I.
INTRODUCCION
Conchucos cuenta con una diversidad de riqueza florística entre las especies arbóreas andinas como la quinual que se encuentran distribuidas en diferentes pisos e cológicos a lo largo de la región alto andina entre las altitudes de 3.800 a 5.200 m.s.n.m. de los departamentos de las sierra. En este contexto la quinual (Polylepis racemosa), es una de las especies más representativas, para la forestación y reforestación del altiplano, por no crear efectos colaterales como las especies exóticas (introducidas), tanto en el suelo como en los cultivos, más a lo contrario ayuda a la recuperación y al mejoramiento de las condiciones medio ambientales. El quinual desarrolla un tronco leñoso, el cual sobrevive con estoicismo a la altura, frió y sequía además se le da usos como ser leña, palos para cercas, vigas, tijerales y del mismo modo constituyen el hogar de muchas especies, especialmente la avifauna, y su querencia como cortinas rompe viento e incorporan materia orgánica evitando la erosión del suelo.
II.
SITUACIÓN PROBLEMÁTICA 2.1.
Planteamiento del problema Actualmente el Instituto de Educación Superior Tecnológico Público
“Narciso Villanueva Manzo”, cuenta con un área de terreno, que fue donado por la
Comunidad Campesina de Conchucos en el sector de Cumbal, el terreno se encuentran totalmente desprotegidos por falta de cercos. La Comunidad Campesina de Conchucos en el sect sector or Cumbal tiene bovinos que pastorean libremente, libremente, asimismo los animales egresan a consumir los pastos mejorados de Cumbal de la institución educativa.
2.2.
Justificación La propagación de esquejes de quinual (Polylepis racemosa ) para su
plantación como cerco vivo en fundo experimental de Cumbal. Ayudaría a superar el problema que los animales ingresan a consumir los pastos mejorados de Cumbal de la institución educativa. Las cerca vivas tiene por función impedir el e l ingreso de los animales y de las personas, los especies que se usan por lo general deben ser podadas.
III.
OBJETIVOS 3.1.
Objetivo general Evaluar la propagación vegetativa de esquejes de quinual (Polylepis
racemosa) en base a la aplicación de enraizador, en el vivero de Cumbal.
3.2.
Objetivos específicos
Determinar el efecto del enraizador en el prendimiento y desarrollo de los esquejes del quinual.
Determinar el sustrato adecuado en el prendimiento y desarrollo de los esquejes de quinual.
Calcular la cantidad de plantones para su plantación como cerco vivo en forma lineal.
IV.
MARCO REFERENCIAL 4.1.
Antecedentes El programa Nacional de Cuencas Hidrográficas y conservación de
suelos (PRONAMACHCS), desarrollo proyecto sobre “Manejo de Recursos Naturales para el alivio de la pobreza en la sierra” donde propagaron esquejes de quinual, zanjas
de infiltración, etc. Anteriormente el terreno fue de la Comunidad Campesina de Conchucos.
4.2.
Fundamentos bibliográficos
4.2.1. Distribución geográfica del género polylepis De acuerdo a Kessler, (2000), Polylepis se distribuye a lo largo de la Cordillera de los Andes desde el norte de Venezuela, pasando p or Colombia, Ecuador, Perú, Bolivia, el norte de Chile y el noroeste de Argentina
4.2.2. Aspectos ecológicos El género Polylepis (queñua) de la familia Rosaceae es un árbol leñoso que forma bosques en las zonas más altas del mundo, crece sin problemas a más de 4 500 m.s.n.m, encontrándose en Bolivia entre los 2 100 m.s.n.m hasta los 5 200 m.s.n.m de altura (Kessler y Fjeldsa, 2006). Es un árbol típico de los altos Andes, porque ha desarrollado una serie de adaptaciones que le permiten sobrevivir con éxito en lugares donde cualquier otro árbol perecería (Hensen, et.al.2000).
