeniería. Solis Rojas J.l, Manual de Practicas de Biología General, Universidad Nacional del Centro del Perú, Facultad de Ingenierías en Industrias Alimentarias Correa M. L. Laboratorio de Biología Vegetal y Ecologia. Universidad del Valle, Facultad de ingeniería Dimitri, M.J. & E.N. Orfila. 1985. Tratado de Morfología y Sistemática Vegetal. Ed. Acme Esau, K. 1982. Anatomía de las plantas con semilla. Ed. Hemisferio Sur Evert, R.F. 2008. Esau Anatomía Vegetal. Ediciones Omega, Barcelona. Fahn, A. 1985. Anatomía Vegetal. Ed. Pirámide Strasburger, E. et al. 1994. Tratado de Botánica. Ed. Omega. Valla, J.J. 2004. Botánica. Morfología de las plantas superiores. Ed. Hemisferio Sur
PRÁCTICA DE LABORATORIO No. 7 División celular MITOSIS
OBJETIVO -
Identificar las etapas de la mitosis, mediante una actividad experimental.
MARCO TEORICO
Mitosis es la división nuclear más citocinesis, que produce dos células hijas idénticas a las que le dio origen por cuestiones didácticas se le divide en profase, metafase, anafase y telofase. La interfase frecuentemente se incluye en discusiones sobre mitosis, pero la interfase técnicamente no es parte de la mitosis, más bien incluye los etapas G1, S y G2 del ciclo celular.
Materiales: Puntas de raíces de cebolla. Microscopio. Pinzas de disección. Lunas de reloj. Portaobjetos. Cubreobjetos. Navajas o Bisturí. Papel absorbente. Fijador (Alcohol acido acético 3:1) Solución de aceto-orceína. Solucion targa
Procedimiento: días antes de la práctica requieres preparar el material biológico (cebolla) que utilizaras en la práctica. Puedes trabajar con cebolla de bulbo o grande. Si la cebolla tiene raíces, quítalas, Colocar 3 palillos de dientes de manera de tripié y colocar la cebolla dentro de un recipiente con agua, Cuidar que el agua toque la base de la cebolla, pero el resto de la cebolla no debe de estar sumergido en el agua, ya que se pudriría. Dejar la cebolla en agua para que crezcan las raíces.
Procedimiento en el laboratorio:
Con una navaja corta 3 o 4 raíces de cebolla. Con las pinza toma 2 raíces por el extremo cortado. Colócalas en un vidrio de reloj que contenga una gota de fijador aproximadamente y déjalas de 15 minutos, evita que la preparación se evapore. Enjuaga con agua destilada y agrega 1 gota de solución targa y déjala por 5 minutos. Con una navaja corta las puntas de las raíces de la cebolla en unos 2 mm y desecha los sobrantes. Agrega una gota de aceto-orceína y deja actuar por unos 10 minutos Coloca una de las puntas de la raíz sobre un portaobjetos.
Coloca encima un cubreobjetos y aplasta usando para ello el papel de filtro. Observa al microscopio con el objetivo de 10X y busca células en mitosis. Con el objetivo de 40X identifica algunas fases de la mitosis. Dibuje sus observaciones
Nota a fin que se pueda familiarizar con las diferentes fases de la mitosis use esta dirección de correo donde encontrara un ejercicio virtual que deben desarrollar. http://www.biologia.arizona Luego clicke en: Biología celular puntas de la raíz de cebolla Siguiente Siguiente Y siga las instrucciones para identificar las fases de la mitosi y sacar el porcentaje de las diferentes fases en el cuadro correspondiente que deberán colocar en su informe. BIBLIOGRAFIA Audesirk, Audesirk, Byers. Biología “La vida en la Tierra” 8va. Edición. Pearson
Educación de México, 2008. Pelaez Garavito, I y Marulanda Ángel M.L. Texto Guia de Biología General y Laboratorio Solis Rojas J.l, Manual de Practicas de Biología General, Universidad Nacional del Centro del Perú, Facultad de Ingenierías en Industrias Alimentarias Strasburger, E. et al. 1994. Tratado de Botánica. Ed. Omega. Valla, J.J. 2004. Botánica. Morfología de las plantas superiores. Ed. Hemisferio Sur
PRÁCTICA DE LABORATORIO No.8 División celular MEIOSIS
OBJETIVO - Identificar las etapas de la MEIOSIS mediante una actividad experimental. - Establecer diferencias con la MITOSIS. - Analizar los eventos de la profase I
MARCO TEORICO
La meiosis es la división celular que permite la reproducción sexual. Comprende dos divisiones sucesivas: una primera división meiótica, que es una división reduccional, ya que de una célula madre diploide (2n) se obtienen dos células hijas haploides (n); y una segunda división meiótica, que es una división ecuacional, ya que las células hijas tienen el mismo número de cromosomas que la célula madre (como la división mitótica). Así, dos células n de la primera división meiótica se obtiene cuatro células n. Igual que en la mitosis, antes de la primera división meiótica hay un período de interfase en el que se duplica el ADN. Sin embargo, en la interfase de la segunda división meiótica no hay duplicación del ADN.
