Norma Tecnica Colombiana 5030

NORMA TÉCNICA COLOMBIANA

NTC 5230 2003-12-19

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS Y ALIMENTO PARA ANIMALES. MÉTODO HORIZONTAL DE TÉCNICAS DE MUESTREO DE SUPERFICIES USANDO CAJAS DE CONTACTO Y MÉTODO DE ESCOBILLÓN

E:

MICROBIOLOGY OF FOOD AND ANIMAL FEEDING STUFFS. HORIZONTAL METHODS FOR SAMPLING TECHNIQUES FROM SURFACES USING CONTACT PLATES AND SWAB METHODS.

CORRESPONDENCIA: CORRESPONDENCIA :

esta norma es una adopción idéntica (IDT) por traducción de la ISO ISO/DIS18593:2002. Microbiology of Food And Animal Feeding Stufss. Horizontal Method For Sampling Techniques From Surfaces Using Contact Plates And Swab Methods.

DESCRIPTORES:

microbiología de alimentos; análisis microbiológico; superficies.

I.C.S.: 07.100.30 Editada por el Instituto Colombiano de Normas Técnicas y Certificación (ICONTEC) Apartado 14237 Bogotá, D.C. - Tel. 6078888 - Fax 2221435

Prohibida su reproducción

Editada 2004-01-30

PRÓLOGO

El Instituto Colombiano de Normas Técnicas y Certificación, ICONTEC, es el organismo nacional de normalización, según el Decreto 2269 de 1993.

ICONTEC es una entidad de carácter privado, sin ánimo de lucro, cuya Misión es fundamental para brindar soporte y desarrollo al productor y protección al consumidor. Colabora con el sector gubernamental y apoya al sector privado del país, para lograr ventajas competitivas en los mercados interno y externo. La representación de todos los sectores involucrados en el proceso de Normalización Técnica está garantizada por los Comités Técnicos y el período de Consulta Pública, este último caracterizado por la participación del público en general. La NTC 5230 fue ratificada por el Consejo Directivo del 2003-12-19. Esta norma está sujeta a ser actualizada permanentemente con el objeto de que responda en todo momento a las necesidades y exigencias actuales. A continuación se relacionan las empresas que colaboraron en el estudio de esta norma a través de su participación en el Comité Técnico 25 Microbiología. ALPINA ASINAL AVESCO BIOCONTROL BIOQUILAB LTDA. BIOTRENDS LABORATORIOS CARULLA –VIVERO- S.A. CONGELAGRO CONSULTOR INDEPENDIENTE EMPRESA DE ACUEDUCTO Y ALCANTARILLADO DE BOGOTÁ -E.S.PENZIPAN DE COLOMBIA LTDA. FÁBRICA DE ESPECIAS Y CONDIMENTOS EL REY FRIGORÍFICO GUADALUPE FRIGORÍFICO SUIZO S.A. FRIGORÍFICOS COLOMBIANOS S.A. GASEOSAS COLOMBIANAS S.A. INGENIO PICHICHI INSTITUTO NACIONAL DE SALUD IVONNE BERNIER LABORATORIO. NULAB LTDA. PURIFICACIÓN Y ANÁLISIS SECRETARÍA DE SALUD DE BOGOTÁ TRES M COLOMBIA S.A. UNIVERSIDAD DE LOS ANDES LEMA ALPINA S.A.

ASINAL LTDA. ASOCIACIÓN COLOMBIANA DE MICROBIOLOGÍA AVESCO BAVARIA S.A. BIOCONTROL BIOQUILAB LTDA. CENICAÑA COMPAÑÍA NACIONAL DE CHOCOLATES S.A. COOPERATIVA DE GANADEROS DE CARTAGENA LTDA. CREPES & WAFLES GASEOSAS COLOMBIANAS S.A. INGENIO PROVIDENCIA S.A. INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO INSTITUTO NACIONAL DE SALUD IVONNE BERNIER LABORATORIO LTDA. LABORATORIO BIOCONTROL LESNIAK E.U. LEVAPAN S.A. MERCADEO DE ALIMENTOS DE COLOMBIA S.A. NULAB LTDA. PURIFICACIÓN Y ANÁLISIS DE FLUIDOS LTDA.