4.2.3. Taxonomia del género polylepis Superreino
:Eukaryota
Reino
:Plantae
Subreino
:Tracheobionta
División
:Magnoliophyta
Clase
:Magnoliopsida
Subclase
:Rosidae
Orden
:Rosales
Familia
:Rosaceae
Subfamilia
:Rosoideae
Tribu
:Sanguisorbeae
Subtribu
:Sanguisorbinae
Género
:Polylepis
https://es.wikipedia.org/wiki/Polylepis
4.2.4. Características generales 4.2.4.1. Sistema radicular El sistema radicular consiste en una raíz principal y gran cantidad de ramificaciones laterales, que penetran la tierra en todas direcciones en busca de agua y ancla el árbol firmemente al suelo para defenderlo de los vientos que nunca dejan de soplar (Liberman 1996).
4.2.4.2. Tallo Martínez y Villarte (2009) mencionan que Polylepis besseri incarum presenta generalmente un diámetro del tronco del tallo de plantas adultas de
32 cm y las plantas jóvenes de 4-12 cm. La queñua se ha descrito como un árbol de hábito simpódico – tronco ramificado, no crece de manera erecta, copa abierta desde la base, que
puede alcanzar tres a siete metros de altura, con un tronco corto y con tendencia helicoidal, de 30 a 60 centímetros de diámetro en la base, ramas tortuosas y ramitas pilosas en el extremo (Collahuasi 2010).
4.2.4.3. Hojas Hojillas obovoides, de elípticas a rombas en el contorno, el primer par de la hojilla terminal es el más grande, uno de estos pares tiene de 0.4 a 1.0 cm. de ancho y de 1.0 a 2.8 cm. de largo, bordes enrollados, dentellados con 4 a 11 dientes; ápice agudo obtuso o muy ligeramente recortado; base desigualmente atenuadas, rara vez redondeada, hojilla terminal con pecíolo de 3 a 6 mm de largo; superficie superior de lisa a ligeramente rugosa, verde oscuro, de lisa a lanoso, panosa y/o glandular; superficie inferior con una capa densa igualmente distribuida de muy corta a moderadamente grande, tricomas panosos blancos o amarillentos, usualmente con tricomas glandulares amarillentos a lo largo de las venas, rara vez lisa sobre las venas (Kessler 1995 citado por Padilla 2005).
4.2.4.4. Inflorescencias y semillas La queñua posee flores hermafroditas incompletas; sin corola ni nectario de 0.5 a 1 cm. de diámetro con sépalos de 3 a 4 ovados verdes y la superficie interior con cantidades variable de tricomas panosos, lanosos y glandulares
con estambres de 14 a 20, enteras orbiculares, cubiertas con grandes tricomas blancos (Kessler 1995 citado por Padilla 2005). Las
inflorescencias
están
dispuestas
erectas,
no
sobresalientes de entre las hojas, con una a dos flores. Miden de 3 a 10.5 cm. de largo, con 6 a 8 flores; brácteas florales de 3 a 7 mm de largo, ocasionalmente con puntas como hojillas, sobre la superficie externa el raquis no es ramificado y están cubiertos con tricomas blancos o amarillentos lanosos y glandulares (Kessler 1995 citado por Padilla 2005).
4.2.4.5.
Fruto Las semillas es espiralada con una cubierta densa de tricomas
lanosos y glandulares con lomas aplanadas de 2 a 5 y espinas de 0.3 a 0.8 cm de ancho incluyendo las protuberancias de 0.3 a 0.7 cm de largo (Kessler 1995 citado por Padilla 2005).
4.2.5. Usos y beneficios de la queñua De acuerdo a Liberman (1996) y Rodríguez, (2000), muchos pobladores recurren a la queñua en busca de leña para la cocina, palos para cercar los canales, vigas y tijerales para sus viviendas, cercas vivas, etc., es un uso del bosque relativamente controlado.
4.2.6. Propagación del genero polylepis Martínez y Villarte (2009) indican que (Kessler y Driesch 1993).mencionan que las especies de Polylepis tiene dos estrategias reproductivas: Por semillas y mediante el enraizamiento de ramas postradas. De acuerdo a Miranda, (1994); la queñua se propaga por vía sexual mediante las semillas y por vía asexual (siendo ésta ultima la más conveniente), mediante estacas, esquejes y acodos; estos tres últimos son los más utilizados y recomendados por sus altos índices de prendimiento en relación con el poder germinativo de la semilla.
