Clinica_De_Exoticos

PRIMERAS JORNADAS SOBRE CLINICA

DE EXOTICOS

12, 13 Y 14 DE NOVIEMBRE DE 1999 ORGANIZA: AVAFES-CÁCERES COLABORA: FACULTAD DE VETERINARIA DE CÁCERES

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PRIMERAS JORNADAS DE CLINICA DE EXOTICOS VIERNES 12 DE NOVIEMBRE DE 1999

16:00 Apertura de las jornadas 16:30 Problemas clínicos más comunes en aves de compañía Rafael Molina López y Jordi Grífols Ronda Hospital zoológico de Badalona (Barcelona) 18.30 Exploración y técnicas de diagnostico en aves de compañía Rafael Molina López y Jordi Grífols Ronda Hospital zoológico de Badalona (Barcelona) SABADO 13 DE NOVIEMBRE NOVIEMBRE DE 1999

10:00 Identificación de reptiles Vicente González Fernandez-Cid Veterinario y colaborador del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 11:00 Manejo y alojamiento Alfredo Bengoa Rodríguez Facultad de veterinaria de Madrid Veterinario al cargo del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 13:00 Nutrición y patologia de la nutrición Vicente González Fernandez-Cid Veterinario y colaborador del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 16:00 Dermatología en reptiles Alfredo Bengoa Rodríguez Facultad de veterinaria de Madrid Veterinario al cargo del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 17:00 Oftalmología en reptiles Vicente González Fernandez-Cid Veterinario y colaborador del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 18:00 Reproducción en quelonios Vicente González Fernandez-Cid Veterinario y colaborador del Servicio de Exóticos de la Veterinaria de Madrid 17:00 Oftalmología en reptiles Vicente González Fernandez-Cid Veterinario y colaborador del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 18:00 Reproducción en quelonios Vicente González Fernandez-Cid Veterinario y colaborador del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid 19:00 Casos clínicos más frecuentes en reptiles Alfredo Bengoa Rodríguez Facultad de veterinaria de Madrid Veterinario al cargo del Servicio de Exóticos de la Facultad de Veterinaria de Madrid

DOMINGO 14 DE NOVIEMBRE DE 1999 10:00 Primates y animales salvajes de compañía Carlos López del Castillo Centro Veterinario Maragall Exotics, Barcelona 12:00 Manejo y patologías más frecuentes en roedores y lagomorfos Andrés Montesinos





















Andrés Montesinos Centro Veterinario Los Sauces, Madrid





















CONTENIDOS EXPLORACIÓN Y TÉCNICAS TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO EN AVES AVES DE COMPAÑÍA. COMPAÑÍA. 3 1. INTRODUCC INTRODUCCIÓN. IÓN........... ..................... ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ..................... ......... 6 2. HISTORIA CLÍNICA Y EXPLORACIÓN................. EXPLORACIÓN............................. ......................... ......................... ............ 7 Exploració Exploraciónn del animal animal (valoració (valoraciónn objetiva). objetiva). ...................... ................................. ...................... ............... 7 3. MÉTODOS COMPLEMENTA COMPLEMENTARIOS RIOS DE DIAGNÓSTICO. DIAGNÓSTICO. ..................... ........................... ...... 9 3.1 Radiologí Radiología. a. ...................... .................................. ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 9 3.2 Hematolog Hematología. ía........... ..................... ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ..................... ......... 10 3.3 Bioquímica Bioquímica clínica. clínica. ...................... ................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 14 3.4. Citología Citología:: ....................... .................................. ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 17 3.5. Endoscopi Endoscopia: a: ..................... ................................. ....................... ...................... ...................... ....................... ..................... ......... 17 4. MÉTODOS MÉTODOS DE ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS.............. SUSTANCIAS. .......................... ............... 17 PROBLEMAS CLÍNICOS MÁS COMUNES EN AVES DE DE COMPAÑIA........... 14 PICAJE: PICAJE: ..................... ................................. ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ...................... ............... .... 18 CLAMIDIOSIS:.... CLAMIDIOSIS:............... ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 20 ASPERGILOSI ASPERGILOSIS: S: ...................... .................................. ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 24 HIPOVITAMIN HIPOVITAMINOSIS OSIS A:................ A:............................ ....................... ...................... ...................... ....................... ..................... ......... 26 OBESIDAD OBESIDAD ...................... ................................. ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ..................... ......... 27 BIBLIOGRAFÍA BIBLIOGRAFÍA:: ...................... ................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 24 CLASE REPTILIA REPTILIA.......... ..................... ....................... ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 29 Suborden Suborden Cryptodira Cryptodira............ ....................... ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 30 Suborden Suborden Pleurodia Pleurodia ...................... ................................. ....................... ....................... ...................... ...................... ............... .... 30 CLAVE DE IDENTIFICACION DE FAMILIAS DE TORTUGAS. TORTUGAS.............. ....................... .......... 29 FAMILIA FAMILIA CHELONIID CHELONIIDAE........ AE................... ...................... ....................... ....................... ...................... ...................... ............... .... 35 FAMILIA FAMILIA DERMATEM DERMATEMYDID YDIDAE AE ...................... ................................. ....................... ....................... ...................... ............... 35 FAMILIA FAMILIA DERMOCHE DERMOCHELYIDA LYIDAE E ...................... ................................. ....................... ....................... ...................... ............... 35 FAMILIA FAMILIA PELOMEDUS PELOMEDUSIDAE IDAE.......... ..................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 36 FAMILIA FAMILIA TESTUDINID TESTUDINIDAE........ AE................... ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 37 LA REPRODUCC REPRODUCCIÓN IÓN EN QUELONIOS. QUELONIOS. ..................... ................................. ....................... ...................... ............... 37 1. REPTILES: REPTILES: ...................... ................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 41 2. QUELONIOS: QUELONIOS: ...................... ................................. ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 42 3. REPRODUCC REPRODUCCIÓN IÓN EN QUELONIOS: QUELONIOS: ..................... ................................. ....................... ...................... ........... 43 3.1 Anatomía:................. Anatomía:............................ ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ................... ....... 43 3.2 Fisiología Fisiología:: ....................... .................................. ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 43 3.3 Diferenciac Diferenciación ión sexual: sexual: ...................... .................................. ....................... ...................... ....................... ................. ..... 45 Diferencias Diferencias ....................... .................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 45 3.4 Biología Biología reproductiv reproductiva:.......... a:...................... ....................... ...................... ...................... ....................... ................... ....... 45 4. INCUBACIÓN INCUBACIÓN ARTIFICIAL ARTIFICIAL:: ..................... ................................. ....................... ...................... ...................... ............... .... 47 4.1 Determinac Determinación ión del sexo. sexo. ..................... ................................. ....................... ...................... ...................... ............... .... 48 5. NEONATOS:....... NEONATOS:.................. ...................... ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ................... ....... 48





















