UNIVERSIDAD NACIONAL DE CAJAMARCA
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE AGRONOMÍA
ETIOLOGIA DE FITOPATOGENOS DE CAPULI (Pr unus unus s erotina rotina) ALUMNO
ARANA DIONISIO KAREN JANIS JANIS
ASESORES DR. ING. MANUEL SALOMÓN RONCAL ORDOÑEZ ING. TERESITA DEL NIÑO JESÚS MORENO HUAMÁN
ASIGNATURA FITOPATOLOGÍA GENERAL
CAJAMARCA - PERÚ
2014 1
INDICE CONTENIDO
PÁGINA
I.
INTRODUCCIÓN:……………………………………………… INTRODUCCIÓN:………………… ………………………………………………5 …………………5
II.
REVISIÓN DE L ITERATURA……………………………………………………6
III.
MATERIALES Y MÉTODOS…………………… MÉTODOS…………………………………….………… ……………….……………..11 …..11
IV.
RESULTADOS Y DISCUSIONES…………………………………………….13
V.
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES………………………………..18
VI.
RESUMEN……………………………………………………………………….19
VII.
LITERATUR A CITADA……………………………………………… CITADA…………………………………………………………..20 …………..20
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DEDICATORIA
A mis padres Alejandro y Victoria, por brindarme sus consejos, comprensión y cariño y por ser la fuerza constante en mi formación académica. A mis hermanas Fiorella y Janis quienes por alentarme siempre a lograr mis metas.
Para todos mis compañeros, quienes con valor y esmero se superan cada día, esperando este trabajo les sirva de alguna ayuda en investigaciones posteriores.
3
AGRADECIMIENTO
A Dios señor de la vida, quien determina mi camino para seguir adelante,
y cumplir las metas
trazadas y mejorar cada día. Al Ing. M.Sc. Manuel Salomón Roncal Ordóñez, por su buena voluntad, dedicación y esfuerzo para
compartir
conocimientos. A la Ing. Teresita Moreno Huamán, por
su apoyo constante
manejo
de
laboratorio,
en el
instrumentos de además
por
sus
consejos para la debida ejecución del
presente
trabajo
de
investigación.
4
sus
CAPITULO I INTRODUCCIÓN El capulí (Prunus serotina) como forestal frutícola, se encuentra distribuido en América desde el sur de México hasta el norte de Argentina. (CALZADA, J. 1980) En la sierra del Perú la planta prospera en forma natural; destacando su utilidad a partir de los tres años de edad, por sus frutos de agradable sabor, los que son comercializados en los mercados de los distritos y provincias del norte peruano. Como todo ser vivo, este forestal andino, en las primeras etapas de crecimiento y desarrollo, bajo las condiciones de propagación de vivero es atacado por diferentes patógenos
fungosos,
destacando
la
necrosis
foliares
producidos
por
microorganismos de diferente etiología. Además se tiene conocimiento que la defoliación conduce a un debilitamiento prematuro, con co nsecuencias irreversibles, ya que en este estado las plántulas y plantones se muestran más susceptibles al ataque de insectos plaga y otros patógenos (Roncal, M 2004). Entre los fitopatógeno que ocasionan las manchas foliares que se encontraron están Alternaria sp, Tranzschelia capulí, Scolecotrichum, Taphrina andina. Darluca sp, Y
el controlador biológico de la roya Darluca sp. Así como la fanerógama parásita Tripodanthus acutifolius.
Objetivo Determinar la etiología que causan las manchas foliares en capulí (Prunus serotina)
CAPITULO II 5
REVISION DE LITERATURA 2.10 Enfermedades del capulí 2.10.1 Roya en capulí 2.10.1.1 Morfofisiología de Tranzschelia capulí . Tranzschelia capuli , es un patógeno autoico; desarrolla sus diferentes estadios de
su ciclo biológico sólo en el envés de las hojas. Estadío Uredo, fase de multiplicación del hongo presenta esporas brillantemente unicelulares conocidas como uredosporas que presentan pared y membrana celular pronunciada, destacando la pared como un tejido compacto, estructura de color marrón. Ocasiona la muerte del hospedero. La pústulas felposas contienen uredosporas unicelulares equinuladas, ovaladas, algunas algo cónicas. Estadío Telia, ocurrida la muerte del tejido infectado del hospedero, el patógeno se transforma morfo y fisiológicamente dando origen a esporas bicelulares, de color marrón, dispuestas en un pedicelo frágil de color amarillo. Cada célula presenta equinulaciones bastante pronunciadas, con limitación total de su fisiología. Las pústulas se colorean de negro y en su interior se disponen las teliosporas cubiertas de doble pared.