4.2.7. Ventajas de la propagación por esquejes Robinson, (2001) citado por Hoyos (2004) coinciden en manifestar que esta forma de propagación es la más adecuada para el género por las siguientes razones:
Se obtiene porcentajes altos de prendimiento, cuando la técnica se aplica correctamente.
La extracción del material vegetal (esquejes) no afecta a los árboles "semilleros" en su normal desarrollo. Asimismo existe un menor riesgo de entrada (al árbol) de patógenos por heridas de menor tamaño, que cuando se propaga por estacas.
La recolección y traslado del material vegetal (esquejes) al vivero no implica grandes costos.
4.2.8. Factores que influyen en la propagación por esquejes Hoyos (2004) indica que en la propagación por esquejes depende de las condiciones inherentes de los esquejes y de las condiciones ambientales durante el periodo de formación de raíces. Así Torrez, (1992); considera que la propagación por medio de esquejes depende de la especie a propagar, el estado de diferenciación de tejidos del tallo predestinado a formar raíces, el estado de nutrición del árbol.
4.2.9. Época de recolección La recolección de esquejes se debe realizar poco después de iniciada la época de lluvias, lo cual probablemente se debe a que la zona generatriz o cambium es más activo cuando se tiene mayor humedad. (Soto, 1995). Aguirre (1988) recomienda colectar esquejes para polylepis entre los meses de mayo y septiembre para la propagación en vivero, mientras que para plantación directa en el terreno definitivo se prefiere los meses de noviembre a febrero (época de lluvia), que es cuando las raíces preformadas son más notorias entre los entrenudos. En algunos lugares donde las condiciones de humedad son mejores es posible recolectarlas durante todo el año.
4.2.10.
Características de las áreas de recolección Las mejores áreas para la obtención de esquejes son las zonas
húmedas como orillas de los ríos, quebradas, etc., estas zonas por tener una humedad relativa más alta, facilitan la presencia de raíces preformadas en los esquejes. (DFP A, 1991).
4.2.11.
Selección de árboles madre Hartmann y Kester, (1999); manifiestan que para la propagación
por esquejes la fuente u origen del material es de gran importancia y las plantas
madres de las cuales se obtengan dicho material, deben poseer las siguientes características:
Estar libres de enfermedades y plagas.
Ser fieles al nombre y tipo.
Mostrar un crecimiento vegetativo activo y una alta capacidad regenerativa.
4.2.12.
Presencia de raíces preformadas Zamudio, (1990): recomienda que para la propagación de
esquejes se debe considerar la presencia de “chichones” que se dan preferentemente
en los meses lluviosos. No obstante en algunos lugares como Puno -- Perú, o Sajama - Bolivia, los esquejes o ramillas apicales presentan escasas formaciones de chichones y muchas veces no presentan ninguna. En este caso se recogen ramas con abundantes ramillas y a partir de éstas se preparan estacas tipo talón que posibilitan éxitos mayores a 60% de prendimiento.
4.2.13.
Tipo de madera o rama seleccionada. Se sabe que en la composición bioquímica de un árbol como de
una rama, existe una marcada diferencia desde la base hasta el ápice. Esto explica que cuando se toma esquejes de diferentes partes de la r ama de un árbol, se observa variaciones en la producción de raíces. (Aguirre1988). Por esta razón Hoyos, (2004): recomienda que la extracción de esquejes se la realice preferentemente de las ramas ba jas por ser éstas las que tienen !as mayores posibilidades de presentar raíces adventicias. Por otra parte los esquejes que emergen de la rama principal se consideran de buena calidad, así también aquellos que son tomados de la parte apical de las ramas.
4.2.14.
