EX PERIMENTEM PERIMENTEMOS OS EN EL LA BO BORA RA TORI TORIO O CO CON N LA MATERIA VIVA
NARCISO GUILLERMO PISCOYA
CAPACIDAD DE ÁREA
INDAGACIÓN Y EXPERIMENTACIÓN
Indicadores de Evaluación DE CAPACIDAD
Reconoce las biomoléculas e identifica los tipos celulares bajo el microscopio microscopio
DE ACTITUD
Participa activamente en las experiencias e xperiencias de laboratorio
DEL TEMA TRANSVERSAL:
Educación para la gestión de riesgo y la conciencia ambiental
GENERANDO CONFLICTO COGNITIVO (observación)
La prác prácttic ica a respond responde e a las siguien siguienttes preguntas: preguntas:
¿Las células de los l os siguientes vegetales observadas al microscopio tendrán color? ¿Todas las células vegetales tendrán la l a misma forma y tamaño característico? característico? ¿Será necesario teñir la célula para su mejor observación? DESAFÍO
Observa al microscopio las siguientes muestra de los vegetales que se proponen en la guía.
BASES TEÓRICAS
DESARROLLANDO MI CAPACIDAD
I) PROBLEMA
¿Qué tipo de células vegetales y organelos podemos reconocer en las muestras que se observarán a través del microscopio? II) FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA El cuerpo de los vegetales superiores es un Cormo, es decir, está formado por raíz, tallo y hoja. A estos órganos vegetativos se le agregan en primavera, las flores que en verano, formaran frutos y semillas. Todos estos órganos están formados por tejidos. Tejido: Es un grupo de células unidas congénitamente, morfológicamente iguales, con un mismo origen e igual función. La definición anterior corresponde a un tejido simple, pero en los vegetales hay tejidos complejos, que tienen varios tipos de células diferentes y que cumplen distintas funciones, como sucede con los tejidos conductores. Todos los tejidos vegetales tienen su origen en los llamados meristemas o tejidos embrionarios, que están formados por células indiferenciadas y con capacidad de división. Estos tejidos embrionarios se encuentran principalmente en las yemas (botones) y cuando éstas brotan el tejido embrionario comienza a formar células que crecen y se diferencian adaptándose a una función determinada. Estas células diferenciadas, que pierden su capacidad de división, forman los llamados tejidos adultos. A diferencia de los animales, estos tejidos adultos, muchas veces cumplen su función con células muertas, con el lumen celular vacío. En este caso la pared celular modificada es la funcionalmente importante. 1. Tejidos Meristemáticos: Están formados por células embrionarias con gran capacidad de división. Son los responsables del crecimiento de la planta. Sus células son: Isodiamétricas, con delgada pared de pectina, citoplasma muy condensado, pequeñas y escasas vacuolas y con un gran núcleo central y esférico, responsable de la división celular. 2. Tejidos Adultos: Están formados por células adultas, diferenciadas con gruesas paredes celulares, que han perdido su capacidad de división. Muchas veces deben morir primero para cumplir bien su función. Los tejidos adultos se clasifican según la función que cumplen y se colocan al comienzo del tejido parenquimático por ser el me nos diferenciado y porque puede cumplir varias funciones. 2.1 Tejido Parenquimático: Reciben también el nombre de tejido fundamental por ser el menos especializado de los tejidos adultos, por encontrarse repartido por todo el interior del cuerpo de la planta y por cumplir diferentes funciones. La forma de sus células es muy variada, dependiendo de la función que tengan. Son células vivas, con gran vacuola y una pared de celulosa. Este tejido se clasifica según la función que cumplen en: 2.1.1 Parénquima Asimilador: Por presentar células ricas en clorofila reciben también el nombre de clorénquima. Generalmente se ubica bajo la epidermis de hojas y tallos verdes, cumpliendo la función de fotosíntesis. 2.1.2 Parénquima Reservante: Formado por células grandes incoloras con funciones de almacenamiento. Generalmente presentan abundantes leucoplastos. Se ubican en el interior de la planta, en la médula y corteza de tallos y raíces, también en órganos perdurantes de reserva tales como: tubérculos, rizomas, bulbos, generalmente subterráneos. 2.1.3 Parénquima Conductor: Son células algo alargadas que cumplen funciones de conducción en cortas distancias y por lo general en sentido lateral en tallos y raíces.