2.10.1.2 Patogenicidad Tranzs chelia capulí. Las royas con pigmentaciones vistosas (amarillo, anaranjado, rojo) se relacionan con el estado de máxima actividad Uredo. Estas matan por toxinas. En cambio al estado de conservación fase telia, de color marrón oscuro a negro.
2.10.1.3 Patogénesis de Tranzschelia capulí. Las síntomas solo ocurren en el envés de las hojas. Las primeras infecciones aparecen como pequeños puntitos cloróticos abultados de 0,5 m m de diámetro, que terminan necrosándose. Las pústulas felposas contienen uredosporas unicelulares equinuladas, ovaladas, algunas algo cónicas. Las teliosporas en forma de bate, unidas entre sí, se encuentran inmersas en el sustrato. A mayor número de puntos de infecciones en la lámina foliar ocurre la coalescencia de pústulas formando necrosis de 2 a 4 mm de diámetro las que inducen clorosis parcial o generalizada de hojas fácilmente caedizas. Por el haz, las infecciones muestran perdida de color verde normal y en algunos casos clorosis en puntos delimitados.
2.10.2 A lternaria s p. 6
2.10.2.1 Morfofisiología Las manchas foliares ocasionadas por Alternaria sp. Varían de color café oscuro a negro, en los tejidos viejos infectados producen conidióforos cortos, simples y erectos dando origen a cadenas simples o ramificadas de conidios. Los conidios son grandes, alargados y de color oscuro, o bien multicelulares en forma de pera, con septas transversales y longitudinales. Se desprenden fácilmente siendo diseminados por las corrientes de aire, las esporas están presentes en todo lugar. Son generalmente saprofitas, solo sobre tejidos muertos. Invernan como micelio en los restos de plantas infectadas y en forma de esporas o micelios en las semillas.
2.10.2.3 Patogenicidad En las hojas se encuentran con manchas rodeadas de un amplio halo clorótico como consecuencia de la intoxicación de las células del parénquima foliar debido a la rápida movilización de la toxina del patógeno. Finalmente, la hoja se necrosa y en plantas anuales permanece adherida. (Roncal Ordoñez, M. 2004)
2.10.2.4 Patogénesis Los primeros síntomas en hojas se muestran como puntitos cloróticos, los que posteriormente se necrosan de color marrón oscuro a negro, aumentando de tamaño y adquiriendo figura amorfa. Algunas especies producen anillos concéntricos de la lesión. (Roncal Ordoñez, M. 2004)
2.10.3 Hoja crespa en Capuli 2. 10.3.1 Taphrina andina 2.10.3.2 Morfofisiología Las ascas se forman formándose a partir de células ascógenas binucleadas a través de la transformación secuencial de células de los filamentos del hongo, debajo de la cutícula, cada asca generalmente presenta 8 ascosporas ovoides hialinas.
2.10.3.3 Patogenicidad Se desarrolla mayormente en las hojas, el desarrollo de hifas es intra e intercelular, principalmente en las células sub cuticulares del hospedero. La producción de principios hormonales del fitopatógeno determina hipertrofias e hiperplasias de las células del parénquima del hospedero. Obstruye la translocación de hidratos de carbono por lo que aparecen pigmentaciones rojizas en gran parte de las hipertrofias, poco a poco se generaliza la no síntesis de clorofila razón por la que las hipertrofias se muestran de color amarillo pálido y de consistencia vidriosa. Finalmente las hojas se mueren tiñéndose de negro, por la oxidación de los fenoles a melanina. 7
2.10.3.4 Patogénesis Los síntomas se muestran en hojas jóvenes, con alteración del crecimiento del parénquima en forma de hoja crespa, con pérdida de color verde capulí, a color crema blanquecino acompañado con la pigmentación purpura violácea; finalmente este tejido muere pigmentándose de negro. Cuando la infección ocurre en el tejido de terminales de ramitas aparecen hipertrofias que terminan por necrosarse de color marrón oscuro.
