Examen de heces
Dr. J. Jorge Huamán Saavedra Doctor en Medicina, Patólogo Clínico Prof. Principal Medicina Ex Jefe Serv.Patología Clínica H.V.Lazarte E. Trujillo, PerúPerú2009 www.biolabclijhs.blogspot.com
Examen fisico
Consistencia.. Normal: sólida y formada, es decir cilíndric Consistencia cilíndrica a y consistente. Estreñimiento Estreñimien to :duras y secas, esféricas o caprinas. Diarreas: progresivamente progresivamente blandas y no formadas, semilíquidas y líquidas Color . Normal: pardo más o menos oscuro en el adulto. En los lactantes es de color amarillo Verdoso:.verduras( Verdoso:.verdu ras( espinacas, especialmente) , Negrusco:Moras Negrusco:Mora s , calamares Alteraciones. BlancoBlanco -grisáceas -grisáceas (hipocolia ) en las ictericias obstructivas; amarillentas amarillentas en la esteatorrea; rojizas por hemorragia digestiva baja (hemorroides, tumor de colon distal,etc) ; negras negras : melena,h melena,hemorragia emorragia digestiva alta
Examen fisico
Consistencia.. Normal: sólida y formada, es decir cilíndric Consistencia cilíndrica a y consistente. Estreñimiento Estreñimien to :duras y secas, esféricas o caprinas. Diarreas: progresivamente progresivamente blandas y no formadas, semilíquidas y líquidas Color . Normal: pardo más o menos oscuro en el adulto. En los lactantes es de color amarillo Verdoso:.verduras( Verdoso:.verdu ras( espinacas, especialmente) , Negrusco:Moras Negrusco:Mora s , calamares Alteraciones. BlancoBlanco -grisáceas -grisáceas (hipocolia ) en las ictericias obstructivas; amarillentas amarillentas en la esteatorrea; rojizas por hemorragia digestiva baja (hemorroides, tumor de colon distal,etc) ; negras negras : melena,h melena,hemorragia emorragia digestiva alta
Examen físico
Presencia de sangre: sangre : sangrado inferior , infecciones bacterianas bacterianas (E.coli, Shigella, yersinia,etc)
Moco:: suele ser reconocible macroscópicamente. Moco
Dividido
en forma fina y mezclado m ezclado con las heces :intestino delgado
Copos
o tiras: colon
Con sangre o pus : proceso inflamatorio más o menos intenso (enteritis y colitis)
ENTEROPARASITOSIS
Alta incidencia por condiciones desfavorables de higiene
34% niños entre 1 - 4 a años ños
Menor rendimiento escolar de niños
Menor capacidad de trabajo en el adulto
Clasificación:
HELMINTOS:
PROTOZOARIOS
Nematelmintos Platelmintos
ETAPAS DEL PARASITISMO Infecciosa Establecimiento Transmisibilidad Eliminación
del Hospedero
DIAGNOSTICO
Parasitológico
Parásitos más frecuentes Protozoarios: coli (quistes Entamoeba coli (quistes trofozoítos y quistes ) ,Giardia lamblia ( trofozoítos trofozoítos y quistes) Entamoeba histolítica ( trofozoítos Trichomona hominis (trofozoíto) Criptosporidium (quistes) Blastocystis Ciclospora Isospora
Parasitológico
Helmintos:
Himenolepis Ascaris
huevos) nana ( huevos)
lumbricoides( huevos) huevos)
Diphilobotrium Taenia
pacificum (huevos operculados)
saginata y T.solium (huevos iguales)
Trichuris trichura (huevos)
Strongyloides
stercolaris (larvas)
Anchilostoma
duodenale ( huevos) huevos)
Formas Ev olutiv as Eliminadas HELMINTOS HUEVOS: - Ascaris lumbricoides
LARVAS:
- Strongyloides estercolaris
-Trichuris Trichiura -Enterobius vermicularis - Ancylostoma duodenale -Necator americanus -Taenia Solium -Taenia saginata -Hymenolopsis nana -Schistosoma mansoni
VERMES ADULTOS: - Ascaris lumbricoides - Taenia sp (proglotes) -Enterobius vermicularis
Formas Ev olutiv as Eliminadas PROTOZOARIOS CISTOS/TROFOZOITOS:
G iardia
lamblia
Entamoeba histolytica Balantidium Coli Endolimax nana Iodomoeba Schilomastix Blasstocistys hominis
Formas Evolutivas Eliminadas PROTOZOARIOS COCCIDIOS: COCCIDIOS: Ooquistes