BASES T EÓRICAS
2.1.4 Parénquima Aerífero: Llamado también aerénquima, tiene función de conducción del aire, para lo cual presenta una gran cantidad de espacios intercelulares o meatos. Estos espacios intercelulares se forman por disolución de la lámina media de las paredes celulares, en las zonas correspondientes a ángulos y vértices. 2.2 Tejido Aislante: Estos tejidos forman capas protectoras de uno o varios tejidos secundarios. Su función es de protección (tejido aislante externo) y de separación morfológica y fisiológica entre tejidos contiguos con funciones diferentes (tejidos aislantes internos). Los tejidos aislantes primarios están formados por células vivas que pueden ser externas (epidermis) o internas (endodermis). 2.2.1 Tejidos Aislantes Primarios. 2.2.1.1 Epidermis: Es un tejido externo, que recubre por fuera a los órganos verdes de los vegetales. Sus funciones son: protección, mantención de la forma, intercambio gaseoso y transpiración. Las células epidermales tienen diferentes formas, son vivas, presentan un gran vacuola y carecen de cloroplastos se unen íntimamente entre sí, sin dejar espacios intercelulares. La continuidad de la epidermis está sólo interrumpida por los estomas. 2.2.1.2 Endodermis: Es un tejido interno, se ubica comúnmente en las raíces, donde separa los tejidos conductores internos (haz conductor radical), del parénquima cortical exterior. Consta de una sola capa de células vivas revestidas parcialmente de una banda endodérmica, impermeable, llamada banda de caspari. Esta capa está interrumpida por células permeables sin endodermina. La función de la endodermis es la de regular el intercambio entre los tejidos contiguos que separa. 2.2.2 Tejidos Aislantes Secundarios: Son tejidos externos compuestos de varias capas de células muertas. 2.2.2.1 Súber o Corcho: Se origina a partir del cambium suberógeno o felógeno (meristema secundario), se presenta en tallos y raíces viejas con crecimiento secundario en grosor, reemplazando la epidermis. Las células del corcho, muertas y con sus paredes revestidas en suberina forman una capa impermeable al agua y los gases. Su función es la reducción de la transpiración, el aislamiento contra temperaturas excesivas y la protección contra daños mecánicos. El suber suele estar fuertemente interrumpido por órganos de aireación llamados lenticelas. 2.3 Tejidos Mecánicos: Son tejidos adultos que sirven para dar solidez, firmeza y elasticidad a la planta. Sus células presentan paredes muy engrosadas. La presencia de estos tejidos, permitió a los vegetales la conquista del medio aeroterrestre. Se distinguen dos tipos de tejidos mecánicos: 2.3.1 Colénquima: Llamado también tejido colenquimático, presenta células con paredes parcialmente engrosadas con celulosa. Se ubican en las paredes vegetales que todavía están en crecimiento. 2.3.2 Esclerénquima: Recibe además el nombre de tejido esclerenquimático y se ubica en las partes vegetales ya desarrolladas y que no crecerán más. Está formado por células muertas con sus paredes celulares engrosadas con lignina. Según la forma de las células se distinguen dos tipos de esclerénquimas: células pétreas, que son más o menos isodiamétricas, y fibras esclerenquimáticas, que son células fusiformes muy alargadas. Estas últimas tienen aplicaciones en la industria textil. 2.4 Tejidos Conductores: El agua y las sales, absorbidas por las raíces deben ascender a las hojas. Las sustancias elaboradas en las hojas deben ser conducidas a los distintos órganos de la planta. Esta importante función de transporte es cumplida por los tejidos conductores. En todos los órganos verdes y tiernos (estructura primaria) de los vegetales superiores, estos tejidos
BASES TEÓRICAS
