Guía de Fisiología 2009

UNIVERSIDAD RICARDO PALMA FACULTAD DE MEDICINA HUMANA

GUÍA PRACTICA DE LABORATORIO DE FISIOLOGÍA 2009 REALIZADO POR : Dra. Bertha Castro Salazar Dr.Tomás Gargurevich Alarcón Dra. Elizabeth Tomás Gonzáles Dr. Jorge Velásquez García Dr. Walter Wong Fong Dra.Teresa Castillo Rosales

Lima

-

Perú

UNIVERSIDAD RICARDO PALMA FACULTAD DE MEDICINA HUMANA SEMESTRE ACADÉMICO: 2008-II

CONSEJO DE FACULTAD FAMURP DECANO Dr. Manuel Huamán Guerrero

MIEMBROS Dra. Nancy Jo Vargas Dra. María Alatrista de Bambarén Mag.Próspero Rojas Lazo Dr.Manuel García Rojas Dr.Jorge Cerna Barco

  JEFE DEL DEPARTAMENTO ACADÉMICO Dra. Nancy Jo Vargas

 PRESENTACIÓN 

  El El

prop propós ósit itoo fund fundam amen enta tall del del curs cursoo de FISI FISIOL OLOG OGÍA ÍA es prop propor orci cion onar ar los los

  fundamentos de los fenómenos fisiológicos que ocurren en el ser vivo, permitiendo la comprensión de los trastornos funcionales en los estudios clínicos posteriores.   Los trabajos prácticos tienen como finalidad el análisis y estudios de los temas  propuestos, lo que persigue es una óptima formación profesional y educación científica.   Las Las disti distint ntas as práct práctic icas as que compr comprend endee la presen presente te GUÍA GUÍA DE PRÁCTI PRÁCTICAS CAS DE   FISIOLOGÍA, están diseñadas para que el alumno las realice personalmente de manera organizada, y le conducirá a descubrir hechos, valorarlos e interpretarlos.  Al comienzo de cada práctica se presenta una pequeña introducción, describiendo los aspectos más importantes en los que se basan las observaciones que se van a realizar, a manera de resumen o repaso de los fundamentos científicos del tema, objeto de la respectiva respectiva  práctica.  En la guía, se reúnen los conocimientos fundamentales que son indispensables para las prácticas de Fisiología y de la formación de los estudiantes de la Facultad de Medicina  Humana.

 DRA. BERTHA CASTRO SALAZAR. COORDINADORA DE LAS PRÁCTICAS    DE FISIOLOGÍA

2009  RECOMENDACIONES: 1) El estudiante estudiante debe debe acudir acudir a cada práctica práctica habiendo habiendo leído leído previame previamente nte el manual  manual   y

los fundamentos teóricos de las prácticas que se realizarán.

2) Los Los deleg delegad ados os de cada cada grupo grupo debe deben n asegu asegura rars rsee de qu quee se cont contar aráá con con el  material didáctico correspondiente para cada práctica. 3) Cada Cada práct práctica ica gene genera ra una una nnota ota

 ÍNDICE   PRESENTACIÓN  CAPITULO I:

 HEMATOLOGÍA E INMUNOLOGÍA  P1:  P1:

Frag ragilidad dad os osmót mótica de de los los gló glóbul bulos ro rojos. os.

 P2:  P2:

Hema Hemattocrit rito, ve veloci ocidad de de se sedime dimenntaci ación.

P3: P3:

Hemo Hemost stas asia ia:: Tie Tiemp mpoo de de coa coagu gula laci ción ón y tie tiemp mpoo de de san sangr gría ía.. Petequiometría

P4: CAPITULO II:

Grupos sanguíneos.

 NEUROFISIOLOGÍA  P1:  P1:

Loss fe Lo fenóme ómenos nos re reflejo ejos, el aarc rcoo re reflejo ejo..

  P2: P2:

La uni unióón ne neurom uromuuscul sculaar: La La pla placa mi mioneu oneura rall. Umbr mbrale ales de excitabilidad excitabilidad neural y muscular.

P3:

Sistema ne nervioso se sensitivo.  Receptores y sensaciones somáticas.

P4: CAPITULO III:

Órganos de los sentidos

FISIOLOGÍA CARDIOVASCULAR P1:

Propiedades de del mú músculo ca cardíaco.

 P2:  P2:

Elec Electr troc ocar ardi diog ogra rafí fía, a, ele elect ctro rofi fisi siol olog ogía ía I .Mo .Morf rfol olog ogía ía,d ,dur urac ació iónn y amplitud de las ondas.

P3: P3:

Elec Electr troc ocar ardi diog ogra rafí fía, a, elec electr trof ofis isio iolo logí gíaa II .Rit .Ritmo mo,f ,fre recu cuen enci ciaa y ejes.

P4:

Presión ar arterial in indirecta.

FISIOLOGÍA ENDOCRINA

CAPITULO IV:

 P1:  P1:

Acci Acción ón de de la hor hormo mona na gon gonad adot otró rófi fica ca cor corió ióni nica ca (HG (HGC) C).. Test Test de de Galli Mainini. Test Inmunológico para la HGC.

P2:

Metabolismo ba basal en en el el ra ratón.

P3:

Conversatorio : Fisiología de la somatotropina

P4:

Conversatorio : Fisiología de Hipoglicemia

CAPITULO V: FISIOLOGÍA DEL APARATO RESPIRATORIO   P1:  

P2:

P3: CAPITULO VI:

CAPITULO VII:

Respuesta cardio-respiratoria cardio-respir atoria al ejercicio Espirometría. Conversatorio Clínico: Alcalosis Respiratoria.

FISIOLOGÍA RENAL  P1:  P1:

Medi Me dioo in interno rno y per permea meabil bilidad de la memb membra rana na

 P2:  P2:

Prue Prueba bass de conc concen entr trac ació iónn y dilu diluci ción ón urin urinar aria ia..

P3:

Sedimento urinario.

P4:

Conversatorio Insuficiencia Renal..

FISIOLOGÍA DEL APARATO DIGESTIVO  P1:  P1:   P2: P3:

Mottilidad Mo dad int intesti stinal. al. Dig Digest estión de de car carbo bohi hiddrat ratos. Conversatorio Clínico: Fisiología Ulcera Péptica. Conversatorio Clínico: Fisiología Litiasis Vesicular.

CAPITULO I   HEMATOLOGÍA E INMUNOLOGÍA  PRÁCT  PRÁCTICA ICA N°1: N°1: FRAGIL FRAGILIDA IDAD D OSMÓTI OSMÓTICA CA DE LOS LOS GLÓBU GLÓBULOS LOS ROJO ROJOS  S  Fundamento Cuando los eritrocitos se sumergen en una solución hipotónica aumenta de volumen  por el ingreso de agua y cuanto más hipotónica sea la solución ingresará mayor  volumen de agua, llega un momento en que ya la membrana del eritrocito eritrocito no resiste y estalla (hemólisis). Hay enfermedades en las cuales, por alteraciones principalmente en la membrana celular (defectos (defectos de la espectrina) y ciertas hemoglobinas anormales (talasemias) (talasemias) los eritrocitos eritrocitos adquieren formas anormales y alteran su resistencia a las  soluciones hipotónicas: unas veces se hacen más frágiles y en otras circunstancias más resistentes. Cuando los hematíes son esféricos (esferocitos) tienen un volumen muy pequeño para su contenido y su capacidad de expansión está limitada: por  consigui consiguiente ente estalla estalla con pequeñas pequeñas adicione adicioness de agua: agua :   fragili fragilidad dad aumentad aumentadaa o resi resist sten enci ciaa dism dismin inui uida da.. En camb cambio io cuan cuando do está estánn adel adelga gaza zado doss o apla aplana nado doss (falciformes, (falciformes, talasemias, anemias microcíticas) microcíticas) la fragilidad fragilidad está disminuída (resisten  soluciones más hipotónicas). Si los eritrocitos se sumergieran en soluciones hipertónicas perderían agua: Crenación y los eritrocitos se deshidratarían y arrugarían (crenocitos). Si se sumergieran en soluciones isotónicas no habría cambio de volumen del eritrocito Objetivos:   Esta Esta prueb pruebaa se efect efectúa úa para para deter determin minar ar la resist resistenc encia ia de los eritro eritroci citos tos a la li lisi siss en  soluciones salinas hipotónicas. Los eritrocitos comienzan a hemolizarse a 0.44% de NaCI o menos (hemólisis inicial) y la hemólisis es generalmente completa a un 0.33% (hemólisis total).  Experimento y Procedimiento:

1.

Se col coloc ocan an en en una una grad gradil illa la vari varios os tub tubos os con con dif difer eren ente tess conc concen entr trac acio ione ness de  NaCI que van desde 0.1% hasta 0.9% , más un tubo con agua destilada.

2.

Colo Coloca carr una una cant cantid idad ad con const stan ante te de de sang sangre re en en cada cada tub tubo. o.

3.

Mezc Me zcla larr suave suaveme ment ntee por inve invers rsió iónn de los los tubos tubos prev previa iame ment ntee tapad tapados os con con un  plástico. Dejar en reposo por 20 minutos y volver a mezclarlos y finalmente centrifugar 03 minutos a la velocidad de 3000 revoluciones por minuto.

4.

Observar como el botón de hematíes va disminuyendo conforme la concentración de NaCI va disminuyendo.

5.

Dete Determ rmin inar ar la la conc concen entr trac ació iónn en don donde de se se obse observ rvaa la hemó hemóli lisi siss inic inicia iall y la hemólisis total.

 Resultados: •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

 PRÁCT  PRÁCTICA ICA N°2: N°2: HEMATO HEMATOCRI CRITO, TO, VELOC VELOCIDA IDAD D DE SEDIMEN SEDIMENTAC TACIÓ IÓN. N. Fundamento:  El hematocrito es la relación porcentual entre la cantidad de elementos formes y el   plasma.  La sangre tiene un componente componente líquido y componente celular cuya proporción proporción normal  es 55/45 respectivamente, con valores mayores para el hombre y menores para la mujer. Estos componentes juntos determinan la viscosidad de la sangre e influyen en  su tránsito por los capilares. También se puede observar el color del plasma, el cual puede estar alterado en algunos procesos, como la ictericia (plasma de color amarillo) o en la hiperlipemia (plasma lechoso) Objetivo:  Los estudiantes realizarán varios determinaciones siguiendo la técnica indicada e interpretando los resultados.  Existen dos métodos: Macrohematocrito y Microhematocrito:

 MACROHEMATOCRITO: Se hace con el tubo de Wintrobe:  Procedimiento: 1.

Toma To marr con con una una pip pipet etaa Pas Paste teur ur,, una una cant cantid idad ad de sang sangre re oxal oxalat atad ada. a.

2.

Intr Introd oduc ucir ir la pipe pipeta ta en el fond fondoo del del tubo tubo de Wi Wint ntro robe be..

3.

Opri Oprimi mirr el el bul bulbo bo,, ados adosad adoo a la la pipe pipeta ta,, para para que que la la san sangr gree vay vayaa sal salie iend ndoo y al al mis mismo mo tiempo ir retirando la pipeta. Evitar la formación de burbujas. Llenar con sangre hasta la marca 10. Nivelar con gasa o papel de filtro.

4.

Centrifugar Centrifugar a 3000 r.p.m. por 30 minutos. minutos. Después de este tiempo tiempo hay la seguridad  seguridad  de que todos los hematíes han formado una masa compacta y que no hay plasma entre ellos.

5.

Leer Leer en la esca escala la asce ascend nden ente te,, el el niv nivel el al cual cual ll lleg egaa la la col colum umna na roja roja..  Esta cifra es el hematocrito, expresado en porcentaje. Note que sobre esta columna

roja hay una mucho más pequeña de aspecto blanquecino, corresponde a los leucocitos y  plaquetas. Valores Normales de Hematocrito Adulto

Niño

Hombres: 40-50%

Niños mayores de 1 año: 36-44%

Mujeres: 35-47%

Recién nacido: 44-62%

(Promedio: Varones Varones 45% y mujeres 43%)  MICROHEMATOCRITO: Se realiza utilizando tubos capilares. Se puede hacer con sangre capilar (punción de la yema de un dedo). Se necesita una centrifugadora especial que puede hacer 10,000 rpm y sólo se demora 5 minutos. VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN  Fundamento: Cuando se deja una muestra de sangre anticoagulada en reposo, los hematíes como tienen mayor densidad densidad que el plasma, tienden a sedimentar, sedimentar, la velocidad velocidad de caída depende de la tendencia que tienen los eritrocitos a formar pilas o “rouleaux” y esta a su vez depende de la interacción de dos fuerzas opuestas: Una fuerza de atracción : Las fuerzas de Van der  Waals y una fuerza de repulsión : El potencial Z. El equilibrio entre estas dos fuerzas puede  ser alterado por la presencia de ciertas moléculas moléculas asimétricas plasmáticas, plasmáticas, especialmente especialmente el   fibrinógeno ( Proteína de fase aguda )y las gama globulinas cuando están muy aumentadas,

estas proteínas funcionan como dieléctricos disminuyendo el potencial Z, por lo tanto priman las fuerzas de atracción y se acelera la velocidad de sedimentación.  La velocidad de sedimentación también depende de una serie de otros factores muchos de ellos aún no identificados como: Daño orgánico, respuesta tisular y relación con la circulación, número de eritrocitos, etc. Cuando hay un proceso infeccioso o inflamatorio en general aumenta el fibrinógeno  y por lo tanto la velocidad de sedimentación se acelera Objetivo:  El estudiante realizará la prueba de V.S., analizará los factores que la determinaron e interpretará los resultados.  Procedimiento: Se utiliza sangre venosa (obtenida por punción venosa) con anticoagulante. Se toma con una pipeta Pasteur, provista de un bulbo de jebe, una cantidad de  sangre.  Introducir la pipeta hasta el fondo del tubo de Wintrobe. Una vez en el fondo, oprimir el bulbo para que la sangre vaya saliendo, al mismo tiempo se retira lentamente la pipeta hasta llegar a la marca de 10. Si hubiera exceso, nivelar con gasa o papel de filtro.  Luego se coloca el tubo en posición estrictamente vertical sobre una superficie rígida  por una hora. Transcurrido el tiempo, leer en la escala descendente. Valores Normales (Promedio): Para las mujeres: menor de 15 mm/hora (M. Wintrobe) Para los hombres: hombres: menor de 12 mm/hora (M. Wintrobe) Wintrobe)   PRÁ PRÁCT CTIC ICA A N°3: N°3: HEMO HEMOST STAS ASIA IA:: TIEM TIEMPO PO DE COAG COAGUL ULAC ACIÓ IÓN N Y TIEM TIEMPO PO DE   SANGRÍA Fundamento: Cuando Cuando un vaso vaso sanguí sanguíneo neo se lesi lesiona ona,, inmed inmedia iatam tamen ente te se desen desenca caden denan an una serie serie de mecanismos para detener el sangrado, esta respuesta depende de las propiedades del mismo

vaso sanguíneo, de la acción de las plaquetas y de ciertas proteínas plasmáticas (factores (factores de la coagulación sanguínea). Fases de la hemostasia: •

 Fase vascular 

•

 Fase plaquetaria

•

•

Coagulación sanguínea y  Fibrinolisis (que se encarga de la reparación del vaso dañado)

Objetivo:  Los estudiantes realizarán las siguientes pruebas: Tiempo de sangría: Sirve para explorar principalmente la fase plaquetaria y hasta cierto  punto también la fase vascular. Si el número de plaquetas está disminuído( trombocitopenia) o las plaquetas no funcionan adecuadamente (trombastenia) el tiempo de sangría se alarga Tiempo de coagulación sanguínea: Explora sanguínea:  Explora básicamente como están trabajando los factores de la coagulación en su conjunto. Si hay una disminución o ausencia de uno de los factores, el tiempo de coagulación se prolongará, ejemplo en la hemofilia. hemofilia. Estudia la vía intrínseca de la coagulación.  Procedimientos: Tiempo de Sangría: (Método de DUKE) 1.