Cryptosporidium Cyclospora Isospora belli
MICROSPORIDIOS: Espora
Enterocytozoon bieneusi Encephalitozoon
EXAMEN COPROPARASITOLOGICO
TOMA DE MUESTRA: MUESTRA: Heces líquidas o sólidas Recipiente: tapa rosca No exámenes radiológicos con medio de contraste No Purgantes Purgantes,, Antiácidos, Antiácidos, p preparados reparados de bario y bismuto, antidiarreicos por lo menos 1 semana. Número de muestras: tres diarias o alternos. No > 10 d. No ablandadores de heces Seguimiento varía con el diagnóstico:Helmintos: 1 - 2 semanas Protozoarios: 3 - 4 semanas Taeniasis: 5 a 6 semanas. FORMA DE COLECTA: ECTA: Fresco Preservado: temporal en el refrigerado; permanente mezclado uno por tres al fijador: alcohol polivilínico, formol o mertiolatomertiolato -yodoyodo-formol (MIF)
PRESERVANTES DE MUESTRAS DE HECES PRESERVANTE FORMOL 10%
VENTAJAS
DESVENTAJAS
- Fácil de preprarar - Largo periódo de vida - Buen preservante de la morfología
- Inadecuada preservación de la morfología de los trofozoitos protozoarios
- Adecuado para procedimientos de concentración y microscopia de Fluorescencia
-Puede interferir con PCR
- Adecuada para coloración rápida, safranina y cromotrope - Adecuada para Kits de inmunoensayos -Fijador y colorante
MIF: -Merthiolate - Yodo Yodo
-Fácil de preparar -Largo periodo de vida -Conveniente para procedimientos de concentración
-Formol
± LV ±
PVA
(Polyvinyl alcohol de baja viscosidad)
-Buen preservante de la morfología del trofozoitos y quistes de los protozoarios -Preparación fácil de coloraciones permanentes, como tricromo -Muestras preservadas pueden permanecer estables por muchos meses
- Inadecuada preservación de la morfología de los trofozoitos protozoarios -Interfiere el yodo con otras coloraciones y fluorescencia - Inadecuado para preservar morfología de larvas, huevos de helmintos, coccidios y microspora -No se puede preparar en el laboratorio - Inadecuado para métodos de concentración - Inadecuado para Kits de inmunoensayos - Inadecuado para coloraciones: ácido rápido, safranina, y cromotrope
TIEMPO DE INICIO DE PROCESAMIENTO
La muestra liquidas debe ser trabajada durante los 30 minutos de su evacuación.
Los trofozoitos se degeneran Los huevos de los helmintos se reducen por el factor de dilución.
Las muestras semilíquidas durante la hora de ser evacuadas.
Las muestras sólidas durante la 24 horas de ser evacuadas.
EXAMEN DIRECTO EN HECES EXAMEN MACROSCOPICO: -
Permite observar las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados
-
Permite describir las características organolépticas de las heces
EXAMEN MICROSCOPICO TECNICA del examen Dir ecto: cto: 1. Materiales: * Cloruro de sodio 0,85 % * Lugol * Lamina y laminilla 2. Preparación: - Se emulsiona estas preparaciones con las heces - Se observa al microscopio
EXAMEN DIRECTO EN HECES EXAMEN MICROSCOPICO METODOS CUALITATIVOS 1. Examen Dir ecto -
Buscar formas evolutivas, móviles de los parásitos (trofozoitos o quistes de protozoos y larvas o huevos de helmintos)
-
Es un método rápido, sencillo, económico
-
Rendimiento: pobre por la pequeña cantidad de heces
EXAMEN DIRECTO
Examen microscópico Solución salina (NaCl 0.85%): se mezcla una pequeña porción de heces con una gota de solución salina , se coloca entre lamina y laminilla , se observa al microscopio, primero a menor aumento y luego a mayor aumento. Se buscan:larvas de helmintos, trofozoítos de protozoarios móviles Lugol: se mezcla una pequeña porción de heces con una gota de lugol, se coloca entre lamina y laminilla , se observa al microscopio, primero a menor aumento y luego a mayor aumento. Se buscan:quistes de protozoarios y huevos de helmintos Formas adultas
EXAMEN MICROSCOPICO M ETODOS 2.