Características de un esqueje. De acuerdo a Hartmann y Kester, (1999); Así se tiene que el mejor
material para esquejes tiene cierto grado de flexibilidad, pero está lo suficientemente maduro para romperse cuando se dobla demasiado, en cambio aquellas ramas tiernas, suaves, de crecimiento rápido no son convenientes, ya que es probable que se deterioren antes de enraizar; como tampoco deben recolectarse aquellos tallos viejos y leñosos, ya que enraízan con dificultad.
4.2.15.
Longitud y diámetro de Ios esquejes. Según Padilla, (1985) varios casos en propagación vegetativa de
especies forestales y muy poco se sabe del efecto de la longitud de las estacas (esqueje) para el enraizamiento. No obstante la longitud de los esquejes varia generalmente entre 7 a 12 cm. de Iargo y el corte deberá ser limpio y sin rasgaduras y lo más cerca de la rama principal (Hartmann y Kester, 1999 y Gallego, 2001). Olivera, (1992) indica que el grosor del tallo de los esquejes debe ser el de una lapicera, vale decir aproximadamente 1cm. de diámetro.
4.2.16.
Enraizamiento por remojo en agua. Mamani y Apaza (1993) en el Proyecto Arbolandino utilizaron
remojo en agua para la propagación vegetativa en el prendimiento de brotes de queñua, lo que resulta accesible para las familias campesinas.
4.2.17.
Sustrato La proporción para el sustrato es 3-2-2 (tierra agrícola, turba y
arena). David Ocaña (1997).
4.2.18.
Aplicación de enraizadores Los esquejes fueron puestos en dos bañadores que contenían un
enraizador diferente (agua de coco y extracto de sauce) , donde los tallos estuvieron a 5 cm de la solución, para que recubran los “chichones” de la parte basal, dejando en
los enraizadores por 24 horas según Condori (2006) y Reynel (2002).
4.2.19.
Trasplante de los esquejes De acuerdo a Gallego (2001); los esquejes deben ser repicados
en platabandas según el tamaño. Se debe iniciar con los de mayor tamaño, así se evitará que al crecer haya competencia entre ellos por la luz. Además deben repicarse muy juntos para favorecer la conservación de la humedad. Para el trasplante se utilizó un repicador según Hoyos (2004), con el cual se realizó hoyos de aproximadamente 5 cm de profundidad para el anclado del esqueje de manera inclinada debido a que los esquejes de Polylepis presentan una curvatura en los tallos y así se sujetó de la parte superior y se presionó fuerte el sustrato para evitar que queden espacios vacíos los cuales perjudicarían al enraizamiento.
4.2.20.
Labores culturales
4.2.20.1. Protección El tinglado primero es 1 a 2 cm por encima de la yema terminal y se mantiene así hasta que las plantas prendan. Después se levanta a una altura de 15-20 cm., de la superficie de la cama durante 5dias. David Ocaña (1997).
4.2.20.2. Riego Es muy importante regar bien. Un exceso de agua es malo para la planta, ya que ocasiona la muerte por pudrición o asfixia. La frecuencia de riego depende del clima, siendo suficiente cada 2 -3 días. David Ocaña (1997).
4.2.20.3. Deshierbo Debido a que la mala hierba compite con la planta por los nutrientes. En el caso de las camas de repique o platabandas, un riego por inundación, un día antes del deshierbo. David Ocaña (1997).
4.2.20.4. Poda de raíces Las plantas que se producen en las platabandas requieren, que se le haga una poda de raíces. Con ayuda de una pala derecha con una inclinación aproximada de 60° a 65° y posteriormente, dos podas al costado entre plantas, manteniendo la pala en posición vertical a una distancia de 7cm. entre plantas. David Ocaña (1997).
4.2.21.
Plantación Es muy importante que antes de plantación se debe tener cuenta
las actividades de la extracción de las plantas del vivero: traslado, marcación, hoyación y plantación. David Ocaña (1997).
V.
METODOLOGIA 5.1.
UBICACIÓN POLÍTICA, GEOGRÁFICA E HIDROGRÁFICA.
5.1.1. Ubicación política Departamento
: Ancash.