2.10.4 Darluca s p. 2.10.4.1 Morfofisiología Darluca sp. Ha sido encontrada en Cajamarca parasitando royas de sauce (Roncal
Ordoñez 1993). Este tipo de hiperparasitismo ocurre con frecuencia cuando las precipitaciones durante los meses lluviosos son menos frecuentes. Las esporas bicelulares inóculo, de Darluca sp. Diseminado por el agua y el viento, dispuestas en la superficie abultada de la cutícula, lugar más tarde se formara la pústula, es la zona donde las picnidiosporas de este hiperparásito aprovechan par a realizar su proceso como controlador biológico. (Roncal Ordoñez. 2010)
2.10.4.2 Patogenicidad El micoparásito penetra directamente a través de las paredes y membranas celulares de las esporas por medios mecánicos y enzimáticos, sin la formación de estructuras especiales de penetración y toma nutrientes del citoplasma tras desorganizar su contenido (Rubiales 2000), desintegrando paredes y membranas. Los filamentos del hiperparásito se ramifican ocasionando nuevas infecciones, que finalmente llegan a perjudicar las hifas del fitopatógeno que se encuen tra afectando al parénquima del hospedero; de esta manera se detiene la patogénesis de las royas. El tejido afectado se cicatriza (Roncal Ordoñez, 2010).
2.10.4.3 Patogénesis Iniciando el proceso de resquebrajado de la cutícula, por presión de las uredosporas que desarrollan en su interior, las picnidiosporas en germinación y otras en proceso, aprovechan de esta oportunidad para infectar uredosporas individuales, principalmente de aquellas que se encuentran expuestas, iniciándose de esta manera, la infección (Roncal Ordoñez, 2010). Mientras que Darluca sp. Se siga alimentando del sustrato uredosporas de las royas, se mantiene en estado vegetativo; cuando este se agota, pasan al estadio de propagación, formando picnidios oscuros, con esporas, bicelulares, elipsoidales hialinas. Cuando esto ocurre, entendemos que existe una disminución considerable del inóculo infectivo de las royas, como maravilla natural, del equilibrio biológico (Roncal Ordoñez, 2010). 8
2.10.5 S colecotrichum 2.10.5.1 Morfología Espora tallo marrón ligeramente curvada, no ramificados.
2.10.5.2 Patogenicidad 2.10.5.3 Patogénesis El hongo pasa el invierno como Scolecotrichum masas de micelio en hojas de hierba y restos de cultivos que viven de la estación de crecimiento pasado. Durante la primavera llueve los estromas se hinchan y se rompen las células de la epidermis en la superficie superior de las hojas afectadas. Los racimos de conidióforos emergen a través de la epidermis con ruptura (o por estomas) y producen esporas (conidios) que se difunden principalmente por las salpicaduras y la lluvia arrastrada por el viento.
2.10.6 Tri podanthus acutifolios 2.10.6.1 Morfofisiología Presenta tallo, ramas, flores, frutos y raíces con dispositivos especiales de adherencia a la planta hospedera para proveerse de nutrientes. De la base del tallo protuberante se desprenden raíces en número reducido, pueden ser dos o tres, con ramificaciones que se disponen en distintas direcciones en la superficie del tallo principal y ramas del hospedero, mostrando crecimiento longitudinal rápido.
2.10.6.2 Patogenicidad Mata por inanición, interfiere con el abastecimiento de agua y nutrientes al hospedero, perjudicando el funcionamiento de varias cadenas fisiológicas de las células y ocasionándoles la muerte.
2.10.6.3 Patogénesis En toda la longitud del sistema radicular, se muestran protuberancias que hacen la función de ventosas, separadas unas de otras en espacios reducidos y distantes; de estas desarrollan, un órgano que penetra el tejido cortical del hospedero, para proveerse de nutrientes. La raíz principal que logra llegar al suelo asume la función 9
como toda raíz común de cualquier vegetal, para seguir prosperando como planta franca. Después de haber ocasionado la muerte al hospedero.
CAPITULO III MATERIALES Y METODOS 3.1 UBICACIÓN 10
El presente Trabajo de investigación, se desarrolló en el Laboratorio de Fitopatología, Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de Cajamarca. Las muestras de hojas de capulí (Prunus serotina) se recolectaron en el distrito de Pariamarca de la ciudad de Cajamarca. Baños del Inca y del SESA (Silvo Agropecuario) y el distrito de Jesús.