Limp Limpie ieza za con con alc alcoh ohol ol del del lób lóbul uloo de la la orej oreja. a. Pro Produ duci cirr hipe hipere remi mia. a. Hac Hacer er una una her herid idaa estándar con una lanceta.

2.

Seca Secarr en for forma ma esc escal alon onad adaa usan usando do pap papel el sec secan ante te cad cadaa 30 seg seg.. Cuid Cuidan ando do de de no toc tocar  ar  la herida.

3.

Anot Anotar ar el ti tiem empo po fi fina nall en el que que cesa cesa el sang sangra rado do..

Valores Normales: 1’ – 3’ (Se acepta hasta 5’)  Método IVY  1. Se realiz realizaa previ previaa apl aplica icaci ción ón del esfigmo esfigmoman manóm ómetr etroo en el brazo por 3 min. min. a una una  presión media que debe permanecer constante durante toda la prueba. 2. Con una lancet lancetaa estéril estéril se hacen tres puncio punciones nes en la cara interna interna del del antebrazo. antebrazo. Se empieza a medir el tiempo. 3. la sangre sangre que fluye fluye se seca seca cada 30 seg., seg., anotand anotandoo el tiempo tiempo cuando cuando ya no sangra sangra Valores Normales: Normales: 2 – 6 minutos (max. (max. 07 minutos). minutos).

Tiempo de coagulación ( Método de Lee y White) 1.

Obte Obtene nerr san sangr gree por por veno venopu punc nció ión: n: 6 cc. cc. (no (no por por punc punció iónn del del dedo dedo). ).

2.

Depo Deposi sita tarr 2 cc en 03 tubo tuboss de de ens ensay ayo. o. Colo Coloca carl rlos os en baño baño de Ma Marí ríaa

3.

Tres Tres minut minutos os desp despué ués, s, se se les les incli inclina na uno uno por uno cada cada 30 30 seg. seg. Evita Evitarr la agi agitac tació ión, n, que que  podría prolongar el tiempo de coagulación. Cuando al invertir el tubo la sangre no se derrama, se habrá producido la coagulación.

4.

Anot Anotar ar el ti tiem empo po de cada cada tubo tubo y sac sacar ar un prom promed edio io..

Valores normales: normales: 4 – 7 minutos (aceptable (aceptable hasta 10 minutos) minutos)  Resultados •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

 PRÁCTICA N° 4: GRUPOS SANGUÍNEOS  Fundamento:  Las células sanguíneas –eritrocitos–eritrocitos- tienen en la superficie antígenos (aglutinógenos) (aglutinógenos) y en el   suero se encuentran los anticuerpos (aglutininas). Existen múltiples antígenos pero algunos de ellos tienen características características similares similares por lo que se les agrupa en los llamados Sistemas de Grupos Sanguíneos, siendo los más importantes los que forman el sistema ABO (Antígenos A  y B) y el sistema Rh, formado por más de trece antígenos, pero generalmente sólo se inves investi tiga ga el antíge antígeno no D por por ser el más antigé antigénic nico. o. En el siste sistema ma ABO, ABO, la sangre sangre se clasifican, según el antígeno que tengan, en los grupos A, B, AB, y O. Los genes productores de estos antígenos se heredan siguiendo las Leyes Mendelianas y son de tipo dominante por  lo tanto genéticamente existen; AA, AO, BB, BO, AB y OO; siendo A y B dominantes y O recesivo. El D es también un antígeno de superficie, el tenerlo es Rh (+) y lo contrario es  Rh(-); en ambos casos el suero no tiene ningún tipo de anticuerpo anti-D. Objetivos:  Los estudiantes realizan y observan las pruebas de compatibilidad compatibilidad sanguínea usando sangre de voluntarios. Enfrentada Enfrentada con sueros que contienen los anticuerpos: Anti-A, Anti-B y Anti-D  para así determinar los antígenos que tienen y por tanto el grupo sanguíneo, según la reacción antígeno-anticuerpo (aglutinación) que se produzca.  Procedimientos y experimentos: experimentos: 1.

Dos Dos estud estudia iant ntes es vol volun unta tari rios os en en cada cada mesa mesa apor aporta tann muest muestra ra de de sang sangre re por por pun punci ción ón digital.

2.

Se dep depos osit itan an 3 got gotas as en en 3 siti sitios os dif difer eren ente tess de una una por porta ta obj objet etos os esp espec ecia ial  l 

3.

Se apl aplic ican an una una got gotaa de sue suero ross Anti Anti-A -A,, Anti Anti-B -B y Ant Antii-D D en cad cadaa gota gota y se mez mezcl clan an con con  pajillas diferentes. Estos pasos se realizan sucesivamente.

4.

la agl aglut utin inac ació iónn gene genera ralm lmen ente te se se obse observ rvaa a los los 2 o 3 minut minutos os.. Se apre apreci ciaa fácil fácilme ment ntee  por la presencia de grumos consistentes consistentes en grandes conglomerados conglomerados de eritrocitos. eritrocitos. La ausencia de grumos indica reacción negativa.

 PRÁCTICA DE INMUNOLOGÍA  NOMBRE:_________________ OMBRE:________________________ _______ GRUPO:______ FECHA:________  FECHA:________   DETERMINACIÓN DEL GRUPO SANGUÍNEO A B O Y Rh GRUPO

GENES

AGLUTINAGENO

 AGLUTININAS 

S 

(ANTICUERPOS)

AB

H+A+

(ANTIGENOS)  A, B

A

 B H + AA

A

ANTI-B

B

 H + AO H + BB

B

ANTI-A

O O

 H + BO H -H,-A,-B

(BOMBAY) RH ( + )

-H,+A,+B DD , Dd  

RH ( - )

Y OTROS  dd  

ANTI-A, ANTI-B  ANTI-A, ANTI-B, ANTI H   D

  RESULTADOS: Grupo sanguíneo………….. Rh:…………… •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

•

 Hacer un esquema de las transfusiones posibles

•

 Deducir el grupo sanguíneo de los hijos conociendo el de los padres

•

Comentarios sobre la eritroblastosis fetal.

•

Comentarios sobre el grupo sanguíneo O Bombay

CAPITULO II   NEUROFISIOLOGÍA PRÁCTICA N°1: LOS FENÓMENOS REFLEJOS, EL ARCO REFLEJO, LA   SUMACIÓN ESPACIAL Y TEMPORAL DE LOS POTENCIALES   DE ACCION. Fundamento:  Las acciones reflejas son respuestas adaptativas mediadas por el sistema nervioso, cuya  función básica es la de salvaguardar al individuo y preservar la especie. En estas respuestas no interviene la conciencia.  Las acciones reflejas son respuestas automáticas, inconscientes a la acción de un estímulo.  El substrato anatómico, la base física, sobre el cual se realizan los actos reflejos se llama arco reflejo Componentes de un arco reflejo:  Receptor: Es la estructura encargada de captar el estímulo (recoger la información). Vía aferen aferente: te:   Lle Lleva va la info inform rmac ació iónn haci haciaa el sist sistem emaa nerv nervio ioso so inte integr grad ador or.. Generalmente son dendritas. Centro nervioso integrador: Recibe integrador:  Recibe y procesa la información información  y elabora la respuesta.  Puede ser la médula espinal. El tronco encefálico y aún la corteza cerebral. Vía eferente: Transmite las órdenes desde el centro nervioso integrador hacia los efectores, generalmente son axones.  Efector: Realizan las órdenes: Músculos o glándulas. Clases de arcos reflejos: a)  Arco

monosináptico: La neurona aferente hace sinapsis directamente con la reflejo monosináptico:

neurona eferente , no hay neurona intercalar. Ejemplo: Reflejos osteotendinosos

b)   Arco Arco

 polisináptico. Entre la neurona aferente y la neurona eferente se reflejo reflejo  polisináptico.

intercalan una o más neuronas intercalares. Ejemplo: Reflejo de flexión o de defensa Objetivo:  Estudiar los mecanismos que ocurren cuando frente a un estímulo determinado se produce una respuesta refleja.  Material: a.

Un martillo de reflejos .

b.

Una linterna oftalmológica.

 Procedimiento: a.

Reflejos de de es estiramiento mi miotático icos. Con el martillo de reflejos, percuta el tendón de inserción del cuadriceps cuadriceps crural en la tibia de uno de sus compañeros, observe la respuesta extensora extensora de la pierna. Trate de obtener otros reflejos reflejos de estiramiento estiramiento percutiendo percutiendo el tendón tendón del biceps, triceps, triceps, el  tendón de Aquiles, etc. Obtenga los siguientes reflejos: Coracobraquial Coracobraqu ial ,bicipital ,tricipital, cubitopronador , y estilorradial.  Así mismo mismo el patela patelar, r, Aquíleo Aquíleo y flexor flexor de los dedos dedos del pie. pie. Intente Intente obtener obtener r. de  Babinski.

b.

Reflejos fotomotor y co consensual . Utilice una linterna oftalmológica para obtener el reflejo pupilar . FOTO ESTIMULACIÓN: El sujeto experimental permanece con los ojos abiertos en un ambiente de luz normal.  El estudiante observa las pupilas y calcula su diámetro en milímetros. Luego alumbra directamente cada pupila con la linterna clínica y observa su reacción volviendo a medir nuevamente el diámetro pupilar. Finalmente hace que el sujeto experimental    per perma mane nezc zcaa con con los los ojos ojos abie abiert rtos os en un luga lugarr de muy muy poca poca luz, luz, repe repeti tirr el   procedimiento de las mediciones.  Aprovechar  Aprovechar este paso para iluminar uno solo de los ojos y ver lo que sucede en el ojo opuesto. Las experiencias hay que hacerlas por lo menos unas cinco veces, para luego  sacar conclusiones.

 Resultados  Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

Comentar la importancia de los reflejos cuyo centro integrador está a nivel cortical( R.

•

Cremasteriano, r. Cutáneo-abdominales, r. de Babinsky)  Elaborar conclusiones y recomendaciones.

•

PRÁCTICA N°2: LA

UNIÓN

NEUROMUSCULAR.

UMBRALES

DE 

 EXCITABILIDAD NEURAL Y MUSCULAR 1.

Fundamento:   El sistema nervioso central ejerce un fino control sobre amplias e importantes  funciones del organismo.   En el control control sobre sobre los músculos músculos esquelétic esqueléticos os partici participan pan varias varias estructu estructuras ras del  Sistema Nervioso Central. Pero la acción final está encomendada a las motoneuronas motoneuronas  Alfa situadas en las astas anteriores de la médula y en los núcleos motores de los  pares craneales.

2.

Objetivo   Estudiar los mecanismos locales a partir de las motoneuronas que permiten al   sistema nerviosos cumplir con su rol regulador de la contracción muscular.

3.

Material   a.

4.

Un estimulador eléctrico transcutáneo (TENS).

Experimento a.

Con el estimulador eléctrico, aplique estímulos de poca intensidad al 

nervio mediano, incrementando su amplitud progresivamente hasta obtener la contracc contracción ión muscular. muscular.Mida Mida el umbral mínimo mínimo de estimula estimulación ción neural neural y el  umbral umbral máximo máximo de estimu estimulac lació iónn neural neural.. Luego Luego estimu estimule le direct directame amente nte al  músculo abductor corto del pulgar. Mida el umbral mínimo de estimulación muscular y el umbral máximo de estimulación muscular. b.

Obse Observ rvee que que en ambo amboss cas casos os se obti obtien enee con contr trac acci ción ón musc muscul ular ar..

 RESULTADOS  •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

 PRÁCT  PRÁCTICA ICA N°3: N°3: SISTEM SISTEMA A NERVIO NERVIOSO SO SENSIT SENSITIVO IVO  A. RECEPTORES RECEPTORES Y SENSACI SENSACIONES ONES SOMÁTICA SOMÁTICAS. S. Fundamento:  El conocimiento del ambiente, la relación entre el cuerpo y el medio, e incluso la  percepción del estado y situación de varias partes del organismo, corren a cargo del   sistema nervioso sensitivo. El gusto, el olfato, la audición, la vista y el equilibrio han   sido sido clasif clasific icado adoss desde desde hace hace mucho mucho como como senti sentidos dos espec especial iales es y así van a ser  ser  estudiados en la práctica correspondiente, las informaciones recogidas por estos  sentidos corren a través de nervios craneales. Las sensaciones procedentes del resto del cuerp cuerpoo se ll llama amann sensac sensacion iones es somát somátic icas. as. Puede Puedenn prove proveni nirr de recep receptor tores es  sensoriales dentro de la piel, o inmediatamente debajo de ella, que informan sobre temperatura, tacto y dolor en la superficie del cuerpo; se trata, pues, de sensaciones exteroceptivas. Otros receptores, situados en tendones, músculos, alrededor de las articulaciones articulaciones y en las cápsulas articulares articulares y en los tejidos por debajo de la piel, dan información acerca del estado de contracción de los músculos, la situación y la velocidad con que se mueven los brazos, piernas, dedos, y otras partes del cuerpo y las las fuer fuerza zass o pres presio ione ness que que sopo soport rtan an.. Esta Estass sens sensac acio ione ness son son de natu natura rale leza za  propioceptiva. También se recibe información de estructuras más profundas, como hueso y tejido conectivo denso. Estas sensaciones son generalmente las de vibración, dolor, presión profunda.  La percepción de los órganos internos o sensación visceral es transmitida por el   sistema nervioso autónomo. En general estas sensaciones se interpretan como dolor o   pleni plenitud tud.. Suele Suelenn inici iniciars arsee por diste distensi nsión ón de una vísce vísceras ras o de sus sus envolt envoltura uras, s, distensión de órganos huecos, o inflamación.

Objetivo:  Los estudiantes, trabajando en parejas y teniéndose a sí mismos como sujetos de experimentación, mediante procedimientos sencillos, analizarán los diferentes tipos de sensibilidad interpretando los resultados desde el punto de vista clínico.  Procedimiento:  Deben trabajar juntos dos estudiantes, uno como sujeto experimentador y otro como examinado. Se invierten luego los papeles y se repiten los ejercicios.  EXPERIENCIA 1: TACTO Material:

-

2 lápices de punta larga y aguzadas por pareja de estudiantes.

-

 Reloj cronométrico

Tiempo de Adaptación: El sujeto cierra los ojos. Con la punta de un lápiz se mueve muy cuidadosamente un pelo del antebrazo del sujeto, y se mantienen en la nueva  posición. Se pide al sujeto que comunique cuándo se da cuenta del desplazamiento del pelo, y cuando desaparece esta sensación. Se mide la duración de la percepción y se anotan los datos en la hoja de resultados. Se repite el experimento con cinco pelos cuando menos, y se toma el tiempo medio de adaptación.  Localización del Tacto: El sujeto también cierra los ojos; y se vuelve a desplazar un  pelo aislado con la punta del lápiz. Se dice al sujeto que intente tocar, con la punta de otro lápiz, la base del pelo que ha sido movido y el punto señalado por el sujeto. Se repite la prueba cinco veces y se establece el error medio para la localización en la  zona estimulada.  EXPERIENCIA 2: TACTO DESCRIPTIVO  Material: Un compás de dos puntas por parte de estudiantes. Este se puede fabricar    fijando con tela adhesiva una aguja hipodérmica, algo despuntada a un compás común.