QUIOS LTDA. TRES M. COLOMBIA S.A. UNIVERSIDAD JAVERIANA Además de las anteriores, en Consulta Pública el Proyecto se puso a consideración de las siguientes empresas: ACEITES Y GRASAS VEGETALES S.A. ALGARRA AQUALAB ASOCIACIÓN COLOMBIANA DE MICROBIOLOGÍA BAVARIA S.A. BIANÁLISIS BIOMERIUX. BIOQUILAB LTDA. CASA LUKER CENICAÑA CERVECERÍA LEONA COMPAÑÍA NACIONAL DE CHOCOLATES S.A. CONSULTORÍAS MICROBIOLÓGICAS COOPERATIVA DE GANADEROS DE CARTAGENA LTDA. CREPES Y WAFLES GASEOSAS COLOMBIANAS S.A. ICONTEC BARRANQUILLA ICONTEC MEDELLÍN ICONTEC CALI ICONTEC CERTIFICACIÓN PRODUCTO BLANCA USECHE - CONSULTOR INDEPENDIENTE INGENIO PICHICHI S.A. INGENIO RIOPAILA INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO ICA

INVIMA INSTITUTO NACIONAL DE VIGILANCIA MÉDICA LABORATORIO MICROBIOLÓGICO SIS LARKIN LTDA. LEONA S.A. LESNIAK E.U LEVAPÁN S.A. LLOREDA GRASAS S.A. MERCADEO DE ALIMENTOS DE COLOMBIA S.A. MINISTERIO DE PROTECCIÓN SOCIAL NESTLÉ DE COLOMBIA S.A. PASSIFLORA COLOMBIANA S.A. PRODUCTORA DE CONCENTRADOS Y JUGOS DE FRUTA QUALA S.A. QUIOS LTDA. REPRESENTACIONES BIOTECNOLÓGICAS LTDA. RICA RONDO, INDUSTRIA NACIONAL DE ALIMENTOS S.A. TECNIMICRO LABORATORIO DE ANÁLISIS UNIDAD ADMINISTRATIVA DE SALUD PÚBLICA UNIVERSIDAD CATÓLICA INGECAL UNIVERSIDAD JAVERIANA VIKINGOS

ICONTEC cuenta con un Centro de Información que pone a disposición de los interesados normas internacionales, regionales y nacionales. DIRECCIÓN DE NORMALIZACIÓN


NTC 5230

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS Y ALIMENTO PARA ANIMALES. MÉTODO HORIZONTAL DE TÈCNICAS DE MUESTREO DE SUPERFICIES USANDO CAJAS DE CONTACTO Y METODO DE ESCOBILLÒN

0.

INTRODUCCIÒN

Esta norma especifica un método horizontal para la determinación del número de microorganismos viables en las superficies de utensilios, superficies de trabajo y otros equipos en contacto con alimentos para conocer el nivel de contaminación durante la producción o la efectividad de los protocolos de limpieza y desinfección. Este método horizontal describe ambos, el método de contacto de superficies usando contacto con caja o el método de láminas de inmersión o de escobillón húmedo o seco o enjuague. El método de contacto de cajas es solo aplicable a superficies planas, mientras que el método de escobillón (húmedo y seco) puede ser usado para cualquier tipo de superficies. Para una muestra de superficies extensas (> 100 cm 2 paños o esponjas) pueden ser utilizadas paños o esponjas. Los métodos alternativos prescritos en este estándar son métodos útiles para la estimación de la carga microbiana de las superficies. Los resultados son muchas veces presentados como puntajes de calificación de higiene, basados en el número de UFC (Unidad Formadora de Colonias) x cm 2 presentado en un test de superficies.