INTRODUCCIÓ INTRODUCCIÓN: N:.......... ..................... ....................... ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 51 PATOLOGÍAS PATOLOGÍAS MÁS FRECUENTE FRECUENTE.. ....................... .................................. ...................... ....................... ................. ..... 52 CONFERENC CONFERENCIAS IAS SOBRE SOBRE MAMIFEROS........ MAMIFEROS.................... ....................... ...................... ...................... ............... .... 50 INTRODUCCIO INTRODUCCION N ...................... .................................. ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 54 PRINCIPALES PATOLOGIAS PATOLOGIAS DE ROEDORES Y LAGOMORFOS............. LAGOMORFOS............ . 55 PRINCIPALES PRINCIPALES PROCESOS PROCESOS PATOLOGICO PATOLOGICOS S ...................... ................................. ...................... ............... 55 Parasitosis Parasitosis externas.................... externas............................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 55 Micosis Micosis superficiale superficialess ....................... .................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 56 Enfermedad Enfermedades es bacteriana bacterianass dérmicas.................... dérmicas................................ ....................... ...................... ............... 56 Neoplasias Neoplasias ....................... .................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 57 Maloclusión Maloclusión ...................... ................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 57 Tricobezoar Tricobezoares es ...................... ................................. ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 57 INTRODUCCION AL MANEJO Y PATOLOGIA DE PRIMATES PRIMATES............ ...................... .......... 55 PRINCIPALES PRINCIPALES ESPECIES: ESPECIES: ...................... ................................. ...................... ...................... ....................... ................... ....... 59 DATOS A TENER EN CUENTA CUENTA SOBRE TIPO DE VIDA ...................... ............................. ....... 60 DIETA........... DIETA ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 60 DATOS HEMATOLOGICOS HEMATOLOGICOS Y BIOQUIMICOS BIOQUIMICOS ...................... ................................. ...................... ........... 61 EXPLORACIÓ EXPLORACIÓN N ....................... .................................. ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 61 INTRODUCCION AL MANEJO Y PATOLOGIA DECARNIVOROS NO DOMESTICOS DOMESTICOS ...................... ................................. ....................... ....................... ...................... ...................... ....................... ................... ....... 59 HURON (MUSTELA (MUSTELA PUTORIUS PUTORIUS FURO).................. FURO).............................. ....................... ...................... ............... 63 F. PROCIONIDOS: (PANDAS, MAPACHES, MAPACHES, COATIES, QUINCAJUS)....... 65 ERIZO AFRICANO AFRICANO (ATALERÍX (ATALERÍX ALBIVENTRÍS) ALBIVENTRÍS) ..................... ................................. ..................... ......... 66 VACUNACION VACUNACIONES ES RECOMENDA RECOMENDADAS DAS ..................... ................................. ....................... ...................... ............... 67 BIBLIOGRAFIA BIBLIOGRAFIA ....................... .................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 64 PRIMATES COMO ANIMALES DE COMPAÑIA................. COMPAÑIA.... .......................... .......................... ................ ... 65 INTRODUCCIO INTRODUCCION N ...................... .................................. ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 69 ESPECIES ESPECIES MAS FRECUENTE FRECUENTES..................... S................................ ....................... ....................... ...................... ........... 70 MANTENIMIEN MANTENIMIENTO TO EN CAUTIVIDAD CAUTIVIDAD.......... ...................... ....................... ...................... ...................... ............... .... 72 NUTRICION................. NUTRICION............................. ....................... ...................... ...................... ....................... ....................... ...................... ............... 73 MANEJO MANEJO Y ANESTESIA ANESTESIA ...................... ................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 73 MEDICINA MEDICINA PREVENTIV PREVENTIVA......... A..................... ....................... ...................... ....................... ....................... ...................... ........... 74 TECNICAS TECNICAS CLINICAS CLINICAS ...................... ................................. ....................... ....................... ...................... ...................... ............... .... 74 ENFERMEDAD ENFERMEDADES ES MAS FRECUENTES.................. FRECUENTES.............................. ....................... ...................... ............... 75 1. ENFERMEDA ENFERMEDAD D OSEA METABOLICA METABOLICA ...................... ................................. ....................... ................. ..... 75 2.ENFERMEDAD DE CONSUNCION DEL TAMARINO (TAMARIN WASTING WASTING DISEASE).............. DISEASE).......................... ....................... ...................... ...................... ....................... ..................... ......... 75 3. ENFERMEDA ENFERMEDADES DES INFECCIOSAS INFECCIOSAS.......... ..................... ....................... ....................... ...................... ........... 76 BIBLIOGRAFIA BIBLIOGRAFIA ....................... .................................. ...................... ....................... ....................... ...................... ....................... ................. ..... 73





















EXPLORACIÓN Y TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO EN AVES DE COMPAÑÍA. 1. INTRODUCCIÓN. La clase Aves incluye unas 9000 especies agrupadas en 25 órdenes, cada uno de los cuales posee unas características anatómicas, fisiológicas y etológicas únicas. El incremento de consultas de aves en la práctica clínica de animales de compañía obliga a los veterinarios a revisar y actualizar sus conocimientos, tanto de las enfermedades que pueden afectar a las aves, como de las características biológicas de las especies más frecuentemente mantenidas en cautividad. En la práctica clínica de aves tiene igual valor la labor médica como el asesoramiento especializado en los siguientes temas: Características biológicas: especie, área geográfica y tipo de ecosistema, alimentación y comportamiento. Condiciones de mantenimiento en cautividad: instalación, nutrición, • • higiene, medicina preventiva y reconocimiento de las manifestaciones de enfermedad. • • Aspectos legales de la tenencia en cautividad: documentación necesaria, grado de protección de la especie, normativa vigente y su ejecución. •

•

A continuación se relacionan los elementos principales del equipamiento necesario para la práctica clínica de aves: • • • • • • • • • • • • •

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Abrebocas metálicos. Sondas metálicas para administración de sustancias por vía oral. Collares isabelinos o collarines cervicales. Resinas dentales para reparación de pico. Tijeras adaptadas para cortar anillas. Micromotor y fresa para limar pico. Terrarios y transportines. Bebederos y comederos. Esterillas calefactoras regulables. Posaderos. Toallas o paños de diferentes medidas. Báscula con precisión de gramo. Instrumental quirúrgico de oftalmología. Vaporizador de isofluorano y mascarillas.























2. HISTORIA CLÍNICA Y EXPLORACIÓN. Anamnesis Anamnesis (valoración subjetiva): La reseña del paciente ha de incluir la especie, sexo y edad, si se dispone de dicha información. A continuación se desarrolla un cuestionario sobre las condiciones de mantenimiento del paciente, las enfermedades previas y el motivo de consulta.

⇒

Condiciones de mantenimiento:

Instalaciones: Tipo de jaula, localización (interior o exterior), acceso a luz solar, sustrato del suelo de la instalación, posaderos, accesorios (bola de calcio, juguetes). • • Contacto o convivencia con otras aves o animales, ingreso reciente de otras aves en la instalación • • Higiene: baños, frecuencia y forma de limpieza de la instalación. • • Dieta: tipo y pauta de alimentación, suplementos nutricionales. • • Relación entre el propietario y el ave, grado de amansamiento. • • Antigüedad del animal en el hogar o colección zoológica. ⇒ Enfermedades previas y tratamientos médicos recibidos. ⇒ Estado reproductivo. ⇒ Motivo de consulta: Descripción de la enfermedad, duración, tratamiento, existencia de otros animales o personas enfermas. •

•

Exploración del animal (valoración objetiva). Evaluación de la jaula: Permite valorar las condiciones de mantenimiento del ave y realizar inspección de las deyecciones. En caso de una visita concertada, es aconsejable solicitar al propietario que, siempre que sea posible, traiga al ave en la jaula habitual y sin limpiarla. La inspección de las deyecciones permite deducir el volumen y frecuencia de las mismas (poliuria, diarrea, exceso de uratos) y la calidad de las heces y de la orina y uratos (coloración anormal, melena, hematoquecia, presencia de alimentos sin digerir, hematuria o biliverdinuria). ⇒