Provincia
: Pallasca
Distrito
: Conchucos
Lugar
: Cumbal
5.1.2. Ubicación geográfica en Coordenadas UTM: Este
: 187929
Norte:
: 9086894
Altitud
: 3522 m.s.n.m.
5.1.3. Ubicación hidrográfica
5.2.
5.3.
Microcuenca
: Llamacocha
Cuenca
: Rio Santa
DURACIÓN DEL TRABAJO Inicio
: Mayo.
Término
: Noviembre.
COMPONENTES DE ESTUDIO
Esquejes de quinual (Polylepis racemosa).
Aplicación Root-Hor® regulador de crecimiento, bajo un manejo químico.
5.4.
MATERIALES, EQUIPOS HERRAMIENTAS Y OTRO
5.4.1. Material vegetativo Se utilizarán 350 esquejes de quinual (Polylepis racemosa) los cuales se recolectarán del mismo lugar.
5.4.2. Material de gabinete Cámara fotográfica, libreta de campo, equipo de computación, tablero.
5.4.3. Equipos, herramientas e insumos Palana recta, pala cuchara, zapapico, zaranda, tijera de podar, regadera, repicador, medidores, balde, fertilizantes, fungicidas,hormona, otros.
5.5.
PROCEDIMIENTO METODOLÓGICO
5.5.1. Producción de plantones 5.5.1.1.
Preparación del vivero.
a) Cercado de las camas Se ejecutará de acuerdo a las cantidades de camas de repique, platabandas y almacigo.
b) Trazo de camas de platabanda Se realizará el trazo de 1 metro de ancho por 10 m de largo. Con la ayuda de wincha, estacas y cuerdas.
c) Excavación de camas de platabanda Se realizará usando diferentes herramientas manuales en la excavación eliminando malezas, ramas, suelo inerte. Se procederá de cuerdo al trazo.
d) Eliminación de material excavado Después de la excavación de las camas de repique se efectuará la eliminación del material excavado, con una palana cuchara.
e) Perfilado de platabanda Se someterá el perfilado de la cama para platabanda con una pala recta los laterales y el piso de las camas, con una inclinación de 2%. Luego se eliminará el material del perfilado.
5.5.1.2.
Propagación vegetativa del quinual
a) Recolección de los esquejes Se realizará de las plantas del mismo lugar. Esto se someterá a observar sus características adecuadas que tengan chupones, ritidoma, el tamaño adecuado de 8 a 15cm. asimismo deberán ser rectos.
b) Preparación de los esquejes La preparación se realizará bajo de sombra, para evitar la pérdida de humedad por la transpiración.
c) Selección de esquejes La selección será sometida a una defoliación, se dejará solo 3 foliolos.
d) Conservación de esquejes Se acomodan los esquejes en bolsa de tela, en cuyo fondo se colocara tierra húmeda.
5.5.1.3.
Proceso de producción de plantones
a) Extracción de la tierra agrícola-turba. La extracción se realizará del mismo lugar donde estos se conseguirán debajo de los arbustos y árboles.
b) Preparación del sustrato La proporción se realizará la mezcla de tierra agrícola, turba o tierra negra y arena (3-2-1) y se obtendrá del mismo lugar.
c) Aplicación del enraizador Root-Hor® (Ácido 3 Indol Butírico). Se someterá en un recipiente 5 ml de Root-Hor® por 1 litro de agua, introducir los esquejes 3 cm del nivel de agua del recipiente, durante 3-5 minutos, luego de la aparición de las primeras hojas, se complementa con una segunda a plicación foliar.
d) Repique de esquejes Se colocará de 14cm entre planta y planta 20cm y de 20cm de entre las hileras; en las platabandas de preferencia el mismo día de su recolección plantarlas, y a una profundidad de 2 ó 3 centímetros.
e) Labores culturales 1) Tinglado Se colocará ramas de árboles y arbustos para la protección de las heladas, la insolación, vientos. Luego se realizará el manejo de acuerdo a las condiciones climáticas.
2) Riego Se someterá después del terminado el repique, el riego se realizará por inundación. Luego será de acuerdo a las condiciones climáticas hasta su plantación.