 El sujeto cierra los ojos. En distintos lugares de los dedos, las manos; los brazos y la espalda, se coloca el compás ligeramente abierto y tocando, en dos puntos separados, al sujeto. sujeto. Se busca que distancia distancia mínima mínima discrimina discriminada da debe haber entre las dos  puntas para que el sujeto experimente dos sensaciones diferentes (dos “hincadas”). El estudio se inicia poniendo las dos puntas del compás juntas, para que el sujeto experimente una sola sensación, y luego se separan por una distancia mayor que la necesaria para la discriminación para dos puntos. Se sigue la prueba con cambios  sucesivos, alternativamente por encima y por debajo de la distancia mínima, hasta que una dismin disminuci ución ón muy pequeña pequeña de la separ separaci ación ón de las las punta puntass ti tien enee como como resultado la sensación de tacto en esa área. Se hacen cinco determinaciones de la distancia mínima para la discriminación discriminación de dos  puntos en cada una de las cuatro zonas establecidas para la experiencia. Se anotan los promedios sobre la hoja de resultados.  EXPERIENCIA 3: SENSACIÓN TERMOALGESICA  Material: 2 varillas de aluminio de aproximadamente de 15 cm de longitud, por 0.5 de diámetro, ambas con uno de sus extremos adelgazados y terminado en una punta muy aguda y larga. Se puede fabricar limando y lijando el extremo de la varilla de aluminio. El otro extremo se aísla con tela adhesiva. 2 vasos o recipientes de 500 ml de capacidad. Agua caliente y hielo. Se introducen los probadores térmicos fabricados en los recipientes, uno con agua caliente y el otro con agua y hielo picado. Cada varilla se pone en un vaso y se deja en él hasta que se encuentre en equilibrio térmico con el contenido del recipiente.  Para realizar la prueba, tarda muy poco tiempo en equilibrarse con la temperatura del medio ambiente; por lo tanto, hay que devolverla al vaso correspondiente correspondiente cuando no se utiliza. Se debe secar con papel absorbente la varilla cada vez que se extrae del  vaso y se va a colocar sobre la piel del sujeto. Se traza un círculo de unos tres centímetros sobre la cara dorsal de una de las manos. Se dice al sujeto que cierre los ojos. Con mucho cuidado se toca la piel dentro de la  zona delimitada con uno de los probadores. Se toman los probadores caliente y frío al  azar, y se buscan receptores al frío y al calor hasta explorara toda la zona dentro del  círc círcul ulo. o. Se seña señala lann con con punt puntos os azul azules es los los luga lugare ress en dond dondee el suje sujeto to refi refier eree  sensaciones  sensaciones de calor y con puntos rojos los lugares donde las sensaciones sensaciones son de frío.

Varios sectores se estudian tanto con la varilla fría como con la caliente. caliente. Después de estudiar la zona señalada, se anotan con puntos rojos y azules la situación de los receptores al calor y al frío hallados en el examen, en el círculo de la hoja de resultados.  EXPERIENCIA 4: SENSACIÓN DE PRESIÓN   Material:

50 ml de mercurio por cada diez alumnos. El mercurio puede ser 

reemplazado reemplazado por masilla blanda, blanda, 2 vasos con capacidad capacidad de 50 ml y no más de 10 cm de altura por preferencia angosto. Se coloca en uno de los vasos el mercurio. El otro vaso se llena hasta la misma altura con agua a temperatura ambiente. Se pide al sujeto que cierre los ojos. Uno de los índices del sujeto se introduce en el vaso con mercurio. El índice de la otra mano se  pone dentro del vaso con agua. Los brazos pueden descansar sobre la mesa, pero los dedos índices no deben toar ni los lados ni el fondo de los vasos. Se pide al sujeto que describa y compare las sensaciones percibidas por el dedo que está en el agua. También deben tomarse en cuenta las sensaciones que correspondan a los dedos y resto de las manos que no están sumergidas. De ser posible se establece  y anota la diferencia entre los tiempos que tardan en desaparecer las sensaciones de tacto, presión y temperatura.  EXPERIENCIA 5: SENSACIONES PROPIOCEPTIVAS  PROPIOCEPTIVAS   Material: 2 vasos de material plástico o papel, muy pequeños (tipo copa o de cóctel).  Por cada pareja de alumnos. Unas 100 municiones de plomo similares de pequeño volumen (vías de rodaje, bolitas de metal o vidrio). Entre otras funciones, los receptores propioceptivos suministran al  cerebro información que puede ser empleada para establecer juicios acerca de  fuerzas, pesos y tamaños. Para demostrar la discriminación de peso, se ponen las municiones en cada uno de los vasos. Se coloca un vaso en cada mano, sobre el dedo índice (se puede fabricar al vaso una asa de pabilo para colgarlo), y se pide al sujeto que juzgue sus pesos relativos (igual, menor o mayor). Se quitan ambos vasos y se  saca una munición de uno de ellos. Se vuelven a poner los vasos sobre los dedos índices y se repite la pregunta

Se siguen quitando o poniendo municiones, una por una, del mismo vaso, pero colocando al azar el vaso que tiene diez municiones sobre los índices derecho e izquierdo, izquierdo, hasta estar convencido convencido que el sujeto en verdad reconoció una diferencia de  peso. Para ver si es así pueden quitarse los vasos, hacer ruido como si se fuesen cambiando pesas, y volver a ponerlos en donde estaban.  Después de establecer cuantas municiones deben quitarse antes de reconocerse una diferencia, con vasos que no tenían en un principio diez municiones, se repite la  prueba utilizando veinte, luego treinta, cuarenta y por fin cincuenta.  Los resultados se colocan en la gráfica de la hoja de práctica. En las abcisas se pone el número de municiones que estaban en el vaso inicialmente y en las ordenadas el  número de municiones que se fueron quitando. Analizar e interpretar el trazado obtenido.  NOTA:  Los alumnos deberán traer el material requerido para realizar la práctica, en las condiciones solicitadas.  B. SISTEM SISTEMA A NERVIOS NERVIOSO O SENSORI SENSORIAL AL VISIÓN, AUDICIÓN, GUSTO Y OLFATO   El El cono conoci cimi mien ento to del del mund mundoo exte exteri rior or se ampl amplia ia comp comple leta tame ment ntee por por medi medioo de receptores con funciones exclusivas, los cuales han formado órganos especiales, como una prolongación del tejido nervioso central en la cabeza, manteniendo su conexión en el neuroeje de pares craneales. Por estas características, que diferencian a los órganos de los sentidos del resto de la sensibilidad somática, denominándose Sistema Sensorial, y así van a ser estudiados en la presencia práctica. VISIÓN   El cerebro recibe la información del exterior y la interpreta en forma de imágenes. Todos los elementos constituyentes de nuestro mundo exterior o no a la luz. Esta  funciona como un estímulo físico que ingresa al interior del ojo, hasta la zona receptora que es la retina; quien se encarga de transformarlo en un impulso nervioso, trasladándose trasladándose de esa forma a la corteza cerebral. cerebral. El paso de la luz a través del ojo es regulado por una especie de diafragma , que permite graduar, aumentar o disminuir, la cantidad de luz que ingresa al sistema óptico. Esta capacidad de controlar el 

ingreso de luz se logra por la acción de iris. La  función de los lentes del ojo consiste en enfocar los rayos que provienen de los objetos iluminados, de tal modo que la reti retina na qued quedee esti estimu mula lada da por por la comb combin inac ació iónn de zona zonass clar claras as y obsc obscur uras as que que desprenden la superficie de la imagen. Uno de los lentes, el cristalino, puede cambiar su distancia focal, o su diámetro entero posterior, para enfocar tanto los objetos cercanos, como los alejados. El poder  de convergencia del cristalino (foto acomodación) se logra por acción del músculo ciliar sobre el cristalino que es elástico.  AUDICIÓN   Las ondas que llegan al oído por el aire del conducto auditivo externo hasta llegar al  tímpano. Al comprimir y descomprimir el aire, estas ondas mueven hacia fuera o hacia dentro al tímpano, este movimiento es transmitido por la cadena mecánica de huesecillos hasta la ventana oval, donde pone en movimiento el líquido contenido en el caracol (perilinfa).  Por las características características físicas del caracol y del líquido que contiene, contiene, este movimiento de adelante atrás de lugar a fenómenos de resonancia. La localización del vientre de resonancia depende de la frecuencia propia del líquido oscilante. Quedan estimuladas las las célul células as de los recep receptor tores es del del órgano órgano de corti corti cerca cerca del punto punto resona resonant ntee y transforman las oscilaciones del líquido en impulsos nerviosos que son transmitidos al cerebro. El tono del sonido percibido depende de la localización de los receptores estimuladas, y su intensidad, del grado de deformación de los cilios.  Puesto que el movimiento relativo entre las células y el líquido del caracol producen la sensac sensación ión de sonid sonido, o, tambi también én se puede puedenn esti estimul mular ar las las célul células as cilia ciliadas das por  vibraciones de las paredes óseas del caracol.  Por ejemplo, las vibraciones de un diapasón pueden transmitirse por los huesos del  cráneo y estimular las células ciliadas, produciendo la sensación de sonido sin que intervengan el tímpano ni los huesecillos. Por lo tanto, se puede distinguir una  pérdida de audición por anomalías del caracol, del órgano de Corti o de las vías (sordera de conducción). Si existe sordera nerviosa, las vibraciones del diapasón no  se perciben como sonido, bien sea que el diapasón se ponga cerca del oído o que

toqu toquee al crán cráneo eo.. Pero Pero si la sord sorder eraa se debe debe a tras trasto torn rnos os de cond conduc ucci ción ón,, las las vibraciones a través del cráneo serán reconocidas como sonido.  Además, cuando existen dificultades de conducción aérea, y el diapasón se coloca en la parte media de la frente el sonido se percibe más intensamente en el oído interno. GUSTO  Los receptores del gusto se encuentran diseminadas sobre la lengua. Sin embargo, las  papilas caliciformes de la parte posterior de la superficie dorsal de la lengua, y las  papilas fungiformes se encuentran sobre todo en los bordes y la punta de órganos.  Poseen una gran cantidad de botones gustativos. Se han descrito cuatro tipos de botones gustativos por sus respuestas a las sustancias dulces, ácidas, saladas y amargas. Aunque estos cuatro tipos no se encuentran exclusivamente limitados a determinadas zonas se ha visto que los bordes de la lengua son estimulados más  fácilmente por las sustancias ácidas, la punta por las saladas y dulces; y la parte  posterior por las amargas.  Es necesidad característica de los cuatro tipos de receptores que la sustancia de  prueba se encuentre disuelta antes de que pueda producir estímulo. OLFATO   Los receptores para el sentido del olfato se encuentran en las partes altas de la cavid cavidad ad nasal nasal.. El epite epiteli lioo de esta esta zona zona conti contiene ene célul células as de sostén sostén.. Las célul células as receptoras son neuronas modificadas, con proyecciones cilíndricas las cuales son estimuladas por las sustancias olorosas presentes en el aire que pasa cerca de ellas.  Por lo tanto, el husmeo, es una manera muy eficaz de incrementar la percepción olorosa.  Los mecanismos íntimos que forman la base de la olfación no se conocen tan bien como del gusto, la audición y la vista, y no se ha podido establecer ninguna clasificación útil de sensaciones olorosas primarias. Sin embargo, el sentido del  olfato se caracteriza por dos particularidades bastante notables: 1) su alto grado de adaptación, y 2) El enmascaramiento de ciertos olores por otros. Objetivo  Los estudiantes en pareja y teniéndose a sí mismo como sujetos de experimentación, mediante procedimientos procedimientos sencillos, analizarán fenómenos de la sensibilidad sensorial  interpretando los resultados desde el punto de vista clínico.

 Procedimientos  Deben trabajar juntos dos estudiantes, uno como un sujeto experimentador y otro como examinado. Se intervienen luego los papeles y se repiten los ejercicios.  EXPERIENCIA 1: VISIÓN ( VISIÓN  ( foto acomodación y agudeza visual ) FOTO ACOMODACIÓN:  Hacer que el sujeto experimental observe durante un minuto un lugar distante. Luego en forma súbita darle a leer un texto con letra  pequeña. Tomar el tiempo transcurrido entre la orden dada y el inicio de la lectura.  Repetir la experiencia hasta cinco veces. Finalmente colocar un lápiz a unos 50 cm. delante de los ojos del sujeto experimental y pedirle que observe fijamente la punta del mismo y que siga con la mirada el desplazamiento del lápiz. Cumplida la indicación indicación llevar el lápiz lentamente lentamente y sin detenerse detenerse hasta a unos 10 cm de la punta de la nariz. Observar la respuesta ocular repetir la experiencia cinco veces.  AGUDEZA  AGUDEZA VISUAL :  Realizar la medición de la agudeza visual de cada ojo por   separado con la tabla tabla Standard de letras, tanto tanto para la visión de lejos lejos como para la la visión de cerca .  EXPERIENCIA 2: AUDICIÓN  Material: 1 diapasón por cada 10 alumnos. Algodón, vaselina. Se hace vibrar un diapasón y se pone alternativamente a algunos centímetros de cada uno de los oídos del sujeto. Se anota por cuanto tiempo sigue percibiendo el sonido cada oído. La mayoría de la gente normalmente oye el diapasón durante 30 segundos. También puede compararse la audición de un sujeto con la del examinador examinador buscando  si el examinador todavía oye el sonido después de que el sujeto ya no lo percibe.  Evidentemente,  Evidentemente, este método de comparación comparación carece de utilidad si el examinador tiene una audición deficiente, solo permite saber si hay o no transtornos de la audición. Se vuelve a golpear el diapasón, poniendo esta vez el mango en el centro de la frente. Se nota el tiempo necesario para que el sonido ya no sea percibido en ninguno de los oídos. Se pide al sujeto que tape uno de los conductos auditivos con un pedazo de algodón mojado en vaselina. Se vuelve a golpear el diapasón y se nota cuanto tiempo se necesita para que el sonido no sea percibido por ninguno de los oídos. En una nueva  prueba se pone el mango de diapasón en el centro de la frente del sujeto. Se pide al 

 sujeto que describa la diferencia de intensidades de sonido percibidos por el oído abierto y por el tapado. Se anota el tiempo por el cual se percibe el sonido en cada caso.  Esta maniobra se conoce como la prueba de Weber y se utiliza para distinguir la  sordera de la conducción, de la nerviosa. Si el sonido se oye mejor en el oído tapado, los problemas están relacionados con la cóclea. Si el sonido se percibe mejor en el  oído afectado, la dificultad está ligada con el sistema de conducción aérea.  RESULTADOS  •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

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 Elaborar conclusiones y recomendaciones. CAPITULO III  FISIOLOGÍA CARDIOVASCULAR

 PRACTICA N° 1: PROPIEDADES DEL MÚSCULO CARDIACO Fundamento:   El El músc múscul uloo card cardia iaco co pued puedee ser ser esti estimu mula lado do quím químic icam amen ente te,, eléc eléctr tric icam amen ente te,, mecánicamente. mecánicamente. Funcionalmente es sincitial y puede contraerse rítmicamente rítmicamente en ausencia de inervación, debido a células marcapaso que descargan espontáneamente.  El corazón esta constituida por células no especializadas y células especializadas del nodo   sinus sinusal al,, nodo nodo A-V-, A-V-, ramas del Haz de Hiss. Hiss. Tod Todas as estas estas célul células as puede puedenn actuar actuar como como marca marcapas pasoo , es decir decir que pueden pueden despo despola lariz rizar arse se

automá aut omáti ticam camen ente. te. Sin embarg embargoo en

condiciones normales la actividad del marcapaso ocurre en el nódulo sinusal debido a que se despolarizan más rápidamente (marcapaso cardíaco).   Las Las prop propie ieda dade dess del del cora corazó zónn son son : Inot Inotro ropi pism smoo (con (contr trac acti tibi bili lida dad) d),, Cron Cronot otro ropi pism smoo (frecuencia), Batmotropismo (excitabilidad), Dromotropismo(Conducción), Automatismo. Objetivo:  Demostrar al estudiante las propiedades del corazón y entender la dinámica del ciclo cardiaco debido a la baja frecuencia cardiaca del sapo.  Materiales:  Animal de experiencia: sapo Tabilla para fijar el animal 

-

Material quirúrgico (pinza de disección, estilete, etc.)