⇒

Observación del ave a distancia:





















Propiciar un ambiente tranquilo (silencioso, con iluminación tenue y sin exceso de personal). • • Planear nuestras acciones y disponer del instrumental y equipo necesarios antes de acometer la captura y exploración. • • Invertir el mínimo tiempo necesario para la exploración completa. Una ave enferma o estresada puede morir durante la captura y contención. • • Evitar dañar al animal (fracturas de extremidades, rotura de plumas o uñas) o ser heridos (picotazos, arañazos). Las estructuras potencialmente peligrosas (pico, garras, alas) han de ser sujetas prioritariamente. • • Inmovilizar al ave envolviéndola con una toalla del tamaño adecuado. ••

La exploración del ave ha de ser completa y sistemática: Tabla 1: Exploración del ave sujeta. Psitácidas: 100-200 microorganismos por campo de inmersión. 60-80% de bacilos Gram positivos,20-40% de cocos Gram positivos, 1 a 2 bacilos Gram negativos y levaduras (Harrison GJ, 1986). (2) Cuando el ave haya sido depositada en la jaula se determina el tiempo de recuperación respiratorio, esto es, el tiempo que necesita un ave para recuperar la frecuencia respiratoria en reposo tras ser sometido a una manipulación. En aves sanas un tiempo de 2 minutos se considera normal. (1)

Estructura valorada Tegumento Condición corporal y peso Cabeza

Extremidades Abdomen y cloaca Mucosas Estado de hidratación

Comentarios Plumaje, uñas y pico Palpación de musculatura pectoral Ojos: Ausencia de reflejo pupilar cruzado. Control voluntario de la contracción pupilar. Presencia de pectem. Cavidad oral y oído. Valorar las articulaciones humedeciendo las plumas con alcohol Tomar un hisopo cloacal y realizar tinción de Gram (1) Conjuntival, oral, cloacal Turgencia de la vena basílica, elasticidad de la piel de tarsometatarso





















Tabla 2: Frecuencias cardíacas y respiratorias normales en aves (por minuto) (Extraído de Ritchie B.W., Harrison G.J. y Harrison, L.R.: “Avian medicine: principles and applications”. Wingers Publishing, 1994, p. 148)

Peso

Frecuencia cardíaca en reposo

Frecuencia cardíaca bajo manipulación

Frecuencia respiratoria en reposo

Frecuencia respiratoria bajo manipulación

25 g 100 g 200 g 300 g 400 g 500 g 1000 g 1500 g 2000 g 5000 g 10 kg 100 kg 150 kg

274 206 178 163 154 147 127 117 110 91 79 49 45

400-600 500-600 300-500 250-400 200-350 160-300 150-350 120-200 110-175 105-160 100-150 90-120 60-80

60-70 40-52 35-50 30-45 25-30 20-30 15-20 20-32 19-28 18-25 17-25 15-20 6-10

80-120 60-80 55-65 50-60 40-60 30-50 25-40 25-30 20-30 20-30 20-30 15-30 15-35

3. MÉTODOS COMPLEMENTARIOS DE DIAGNÓSTICO. 3.1 Radiología.

La contención puede ser manual, con cinta adhesiva o mediante soportes plásticos. Con aves muy nerviosas puede ser necesario aplicar sedación o anestesia general para colocar al ave correctamente. Para conseguir la máxima información diagnóstica es necesario realizar una proyección ventro-dorsal (decúbito dorsal) y una latero-lateral procurando que las extremidades sean simétricas. El estudio radiológico de las alas puede requerir la proyección caudo-craneal (con el ave cabeza abajo y el ala extendida).





















Doble contraste: Indicado en el estudio radiológico del buche. Se reduce el volumen de contraste positivo a la mitad y se administra un cantidad de aire (contraste negativo) equivalente al doble del volumen de contraste positivo administrado. Para evitar la formación de burbujas, primero se administra el aire. Estómago Canario Periquito Yaco Paloma

5 5-30 10-30 5-10

Intestino delgado 10-15 30-60 30-60 10-30

Intestino grueso 15-30 60-120 60-120 30-120

Cloaca 30-90 120-240 120-130 120-240

Tabla 3: Tiempo (minutos) de tránsito de Sulfato de Bario en 4 especies de aves. (Extraído de Ritchie B.W., Harrison G.J. y Harrison, L.R.: “Avian medicine: principles and applications”. Wingers Publishing, 1994, p. 258).

3.2 Hematología. Tabla 4. Técnicas hematológicas. (Dein, 1984). Técnicas hematológicas Volumen de muestra 1% del peso corporal (expresado en ml ) máximo Puntos de extracción extracci ón Vena yugular derecha, vena cutánea cubital (a nivel del codo), vena braquial (cara ventral del húmero), vena medial metatarsal (por encima de la articulación metatarsal), corte de uña Anticoagulantes Heparina: 25 UI por ml de sangre. Suele provocar artefactos de tinción. Ideal si se desea obtener plasma. EDTA: 1-2 mg de EDTA por ml de sangre. Anticoagulante de elección en hematología si el almacenamiento de la muestra no es prolongado Extensión Extensi ón Técnica de portaobjetos-portaobjetos, portaobjetos-portaobjetos, portaobjetos-





















hematología aviar. En la práctica clínica se usan métodos hemacitométricos para realizar los recuentos celulares. El método de Natt y Herrick permite el recuento de eritrocitos y leucocitos simultáneamente. El procedimiento y características se especifican en la tabla siguiente: Tabla 5: Método de Natt y Herrick para recuento de eritrocitos y leucocitos Método de Natt y Herrick para recuento de eritrocitos y leucocitos Se trata de un método directo. El violeta de metilo 2B tiñe t iñe todas las células con diferentes tonos de azul Material: Camara de Neubauer modificada. Pipeta hemacitométrica de bola roja Aspirar sangre hasta la marca 0.5 y limpiar la parte exterior de la pipeta Aspirar solución de Natt y Herrick hasta la marca 101 (Dilución 1 : 200) Mezclar durante 1-2 minutos. Desechar las primeras gotas, llenar la cámara de recuento y esperar 3 minutos Contar el número total de eritrocitos en cinco cuadros (cuadros de las esquinas y el cuadro central) del retículo central de un lado de la cámara de recuento Multiplicar el número de eritrocitos por 10.000 ( Expresado en eritrocitos/µl) Contar el número total de leucocitos en los nueve cuadros grandes de un lado de la cámara y aplicar la fórmula : Recuento Total de Leucocitos (células/ l) = Leucocitos contados x 1.1x 200 Los leucocitos se tiñen de color azul oscuro























Tabla 6:Composición de la Solución de Natt y Herricks (Natt, 1952). Composición de la Solución de Natt y Herrick NaCl

3.88 g

Na2 SO4

2.5 g

Na2HPO4 x 12 H2O

2.91 g

KH2PO4

0.25 g

Formalina 37%

7.5 ml

Metil Violeta B

0.10 g

Disolver en el orden indicado y disolver en agua destilada hasta un volumen total de 1000 ml. Se deja 12 horas en reposo r eposo y posteriormente se filtra (papel Whatman nº 2). El pH final ha de ser de 7.3 Otro método hemocitométrico frecuentemente empleado es el sistema Unopette 5877 de eosinófilos (Becton-Dickinson, Rutherford, NJ 07070). En al tabla siguiente se resume el procedimiento:





