Primera división meiótica - Profase I . Es la más larga y compleja, se subdivide en leptoteno, se forman los cromosomas, con dos cromátidas; zigoteno, cada cromosoma se une íntimamente con su homólogo; paquiteno, los cromosomas homólogos permanece juntos formando un bivalente o tétrada; diploteno, se empiezan a separar los cromosomas homólogos, observando los quiasmas; diacinesis, los cromosomas aumentan su condensación, distinguiéndose las dos cromátidas hermanas en el bivalente. - Metafase I . La envoltura nuclear y los nucleolos han desaparecido y los bivalentes se disponen en la placa ecuatorial. - Anafase I . Los dos cromosomas homólogos que forman el bivalente se separan, quedando cada cromosoma con sus dos cromátidas en cada polo.
- Telofase I . Según las especies, bien se desespiralizan los cromosomas y se forma la envoltura nuclear, o bien se inicia directamente la segunda división meiótica.
Segunda división meiótica Está precedida de una breve interfase, denominada intercinesis, en la que nunca hay duplicación del ADN. Es parecida a una división mitótica, constituida por la profase II, la metafase II, la anafase II y la telofase II.
Materiales: Grillo macho joven. Microscopio. Pinzas de disección. Lunas de reloj. Portaobjetos. Cubreobjetos. Navajas o Bisturí. Pinzas de relojero Papel toalla .
Fijador (Alcohol acido acético 3:1) Solución de aceto-orceína. Agua destilada
Método
Duerma a los ejemplares con cloroformo. Corte en forma transversal la parte inferior del abdomen con una tijera de disección, después corte perpendicular al primer corte hasta encontrar los testículos. Seleccionar los testículos, hipotonizarlos con agua destilada por 5 minutos y luego transferirlos al fijador. Pasar los testículos a una solución de alcohol de 70% por 10 minutos Colocar en un porta objeto una porción del testículo y sobre el una gota del colorante por 15 minutos, disgregar. Cubrir con laminilla y realizar el squash. Sellar el preparado y observar al microscopio. Esquematizar sus resultados.
BIBILIOGRAFIA Audesirk, Audesirk, Byers. Biología “La vida en la Tierra” 8va. Edición. Pearson
Educación de México, 2008.
Pelaez Garavito, I y Marulanda Ángel M.L. Texto Guia de Biología General y Laboratorio Morales J. Laboratorio de Biología, , Universidad Libre, Facultad de Ingeniería. Solis Rojas J.l, Manual de Practicas de Biología General, Universidad Nacional del Centro del Perú, Facultad de Ingenierías en Industrias Alimentarias Correa M. L. Laboratorio de Biología Vegetal y Ecologia. Universidad del Valle, Facultad de ingeniería Dimitri, M.J. & E.N. Orfila. 1985. Tratado de Morfología y Sistemática Vegetal. Ed. Acme Esau, K. 1982. Anatomía de las plantas con semilla. Ed. Hemisferio Sur Evert, R.F. 2008. Esau Anatomía Vegetal. Ediciones Omega, Barcelona. Fahn, A. 1985. Anatomía Vegetal. Ed. Pirámide Strasburger, E. et al. 1994. Tratado de Botánica. Ed. Omega. Valla, J.J. 2004. Botánica. Morfología de las plantas superiores. Ed. Hemisferio Sur.