Soluciones de Acetil Colina, Adrenalina, CIK, ClCa

Tubo de ensayo.  Procedimiento: 1.

Preparación del corazón: -

 Fijar al animal en una tablilla en decúbito – supino con alfileres.

-

Tomar con una pinza la piel del tórax y hacer un ojal con la tijera, luego ampliar el ojal desde el suelo de la boca hasta la porción media del abdomen.

-

 Desde este momento humedecer constantemente el corazón con unas gotas de  Ringer.

-

 Reconocer el extremo inferior del esternón (Xiphisternum), tomar con una pinza  y cortar cortar el lado izquie izquierdo rdo del esternón esternón.. Introducir Introducir uno de los extremos extremos de la tijera en la cavidad celómica y cortar el esternón en la línea media.

-

  Ampli Ampliar ar el campo campo de observ observac ación ión por amputa amputaci ción ón con con la ti tije jera ra de cada cada clavícula.

-

Observar el corazón dentro de su pericardio.

-

  En una forma forma cuidad cuidadosa osa se secci secciona ona el peric pericard ardio io y luego luego ident identifi ificar car la anatomía de las cavidades y de los vasos. El corazón del sapo tiene un seno venoso, dos aurículas y un ventrículo

-

 Reconocer el ciclo cardiaco del corazón del sapo: Sístole y diástole del seno venoso, de las aurículas y del ventrículo.

2.

Experimento de Gaskel: -

Coloque verticalmente verticalmente la tablilla tablilla estando la cabeza cabeza del sapo hacia abajo de tal  manera que Ud. pueda identificar la parte posterior del corazón.

-

 Identificar sus diferentes partes: Seno venoso, aurículas y ventrículo.

-

  Anot Anotee el número número de lati latidos dos del seno venoso, venoso, aurícul aurículas as y ventrí ventrícu culos los y la  secuencia de contracción.

-

Toque el seno venoso con un tubo de ensayo conteniendo agua helada anote el  número de latidos por minuto. Espere que se recupere el número de latidos a su nivel basal. Repita la experiencia con un tubo conteniendo agua a 45°C y anote el número de latidos por minuto.

-

3.

 Haga su interpretación del experimento.

Acción farmacológica:

 Instilar sobre el corazón dos gotas de Acetil Colina al 1/5000 y observar el 

-

efecto. Lavar con Ringer.  Después de normalizado instilar unas gotas de Adrenalina al 1/2000 y observar 

-

el efecto. -

Observar los efectos del Clk y Cl 2Ca 4. Ligaduras de Stanius:  En un sapo preparado siguiendo los pasos anteriores colocar una ligadura entre el seno venoso y las aurículas (Primera ligadura de S.) Observar los efectos.  Luego colocar una nueva ligadura entre las aurículas y el ventrículo ( Segunda ligadura de S.). Observar los efectos.   En otro sapo, sólo colocar una ligadura entre las aurículas y el ventrículo (Tercera ligadura de S.). Observa los resultados 5. Corazón Aislado: -

  Extraer el corazón del batracio de la cavidad toráxica y colocarlo en un

beaker conteniendo solución de Ringer. OBSERVAR LOS LATIDOS Y DEDUCIR CONCLUSIONES   RESULTADOS  •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

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 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

  PRACT PRACTICA ICA N° 2: ELECTR ELECTROCA OCARDI RDIOGR OGRAF AFÍA ÍA Y ELECTR ELECTROFI OFISI SIOLO OLOGÍA GÍA

I

  MORFOLOGÍA, DURACIÓN Y AMPLITUD DE LAS LAS ONDAS ONDAS . Fundamento:  El electrocardiograma es la expresión de la actividad eléctrica del corazón, sirve  para estudiar los potenciales responsables responsables del latido cardiaco. Se conectan los terminales de un galvanómetro a electrodos colocados en la superficie del cuerpo, aprovechando que el    fenómeno eléctrico cardiaco se conduce, a través de los tejidos, hasta la superficie del  cuerpo. El circuito así establecido se llama derivación.  El electrocardiograma clínico se toma habitualmente en doce derivaciones:  Derivacions bipolares (dos electrodos registradores activos): D. Estandar   Derivación I: Potencial del brazo derecho – Potencial del brazo izquierdo.  Derivación  Derivación II: Potencial del brazo derecho – Potencial de la pierna izquierda.

:

 Derivación III: Potencial del brazo izquierdo – Potencial de la pierna izquierda.   En estas estas tres tres derivaci derivaciones ones,, original originalment mentee propuest propuestas as por Einthove Einthoven, n, la lla llave ve de mando mando del electroca electrocardió rdiógraf grafo(sel o(select ector or de derivacione derivaciones) s)

conecta conecta automátic automáticamen amente te el 

mecanismo registrador de dos de los tres electrodos conectados en las extremidades del   paciente.  Derivaciones unipolares unipolares (un electrodo registrador registrador y el otro es un electrodo indiferente indiferente de  potencial cero)   Existen tres derivaciones unipolares de miembros, que representan variaciones de  potencial que existen en las correspondientes extremidades y a nivel de su unión con el  tronco. Se obtienen conectando la central terminal( de potencial = 0 ) y la extremidad cuyo  potencial se está registrando.  Estas derivaciones son: aVR : derivación de brazo derecho. aVL: derivación de brazo izquierdo. aVF : derivación de pierna izquierda. Además de estas seis derivaciones de miembros, se registran otras seis derivaciones  precordiales: VI : cuarto espacio intercostal derecho, borde esternal. V2: cuarto espacio intercostal izquierdo, borde esternal. V3 : punto medio entre V2 y V4. V4: Intersección del quinto espacio intercostal izquierdo con la línea media clavicular. V5 : Intersección de la línea axilar anterior y prolongación horizontal de V4. V6 : Intersección de la línea axilar media con la prolongación horizontal de V5. Objetivo:  Estudiar la morfología del trazado electrocardiográfico normal: Onda P : Voltaje......................... Voltaje................................................ ....................... Duración........................ Duración........................ Complejo QRS : Voltaje ................................. ................................. Duración........................ Duración........................  Duración del intervalo intervalo PR .............................................. ..................................................................... ...........................  Duración del intervalo intervalo QT ............................................. .................................................................... .......................... ...

 PRACTICA N° 3: ELECTROCARDIOGRAFÍ ELECTROCARDIOGRAFÍA A Y ELECTROFISIOLOGÍA ELECTROFISIOLOGÍA II : FRECUENCIA ,RITMO, Y EJES. Objetivo:  Estudiar la frecuencia,ritmo frecuencia,ritm o y ejes de un trazado electrocardiográfico normal: R  itmo ............................................ ................................................................... .............................................. ..................................... ..............  Determinación  Determinación de la frecuencia cardiaca auricular ................................ ................................  Determinación  Determinación de la frecuencia frecuencia cardiaca Ventricular ................................ ................................  Determine el Eje eléctrico eléctrico Auricular AP .................................................. ..................................................  Determine el eje eléctrico cardíaco AQRS……………………………………  Experiencia de un alumno: Con el sujeto en decúbito dorsal se colocan los electrodos en las cuatro extremidades  y en la región precordial.  Los electrodos están conectados, mediante cables al electrocardiógrafo. Previamente se utilizan utilizan pasta electrolítica como condensador entre la piel y el electrodo. Estos se adhieren a la piel mediante bandas de jebe, y el precordial mediante un electrodo de succión.  Estandarice el aparato : 1 mV : 1 cm.  Registre las doce derivaciones (velocidad : 25 mm. por seg.)  Estudie los valores del papel milimetrado electrocardiográfico.  Estudie la morfología del trazado electrocardiográfico normal.  Esta experiencia también se puede realizar en animales como el sapo por ejemplo.  PRACTICA N° 4: PRESIÓN ARTERIAL INDIRECTA Fundamento:   La determina determinación ción de la presión arteria arteriall se puede puede hacer por dos métodos: métodos: M. directo directo o cruento, es de uso en los laboratorios de investigación: Consiste en insertar una cánula o catéter en una arteria arteria y conectarla directamente directamente al manómetro. manómetro. La determinación determinación de la PA en la clínica se hace por medio de métodos no cruentos o indirectos. El grado de sensibilidad  de esta última es buena siendo su error de 2-5 mmHg (dependiendo de la técnica y la agudeza auditiva del explorador)  El principio consiste en aplicar la presión en el manguito de jebe hasta igualar o  superar la presión en el interior de la arteria, en el momento que se explora. El grado de

 sensibilidad de la determinación de la PA por método ultrasónico es igual al procedimiento directo. Objetivo: Cada alumno determinará la presión arterial (indirecta) y observara los valores normales; así como las variantes y/o adaptaciones frente a determinados estímulos.  Materiales: 1)

Esfi Esfing ngom oman anóm ómet etro ro (de merc mercur urio io o aner aneroi oide de), ), unido unido por por un tubo tubo a un mangu manguit itoo de caucho de 12 cm de anchura. Y una pera de caucho para insuflar o desinsuflar.

2)

Un este esteto tosc scop opio io.. (mem (membr bran ana) a)..

Técnica:   La presión presión arterial arterial sanguínea sanguínea se mide con un esfigmoma esfigmomanóme nómetro tro común, común, el cual  consiste en un manguito no elástico que contiene una bolsa de goma inflable; esta bolsa esta conectada mediante un tubo de goma a un pera de insuflación, y por otro tubo a un manómetro de mercurio. El manguito se coloca en el tercio medio del brazo y se procede a  palpar el latido de la arteria humeral. Seguidamente se insufla el manguito, comprimiendo la  pera, teniendo cuidado de que la válvula de la pera esté cerrada. Observe en el manómetro la cifra (mm de Hg) en la que desaparecen desaparecen los latidos latidos y eleve la presión 30 mm de Hg. más. Coloque el diafragma del estetoscopio en la zona en que palpó el latido arterial . Abra la válvula gradualmente gradualmente de la pera de insuflación insuflación (de esta manera se consigue disminuir disminuir la  presión del manguito) hasta que escuche un ruido. La columna de mercurio indica, en este momento, la cifra de la PRESION SISTÓLICA; siga disminuyendo lentamente la presión del  manguito (3 a 5 mm de Hg por latido) y escuchara escuchara los ruidos apagados, apagados, luego aumentan aumentan de intensidad, posteriormente disminuyen de tonalidad y finalmente desaparecen. Estos son los ruidos de KOROTKOFF. Se acepta como PRESION DIASTOLICA la cifra en la cual los ruidos disminuyen de tonalidad (sin embargo, muchos consideran la desaparición de los ruidos como índice de la presión diastólica).  Procedimiento: 1.

Desp Despué uéss de habe habers rsee fami famili liar ariz izad adoo con el el esfi esfigm gmom oman anóm ómet etro ro y con con el este esteto tosc scop opio io,, mida la presión arterial con el sujeto en posición sentado y con el brazo a la altura del del cora corazó zón. n. Mi Mida da la pres presió iónn en ambo amboss braz brazos os,, por por el méto método do palp palpat ator orio io auscultatorio.

y

2.

Midda la pres Mi presiión con con el braz brazoo levanta ntado vert vertiicalme almennte y con con el brazo razo rel relaja ajado libremente.

3.

Midaa llaa pres Mid presión ión arteri arterial al con el suje sujeto to en decúbi decúbito to dorsa dorsall y en posic posició iónn de pie. pie.

4.

Infl Influe uenc ncia ia del del ancho ancho del del mangu manguit itoo sobre sobre la med medic ició iónn de la pres presió iónn arter arteria ial. l. Efec Efectú túee mediciones con manguito de diferente ancho en el mismo lugar.

5.

En un indiv individ iduo uo que que está está en en repos reposo, o, deter determin minee la la P.A. P.A. con la mano mano opue opuesta sta sumer sumergid gidaa en agua helada. Compare con la presión basal. Repita la determinación con la mano  sumergida en agua caliente.

6.

Infl Influe uenc ncia ia del del ejerc ejercic icio io físi físico co.. El suje sujeto to debe debe pra pract ctic icar ar 30 fle flexi xion ones es en un min minut uto. o. Seguidamente contrólele la presión arterial y compárela con la de reposo.

7.

En un un alum alumno no que que hay hayaa hipe hiperv rven enti tila lado do por por algu alguno noss minu minuto toss dete determ rmín ínel elee su cifr cifraa de  P.A.

8.

Anote su sus re resultados.

 Las determinaciones determinaciones se hacen por parejas de alumnos determinando en cada uno de ellos: la  presión sistólica, la presión diastólica, la presión diferencial o presión de pulso y la presión media.  Presión media = P. sistólica – P. Diastólica  P. sist. – P. Diast.   Presión media = P. Diastólica Diastólica + ----------------------------------------------- -----3

 Discusión: 1.

Comp Compar aree los los valo valore ress de la la pres presió iónn por por el mét métod odoo palp palpat ator orio io y aus auscu cult ltat ator orio io..

2.

Que Que suce sucede de con con las las pre presion siones es sis sistó tóli lica ca y dias diastó tóli lica ca al al medi medirl rlas as con con man mangu guit itos os de de ancho diferente? por que razón existen diferencias en las mediciones?.

3.

Por que razon razones es se debe debe medi medirr la la P.A. P.A. con con el brazo brazo colga colgado do a la la alt altura ura del coraz corazón? ón?

4.

A que que se se debe debenn las las vari variac acio ione ness de pres presió iónn con con la la prue prueba ba del del agu aguaa hela helada da??

5.

Enumere las razones por las cuales varia la presión arterial durante la hiperventilación.

6.

Expl Expliq ique ue las las mod modif ific icac acio ione ness de las las cif cifra rass de P.A P.A.. desp despué uéss del del ejer ejerci cici cio. o.

CAPITULO IV  FISIOLOGÍA ENDOCRINA   PRÁ PRÁCT CTIC ICA A N°1: N°1: ACCI ACCIÓN ÓN DE LA HORM HORMON ONA A GONA GONADO DOTR TRÓP ÓPIC ICA A CORI CORIÓN ÓNIC ICA A (HGC). TEST DE GALLI MAININI. Fundamento:   La hipóf hipófisi isiss ant anter erior ior li liber berar ar una serie serie de hormon hormonas as entre entre ella ellass las ll llama amada dass GONAFOTROFINAS HIPOFISIARIAS : FSH y LH que actúan sobre las gónadas, durante el  embarazo la placenta también elabora las GONADOTROFINAS CORIONICAS : HGC   La HGC posee actividad actividad similar a LH principalmente. principalmente. Estimula el testículo y aumenta la síntesis de testosterona.   La La HGC HGC ti tien enee la prop propie ieda dadd de esti estimu mula larr el desp despre rend ndim imie ient ntoo y expu expuls lsió iónn de espermatozoides espermatozoides en batracios batracios machos de los géneros bufo (sapo) y rana, en esto se funda el  método de Galli Mainini para el diagnóstico biológico del embarazo. La prueba de Galli Mainini no diferencia entre las gonadotropinas hipofisiarias y coriónicas y es de baja  sensibilidad.  Puede dar falso positivo en las mujeres menopáusicas, por aumento de las hormonas hipofisiarias y puede dar falso negativo al inicio del embarazo y el embarazo más avmzado  por su baja sensibilidad  Objetivo:  Demostrar la presencia de HGC en la orina de mujer gestante de dos formas: a)

Por Por su acci acción ón sob sobre re célu célula lass de Sert Sertol olii en un sapo sapo (acc (acció iónn biol biológ ógic ica) a)..