3.2 MATERIALES 3.2.1 Materiales Biológicos
Hojas de Capulí (Prunus serotina) afectadas con diferentes manchas foliares.
3.2.2 Material Óptico Cámara Fotográfica Microscopio Estereoscopio
3.2.3 Material de Vidrio
Lamina porta objeto laminacubre objeto
3.2.4 Material de Asepsia
Alcohol Agua
3.2.5 Otros materiales
Cámara húmeda Cinta adhesiva Aguja hipodérmica n° 25 Libreta de apuntes
3.3 METODOS 3.3.1 trabajo de campo Signo y síntomas encontrados 11
Distritos
Lugar
Cajamarca Silvo Agropecuari o Baños del Tartar Chico inca Pariamarc Pariamarca a Jesús Jesús
Hoja A lternari Darluca S colecotric hu Roya crespa a sp. s p. m x X x x
x
x
X
x Tripodanthus acutifolius
3.3.2 Metodología Se recogieron varias muestras de hojas de capuli (Prunus serotina) con manchas foliares para la observación e identificación de los hongos fitopatógeno que inducen estas manchas. Las zonas de donde se extrajeron las hojas fueron: la ciudad universitaria (UNC), Pariamarca y Tartar chico (Baños del Inca) y el distrito de Jesús. La identificación de los diferentes patógenos se realizó en el laboratorio de fitopatología de la Universidad Nacional de Cajamarca. Se observaron las hojas con manchas foliares en el estereoscopio. Se extrajeron los signos con una aguja hipodérmica n° 25 que se colocó sobre una lámina porta objeto, se le agregó agua y se lo cubrió con la lámina cubre objeto. Después se lo observó en el microscopio. Los patógenos observados en laboratorio son El signo Roya se extrajo las pústulas de Tranzschelia capuli . Darluca sp. Controlador biológico de Tranzschelia capuli . Hoja crespa (Taphrina andina) se puso en cámara húmeda por 24 horas y se extrajo con cinta adhesiva sobre la hoja y se pegó sobre la lámina porta objeto. A lternaria s p también se colocó en cámara húmeda por 24 horas para el desarrollo de las hifas. S colecotri chum se extrajo con cinta adhesiva en la hoja y pegarse en la lámina porta objetos. Tripodanthus acutifolius se observaron sus tallos en un árbol de capuli. Se tomaron fotografías.
CAPITULO IV 12
RESULTADOS Y DISCUSIONES 4.1 Resultados Se puede observar las pústulas de Roya en capuli ocasionado por Tranzschelia capuli .
Fig. 01
Fig. 02 Se puede observar la fase II Uredo, fase de multiplicación del hongo. Unicelular en forma de raqueta. Presentan pared y membrana celular pronunciada, destacando la pared como un tejido compacto,
Fig. 03 Las hojas se muestran como puntitos cloróticos, los que posteriormente se necrosan de color marrón oscuro a negro, aumentando de tamaño y adquiriendo figura amorfa.
Fig. 4 Conidios de Alternaria sp. . Los conidios son grandes, alargados y de color oscuro, o bien multicelulares en forma de pera. 13
Fig.5 Hipertrofias e hiperplasias de las células del parénquima del hospedero. Obstruye la translocación de hidratos de carbono por lo que aparecen pigmentaciones rojizas
Fig. 6 Ascas de Taphrina andina.
Fig. 7 Controlador biológico de roya . Darluca sp. En hojas de capuli formando pequeños picnidios oscuros invaden totalmente la pústula. 14
Fig. 8 Picnidio de Darluca sp.
Fig. 9 Scolecotrichum 15
Fig. 10 Tripoddanthus acutifolius en el tronco de capuli.
Fig. 11 tallos de Tripodanthus acutifolius
4.2 Discusión 4.2.1Taxonomía de Tranzschelia capulí 16
Según Roncal Ordoñez M.S (2007) Clase BASIDIOMICETES; Sub clase Teliomycetidae; Orden Uredinales; Familia Pucciniaceae; Género Tranzschelia; Especie Tranzschelia capulí
4.2.2Taxonomía de Alternaria sp. Clase forma DEUTEROMICETES; Orden forma Moniliales; Familia forma Dematiaceae; Género Alternaria; Especie Alternaria sp.