3) El deshierbe Se realizará durante el crecimiento de las plántulas, se ejecutará eliminar continuamente la mala hierba.
4) Poda de raíces Se ejecutará con una pala derecha en posición vertical a una distancia de 7cm. entre plantas. Con una inclinación 60° .
5.5.1.4.
Plantación a) Marcación La marcación se ejecutará de 1.20 metros lineales con la
ayuda de un zapapico.
b) Hoyación Se realizará la excavación a una profundidad 30cm y un diámetro de 30 cm. A un distanciamiento de 1.20m lineales. Con la ayuda de una barreta.
c) Traslado y distribución de plantones El traslado y distribución se realizará de acuerdo al avance de hoyación para evitar de deshidratación de la plantas.
d) Plantación Se realizará excavando 30x30cm, de los cuales 15cm. de suelo se extrae al lado A del hayo y otro 15cm al lado B, posteriormente el suelo A va al fondo del hoyo y el B va exterior, esta actividad permitirá que la planta desarrolle más.
5.6.
CAPACIDADES A DESARROLLAR
1. Identificar las especies del Genero Polylepis, existentes en la zona de estudio. 2. Determinar el efecto del enraizador Root-Hor® en el prendimiento y desarrollo de los esquejes del quinual.
3. Determinar el sustrato adecuado en el prendimiento y desarrollo de los esquejes de quinual.
4. Seleccionar adecuadamente los esquejes que a usar de acuerdo a las características de las especies.
5. Calcular la cantidad de esquejes por platabanda de una cama de dimensiones de 1m de ancho por 10 metros de largo.
6. Calcular la cantidad de plantones de forma lineal para su plantación como cerco vivo.
7. Calcular los costos parciales de la producción de plantines.
VI.
CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES
ACTIVIDADES (2018) Ubicación del campo experimental
MAY. JUN. JUL. AGO. SET. OCT. NOV. x
Elaboración del proyecto Presentación del proyecto
x
Aprobación del proyecto
x
Preparación del vivero
x
Propagación vegetativa del quinual
x
Proceso de producción de plantones
x
x
x
Plantación Evoluciones
x
x
Análisis e interpretación de los resultados
x
x
Redacción del informe final
x
x
Presentación del informe
x
x
x
x
x
x
VII.
ESTIMACION DE COSTO DETALLES
A. GASTO DE PRODUCCIÓN DE PLATONES 1. Preparación del vivero. Cercado de las camas Trazo de camas de platabanda Excavación de camas de platabanda Eliminación de material excavado Perfilado de platabanda 2. Propagación vegetativa Recolección de los esquejes Preparación de los esquejes Selección de esquejes Conservación de esquejes
UNIDAD
CANTIDAD
PRECIO UNITARIO
SUB TOTAL
Jornal Jornal Jornal Jornal Jornal
4 1 4 2 1
20 20 20 20 20
80 20 80 40 20
Unidad Unidad Unidad Unidad
350 350 350 350
0.2 0.2 0.2 0.1
70 70 70 35
TOTAL
240
245
3.
Proceso de producción de plantones
Extracción de la tierra agrícola-turba. Preparación del sustrato Aplicación del enraizador Root-Hor® Repique de esquejes 4. Labores culturales Tinglado
M3 M3 Ml M2
10 10 10 1
20 20 0.3 20
200 200 30 20
M3
4
20
80
450
Riego El deshierbe Poda de raíces 5. Plantación Marcación Hoyación Traslado y distribución de plantones Plantación 6. Material Vegetativo e Insumos Esquejes Root-Hor® (Ácido 3 Indol Butírico). Abono foliar 7. Materiales de impresión Papel bond 80 gramos Impresión 8. Servicios Alquiler de zaranda Alquiler de mache Alquiler hacha Alquiler bomba mochila Alquiler de palanas
N° M2 M2
40 10 10
20 5 5
800 50 50
Unidad Unidad Unidad Unidad
807 807 807 807
0.1 0.5 0.2 0.5
80.7 403.5 161.4 403.5
1049.1
Unidad ml Mg.