conductores se agrupan formando cordones llamados haces conductores que quedan incluidos dentro del parénquima. En las hojas constituyen la nervadura. Haces Conductores En el corte transversal de estos haces es posible distinguir de afuera hacia adentro : 1. Vaina fascicular : Está formada por tejido esclerenquimático que rodea al haz conductor protegiéndolo. En la zona ecuatorial, ésta vaina puede ser interrumpida. 2. Cordón criboso o floema : Es la pared del haz conductor que transporta la materia orgánica sintetizada en las hojas. Sus elementos conductores son los tubos cribosos formados por células alargadas y vivas. Junto a ellas están las células anexas ricas en plasma y/o células parenquimáticas (parénquima floemático). En los haces conductores de las Gimnospermas el floema está formado por cordones de células cribosas sin células vivas. 3. Cordón leñoso o xilema : Es la parte del haz conductor que transporta el agua y las sales disueltas, procedentes de la raíz. Este cordón leñoso está compuesto especialmente por células muertas (vasos leñosos), de paredes lignificadas parcialmente y que tienen un poder conductor muy eficaz. Los vasos leñosos de las Gimnospermas sólo por traqueidas en cambio la de las Angiospermas presentan traqueidas y tráqueas, estas últimas más especializadas. 4. Cambium fascicular : Es una delgada zona de tejido meristemático que separa los tejidos del cordón leñoso (xilema) y criboso (floema), en los haces conductores de gimnospermas y dicotiledoneas. Este cambium se activa en determinado momento y comienza a producir tejidos secundarios (liber y leño) posibilitando con esto el engrosamiento del tallo. Clasificación de los Haces Conductores La disposición del floema (cordón criboso) y del xilema (cordón leñoso) en el haz conductor permiten clasificar los haces conductores en : a) Haz conductor concéntrico : El floema y el xilema forman círculos concéntricos en los que puede estar tanto el floema como el xilema en el círculo de más afuera. Si es el floema el externo, se denomina haz conductor perifloemático. Este tipo de haz conductor lo encontramos en rizima de helechos. Si es el xilema el más externo, se denomina haz conductor perixilemático. Se puede observar en la nervadura de ciertas hojas, ejemplo : Nalca (Gunnera tinctorea). b) Haz conductor radial : El floema y el xilema se alternan como radios de una rueda, quedando separados por tejidos parenquimáticos. Este haz es típico de las raíces. c) Haz conductor colateral : presenta el floema oponiéndose al xilema. Es el tipo más común en los vegetales superiores. El haz conductor colateral puede ser abierto, cuando presenta cambium (gimnospermas y dicotiledoneas). O cerrados, cuando carecen de él (monocotiledoneas). d) Haz conductor bicolateral : En éstos el xilema aparece rodeado por fuera y por dentro de floema. Se presenta en la familia Solanaceae. 2.5. Tejidos secretores Es el llamado tejido glandular. La función del tejido glandular es la secreción de sustancias. La clave de este tejido son las células secretoras, capaces de producir algunas sustancias o concentrar y almacenar otras. Las secreciones pueden ser expulsadas al exterior o al interior de la planta. Hay varios tipos de órganos glandulares en las plantas: algunos son pelos, otros son tubos que contienen látex, etc.
EXPERIMENTANDO
III) HIPÓTESIS: 1. Las muestras observadas al microscopio permitirá observar células vegetales de diferentes formas. 2. La resolución del microscopio óptico permitirá observar con nitidez muchos de los organelos descritos en la teoría. IV) DISEÑO DE EXPERIMENTACIÓN 4.1. MATERIALES Y REACTIVOS MATERIALES Y/O INSTRUMENTOS - Microscopios - Estereoscopio. - Láminas porta y cubre objeto - Hisopos hipofaríngeos - Pinza de madera - Navajas de afeitar - Gotero. - Dos agujas de disección. - Una caja Petri. - Un frasco con gotero. - Un lienzo de algodón de 30 X 30 cm - Papel toalla - Palitos de chupete Material biológico fresco: - Un plátano (Musa paradisiaca) - Una naranja con cáscara (Citrus aurantiaca) - Una flor de geranio (Geranium sp.) - Gametofito de una hepática taloide (Marchantia sp., Oxymitra sp. o Targionia sp.) - Una cebolla (Allium cepa)
-
REACTIVOS Y/O SUSTANCIAS - Solución salina al 5% - Azul de metileno - Lugol - Safranina. - Sudán III - Floroglucina HCl (ácido clorhídrico) al 25% Azul de toluidina - Agua destilada
Material biológico fresco: - Una pera (Pyrus malus) - Planta de comelina (Commelina sp.) - Un peciolo de liriro acuático (Eichhornia crassipes) - Una rebanada de sandía (Citrullus lunatus) - Un tallo joven de geranio (Geranium sp.) - Una hoja de pino (Pinus sp.) - Una hoja de helecho (Phlebodium sp.) - Una hoja de crasulácea (Sedum sp.)