PRÁCTICA DE LABORATORIO No.9 DEMOSTRACION INDIRECTA DE LAS LEYES DE MENDEL
OBJETIVO -
Probar de manera indirecta las Leyes de Mendel
MARCO TEORICO Las leyes de la herencia fueron derivadas de las investigaciones sobre hibridación entre plantas realizadas por Gregorio Mendel, un monje agustino austriaco, en el siglo XIX. Entre los años 1856 y 1863, Mendel cultivó y probó cerca de 28,000 plantas de la especie Pisum sativum “guisante”. Sus experimentos le llevaron a concebir dos generalizaciones que después serían conocidas como Leyes de Mendel de la herencia o herencia mendeliana. Mendel envió su trabajo al botánico suizo Karl von Nägeli (una de las máximas autoridades de la época en el campo de la biología), fue él quien le sugirió que realizara su serie de experimentos en varias especies del género Hieracium. Mendel no pudo replicar sus resultados, ya que posteriormente a su muerte, en 1903, se descubrió que en Hieracium se producía un tipo especial de partenogénesis, provocando desviaciones en las proporciones mendelianas esperadas. En 1900, sin embargo, el trabajo de Mendel fue redescubierto por el holandés Hugo de Vries, el alemán Carl Correns, y el austríaco Erich von Tschermak, por separado, y sin conocer los trabajos de Mendel llegaron a las mismas conclusiones que él. La observación de los resultados obtenidos llevó a Mendel a formular algunas suposiciones que explicaran los resultados obtenidos: -
“En cada organismo hay un par de fact ores que controlan la manifestación de una cualidad particular”. “Si un organismo tiene dos factores antagónicos para una
característica, uno de ellos puede expresarse con exclusión total del -
otro”. “Los factores hereditarios se separan o segregan al for marse las
células sexuales de manera que cada gameto lleva un factor de cada par”.
Los principios de la segregación equitativa (1ª ley de Mendel) y la transmisión independiente de la herencia (2ª ley de Mendel) derivan de la observación de la progenie de cruzamientos genéticos, no obstante, Mendel no conocía los procesos biológicos que producían esos fenómenos.
PRIMERA LEY DE MENDEL O LEY DE LA SEGREGACION (MONOHIBRIDISMO) Mendel sostuvo que un determinado carácter era controlado por un factor hoy conocido como gen., susceptible de segregarse, esto es, que durante la formación de gametos los dos genes se separan y uno de ellos con el del otro progenitor va a integrar el par de genes de la descendencia. Si representamos por medio de letras los dos genes en los cruzamientos y designamos con la letra “A” al gen para el carácter amarillo (dominante) y con la letra “a” al gen para el carácter verde (recesivo), tendremos:
Amarillo
Verde
Generación Progenitora (P)
Gametos (G)
F1
F2
Fenotipos
Amarillo (3)
Verde (1)
Fenotipo En la primera generación (F 1) se hallan ambos genes A y a, solo el A produce el fenotipo visible (amarillo) porque es dominante, el factor a, permanece oculto y se le denomina recesivo. La segunda generación (F 2) se obtiene al cruzar descendientes (F 1), quiere decir Aa x Aa. Durante la formación de gametos en cada progenitor los dos factores se segregan y la mitad de gametos lleva el factor (A) y la otra mitad el factor (a). Como cada individuo produce dos tipo de gametos, existen cuatro posibles combinaciones en la (F 2), dando como resultado que el 25% (1/4) sean amarillas puras (AA), 50% (1/2) semillas amarillas híbridas (Aa) y 25% (1/4) semillas verdes puras (aa), es decir una proporción fenotípica de 3: 1.
SEGUNDA LEY DE LA DISTRIBUCIÓN INDEPENDIENTE DE CARACTERES (DIHIBRIDISMO) En la primera ley se analiza el comportamiento de un solo par de genes, mientras que en la segunda ley se describe el comportamiento simultaneo de 2 o mas pares de genes situados en pares cromosómicos diferentes que se segregan independientemente durante la gametogénesis, formando los gametos
MATERIALES -
20 granos de frejol de color oscuro del mismo tamaño 20 granos de frejoles de color claro del mismo tamaño de los anteriores. 2 bolsas de papel. Papel y lápiz.