350 250 400
0.2 0.16 0.2
70 40 80
190
Millar Unidad
1 90
30 0.3
30 27
57
Unidad Unidad Unidad Unidad Unidad
1 2 2 1 3
10 10 10 15 15
10 20 20 15 45
110
B. Sub total Imprevisto (15%) C. Costo total
VIII.
980
3321.1 498.165
3819.165
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
8.1 Bibliografía (en biblioteca). AGUIRRE. A. 1988. Propagación de especies forestales de la región andina del Perú. Ed. E:I:R:L:: Consejo Nacional de Ciencia y Ecología. Lima – Perú. 20-80 pp. AYAVIRI Q. JUAN. 2010. Efecto de aplicación de diferentes enraizadores en el desarrollo de esquejes sub-terminales, intermedios y basales de estevia ( Stevia rebaudiana), en Taypiplaya Caranavi. Tesis. Universidad Mayor de San Andrés. Facultad de Agronomía, La Paz – Bolivia. CONDORI, E. 2006. Efecto de enraizadores naturales en la propagación asexual de arce negundo (arce negundo) en vivero. Tesis. Universidad Mayor de San Andrés. Facultad de Agronomía, La Paz – Bolivia CRUZ. A. 1999. Efecto de Sustratos Orgánicos en la Reproducción Vegetativa de la Queñua (Polylepis incana).Tesis de Grado UMSA. FACUNDO M. 2010, Enraizamiento de esquejes y estacas de Yagual (Polylepis Racemosa) sometidos a cinco tipos de sustratos en la zona la Libertad Provincia del Carchi. En línea http://www.polylepis.cl/pdf/quenoa-arbol-enraizamiento-fvr.pdf HARTMANN, H y KESTER D.1999, Propagación de Plantas. Principios y prácticas Compañía editorial Continental S. A. México.
HOYOS R. RUTH, 2004.Determinación de sustratos y efecto de cuatro niveles de ácido naftalenacetico (ANA) sobre el enraizamiento de esquejes ( Polylepis tarapacana) queñua, UTO, Oruro-Bolivia. ILCE, Instituto Latinoamericano De La Comunicación Educativa, (2011). La propagación vegetativa, Disponible en:bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/cien cia/volumen3/ciencia3/157/htm/sec_6.htm. Consultado el 26 junio 2012. KESSLER M. 2000. Diversidad, evolución y distribución del género Polylepis (Rosaceae). En: Resúmenes del I Congreso internacional de ecología y conservación de bosque de Polylepis. Cochabamba, Bolivia. Pp. 25 KESSLER, M. & P. DRIESCH. 1994. Causas historia de la destrucción de bosques alto andinos en Bolivia. Ecología en Bolivia 21: 1-18. LEÓN A. PAULINA. 2008. Propagación de dos especies de yagual (Polylepis incana y Polylepis racemosa ), utilizando dos enraizadores orgánicos y dos enraizadores químicos en el Vivero forestal del Crea en el cantón y provincia del Cañar Tesis, Escuela Superior técnica de Chimborazo, Facultad Recursos Naturales, Riobamba-Ecuador. MARTÍNEZ y VILLARTE, 2009. Estructura dasométrica de las plantas de un parche de Polylepis besseri incarum y avifauna asociada en la Isla del Sol (Lago Titicaca, La Paz - Bolivia) UMSA Servicio Nacional de Áreas Protegidas (SERNAP), La Paz, Bolivia. MENDOZA, R. 2010. Practicas adquiridas en distintos métodos de Propagación de queñua Polylepis sp. MOLLITOR. H. 2004. Mollitor, Peat substitute on the basis of recycled wood chipboard. Acta Horticultura 644: 123-130. PADILLA. 2005. La agroforesteria con colle: alternativa para el campesino altoandino. Seri agroforestal Perú N°3, proyecto Desarrollo Forestal participativo en los Andes Lima-Perú. 4 p.
ANEXOS FOTO N°01: CUMBAL DONDE SE PLANTARÁ LOS QUINUALES.