 PRUEBA BIOLÓGICA:  Materiales: -

Sapo macho de peso mayor de 100 gr.

-

Orina de supuesta gestante fresca

-

 Jeringa de 10 cc. Con aguja N° 21

-

 Lámina porta objetos.

-

 Pipeta Pasteur.

-

Microscopio.  Procedimiento: 1.

Orina rina Basal asal de mu mujer presu resunt ntaamen mente ge gestan stantte.

2.

Inye Inyect ctar ar orin orinaa en en el el sac sacoo llin infá fáti tico co dors dorsal al del del sap sapo. o.

3.

Lueg Lu egoo de de 30’ 30’ extr extrae aerr la 1° mues muestr traa con con la pipe pipeta ta de la cloa cloaca ca del del sap sapo. o.

4.

Observar al microscopio.

5.

Si fuera fuera negati negativo vo,, repet repetir ir la extra extracci cción ón de la muestr muestra, a, cada cada 30’ 30’ has hasta ta las tres tres hor horas. as.

6.

Cuand uandoo se encuent uentrra espe spermat matozo ozoides des en la mue muestra stra,, se inf inform orma como omo prue rueba  positiva.

b)

Prueba iinnmunológica: Se Se ba basa en en un una  REACCIÓN ANTÍGENO ANTICUERPO   La gonod gonodotr otrof ofina ina es el ant antíg ígeno eno,, se hace hace reacci reacciona onarr con con el ant antic icuer uerpo po (anti (anti--

 gonadotrofina).  gonadotrofina). Para poner en evidencia la reacción se utiliza particulas de látex adsorbidas con la gonadotropina.   Esta Esta prueba prueba es más más especí específi fica ca,, permi permite te disti distingu nguir ir las las HGC place placenta ntaria ria de las hipofisiarias. Porqué?  Materiales: -

 Partículas de látex de polietileno cubierta con HGC..

-

Suero Suero (antic (anticue uerpo rpo ant anti-H i-HGC) GC).. Dos pat patron rones, es, uno posit positiv ivoo otro otro negati negativo vo para para estandarizar la prueba.

 Procedimiento: -

1 gota de suero en la lámina, más 1 gota de orina problema, mezclar con un palillo  por 30”.

-

.

 Añadir 1 gota de latex sensibilzado (cubierto) con HGC, mezclar por 2´.

Si hay aglutinación: NO HAY EMBARAZO: PRUEBA NEGATIVA  Porque el antisuero( antisuero( anticuerpos) anticuerpos) se mantiene libre libre para aglutinar las partículas partículas de látex cubiertas por la hormona, fomándose los grumos. b.

Si no ha hayy aglu agluti tina naci ción ón:: SI SI HAY HAY EMBA EMBARA RAZO ZO :PRU :PRUEB EBA A POSI POSITI TIVA VA  Porque la HGC presente en la crina se ha combinado con el anticuerpo y ya no queda más anticuerpo para unirse con la HGC adsorbida en las partículas de látex.

 RESULTADOS  •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

PRÁCTICA N° 2: METABOLISMO BASAL EN EL RATÓN

 INTRODUCCIÓN   El trabajo biológico tiene como fuente de energía los enlaces intramoleculares. El trabajo biológico puede ser medido en condiciones de actividad o de reposo. A esta última se le

denomina Metabolismo Basal. EL MB puede ser medido por método directo (calorímetro) o indirecto (consumo de O2), tanto en el hombre como en los animales. Se puede medir indirectamente la producción calórica de un individuo determinando la cantidad de O 2 que consume. Este tipo de calorimetria indirecta es la que emplearemos en la  práctica.  La medición del metabolismo basal en el ser humano se realiza determinando la producción calórica por hora, por metro cuadrado de superficie corporal y en condiciones de reposo y ayuno .  Material y Métodos: 1.

Colocar Colocar el hamster hamster o ratón en un frasco frasco de vidrio hermétic herméticamen amente te cerrado, cerrado, cuya única comunicación con el ambiente es una pipeta graduada ; el frasco también contiene una pequeña cantidad de cal sodada (tiene la propiedad de absorber el  CO2). Se recuerda a los alumnos que estos animales son muy susceptibles al ruido, movimientos bruscos, etc. Se recomienda que el animal reciba luz, ya que ésta hace que el animal se mantenga quieto.

2.

Espe Espere re 5’ 5’ para para que que se se efec efectú túee el equi equili libr brio io de de la tem tempe pera ratu tura ra den dentr troo de la la cáma cámara ra la la que se anotará con un termómetro adecuado incorporado a la cámara.

3.

Hume Humede dece cerr el el int inter erio iorr de de la la pip pipet etaa con con agua agua jabo jabono nosa sa..

4.

Colocar una película de espuma de jabón al final de la pipeta, lográndose una cavidad totalmente totalmente cerrada y se verá que conforme el animal animal va consumiendo consumiendo el O2 la película de jabón va moviéndose a lo largo de la pipeta. El CO2 producido será absorbido por la cal sodada.

5.

Con un cronómetro determinar el tiempo requerido para que la película de jabón se mueva la distancia distancia que marca 2 centímetros centímetros Cúbicos, tres veces y sacar el promedio promedio en minutos y convertir los segundos a minutos en fracción centesimal.  Anotar: a) Tempe Temperat ratura ura dentr dentroo de la la cámar cámaraa en °C (Ts) (Ts);; b) La Pre Presi sión ón Baro Baromét métric ricaa en Lim Limaa es 754 mmHg; mmHg;

CÁLCULO SIMPLIFICADO a)

  Peso en gramos del ratón

b)

Consumo O2 (tiempo necesario para el consumo de 2ml de O2 = T1 + T2 + T3)

c)

 Promedio de 3 tiempos para consumo de O 2 en minutos

d)

Consumo de O2  /Litros/h

d=

2 x 60

 Prom .tiempo x 1000 (c) e)

Temperatura O2 (Temperatura (Temperatu ra ambiente del laboratorio °C = 20°).

f)

Presión atmosférica: 75 750 mmHg.

g)

Consumo de O2 / lt / h en condiciones normales de “T” y “P” . (f) d x 750 x 273  g = ---------------------- consumo del oxígeno por el ratón que pesa p en L/h L/h 760 x ( 273 + 20 ) (e)

h)

g

 

Consumo de oxígeno por gramo: h = ----------peso en gramo( a )

i)

Metabolismo Metabolismo (cal/h/gr) Consumo de calorías: calorías: h x 4.825 (Consumo de calorías por hora por gramo de ratón) ratón)

 PRÁCTICA N*3 CONVERSATORIO CLÍNICO CLÍNICO FISIOLÓGICO: FISIOLÓGICO: SOMATOTROPINA  Historia clínica  Paciente: Masculino,de 19 años.  Molestia principal: Crecimento exagerado(gigantismo).  Antecedentes: El  Antecedentes: El paciente tiene padres y hermanos normales; él mismo fue normal hasta los 10 años de edad,cuando comenzó a presentar un crecimiento exageradamente rápido. La tasa de crecimiento continuó al percentil 99 durante dos años y después permaneció entre los  percentiles 50 y 75 durante dos años más. A los 14 años de edad la concentración de la hormona de crecimiento(HC) crecimiento(HC) en le plasma era de 113 ng/dl (normal,10 a 20 ng/dl) y no aumentó por la inyección de insulina ni disminuyó por la inyección de glucosa. La concentración concentración de glucosa sanguínea en ayunas fue de 110 mg/dl (normal,70 a 110 mg/dl); la  prueba de tolerancia de la glucosa indicó que se encuentra en el límite para ser considerado

diabético,no se encontró glucosa en orina. El fósforo inorgánico del suero era de 8 mg/dl  (normal 3 a 3.5 mg/dl). En el periodo inicial de crecimiento rápido,el paciente se conservó  fuerte y vigoroso,pero durante los dos últimos meses tuvo debilidad y atrofia muscular.  Desarrolló debilidad específica en las manos lo cual le dificultaba incluso sostener el lápiz y escribir o utilizar los utensilios para comer.  Examen clínico: En el momento de su ingreso todos los reflejos de las extremidades estaban muy disminuidos. Las tomografías craneales(radiografía seccional)no mostraron ninguna anomalía importante en la silla turca; no se encontró ningún signo de tumor(como visión  perturbada o aumento de la presión intracraneal). No obstante,con base en el aumento de la concentración plasmática de la HC y su insensibilidad para la estimulación o la supresión relacionada con la glucosa,se diagnosticó tumor hipofisiario (microadenoma). Tratamiento : Se llevó a cabo una hipofisectomía quirúrgica por vía transesfenoidal   ,extirpándole un tumor acidófilo. Se inició una terapéutica de sustitución para la insuficiencia hipofisaria. Aunque la concentración de la HC del plasma disminuyó bastante continuó ligeramente mayor que que lo normal (20 a 25 ng/dl); este valor sugiere que quizá no se extirpó por completo el tumor. Comentario: Un tumor hipofisario que produce un tipo de hormona con frecuencia disminuye la producción de las otras hormonas hipofisarias al comprimir el tejido de la  glándula y destruir células que producen las demás hormonas. Por ejemplo, la debilidad y la atrofia muscular que desarrollan posteriormente los gigantes hipofisarios reflejan hasta cierto grado la deficiencia de la corteza suprarrenal. La falta de secreción de  gonadotropinas hipofisarias retarda la pubertad; por lo cual las epífisis no se cierran y continúan el crecimiento del hueso. La mujer adulta que desarrolla este tipo de tumor sufre con frecuencia amenorrea secundaria a la disminuciónde HL . Se desarrolla síntomas neurológicos a medida que el crecimiento anormal ocasiona compresión de los nervios en los conductos a través de los huesos y articulaciones. En este paciente,la debilidad de las manos  fue causada por presión sobre el nervio mediano en el espacio formado por los huesos de la muñeca y el ligamento transverso del carpo(síndrome del túnel del carpo).  Resultados: Aunque la terapéutica de sustitución con hormonas tiroideas,suprarrenales y del  crecimiento permitirán una pubertad normal y la subsecuente limitación al crecimiento

lineal,la continuación de las cifras elevadas de la HC puede causar cierta acromegalia y  probablemente se requiera la extracción quirúrgica o la radiación de los restos del tumor.  PRACTICA Nº 4 CONVERSATORIO CLINICO CLINICO FISIOLÓGICO: FISIOLÓGICO: HIPOGLICEMIA HIPOGLICEMIA  Historia clínica  Paciente : Femenino, de 37 años   Molestias principales: Comienzo brusco con debilidad, adinamia, sudoración, ansiedad, desv desvan anec ecim imie ient ntoo y a vece vecess inco incons nsci cien enci cia, a, que que se dete determ rmin inóó eran eran caus causad ados os por por la hipoglucemia.  Antecedentes: La paciente sufría diabetes dependiente de insulina de 13 años de duración. Su glucosa sanguínea se encontraba razonablemente bien controlada la mayor parte del  tiempo, pero había sufrido varios ataques de hipoglucemia. El número de ataques había  promediado uno al año durante varios años, pero su frecuencia iba en aumento.  Examen clínico: clínico: No había signos de neuropatía del sistema nerviosos autónomo y la evaluación endocrina de la paciente dio resultados normales, excepto para las respuestas de las hormonas reguladoras: adrenalina, glucagón, hormona de crecimiento (HC) y cortisol a la dism dismin inuc ució iónn de la gluc glucos osaa sang sanguí uíne nea. a. Para Para estu estudi diar ar esta estass resp respue uest stas as se indu indujo jo hipog hipoglu luce cemia mia media mediante nte inyec inyecci ción ón de insul insulina ina crista cristali lina, na, con extrac extracci ción ón de muest muestras ras   sangu sanguíne íneas as y medic medició iónn de la concen concentra traci ción ón de hormon hormonas as regul regulado adoras ras.. En respue respuest staa a concentraciones concentraciones de glucosa en el plasma de solo 40 mg/dl, las concentraciones concentraciones de glucagón,  HC y cortisol no aumentaron aumentaron de manera importante importante en ningún momento, la concentración concentración de la adrenalina aumentó ligeramente ligeramente pero en forma transitoria transitoria y volvió a disminuir a pesar de la continua hipoglucemia. En pruebas adicionales, la concentración de todas las hormonas reguladoras aumentó en respuesta a otros estímulos, por ejemplo la ACTH aumentó la concentración plasmática de cortisol y hormona del crecimiento; la infusión de arginina elevó la concentración de glucagón; y el ejercicio en una “banda sin fin” incremento la concentración cortisol, adrenalina y noradrenalina. Por lo tanto, los órganos endocrinos no eran insuficientes. El glucagón y la adrenalina, las mas importantes hormonas reguladoras administradas en cantidades fisiológicas, estimularon la producción hepática de glucosa y aumentaron la concentración plasmática de glucosa. Comentario: Comentario: No se conoce la lesión que ocasionaba la falta de respuesta de hormonas que  participan en la regulación de glucosa en la paciente, pero otros informes en la literatura  sobre pacientes dependientes de la insulina indican que el problema no es raro.  Resultado: No fue posible hacer ninguna corrección en esta paciente, pero la vigilancia cuid cuidad ados osaa de la gluc glucos osaa sang sanguí uíne neaa ha dism dismin inui uido do la grav graved edad ad de los los ataq ataque uess de hipoglucemia. hipoglucemia .

CAPITULO V 

FISIOLOGÍA DEL APARATO RESPIRATORIO  PRACTICA Nº 1: VOLUMEN Y CAPACIDAD PULMONARES – ESPIROMETRIA Objetivo:  Esta practica tiene por objeto demostrar el método para medir las CAPACIDADES Y LOS  VOLÚME VOLÚMENES NES pul pulmon monare ares. s. El proce procedi dimie mient ntoo para para la medic medición ión que vamos vamos a emple emplear  ar  requiere inscripción inscripción gráfica: gráfica: ESPIROGRAMA. Este procedimiento procedimiento nos permite determinar  determinar  todos los volúmenes y capacidades, excepto el VOLUMEN RESIDUAL (y por lo tanto la CAPACIDAD TOTAL), cuya mediciones mediciones hace por métodos indirectos. Material:  Espirómetro  Papel y tinta  Pinza nasal  Tabla de presiones del vapor de agua  Regla graduada  Balón de oxígeno  Procedimiento para obtener el ESPIROGRAMA a. Llénese la campana de espirómetro (ó del aparato de metabolismo) metabolismo) con aire, de modo que la aguja inscriptora marque la parte inferior del papel. b. Con el sujeto sentado, colóquese una pinza nasal y hágase respirar a través de una pieza bucal que comunica por intermedio de un tubo de goma con el espirómetro (o con el  metabolímetro). metabolímetro). Se tendrá especial cuidado que no se escape el aire por la nariz o alrededor  de la pieza bucal. c. Una vez que el número de las respiraciones se ha hecho más o menos constante y su   prof profund undid idad ad uniform uniformee y la línea línea de base del trazad trazadoo sea regular regular (lo que se consigue consigue   generalmente después de algunos minutos), se pide al sujeto que realice las siguientes maniobras: -

 Al final de una inspiración normal, realiza runa expiración máxima, luego respirar normalmente. Esperar hasta que el trazado se regularice.