4.2. PROCEDIMIENTO Y EXPERIMENTACIÓN Elaborar esquemas de cada una de las observaciones que se realicen, anotar el nombre de la especie, señalar el tejido o estructura observados. Anotar el tipo de microscopio utilizado y en el caso del microscopio óptico, el objetivo utilizado (10, 40 ó 100X) Sobre célula vegetal: 1. Desprender un trocito de 5 x 5 mm de la epidermis de una hoja de cebolla, colocarlo en un portaobjetos y agregar una gota de azul de metileno, colocar el cubreobjetos y observar al microscopio óptico. Agregar luego 1 gota de solución salina y observar cómo se separa la membrana plasmática de la pared celular.
EXPERIMENTANDO
MUESTRA CON AZUL DE METILENO
NÚCLEO
PARED CELULAR
MUESTRA CON
CITOPLASMA
SAFRANINA
2. Realizar la observación del gametofito del helecho, con la ayuda de las pinzas colocarlo en el portaobjetos y colocar el cubreobjetos. Observar al microscopio óptico los cloroplastos.
Soro conteniendo esporas en el Envés de la fronda del helecho
3. Con la punta de la aguja de disección tomar una pizca de plátano, colocarlo sobre el portaobjetos y agregar una gota muy pequeña de lugol, enjuagar inmediatamente con un poco de agua, colocar el cubreobjeto, presionar suavemente con una goma de borrar hasta que quede bien aplastado (squash). Observar al microscopio óptico los amiloplastos teñidos color oscuro. En caso de que los amiloplastos queden muy oscuros, agregar a la preparación un poco más de plátano y esperar aproximadamente 1 minuto hasta que se tiñan de morado.
GRÁNULOS DE ALMIDÓN
MUESTRA CON LUGOL
EXPERIMENTANDO
4. Cortar un trocito de 5x5 mm de un pétalo de Geranio y realizar un “squash” sobre el portaobjetos, cubrir con el cubreobjetos. Observar al microscopio óptico los cromoplastos dentro de las células y los plasmodesmos. CITOPLASMA CROMOPLASTOS PARED CELULAR
VASOS CONDUCTORES
MUESTRA CON SAFRANINA
PLASMODESMOS
5. Elaborar un corte tangencial delgado de la cáscara (exocarpo) de la naranja, colocarlo en el portaobjetos, agregar una gota de verde de malaquita, dejarla 1 minuto y enjuagar con agua, colocar el cubreobjetos. Observar al microscopio óptico las gotas lipídicas.
GOTAS LIPÍDICAS DE LA CÁSCARA DE NARANJA
EXPERIMENTANDO
Tejidos vegetales 1. Elaborar varios cortes transversales del peciolo de lirio acuático de aproximadamente 5x5 mm. Observar al microscopio estereoscópico el aerénquima.
CÉLULAS FORMANDO LAS CÁMARAS DE AIRE
MEATOS AERÍFEROS
2. Realizar varios cortes transversales muy delgados de tallo joven geranio, seleccionar los más delgados, agregar una gota de toluidina, dejarla durante 5 minutos, enjuagar y colocar el cubreobjetos. Observar al microscopio óptico el colénquima ubicado inmediatamente debajo de la epidermis. PARENQUIMA
PELOS O TRICOMAS VASOS CONDUCTORES
3. Realizar varios cortes transversales del tallo de LLANTEN, seleccionar los más delgados, agregar una gota de safranina y dejarla 5 minutos, enjuagar y agregar una gota de azul de metileno y enjuagar, colocar el cubreobjetos. Observar al microscopio óptico los haces vasculares con las células del xilema teñidas de rojo y el floema de azul. XILEMA CAMBIUM
FLOEMA
EXPERIMENTANDO
4. Repetir el procedimiento anterior con cortes longitudinales y observa los elementos del xilema y floema en forma de tubo. 5. Recortar un cubito de aproximadamente 1cm por lado, que incluya la parte blanca y roja de la sandía, realizar varios cortes delgados que incluyan ambos colores, colocar en el portaobjetos los más delgados y observar al microscopio óptico el parénquima acuífero. RAFIDIOS
CÉLULA DE HOJAS DE SÁBILA
6. Cortar un trocito de 1 cm de largo de la hoja de pino o del helecho, hervir durante 5 minutos, separar un trocito de cutícula con la ayuda de las pinzas, colocarlo en el portaobjetos y observar al microscopio óptico los estomas, distinguiendo las células oclusivas y el ostiolo.