Aunque se trata de un método menos preciso, el recuento estimativo de leucocitos a partir de la extensión de sangre es fácil de realizar y posee un gran valor diagnóstico. Se cuentan los leucocitos en 10 campos de 40x, se calcula la media y se multiplica por 2000. • • Estudio de trombocitos: Método estimativo (Campbell, 1988): Consiste en contar el número de trombocitos en cinco campos de inmersión y aplicar la Fórmula : Recuento estimado de trombocitos (trombocitos/µl) = Media de trombocitos en cinco campos x 3.500.000 1.000 Si el valor hematocrito no se encuentra en el rango normal (35-55%) se realiza una corrección del recuento mediante la Fórmula : Tabla 8: Morfología de las células sanguíneas de las aves. Lane, 1996. Morfología de las células sanguíneas de las aves Eritrocitos Eritr ocitos La célula madura es oval o elíptica, con citoplasma anaranjado, núcleo oval de color púrpura situado centralmente. Las formas inmaduras son más redondeadas y con citoplasma azulado (basófilo). Leucocitos Heterófilos Heteróf ilos Gránulos alargados o redondeados eosinófilos. Citoplasma incoloro Eosinófilos Eosinóf ilos Gránulos redondos, eosinófilos y refráctiles. Citoplasma claro o ligeramente granulado. Basófilos Basófi los Gránulos intensamente basófilos.





















3.3 Bioquímica clínica.

Parámetros recomendados: Creatínfosfoquinasa, ácido albúmina/globulinas.

AST, Ácidos biliares, Glucosa, Calcio, úrico, proteínas totales y cociente

Tabla 9: Parámetros de bioquímica sanguínea en aves y su aplicación en el diagnóstico. (Fudge,1994; Lumeij JT, 1990; Lumeij JT, 1987) Parámetro Proteínas totales

Indicación Enfermedad gastrointestinal, hepática o renal.

Cociente Albúmina : Globulinas

Procesos inflamatorios, enfermedad hepática, gastrointestinal y renal

Interpretación ↑ Durante la puesta, deshidratación, enfermedades infecciosas crónicas. ↓ Malnutrición, parasitismo, enteropatía, enfermedad renal, estrés y enfermedad hepática crónica ↓ Enfermedad infecciosas crónicas (Tuberculosis, Clamidiosis, Aspergilosis), hipoalbuminemia (hepatopatía,

comentario Se aconseja el empleo de técnicas colorimétricas (Biuret/Lowry) ya que el método refractométrico es inexacto

Permite evaluar la respuesta al tratamiento





















la muestra con uratos. G Urea

Deshidratación

Creatinina Creatinina Deshidratación, Ácidos biliares Enfermedad hepática Aspartato Lesión hepática o Amino muscular transferasa Creatín fosfoquinasa (CK)

Lesión muscular

La reabsorción en obstrucción uretral. túbulos renales depende del grado de hidratación. Deshidratación, fallo Elevación renal artefactual debido a cromógenos ↑ Enfermedad hepática No específica de ↑ Enfermedad de enfermedad Pacheco, hepática Clamidiosis, intoxicaciones, necrosis muscular. Permite diferenciar ↑ Necrosis lesión hepática de muscular, lesión muscular inyecciones intramusculares, deficiencia de Vitamina E y Selenio , clamidiasis, septicemia, neuropatías e intoxicación por plomo ↑ Deshidratación,





















hiperparatiroidismo nutricional avanzado























3.4. Citología: Hisopo: tracto digestivo superior, cloaca, coanas, sacos aereos, vías respiratorias altas-Punción: Senos respiratorios, articulaciones, médula ósea (tibiotarso), fluido abdominal, órganos abdominales. • • Improntas: Lesiones cutáneas, órganos (necropsia). • • Tinción de Gram de heces: En Psitácida: 100-200 microorganismos por campo de inmersión. inmersión. Escasas levaduras y Gram negativos. 60-80% de de bacilos gram positivos y 20-40 % de cocos Gram positivos. En carnívoros se observa mayor cantidad de microorganismos gram negativos. •

•

3.5. Endoscopia: • •

Instrumental: Artroscopio de 2.7 mm. Accesos: Ave en decúbito lateral: Entre la penúltima y la última costilla Parte superior del triángulo formado por el fémur proximal, la última costilla y el margen craneal del pubis. Ave en decúbito dorsal: • •





















PROBLEMAS CLÍNICOS MÁS COMUNES EN AVES DE COMPAÑIA PICAJE: Causa: multifactoriales orgánicas y comportamentales. comportamentales. Psicógenas: Aburrimiento por excesivo tiempo libre diario (debido a interacción con conductas innatas), o por falta de estímulos en el medio donde vive el ave, acicalamiento excesivo, frustración reproductora, cambios en el ambiente (introducción de nuevos pájaros, animales o personas), frustración, miedo, comportamiento de cortejo. Malnutrición primaria y déficits de mantenimiento (ausencia de baño, ⇒ suciedad...). ⇒ Malnutrición secundaria por parásitos gastrointestinales (giardias,...). ⇒ Problema hormonal (hipotiroidismo) Infección bacteriana o fúngica de los folículos plumosos. ⇒ ,(dermatitis/foliculitis bacterianas, micóticas…)

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Tratamiento:

Lento y complicado, siendo facilitado por una buena aproximación a la causa principal. Aparte del tratamiento del agente primario (parásitos, hongos o bacterias) en caso de que lo hubiera, debemos realizar: Tratamiento básico: dieta sana, variada y equilibrada (en carbohidratos, proteína y minerales), estableciendo períodos fijos de acceso al alimento y utilizando técnicas de enriquecimiento comportamental para incrementar los períodos de búsqueda y manipulación de la comida (colocada en recipientes de difícil acceso, dentro de cajas de cartón que deban ser rotas antes de acceder a el...). ⇒ Tratamiento de manejo: cambiar la localización de la jaula, colocándola en lugares de paso o de concentración de gente para mantener entretenida al ave. Ofrecer la posibilidad de períodos de semi-libertad vigilada. Añadir un nido o estructura similar a la jaula, como área donde el pájaro pueda esconderse y aislarse. contra el aburrimiento: Que el dueño preste preste mucha mucha más ⇒ Tratamiento contra atención al pájaro. Realizar cambios frecuentes en el mobiliario de la jaula para motivar el interés a la "investigación" por parte del ave. Variar y introducir

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CLAMIDIOSIS:

También denominada Psitacosis u Ornitosis.

Etiología :

Chlamydia psittaci .

En aves se se han propuesto propuesto 5 serovariedades ( A, B, C, D ,E) que agrupan diferentes cepas. Chlamydia psittaci es un microorganismo procariota, parásito intracelular obligado, inmóvil, con dos fases morfológicas distintas: el cuerpo elemental (0’2 a 0’3 µm) infeccioso y el cuerpo reticular (0’6 a 0’8 µm) metabólicamente activo.

La infección ha sido citada en más de 100 especies de aves aunque las psitácidas, palomas y pavos són las que más frecuentemente manifiestan la enfermedad. También se ha descrito la infección en mamíferos, reptiles e insectos.

Cuadro clínico:

El período incubación es difícil de determinar debido a las diferencias de patogenicidad entre cepas así como por la diferente susceptibilidad de cada





















especies de periquitos australianos queratoconjuntivitis crónica y recidivante.

es

frecuente

una

Las aves que han sufrido clamidiosis pueden volver a desarrollar la enfermedad aun después del tratamiento, bien por que se infecten de nuevo o porque hayan quedado como portadoras.