1.

OBJETO

Esta norma específica un método horizontal para la enumeración de microorganismos viables en superficies con contacto de placas, láminas de inmersión y escobillones (trapo o esponja).

2.

REFERENCIAS NORMATIVAS

Los siguientes documentos referenciados son indispensables para la aplicación de esta norma. Para referencias fechadas, se aplica únicamente la edición citada. Para referencias no fechadas, se aplica l última edición del documento referenciado (incluida cualquier corrección) . NTC 4092; Microbiología de Alimentos y de Alimentos para Animales. Reglas Generales para el Análisis Microbiológico. (ISO 7218:1996), ISO 4832:1991, Microbiology. General Guidance for the Enumeration of Coliforms. Colony Count Technique. 1


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ISO 4833:1991, Microbiology. General Guidance for the Enumeration of Micro-Organisms. Colony Count Technique at 30 °C ISO 6887-1:1999, Microbiology of Food and Animal Feeding Stuffs. Preparation of Test Samples, Initial Suspension and Decimal Dilutions for Microbiological Examination. ISO 6888-1:1999, Microbiology of Food and Animal Feeding Stuffs. Horizontal Method for the Enumeration of Coagulase-Positive Staphylococci (Sr species). Part 1: Technique Using BairdParker Agar Medium ISO 6888-2:1999, Microbiology of Food And Animal Feeding Stuffs. Horizontal Method for the Enumeration of Coagulase-Positive Staphylococci (Staphylococcus Aureus and other Species). Part 2: Technique Using Rabbit Plasma Fibrinogen Agar Medium ISO 7402, Microbiology. General Guidance for the Enumeration of Enterobacteriaceae without Resuscitation. MPN Technique and Colony-Count Technique. ISO 7218:1996, Microbiology of Food and Animal Feeding Stuffs. General Rules for Microbiological Examinations ISO 7954:1987, Microbiology. General Guidance for Enumeration of Yeasts and Moulds. Colony Count Technique at 25 °C

3.

TÉRMINOS Y DEFINICIONES

3.1 cajas de contacto cajas plásticas servidas con un volumen de agar controlado especialmente elaborados para muestras de superficies, las cajas varían en diámetro acorde al producto. 3.2 láminas de inmersión láminas sintéticas, uno o ambos lados (7 cm 2 x 10 cm2 ) cubiertas con una capa de un medio de crecimiento sólido. Varios medios de crecimiento están disponibles acorde al microorganismo buscado. 3.3 escobillón barra delgada (estéril) con algodón o material sintético (alginato), escobillón contenido en un tubo o envuelto. 3.4 tela o paño húmedo, es de material estéril entretejido, libre se sustancias antimicrobianas, empacado individualmente en bolsas plásticas estériles, usado para toma de muestras de superficies largas (> 100 cm2). 3.5 esponja húmeda, cuadro estéril de esponja plana, libre de sustancias antimicrobianas, también empacado individualmente en bolsa plástica estéril, usado para toma de muestras de superficies largas (> 100 cm 2). 2

NORMA TÉCNICA COLOMBIANA 4.