CÉLULAS EPITELIALES
ESTOMAS
OSTIOLO
VI. DISCUSIÓN a. ¿En su clase de Ciencia, Tecnología y Ambiente para qué tipo de prácticas utilizarías el microscopio? Se utiliza para las prácticas de biología correspondiente a la: Observación de células procariotas y algunas bacterias Observación de células eucariotas como las que forman tejidos, ejemplo: Observación de células epidérmicas de la piel, mucosa labial o bucal, tejidos vegetales (catáfila, granos de almidón, cromoplastos, parénquimas, etc.) Observación de hongos microscópicos, como mohos y levaduras Observación de algas microscópicas
CONCLUSIONES
Inclusiones citoplasmáticas como rafidios u otros tipos de sales minerales.
b. ¿Qué diferencia encontró entre las células observadas y cuáles son sus partes? Se diferencian en la forma, disposición, la presencia de plastidios ya sea incoloro o coloreado. Pero la más importante diferenciación está en la función que desempeñan. Entre las partes que se pudo diferenciar tenemos: citoplasma, núcleo, nucléolo, además inclusiones celulares. c. ¿Podrías señalar el tipo de tejido observado y las características que le permiten cumplir dichas funciones? Enumera al menos 5 tipos: Tejido epitelial: en la hoja de geranio, con la observación de pelos o tricomas Tejido Parénquima Reservante: en las gránulos de almidón del plátano Tejido parénquima aerífero: en el lirio acuáticos, presentando células que se disponen una de tras de otra, formando espacios que almacenan aire llamados meatos aéreos Tejido parénquima acuífero: como en el caso de la sábila, con la observación incluso la observación Rafidios que químicamente están formado por cristales de oxalato de calcio que se disponen en forma de aguja. Tejido parénquima clorofiliano: como en el caso de la Elodea, donde se observo los cloroplastos y el movimiento intracelular direccional llamado ciclosis. Tejido conductores: en el tallo del geranio, donde se pudo observar el xilema y el floema. También en el pétalo de la flor de geranio donde se puede ver los vasos conductores enrollados
d. ¿Qué utilidades tiene el microscopio óptico y el microscopio estereoscópico? Microscopio Óptico: Este instrumento ha sido de gran utilidad, sobre todo en los campos de la ciencia en donde la estructura y la organización microscópica es importante, incorporándose con éxito a investigaciones dentro del área de la química (en el estudio de cristales), la física (en la investigación de las propiedades físicas de los materiales), la geología (en el análisis de la composición mineralógica de algunas rocas) y, por supuesto, en el campo de la biología (en el estudio de estructuras microscópicas de la materia viva), por citar algunas disciplinas de la ciencia. Hasta ahora se da uso en el laboratorio de histología y anatomía patológica, donde la microscopía permite determinadas aplicaciones diagnósticas, entre ellas el diagnóstico de certeza del cáncer, numerosas estructuras cristalinas, pigmentos, lípidos, proteínas, depósitos óseos, depósitos de amiloide, etcétera. Microscopio estereoscópico: El diseño de este instrumento es distinto y su utilidad es diferente, pues se utiliza para ofrecer una imagen estereoscópica (3D) de la muestra. Para ello, y como ocurre en la visión binocular convencional, es necesario que los dos ojos observen la imagen con ángulos ligeramente distintos. Obviamente todos los microscopios estereoscópicos, por definición, deben ser binoculares (con un ocular para cada ojo), por lo que a veces se confunden ambos términos. Existen dos tipos de diseño, denominados respectivamente convergente (o Greenough) y de objetivo común(o Galileo).