4.2.3Taxonomía de Taphrina andina Clase ASCOMICETES; Sub clase Hemyascomycetidae; Orden Taphrinales; Familia Taphrinaceae; Género Taphrina; Especie Taphrina andina.
4.2.4 Taxonomía de Darluca sp. En la forma Imperfecta según Roncal Ordoñez 2004. Clase forma DEUTEROMYCETES; Orden forma Sphaeropsidales; Familia forma Sphaeropsidaceae; Género Darluca; Especie Darluca sp.
4.2.5 Taxonomía de Scolecotrichum Clase forma DEUTEROMYCETES; Orden forma Moniliales; Familia forma Moniliaceae; Género Scolecotrichum.
4.2.6 Taxonomía de Tripodanthus acutifolius División Angospermae, Clase Dicotyledoneae, Orden Santales, Lorantaceae, Géneros Tripodanthus, Especie Tripodanthus acutifolios.
17
Familia
CAPITULO V CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 5.1 Conclusiones
-
Los diferentes patógenos encontrados en capulí (Prunus serotina) son Tranzschelia capuli , Alternaria sp , Taphrina andina, controlador biológico de la roya en capulí Darluca sp, Scolecotrichum y la fanerógama parásita Tripodanthus acutifolius .
-
La mayoría de estos patógenos ocasionan defoliación los cuales conducen a un debilitamiento prematuro, con consecuencias irreversibles susceptibles al ataque de insectos plaga.
-
Darluca sp. Se presenta dentro de las pústulas de la roya formando pequeños
picnidios oscuros, localizado en las uredias, por lo tanto se puede considerar como un control biológico
5.2 Recomendaciones Se recomienda realizar investigaciones acerca de Darluca sp. Ya que es un buen controlador biológico de la roya en capulí ( Prunus serotina).
CAPITULO VII 18
RESUMEN
6. 1 RESUMEN Se determinó la etiología que causan las manchas foliares en capulí (Prunus serotina) por medio del recojo de muestras en diferentes sitios como Silvo agropecuario (SESA), Pariamarca, Baños del Inca y Jesús. Para luego ser observadas en el laboratorio de fitopatología, Escuela Académico profesional de Agronomía de la Universidad Nacional de Cajamarca. Por medio de un estereoscopio y el microscopio para observar los síntomas y signos que lo ocasionan. En algunas muestras se observaron directamente al patógeno, en cambio en otras se necesitaron estar en cámara húmeda por 24 horas. Entre los diferentes patógenos que se encontraron están Tranzschelia capuli (Roya), Alternaria sp, Taphrina andina (Hoja crespa), Darluca sp controlador biológico de la roya, Scolecotrichum sp. Y la fanerógama patógena Tripodanthus acutifolius.
CAPITULO VII 19
LITERATURA CITADA
Briones Álvarez, J. W, Roncal Ordoñez, M. S . 2001. Etiología de las manchas foliares del capulí ( Prunus serotina Ehrb). Tesis Título de Ing. Agr. Universidad Nacional de Cajamarca. 59 p. Quiroz Ramos, G., Roncal Ordoñez M.S. 2010. Morfología de Darluca sp. Como controlador Biológico de royas de Sauce ( Salix humboltiana Wind ), Clavel (Dianthus caryophilis L .) y Geranio ( Geranium sp.) en la provincia de Cajamarca. Tesis Titulo de Ing. Agr. Universidad Nacional de Cajamarca. 58 p. RONCAL ORDÓÑEZ, M. S. 2004. Principios de fitopatología andina. 1 ed. Editorial Bracamonte. Lima - Perú: 324 p. Roncal Ordoñez M. 2007. Morfofisiología y Taxonomía que inducen roya en custro especies forestales de Cajamarca. Perú. FIAT LUX 3(2) 235-245 www.epgunc.com/FIATLUX%20EPG/fiatlux2007-2.htm. Ruiz García, W., Roncal Ordoñez M.S. 2008. Determinación de los patógenos fungosos de capulí (Prunus serotina Ehrb .) en almacigo y repique en Cajamarca. Tesis Título de Ing. Agr. Universidad Nacional de Cajamarca. 41p.
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