-

 Al final de una espiración normal, ejecutar una inspiración máxima y luego respirar normalmente. Esperar que se regularice el trazo.

-

 Al final de una espiración norma, inspirar al máximo y luego ejecutar una espiración máxima. Respirar normalmente. Esperar que el trazo se regularice.

-

 Al finalizar una inspiración normal espirar al máximo y luego ejecutar una inspiración inspiración máxima. Respirar normal.

-

 Anotar la temperatura del espirómetro y la presión barométrica.

Mediciones en el trazado y cálculos: a) Trazar Trazar la LINEA DE BASE BASE (línea (línea que pasa pasa por el mayor mayor número posib posible le de vértice vérticess inferiores del trazado o sea los puntos correspondientes al final de las espiraciones normales). b) Trazar Trazar una línea línea recta recta que pase pase por por el mayor mayor númer númeroo de vértic vértices es superi superiore oress del  del  trazado (final de las inspiraciones normales). c) Con una regla graduada en milímetros milímetros mídase mídase la altura de cada uno de los diversos componen componentes tes del trazado, trazado, desde la línea línea de base hasta el vértice vértice de los trazos trazos correspondientes a la máxima inspiraciones y espiraciones. d) Mult Multipl iplíque íquese se el número de milímetro milímetross por el FACTOR FACTOR del espirómet espirómetro. ro. El producto producto obtenido es la magnitud del volumen o capacidad pulmonar medido en centímetros cúbicos y a la temperatura del espirómetro. Vol. Ó Cap. = f x mm. Donde: Vol. Ó Cap. = volumen capacidad medida   f ,

mm

= Factor de la campana del espirómetro. = altura de milímetros del brazo medido desde la línea de base

 El factor es un número constante para cada espirómetro y es la capacidad en cc. Que tiene la campana por cada milímetro de altura, de modo que al multiplicarlo por el  número de mm de la medida de cada trazo da como resultado el volumen en cc.  , e) El volumen así obtenido debe corregirse para la temperatura corporal y para la  saturación con vapor de agua, condiciones condiciones ambas presentes dentro de los pulmones y que afectan la magnitud del volumen medido (recuérdese que el volumen de un gas varía con la temperatura y que el aire espirado al salir de los pulmones en los que está a 37 ºC y enfriarse en el medio ambiente se contrae). Se usa la notación “BTPS” para indicar que el  volumen de un gas esta dado a 37ºC, saturado con el vapor de agua y a la presión barométrica barométrica ambiente. (las letras letras BTPS son las iniciales iniciales de las palabras inglesas inglesas Body = cuerpo, Temperature= temperatura, Presure= presión, Saturated=saturado).

 La corrección indicada se hace siguiendo la siguiente ecuación:  P – P  H2O /Ts

273 + 37 

Vol. BTPS = Vol. ATPS x -------------------- x ---------------P - 47

273 + Ts

 Donde

Vol= volumen calculado (conforme a lo indicado en el párrafo d) ( Vol. ATPS)  P = Presión barométrica del lugar   P  H O /Ts = Presión del vapor de agua a la temperatura del espirómetro (se encuentra en tablas especiales) Ts = Temperatura del espirómetro  P-47= Presión barométrica menos la presión del vapor de agua a saturación a 37 ºC  273 = Temperatura absoluta 37 = Temperatura corporal normal  2

e) Consumo de oxigeno : observando que el trazado espirográfico va ascendiendo

debido a que parte del oxigeno es retenido en el organismo del sujeto y el CO 2 que este espira es absorbido por la cal sodada del aparato, si se mide el volumen de gas desaparecido de la campana, se estará determinando el consumo de oxigeno.  Procedimiento: 1. Trazar una línea horizontal que corte la línea base en su inicio.(se habrá notado que el papel del espirómetro tiene unas líneas verticales  separadas entre sí por distancias iguales. El cilindro recubierto por este papel rota a un velocidad tal, que la distancia entre una línea vertical y la contigua se recorre en un minuto, la velocidad corriente del aparato). 2. Medir sobre la línea horizontal una distancia que corresponde a 5 ó 6 minutos del trazado y medir la distancia vertical entre ese punto y la línea de base. Esta distancia representa el desplazamiento de la campana debido al consumo de oxigeno. Calcúlese el volumen de gas desaparecido multiplicando dicha distancia en mm. por el FACTOR del espirómetro, tal como se hizo con el párrafo d. Corregir   para un minuto 3. Como el consumo de oxigeno se mide con condiciones de temperatura y presión bastante diferentes en los distintos ambientes , es conveniente referirlos a las llamadas condiciones STANDARD para poder comparar los resultados.  La notación que se usa para las condiciones Standard es STPD, que significa que el  vapor en estas condiciones corresponde al gas a 0 º C de temperatura, 760 mm de  presión barométrica y seco, es decir sin vapor de agua. (Las letras STPD son las iniciales delas palabras inglesas Standard = estandard, Temperature = temperatura, Presure = presión, y Dry = seco).

 La fórmula para convertir un volumen de gas a STPD, es : Vol.

= vol. x P - P  H O  /Ts x 273 2

760

273 + Ts

 Definiciones: a.  b. c. d.

e. f.

Volumen de aire corriente (Volumen Tidal): Es el volumen de aire inspirado o espirado durante la respiración normal (A.C.). Volumen de reserva inspiratoria: Máxima cantidad de aire que puede ser inspirado a  partir del final de una inspiración normal. Volumen de reserva espiratoria: máxima cantidad de aire que puede espirarse después de una espiración normal(R.E.). Volumen residual: es la cantidad de aire que queda en el aparato respiratorio después de una espiración máxima. Su presencia se debe a que la caja torácica impide al pulmón colapsarse directamente y su determinación, se hace indirectamente por los métodos de dilución (V.R.). Capacidad inspiratoria: es la máxima cantidad de aire que se puede inspirar partiendo de la posición de REPOSO, o sea desde el final de una espiración normal (C.I.). Capacidad espiratoria: es la máxima cantidad de gas que se puede espirar después de una inspiración normal (C.E.). Capacidad vital invertida: máxima cantidad de gas que puede inspirarse después de una espiración máxima, es decir, a la inversa de la forma convencional. Capacidad vital conjugada: es la suma de la capacidad inspiratoria y dela reserva espiratoria. Se toma en dos tiempos.

Capacidad residual funcional: fun cional: es la cantidad de gas que queda en el aparato respiratorio después de una espiración normal. Esta constituida por la suma del  volumen residual y la reserva espiratoria(C.R.F.). h. Capacidad pulmonar total : es el volumen de aire que contiene el aparato respiratorio al final de una inspiración máxima (C.P.T.) i. Capacidad vital en el tiempo : mide la rapidez en que se puede espirar la capacidad vital  g.

 puede ser espirada en 3 segundos. Se llama también tiempo de espiración máxima.

 j.

 Posición de reposo del tórax: es aquella en que el tórax se encuentra al final de una espiración normal.

 Este es el momento en que las fuerzas opuestas de la pared torácica y del pulmón que  producen los movimientos inspiratorio y espiratorio, se anulan, siendo la resultante cero. FORMULAS PARA PREDECIR LOS VOLÚMENES PULMONARES  A. Capacidad vital : Las fórmulas pueden basarse en la talla y en la superficie corporal o en la talla y la edad.  HOMBRES: a) 25 x talla talla en en cm (25 cc cc por cada cada cm de estatur estatura). a). 2  b) 2.5 x superficie corporal (2.5 lts/cm  ) c) 27.63 – (0.112 (0.112 x edad edad en en años) años) x tall tallaa en cm. cm. MUJERES: a) 20 por por tal talla la en cm. cm.  b) 2 por superficie corporal en cm 2.

c) 21.78 21.78 x (0.101 (0.101 x edad edad en años) años) x talla talla en cm. B.  Porcentaje que corresponde a cada capacidad o volumen :

a) b) c) d)

Capacida Capacidadd pulmonar pulmonar total .......... ............... .......... .......... .....100% 100% Capacida Capacidadd vital vital ............. .................. .......... .......... .......... .......... ......... .... 72% Volumen Volumen residual residual ......... ............. ......... .......... .......... .......... .......... ..... 28% (20 – 35%) Capacida Capacidadd residual residual funciona funcionall ............ ................. ........ ... 43%

 La superficie corporal se encuentra en tablas especiales y en función de la talla y el   peso.  Influencia de la posición corporal sobre las capacidad vital: Mídase la capacidad vital en posición de pie y luego en posición echado. Calcúlese la diferencia entre uno y otro valor. En la última posición los órganos abdominales desplazan el diafragma hacia el tórax disminuyendo el espacio disponible para la capacidad  vital. PRACTICA

N°

2

:

ACTIVIDAD

MUSCULAR

Y

RESPUESTA

CARDIORRESPIRATORIA.  Fundamento:  A una mayor actividad muscular corresponde un mayor consumo de O 2 y una mayor   producción de CO2.  Esta mayor actividad implica ajustes: a) Respiratorios, b) Cardio- vasculares, c) Efectos  generales. a) MECANI MECANISMO SMOSS RESP RESPIRA IRATOR TORIOS IOS:: •

•

 Aumento de la ventilación pulmonar (Frec. Respiratoria) Cambios en la expansión y adaptabilidad pulmonar(amplitud torácica)

•

 Aumento de la difusión gaseosa( CO2 y O2 en aire alveolar – Ap Fry)

•

 Aumento de sangre en pulmones (por mayor gasto cardíaco)

b) MECANISMO CARDIOVASCULAR: a) Aumento Aumento del del G.C. G.C. (mayor (mayor frec. frec. y mayor mayor volume volumenn sistól sistólico) ico) b) Mayor Mayor frecuenci frecuenciaa cardiaca cardiaca (pulso (pulso o ruidos cardiac cardiacos os por minuto) minuto) c) Mayor volumen volumen sistólico sistólico (indirecta (indirectamente mente por la amplitud amplitud del del pulso, latido cardíaco, etc.) d) Los cambios cambios anteri anteriores ores pueden pueden altera alterarr la Pr. Arterial  Arterial 

b) EFEC EFECTO TOSS GENE GENERA RALE LESS :

Son secundarios a los cambios mencionados (temperatura, sudor, huélfago o aleteo nasal, etc.) Objetivo:  La prueba consiste en realizar una actividad física determinada, para comparar lo registros basales y post-ejercicio, con la finalidad de objetivar los ajustes cardiorrespiratorios, al  mayor consumo de O2 y mayor producción de CO 2 y los efectos generales que se producen.  Procedimiento:  Intervienen 2 alumnos (o más) realizando el Test de Harvard modificado. a) Trabajo ligero: subir y bajar dos dos escalones escalones (Escl. (Escl. De Master) durante 4 minutos. b) Trabajo Trabajo median mediano: o: igual igual al anteri anterior or por 8 minuto minutos. s. c) Trabajo intenso: (se usa Bicicleta Bicicleta – ergómetro) ergómetro) subir y bajar escalones escalones con un  peso adicional por diez minutos o más.  Entre cada prueba debe reposarse por 10 minutos. Controles: Se trabaja en equipo, los alumnos aportan datos registrados y/o realizan las pruebas. 1) Alumno Alumno encar encargado gado de medir medir los tiempos tiempos 2) Alumnos para para registrar: registrar: P. Art., Art., Fr. Resp., Resp., pulso, pulso, amplitud amplitud respiratoria respiratoria o torácica; tanto basales como post- ejercicios. 3) Alumnos que que registran registran los efectos generales generales antes y después de los tests. tests. 4)  Dos grupos de alumnos para determinar: determinar: CO 2  y O2 en aire alveolar pre y post –  ejercicios. 5) Alumno Alumno que que anota anota los datos datos en un un cuadro cuadro comparat comparativo ivo  REGULACIÓN DE LA RESPIRACIÓN – APNEA VOLUNTARIA Fundamento: Un aumento de CO 2 y/o déficit de 0 2 en sangre arterial, estimulan el centro respiratorio bulbar. -

 La respiración es controlada por el sistema nervioso central y vegetativo.

-

  Es Es

prima rimari riaamie miente nte

una una

func unción aut automá omática

pero ero

puede uede ser ser

modi odificada ada

VOLUNTARIAMENTE hasta cierto limite. -

 De los múltiples múltiples mecanismos reguladores la concentración de CO2 y O2 arteriales, arteriales, son los estímulos más importantes:

Objetivos:  Demostrar que el apnea es voluntaria hasta un limite máximo o punto crítico. El apnea la realizan varios alumnos cambiando las condiciones iniciales de la prueba.

Se observaran:  Registro basal de los signos vitales (pulso y fr. Resp. / en cada alumno antes y

-

después de las apneas.) -

 Los tiempos de apnea.

-

Grado de confusión después del apnea.

-

Otros efectos.  El “punto critico”, se manifiesta por espasmos involuntarios del diagrama y cuando los esfuer esfuerzos zos volunt voluntari arios os por por detene detenerr el apnea apnea son son venci vencidos dos.. Lo Loss primer primeros os puede puedenn controlarse deglutiendo saliva.  La hiperventilación hiperventilación se obtiene ejecutando ejecutando 10 a 15 inspiraciones inspiraciones profundas, regulares y rápidas.  Procedimiento: A)

Un alumno respira normalmente, y realiza el apnea voluntaria al  al 

 final de una inspiración normal. El mismo alumnos después de un reposo por 30’  a 5’ realiza el apnea al final de una inspiración máxima. B)

Otro al alumno realiza ig iguales pa pasos, pe pero lo los ap apneas so son al al ffiinal de de

una espiración normal y una espiración máxima. C)

Un tercer alumno realizara las apneas: 1) Despu Después és de una inspi inspirac ració iónn máxi máxima, ma, 2) Hiperven Hiperventil tilando ando antes antes de de una una inspirac inspiración ión máxima. máxima.

Controles 1) Alum Alumno noss enca encarg rgad adoo de medi medirr los los tiem tiempo poss 2)

Alumnos Alumnos que registr registran an el pulso pulso y frecuenc frecuencia ia resp respirat iratoria oria..

3)

Alumn Alumnos os para registr registrar ar Efectos Efectos General Generales: es: sensac sensacio iones nes extrañ extrañas, as, mareos, mareos, equilibrio, visión, etc.

4)

Dos alumn alumnos os para para regist registrar rar el el grado grado de Confu Confusió sión: n: se trata trata de cont contar ar una una letra letra cualquie cualquierr (vocales (vocales de prefere preferencia ncia)) en un texto texto proporci proporcionad onado. o. De antemano se sabrá el número total de la letra solicitada, a fin de facilitar el  cálculo en porcentaje.

5)

Alumno Alumno que que anota anota los los datos datos obtenido obtenidoss en un cuadro cuadro compa comparati rativo. vo.

 RESULTADOS  •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones. 1. Correlat Correlatoo Clínico Clínico Fisiológ Fisiológico ico y/o y/o revisión revisión de semina seminarios rios.. 2. Revisi Revisión ón Teór Teórico ico – Prác Prácti tico. co.