CONCLUSIONES
El microscopio estereoscópico es apropiado para observar objetos de tamaños relativamente grandes, por lo que no es necesario modificar los objetos a ver, (laminar) ni tampoco lo es que la luz pase a través de la muestra. Este tipo de microscopios permite unas distancias que van desde un par de centímetros a las decenas de ellos desde la muestra al objetivo, lo que lo hace muy útil en botánica, mineralogía y en la industria (microelectrónica, por ejemplo) como en medicina (microscopios quirúrgicos) e investigación, fundamentalmente en aplicaciones que requieren manipular el objeto visualizado (donde la visión estereoscópica es esencial). Podríamos decir que un microscopio estereoscópico sirve para las disecciones de animales. e. ¿Qué biomoléculas lograste reconocer en los tejidos vegetales? Entre las moléculas que se lograron ver en las células vegetales tenemos: Sales minerales: como los oxalatos de calcio que van a formar los rafidios en la parte carnosa de la sábila Polisacáridos: como el almidón en los gránulos del plátano Lípidos: como por ejemplo en la cáscara de naranja Proteínas: como el color verde de la clorofila en los cloroplastos
VI. CONCLUSIONES 1. Las células de la catáfila de la cebolla morfológicamente son alargadas, donde se pudo observar con gran nitidez la pared celular, el núcleo, el citoplasma; esto gracias a las diferentes tinciones que se utilizó para colorearla. También se puede apreciar el proceso de plasmólisis al agregarle la solución salina 2. La observación de los megatofitos ubicados en el envés de la hoja de helecho, se pudo observar unas estructuras de color marrón los cuales contiene las esporas 3. El parénquima reservante contenida en el fruto del plátano nos permitió observar los granos de almidón los cuales fueron visibles al microscopio gracias a la coloración del lugol 4. Los plastidios coloreados presentes en los pétalos del Geranio, nos permitió observar cromoplastos los cuales su color rojo se debe al pigmento LICOPENO. Además se pudo observar que los tejidos conductores. 5. Que el indicador Sudan III nos permitió observar las gotas de grasa contenidas en la epidermis de esta fruta cítrica que fue la naranja. 6. Que en todas las plantas acuáticas que el tejido parenquimatoso predominante es el aerífero, los cuales se forman por la disposición de las células que se ubican una detrás de otras a manera de un rosario formando las cámaras de aire. 7. Los pelos o tricomas son estructuras unicelulares epidérmicas que su función es completar la función de protección de los órganos de la planta. Las cuales pueden contener en su interior sustancias secretoras y otras están llenas de aire como por ejemplo las que se encuentran en las hojas de la caña de azúcar. 8. La función de conducción de sustancias nutritivas se realiza a través de los vasos conductores como el xilema y el floema que son originados por el meristemo secundario que es el cambium. 9. Las plantas Xerófitas una de sus funciones es la de almacenar agua, lo que es posible gracias al mucilago que es una sustancia gelatinosa y a la cutícula gruesa que estas plantas presentan. En el mucilago se concentran cristales de oxalatos de calcio en forma de aguja llamados Rafidios como también las Drusas.
BIBLIOGRAFÍA
10. Los estomas están formados por células oclusivas (reniformes), las cuales dejan un espacio llamado Ostiolo por donde se realiza la respiración y transpiración. Estas células se pueden encontrar en mayor cantidad en el Envés de las hojas. VII. METACOGNICIÓN 1. ¿Cómo te sentiste durante el desarrollo de la práctica? Muy bien y con bastante entusiasmo por aprender más sobre tejidos vegetales 2. ¿Qué sabias del tema tratado? Tenía conocimiento de algunas experiencias las cuales aplicaba en mi centro educativo 3. ¿Por qué crees que es importante el tema tratado? Permite evidenciar con el estudiante lo que muchas veces se habla o se discute en la teoría. Nos permite fortalecer las habilidades propias de la investigación y despertar el interés por la ciencia. 4. ¿La presente práctica logró cubrir sus expectativas teniendo en cuenta el tema tratado? Sí, se logro mucho a pesar que por la falta de material biológico no nos permitió observar algunas que se habían programado.
VIII. ACTIVIDAD DE EXTENSIÓN Investiga y luego observa que otros tipos de plantas podemos usar para visualizar tejidos vegetales con gran facilidad y nitidez en el microscopio. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS VIRTUALES
http://html.rincondelvago.com/tejidos-vegetales_1.html http://labbio.bligoo.com/content/view/441707/Actividad-de-laboratorio-Observacion-de-celulasvegetal-y-animal-Basado-en-J-Canete-et-al-TSD-E.html http://www.educa.madrid.org/web/ies.laestrella.madrid/departamentos/biologiageologia/practicas/epidermislirio/desarrollo/epidermislirio.htm http://laboratoriobiologaunad.blogspot.com/ http://web.educastur.princast.es/proyectos/biogeo_ov/2bch/IND_WEBS.htm http://www.google.com.ar/search?um=1&hl=es&biw=1280&bih=829&tbm=isch&sa=1&q=celula+ vegetal+microscopio&oq=celula+vegetal+microscopio&aq=f&aqi=g1&aql=&gs_sm=e&gs_upl=178 52l20323l0l12l12l0l8l8l0l312l1021l0.1.1.2 http://www.unicartagena.edu.co/librose/LABORATORIO%20No%203%20OBSERVACI%C3%93N%2 0DE%20C%C3%89LULAS%20VEGETALES%20%20Y%20DIFERENCIACIONES%20CITOPLASMATICAS. pdf http://es.scribd.com/doc/39989267/Teoria-Celular-y-Microscopia