NTC 5230

PRINCIPIO

Para obtener un estimativo de contaminación microbiana de una superficie usando 4.1 cajas de contacto o método de escobillón se requiere seguir los siguientes pasos: Una caja de contacto (o lámina de inmersión) con el medio agar apropiado, es 4.2 presionado contra la superficie a analizar. Después de la incubación una estimación de contaminación de la superficie puede ser obtenida por el conteo del número de colonias desarrolladas. Debido a que estos métodos no son cuantitativamente dignos de confianza o de resultados reproducibles, podrían solo ser usados en un análisis de tendencia. Usando el método del escobillón para examinar un área específica marcada de 4.3 superficie (por ejemplo usando una plantilla) y después de frotar para tomar la muestra. Las barras de los escobillones se rompen dentro de un tubo o botella que contiene un fluido en dilución estéril o líquido neutralizante y luego se mezcla manualmente. Si la superficie es enjuagada con un paño o esponja estéril, el dispositivo de muestreo es almacenado en un líquido de volumen de dilución conocida, (100 ml x 100 cm 2). En el laboratorio, se utiliza la suspensión inicial y si es necesario, diluciones decimales (1ml, 5 ml y 10 ml de diluyente), para determinar el número de microorganismos, usando los procedimientos descritos en los métodos para la enumeración de (grupos) microorganismos a ser investigados. El tiempo y temperatura de incubación depende del tipo de microorganismo a ser 4.4 detectado. Para medios selectivos, se pueden realizar las pruebas de confirmación apropiadas. El 4.5 número de Unidades Formadoras de Colonia (UFC) de un microorganismo específico por cm 2 o por objeto, es calculado del número de colonias (confirmadas). NOTA Estos métodos no son cuantitativamente confiables o reproducibles y sus resultados solo pueden ser usados en n análisis de tendencias.

Luego de tomar la muestra de la superficie, puede hacerse la limpieza y desinfección 4.6 para prevenir el aumento de la contaminación cómo resultado del procedimiento de muestreo.

5.

MEDIOS DE CULTIVO Y LÍQUIDOS DE DILUCIÓN

5.1

Agar Plate Count, ISO 4833 y si es requerido.

5.2

Agar Rojo Violeta Bilis Dextrosa, ISO 7402 y si es requerido.

5.3

Agar Rojo Bilis Violeta, ISO 4832 y si es requerido.

5.4

Agar Oxitetraciclina Huevo Glucosa (OGY), ISO 7954 y si es requerido.

5.5

Agar Baird Parker, ISO 6888-1 y 6888-2.

O cualquier otro medio de cultivo conocido para enumeración o enriquecimiento de (grupos) microorganismos.

5.6

Líquidos de dilución, véase la norma ISO 6887-1

5.7

Líquidos neutralizantes, véase el numeral 7. 3


NTC 5230

6.

APARATOS Y CRISTALERIA

6.1

Para los requerimientos generales. Véase la norma ISO 7218.

Aparatos disponibles son una alternativa aceptable a cristalería reutilizable si este tiene especificaciones similares. Los aparatos usuales del laboratorio de microbiología y, en particular, los siguientes:

6.2

Aparatos para esterilización en seco (horno) o esterilización húmeda (autoclave)

Véase la norma ISO 7218. Incubadoras, capaces de operar en la temperatura de incubación para los (grupos de) 6.3 microorganismos a ser investigados (25 °C ± 1 °C, 30 °C ± 1 °C, 37 °C ± 1°C). Baños de agua, o aparatos similares, una capacidad de operar entre 44 °C a 47 °C y 6.4 otro capaz de hervir agua. Ph -metro, capaz de ser leído a la unidad cerca de 0,01 pH a 25 °C ± 1 °C, posibilitando 6.5 la medición a ser hecha, la cual es precisa a ± 0,1 unidad pH. Stomacher ® o Pulsifier ®, usando bolsas plásticas estériles para preparar las 6.6 suspensiones iniciales por movimiento peristáltico ( Stomacher ®) o vibración (Pulsifier ®).

6.7

Mezclador vortex®, para mezclar líquidos en tubos de cultivo.

Pipetas graduadas, con amplia capacidad de abertura y una capacidad nominal de 1 ml, 6.8 graduadas en divisiones de 0,1 ml, o pipetas automáticas de 100 µl o 1 000 µl. Contenedores, como botellas, tubos, frascos, disponible para esterilización y 6.9 almacenamiento de medios de cultivo.

6.10

Cajas de Petri, elaboradas en plástico de 90 mm a 100 mm.

6.11

Láminas de inmersión, cubiertas con medio ya descrito (véanse los numerales 5.1 a 5.5).

6.12

Cajas de contacto, de plástico y con medio ya descrito (véanse los numerales 5.1 a 5.5).