 PRACTICA Nº 3 : CONVERSATORIO CLINICO FISIOLÓGICO: FISIOLÓGICO: ALCALOSIS   RESPIRATORIA  Historia Clínica:  Paciente : Femenino, de 31 años estudiante de preparatoria. Molestias principales: Ataque recurrentes de mareos, confusión, visión borrosa, sensación de hormigueo en los dedos de las manos y los pies o alrededor de los labios y “calambre” carpopedal (se trata de calambres característicos que afectan los pies y las manos).  Antecedentes:  Antecedentes: La paciente estudiaba preparatoria preparatoria para medicina en su ultimo año. Consultó en el serv servic icio io de Me Medi dici cina na Fami Famili liar ar del del Hosp Hospit ital al Univ Univer ersi sita tari rioo por por los los tras trasto torn rnos os mencionados. Su aspecto revelaba palidez y ansiedad, pero en otros aspectos era normal. Cuando se le interrogó acerca del momento en que aparecían esos episodios patológicos, se acla aclaro ro que que coin coinci cidí dían an con con peri period odos os de inte intens nsoo estu estudi dioo para para los los exám exámen enes es o con con el  vencimiento de los plazos para sus trabajos de graduación.  Examen clínico: La frecuencia cardiaca de la paciente, la presión arterial, la gasometría. El   pH y las concentraciones de los electrolitos séricos estuvieron en todos los casos dentro de los límites normales. En su electrocardiograma se detectó una arritmia sinusal normal, relacionada con la respiración. La radiografía del tórax demostró que los pulmones eran normales. Se sospecho que los síntomas de la paciente estaban en relación con la ansiedad y la tensión vinculadas con las ultimas horas de estudio y la presión de sus exámenes. Se le invi invito to a hiper hiperven venti tilar lar en forma forma volun voluntar taria ia duran durante te alg alguno unoss minuto minutos, s, con lo cual cual se reprodujeron los síntomas de su enfermedad. Comentarios: Comentarios: La hiperventilación hiperventilación cuando no hay una neuropatía neuropatía ni tampoco ciertas lesiones encefálicas, con frecuencia es una manifestación de ansiedad y tensión. Es habitual que el   paciente no advierta que esta hiperventilando, pero sufre las consecuencias de la alcalosis respiratoria producida por el aumento de la frecuencia y la profundidad de las respiraciones. Como el CO2 se elimina por los pulmones con mayor rapidez que la de su producción metabólica. metabólica. El PCO2 disminuye. Como estos ataques son en general de corta duración no es  posible que se produzca una compensación renal por la excreción renal de H CO 3 - y el pH  arte arteri rial al es alto alto.. Lo Loss sínt síntom omas as de la hipe hiperv rven enti tila laci ción ón (es (es deci decir, r, el sínd síndro rome me de hiperventilación) están en relación con los efectos de la hipocapnia (PCO 2 baja) y de la alcal alcalemi emia. a. El descen descenso so de la PCO2 arterial arterial produce produce una vasocons vasoconstric tricción ción cerebral cerebral y disminuye el flujo sanguíneo encefálico. Este trastorno se asocia con los mareos, con la visión borrosa y en algunos casos produce confusión; la sensación de hormigueo y los espasmos musculares reflejan el aumento de la irritabilidad y de la descarga espontánea de las fibras nerviosas, la alcalosis respiratoria produce esos síntomas porque disminuye el  calcio iónico.

Tratamiento: En este caso, la sola comprensión por parte de la paciente de cual era su   ppro robl blem emaa cons consti titu tuyó yó un trat tratam amie ient ntoo adec adecua uado do.. Se le expl explic icóó que que debí debíaa dism dismin inui uir  r  voluntariamente su ventilación, que debería contener la respiración por periodos breves o respirar en el interior interior de una bolsa de papel papel (volviendo (volviendo a respirar su propio CO 2 )  ) si es que volvía a experimentar la sensaciones que se asociaban con la alcalosis respiratoria. CAPITULO VI  FISIOLOGÍA RENAL  PRACTICA N° 1: MEDIO INTERNO INTERNO Y FUNCIONES: GLOMÉRULO- TUBULAR Fundamento:  El medio externo intercambia sustancias con el medio interno a través de la piel y los epitelios epitelios digestivos y respiratorios. respiratorios. Dentro del organismo sucede sucede igual entre los espacios extras e intracelular. Algunas sustancias se mueven por difusión simple, mientras otras requieren de transporte activo contra gradiente de concentración. La piel de la rana es muy  permeable al intercambio de solutos y/o solventes según el tipo de medio líquido que rodea modificando su espacio extra celular. Por último, los riñones reabsorben las sustancias con el fin de retornar el líquido extracelular a su normalidad. Objetivo:  Los estudiantes observan y comprueban –en ranas- el intercambio entre un medio líquido y el  organismo a través de la piel. Así Así mismo, deducen deducen e interpretan interpretan la función función de los riñones riñones estudiando los cambios en el volumen y composición de la orina.  Experimento y Procedimiento: Se colocan 3 ranas en sendos vasos o Beakers de 250 cc; conteniendo uno de ellos agua destilad destilada, a, el otro una una solució soluciónn hipertóni hipertónica ca de glucosa glucosa al 7.74% 7.74% y el tercero tercero con una una  solución hipertónica hipertónica de CINa al 1.36%. Además en el primer primer caso la rana recibirá recibirá 4 ml de  glucosa hipertónica inyectados en el saso linfático dorsal y sólo debe quedar sumergidos la  parte interior del cuerpo.  Pasos del Experimento: 1.

Obte Obtene nerr una una orin orinaa cont contro roll (Oc) (Oc) por por comp compre rens nsió iónn del del abdom abdomen en baj bajoo y/o y/o con con una una  pipeta a través de la cloaca y medir la Glucosa.

2.

Se cie cierr rraa la cloa cloaca ca de de la rana rana usa usand ndoo una pin pinza za simp simple le y una una li liga gadu dura ra.. Ajus Ajusta tarr lo  suficiente sin rasgar la piel del animal.

3.

Pesar Pesar la rana rana con con prec precisi isión ón de medio medio gramo gramo y anot anotar ar el peso peso en en el el cuad cuadro ro respe respect ctiv ivo. o.

4.

Inye Inyect ctar ar 4 ml de la solu soluci ción ón corr corres espo pond ndie ient ntee en el saco saco linf linfát átic icoo dors dorsal al (Pes (Pesar ar de nuevo la rana para comprobar que el líquido no se ha perdido).

5.

Se vier vierte tenn 5 ml ml de de la la solu soluci ción ón res respe pect ctiv ivaa en cada cada Bea Beark rker er de 250 250 c y se pon ponee la la rana rana en el medio líquido. Después de media hora:.

6.

Pasa Pasarr la ran ranaa cada cada 10 10 ó 15 minu minuto toss hast hastaa obte obtene nerr 3 peso pesoss casi casi igu igual ales es (Pk (Pk)) usar usar una una bolsa de plástico pero descontar su peso cada vez.

7.

Desl esligand gandoo la cloac oaca rec recoge oger la orina form formaada (Of (Of) para su est estudio dio, vaci aciando ando complemente la vejiga por comprensión.

8.

Pesa Pesarr la ran ranaa (Pf: (Pf: pes pesoo fi fina nal) l);; la dif difer eren enci ciaa entr entree este este pes pesoo y el pes pesoo ante anteri rior or (Pk (Pk)) es igual al peso o volumen de la orina formada. La diferencia entre Pi y Pk indica el  líquido ganado o perdido durante durante el el experimento experimento (menos el peso de la sustancia, sustancia, inyectando si es el caso).

9.

Cuantificar la la glucosa.

10. 10.

Come Coment ntar ar e inte interp rpre reta tarr el resu result ltad ado. o.

 RESULTADOS  •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

PRACTICA N° 2: PRUEBAS DE CONCENTRACIÓN Y DILUCIÓN

Fundamento:  En los mamíferos, el riñón es el órgano encargado de mantener la homeostasis hídrica del  organismo.   Esta labor se realiza bajo el comando de la Neurohipófisis quien envía su mensajero hormonal, la hormona antidiurética (HAD). De manera que podemos hablar de un sistema  HAD para la regularización hídrica.  Dicho sistema se activa activa bajo la influencia influencia de dos estímulos estímulos fundamentales: fundamentales: el volumen y la osmolaridad de los líquidos del medio interno. De ahí que la función renal tenga que ser  valorado estudiando los cambios de volumen y de la osmolaridad urinaria, los cuales se modificarán según la acción preponderante o combinada de los estímulos mencionados.   En el humano normal, por lo tanto, el estudio de la capacidad renal de emitir orina concentr concentrada ada o dilu diluida ida tiene también también la importanci importanciaa implicad implicadaa de permitirnos permitirnos evaluar evaluar el  estado actual del sistema HAD. Por la misma razón en Patología Clínica ayuda a investigar  una posible ruptura del sistema que ocurre cuando hay alteración a nivel de la neurohipófisis   y/o a nivel renal. De hecho la gran mayoría de enfermedades renales comprometen tal   función reguladora, que es una de las que primordialmente investiga el clínico, a la cabecera del enfermo.

Objetivo:  Evaluar la función tubular de la Nefrona . Nefrona .  Materiales: •

01 frasco limpio conteniendo un litro de agua potable.

•

01 frasco de diurésis.

•

01 probeta graduada de 10 ml. De capacidad.

•

01 densímetro urinario.

•

06 tubos de prueba.

 Procedimiento: 1. Someter Someter previa previament mente, e, al pacie paciente nte a una restr restricc icción ión hídric hídricaa no muy muy severa severa .   para esto se indica que desde el día anterior de la prueba, después del  almuerzo habitual, deje de ingerir líquidos o alimentos ricos en agua (frutas , etc.); la comida será de alimentos secos. 2. A las 08 pm. pm. Del mismo mismo día debe debe micciona miccionarr y eliminar eliminar la orina orina.. En adelante adelante,, toda orina evacuada deberá ser recolectada en un frasco limpio y seco hasta las 8 am. Del día siguiente, día de la prueba, hora en que se realiza la última micción. 3. Ya en el laborat laboratorio orio (consul (consultori torioo o la cabecera cabecera del pacie paciente) nte) se le le da de beber  beber  entre 15-20 ml. De agua potable por kilo de peso dependiendo de la condición del paciente. Después de lo cual espera la prosecución de la prueba en estado de reposo. 4. Con el control control adecuad adecuadoo del tiempo tiempo se colecta colecta la orina orina en periodos periodos de 20 min. min. c/u por micción espontánea, hasta completar cinco muestras. 5. A medi medida da que que se obti obtien enee las las mues muestr traas se mide mide su volu volume menn y dens densid idad ad,, anotándolos ordenadamente ordenadame nte en una tabla y con ellos se elabora una gráfica. 6. Volume Volumen(m n(ml) l)

Densi Densidad dad

V (ml/mi (ml/min) n)

O0

............................. .............................

............................ ............................

......................

O1

............................. .............................

............................ ............................

......................

O2

............................. .............................

............................ ............................

...................... ......................

O3

............................. .............................

............................ ............................

...................... ......................

O4

............................. .............................

............................ ............................

...................... ......................

etc

............................. .............................

............................ ............................

......................

O0

Corresponde a la muestra de orina de doce horas colectadas durante la noche.

7. Para Para un estu estudi dioo más más prec precis isoo se pued puedee obte obtene nerr una una mues muestr traa del del plas plasma ma  sanguíneo siguiendo siguiendo las pautas escritas en las normas para la DEPURACIÓN   DE LA CREATININA ENDÓGENA, así mismo y luego de medirlas como indicamos en una porción de la muestra es trasvasada en un tubo limpio y  seco, debidamente debidamente rotulado. El plasma y las muestras de orina son enviadas a un laboratorio que tenga posibilidades de medir su osmolaridad. 8.

Con los datos de osmolaridad plasmática de puede calcular el t c (Tubular de agua) y la depuración de agua libre aplicando las fórmulas:

9.

t c de agua libre = Depuración osmolar – V (Ahorro ( Ahorro efectivo efectivo de agua)

10. D de agua libre = V - Depuración Depuración osmolar (Eliminación (Eliminación de exceso exceso de agua) Si en una gráfica colocaremos colocaremos en las ordenadas los valores de t c  y de agua libre y en la abscisa el tiempo transcurrido, obtenemos un punto de entrecruzamiento que indica aprox aproxima imadam damen ente te el moment momentoo en que el organ organism ismoo alcan alcanza za el equil equilibr ibrio io hidro hidro –  osmótico.   En nuestr nuestroo lab labora orato torio rio conta contamos mos con un regis registr troo de numero numerosos sos casos casos norma normales les y  patológicos,  patológicos, algunos de los cuales serán tomados como ejemplos por los profesores Jefes de Prácticas para ilustrar acerca del manejo de los parámetros de osmolaridad. 8.

Para Para fines fines de la práct práctic icaa con la partic participa ipaci ción ón de los estudi estudiant antes, es, se hará hará las

adaptaciones necesarias de las pautas descritas.  PRACTICA N° 3: SEDIMENTO URINARIO

Fundamento:  El examen de la orina fue conocido desde tiempos de Hipócrates, pero los adelantos de la  Bioquímica  Bioquímica y el microscopio han hecho indispensable su estudio. Su análisis implica conocer  las características físicas : color, olor, aspecto, etc.); químicas : solutos, sales, etc.) y el    sedimento urinario que se realiza con el microscopio para reconocer células, cristales, cilindros y eventualmente otros hallazgos. Este estudio aporta importantes datos unas veces de afecciones extrarrenales y otras, los más frecuente, de renales (Glomerulares o de las vías urinarias). Objetivo:  El estudiante estudiante evalúa los resultados resultados de varios sedimentos sedimentos con diferentes diferentes muestras de orina y reconoce microscópicamente los elementos normales. Además, con datos proporcionados interpretará diferentes sedimentos urinarios.  Experimento y Procedimiento:

2.

Se obti obtien enen en vari varias as mues muestr tras as de orin orina, a, pref prefer eren ente teme ment ntee la la pri prime mera ra de la maña mañana na y de de  sujetos disímiles.

3.

Ll Lleenar nar ca cada tubo de pru prueeba con una una muest estra y mar marccarl arlo.

4.

Centrifugar a 3,000 pm por 10 min.

5.

Desc Descar arttar o el elimina minarr tod toda la ori orina de del tubo tubo dej dejaando ndo la par partte fina finall (1-2 (1-2 cms cms)) de donde con una pipeta Pasteur se obtienen unas gotas del sedimento obtenido por  centrifugación.

6.

Pone Ponerr en en una una lámi lámina na una una o dos dos got gotas as de la mue muestra stra de sedi sedime ment ntac ació iónn

7.

Obse Observ rvar ar al al micr micros osco copi pio. o. Tip Tipos os de cél célul ulas as,, cris crista tale les, s, cil cilin indr dros os (sí (sí los los hub hubie iere re)) y otros hallazgos y anotarlos.

Resultados •

 Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado de acuerdo a los valores normales.

•

 Elaborar conclusiones y recomendaciones.