Diagnóstico:

El diagnóstico de clamidiosis se establece valorando conjuntamente varios métodos. Clínico: Cuadro clínico, radiología (aerosaculitis, hepato-esplenomegalia), hematología (en psitácidas enfermas se ha descrito anemia, leucocitosis con heterofilia, basofília y monocitosis), bioquímica clínica (aumento de aspartato aminotransferasa (AST), ácidos biliares, creatinquinasa (CK) y lactato deshidrogenasa LDH) y ácidos biliares y reducción del cociente albúmina :globulinas. • • Citología: •

•























•

ELISA en fase sólida. Immunocomb® Psitacosis (Biogal Galed Labs. (Kibbutz Galed, M.P. Megiddo 19240 Israel).Comercializado por Laboratorios Hipra S.A. Avda. La Selva s/n. 17170 Amer (Girona).

•

Métodos de detección de antígeno: • • Detectan la presencia de clamidias, de componentes antigénicos o de anticuerpos específico frente a dichos componentes antigénicos. • • No son efectivos si el animal no está eliminando clamidias en el momento en que se toma la muestra o la cantidad clamidia es baja























•

es sensible a los siguientes desinfectantes: amonios cuaternarios, cloruro de benzalconio, etanol al 70% y peróxido de hidrógeno al 3%.

•

Chlamydia psittaci

Aspectos zoonóticos y legales: La clamidiosis es una zoonosis transmisible de riesgo considerable para propietarios de aves de compañía, personal de tiendas de animales y criaderos de palomas; también pueden verse afectados veterinarios, rehabilitadores de fauna salvaje y personal de zoológicos. Entre 1982 y 1991 se declararon en los























ANEXO I B. Otras enfermedades de declaración obligatoria en España: Psitacosis. C. Enfermedades objeto de comunicación anual: Las enfermedades incluidas en la lista B de la Oficina Internacional de Epizootias, que no figuran en las listas A y B del presente anexo son las siguientes: .../... Clamidiosis aviar “

ASPERGILOSIS:























Diagnóstico: El diagnóstico de Aspergilosis se establece a partir de la

valoración conjunta de varias técnicas de diagnóstico: Cultivo (crecimiento en Agar Sabouraud) a partir de muestras • • obtenidas por lavado traqueal, hisopo o mediante biopsia. Como Aspergillus es un hongo ubicuo, el crecimiento fúngico si no existen lesiones puede carecer de valor diagnóstico. • • Serología : ELISA (no disponible en España); Doble difusión en agar (Laboratorio de Diagnóstico General, SL. Verdi 78 Bajos 08012 Barcelona). Radiología: Hiperinflación de sacos aéreos abdominales, opacidad























HIPOVITAMINOSIS A: Típica de psitácidas alimentadas exclusivamente con semillas, aunque puede afectar a cualquier especie con una dieta deficiente en vitamina A.

Cuadro clínico:

La deficiencia de vitamina A provoca metaplasia escamosa de membranas mucosas e hiperqueratosis de superficies epiteliales. Las manifestaciones clínicas van a depender del epitelio afectado: respiratorio (sinusitis crónica, abultamiento abultamiento periocular, infecciones infecciones respiratorias

























OBESIDAD

























BIBLIOGRAFÍA:

























Clase Reptilia

























Subclase Anapsida

























Squamatta































































































































































































































































































































































































































































En los animales recién adquiridos y de origen salvaje, es conveniente mantener el siguiente protocolo de actuación: . Cuarentena preventiva durante un mes como mínimo en el cual se restringirá al máximo el contacto con las personas. Posteriormente o en caso de animales criados en cautividad se le someterá a un examen veterinario completo. Se realizará la prueba de tuberculina intradérmica en el párpado o en la piel del vientre y se realizará la lectura cada 24 horas durante 3 días. Se tomarán muestras de heces para su análisis parasitológico y microbiológico. Si es posible se tomarán muestras de sangre de la vena ventral de la cola para su posterior análisis (chequeo completo y hepatitis infecciosa). Desparasitación completa con Tiabendazol, mebendazol, etc. . Se instaurará la pauta de vacunación que incluirá: Vacunación frente a paperas, sarampión (no en titís), poliomielitis, rubéola. Vacunaciones a los 2, 4, 8 y 12 meses. Luego revacunación anual. Vacunación de tétanos a los 2, 4 y 8 meses. meses. Luego revacunación global global anual. Para su mantenimiento se aconsejará tener en cuenta que estas especies son susceptibles de infectarse con las siguientes enfermedades víricas humanas: poliomielitis, sarampión, sarampión, herpesvirus herpesvirus hominis hominis tipo I (H. Simplex), varicela, viruela. La Rabia, aunque rara, debe tenerse en cuenta en animales salvajes, y su vacunación indicada si existe existe mucho contacto con humanos. humanos. Se utilizan vacunas muertas. En animales jóvenes con dientes de leche, se pueden limar los caninos con una lima eléctrica para evitar que su mordedura sea muy dolorosa. Los dientes de leche se cambian cambian entre los 8 meses y los 4 años. Generalmente los caninos de leche se cambiarán a los 2 años de edad, estos pueden ser rebajados y empastados, nunca extraídos, lo que le produciría enfermedades y malformaciones. Como los procesos patológicos que pueden sufrir estos animales son similares a los de otros mamíferos, se hace una exposición de algunos casos muy frecuentes encontrados en la clínica veterinaria habitual de estas especies.





















INTRODUCCION AL MANEJO Y PATOLOGIA DE CARNIVOROS NO DOMESTICOS Como en los casos anteriores, debido a lo extenso del temario, se describen con brevedad los principales datos a tener en cuenta para iniciarse en la práctica clínica con estas especies así como sus principales patologías.

Características:

-Poseen dedos con garrras. -Dientes carniceros con raíces -Glándulas odoríferas anales. -Hay ordenes carnívoros estrictos -Omnívoros (Ursidos, Procionidos). -Paso plantígrado y digitígrado

7 familias y 101 géneros F. Canidae: perros, zorros, coyotes, lobos F. Ursidae: osos F. Procyonidae: mapaches, coaties, quincajus, pandas F. Mustelidae: comadeja, mofeta, hurón, visón, tejones, nutrias F. Viverridae: hienas y proteles F. Felidae: linces, gatos monteses, pumas, jaguar, león, tigre Es preferible evitar su mantenimiento, excepto hurones. Familiarizarse con las características de las familias.

HURON (Mustela putorius furo ) Se trata de un carnívoro de la familia Mustelídae en la que también se incluyen los visones, comadrejas y armiños. Se trata de un animal pequeño, de cuerpo alargado, con las patas cortas, cuello largo y ancho ancho y cabeza pequeña y triangular. El color y tipo de pelo se utiliza para identificar diversas variedades (normal, albino, angora, plateado, siamés... Datos fisiológicos de interés: Peso macho 1-2,7 Kg., hembra 450-900 gr Formula dental 2 (I 3/3, C 1/1, P 3/4, M 1/2) Los dientes de leche aparecen a los 14 días y los caninos definitivos empiezan a aparecer hacia los 47-52 días. Pubertad a los 9-12 meses Epoca de cria: de Diciembre a Julio. Influenciado por el fotoperíodo. Hembras poliéstricas de ovulación inducida.





