CUALITATIVOS
Concentración:
-
Los trofozoitos, quistes, ooquistes, larvas y huevos pueden concentrarse por diversos procedimientos
-
Detectan 40 % - 50% más que el Método Directo
-
Puede ser por SEDIMENTACION, FLOTACION o combinación de ambos
CONCENTRACION
2.1 SEDIMENTACION: SEDIMENTACION: a) Expontanea: gravedad -
Lutz 1919
-
Hoffmann, Pons y Janer 1934
b) Centrifugación - MATERIAL FIJADO -
Blagg et al 1955: MI F
-
Ritchie 1948: formalinaformalina -eter al 10%
CONCENTRACION 2.2 FLOTACION: a) Simple
- Willis 1921:
Solución saturada (ClNa) Densidad 1120 Alta sensibilidad para para:: A. duodenale, N. americanus, A. lumbricoides, H. nana
b) Centrifugación ± ± Flotación - Faust y col 1938: ZnSO4 al 33% Densidad 1180 Quistes de protozoarios Necator, tricocéfalos, ascaris, H. nana
EXAMEN MICROSCOPICO 3. Técnicas Especiales Especiales:: a) Graham 1941: Cinta adhesiva -
Para enterobius vermicularis
b) Boermann 1917 - Sensible para diagnóstico diagnóstico de S.stercolaris LARVAS TERMOHIDROPISMO
EXAMEN MICROSCOPICO M ETODOS
-
CUALITATIVOS Y CUANTITATIVOS
Valora la intensidad del parasitismo
KATOATO-KATZ
1972
Permite cuantificar la presencia de huevos de helmintos.
Se expresa en número de huevos por gramo de heces (hpg)
TECNICAS DE TINCION
Fijación
Coloración: Hematoxilina férrica Tricrómica Ziehl Neelsenn modificada
Dependen de:
: Schaudinn, formalina, PVA
Capacidad y experiencia de los técnicos Substancias que interfieren: -antibióticos -antiácidos -laxantes
ZEIHL NEELSEN Modificado
Para la identificación de ooquistes de coccidios (Cryptosporidium, Isospora y Cyclospora)
Muestra: ± Heces: Sedimento de concentración, fresca o preservada en formol ± Otras tales como fluido duodenal, biliar, pulmonar
Entamoeba histolytica
Giardia
lamblia
Huevos de nemátodes intestinales
Huevo de Ascaris lumbricoides
Huevo infértil de Ascaris lumbricoides
Huevos de Ancylostoma duodenale
Huevo de Taenia (solium, saginata)
Himenolepis nana
Huevo de Himenolepis diminuta
Huevo de Dyphylobothrium
Larva de Strongyloides stercolaris
Test de Graham (P.del parche)
Procedimiento para toma de muestra: antes de que el niño despierte y a primera hora de la mañana ,colocar un pedazo de cinta adhesiva transparente en el borde perianal por 5 minutos. Sacar la cinta y adherirla en una lámina portaobjeto. Evitar los dobleces. Llevar al laboratorio envuelta Examen microscópico: investigación de huevos larvados de Enterobius vermicularis a menor y a a mayor aumento
Huevo de Enterobius vermicularis
Enterobius vermicularis
Reacción inflamatoria en heces: moco fecal
Muestra: moco fecal Colocar en lámina portaobjeto una porción de moco fecal. Agregar solución salina. Colocar cubre objeto. Observar al microscopio Emplear nueva muestra y colorear con lugol. Nueva muestra y colorear con cristal violeta o azul de metileno
Moco fecal
Informar total de leucocitos y % de polimorfonucleares (PMN) Negativo: 0 por campo Dudoso: 1 a 20 por campo (algunos hasta 10) Positivo: >20 por campo (algunos >10)predominio de PMN. Puede llegar a campo cubierto Indicación: diagnóstico rápido de infección bacteriana Positivo: Salmonella, Shigella, Campylobacter, Yersinia, E coli. invasivo . Negativo: toxinas ( estafilococos, V.cholerae, E. colo enterotoxigénico, Cl. perfringes): colitis asociada a antibióticos (Cl. Dificcile), diarrea por parásitos o virus, colitis ulcerosa