PROCEDIMIENTO Paso A Considere que va a realizar un cruzamiento Monohibrido -
Determine un carácter a estudiar que podría ser color de las semillas y que simbolizara por una letra por ejemplo A para el dominante y a para el recesivo. El grupo formado por 3 alumnos realizara los siguientes procedimientos: Dos de los alumnos deberán portar una bolsa de papel por alumno que representara un
-
progenitor ♂ y el progenitor ♀, donde deberán colocar 10 granos de color negro y 10 de color claro que simularan ser los gametos de un individuo . El tercer alumno portara la tabla donde se colocaran los resultados de cada observación. Simultáneamente retiren de cada bolsa un frejol al azar (gameto) y compleméntelo con el que retirara su compañero en las mismas condiciones que se extrajo el primero. Establezca el genotipo del descendiente combinado los dos gametos obtenidos al azar de los progenitores y anote el resultado en la hoja preparada para este fin. Devuelva los frejoles a la bolsa de donde se obtuvieron para no variar la proporcionalidad de los gametos de los heterocigotos. Repita 100 veces el retiro de los granos al azar y con reposición para no alterar la frecuencia inicial. Establezca la frecuencia de cada genotipo y anote en el cuadro adjunto Determine los fenotipos encontrados en el total de simulaciones. Obtenga el desvío y aplique una prueba de Chi cuadrado para ver si se ajusta a los resultados esperados (3:1).
TABLA DE GENOTIPOS
1
21
41
61
81
2
22
42
62
82
3
23
43
63
83
4
24
44
64
84
5
25
45
65
85
6
26
46
66
86
7
27
47
67
87
8
28
48
68
88
9
29
49
69
89
10
30
50
70
90
11
31
51
71
91
12
32
52
72
92
13
33
53
73
93
14
34
54
74
94
15
35
55
75
95
16
36
56
76
96
17
37
57
77
97
18
38
58
78
98
19
39
59
79
99
20
40
60
80
100
Prueba de Chi -Cuadrado Una prueba de chi-cuadrado es una prueba de hipótesis que compara la distribución observada de los datos con una distribución esperada de los datos. Para ello utilizaremos la siguiente formula:
-
El paso siguiente es interpretar los valores de X 2 en términos de probabilidad. Para tal efecto considere otro factor, el número de clases (fenotipos) -1 (grados de libertad. Cuando se ha determinado el X2 y los grados de libertad contrastamos nuestros resultados observados con los establecidos en la tabla (*).
-
Si los resultados están por debajo del 5%, los resultados no han ocurrido al azar.
CUADRO DE RESUMEN DE RESULTADOS -
GENOTIPO
FRECUENCIA FENOTIPO
OBSERVADO ESPERADO
DESVIO
AA Aa aa Según los resultados obtenidos por ustedes cuál sería su conclusión? _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________
Paso B Considere que va a realizar un cruzamiento Di Hibrido -
Como ya tiene una primera segregación, ahora proceda de la misma forma que en el paso anterior pero ahora considere otro par de factores por ejemplo el carácter tamaño que simbolizara por B para el dominante y b para el recesivo.
TABLA DE GENOTIPOS
-
1
21
41
61
81
2
22
42
62
82
3
23
43
63
83
4
24
44
64
84
5
25
45
65
85
6
26
46
66
86
7
27
47
67
87
8
28
48
68
88
9
29
49
69
89
10
30
50
70
90
11
31
51
71
91
12
32
52
72
92
13
33
53
73
93
14
34
54
74
94
15
35
55
75
95
16
36
56
76
96
17
37
57
77
97
18
38
58
78
98
19
39
59
79
99
20
40
60
80
100
Junte los datos con los de la anterior suposición y ordenelos en la tabla adjunta Analice los resultados. 1
21
41
61
81
2
22
42
62
82
3
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43
63
83
4
24
44
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5
25
45
65
85
6
26
46
66
86
7
27
47
67
87
8
28
48
68
88
9
29
49
69
89
10
30
50
70
90
11
31
51
71
91
12
32
52
72
92
13
33
53
73
93
14
34
54
74
94
15
35
55
75
95
16
36
56
76
96
17
37
57
77
97
18
38
58
78
98
19
39
59
79
99
20
40
60
80
100
Cuadro Resumen de los resultados obtenidos. GENOTIPO FRECUENCIA FENOTIPO OBTENIDO ESPERADO DESVIO AABB AABb AaBB AaBb AAbb Aabb aaBB aaBb Aabb
Según sus resultados ¿cuál sería su conclusión respecto a este supuesto cruzamiento Dihíbrido?
BIBLIOGRAFIA GRFFITHS, JF.y col
1995 GENETICA; Ed. Interamericana.Mc. GrawHill, Barcelona-España.
GARDNER,EJ.
1991 PRINCIPIOS DE GENÉTICA, 5ta Edición. Limusa- Noriega Editores- México D.F. México.
GUEVARA, P y col
2000 GENÉTICA PRACTICAS y PROBLEMAS Editado Facultad de Ciencias Biológicas UNMSM-Lima.
JENKlNS,J.B.