6.13

Escobillones, paños o esponjas, individualmente envueltas y estériles.

6.14 Plantilla, con material resistente a corrosión (por ejemplo un marco en acero inoxidable de 20 cm 2 a 100 cm2), las cuales son fáciles de limpiar y pueden esterilizarse. 6.15 Nevera o caja con aislamiento, capaz de mantener las muestras entre 1 °C y 4 °C durante el transporte al laboratorio. 7.

MUESTREO

7.1

GENERAL

Es importante que le laboratorio reciba una muestra representativa de la superficie a analizar y que esta muestra no haya sido cambiada por residuos de desinfectantes o durante el transporte o almacenamiento. 4


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Los desinfectantes son generalmente formulados para una desinfección en un tiempo de contacto de 5 min a 15 min, esperar 15 min antes de investigar la superficie con escobillón o cajas de contacto, para avaluar el desempeño del programa de limpieza y desinfección (o de otro modo, acorde a las especificaciones del desinfectante). En todos los casos donde se esperan residuos de desinfectantes, pueden añadirse neutralizantes apropiados al líquido de dilución y al medio usado en las cajas de contacto, para prevenir cualquier efecto inhibitorio del desinfectante en el crecimiento del microorganismo. Un neutralizante apropiado para toda situación puede no ser descrito. Generalmente, el Tween 80 (30 g/l) y la Lecitina (3 g/l) son usados para neutralizar residuos de desinfectantes absorbidos (componentes de amonio cuaternario, anfotericidas). El tiosulfato de sodio (5 g/l) es un buen neutralizante de productos con base halógena. En el caso del peróxido usado en desinfectantes, la catalasa o peroxidasa pueden ser usados como neutralizantes. Una unidad de estas enzimas cataliza la descomposición de 1 µmol de peróxido de hidrogeno por un minuto a 25 ° C y a un pH de 7. La fórmula para neutralizantes universal es: Tween 80 (Polisorbato 80) Lecitina Tiosulfato de sodio L-histidina Saponina

30 g/l 3 g/l 5 g/l 1 g/l 30 g/l

Preparar en líquido de dilución (peptona 1g/l, NaCl 8,5 g/l), distribuir en tubos o botellas y esterilizar 15 min a 121 °C.

7.2

MÉTODO DE CAJA DE CONTACTO

Después de remover de los contenedores de transporte, presionar la superficie del agar de la caja de contacto o de la lámina firmemente y sin cualquier movimiento lateral contra la superficie analizada. La literatura dice que resultados óptimos de las cajas de contacto son obtenidos con un tiempo de contacto de 10 s y una presión de 500 g. (para cajas RODAC ® de un diámetro de 55 mm tienen un aplicador comercialmente disponible). Cerrar la caja de contacto o láminas inmediatamente después de la inoculación y poner en el contenedor de transporte.

7.3

MÉTODO DE ESCOBILLÓN

Remover un escobillón de la envoltura y humedecer la punta por inmersión en el tubo que contiene el líquido de dilución. Presionar la punta del escobillón contra la pared del tubo para remover el exceso de agua. Ubicar la punta del escobillón en la superficie para ser investigada y una línea del área estimada de 20 cm 2 a 100 cm2, mientras que se rota el escobillón entre el pulgar y el dedo índice en dos direcciones en sentido derecho uno al otro. Poner el escobillón en el tubo con el líquido de dilución y romper o cortar el límite indicado del palo asépticamente. En caso de paños o esponjas, abrir el paquete plástico que contiene la esponja o paño. Remover el paño o esponja con pinzas estériles o guantes estériles y enjuagar como se describió antes. Devolver al paquete plástico y cerrar de manera que quede sin agujeros. 5


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Otra alternativa es abrir el paquete que contiene la esponja o paño; apretar la esponja o paño a través de la bolsa sobre la mano. Use la esponja para recoger la muestra y transferir al paño o esponja en una bolsa plástica estéril, cerrar la bolsa de manera que no queden agujeros. Frotis con siembra directa: Utilizar aplicadores o hisopos de algodón estériles para realizar el frotis o toma de muestra en la superficie. [2] Una vez tomada la muestra, sembrar con el hisopo o aplicador en la superficie del agar, según el tipo de microorganismo o analito objetivo de la búsqueda. Para el transporte de los aplicadores es importante tener en cuenta el numeral 8.