Examen Coprofuncional
Restos alimentarios Fibras musculares: normalmente unas pocas sueltas, apenas reconocibles como tales , sin estriación transversal y redondeadas. Fibras estriadas de carne poco modificada sugieren un defecto e la digestión proteica o creatorrea, cuya causa es la insuficiencia pancreática Almidón. Amilorrea: restos de almidón sin digerir en las heces, que con lugol aparecen de color azul. Tránsito acelerado a través del colón Grasas (Esteatorrea): Puede apreciarse macroscópicamente si es muy abundante. En la preparación microscópica :con Sudán III se tiñe de rojo los glóbulos de grasa. Causas: deficiencia de enzimas pancreáticas ( pancreatitis crónica, fibrosis quística del páncreas) o enteropatías (enfermedad celiaca, enfermedad de Whipple,etc)
Azúcar reductor: lactosa (reacción de benedict) Importante en estudio de diarreas en lactantes: intolerancia a la lactosa, sindrome de mala absorción pH : aporta información sobre una posible malabsorción de hidratos de carbono como causa de diarrea y fermentación en el colón por la flora bacteriana y como consecuencia los ácidos grasos de cadena corta liberan acidifican el pH y lo disminuyen por debajo de 6
Reacción de Thevenon en heces
Se usa para investigación de sangre oculta Dieta tres días sin carne,sin alimentos ricos en hierro.Evitar fármacos irritantes gástricos Conviene repetir la prueba Métodos diversos: piramidón, tiras,etc Importancia en estudio de anemias crónicas por sospecha de sangrado oculto en vía digestiva: úlcera, cáncer de estómago, cáncer de colon
Examen bacteriológico
Examen directo: gram. Investigación de Vibrio cholerae Coprocultivo. ± Muestra: evitar la mezcla con la orina y una vez obtenida debe introducirse en frasco estéril y llevarlo al laboratorio antes de las 2 hotras de obtenida.. La toma de muestra debe hacerse antes de iniciar el tratamiento antimicrobiano o después de 3 a 4 días de heberse suspendido. La toma de muestra en un lactante consistirá en un hisopado rectal.En el caso de que el tiempo entre la obtención de a muestra y la llegada al laboratorio sea mayor de 2 horas emplear medio de tansporte de Cary Blair( 1 gr de heces por 10 ml ) ± Procedimiento:Medios: Procedimiento:Medios: Mc Conkey, S S--S, XLD, Caldo de selenito. En el MacConkey las colonias aisladas pueden ser: ser :Lactosa Lactosa positivo: E.coli ó Lactosa negativo: Salmonella, Shigella
Diferenciación bioquímica: TSI, Urea, SIM(indol, movilidad), LIA. Lectura e identificación según tablas Tipificación serológica. E.coli, Salmonella, Shiguella Antibiograma
Si se sospecha Vibrio: TC BS y serología Inaba y Ogawa A Agentes más frecuentes: E coli (enteropatógeno, enteroinvasivo, enterotoxigénico, enterohemorrágico) Salmonella tiphy, Salmonella paratiphy A y B Shigella flexneri,etc. Campilobacter. Vibrio cholerae(epidemia)