 PRACTICA N°4: N°4: CONVERSATORIO INSUFICIENCIA RENAL  Paciente: Femenino,de  Paciente: Femenino,de 35 años.  Molestia  Molestia principal: principal: Dolor Dolor de garganta garganta,cef ,cefalea alea,fie ,fiebre, bre,pola polaquiu quiuria, ria,orin orinaa oscura oscura y edema edema  periférico.  Antecedentes: La paciente estuvo sana hasta una semana antes de ingresar,momento en que experimentó dolores de garganta,cefalea y fiebre.Al mismo tiempo presentó polaquiuria y urgencia miccional,así como edema periférico. Notó que la orina era oscura.  Examen clïnico: Los examenes de laboratorio laboratorio mostraron mostraron que el nitrógeno nitrógeno ureico sanguíneo (NUS) así como los valores de creatinina estaban aumentados. El valor de NUS era de 108 mg/dl (normal,8 a 25 mg/dl),y la creatinina de 12 mg/dl (normal,0.6 a 1.5 mg/dl.). Una acumulac acumulación ión de esta cantidad cantidad de deshecho deshechoss productos productos del metaboli metabolismo smo normal normal indi indica ca insuficiencia renal grave.  Las pruebas de proteinas en la orina dieron resultados positivos intensos. En el sedimento urinario urinario apareci aparecieron eron numerosos numerosos leucocit leucocitos,e os,erit ritroci rocitos tos también también abundant abundantes es y cilindr cilindros os eritrocitarios ocasionales(se trata de masas coaguladas que contienen eritrocitos). Ese grado de hemorragia urinaria indica que existe una lesión glomerular.   Los Los resul resulta tados dos de los estud estudios ios de sangre sangre mostr mostraro aronn las carac caracte terí rísti sticas cas del síndr síndrome ome nefrótico:Hipoproteinemia(proteinas plasmáticas totales,5.8 g/dl; normal,6 a 8.4 g/dl).Asi

como hipoalbuminemia (albúmina plasmática 2.5 g/dl; normal,3.5 a 5 g/dl). Los perfiles de electrolitos electrolitos

plasmáticos plasmáticos también también confirmaron la insuficie insuficiencia ncia renal:sodio 128 meq/litro meq/litro

(normal,135 a 145 meq/litro); cloruro,96meq/litro(normal,100 a 106 meq/litro); potasio,6.5 meq/litro(normal,3.5 a 5 meq/litro); bicarbonato,16 mmol/litro(normal,24 a 30 mmol/litro).  El valor elevado del potasio produjo produjo ondas T ligeramente ligeramente picudas en el electrocard electrocardiograma. iograma.  La baja concentración de bicarbonato indica que existe academia,pero para confirmar este dato se necesita efectuar una gasometría. Tratamiento: Se administró a la paciente una dieta hiperproteica y baja en potasio y se comenzó con las diálisis peritoneales. peritoneales. A los seis días ,el NUS era de 48 mg/dl, y la creatinina   sérica de 7 mg/dl. Se realizó una biopsia renal y la microscopía electrónica del tejido extraido mostró lesiones tubulares extensas. En muchos túmulos existía disrupción de la membrana basal,degenerac basal,degeneración ión del epitelio epitelio y necrosis celular. celular. A pesar del bajo valor valor de la diuresis( menor de 200 ml/día )la pérdida de las proteinas siguió siguió siendo alta(5 a 10   g/día g/día). ). Se admin administ istró ró predni prednison sona,g a,glu lucoc cocort ortico icoide ide sinté sintéti tico, co,con con el fi finn de ayudar ayudar a la regeneración tubular. Después de ocho días se suspendieron las diálisis. A medida que la   función renal mejoraba las cifras de NUS y de creatinina se normalizaron y también disminuyó la pérdida de proteinas.  La dosis de prednisona se fue disminuyendo en forma logarítmica y a los tres meses se  suspendió.  Resultado: Seis meses después de haber comenzado el tratamiento,la función renal de la  paciente era normal y no presentaba proteinuria.

CAPITULO VII  FISIOLOGÍA DEL APARATO DIGESTIVO  PRACTICA N° 1: MOTILIDAD INTESTINAL Fundamento:  Los sistemas y órganos del cuerpo están regulados por el sistema nervioso autónomo o vegetativo: simpático y parasimpático, que tienen acciones opuestas pero una de ellos es

 predominante.  predominante. Así en el tubo digestivo el sistema parasimpático mediado por la acetil colina es responsable tanto de la motilidad como de sus secreciones. a. Estructura del tubo digestivo : Presenta las siguientes capas: -

Capa serosa.

-

Capa muscular longitudinal externa

-

Capa muscular circular interna

-

 La muscularis mucosae

-

Mucosa

b. Inervación: La inervación eferente es de dos clases: •

 Inervación extrínseca a través de las fibras simpáticas y parasimpáticas.

•

  Ine Inerv rvac ació iónn Intr Intrín ínse seca ca,, repr repres esen enta tada da por por los los plex plexos os nerv nervio ioso soss enté entéri rico cos, s, se encuentran encuentran en la pared intestinal, principalmente: principalmente: El plexo mientérico mientérico o Auerbach y el plexo submucoso o el de Meisner.

c. Fisiología:  La inervación extrínseca no origina actividad pero si lo regula y lo modifica en cambio la inervación intrínseca inicia la actividad.  La estimulación de las fibras simpáticas simpáticas va seguido de inhibición de la motilidad motilidad intestinal y de la secreción glandular.  En la estimulación del parasimpático el efecto es todo lo contrario. La

regu regula laci ción ón

anexas anexas

al

tubo tubo

de

la

secr secrec eció ión n

digest digestivo ivo, ,

de

obedec obedece e

las las a

dife difere rent ntes es

estímu estímulos los

glán glándu dula las s

nervio nerviosos sos, ,

a

mediadores químicos y a factores humorales.

Objetivo:  Los estudiantes observarán y modificarán el peristaltismo de un fragmento intestinal con  sustancias pasimpaticomiméticas, parasimpaticolíticas y simpaticomiméticas.  Materiales: -

Segmento de intestino de conejo

-

 Acetil colina

-

 Pilocarpina

-

 Adrenalina

-

 Atropina

-

Termostato

-

Solución de Ringer.

 Procedimiento:

-

 Laparotomizado un conejo, extraer un segmento de intestino delgado.

-

Observar sus movimientos espontáneos.

-

 Acondicionar  Acondicionar el segmento de intestino intestino en la solución de Ringer temperada (40°C) y oxigenada (hacer burbujear 02). a.

Observ Observar ar los los movi movimie miento ntoss del del inte intesti stino no del delgad gadoo y regis registra trar. r.

b.

Deja Dejarr caer caer una una gota gota de aceti acetill coli colina na en la pare paredd supe superi rior or del del inte intest stin inoo y observar resultados.

c.

Dejar Dejar caer caer una una gota gota de adren adrenal alina ina en en la pared pared supe superio riorr del int intest estino ino y obse observa rvar  r  resultados.

d.

Dejar Dejar caer caer unas unas got gotas as de de pil piloca ocarpi rpina na y observ observar ar resu result ltado ados. s.

e.

En el momen momento to de de máxima máxima contra contracci cción ón deja dejarr caer caer una got gotas as de de atrop atropina ina..

 PRACTICA : DIGESTION DE CARBOHIDRATOS: GENERALIDADES:   Los Los princ principa ipale less carbo carbohi hidra drato toss de la dieta dieta son los los pol polisa isacár cárid idos, os, disac disacári áridos dos y monosacáridos. monosacáridos. El almidón y el glucógeno (polisacáridos (polisacáridos cuyas moléculas está formadas por  unas 1000 moléculas de glucosa que se encuentran unidas mediante enlaces glucosídicos α  :1-4) y sus derivados, son los únicos polisacáridos que son digeridos en todos los grados en el aparato digestivo humano. Casi todos los carbohidratos de la dieta son grandes polimeros o polisacáridos, combinaciones de muchos monosacáridos unidos por condensación. Esto significa que uno de los monosacáridos pierde un grupo hidroxilo mientras otro pierde un ión H+. Ello  produce la combinación de ambos monosacáridos en los sitios donde se perdieron estos radicales, además el hidrógeno y el hidroxilo se combinan para formar agua. Cuando los carbohidratos son digeridos, se convierten de nuevo en monosacáridos  gracias a la acción de enzimas específicas que restituyen los iones hidrógeno e hidroxilos  perdidos, con lo que se separan los monosacáridos . Este mecanismo recibe el nombre de hidrólisis (degradación por la introducción de una molécula de agua )  DIGESTION DE CARBOHIDRATOS EN LA BOCA Y EL ESTOMAGO:  Durante la masticación el almidon es atacado por la ptialina, la amilasa de la saliva,  secretada principalmente por las glándulas parótidas. Esta enzima hidroliza al almidón hasta el disacárido disacárido maltosa y otros polímeros polímeros pequeños de la glucosa que contienen contienen de 3 a 8 moléculas moléculas de ésta (como maltoriosa y la molécula del almidón).

α 

-dextrina-limites, -dextrina-limites, que son los puntos ramificados de

 El alimento se conserva conserva en la boca durante durante un período breve, breve, y probablemente probablemente no se hidrolizan del 3 al 5% de todos los almidones que se están comiendo hasta el momento en que ocurre la deglución. Sin embargo, la digestión continúa en el cuerpo y el fondo del  estómago durante períodos de hasta una hora, hasta que el alimento es mezclado con las  secreciones  secreciones gástricas. El pH óptimo para para la ptialina es 6.7 y su acción es inhibida inhibida por el   jugo gástrico ácido cuando el alimento pasa al estómago y se mezcla con el jugo gástrico.  De todas maneras, antes antes de que el alimento se haya mezclado mezclado por completo completo con la  secreción gástrica, se habrán hidrolizado, principalmente hasta maltosa, de un 30 a 40% de los almidones.  DIGESTION DE LOS CARHIDRATOS EN EL INTESTINO DELGADO.  Digestión por la Amilasa Pancreática.  El almidón contenido en los alimentos no puede absorberse tal como llega porque las células intestinales no absorben polisacáridos ni moléculas con enlace alfa-glucosídicos. alfa-glucosídicos .  La secreción pancreática, al igual que la salival, contiene gran cantidad de alfaamilasa, que es casi identica en su función a la alfa-amilasa de la saliva pero varias veces más potente. Por tanto, aproximadamente entre 25 a 39 minutos depúés de vaciarse el quimo del estómago hacia el duodeno y de mezclarse con el jugo pancreático, todos los almidones  son digeridos.  En general, los almidones se convierten convierten casi en su totalidad totalidad en el disacárido maltosa, el trisacárico maltotriosa, algunos polímeros algo mayores y las alfa-dextrinas limitantes,   polímeros que contienen un promedio aproximado de 8 moléculas de glucosa, antes de alcanzar el yeyuno.  La porción externa del borde en cepillo del intestino delgado contiene enzimas: La alfa-dextrinasa alfa-dextrinasa limitante hidroliza a las alfa-dextrinas alfa-dextrinas limitantes y la maltasa y glucoamilasa glucoamilasa desdobla a la maltosa, maltotriosa y otros polímeros de la glucosa.   La lactosa lactosa es hid hidrol roliza izada da por la lacta lactasa, sa, desdobl desdoblánd ándose ose en una moléc molécula ula de  galactosa y otra de glucosa. La sacarosa, hidrolizada por la sacarasa, se desdobla en una molécula de fructosa y otra de glucosa. Asi pues, los productos productos finales de la digestión digestión de los carbohidratos son los monosacáridos, que son absorbidos inmediatamente hacia la sangre del sistema portal. CONTROL DE LA SECRECION SALIVAL  Las glándulas salivales están controladas por señales nerviosas parasimpáticas de los nucleos salivales. salivales. Estos núcleos se encuentran aproximadamente aproximadamente en el límite entre el bulbo y  protuberancia, y son activados por estímulos de sabor o de tacto en la lengua u otras zonas de la boca.   LLaa mayo mayorr part partee de los los estí estímu mulo loss gust gustat ativ ivos os,, espe especi cial alme ment ntee el sabo saborr acid acido, o, desencadenan una copiosa secreción de saliva, frecuentemente hasta de 5 a 6 ml/min, o sea 8 a 20 veces el ritmo basal de secreción .

Ciertos estímulos tactiles, como la presencia en la boca de ciertos objetos lisos (por  ejemplo, una esferita de vidrio) provocan salivación copiosa; en tanto que objetos ásperos  producen menos salivación, o incluso inhiben su secreción.  Los alimentos causan secreción refleja de saliva en la boca, igual que la estimulación de fibras vagales aferentes situados en la porción gastroesofágica. La secreción salival se condiciona fácilmente, como fue demostradop por los originales experimentos de PAVLOV.  En el hombre, la vista, el olfato,y aún la idea de un alimento pueden causar secreción de  saliva (“Se agua la boca”)  PRACTICA: FUNDAMENTO:  El lugol permite reconocer la presencia del almidón en una muestra (galleta, pan,  fideos, etc.)por contener contener yodo que al reaccionar reaccionar con el almidón , forma yoduro yoduro de almidón de color azul negruzco. Al tomar en contacto la saliva con el almidón, la ptialina hidroliza almidón hasta maltosa y si ahora repetimos la prueba del lugol, veremos que la reacción es más débil y a veces ya negativa..  El reactiv reactivoo de Benedict Benedict permite permite reconoc reconocer er un azúcar azúcar reductor reductor ( Monosacá Monosacárido ridoss y disacáridos) por la reducción del ión cúprico a cuproso (el ión cúprico da una coloración azul-cel azul-celeste este y a medida medida que se reduce va cambiando cambiando el color , primero primero a verde, verde, luego al  amarillo, al anaranjdo y finalmente si hay mucha cantidad de glucosa se obtendrá un color  rojo ladrillo). Si dejamos actuar las enzimas pancreáticas e intestinales (existen preparados   farmace farmaceúti úticos) cos) sobre sobre el almidón almidón podremo podremoss detectar detectar la apari aparición ción de monosa monosacári cáridos dos y disacáridos usando el reactivo de Benedict. OBJETIVOS  a) Demostrar la digestión digestión del del almidón almidón por la amilasa amilasa salival salival (Ptialina). (Ptialina). b) Demostrar la digestión digestión de los carbohidratos carbohidratos por enzimas intestinales intestinales (Digezym).  PROCEDIMIENTO 1:  Digestión del almidón por la amilasa salival (Ptialina): 1.- Preparar 100 cc de solución de almidón al 1% 2.- En un tubo de ensayos colocar 2 cc de solución de almidón al 1% y añadir 2 gotas de lugol. Este tubo será el tubo testigo que servirá para comparar con los demás tubos. 3.- En un tubo de ensayos coleccionar 5 cc de saliva y agregarle 4 cc de solución de almidón al 1%. Agitar, para lograr un contacto adecuado entre el substrato(almidón)  y la enzima(ptialina)   La hidró hidróli lisis sis que que se ll llev evará ará a cabo cabo podrá podrá evide evidenci nciars arsee proce procedi diend endoo del   siguiente modo: a) En un tubo de ensay ensayos os coloc colocar ar 2 ml de mezcla mezcla de saliva saliva con almid almidón ón y  practicar la reacción de lugol. Observar el cambio producido. b) Cada Cada 2 minu minuto toss repe repeti tirr la prue prueba ba de lugo lugoll hast hastaa comp comple leta tarr 4 tubo tubos. s. Observar los cambios de coloración comparando con el tubo testigo.  PROCEDIMIENTO 2:

 Digestión del almidón por un preparado enzimático: 1.- En un tubo de ensayos colocar 5 cc de suero fisiológico y agregarle el contenido de una cápsula de DIGEZYM, un preparado enzimático farmacéutico que contiene enzimas de tipo pancreáticas e intestinales y agitar . Luego agregarle 5 cc de solución de almidón al 1% y mezclar. 2.- En otro tubo de ensayos colocar 2 cc de la mezcla del tubo anterior y añadirle 2 cc de Reactivo de benedict, luego calentar hasta la ebullición. 3.- Repetir la reacción de Benedict cada 2 minutos hasta un total de 4 tubos. 4.- Comentar los resultados.  PRACTICA Nº 2 CONVERSATORIO CLINICO CLINICO FISIOLÓGICO: ÚLCERA ÚLCERA PÉPTICA   PRA PRACT CTIC ICA A Nº 3

CONVE ONVER RSAT SATORI ORIO CLIN CLINIICO FISI ISIOLÓG OLÓGIC ICO: O: LIT LITIAS IASIS 

VESICULAR