8.

TRANSPORTE

La siembra de las muestras obtenidas por el método de escobillón debe realizarse preferiblemente dentro de las 4 h siguientes a la toma de muestra. Se debe igualmente transportar en una caja o nevera de icopor a una temperatura entre 1 °C a 4 °C. Examinar en el laboratorio tan pronto como sea posible y no después de 24 h. El transporte de cajas de contacto y/o láminas preferiblemente con 4 h en una vía donde no ocurra contaminación.

9.

PROCEDIMIENTO

9.1


Incubar las placas o láminas de acuerdo al tipo de microorganismo a ser detectado.

9.2

MÉTODO DE ESCOBILLÓN (INCLUYENDO ESPONJA O PAÑO)

Mezclar el contenido del tubo que tiene los escobillones en el mezclador vortex ® por 30 s, ajustando la velocidad para que la pared del tubo quede humedecida arriba a una altura de 2 cm a 3 cm debajo de la tapa. Esto representa la suspensión inicial. Añadir a la bolsa plástica que contienen los paños o esponjas, una cantidad de líquido de dilución o líquido neutralizante, dependiendo del tamaño del área a investigar (100 ml x 100 cm 2). Después de esto, tratar al contenido de la bolsa en un Stomacher por 1 min o pulsifier por 30 s, esto representa la suspensión inicial. Si se presume de números elevados de microorganismos , preparar otras diluciones decimales en diluyente agua peptonada para obtener un número de colonias contables. De acuerdo a la enumeración de métodos utilizados (véanse las normas ISO apropiadas), inocular por duplicado en las cajas con medio la dilución inicial, usando un 1 ml de inoculo para servir las cajas y 0,1 ml de inoculo para técnicas de difusión. Tratar cualquiera de las otras diluciones de la misma manera; Invertir las cajas e incubarlas a una temperatura y tiempo adecuado para cada medio. 6


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Otro método utilizado puede ser el método de Goteo (DIN 10113-2). Comenzando con la dilución más alta, usar pipetas estériles para transferir alicuotas de 0,05 ml de la suspensión inicial (escobillones, esponjas o paños) y de las otras diluciones a sectores apropiados del medio de cultivo marcado en el centro de la placa de agar ( por duplicado, usando las mismas diluciones pero en diferente placa de agar) cada pre-secado de la placa de agar puede ser usado por goteo de no más de 6 diluciones diferentes. Cuando el goteo es aplicado, es conveniente tocar la punta de la pipeta en la superficie del agar en orden de transferencia de una cantidad completa de la dilución al medio de cultivo. Guardar las placas de agar horizontalmente (tapa arriba) bajo una superficie húmeda. Si el método de escobillón es usado para demostrar la presencia de microorganismos específicos (Lysteria monocytogenes o Salmonella spp), el área investigada podría ser preferiblemente de no menos de 1 000 cm 2. Transferir el escobillón, paño o esponja a un medio de enriquecimiento y mezclar bien.

9.3

SELECCIÓN Y CONTEO DE COLONIAS

9.3.1 Método de placa de contacto Contar el número de (específico) colonias en las placas de contacto o láminas directamente después del periodo de incubación especificado y confirmar este, si es necesario, acorde a el microorganismo(s).

9.3.2 Método de escobillón (esponja o paño) Contar las colonias de cada caja y confirmar si es necesario, acorde al microorganismo(s).

9.3.3 Método de goteo en placa Contar el número de colonias (blanco) a las diluciones producidas de 5 colonias a 50 colonias.