Peso medio de las crías de 10 gr, nacen sin pelo y ciegas. Separación de la madre a las 6-8 semanas. Mortalidad neonatal entre 8-10 % (sobre todo en los 4 primeros días). Estro postparto a los 15 días. Naturalmente suelen producirse dos gestaciones por año, si se manipula el fotoperíodo se puede producir 3 o 4 gestaciones. Temperatura: 38-40 ºC Frecuencia respiratoria: 33-36 Resp./min. Frecuencia cardiaca: 250 lat./min.

PARAMETROS HEMATOLOGICOS Y BIOQUIMICOS Hematocrito Hemoglobina (gr/dl) Eritrocitos (Mill/dl) Plaquetas (Mil/dl) Leucocitos (Mil/dl) Neutrofilos banda (%) Eutrofilos (%) Linfocitos Monocitos Osinófilos Basófilos (%) Glucosa (mg/dl) BUN (mg/dl) Proteínas totales (gr./dl) Colesterol (mg/dl) Fos Fosfata fatassa alc alcalin alinaa (U (UI/ I/1) 1) GPT (UI/1) GOT (UI/1) Reatinina (mg/dl) Sodio (mmol/1) Potasio (mmol/1) Cloro (mmol/1)

normal 43,4-48,4 14,3-15,9 6,5-8,7 650 5,9-11,3 0,9-1,7 31,1-40,1 49,7-58,0 4,5-6,6 2,3-3,6 0,7-0,8 62-134 12-43 5,3~7,2 30-1 30-1220 82-289 0,2-0,6 146-160 4,3-5,3 102-121

Albino 49,2-55,4 16,2-17,8 8,1-10,2 453-545 9,7-10,5 1,1-1,4 57,0-59,5 33,4-35,6 4,4-4,6 2,4-2,6 0,1-0,2 94-207 10-45 5,1-7,4 64-296 9-84 9-84 28~12 0,4-0,9 137-162 4,5-7,7 106-125





















DATOS DE INTERES . Los hurones se deben mantener en jaulas espaciosas con suelos blandos (viruta), para evitar el daño daño de las patas patas por su costumbre costumbre de escarbar. escarbar. Pueden estar juntos fuera de la época reproductora, pero es preferible tenerlos separados por lo agresivo de los machos durante estos períodos a no ser que estén castrados. Se les alimentará con dietas comerciales de gato (pienso de crecimiento) o pienso específico específico para hurones. Nunca se les suministrarán frutas o verduras debido a la incapacidad incapacidad de su tracto intestinal para digerir fibras. Tienen un tránsito intestinal muy rápido (3 horas). Los métodos de exploración y diagnóstico son similares a los empleados para el perro y el gato, aunque suele ser necesario sedar o tranquilizar a los animales, se suele utilizar: -Atropina (como preanestésico) 0,05 mg/Kg. SC. -Xylazina 1-4 mg/Kg. IM -Acepromazina 0,2-0,5 mg/Kg. IM -Ketamina 10-20 mg/Kg. IM, 20-30 mg/Kg. IM (anestesia) -Ketamina 25 mg/Kg. + Diazepam 2 mg/Kg. (anestesia) IM -Ketamina 20-30 mg/Kg. + Xylazina 1-5 mg/Kg. (anestesia)IM -Isofluorano por máscara o cámara de anestesia. La toma de muestras sanguíneas puede realizarse de la vena de las uñas previo corte, la vena yugular y la vena ventral de la cola. Pauta de vacunación: -Vacunación contra moquillo 11 dosis a las 6-10 semanas de vida revacunaci6n a las 3- 4 semanas. revacunaci6n anual. En caso de crias de madres no vacunadas se realizará la primera vacunación a las 4 semanas y revacunaci6n 3 semanas después. Las vacunas utilizadas serán preferiblemente inactivadas (Fervac). -Vacunación de rabia anual con virus muerto. Como cirugías rutinarias se realizan la castración (igual que en gatos) y la extirpación de glándulas anales en machos y hembras. Se pueden realizar a partir de las 8 semanas, aunque es preferible, sobre todo en las hembras a los 6 o 8 meses de edad.

F. PROCIONIDOS: (Pandas, mapaches, coaties, quincajus) . MAPACHE ( Procion lotor) Originario de América del Norte Cuerpo rechoncho Buenos trepadores, nadadores y excavadores Muy adaptables pero requieren agua próxima





















COATI (Nasua nasua). Coatimundi o pizote Sudamérica Patas cortas y cola muy larga amarilla Hocico muy largo y móvil (trucado) Orejas cortas Habitan bosque y selvas Buenos trepadores Omnívoros Muy adaptables Sociables Viven en grupos (hembra y machos jóvenes) machos adultos solitarios Procesos más frecuentes Enfermedades víricas (Moquillo) Traumatismos (heridas) Parásitos externos e internos Enfermedades bacterianas y fúngicas

ERIZO AFRICANO (Ataleríx albiventrís )

El erizo africano es la especie que se observa con mayor frecuencia, aunque a veces también se visitan erizos europeos. Se trata de animales carnívoros principalmente insectívoros aunque también consumen invertebrados (caracoles, lombrices, etc.) y diversos vegetales y frutos. Se les debe alimentar con piensos de perro o gato, algunos insectos y frutas. también existe una dieta específica comercial. Uno de los principales problemas derivados de la dieta es la obesidad. Para cualquier manipulación es imprescindible anestesiar a los animales principalmente con gas isofluorane, con máscara o cámara anestésico. Los problemas principales son: Los parásitos dérmicos (sarna, pulgas) Micosis superficiales. Crecimiento excesivo de uñas por falta de desgaste.























VACUNACIONES RECOMENDADAS Can.

Fel.

Ur.

Pro.

Must.

Vi.

Moquillo Canino

+

-

-

+

+

+

Hepatitis Canina

+

-

-

+/-

+/-

+/-

Bordetella Tos de perrera

+

-

-

-

-

-

Leptospirosis

+

-

-

+

+

+

Moquillo Felino

-

+

-

+

+

+

Calicivirus

-

+

-

-

-

-

-

Rabia

+

+

+

+

+

+

+

Botulismo CyD

-

-

-

-

+

-

-

Enteritis viral

-

-

-

-

+

-

-

Toxoplasmosis susceptibles todas las familias. familias. Alimentación: dietas comerciales. Adecuar la instalación a las características de cada animal.

Hy.