1992 GENÉTICA, Ed. Reverte S.A., Barcelona España.
KLUG, W.S y M.R.CUMINGS
1999 CONCEPTOS DE GENÉTICA Ed. Prentice Hall Iberia, S.R.L. Madrid.- España.
OLIVER,F.L.
1977 FUNDAMENTOS DE GENÉTICA, Ed.Mc.Grawn-Hill. Latinoamericana S.A. Bogotá Colombia.
PRÁCTICA DE LABORATORIO No.10 DETERMINACION DE GRUPOS SANGUINEOS
OBJETIVOS
-
Aplicar los conceptos, leyes, teorías y modelos aprendidos a situaciones reales y cotidianas. Determinar el grupo sanguíneo y el sistema Rh. Presenciar la técnica, y observar la aglutinación de los hematíes enfrentados a una serie de antisueros conocidos.
MARCO TEORICO Los glóbulos rojos o hematíes presentan en la superficie de la membrana proteinas especiales: son los antigenos A y B. Así, un glóbulo rojo puede tener antigeno A, antígeno B, tener ambas o no tener ninguna. De manera que un individuo tendrá grupo sanguíneo A si sus glóbulos rojos tienen la glucoproteína A en su membrana, siguiendo el mismo criterio para el resto de los grupos (si no existe proteína, entonces será de grupo sanguíneo O). En el plasma sanguíneo existen anticuerpos de acuerdo a la tabla que adjuntamos a continuación .
Asi mismo , el factor Rh es otra proteína que existe en los glóbulos rojos del 15 % del genero humano. El factor Rh positivo es un factor hereditario dominante.
MATERIAL -
Portaobjetos o tarjeta visualizadora de fondo blanco. Un rotulador de vidrio. Lanceta de punción estéril Palillos mezcladores. Algodón Agua oxigenada
-
Sangre capilar (del dedo.)
REACTIVOS -
Suero anti-A Suero anti-B Suero anti-D
PROCEDIMIENTO 1.- Divida el portaobjetos en tres secciones con el rotulador de vidrio. Marca en una casilla la letra A, en otra la letra B y en la última, pon D. Hazlo con letra pequeña en cada esquina de cada sección.
2.- Deposita una gota de suero anti-A en la casilla con la letra A; (Intenta poner éstas gotas en la parte superior de cada casilla) otra gota del suero anti-B en la casilla B; Por último, en la casilla D pon una gota del suero Anti-D.
3.- Con ayuda del agua oxigenada y el algodón desinfecta la yema del dedo que vayas a pinchar. Coge el material punzante previamente desinfectado, y pincha el dedo. Aprieta la yema del dedo hasta que haya una gota de tamaño similar a la que has echado antes de anti-suero. 4.- Sitúa una gota de sangre en cada sección del porta, justo debajo de la gota de antisuero (sino tienes sitio ponla a un lado, pero de forma que no se junten las dos gotas.)
5.- Coge un palillo y mezcla las dos gotas de cada sección utilizando un palillo distinto cada vez y formando un círculo de 2 a 2,5 cm de diámetro. Es muy importante utilizar un palillo distinto cada vez, ya que si no, nos dará falsos resultados.
Anti- A
O Rh +
O Rh -
ARh -
B Rh -
AB Rh -
Anti – B
Anti - D
6.- Observar los resultados: presencia o ausencia de aglutinación y determine a que grupo sanguíneo pertenece.
Preguntas. 1. Cuál es la estructura química de los antígenos y los anticuerpos? 2. En que se basa el reconocimiento de los de los grupos sanguíneos?
BIBLIOGRAFIA GRFFITHS, JF.y col
1995 GENETICA; Ed. Interamericana.Mc. GrawHill, Barcelona-España.
GARDNER,EJ.
1991 PRINCIPIOS DE GENÉTICA, 5ta Edición. Limusa- Noriega Editores- México D.F. México.
GUEVARA, P y col
2000 GENÉTICA PRACTICAS y PROBLEMAS Editado Facultad de Ciencias Biológicas UNMSM-Lima.
KLUG, W.S y M.R.CUMINGS
1999 CONCEPTOS DE GENÉTICA Ed. Prentice Hall Iberia, S.R.L. Madrid.- España.
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1977 FUNDAMENTOS DE GENÉTICA, Ed.Mc.Grawn-Hill. Latinoamericana S.A. Bogotá Colombia.