9.3.4 En el caso de procedimientos de enriquecimiento, seguir las instrucciones después de pre- enriquecimiento acorde al microorganismo(s). 10.

CÁLCULO Y EXPRESIÓN DE RESULTADOS

10.1


Dividir el número de (blanco) colonias por el área de la superficie de la placa, Reportar el recuento como UFC x cm 2 de superficie.

10.2

MÉTODO DE ESCOBILLÓN (ESPONJA O PAÑO)

10.2.1 Calcular el número de UFC x ml de suspensión inicial, como se describe en la norma ISO estándar. (Véase el numeral 5).

7


NTC 5230

10.2.2 Calcular el número de UFC por cm 2 de superficie investigada con la fórmula: N

x F

A

x D

en donde N

es el número de UFC en 1 ml de líquido de dilución (líquido de inactivación)

F

es la suma (ml) de líquido de dilución (liquido de inactivación) en el tubo o bolsa.

A

es la superficie investigada (cm2)

D

es el reciproco de la dilución usada.

10.2.3 Para el método de goteo, calcular el número de N de UFC/ml del líquido de suspensión usando la fórmula. N

=

∑ C (

+ 0,1

V n1

x

)

n2 d

en donde

∑ C

=

es la suma de colonias contadas en todas las gotas retenidas de dos diluciones sucesivas de 1 de la menor que contenga cinco colonias.

V

=

volumen de inoculo aplicado en cada gota ( en este caso 50 µl).

n1

=

número de gotas retenidas en la primera dilución.

n2

=

número de gotas retenidas en la segunda dilución.

=

factor de dilución correspondiente a la primera dilución.

d

Para obtener el conteo/cm 2 de superficie, usar la fórmula: N

x F

A

en donde F

es el volumen del líquido de dilución ( o líquido neutralizante) en el tubo o bolsa.

A

es el área de muestreo / cm2

10.2.4 Si el área analizada no es definida, usar la fórmula N x F x D para calcular el número de UFC / escobillón.

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Cuando los métodos semicuantitativos son usados, el resultado obtenido en UFC/cm 2 de superficie puede ser llamado también número higiénico. Estos pueden variar dependiendo de las superficies examinadas es recomendable que estos sean designados y agregados entre las partes interesadas.

10.2.5 En el caso de procedimientos de enriquecimiento, reportar el organismo blanco tanto detectado como no detectado en el área muestreada. Expresión de resultados para el método de Frotis con siembra directa Se reporta como ausencia / presencia del microorganismo patógeno objeto de la búsqueda por elemento evaluado (ejemplo cuchara, cuchillo, etc) o área de la superficie evaluada. Cuando se presume de recuentos inferiores a 10 UFC para los casos de aislamiento de microorganismos mesófilos ,coliformes totales, mohos y levaduras, se debe reportar las unidades encontradas por elemento o área de la superficie evaluada. Si el objeto de la búsqueda lo requiere posteriormente realizar la identificación correspondiente.

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NTC 5230 BIBLIOGRAFÍA

[1]

EN 1276, Chemical Desinfectans and Antiseptics. Quantitatice Suspensión Tests for the Evaluation of Bactericidal Activity of Chemical Desinfectants and Antiseptics Used in the Food, Industrial, Domestic and Institutional Areas. Test Methods and Requirements Phase 2, Step 1.

[2]

Manual operativo de análisis microbiológicos para alimentos, Cortes Luna Gilma Janeth M.Sc. Laboratorio de Control de Calidad de Alimentos, edición 91. Pág. 124 y 125.

10


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DOCUMENTO DE REFERENCIA INTERNATIONA ORGANIZATION FOR STANDARIZATION. Microbiology of food and Animal Feeding Stuffs- Horizontal Method for Sampling Techniques From Surfaces Using Contact Plates And Swab Methods. Gèneve: ISO, 2002 8 p, (ISO/DIS 18593).

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