-





















BIBLIOGRAFIA CONEJOS Y ROEDORES ANDERSON,N.L.: Basic Husbandry and Medicine of Pocket pets. In BIRCHARD, S.J., SHERDING, R.G. Saunders Manual of Small Animal Practice. Ed. Saunders. Philadelphia.pp 1363-1389.1994. ANDERSON, L.C.: Guinea Pig Pig Husbandry Husbandry and and Medicine. Medicine. In The Vet. Cli. of N.A. Small animal Practice. Ed. Saunders. Philadelphia. 17 (5), 1045-1060. 1987 BURKE, T.J.: Afecciones Afecciones cutáneas en roedores, roedores, conejos y hurones. hurones. En KIRKBONAGURA. : Terapéutica Terapéutica Veterinaria Veterinaria de peq. peq. an. Mc GrawHill Interamericana. Interamericana. IX, 12991304. 1994. BROWN,S.A.: Clinical Techniques Techniques in Rabbits. Rabbits. In Sem. in Av. and and Ex. Pet Med..Ed Saunders. Philadelphia.6 Philadelphia.6 (2),86-95.1997. (2),86-95.1997. HARKNESS,J.E.: Rabbit Husbandry and Medicine.In The Vet. Cli. of N.A. Small Animal Practice. Practice. Ed Saunders. Saunders. Philadelphia. 17 (5), 1019-1044.1987. 1019-1044.1987. QUESENBERRY,K.E.:Rabbits. In BIRCHARD-SHERDING.:Saunders BIRCHARD-SHERDING.:Saunders Manual Manual of Small An. Prac. Ed. Saunders. Philadelphia. 1345-1362.1994. SCHUMAN,S.M.: Cuidado individual y tratamiento de los conejos, ratas, conejillos de indias, hámsters hámsters y gerviles. En KIRK.: Terapéutica Terapéutica Veterinaria. Compañia Editorial Continental-Mexico. Continental-Mexico. 739~762. 1984. WAGNER,J.E.;FAP,RAR, P.L.: Husbandry and Medicine of Small Rodents. In The Vets. Cli. of N.A. N.A . Small Animal Practice. Ed. Saunders. Philadelphia. Philadelphia. 17 (5), 1061-1088.1987.

PRIMATES Primates. Animales del Mundo. Ed. Folio (III). España. 1991. PAP,ROT,-T.Y.: An Introduction to Diseases of Nonhuman Primates. Comp. Con. Ed. Pract. Vet. 8 (10), 733-738.1986. 733-738.1986. SATERFIELD,W.C.; VOSS,W.R.: Nonhuman Nonhuman Primates and the the Practitioner. Practitioner. In The Vet. Cli. of N.A. Small Animal Practice. Saunders.Philadelphia. Saunders.Philadelphia. 17(5), 1185-1202. 1185-1202.1987. 1987.





















PRIMATES COMO ANIMALES DE COMPAÑIA INTRODUCCION La primera consideración que debemos hacer en esta introducción es que los monos no pueden ser considerados animales de compañía en el sentido más amplio de la palabra. Ni las características anatomofisiológicas ni las necesidades mentales de estos animales los hacen adecuados para usarse como mascotas. Por otro lado, desde hace siglos (los faraones egipcios egipcios ya se hacían servir vino y aguamiel por papiones entrenados, cosa que se puede observar en algunos frescos en morales conservados en el museo del Louvre de parís), los primates humanos se han mantenido en cautividad por su asombrosa capacidad de atraer la atención humana hacia algo que parece un reflejo de nuestra propia naturaleza. Las expresiones, los gestos, el comportamiento de los monos los hacen aparentar ser excelentes mascotas, pero sus necesidades psicológicas son las que desaconsejan mantenerlos como animales de compañía. Legalmente existe un reglamento comunitario que únicamente se ha desarrollado por la comunidad autónoma del País Vasco y que viene a prohibir el mantenimiento y venta de primates no humanos como animales de compañía. Para consultas sobre sobre esta cuestión y otros temas de protección protección de especies se puede acudir a la oficina de coordinación del convenio CITES del Ministerio de Comercio (Jefe de Servicio: D' Mercedes Nuñez, tlf 913476757 ó 91347376 l). La realidad es bien distinta y normalmente se pueden encontrar monos en la práctica diaria, ocupando en nuestro caso un 1 % de las consultas, con cerca de 50 casos cada cada año. año. En el caso de otros veterinarios especialistas en animales exóticos exóticos de Madrid o Barcelona, la casuística casuística es semejante. El problema moral acontece cuando no se sabe si el animal que nos es presentado en la clínica es o no no legal y si si debemos tratarlo. Con la ley en la mano, se puede tratar al animal sin caer en responsabilidades legales, pero se debía "denunciara la persona que trae el mono. En nuestra opinión, opinión, el hecho de tratar al animal profesionalmente sin mirar su origen no obliga a denunciar a





















ESPECIES MAS FRECUENTES Los primates mantenidos como animales de compañía suelen ser en la mayoría de los casos monos sudamericanos de pequeño tamaño o monos africanos de pequeño o mediano tamaño. Es ya casi imposible imposible encontrar chimpancés, orangutanes orangutanes o gorilas en manos de particulares. La casuística mayor se va a encontrar en tamarinos, tities, capuchinos y monos ardillas. El tití común, tití pincel blanco o Callithrix jachus es posiblemente la especie más frecuente en la práctica diaria. diaria. Es un platirrino platirrino originario de la parte oriental de Brasil. Se puede encontrar encontrar dos variedades, variedades, el de penachos penachos blancos y el de penachos negros. negros. Se cría en cautividad para mascota en Bélgica, Holanda e Inglaterra y su precio al público oscila entre las 225000 y 250000 pesetas. Los capuchinos (Cebus apela y Cebus capuchino ó "cara blanca") son una especie mayor algo menos frecuente. Se crían especialmente en Inglaterra y naturalmente se encuentran en toda la zona tropical de Centro y Sudamérica. El tercer mono que se ve más frecuentemente es el mono ardilla, mono calavera, mono boliviano o Saimiri sciurus sciurus y Saimiris. oersiedii . Se cría en las misma zonas que el tití común. El hópalo enano, hópalo verde tití pigmeo o Cebuella pygmaea es también reproducido para el mercado de mascotas. mascotas. Es originario de la cuenca alta del Amazonas. Otros monos sudamericanos que se ven con menor frecuencia son el mono araña (Aleles geofreii y Ateles spp.), los tamarinos algodonosos (,Saguinus oedipus), los aulladores (Aloaltapalliala) y los monos lanudos (Lagothrix lagothrix).

En el caso de los monos africanos, el animal que más frecuente se ve en la clínica en nuestro país es el talapoin (Myopithecus tallapoin). Este primate es originario de toda _frica Occidental y por la tradición colonial española, se ha denominado tití a nivel popular.





















ESPECIE Callithrix Cebuella pig. Saimiri Cebus apela Cebu,v capuc. Saguinus Papio spp. M. talapoin

PESO H. 0,29 0,05 0,58 2,1 2,7 0,51 12-15 2,1

PESO M. 0,31 0,08 0,75 2,86 3,8 0,45 21 2,8

PESO NAC. 28 10 195 248 230 43,2 998 310

MAD. H. 12 9 36-46 42 48 18 51-73 45

MAD.M. 17 10 60 56 96 24 73 52

NOTA: (PESO H. Es la media de peso en Kg. de hembras adultas, PESO M. Es el de machos adultos, PESO NAC. Es el peso peso al nacimiento en gramos y MAD.H Y MAD.M, es la media de edad en meses a la que alcanzan los monos hembras y machos la madurez sexual respectivamente.)

ESPECIE ESTRO GEST. INTERV. CAM.

DES.

ESPER.

Callitrux

16

148

157

2,1

60-180

12

Cebuella

14

140

150

2

90

8

Saimiri

18

170

414

1

182

20,1

Cebus ap.

18

180

657

1

270

44

Cebus cap.

16-20

160

578

1

270

46,9

Sanguinus

16

145

280

1.9

60-90

13

Papio

31

171-180

630

1

180-456 180 -456

40-45























MANTENIMIENTO EN CAUTIVIDAD El mantenimiento en cautividad de los primates más accesibles a los propietarios de mascotas debe hacerse acorde con las necesidades biológicas de cada especie. Así la mayoría de los monos que se se ven en la clínica clínica diaria necesitan mantener una temperatura de al menos 22 grados por la noche y la posibilidad de un punto mayor de de temperatura. La humedad en el caso de de los monos sudamericanos conviene que sea alta, cerca del 80 %, manteniendo a los animales cerca de humidificadores. Los monos no deben mantenerse sueltos, tanto por el peligro que pueden representar para sus dueños como para sí mismos, pues pueden herirse o causar daños en casas, etc... La mayoría de las veces los primates son mantenidos en pequeñas pequeñas jaulas de loros reconvertidas. Si no hay otro remedio, deben usarse estas jaulas, pero intentado que sean las más fuertes y amplias, como las King's Cages que distribuye Europarrot (607449983). El espacio mínimo que necesitan los primates en cautividad está recogido en el Acta de Salud Animal de USA, que se resume en la siguiente tabla: GRUPO

PESO ( Kg)

AREA M2

ALTURA

1

<1

0,15

51

2

1-3

0,28

77

3

3-10

0,4

77

4

10-15

0,56

82





















También se deben mantener los animales con una rutina y un fotoperíodo de 1214 horas de luz. En las jaulas el uso de cuerdas, cuerdas, cadenas y juguetes ayudará a mantener a los animales entretenidos. No hace falta mucha sofisticación, pero se venden juguetes para monos de laboratorios que no son tóxicos y adecuados.

NUTRICION Las necesidades nutricionales de estos animales son muy variadas pero la ventaja de trabajar con pocas especies nos permite acotar un poco mas este capitulo. Así los monos monos sudamericanos necesitan necesitan una dieta alta alta en proteína animal y con refuerzos refuerzos en vitamina d3. Los monos africanos mantenidos como mascota son casi rigurosamente omnívoros y no suelen dar problemas nutricionales tan específicos. Existen piensos comerciales para titíes, monos sudamericanos y para comedores de hojas, que pueden usarse con buen resultado pero que son caros y no siempre bien aceptados. Las dietas caseras a base de frutas, verduras y proteína animal deben siempre suplementarse suplementarse con proteína, calorías, calorías, vitamina d3 y calcio. Los suplementos más usados son: - Papillas de cereales cereales para niños: calorías calorías de fácil asimilación. asimilación. - Gevral proteína: fuente de proteína de alta calidad y calorías. calorías. - Calcio 20 jarabe. Fuente de calcio y algo de vitamina d3 - Vitamina d3 Bayer Bayer en gotas. gotas. Se debe administrar 3 veces veces en en semana semana a todos los monos sudamericanos.





















El anestésico de elección inyectable es la ketamina, entre 5 y 10 mg/Kg para que nos dé una sujeción suficiente para procedimientos rápidos. Son aplicables todas las técnicas de manejo anestésico no debiendo olvidar el uso de analgésicos como butorfanol a 0,3-0,1 mg/kg antes de cirugías o si hay episodios de dolor en el animal. La anestesia de elección en caso de procedimientos mayores de 20 minutos es la gaseosa, especialmente especialmente el isofluorano. Por supuesto supuesto es mejor intubar y usar técnicas de monitorización como las que se usan en pequeños animales. Muy importante por el tamaño de estos animales es usar una fuente de calor en toda la anestesia.

MEDICINA PREVENTIVA El manejo clínica de todos los animales exóticos siempre es complicado y poco agradecido clínicamente, así que lo mejor será intentar no tener problemas y para ello lo mejor es intentar desarrollar un programa de medicina preventiva que incluya al menos anualmente: Historia del animal, incluyendo reproducción y otras enfermedades. Exploración física del animal. Exploración de la boca del animal buscando caries o gingivitis. Analítica sanguínea. Analítica de heces. Urianálisis. Radiografía de tórax. Test de tuberculina. Vacunaciones





















laboratorios Bekton and Dickingson pues no suelen existir contadores programados para los tamaños de glóbulos rojos de los saimiris por ejemplo. La radiología también se suele hacer imprescindible y lo mejor es usar pantallas de tierras raras, alto miliamperaje o chasis de mamografía. Son útiles las de contraste y se usan también 20 ml por kilo de sulfato de bario por vía oral. También tiene un buen efecto antidiarreico. Las vías terapéuticas más normales son la intramuscular en los cuádriceps, la subcutánea, en la piel de la cara interna de los muslos y la espalda. La vía intravenosa es la misma que que para la extracción y se puede usar la vía intraósea en el caso caso de requerirse requerirse fluidoterapia. Se usa el fémur, entrando en la cavidad medular a través de la fosa subtrocantérica.

ENFERMEDADES MAS FRECUENTES 1. ENFERMEDAD OSEA METABOLICA Posiblemente una de las enfermedades que más se ven en estos animales. Se debe a un desequilibrio calcio-fósforo en la dieta de estos animales. La causa más frecuente es un exceso de fruta en la dieta mas la ausencia de suplementación o el uso de carne cruda como forma de proteína. También es mas frecuente en invierno por la ausencia de luz ultravioleta. El diagnostico tiene dos vertientes. Tras comprobar comprobar la historia historia de la la alimentación de este animal y su ausencia de movimientos, se puede tomar una radiografía que muestre las lesiones típicas en los huesos de estos monos.





















infestaciones masivas por parásitos las que determinan la lesión intestinal que desencadena el síndrome. El diagnóstico se hace por los síntomas y la analítica. Lo ideal es determinar los niveles de zinc y vitaminas pero como la economía suele mandar, nos fijamos en los niveles muy incrementados de GOT, CPK, LDH y lipasa y amilasa. amilasa. También es frecuente la anemia anemia hemolítica. El tratamiento es diferente según el origen y los datos encontrados en la analítica, siendo necesarios suplementos de vitamina E, zinc y enzimas digestivos.

3. ENFERMEDADES ENFERMEDADES INFECCIOSAS INFECCIOSAS Las enfermedades parasitarias son importantes en estos animales especialmente en aquellos de origen desconocido o salvaje y en aquellos que han vívido en colonias recientemente. Encontramos Gongylonema, Strongyloides, Oesophagostomun, etc... y numerosas especies de nematodos. El análisis de heces es muy necesario y las técnicas son las mismas que se usan en pequeños animales. Los tratamientos tratamientos más frecuentes son con con fenbendazol a 25 mg/kg, mebendazol a 20 mg/kg, ivermectina a 0,2 mg/kg y levamisol a 7 mg/kg. No son frecuentes las infestaciones portrematodos y cestodos pero se puede usar el praziquantel a 8 mg/kg sin reacciones adversas. Más frecuentes son las infestaciones por protozoos intestinales como Giardias, Balantidiurn y Coccidios. Coccidios. El uso frecuente de de metronidazol metronidazol a 20 mg/Kg 10 días suele ser curativo, pero son necesarias medidas de higiene























BIBLIOGRAFIA 1.- FOWLER, M. M. ZOO AND WILD ANIMAL MEDICINE. Ed Saunders, ediciones ediciones de 1978, 1986, 1993, 1998. 2.- WALLACH AND BEAVER. DISEASES OF ZOO ANIMALS. PRIMATES. EQD. Saunders, 1983. 3.- BROWN AND AND ROSENTHAL. ROSENTHAL. AUTOEVALUACION ILUSTRADA DE PEQUEÑOS MAMIFEROS. ED. Grass, 1997. 4.- V.C.N.A. EXOTIC PET MEDICINE MED ICINE (JONHSON- DELANY, ED. ASSOCIATED). PRIMATES.ED. Saunders Saunders MAYO MAYO 1993.

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